JPS6342692A - L−イソロイシンの製造法 - Google Patents
L−イソロイシンの製造法Info
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- JPS6342692A JPS6342692A JP18588186A JP18588186A JPS6342692A JP S6342692 A JPS6342692 A JP S6342692A JP 18588186 A JP18588186 A JP 18588186A JP 18588186 A JP18588186 A JP 18588186A JP S6342692 A JPS6342692 A JP S6342692A
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は酵素法によるL−イソロイシンの製造法に関す
る。更に詳しくはD−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵
素等を併用しD−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ
酪酸を原料としてL−イソロイシンを製造する方法に関
する。
る。更に詳しくはD−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵
素等を併用しD−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ
酪酸を原料としてL−イソロイシンを製造する方法に関
する。
(従来技術とその課題)
L−イソロイシンは必須アミノ酸として人間及び動物の
栄養上重要な役割をするアミノ酸であり、医療、食品、
飼料強化剤としてその需要が近年急激に増加しつつある
。L−イソロイシンの工業的製造法としては醗酵法及び
酵素法が注目される。中でも本発明者が最近開発した酵
素法がα−アミノ酪酸とエタノールから効率良< L−
イソロイシンを製造することが出来るので特に注目され
る(特願昭61−133773号)。
栄養上重要な役割をするアミノ酸であり、医療、食品、
飼料強化剤としてその需要が近年急激に増加しつつある
。L−イソロイシンの工業的製造法としては醗酵法及び
酵素法が注目される。中でも本発明者が最近開発した酵
素法がα−アミノ酪酸とエタノールから効率良< L−
イソロイシンを製造することが出来るので特に注目され
る(特願昭61−133773号)。
然しなから、この方法も工業的にみた場合、収率及びコ
ストの点更に改善を要する。
ストの点更に改善を要する。
(発明の構成及び効果)
本発明者等は酵素法によるL−イソロイシンの製造法に
関し上記の課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果本発
明に到達した。本発明の要旨は、「■[L−α−アミノ
酪酸又はDL−α−アミノ酪酸を原料として、酵素反応
により、L−イソロイシンを生成する微生物の菌体若し
くはその処理物」及び ■「D−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵素、該酵素を
含有する微生物の菌体又はその処理物」の存在下D−α
−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ酪酸を酵素反応によ
りL−イソロイシンとし、次いでこの反応液よりL−イ
ソロイシンを分離するL−イソロイシンの製造法。」で
ある。
関し上記の課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果本発
明に到達した。本発明の要旨は、「■[L−α−アミノ
酪酸又はDL−α−アミノ酪酸を原料として、酵素反応
により、L−イソロイシンを生成する微生物の菌体若し
くはその処理物」及び ■「D−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵素、該酵素を
含有する微生物の菌体又はその処理物」の存在下D−α
−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ酪酸を酵素反応によ
りL−イソロイシンとし、次いでこの反応液よりL−イ
ソロイシンを分離するL−イソロイシンの製造法。」で
ある。
本発明の方法によれば、 L−α−アミノ酪酸又はDL
−α−アミノ酪酸を原料として酵素反応によりL−イソ
ロイシンを生成する微生物の菌体若しくはその処理物と
D−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵素、該酵素を含有
する微生物の菌体又はその処理物とが相互に全く悪影響
を及ぼさないで、また目的物であるL−イソロイシンに
対しても全く悪影響を与えることなく、工業的に安価に
入手可能なりL−α−アミノ酪酸又はD−α−アミノ酪
酸から極めて高い生産性で効率良くL−イソロイシンが
製造出来る。
−α−アミノ酪酸を原料として酵素反応によりL−イソ
ロイシンを生成する微生物の菌体若しくはその処理物と
D−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵素、該酵素を含有
する微生物の菌体又はその処理物とが相互に全く悪影響
を及ぼさないで、また目的物であるL−イソロイシンに
対しても全く悪影響を与えることなく、工業的に安価に
入手可能なりL−α−アミノ酪酸又はD−α−アミノ酪
酸から極めて高い生産性で効率良くL−イソロイシンが
製造出来る。
本発明に用いるL−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミ
ノ酪酸を原料として酵素反応によりL−イソロイシンを
生成する微生物としては、例えば、ブレビバクテリウム
・フラバム(BrevibacteriulIflav
u+m) M J −233(微工研菌寄 第3068
号)、ブレビバクテリウム・フラバム(Breviba
cteriu+* flavus+) MJ−233
−AB−41(微工研菌寄 第3812)、ブレビバク
テリウム・フラバム(Brevibacterium
flavum) M J −233−ABT−11(
微工研菌寄 第8423号)等のブレビバクテリウム(
Brevibacteriui*)属に属するエタノー
ル資化性微生物であり、本発明に好適に用いられる。
ノ酪酸を原料として酵素反応によりL−イソロイシンを
生成する微生物としては、例えば、ブレビバクテリウム
・フラバム(BrevibacteriulIflav
u+m) M J −233(微工研菌寄 第3068
号)、ブレビバクテリウム・フラバム(Breviba
cteriu+* flavus+) MJ−233
−AB−41(微工研菌寄 第3812)、ブレビバク
テリウム・フラバム(Brevibacterium
flavum) M J −233−ABT−11(
微工研菌寄 第8423号)等のブレビバクテリウム(
Brevibacteriui*)属に属するエタノー
ル資化性微生物であり、本発明に好適に用いられる。
なお、上記の(微工研菌寄 第3812号)は(微工研
菌寄 第3068号)を親株としてDL−α−アミノ酪
酸耐性を積極的に付与されたエタノール資化性微生物で
ある(特公昭59−28398号公報3〜4欄参照)。
菌寄 第3068号)を親株としてDL−α−アミノ酪
酸耐性を積極的に付与されたエタノール資化性微生物で
ある(特公昭59−28398号公報3〜4欄参照)。
(微工研菌寄 第8423号)は(徴工研菌寄 第30
68号)を親株としたL−α−アミノ酪酸トランスアミ
ナーゼ高活性変異株である(特願昭60−190609
号明細書3〜5頁参照)。
68号)を親株としたL−α−アミノ酪酸トランスアミ
ナーゼ高活性変異株である(特願昭60−190609
号明細書3〜5頁参照)。
本発明の酵素反応には、上記の微生物の菌体又はその超
音波破砕、固定化等による処理物が用いられる。更にこ
れらの微生物の菌体又はその処理物を公知の手法で固定
化したものも使用できる。
音波破砕、固定化等による処理物が用いられる。更にこ
れらの微生物の菌体又はその処理物を公知の手法で固定
化したものも使用できる。
本発明の方法に用いるD−α−アミノ酪酸をラセミ化す
る酵素、該酵素を含有する微生物の菌体又は処理物は、
D−α−アミノ酪酸に作用し、目的物であるL−イソロ
イシンに作用しないものであり、例えばシュウトモナス
・プチダ(IFOl 2996)等の微生物の菌体又は
その処理物が用いられる。これら微生物の菌体又はその
処理物は固定化されているのが好ましく、固定化は例え
ばポリアクリルアミド、アルギン酸、に−カラギーナン
等による包括法あるいはDEAE−セファデクス、DE
AE−セルロース等によるイオン結合法等のなかから適
宜選択することが出来る。
る酵素、該酵素を含有する微生物の菌体又は処理物は、
D−α−アミノ酪酸に作用し、目的物であるL−イソロ
イシンに作用しないものであり、例えばシュウトモナス
・プチダ(IFOl 2996)等の微生物の菌体又は
その処理物が用いられる。これら微生物の菌体又はその
処理物は固定化されているのが好ましく、固定化は例え
ばポリアクリルアミド、アルギン酸、に−カラギーナン
等による包括法あるいはDEAE−セファデクス、DE
AE−セルロース等によるイオン結合法等のなかから適
宜選択することが出来る。
上述の本発明に用いる各微生物は、各酵素活性を向上さ
せた変異、遺伝子組み換え、細胞融合などの手法により
得られた微生物であってもよい。
せた変異、遺伝子組み換え、細胞融合などの手法により
得られた微生物であってもよい。
L−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ酪酸生成する
微生物の菌体若しくはその処理物およびD−α−アミノ
酪酸をラセミ化する酵素、該酵素を含有する微化物の菌
体若しくはその処理物の存在下D−α−アミノ酪酸又は
DL−α−アミノ酪酸を酵素反応によりL−イソロイシ
ンとする本発明の方法を以下に説明する。
微生物の菌体若しくはその処理物およびD−α−アミノ
酪酸をラセミ化する酵素、該酵素を含有する微化物の菌
体若しくはその処理物の存在下D−α−アミノ酪酸又は
DL−α−アミノ酪酸を酵素反応によりL−イソロイシ
ンとする本発明の方法を以下に説明する。
この酵素反応系には、少なくともD−α−アミノ酪酸又
はDL−α−アミノ酪酸の他好ましくは更にエタノール
が含まれていればよく、その濃度は例えば反応の開始時
にα−アミノ酪酸は0.01〜20重量%、好ましくは
0.05〜10重量%程度である。また、反応液に添加
されるエタノールの濃度は0.1〜20容量%が適当で
ある。
はDL−α−アミノ酪酸の他好ましくは更にエタノール
が含まれていればよく、その濃度は例えば反応の開始時
にα−アミノ酪酸は0.01〜20重量%、好ましくは
0.05〜10重量%程度である。また、反応液に添加
されるエタノールの濃度は0.1〜20容量%が適当で
ある。
この酵素反応系には上記の2種の酵素又は酵素源が存在
するものであるが、これら2Nの酵素又は酵素源が反応
の始めから反応系に共存していてもよいし、反応の途中
でD−α−アミノ酪酸のラセミ化酵素又は酵素源を反応
系に添加することも出来る。
するものであるが、これら2Nの酵素又は酵素源が反応
の始めから反応系に共存していてもよいし、反応の途中
でD−α−アミノ酪酸のラセミ化酵素又は酵素源を反応
系に添加することも出来る。
L−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ酪酸を原料と
してL−イソロイシンを生成する微生物の菌体又はその
処理物は酵素源であるが、この使用量は0.1〜20重
量%好ましくは、1〜10重量%程度である。
してL−イソロイシンを生成する微生物の菌体又はその
処理物は酵素源であるが、この使用量は0.1〜20重
量%好ましくは、1〜10重量%程度である。
また、D−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵素、該酵素
を含有する微生物の菌体又はその処理物の使用量は、0
.1〜50重量%、好ましくは、1〜30重量%程度で
ある。
を含有する微生物の菌体又はその処理物の使用量は、0
.1〜50重量%、好ましくは、1〜30重量%程度で
ある。
この酵素反応系には上記の各成分の他に用いる酵素源と
しての微生物の特性に応じて必要により公知の無機塩や
グルコース等の炭素源等を加えることができる。
しての微生物の特性に応じて必要により公知の無機塩や
グルコース等の炭素源等を加えることができる。
この反応は、pHが5〜10、好ましくは6〜9で行わ
れ、反応温度は通常の微生物を用いる場合には約10〜
60℃、好ましくは約20〜45℃であるが、酵素源と
して好熱性微生物などの特殊な微生物種の場合には、用
いる微生物に通する温度条件を選定しておこなわれる。
れ、反応温度は通常の微生物を用いる場合には約10〜
60℃、好ましくは約20〜45℃であるが、酵素源と
して好熱性微生物などの特殊な微生物種の場合には、用
いる微生物に通する温度条件を選定しておこなわれる。
なお反応は通常約10〜72時間行われる。
酵素反応に用いられる反応溶媒は、水あるいはリン酸又
はトリス塩酸等の緩衝液が好ましい。
はトリス塩酸等の緩衝液が好ましい。
本発明に用いられる2種の微生物、即ち、L−α−7ミ
ノ酪酸からL−イソロイシンを生成する能力を有する微
生物、及びL−イソロイシンを基質とせずD−α−アミ
ノ酪酸のみをラセミ化する能力を有する微生物の調製法
を以下にのべる。
ノ酪酸からL−イソロイシンを生成する能力を有する微
生物、及びL−イソロイシンを基質とせずD−α−アミ
ノ酪酸のみをラセミ化する能力を有する微生物の調製法
を以下にのべる。
これら2種類の微生物の炭素源としては、例えばグルコ
ース、エタノール、メタノール、廃糖蜜等が、窒素源と
してはアンモニア、fM酸アンモニウム、塩化アンモニ
ウム、硝酸アンモニウム、尿素等がそれぞれ単独もしく
は混合して用いることが出来る。
ース、エタノール、メタノール、廃糖蜜等が、窒素源と
してはアンモニア、fM酸アンモニウム、塩化アンモニ
ウム、硝酸アンモニウム、尿素等がそれぞれ単独もしく
は混合して用いることが出来る。
無機塩としては、リン酸−水素カリウム、リン酸二水素
カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他に
菌の生育に必要であれば、ペプトン、肉エキス、酵母エ
キス、コーンステイープリカー、カザミノ酸、各種ビタ
ミン等の栄養素を培地に添加して用いることができる。
カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他に
菌の生育に必要であれば、ペプトン、肉エキス、酵母エ
キス、コーンステイープリカー、カザミノ酸、各種ビタ
ミン等の栄養素を培地に添加して用いることができる。
培養は通気攪拌、振盪等の好気的条件下で行い、培養温
度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う。培
養途中のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行
い、培養中のpHの調整には酸、アルカリを添加して行
うことができる。
度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う。培
養途中のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行
い、培養中のpHの調整には酸、アルカリを添加して行
うことができる。
なお、培養は通常1〜7日間、最適期間は3〜5日間で
ある。
ある。
以下に、D−α−アミノ酪酸のラセミ化酵素の調製例及
び本発明の実施例を示すが、L−イソロイシンの定性は
、ペーパークロマトグラフのRf値、電気泳動法の易動
度、微生物定量法による生物活性値により確認した。定
量はロイコノストック・メセンテロイデス(Leuco
nostoc mesenteroides)ATCC
8042を用いるマイクロバイオアッセイ法と高速液体
クロマトグラフィー(島原LC−5A)とを併用して行
った。また、下記の実施例において%と表したのは重量
%を意味する。
び本発明の実施例を示すが、L−イソロイシンの定性は
、ペーパークロマトグラフのRf値、電気泳動法の易動
度、微生物定量法による生物活性値により確認した。定
量はロイコノストック・メセンテロイデス(Leuco
nostoc mesenteroides)ATCC
8042を用いるマイクロバイオアッセイ法と高速液体
クロマトグラフィー(島原LC−5A)とを併用して行
った。また、下記の実施例において%と表したのは重量
%を意味する。
参考例1 (D−α−アミノ酪酸のラセミ化酵素の調
製) 下記培地組成への培地100 m lを500 m l
容三角フラス咀に分注して120℃、15分間滅菌処理
したものに、シュードモナス・プチダ(11seudo
+nonas putida) I F O12996
を一白金耳量接種し、30℃にて24時間振盪培養(前
培養とする)後、上記と同じ培地組成Aの培地1!を5
1容三角フラスコに分注し、120℃で15分間滅菌処
理したものに上記前培養物の20m1を接種したものを
更に30℃にて24時間振盪培養した。
製) 下記培地組成への培地100 m lを500 m l
容三角フラス咀に分注して120℃、15分間滅菌処理
したものに、シュードモナス・プチダ(11seudo
+nonas putida) I F O12996
を一白金耳量接種し、30℃にて24時間振盪培養(前
培養とする)後、上記と同じ培地組成Aの培地1!を5
1容三角フラスコに分注し、120℃で15分間滅菌処
理したものに上記前培養物の20m1を接種したものを
更に30℃にて24時間振盪培養した。
培養終了液lIlを遠心分離し菌体を築め、これを純水
に懸濁せしめて20m1とし、これに4゜2gのアクリ
ルアミド、0.28gのN、N’−メチレン−ビス−ア
クリルアミド、4%β−(ジメチルアミノ)−プロピオ
ニトリル3 m l!及び2%過塩素酸カリウム2ml
を加えて、室温に15分間静置して反応させて菌体を保
有する重合物を得た。次いでこの重合物である反応生成
物を粉砕し、純水で洗浄することにより固定化菌体30
gを得、これをD−α−アミノ酪酸ラセミ化酵素源とし
た。なお、菌体の固定化操作はすべて無菌操作で実施し
た。
に懸濁せしめて20m1とし、これに4゜2gのアクリ
ルアミド、0.28gのN、N’−メチレン−ビス−ア
クリルアミド、4%β−(ジメチルアミノ)−プロピオ
ニトリル3 m l!及び2%過塩素酸カリウム2ml
を加えて、室温に15分間静置して反応させて菌体を保
有する重合物を得た。次いでこの重合物である反応生成
物を粉砕し、純水で洗浄することにより固定化菌体30
gを得、これをD−α−アミノ酪酸ラセミ化酵素源とし
た。なお、菌体の固定化操作はすべて無菌操作で実施し
た。
培地組成 A
肉エキス 1%
ペプトン 1%
NaC1O,5%
pH7,2
実施例1
尿素0.4%、硫酸アンモニュウム1.4%、K H2
P 04 0 、 05%、K2 HP 04 0.0
5%、M g S O4・7 H200−05%、Ca
Cl!2・2H702ppm、Fe50+ ・7H2
O2ppm、MnSO4・4〜6H202ppm、Zn
5Ot ・7H202ppm、NaC7!2ppm、
ビオチン200.czg/f、チアミン・HCf100
μg/β、カザミノ酸0.1%、酵母エキス0.1%か
らなる培地50 m l!を500m!容三角フラスコ
に分注し、滅菌(滅菌後pH7,O)した後、ブレビバ
クテリウム・フラバム(Brevibacteriuw
flavum) M J −233(微工研菌寄 第
3068号)を植菌し、無菌的にエタノールを1.5m
l1加え、30℃にて3日間振盪培養を行った。培養終
了後4000rpm、15分間の遠心分離により菌体を
回収し、DL−α−アミノ酪酸からのL−イソロイシン
生成の酵素源とした。
P 04 0 、 05%、K2 HP 04 0.0
5%、M g S O4・7 H200−05%、Ca
Cl!2・2H702ppm、Fe50+ ・7H2
O2ppm、MnSO4・4〜6H202ppm、Zn
5Ot ・7H202ppm、NaC7!2ppm、
ビオチン200.czg/f、チアミン・HCf100
μg/β、カザミノ酸0.1%、酵母エキス0.1%か
らなる培地50 m l!を500m!容三角フラスコ
に分注し、滅菌(滅菌後pH7,O)した後、ブレビバ
クテリウム・フラバム(Brevibacteriuw
flavum) M J −233(微工研菌寄 第
3068号)を植菌し、無菌的にエタノールを1.5m
l1加え、30℃にて3日間振盪培養を行った。培養終
了後4000rpm、15分間の遠心分離により菌体を
回収し、DL−α−アミノ酪酸からのL−イソロイシン
生成の酵素源とした。
反応液(DL−α−アミノ酪酸0.5mg、ピリドキサ
ールリン酸5μg、リン酸緩衝液100μw+oles
、エタノールlomg、pH7,0を反応液1ml中
に含有)100mj+にこの菌体5g及び参考例1で調
製した固定化菌体20gを加え、30℃にて24時間反
応を行ったところL−イソロイシンの総生産量は45m
gであった。
ールリン酸5μg、リン酸緩衝液100μw+oles
、エタノールlomg、pH7,0を反応液1ml中
に含有)100mj+にこの菌体5g及び参考例1で調
製した固定化菌体20gを加え、30℃にて24時間反
応を行ったところL−イソロイシンの総生産量は45m
gであった。
反応液から菌体その他不純物を除いた濾液を、強酸性陽
イオン交換樹脂(H十 型)のカラムに通して、L−イ
ソロイシンを吸着させ、水洗後、0.5Nアンモニア水
で溶出したのち、L−イソロイシン画分を凝縮し、冷エ
タノールでL−イソ0イシンの結晶を析出させて31m
gの粗結晶を得た。なお、参考例1で調製した固定化菌
体を添加しない場合には、L−イソロイシンの総生成量
は35mgであった。
イオン交換樹脂(H十 型)のカラムに通して、L−イ
ソロイシンを吸着させ、水洗後、0.5Nアンモニア水
で溶出したのち、L−イソロイシン画分を凝縮し、冷エ
タノールでL−イソ0イシンの結晶を析出させて31m
gの粗結晶を得た。なお、参考例1で調製した固定化菌
体を添加しない場合には、L−イソロイシンの総生成量
は35mgであった。
実施例2
実施例1と同様の培地50m1を500ml!容三角フ
ラスコに分注し、滅菌(滅菌後pH7,0)した後、ブ
レビバクテリウム・フラバム(Brevibacter
ium flavun) MJ−233−AB−41
(微工研菌寄 第3812号)を植菌し、30℃にて3
B間振盪培養を行った。次にこの培養液を400Orp
m、15分間の遠心分離により菌体を回収した。
ラスコに分注し、滅菌(滅菌後pH7,0)した後、ブ
レビバクテリウム・フラバム(Brevibacter
ium flavun) MJ−233−AB−41
(微工研菌寄 第3812号)を植菌し、30℃にて3
B間振盪培養を行った。次にこの培養液を400Orp
m、15分間の遠心分離により菌体を回収した。
実施例1と同様な反応液100m1!に上記で得た菌体
5g及び参考例1で調製した固定化菌体20gを加え、
30℃、24時間反応をおこなったところ、1.−イソ
ロイシンの総生産量は55mgであった。一方、固定化
菌体を添加しない場合の総41−成量は41mgであっ
た。
5g及び参考例1で調製した固定化菌体20gを加え、
30℃、24時間反応をおこなったところ、1.−イソ
ロイシンの総生産量は55mgであった。一方、固定化
菌体を添加しない場合の総41−成量は41mgであっ
た。
実施例3
実施例1と同様の操作にてブレビバクテリウム・フラバ
ム(BrevibacteriullIflavus)
M J −233−ABT−11(微工研菌寄 第8
423号)を培養後遠心分離により菌体を回収した。実
施例1と同様な反応液100mj+に上記で得た菌体5
g及び参考例1で調製した固定化菌体20gを加え、3
0℃、24時間反応をおこなったところ、L−イソロイ
シンの総生成量は61mgであった。一方、固定化菌体
を添加しない場合の総生成量は、35mgであった。
ム(BrevibacteriullIflavus)
M J −233−ABT−11(微工研菌寄 第8
423号)を培養後遠心分離により菌体を回収した。実
施例1と同様な反応液100mj+に上記で得た菌体5
g及び参考例1で調製した固定化菌体20gを加え、3
0℃、24時間反応をおこなったところ、L−イソロイ
シンの総生成量は61mgであった。一方、固定化菌体
を添加しない場合の総生成量は、35mgであった。
実施例4
実施例1と同様にして調製したブレビバクテリウム・フ
ラバム(Brevibacterium flavu
+m) M J−233(微工研菌寄 第3068号)
の菌体5gを反応液(D−α−アミノ酪酸0.5mg、
ピリドキサールリンw15μg、リン酸緩衝液100μ
moles 、エタノール10mg、、pH7,0を反
応液1m7!中に含有)100ml!に加え、更に参各
側1で調製した固定化菌体20gを加え、30℃にて2
4時間反応を行ったところL−イソロイシンの総生産量
は3 Qmgであった。一方、固定化菌体を添加しない
場合の総生産量は2.5mgであった。
ラバム(Brevibacterium flavu
+m) M J−233(微工研菌寄 第3068号)
の菌体5gを反応液(D−α−アミノ酪酸0.5mg、
ピリドキサールリンw15μg、リン酸緩衝液100μ
moles 、エタノール10mg、、pH7,0を反
応液1m7!中に含有)100ml!に加え、更に参各
側1で調製した固定化菌体20gを加え、30℃にて2
4時間反応を行ったところL−イソロイシンの総生産量
は3 Qmgであった。一方、固定化菌体を添加しない
場合の総生産量は2.5mgであった。
実施例5
実施例2と同様にして調製したブレビバクテリウム・フ
ラバム(Brevibacterium flavu
w) M J−233−AB−41(微工研菌寄 第3
812号)を用いて、実施例4と同様の反応液にて30
℃、24時間反応を行ったところ、L−イソロイシンの
総生産量は35mgであった。一方、固定化菌体を添加
しない場合の総生産量は7 m gであった。
ラバム(Brevibacterium flavu
w) M J−233−AB−41(微工研菌寄 第3
812号)を用いて、実施例4と同様の反応液にて30
℃、24時間反応を行ったところ、L−イソロイシンの
総生産量は35mgであった。一方、固定化菌体を添加
しない場合の総生産量は7 m gであった。
実施例6
実施例3と同様にして調製したブレビバクテリウム・フ
ラバム(Brevibacteriuw flavu
m) M J−233−ABT−11(+1[工研菌寄
第8423号)を用いて、実施例4と同様の反応液に
て30℃24時間反応を行ったところ、L−イソロイシ
ンの総生産量は42mgであった。一方、固定化菌体を
添加しない場合の総生産量は2.7mgであった。
ラバム(Brevibacteriuw flavu
m) M J−233−ABT−11(+1[工研菌寄
第8423号)を用いて、実施例4と同様の反応液に
て30℃24時間反応を行ったところ、L−イソロイシ
ンの総生産量は42mgであった。一方、固定化菌体を
添加しない場合の総生産量は2.7mgであった。
Claims (1)
- (1)[1]「L−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミ
ノ酪酸を原料として、酵素反応により、L−イソロイシ
ンを生成する微生物の菌体若しくはその処理物」及び [2]「D−α−アミノ酪酸をラセミ化する酵素、該酵
素を含有する微生物の菌体又はその処理物」の存在下D
−α−アミノ酪酸又はDL−α−アミノ酪酸を酵素反応
によりL−イソロイシンとし、次いでこの反応液よりL
−イソロイシンを分離するL−イソロイシンの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18588186A JPS6342692A (ja) | 1986-08-07 | 1986-08-07 | L−イソロイシンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18588186A JPS6342692A (ja) | 1986-08-07 | 1986-08-07 | L−イソロイシンの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6342692A true JPS6342692A (ja) | 1988-02-23 |
Family
ID=16178509
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP18588186A Pending JPS6342692A (ja) | 1986-08-07 | 1986-08-07 | L−イソロイシンの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6342692A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2011001889A1 (ja) * | 2009-06-29 | 2011-01-06 | 三菱瓦斯化学株式会社 | 光学活性α-アミノ酸のラセミ化方法 |
JP2011024572A (ja) * | 2009-06-29 | 2011-02-10 | Mitsubishi Gas Chemical Co Inc | 光学活性アミノ酸の製造法 |
-
1986
- 1986-08-07 JP JP18588186A patent/JPS6342692A/ja active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2011001889A1 (ja) * | 2009-06-29 | 2011-01-06 | 三菱瓦斯化学株式会社 | 光学活性α-アミノ酸のラセミ化方法 |
JP2011024572A (ja) * | 2009-06-29 | 2011-02-10 | Mitsubishi Gas Chemical Co Inc | 光学活性アミノ酸の製造法 |
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