JPH02295491A - L―イソロイシンの製造方法 - Google Patents
L―イソロイシンの製造方法Info
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、L−イソロイシンの製造方法に関し、さらに
詳しくは、L−イソロイシンを副生物の生成を抑制して
高収量で製造する方法に関する。
詳しくは、L−イソロイシンを副生物の生成を抑制して
高収量で製造する方法に関する。
L−イソロイシンは必須アミノ酸の1つであり、人間及
び動物の栄養上重要な役割を果すアミノ酸として、医薬
品、食品、飼料添加物等に配合されており、近年その需
要が急激に増加しつつある。
び動物の栄養上重要な役割を果すアミノ酸として、医薬
品、食品、飼料添加物等に配合されており、近年その需
要が急激に増加しつつある。
し従来の技術]
L−イソロイシンは、他のアミノ酸と同様に立体異性体
が存在するため、化学的に合成することは一般には困難
であり、工業的には主として発酵法により生産されてい
る。例えば、DL−α−アミノ酪酸、スレオニン等のし
−イソロイシンの前駆物質中で発酵を行なう方法(特公
昭4 3−8 709号公報、特公昭4 (1−2 8
8 0号公報等参照);かかる前駆物質を用いない所
謂直接発酵による方法(特公昭38−7091号公報、
特開昭4 9−9 3 5 8 6号公報等参照)等が
採用されている。
が存在するため、化学的に合成することは一般には困難
であり、工業的には主として発酵法により生産されてい
る。例えば、DL−α−アミノ酪酸、スレオニン等のし
−イソロイシンの前駆物質中で発酵を行なう方法(特公
昭4 3−8 709号公報、特公昭4 (1−2 8
8 0号公報等参照);かかる前駆物質を用いない所
謂直接発酵による方法(特公昭38−7091号公報、
特開昭4 9−9 3 5 8 6号公報等参照)等が
採用されている。
一方、酵素法としては、例えば、アンモニウムイオン又
はイソロイシン以外のし一若しくはDLアミノ酸の存在
下に、D−、L−若しくはDLα−ケトーβ−メチル吉
草酸からL−イソロイシンを製造する方法(特公昭4
6−2 9 7 8 9号公報参照);アンモニウムイ
オン又はイソロイシン以外のL一若しくはDL−アミノ
酸の存在下に、D−イソロイシン又はD−γ口イソロイ
シンの単独若しくは混合物又はこれらとその光学異性体
との適宜混合物を変換してL−イソロイシンを製造する
方法(特公昭4 6−2 9 7 8 8号公報参照)
;セラチア(Serratia) @細菌の固定化物を
用いてグルコースとD−スレ才ニンからし−イソロイシ
ンを製造する方法(日本醗酵工学会大会講演要旨集、4
7〜48頁、昭和52年度)等が報告されている。
はイソロイシン以外のし一若しくはDLアミノ酸の存在
下に、D−、L−若しくはDLα−ケトーβ−メチル吉
草酸からL−イソロイシンを製造する方法(特公昭4
6−2 9 7 8 9号公報参照);アンモニウムイ
オン又はイソロイシン以外のL一若しくはDL−アミノ
酸の存在下に、D−イソロイシン又はD−γ口イソロイ
シンの単独若しくは混合物又はこれらとその光学異性体
との適宜混合物を変換してL−イソロイシンを製造する
方法(特公昭4 6−2 9 7 8 8号公報参照)
;セラチア(Serratia) @細菌の固定化物を
用いてグルコースとD−スレ才ニンからし−イソロイシ
ンを製造する方法(日本醗酵工学会大会講演要旨集、4
7〜48頁、昭和52年度)等が報告されている。
しかしながら、これらの方法は原料コストが嵩む、収率
が低い等の問題があり、充分に満足しうるちのではない
。
が低い等の問題があり、充分に満足しうるちのではない
。
また本発明者らは先に、コリネ型細菌に属するエタノー
ル資化性を有するビオチン要求性微生物の菌体若しくは
その処理物又はそれらの固定化物の存在下に、エタノー
ル及びα−アミノ酪酸を含有する水溶液を酵素反応させ
て、反応液中にL−イソロイシンを生成せしめ、これか
らし−イソロイシンを採取することを特徴とするし−イ
ソロイシンの製造法(特開昭63−112991号公報
参照)を提案した。
ル資化性を有するビオチン要求性微生物の菌体若しくは
その処理物又はそれらの固定化物の存在下に、エタノー
ル及びα−アミノ酪酸を含有する水溶液を酵素反応させ
て、反応液中にL−イソロイシンを生成せしめ、これか
らし−イソロイシンを採取することを特徴とするし−イ
ソロイシンの製造法(特開昭63−112991号公報
参照)を提案した。
[発明が解決しようとする課題コ
本発明者らは、先に提案した上記の方法について、L−
イソロイシンをさらに高収率で取得すべく改良研究を行
なっている過程で、酵素反応液中に〇一エチルホモセリ
ンが副生じ、この物質が反応液からのし−イソロイシン
の分離精製を煩雑にし、L−イソロイシンの回収率を低
下させていることを究明した。そこで、本発明者らは、
酵素反応液中における0−エチルホモセリンの副生を抑
制すれば、L−イソロイシンの収率を向上させうると考
え、その抑制方法につき鋭意検討を重ねた結果、前述し
たコリネ型細菌に属するビオチン要求性微生物の菌体又
はその処理物を用いる酵素反応法によるし−イソロイシ
ンの製造を、反応液中のエタノール濃度を0.01〜0
.6容量%の範囲に維持する条件下に実施すれば、0−
エチルホモセリンの副生が大幅に低減し、酵素反応液か
らのLイソロイシンの分離精製が容易となり、L−イソ
ロイシンの収率も向上させうろことが見出され、本発明
を完成するに至った。
イソロイシンをさらに高収率で取得すべく改良研究を行
なっている過程で、酵素反応液中に〇一エチルホモセリ
ンが副生じ、この物質が反応液からのし−イソロイシン
の分離精製を煩雑にし、L−イソロイシンの回収率を低
下させていることを究明した。そこで、本発明者らは、
酵素反応液中における0−エチルホモセリンの副生を抑
制すれば、L−イソロイシンの収率を向上させうると考
え、その抑制方法につき鋭意検討を重ねた結果、前述し
たコリネ型細菌に属するビオチン要求性微生物の菌体又
はその処理物を用いる酵素反応法によるし−イソロイシ
ンの製造を、反応液中のエタノール濃度を0.01〜0
.6容量%の範囲に維持する条件下に実施すれば、0−
エチルホモセリンの副生が大幅に低減し、酵素反応液か
らのLイソロイシンの分離精製が容易となり、L−イソ
ロイシンの収率も向上させうろことが見出され、本発明
を完成するに至った。
[課題を解決するための手段]
かくして、本発明によれば、コリネ型細菌に属するエタ
ノール資化性を有するビオチン要求性微生物の菌体又は
その処理物の存在下に、L一若しくはDL−α−アミノ
酪酸、α−ケト酪酸、L−若しくはDL一α−ヒドロキ
シ酪酸、又はそれらの塩より選ばれる酪酸誘導体を、水
性エタノール溶液中で酵素反応せしめてL−イソロイシ
ンを製造するに当り、反応溶液中のエタノール濃度を0
.01〜0.6容量%の範囲に維持しつつ酵素反応せし
めることを特徴とするし−イソロイシンの製造方法(以
下、これを「酵素反応法」という)が提供される。
ノール資化性を有するビオチン要求性微生物の菌体又は
その処理物の存在下に、L一若しくはDL−α−アミノ
酪酸、α−ケト酪酸、L−若しくはDL一α−ヒドロキ
シ酪酸、又はそれらの塩より選ばれる酪酸誘導体を、水
性エタノール溶液中で酵素反応せしめてL−イソロイシ
ンを製造するに当り、反応溶液中のエタノール濃度を0
.01〜0.6容量%の範囲に維持しつつ酵素反応せし
めることを特徴とするし−イソロイシンの製造方法(以
下、これを「酵素反応法」という)が提供される。
以下、本発明の方法についてさらに詳細に説明する。
本発明の方法において使用される微生物は、コリ不型細
菌に属するビオチン要求性微生物であり、好ましくはエ
タノール資化性を有するものである。
菌に属するビオチン要求性微生物であり、好ましくはエ
タノール資化性を有するものである。
その中には、L−イソロイシン生産菌も含まれる。
そのような微生物の具体例としては、
プレビバクテリウム・フラバム(Brevibacte
r−ium flavum) M J − 2 3 3
[微工研条寄第1497号(微工研菌寄第3068号
より移管)]、プレビバクテリウム・フラバム(Bre
vibacter−ium flavum) MJ−2
3 3−AB−4 1 [微工研条寄第1498号(
微工研菌寄第3812号より移管)]、 プレビバクテリウム・フラバム(3r6yibacte
rium flavum) MJ − 2 3 3−A
BT − 1 1 [微工研条寄第1500号(微工研
菌寄第8423号より移管)]、 プレビバクテリウム・フラバム(Brevibacte
r−ium flavum) MJ−2 3 3−AB
D−2 1 [微工研条寄第1499号(微工研菌寄第
8055号より移管)]等 が挙げられ、これらの菌が本発明において好適に用いら
れる。
r−ium flavum) M J − 2 3 3
[微工研条寄第1497号(微工研菌寄第3068号
より移管)]、プレビバクテリウム・フラバム(Bre
vibacter−ium flavum) MJ−2
3 3−AB−4 1 [微工研条寄第1498号(
微工研菌寄第3812号より移管)]、 プレビバクテリウム・フラバム(3r6yibacte
rium flavum) MJ − 2 3 3−A
BT − 1 1 [微工研条寄第1500号(微工研
菌寄第8423号より移管)]、 プレビバクテリウム・フラバム(Brevibacte
r−ium flavum) MJ−2 3 3−AB
D−2 1 [微工研条寄第1499号(微工研菌寄第
8055号より移管)]等 が挙げられ、これらの菌が本発明において好適に用いら
れる。
なお、上記の微工研条寄第1498号の菌株は、微工研
条寄第1497号の菌株を親株としてDL一α−アミノ
酪酸耐性を積極的に付与されたエタノール資化性微生物
である(特公昭5 9−2 8 398号公報第3〜4
欄参照)。また、微工研条寄$15Cto号の菌株は、
微工研条寄第1497号の菌株を親株としたし−α−ア
ミノ酪酸トランスアミナーゼ高活性変異株である(特開
昭62−51998号公報参照)。さらに、微工研条寄
第1499号の菌株は、微工研条寄第1497号の菌株
を親株としたD−α−アミノ酪酸デアミナーゼ高活性変
異株である(特開昭61−177993号公報参照)。
条寄第1497号の菌株を親株としてDL一α−アミノ
酪酸耐性を積極的に付与されたエタノール資化性微生物
である(特公昭5 9−2 8 398号公報第3〜4
欄参照)。また、微工研条寄$15Cto号の菌株は、
微工研条寄第1497号の菌株を親株としたし−α−ア
ミノ酪酸トランスアミナーゼ高活性変異株である(特開
昭62−51998号公報参照)。さらに、微工研条寄
第1499号の菌株は、微工研条寄第1497号の菌株
を親株としたD−α−アミノ酪酸デアミナーゼ高活性変
異株である(特開昭61−177993号公報参照)。
これらの微生物の他に、プレビバクテリウム・アンモニ
アゲネス(Brevibacterium ammon
iagenes)ATCC6 8 7 1、同ATCC
13745、同ATCC13746.プレビバクテ
リウム・デバリカタム(Brevibacterium
divaricatco++) ATCC14020
等を用いることもできる。
アゲネス(Brevibacterium ammon
iagenes)ATCC6 8 7 1、同ATCC
13745、同ATCC13746.プレビバクテ
リウム・デバリカタム(Brevibacterium
divaricatco++) ATCC14020
等を用いることもできる。
以上に述べたプレビバクテリウム属に属するビオチン要
求性徴生物の培養は、通常の方法に従い、エタノールを
主炭素源とし、そしてさらに窒素源、無機塩等の栄養分
を含む培地を用いて行なうことができる。
求性徴生物の培養は、通常の方法に従い、エタノールを
主炭素源とし、そしてさらに窒素源、無機塩等の栄養分
を含む培地を用いて行なうことができる。
培地に含ませうる窒素源としては、微生物の培養に際し
て通常使用しつる窒素含有の有機又は無機物質、例えば
、アンモニア、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、
硝酸アンモニウム、尿素等ヲ単独若しくは混合して用い
ることができ、また、無機塩としては、例えば、リン酸
一水素カリウム、リン酸二水素カリウム、硫酸マグネシ
ウム等を用いることができる。この他に菌の生育及びL
−イソロイシンの生成に必要であれば、ペブトン、肉エ
キス、酵母エキス、コーンステイーブリカーカザミノ酸
、各種ビタミン等の栄養素を培地に添加し用いることが
できる。
て通常使用しつる窒素含有の有機又は無機物質、例えば
、アンモニア、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、
硝酸アンモニウム、尿素等ヲ単独若しくは混合して用い
ることができ、また、無機塩としては、例えば、リン酸
一水素カリウム、リン酸二水素カリウム、硫酸マグネシ
ウム等を用いることができる。この他に菌の生育及びL
−イソロイシンの生成に必要であれば、ペブトン、肉エ
キス、酵母エキス、コーンステイーブリカーカザミノ酸
、各種ビタミン等の栄養素を培地に添加し用いることが
できる。
培養は通気攪拌、振盪等の好気的条件下で行なわれ、培
養温度は一般に20〜40℃、好ましくは25〜35℃
が好適である。
養温度は一般に20〜40℃、好ましくは25〜35℃
が好適である。
本発明の方法を実施する場合、上記の如く培養.するこ
とにより得られる培養物から菌体を集め、水や適当な緩
衝液で洗浄した後そのまま使用することができる。ある
いは該菌体をそれ自体既知の方法で固定化し固定化物と
して使用することができる。微生物菌体の固定化法とし
ては、例えば、アクリルアミド等の重合性モノマーを用
いる方法、アルギン酸塩やカラギーナン等の適当な単体
を用いて不溶化させる方法等が挙げられる。
とにより得られる培養物から菌体を集め、水や適当な緩
衝液で洗浄した後そのまま使用することができる。ある
いは該菌体をそれ自体既知の方法で固定化し固定化物と
して使用することができる。微生物菌体の固定化法とし
ては、例えば、アクリルアミド等の重合性モノマーを用
いる方法、アルギン酸塩やカラギーナン等の適当な単体
を用いて不溶化させる方法等が挙げられる。
本発明による酵素反応法は、上記の如き微生物菌体又は
その処理物の存在下に、前述の酪醗誘導体を水性エタノ
ール溶液中で酵素反応させることにより実施される。こ
の時、反応液中におけるエタノールの濃度は0.01〜
0.6容量%、好ましくは0.1〜0.5容1%の範囲
内に維持される。
その処理物の存在下に、前述の酪醗誘導体を水性エタノ
ール溶液中で酵素反応させることにより実施される。こ
の時、反応液中におけるエタノールの濃度は0.01〜
0.6容量%、好ましくは0.1〜0.5容1%の範囲
内に維持される。
水性反応液中へのエタノールの添加は、反応液中のエタ
ノール濃度が上記の範囲内であるかぎり、連続的に行っ
てもよく、あるいは間欠的に行うこともできる。
ノール濃度が上記の範囲内であるかぎり、連続的に行っ
てもよく、あるいは間欠的に行うこともできる。
該水性反応液は、エタノールを含有する水あるいはリン
酸又はトリス塩酸等の緩衝液であることもできるが、好
ましくはエタノールを含み、さらに窒素源及び/又は無
機塩類を含む水溶液が用いられる。
酸又はトリス塩酸等の緩衝液であることもできるが、好
ましくはエタノールを含み、さらに窒素源及び/又は無
機塩類を含む水溶液が用いられる。
本発明の方法において、水性酵素反応液中に添加しうる
窒素源及び/又は無機塩類としては、通常の微生物菌体
の培養に際して使用される培地に添加されるものから選
んで使用することができる。
窒素源及び/又は無機塩類としては、通常の微生物菌体
の培養に際して使用される培地に添加されるものから選
んで使用することができる。
ただし、この場合ビオチンを含まないものを用いるのが
望ましい。
望ましい。
上記水性反応液中に含ませうる窒素源の具体例としては
、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、
硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機窒素源
等を例示することができ、また、無機塩としては、リン
酸一水素カリウム、リン酸二水素カリウム、硫酸マグネ
シウム、硫酸マンガン、硫酸鉄等を例示することができ
る。これらの窒素源及び無機塩は、単独でも2種以上混
合して用いることもできる。
、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、
硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機窒素源
等を例示することができ、また、無機塩としては、リン
酸一水素カリウム、リン酸二水素カリウム、硫酸マグネ
シウム、硫酸マンガン、硫酸鉄等を例示することができ
る。これらの窒素源及び無機塩は、単独でも2種以上混
合して用いることもできる。
これら窒素源及び/又は無機塩の水性反応液中の濃度は
、通常の微生物菌体の培養に使用される培地におけると
同程度の範囲とすることができ、特に限定されない。
、通常の微生物菌体の培養に使用される培地におけると
同程度の範囲とすることができ、特に限定されない。
このような反応液の一例を示すと、(NH.) 230
.2g/β; KH.PO4 0. 5 g/ 12
; K2HPO4 0. 5 g/fl ;!Jg
SL4}IJ 0.5 g/i ;FeS[]4−7
Hz02 0 ppm ; MnSO< ・4〜6H2
0 2 0 1]I)m含有するp}17.6の水溶
液が挙げられる。
.2g/β; KH.PO4 0. 5 g/ 12
; K2HPO4 0. 5 g/fl ;!Jg
SL4}IJ 0.5 g/i ;FeS[]4−7
Hz02 0 ppm ; MnSO< ・4〜6H2
0 2 0 1]I)m含有するp}17.6の水溶
液が挙げられる。
さらに、上記の水性反応液にはビオチンを含有しないア
ミノ酸、ビタミン、糖類等を添加することもできる。
ミノ酸、ビタミン、糖類等を添加することもできる。
水性反応液中における前記のし一若しくはDLα−アミ
ノ酪酸、α−ケト酪酸、L一若しくはDL一α−ヒドロ
キシ酪酸、又はそれらの塩より選ばれる酪酸透導体の反
応時の濃度は、特に制限はないが、一般には0.1〜2
0%(wt/vol )、好ましくは0. 2〜5%(
wt/vol )の範囲内が適当である。
ノ酪酸、α−ケト酪酸、L一若しくはDL一α−ヒドロ
キシ酪酸、又はそれらの塩より選ばれる酪酸透導体の反
応時の濃度は、特に制限はないが、一般には0.1〜2
0%(wt/vol )、好ましくは0. 2〜5%(
wt/vol )の範囲内が適当である。
酵素反応に使用されうる上記酪酸誘導体の塩としては、
ナトリウム及びカリウム等のアルカリ金属塩頚、カルシ
ウム等のアルカリ土類金属塩、又はアンモニウム塩等が
挙げられ、それらの中でもナトリウム塩が好適に用いら
れる。ただし、DL一α−アミノ酪酸は、塩の状態での
使用も可能であるが、好ましくは酸の状態での使用が適
当である。
ナトリウム及びカリウム等のアルカリ金属塩頚、カルシ
ウム等のアルカリ土類金属塩、又はアンモニウム塩等が
挙げられ、それらの中でもナトリウム塩が好適に用いら
れる。ただし、DL一α−アミノ酪酸は、塩の状態での
使用も可能であるが、好ましくは酸の状態での使用が適
当である。
一方、水性反応液中に存在せしめられる微生物菌体又は
その処理物の濃度もまた特に制限されるものではないが
、一般には1〜50%(wt/vol)、好ましくは2
〜20%(wt/vol )の範囲内で存在させるのが
好都合である。
その処理物の濃度もまた特に制限されるものではないが
、一般には1〜50%(wt/vol)、好ましくは2
〜20%(wt/vol )の範囲内で存在させるのが
好都合である。
本発明による酵素反応は、一般に約20〜約50℃、好
ましくは約30〜約40℃の温度で、通常約10〜約7
2時間行われる。
ましくは約30〜約40℃の温度で、通常約10〜約7
2時間行われる。
以上に述べた酵素反応法により反応液中に生成するし−
イソロイシンの反応液からの分離・精製は、それ自体既
知の方法に従い、例えば、イオン交換樹脂処理法、沈殿
法等を適宜組合わせて行なうことができる。
イソロイシンの反応液からの分離・精製は、それ自体既
知の方法に従い、例えば、イオン交換樹脂処理法、沈殿
法等を適宜組合わせて行なうことができる。
次に実施例を挙げて本発明の方法をさらに具体的に説明
する。
する。
[実施例]
下記実施例において、0−エチルホモセリン及びL−イ
ソロイシンの定性はペーパークロマトグラフのRf値又
は電気泳勤法の易勤度により、定1は高速液体クロマト
グラフィー(島津LC−5A)を用いて行った。またエ
タノールの定量はガスクロマトグラフィー(島津GC−
38F)を用いて行った。なお、下記の実施例において
、%はwt/vol%を意味する。
ソロイシンの定性はペーパークロマトグラフのRf値又
は電気泳勤法の易勤度により、定1は高速液体クロマト
グラフィー(島津LC−5A)を用いて行った。またエ
タノールの定量はガスクロマトグラフィー(島津GC−
38F)を用いて行った。なお、下記の実施例において
、%はwt/vol%を意味する。
実施例1
培地(尿素0.4%、硫酸アンモニウム1.4%、K8
2PO. 0. 0 5%、K2HPO40. 0
5%、!JgSO4・7H20 0.05%、CaC
j! 2 ・2H20 2 ppm , FeSL・
7H20 2ppm,MnSO4・4〜6H20
2ppmSlnsO,・7L0 2ppm , Na
Cj! 2ppm ,ビオチン200μg/β、チアミ
ン・HCf100μg/It、カサ゛ミノ酸0.1%、
酵母エキス0.1%)100mj2を500mj!容三
角フラスコに分注、滅菌した後(滅菌後のpH7.0)
、プレビバクテリウム・フラバム(Brevibact
erium flavum ) M J − 2 3
3(微工研条寄第1497号)を植菌し、無菌的にエタ
ノール2ITl1を加え、30℃にて2日間振盪培養を
行った。
2PO. 0. 0 5%、K2HPO40. 0
5%、!JgSO4・7H20 0.05%、CaC
j! 2 ・2H20 2 ppm , FeSL・
7H20 2ppm,MnSO4・4〜6H20
2ppmSlnsO,・7L0 2ppm , Na
Cj! 2ppm ,ビオチン200μg/β、チアミ
ン・HCf100μg/It、カサ゛ミノ酸0.1%、
酵母エキス0.1%)100mj2を500mj!容三
角フラスコに分注、滅菌した後(滅菌後のpH7.0)
、プレビバクテリウム・フラバム(Brevibact
erium flavum ) M J − 2 3
3(微工研条寄第1497号)を植菌し、無菌的にエタ
ノール2ITl1を加え、30℃にて2日間振盪培養を
行った。
次に、本培養培地(硫酸アンモニウム2.3%、KH2
P0. 0. 0 5%、K2HPO. 0. 0
5%、MgSO4・71{20 0.05%、Fe
SO< ・7}120 2 0 ppm , MnS
O4・nL0 2 0ppm %ビオチン200μg
/l,チアミン・HCIl 100μg/β、カザミノ
酸0.3%、酵母エキス0.3%)1000mj2を2
2容通気攪拌総に仕込み、滅菌(120℃、20分間)
後、エタノールの20mIlと前記前培養物の20ml
を添加して、回転数1 0 0 O rpm ,通気量
IVVm %温度33℃、pH7.6にて48時間培養
を行った。
P0. 0. 0 5%、K2HPO. 0. 0
5%、MgSO4・71{20 0.05%、Fe
SO< ・7}120 2 0 ppm , MnS
O4・nL0 2 0ppm %ビオチン200μg
/l,チアミン・HCIl 100μg/β、カザミノ
酸0.3%、酵母エキス0.3%)1000mj2を2
2容通気攪拌総に仕込み、滅菌(120℃、20分間)
後、エタノールの20mIlと前記前培養物の20ml
を添加して、回転数1 0 0 O rpm ,通気量
IVVm %温度33℃、pH7.6にて48時間培養
を行った。
なお、培養中のエタノールは、培地中におけるその濃度
が2容量%を越えないように、約1〜2時間ごとに断続
的に添加した。
が2容量%を越えないように、約1〜2時間ごとに断続
的に添加した。
培#終了後、培養物500mj2から遠心分離にて集菌
した。これを脱塩蒸留水にて2度洗浄して得た菌体を、
反応液〔(Nl{.) 2SO. 2. 3%、KII
.PO.0.05%、K2HPO. 0. 0 5%
、!J g S 0 4・7H20 0.05%、Fe
SO4・7H20 2 0 ppm 、!JnSO4
H 4〜6HJ2 0 ppm ,チアミン・HCf2
100μg/j!(pH7.6)1 1000
mflに懸濁後、該懸濁液を2!容通気攪拌槽に仕込み
、さらにエタノールを0.1又は0.5容量%添加後D
L−α一丁ミノ酪酸1%、α−ケト酪酸ナトリウム0.
5%又はDL一αーヒドロキシ酪酸ナトリウム1%を添
加して、回転数30Orpm、温度33℃、pH7、6
(25%アンモニア水にて調節)にて15時間反応を
行った。
した。これを脱塩蒸留水にて2度洗浄して得た菌体を、
反応液〔(Nl{.) 2SO. 2. 3%、KII
.PO.0.05%、K2HPO. 0. 0 5%
、!J g S 0 4・7H20 0.05%、Fe
SO4・7H20 2 0 ppm 、!JnSO4
H 4〜6HJ2 0 ppm ,チアミン・HCf2
100μg/j!(pH7.6)1 1000
mflに懸濁後、該懸濁液を2!容通気攪拌槽に仕込み
、さらにエタノールを0.1又は0.5容量%添加後D
L−α一丁ミノ酪酸1%、α−ケト酪酸ナトリウム0.
5%又はDL一αーヒドロキシ酪酸ナトリウム1%を添
加して、回転数30Orpm、温度33℃、pH7、6
(25%アンモニア水にて調節)にて15時間反応を
行った。
なお、各実験区における反応液中のエタノールは、全量
で2容量%を、その濃度が0.1又は0. 5容量%を
越えないように維持しながら、約1〜2時間の間隔で逐
次添加した。
で2容量%を、その濃度が0.1又は0. 5容量%を
越えないように維持しながら、約1〜2時間の間隔で逐
次添加した。
反応終了後、遠心分離(4000rpm、15分間、4
℃)にて除菌した上浦液中の〇一エチルホモセリン及び
L−イソロイシンを定量した。
℃)にて除菌した上浦液中の〇一エチルホモセリン及び
L−イソロイシンを定量した。
なお、比較例としては反応開始時にエタノールを2容1
%添加した以外は同様の条件で反応を行った。その結果
を第1表に示した。
%添加した以外は同様の条件で反応を行った。その結果
を第1表に示した。
実施例2
菌体としてプレビバクテリウム・フラノイム(Brev
ibacterium flavum ) MJ −
2 3 3−AB41 (微工研条寄第1498号)を
用いた以外は実施例1と同様の条件で摸作を行った。そ
の結果を第2表に示した。
ibacterium flavum ) MJ −
2 3 3−AB41 (微工研条寄第1498号)を
用いた以外は実施例1と同様の条件で摸作を行った。そ
の結果を第2表に示した。
(以下余白)
Claims (1)
- (1)コリネ型細菌に属するエタノール資化性を有する
ビオチン要求性微生物の菌体又はその処理物の存在下に
、L−若しくはDL−α−アミノ酪酸、α−ケト酪酸、
L−若しくはDL−α−ヒドロキシ酪酸、又はそれらの
塩より選ばれる酪酸誘導体を、水性エタノール溶液中で
酵素反応せしめてL−イソロイシンを製造するに当り、
反応液中のエタノール濃度を0.01〜0.6容量%の
範囲に維持しつつ酵素反応せしめることを特徴とするL
−イソロイシンの製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11486889A JPH02295491A (ja) | 1989-05-08 | 1989-05-08 | L―イソロイシンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11486889A JPH02295491A (ja) | 1989-05-08 | 1989-05-08 | L―イソロイシンの製造方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02295491A true JPH02295491A (ja) | 1990-12-06 |
Family
ID=14648702
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11486889A Pending JPH02295491A (ja) | 1989-05-08 | 1989-05-08 | L―イソロイシンの製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02295491A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105695519A (zh) * | 2016-04-22 | 2016-06-22 | 中国科学院天津工业生物技术研究所 | 一种光学纯2-羟基丁酸的生物制备新方法 |
-
1989
- 1989-05-08 JP JP11486889A patent/JPH02295491A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105695519A (zh) * | 2016-04-22 | 2016-06-22 | 中国科学院天津工业生物技术研究所 | 一种光学纯2-羟基丁酸的生物制备新方法 |
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