JPS6319562A - 抗ラフオ−ラ小体単クロ−ン性抗体 - Google Patents
抗ラフオ−ラ小体単クロ−ン性抗体Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、ヒトのラフォーラ小体に対する単クローン性
抗体に関する。本発明の単クローン性抗体は、ラフォー
ラ病、糖原病ハl型の検出に有用である。
抗体に関する。本発明の単クローン性抗体は、ラフォー
ラ病、糖原病ハl型の検出に有用である。
従来の技術
ラフォーラ病、糖原病■型の検出は、筋生倹、肝生検な
どによって病理学的に行われている。
どによって病理学的に行われている。
ラフォーラ病(ミオクローヌスてんかん)および糖原病
■型は、グリコーゲン分子の枝分かれを形成する酵素で
あるα−1,4−クリカン−6−グルコシルトランスフ
ェラーゼの欠損によって生じる外側技の長い異常グリコ
ーゲン(ラフォーラ小体)が、心筋、神経細胞、肝細胞
、皮膚などに蓄積する疾患である。
■型は、グリコーゲン分子の枝分かれを形成する酵素で
あるα−1,4−クリカン−6−グルコシルトランスフ
ェラーゼの欠損によって生じる外側技の長い異常グリコ
ーゲン(ラフォーラ小体)が、心筋、神経細胞、肝細胞
、皮膚などに蓄積する疾患である。
ラフォーラ病の多くは家族性に出現し、思春期前後に発
病、けいれん発作、ミオクロニー痴呆、小脳症状、性格
変化などの臨床症状を呈し、進行性の経過をとって10
余年を経て全身衰弱のため死亡する症候群である。
病、けいれん発作、ミオクロニー痴呆、小脳症状、性格
変化などの臨床症状を呈し、進行性の経過をとって10
余年を経て全身衰弱のため死亡する症候群である。
糖原病■型(Andersen病)は、生後まもなく発
育障害があり、肝腫、胛腫、筋緊張低下が出現し、腹水
の合併をみ、2年以内に死亡する症候群である。
育障害があり、肝腫、胛腫、筋緊張低下が出現し、腹水
の合併をみ、2年以内に死亡する症候群である。
発明が解決しようとする間頽点
ラフォーラ病、糖原病■型の診断は、筋生倹、肝生倹な
どによって病理学的に診断をしているが、α−アミラー
ゼ処理、β−アミラーゼ処理、PAS染色−;ど繁惟な
手法が、2、要であり、かつ、確定的なものはなし)っ 異常グリコーゲン(ラフオーラ小体)と反応し、正常の
グリコーゲンとは反応しない単クローン性抗体を確立す
れば、ラフォーラ病、糖原病■型の診断上極めて有効−
;手段となるものと期待される。
どによって病理学的に診断をしているが、α−アミラー
ゼ処理、β−アミラーゼ処理、PAS染色−;ど繁惟な
手法が、2、要であり、かつ、確定的なものはなし)っ 異常グリコーゲン(ラフオーラ小体)と反応し、正常の
グリコーゲンとは反応しない単クローン性抗体を確立す
れば、ラフォーラ病、糖原病■型の診断上極めて有効−
;手段となるものと期待される。
問題点を解決するための手段
本発明者ろは、ラフォーラ病患者心筋ホモジネート、あ
るいは、それより抽出した異常グリコーゲンでマウスを
免疫し、ハイブリドーマを作製し、異常グリコーゲンと
反応し、正常グリコーゲンと反応しない単クローン性抗
体を確立し、本願発明を完成するに到った。
るいは、それより抽出した異常グリコーゲンでマウスを
免疫し、ハイブリドーマを作製し、異常グリコーゲンと
反応し、正常グリコーゲンと反応しない単クローン性抗
体を確立し、本願発明を完成するに到った。
従来、このような異常グリコーゲンに対する単クローン
性抗体に関する報告は全くない。
性抗体に関する報告は全くない。
以下本発明の詳細な説明する。
本発明は、ラフォーラ小体に反応する単クローン性抗体
を提供する。本発明の単クローン性抗体はIgGクラス
に属し、その具体例としては、KM−279と名付けた
ものがあげられる。
を提供する。本発明の単クローン性抗体はIgGクラス
に属し、その具体例としては、KM−279と名付けた
ものがあげられる。
本発明の単クローン性抗体は、ラフォーラ病患者の心筋
ホモジネートまたはそれから抽出したラフォーラ小体で
哺乳動物を免疫し、該免疫動物の脾細胞と哺乳動物の骨
髄腫a胞とを融合させ、得られるハイブリドーマ細胞株
かるラフオーラ小l太に反応するハイブリドーマ細胞株
を選び、該仙胞株を培地に培養するか、哺乳動物の腹腔
に投与して腹水化し、培養物または腹水中にラフオーラ
小体に反応する単クローン性抗体をM積させ、該培養物
または復水から該単クローン性抗体を採取することによ
って得られる。
ホモジネートまたはそれから抽出したラフォーラ小体で
哺乳動物を免疫し、該免疫動物の脾細胞と哺乳動物の骨
髄腫a胞とを融合させ、得られるハイブリドーマ細胞株
かるラフオーラ小l太に反応するハイブリドーマ細胞株
を選び、該仙胞株を培地に培養するか、哺乳動物の腹腔
に投与して腹水化し、培養物または腹水中にラフオーラ
小体に反応する単クローン性抗体をM積させ、該培養物
または復水から該単クローン性抗体を採取することによ
って得られる。
免疫する哺乳動物および骨髄腫細胞の哺乳動物としては
、マウス、ラット、ウシ、ウマなどがあげられる。
、マウス、ラット、ウシ、ウマなどがあげられる。
哺乳動物としてマウスを用いた、本発明の単クローン性
抗体の具体的製造法を以下に示す。
抗体の具体的製造法を以下に示す。
(1) 免疫化物細胞の調製
マウスをラフォーラ病患者心筋ホモジネートあるいはそ
れから抽出した異常グリコーゲンで免疫して、そのマウ
スから脾細胞を調製する。
れから抽出した異常グリコーゲンで免疫して、そのマウ
スから脾細胞を調製する。
ラフォーラ病患者の心筋ホモジネート異常グリコーゲン
は参考例1の方法に従って調製する。
は参考例1の方法に従って調製する。
免疫の方法は、8〜lO週令のBALB/cマウスの皮
下あるいは、静脈内あるいは腹腔内に、適当なアジュバ
ント〔例えば、フロイントの完全アジュバント(Com
plete Freund’5Adjuva口t)ある
いは、水酸化アルミニウムゲルと百日咳菌ワクチンなど
〕とともに、ラフオーラ病患者心筋ホモジネートあるい
はそれから抽出した異常グリコーゲンを10〜100■
/匹投与する。以後1〜2週問おきに初回免疫に使った
と同じ抗原を同12〜5回投与する。
下あるいは、静脈内あるいは腹腔内に、適当なアジュバ
ント〔例えば、フロイントの完全アジュバント(Com
plete Freund’5Adjuva口t)ある
いは、水酸化アルミニウムゲルと百日咳菌ワクチンなど
〕とともに、ラフオーラ病患者心筋ホモジネートあるい
はそれから抽出した異常グリコーゲンを10〜100■
/匹投与する。以後1〜2週問おきに初回免疫に使った
と同じ抗原を同12〜5回投与する。
各免疫後4〜7日目に、眼底静脈叢より採血し、血清中
の異常グリコーゲンに対する抗体価を調べる。
の異常グリコーゲンに対する抗体価を調べる。
抗体価の測定法は、同相酵素免疫測定法(酵素免疫測定
法:医学書腕利 1978年)により下記のとおり行う
。
法:医学書腕利 1978年)により下記のとおり行う
。
96穴のEIA用ブL/−) (Flow Labor
atories社製〕に異常グリコーゲンまたは正常グ
リコーー ゲンの10〜50g/mlリン酸バッファ
ー・セライン(PBS ニリン酸二ナトリウム1.83
g。
atories社製〕に異常グリコーゲンまたは正常グ
リコーー ゲンの10〜50g/mlリン酸バッファ
ー・セライン(PBS ニリン酸二ナトリウム1.83
g。
リン酸−カリウム0.21g、食塩7.65g、蒸留水
11、p )l 7.2 )溶液を5047穴ずつ分注
し、4℃で一晩放置して抗原をプレートにコートする。
11、p )l 7.2 )溶液を5047穴ずつ分注
し、4℃で一晩放置して抗原をプレートにコートする。
次いで1%牛血清アルブミン(BSA)−PBSを20
0μm/穴分注し、プレート底面上の結合性残基をBS
Aでブロックする。
0μm/穴分注し、プレート底面上の結合性残基をBS
Aでブロックする。
上記プレートをPBSでよく洗浄後、第1抗体として、
段階希釈した試料(マウス血清、)−イブリドーマ培養
上清、精製抗体)を50μg/穴分注し、4℃で一晩ま
たは、室温で3〜4時間時間放心。PBSで6回洗浄し
た後、第2抗体として、ウサギ抗マウスイムノグロブリ
ン−ペルオキシダーゼ結合物CDAKO社製〕の400
倍希釈液を100JIJI/大分注し、室温で2時間放
置する。PBSで洗浄後、ABTS基5ita12.2
’−アジノピス(3−エチルベンゾチアゾリン−6−ス
ルホン酸)ニアンモニウム550mgを0.1Mクエン
酸緩衝液(p 84.2 >11に溶かした溶液に、使
用直前に過酸化水素1 頭/mlを加えた溶液〕を用い
、発色を[lD<+snヨの吸光度で測定する。
段階希釈した試料(マウス血清、)−イブリドーマ培養
上清、精製抗体)を50μg/穴分注し、4℃で一晩ま
たは、室温で3〜4時間時間放心。PBSで6回洗浄し
た後、第2抗体として、ウサギ抗マウスイムノグロブリ
ン−ペルオキシダーゼ結合物CDAKO社製〕の400
倍希釈液を100JIJI/大分注し、室温で2時間放
置する。PBSで洗浄後、ABTS基5ita12.2
’−アジノピス(3−エチルベンゾチアゾリン−6−ス
ルホン酸)ニアンモニウム550mgを0.1Mクエン
酸緩衝液(p 84.2 >11に溶かした溶液に、使
用直前に過酸化水素1 頭/mlを加えた溶液〕を用い
、発色を[lD<+snヨの吸光度で測定する。
異常グリコーゲンに対する抗体価が、正常マウス血清の
103倍以上(415nmてのa o ra >になっ
たマウスを免疫化動物細胞の供給源として使う。
103倍以上(415nmてのa o ra >になっ
たマウスを免疫化動物細胞の供給源として使う。
細胞融合に供するために、免疫マウスに融合処理の3〜
4日前に、ラフォーラ病患者の心筋のホモジネートある
いはそれから抽出した異常グリコーゲンを10〜2GQ
g/匹を腹腔内に投与し、追加免疫後、肺臓を摘出し、
牌細泡をm製する。
4日前に、ラフォーラ病患者の心筋のホモジネートある
いはそれから抽出した異常グリコーゲンを10〜2GQ
g/匹を腹腔内に投与し、追加免疫後、肺臓を摘出し、
牌細泡をm製する。
(2)骨髄嗅細胞の調製
骨髄腫細胞としては、マウスから得られた迭化細胞を使
用する。たとえば、a−アヂグアニン耐性マウス(BA
LB/c由来)骨髄腫細胞味P3−X63Ag8−Ul
(P3−Ul)〔カレント・トピックス・イン・ミク
ロバイオロジイ・アント−イムノロシイ(Curren
t Topicsin Microbiology
and 1mmunology)81. 1〜7(19
78)) 、P3−NS I/ 1−Ag41 (NS
−1)〔ヨーロピアン・ジャーナル・オブ・イムノロシ
イ(European J、 Immunology)
、6 。
用する。たとえば、a−アヂグアニン耐性マウス(BA
LB/c由来)骨髄腫細胞味P3−X63Ag8−Ul
(P3−Ul)〔カレント・トピックス・イン・ミク
ロバイオロジイ・アント−イムノロシイ(Curren
t Topicsin Microbiology
and 1mmunology)81. 1〜7(19
78)) 、P3−NS I/ 1−Ag41 (NS
−1)〔ヨーロピアン・ジャーナル・オブ・イムノロシ
イ(European J、 Immunology)
、6 。
511〜519(1976) ) 、SP210−Ag
14(SP−2)[:ネイチ+ −(Nature)
、 276 。
14(SP−2)[:ネイチ+ −(Nature)
、 276 。
269〜270 (1978)) 、P3−X63−A
g8653(653)Cジャーナル・オブ・イムノロシ
イ(J、 Immunology)、旦、 1548〜
1550(1979)) 、P 3−X 63−Ag
8 (X63) Cネイチ+ −(Nature)
、 256 、495〜497(1975) 〕などが
用いられる。
g8653(653)Cジャーナル・オブ・イムノロシ
イ(J、 Immunology)、旦、 1548〜
1550(1979)) 、P 3−X 63−Ag
8 (X63) Cネイチ+ −(Nature)
、 256 、495〜497(1975) 〕などが
用いられる。
これらの細胞株は、8−アザグアニン培地[:RPM+
−1640培地にグルタミン(1,5mM)、2−メル
カプトエタノール(5X10−’M)、ジェンタマイシ
ン(10■/m1)および牛胎児血清(Fe2)(10
%)を加えた正常培地に、さらに8−アザグアニン(1
5■/ml )を加えた培地〕で、継代するが、細胞融
合の3〜4日前jこ正常培地に継代し、融合当日2×1
07以上の細胞数を確保する。
−1640培地にグルタミン(1,5mM)、2−メル
カプトエタノール(5X10−’M)、ジェンタマイシ
ン(10■/m1)および牛胎児血清(Fe2)(10
%)を加えた正常培地に、さらに8−アザグアニン(1
5■/ml )を加えた培地〕で、継代するが、細胞融
合の3〜4日前jこ正常培地に継代し、融合当日2×1
07以上の細胞数を確保する。
(3) 細 り包 融 合
(1)で免疫したマウスに10〜200μg/匹のラフ
ォーラ@患者心筋ホモジネートあるいは異常グリコーゲ
ンを復腔内に投与し、3〜4日後に弾臓を摘出し、脾細
胞を調製する。この脾細胞と(2)で得られる骨髄腫細
胞株をMEM培地(日永製薬社製)または、PBSでよ
く洗浄し、細胞数が、胛細胞:骨髄腫細胞−5〜10:
1になるように混合し、遠心分離にかける。上清を揄で
、沈澱した細胞群をほぐした後、攪拌しながらポリエチ
レングリコール(P E G100O〜4000)1〜
4g、MEM培地1〜4ml、ジメチルスルホキシド(
Dimethylsulfoxide) 0.5〜1
.0〜Lの混液0.1〜L、 Oml / 10!牌細
胞を加え、0.5〜10分後にMEM培地0.5〜3m
lを加える。その後0.5〜2分毎にM E M培地0
.5〜3mlを数回加えた後、MEM培地を30〜5Q
ml加える。
ォーラ@患者心筋ホモジネートあるいは異常グリコーゲ
ンを復腔内に投与し、3〜4日後に弾臓を摘出し、脾細
胞を調製する。この脾細胞と(2)で得られる骨髄腫細
胞株をMEM培地(日永製薬社製)または、PBSでよ
く洗浄し、細胞数が、胛細胞:骨髄腫細胞−5〜10:
1になるように混合し、遠心分離にかける。上清を揄で
、沈澱した細胞群をほぐした後、攪拌しながらポリエチ
レングリコール(P E G100O〜4000)1〜
4g、MEM培地1〜4ml、ジメチルスルホキシド(
Dimethylsulfoxide) 0.5〜1
.0〜Lの混液0.1〜L、 Oml / 10!牌細
胞を加え、0.5〜10分後にMEM培地0.5〜3m
lを加える。その後0.5〜2分毎にM E M培地0
.5〜3mlを数回加えた後、MEM培地を30〜5Q
ml加える。
遠心後、上清を捨て、ゆるやかに細胞をほぐした後、正
常培地50〜20 Qmlを加え、メスピペットでゆる
やかに細胞を懸濁する。この懸濁液を培養用プレートに
半容量/穴ずつ分注し、3〜7%CO2インキユベータ
ー中、35〜40℃で10〜30時間培養する。培養プ
レートに半容量/穴のHAT培地〔正常培地にヒポキサ
ンチン(10−’〜10−3M)、チミジン(10−’
〜to−’M)およびアミノプテリン(10−’〜10
−’M)を加えた培地〕を加え、さらに10〜30時間
培養する。以後1〜3日間日間1コ〜30 捨て、新たに同量のHAT培地を加え、CO2インキ二
ヘーター中、35〜40℃で10〜14日間培養する。
常培地50〜20 Qmlを加え、メスピペットでゆる
やかに細胞を懸濁する。この懸濁液を培養用プレートに
半容量/穴ずつ分注し、3〜7%CO2インキユベータ
ー中、35〜40℃で10〜30時間培養する。培養プ
レートに半容量/穴のHAT培地〔正常培地にヒポキサ
ンチン(10−’〜10−3M)、チミジン(10−’
〜to−’M)およびアミノプテリン(10−’〜10
−’M)を加えた培地〕を加え、さらに10〜30時間
培養する。以後1〜3日間日間1コ〜30 捨て、新たに同量のHAT培地を加え、CO2インキ二
ヘーター中、35〜40℃で10〜14日間培養する。
コロニー状に生育してきた融合細胞の認められる穴につ
いて、上浦半容量を捨て、HT培地(HAT培地からア
ミノプテリンを除いた培地)を同量加え、以後1〜3日
間日間1コ〜30HT培地で3〜4日間培養後、培養上
清の一部をとり上記の酵素免疫測定法により、抗異常グ
リコーゲン抗体価を測定する。
いて、上浦半容量を捨て、HT培地(HAT培地からア
ミノプテリンを除いた培地)を同量加え、以後1〜3日
間日間1コ〜30HT培地で3〜4日間培養後、培養上
清の一部をとり上記の酵素免疫測定法により、抗異常グ
リコーゲン抗体価を測定する。
抗体価の認められた穴について、限界希釈法によりクロ
ーニングを2〜4回繰り返−し、安定して抗体価の認め
られたものを、抗異常グリコーゲン単りローン性抗体産
生ハイブリドーマ株として選択する。
ーニングを2〜4回繰り返−し、安定して抗体価の認め
られたものを、抗異常グリコーゲン単りローン性抗体産
生ハイブリドーマ株として選択する。
(4)単クローン性抗体の調製
プリスタン( 2. 6.10. 14−テトラメチル
ペンタデカン)処理した8〜10:i!A令BALB/
c系マウスに(3)で得られた抗異常グリコーゲン単り
ローン性抗体産生ハイブリドーマ細胞2〜4×10’〜
7個/匹を腹腔内注射する。10〜21日でハイブリド
ーマは腹水癌化する。このマウスから腹水を採取し、遠
心分離して固形分を除去後、50%硫安、40%硫安塩
析し、PBS(pH7.2)で1〜2日間透析する。こ
の透析画分を粗@製単りローン性抗体として精製、定量
用に供することができる。
ペンタデカン)処理した8〜10:i!A令BALB/
c系マウスに(3)で得られた抗異常グリコーゲン単り
ローン性抗体産生ハイブリドーマ細胞2〜4×10’〜
7個/匹を腹腔内注射する。10〜21日でハイブリド
ーマは腹水癌化する。このマウスから腹水を採取し、遠
心分離して固形分を除去後、50%硫安、40%硫安塩
析し、PBS(pH7.2)で1〜2日間透析する。こ
の透析画分を粗@製単りローン性抗体として精製、定量
用に供することができる。
さらに精製が必要な場合には、DE A E−セファロ
ースカラム、プロティンへーカラムあるいはセファクリ
ルS−300カラムなどに通塔し、活性画分(IgGS
IgMあるいはIgA画分)を集める。
ースカラム、プロティンへーカラムあるいはセファクリ
ルS−300カラムなどに通塔し、活性画分(IgGS
IgMあるいはIgA画分)を集める。
抗体のインタイブ、サブクラスの決定は0uch−te
r+ony法(免疫学実験入門、生物化学実験法15、
学会出版センター刊、p.74 、 1981年)に
よって行う。
r+ony法(免疫学実験入門、生物化学実験法15、
学会出版センター刊、p.74 、 1981年)に
よって行う。
蛋白量の定量は、フォーリン法および280nmの吸光
度より算出する。
度より算出する。
本発明の単クローン性抗体を生産するハイブリドーマ細
胞株KM−279は英国 EuropeanColle
ction of Animal Ce1l Cu1t
ure(巳CACC) !ご1986年7月3日付でE
CACCNα86070304として寄託しである。
胞株KM−279は英国 EuropeanColle
ction of Animal Ce1l Cu1t
ure(巳CACC) !ご1986年7月3日付でE
CACCNα86070304として寄託しである。
実施例1
(1)免疫マウス牌細胞の調製
8週令のBALB/c雌マウス(静岡県実験動物農業協
同組合)にアジユバントとして水酸化アルミニウムゲル
2mg/匹および百日咳菌死菌ワクチン(千葉系血清研
究所)1x10s細胞/匹と抗原としてラフォーラ病患
者心筋ホモジネートあるいはそれから抽出した異常グリ
コーゲン100g/匹を腹腔内投与し免疫した。
同組合)にアジユバントとして水酸化アルミニウムゲル
2mg/匹および百日咳菌死菌ワクチン(千葉系血清研
究所)1x10s細胞/匹と抗原としてラフォーラ病患
者心筋ホモジネートあるいはそれから抽出した異常グリ
コーゲン100g/匹を腹腔内投与し免疫した。
以後、1ないし2週問おきに、ラフォーラ病患者心筋ホ
モジネートあるいはそれから抽出した異常グリコーゲン
100■/匹を腹腔内に投与し、2回目以降の免疫をか
けた。3回目の免疫以降、免疫の5〜7日後に眼底静脈
叢より採血し、血清中の抗−異常グリコーゲン抗体価を
同相法による酵素免疫測定法で調べた。血清中の異常グ
リコーゲンに対する抗体価が正常マウス血清の103倍
以上のマウスに、更に異常グリコーゲン100x/ml
を腹腔内投与して追加免疫し、3日後このマウスから脾
細胞を調製して細胞融合に用いた。
モジネートあるいはそれから抽出した異常グリコーゲン
100■/匹を腹腔内に投与し、2回目以降の免疫をか
けた。3回目の免疫以降、免疫の5〜7日後に眼底静脈
叢より採血し、血清中の抗−異常グリコーゲン抗体価を
同相法による酵素免疫測定法で調べた。血清中の異常グ
リコーゲンに対する抗体価が正常マウス血清の103倍
以上のマウスに、更に異常グリコーゲン100x/ml
を腹腔内投与して追加免疫し、3日後このマウスから脾
細胞を調製して細胞融合に用いた。
〔2)マウス骨髄腫細胞の調製
8−アザグアニン耐性マウス骨髄腫細り包P3−Ulを
正常培地CRP、’JI−16401: クルタミ71
.5 m M % 2−メルカプトエタノール5xlQ
−5M1ジ工ンタマイシン10x/mlおよび牛胎児血
清Q、 1ml /m+を加えた培地〕に培!’(37
℃、coi 5%a気)L、、、4日後に2Xlo7以
上の細頭包を1与る。
正常培地CRP、’JI−16401: クルタミ71
.5 m M % 2−メルカプトエタノール5xlQ
−5M1ジ工ンタマイシン10x/mlおよび牛胎児血
清Q、 1ml /m+を加えた培地〕に培!’(37
℃、coi 5%a気)L、、、4日後に2Xlo7以
上の細頭包を1与る。
(3)ハイブリドーマの作製
M E M (日永製薬社製)でよく洗浄した免疫マウ
ス牌細1]alX10”個とマウス骨髄腫細胞2X10
’個とを混合し、1.20 Orpm テ5分間遠心分
離にかける。
ス牌細1]alX10”個とマウス骨髄腫細胞2X10
’個とを混合し、1.20 Orpm テ5分間遠心分
離にかける。
沈澱として得られた脾細胞とP3−Ulの混合した細胞
群をよくほぐした後、攪拌しながら37℃、ホリエチレ
ングリコールー1000(PEG 1000 ) 2
g、、MEM 2mlおよびDMSo 0.7m1
(7)混液0.5mlを加え、1分後にMEMlmlを
加えた。その後MEM1mlを1分毎に5回加えた後、
MEMを全容量が50mlとなるよう加える。900r
pI11で遠心分離後、上清を捨て、ゆるやかに細胞を
ほぐした後、HAT培地〔上記正常培地にヒポキサンチ
ン10−’M、チミジンly5 X 10−’M、およ
びアミノプテリン4X10−’Mを加えた培地] 10
0m1を加え、10m1メスピペツトでゅるやかに細胞
を墾濁する。
群をよくほぐした後、攪拌しながら37℃、ホリエチレ
ングリコールー1000(PEG 1000 ) 2
g、、MEM 2mlおよびDMSo 0.7m1
(7)混液0.5mlを加え、1分後にMEMlmlを
加えた。その後MEM1mlを1分毎に5回加えた後、
MEMを全容量が50mlとなるよう加える。900r
pI11で遠心分離後、上清を捨て、ゆるやかに細胞を
ほぐした後、HAT培地〔上記正常培地にヒポキサンチ
ン10−’M、チミジンly5 X 10−’M、およ
びアミノプテリン4X10−’Mを加えた培地] 10
0m1を加え、10m1メスピペツトでゅるやかに細胞
を墾濁する。
懸濁液を96大培養用プレート〔falcon 。
ベクトン・ディッキンソン社製〕に200■/穴ずつ分
注し、5%cO□インキュベーター中37℃で、10〜
14日間培養する。
注し、5%cO□インキュベーター中37℃で、10〜
14日間培養する。
コロニー状に成育してきた融合細胞のみられる穴につい
て、上ff1100μQを捨て、HT培地〔上記HAT
培地よりアミノプテリンを除いた培地〕を1004加え
、37℃で培養する。以後2日間同様にHT培地への交
換を行い、培養を続け4日後、培養上清の一部を採取し
、抗異常グリコーゲン抗体価を上記の同相酵素免疫測定
法により測定する。
て、上ff1100μQを捨て、HT培地〔上記HAT
培地よりアミノプテリンを除いた培地〕を1004加え
、37℃で培養する。以後2日間同様にHT培地への交
換を行い、培養を続け4日後、培養上清の一部を採取し
、抗異常グリコーゲン抗体価を上記の同相酵素免疫測定
法により測定する。
抗体価の認められた穴については、限界希釈法によりク
ローニングを2回繰り返し、安定して抗体価の認められ
たクローンを抗異常グリコーゲン単りローン性抗体産生
ハイブリドーマ株として、KM−279を選択する。
ローニングを2回繰り返し、安定して抗体価の認められ
たクローンを抗異常グリコーゲン単りローン性抗体産生
ハイブリドーマ株として、KM−279を選択する。
(4)単クローン性抗体の精製
ブリスタン処理(2,6,10,14−テトラメチルペ
ンタデカン0.5ml/匹を腹腔内投与し、1〜2週間
飼育する。〕した8i1令ヌードマウス(BALB/c
nu −/nu−)雌マウスに上記で得られたハイプ
リドーマ株各4 X 10’細胞/匹を腹腔内注射する
。10〜21日後にハイプリドーマ株は腹水癌化する。
ンタデカン0.5ml/匹を腹腔内投与し、1〜2週間
飼育する。〕した8i1令ヌードマウス(BALB/c
nu −/nu−)雌マウスに上記で得られたハイプ
リドーマ株各4 X 10’細胞/匹を腹腔内注射する
。10〜21日後にハイプリドーマ株は腹水癌化する。
10〜21日後に腹水のたまったマウスから腹水(4〜
loml/匹)を採取し、遠心分離して固形分を除去し
た。上清を50%硫安塩析、40%硫安塩析し、PBS
(p H7,2)で2日間透析する。これを粗精装車ク
ローン性抗体とする。粗精装車クローン性抗体をDEA
E−セファロースカラムに通塔後、溶出し、IgG画分
を集め、精装車クローン性抗体とする。
loml/匹)を採取し、遠心分離して固形分を除去し
た。上清を50%硫安塩析、40%硫安塩析し、PBS
(p H7,2)で2日間透析する。これを粗精装車ク
ローン性抗体とする。粗精装車クローン性抗体をDEA
E−セファロースカラムに通塔後、溶出し、IgG画分
を集め、精装車クローン性抗体とする。
ラフォーラ病、糖原病■型の病理診断は通常の免疫組織
学的手法により行うことができる。
学的手法により行うことができる。
具体例は実施例2に示す。
(5)単クローン性抗体の抗原特異性
同相酵素免疫測定法により、精装車クローン性抗体の特
異性を検討した。抗原としては、ラフォーラ病心筋由来
異常グリコーゲン(参考例1)、正常グリコーゲン(半
井化学社製)、牛血清アルブミン(シグマ社製)を用い
た。
異性を検討した。抗原としては、ラフォーラ病心筋由来
異常グリコーゲン(参考例1)、正常グリコーゲン(半
井化学社製)、牛血清アルブミン(シグマ社製)を用い
た。
その結果を第1表に示した。
第1表 KM−279の反応特異性
異常グリコーゲン 0.990正常グリコーゲ
ン 0.007牛血清アルブミン 0
.008実施例2 ミクロトームで5μmにスライスしたラフォーラ病ある
いは糖原病■型患者由来の心筋や皮膚の゛ ホル
マリン固定パラフィン包埋組織切片を、卵白アルブミン
でコートしたスライドグラスに固定し、キシレンで脱パ
ラフイン後、アルコール−水で段階的に親水化した。レ
ジン水で5分間すすぎ、0.3%H20,を含むメタノ
ール中で室温30分間静置し、内因性ペルオキシダーゼ
をブロックした。次に切片を20分間PBSで洗浄後、
希釈したウマ正常血清中で室温20分間静置した。切片
から過剰の血清を吸い取り、第1抗体(抗−異常グリコ
ーゲン単クローン性抗体KM−297,20■/ml
)と300分間反応せた。洗浄後、希釈ビオチン化抗体
(ビオチン化つサギ抗■gG抗体)を300分間反応せ
、さらに洗浄後、アビジン−ビオチン−ペルオキシダー
ゼ複合体(ベクター社製)を300分間反応せた。よく
洗浄後、ペルオキシダーゼ基質C0,02%H202を
含む0.1Mトリス−塩酸バッファー(pH7,2)で
關整した0、1%ジアミノベンジジンテトラヒドロクロ
ライド(diaminobenzidine tetr
ahydrochloride)3を2分間反応させ、
水冷中で反応を停止した。ヘマトキシレン染色後、アル
コール−水およびキシレンで脱水後、カナダバルサムで
固定し、検鏡した。
ン 0.007牛血清アルブミン 0
.008実施例2 ミクロトームで5μmにスライスしたラフォーラ病ある
いは糖原病■型患者由来の心筋や皮膚の゛ ホル
マリン固定パラフィン包埋組織切片を、卵白アルブミン
でコートしたスライドグラスに固定し、キシレンで脱パ
ラフイン後、アルコール−水で段階的に親水化した。レ
ジン水で5分間すすぎ、0.3%H20,を含むメタノ
ール中で室温30分間静置し、内因性ペルオキシダーゼ
をブロックした。次に切片を20分間PBSで洗浄後、
希釈したウマ正常血清中で室温20分間静置した。切片
から過剰の血清を吸い取り、第1抗体(抗−異常グリコ
ーゲン単クローン性抗体KM−297,20■/ml
)と300分間反応せた。洗浄後、希釈ビオチン化抗体
(ビオチン化つサギ抗■gG抗体)を300分間反応せ
、さらに洗浄後、アビジン−ビオチン−ペルオキシダー
ゼ複合体(ベクター社製)を300分間反応せた。よく
洗浄後、ペルオキシダーゼ基質C0,02%H202を
含む0.1Mトリス−塩酸バッファー(pH7,2)で
關整した0、1%ジアミノベンジジンテトラヒドロクロ
ライド(diaminobenzidine tetr
ahydrochloride)3を2分間反応させ、
水冷中で反応を停止した。ヘマトキシレン染色後、アル
コール−水およびキシレンで脱水後、カナダバルサムで
固定し、検鏡した。
その結果、ラフォーラ病、糖原病■型患者由来の心筋や
皮膚では、広汎に、異常グリコーゲンの沈着像(ラフォ
ーラ小体)が観察された。
皮膚では、広汎に、異常グリコーゲンの沈着像(ラフォ
ーラ小体)が観察された。
一方、健常人の心筋や皮膚切片は、同様の処理をほどこ
しても、全く染色像は認められなかった。
しても、全く染色像は認められなかった。
参考例1
ラフォーラ病患者由来の心筋5〜10gを細切し、最終
濃度が10%になるように20%トリクロル酢酸溶液を
加えながらすりつぶしてから、ホモゲナイザーで均質化
する。ホモジネートを3.00Orpmで10分間遠心
分離し、その上清をとり、2倍量の99.5%エタノー
ルおよび1/30容量の飽和塩化カリウム液を加えてよ
く攪拌する。
濃度が10%になるように20%トリクロル酢酸溶液を
加えながらすりつぶしてから、ホモゲナイザーで均質化
する。ホモジネートを3.00Orpmで10分間遠心
分離し、その上清をとり、2倍量の99.5%エタノー
ルおよび1/30容量の飽和塩化カリウム液を加えてよ
く攪拌する。
再び3.00 Orpmで10分間遠心分離し、沈澱画
分をとる。この沈澱画分をレジン水に溶解する。
分をとる。この沈澱画分をレジン水に溶解する。
エタノール、飽和塩化カリウムによる沈澱操作を3回く
り返したものを、異常グリコーゲンとして用いた。
り返したものを、異常グリコーゲンとして用いた。
発明の効果
本発明によれば、ラフォーラ病または糖原病■型の検出
に有用な単クローン性抗体が提供される。
に有用な単クローン性抗体が提供される。
Claims (3)
- (1)ラフォーラ小体に反応する単クローン性抗体。
- (2)IgGクラスに属する特許請求の範囲第1項記載
の単クローン性抗体。 - (3)ラフォーラ病患者の心筋ホモジネートまたはそれ
から抽出したラフォーラ小体で哺乳動物を免疫し、該免
疫動物の脾細胞と哺乳動物の骨髄腫細胞とを融合させ、
得られるハイブリドーマ細胞株からラフォーラ小体に反
応するハイブリドーマ細胞株を選び、該細胞株を培地に
培養するか、哺乳動物の腹腔に投与して腹水化し、培養
物または腹水中にラフォーラ小体に反応する単クローン
性抗体を蓄積させ、該培養物または腹水から該単クロー
ン性抗体を採取することによって得られる特許請求の範
囲第1項記載の単クローン性抗体。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61163414A JPS6319562A (ja) | 1986-07-11 | 1986-07-11 | 抗ラフオ−ラ小体単クロ−ン性抗体 |
CA000541610A CA1294905C (en) | 1986-07-11 | 1987-07-08 | Anti-lafora body monoclonal antibody |
EP87306182A EP0252768B1 (en) | 1986-07-11 | 1987-07-13 | Anti-lafora body monoclonal antibody |
US07/072,293 US4962032A (en) | 1986-07-11 | 1987-07-13 | Anti-lafora body monoclonal antibody |
DE87306182T DE3787416T2 (de) | 1986-07-11 | 1987-07-13 | Monoklonaler Antikörper gegen Laforakörper. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61163414A JPS6319562A (ja) | 1986-07-11 | 1986-07-11 | 抗ラフオ−ラ小体単クロ−ン性抗体 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6319562A true JPS6319562A (ja) | 1988-01-27 |
JPH0570435B2 JPH0570435B2 (ja) | 1993-10-05 |
Family
ID=15773441
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61163414A Granted JPS6319562A (ja) | 1986-07-11 | 1986-07-11 | 抗ラフオ−ラ小体単クロ−ン性抗体 |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4962032A (ja) |
EP (1) | EP0252768B1 (ja) |
JP (1) | JPS6319562A (ja) |
CA (1) | CA1294905C (ja) |
DE (1) | DE3787416T2 (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7129049B2 (en) * | 2003-12-22 | 2006-10-31 | Regents Of The University Of Minnesota | Method of detecting equine glycogen storage disease IV |
WO2017219017A1 (en) | 2016-06-17 | 2017-12-21 | Ionis Pharmaceuticals, Inc. | Modulation of gys1 expression |
-
1986
- 1986-07-11 JP JP61163414A patent/JPS6319562A/ja active Granted
-
1987
- 1987-07-08 CA CA000541610A patent/CA1294905C/en not_active Expired - Lifetime
- 1987-07-13 EP EP87306182A patent/EP0252768B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1987-07-13 DE DE87306182T patent/DE3787416T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1987-07-13 US US07/072,293 patent/US4962032A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CA1294905C (en) | 1992-01-28 |
JPH0570435B2 (ja) | 1993-10-05 |
EP0252768A3 (en) | 1989-08-23 |
EP0252768B1 (en) | 1993-09-15 |
EP0252768A2 (en) | 1988-01-13 |
US4962032A (en) | 1990-10-09 |
DE3787416D1 (de) | 1993-10-21 |
DE3787416T2 (de) | 1994-03-17 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |