JPH10501411A

JPH10501411A - 細胞周期非依存性グリオーマ細胞表面抗原特異的ヒト・モノクロナール抗体

Info

Publication number: JPH10501411A
Application number: JP8501432A
Authority: JP
Inventors: ダン，マイケル，デー．
Original assignee: ダン，マイケル，デー．
Priority date: 1994-06-21
Filing date: 1995-06-16
Publication date: 1998-02-10
Also published as: CN1151184A; DE69522689T2; AU2709295A; DE69522689D1; CN1074458C; NO965395L; NO965395D0; NZ288157A; MX9605895A; EP0766736A1; EP0766736B1; CA2192079C; CA2192079A1; US5639863A; AU686394B2; WO1995035374A1; ATE205532T1

Abstract

(57)【要約】 IgMイソタイプの２個のモノクロナール抗体（HMAb）の可変領域鎖を、その鎖をコードするcDNAの構造解明により特定した。このHMAbは細胞周期により変化しないグリオーマ関連抗原にたいして特異的であり、かつこの抗体は正常ヒト星状細胞を認識しない。特定された配列に基づく免疫複合体は、インビボで増殖性グリオーマ細胞・非増殖性グリオーマ細胞の両方を標的とするはずなので、これら腫瘍の治療において貴重な補助療法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】細胞周期非依存性グリオーマ細胞表面抗原特異的ヒト・モノクロナール抗体本発明は、IgMイソタイプのモノクロナール抗体類（MAb）とそれをコードする cDNA類の特定に関する。詳しく言えば、本発明は悪性グリオーマ細胞系統にたいし抑制的に働く二種のヒトMAbに関する。これらのヒト抗グリオーマMAbは、この侵襲的脳腫瘍の治療において有望な臨床的価値を持つ。本発明はこれらMAbが結合する細胞表面マーカーをも含むものである。悪性グリオーマは、原発性脳腫瘍の中でももっとも高頻度に見られる。悪性グリオーマはまた臨床的処置のもっとも難しいものの一つである。脳内に局在するために、はっきりした症状を引き起こす前に実質的な大きさにまで成長することがある。その生物学的性質は侵襲性の高いことで知られている。もっとも中枢神経の外に転移することはめったにない。外科的処置や放射線治療だけではめったに治癒することはない。すなわち最善の手当てを尽くしても、生存中央値は１年未満である。さらに新たに補助的治療を導入しようと大きな努力がなされているにも拘わらず、悪性グリオーマ患者の予後は、過去30年ほとんど変わっていない。免疫治療を始めとする補助的治療の多くは現在無効であるか、または受け入れがたいほどの病状悪化の危険性を持つかのいずれかである。しかしながら、ケーラーとミルシュタイン（Koehler and Milstein，1975）により齧歯類ハイブリドーマが開発されたことにより、モノクロナール抗体による、腫瘍免疫診断および免疫治療が、有望な研究領域として登場してきた。齧歯類MAbによる研究によって、グリオーマの生物学や異質性が相当わかってきた。しかしこれら齧歯類由来の試薬は、様々な理由によりヒトにたいする臨床応用には適さない。一方、ヒトMAbは齧歯類由来のものよりも特異性が高く、生物学的適合性も高い可能性がある。悪性グリオーマは、一般に大脳半球内に生ずる神経上皮性腫瘍である。一つのグループとして、脱分化星状細胞腫、脱分化乏突起神経膠腫、脱分化脳室上皮腫、および、多形性膠芽腫を含む。これらの腫瘍は皆ある顕微鏡的特質を共通に持っている。例えばそれは高密度の細胞集合、有糸分裂像の増加、濃染色性を伴う核の多形性、および細胞多形性である。多形性膠芽腫においても上記の特質は存在するが、それと共に偽柵状構造を伴う壊死、偽ロゼット形成を伴う毛細管内皮細胞の増殖、および、間葉細胞の増殖が見られる。上記腫瘍は均質ではなく、異なる腫瘍間においても同一腫瘍間においても変異を示す。これが恐らく治療にたいする抵抗性の主な決定因子と考えられる。分化の低いグリオーマ細胞にたいして選択的なマーカーはほとんど存在しない。従ってもしもこれらのその他の点では異質な集団として存在する細胞を選択的に標的とすることができたら、それはきわめて有用であろう。なぜなら、このように分化の低い細胞から成る腫瘍を除去できなければ、それは必ず腫瘍の再発を招くからである。悪性グリオーマを持つ患者の多くは、重度の免疫抑制下にあること、特に細胞介在性機能が強く抑制されていることは十分に確かめられている。しかし悪液性となる患者はほとんどいない。身体全体にひどい消耗がないのに免疫抑制が見られるというのは、それが通常の場合のように腫瘍による過度の負荷が加わったことを反映しているのではなく、むしろ腫瘍固有の機構によることを示唆する。悪性グリオーマ患者においては、体液性免疫機構もそのまま残っているとはいうものの低下しているようである。悪性グリオーマはその由来するところの正常細胞と多くの共通抗原を有している。そのため、グリオーマ組織にたいして従来のやり方でグリオーマ組織にたいするヘテロ抗血清を調製しても、ほとんど必ず正常の成人脳とある程度の交差反応を引き起こすことになる。この共有抗原は細胞内性のものも、膜関連性のものも、細胞外性のものもある。最近、細胞間相互作用、分化、および腫瘍発生において、糖脂質や炭水化物の構造の果たす役割について大きな関心が寄せられている。糖脂質のなかのガングリオシドと呼ばれる１群が細胞接着や増殖の制御に重要な役割を果たしている可能性がある。細胞が悪性のトランスフォーメーションを起こすと、その表面ガングリオシドの化学的性状に微妙な質的・量的変化が生じると思われる。悪性グリオーマはきわめて血管の発達した腫瘍である。それなのに、正常で健康な脳に存在する血液・脳関門が損壊ないし完全に欠失している。正常の脳は、この血液・脳関門によって、免疫系の作用や、その他の血中作用因子からは「特権的に守られている」、すなわち、孤立している。悪性グリオーマ患者では、この血液・脳関門が損壊しているため、免疫系が直接腫瘍細胞に接触する。グリオーマ細胞系統にたいして誘導された齧歯類MAbに関する研究が、シュネッグら（Schnegg，et al.，1981）とバードンら（Bourdon，et al.，1983）によって報告されている。いずれのグループも、マウスをヒト・グリオーマ細胞系統由来の培養細胞で免疫化し、その脾臓細胞を前者ではマウスミエローマP3X63-Ag 8系統、後者ではP3X63-Ag8.653系統とそれぞれ融合させた。シュネッグら(1981) の記載によるMAb BF7，GE2が比較的グリオーマ特異的であったが、抗体CG12（ド・トリボレら、de Tribolet，et al.，1984）は、グリオーマ、メラノーマ、および神経芽細胞腫と反応した。バードンら（1983）は抗体81C6を生産しその特徴を明らかにしたが、それによるとこの抗体はグリオーマ、神経芽細胞腫、メラノーマ、肉腫、培養線維芽細胞の細胞表面に発現するグリオーマ・間葉細胞外基質（GMEM）抗原と反応することが判明した。上記に加えてさらに、このGMEM抗原は、正常肝の類洞、脾臓の赤色髄類洞、腎臓髄質介在性細管、および、糸球体メサンギウム細胞に認められた。CG12を正常成人脳、および、胎児脳で吸収するとその結合活性は消失するのに、同じ処置をしてもBF7，GE2，および81C6 は影響を受けない。悪性グリオーマ患者から得たヒト・モノクロナール抗体（HMAb）に関する報告が文献にみられるが、その抗体のいずれもその特徴が十分明らかにされていない。シコラら（Sikora，et al.，1982）は、0.25%グルタールアルデヒド固定したグリオーマ細胞に反応するHMAbの生産を報告している。この研究者たちは、悪性グリオーマ治療のために開頭手術を受けた12人の患者から腫瘍内リンパ球を入手し、それらをEBNA+ 8-アザグアニン抵抗性ヒト・リンパ球芽細胞様細胞系統LICR -LONHMy2と融合させた。この細胞系統は、ガンマ鎖とラムダ鎖を分泌することが知られている。５人の患者から、合計71個のハイブリドーマが得られた。このハイブリドーマについては、サブクローニング実験の報告もないしそれらのモノクローン性に関する例証も証明もない。またこの研究はHMAbが他の腫瘍細胞系統にたいして交差性反応を示すことを報告している。ヒト脳の腫瘍内細胞を出発物質として用いることの不利益は明らかである。続く研究（1983）においてシコラらは、単離したHMAbを調べ、標的との反応性を示すのに高い濃度を必要としるのでこのHMAbの親和性は低いと結論した。本発明者とその共同研究者らは、５種のハイブリドーマ細胞系統の作成について報告した。これらはいずれも、IgM型の抗グリオーマHMAbを生成した(ダンら、 Dan，et al.，1992)。この５種のハイブリドーマは、星状細胞腫を持つ４人の患者の末梢血中のリンパ球をヒト骨髄腫様細胞系統TM-H2-SP2と細胞融合させて得たものである。この５種のハイブリドーマの作成は次の原理に基づいて行なわれた。すなわち、神経腫瘍を持つ患者が循環する抗グリオーマ特異性を持つＢリンパ球を有するであろうこと、さらにグリオーマ患者から得た腫瘍反応性抗体は、特異性と分布が外来の免疫系によって認識されるものとは異なる、共通で非対立遺伝子性のヒトグリオーマの決定基を認識しなければならないということである。このようにして、この５種のハイブリドーマは、ヒト骨髄腫様細胞系統と、グリオーマ患者から得たＢ細胞とを融合させて得たものである。得られたハイブリドーマを適当に培養することによって、ヒト・グリオーマにたいして効果的なHM Abの有効量が得られた。得られたヒトMAbの顕著な特質は、互いの類似性がきわめて高いことであった。しかもそれらは４人の別々の腫瘍患者の細胞から得たもので、それら患者はそれぞれ腫瘍の種類においても、病歴においても、腫瘍の進行度においてもまちまちであった。さらにこれらHMAbは従来のものに比べて、ヒト標的細胞と高い適合性を示し、またヒト標的細胞認識について高い感度を示した。このHMAbは、ヒトの正常星状細胞には結合しない。これらのHMAbは神経原性腫瘍を放射線標識してその診断画像を取るのに有用であり、免疫療法においては、直接作用によってまたはこれらHMAbに化学療法剤を結合して、腫瘍細胞を直接狙撃するのに有用である。ヒトMAbが臨床的価値を持つためには、次の基準を満たさなければならない。すなわち、1)腫瘍細胞表面を標識すること、すなわち、生きている腫瘍細胞に結合すること、2)細胞周期と無関係な腫瘍特異的抗原を認識すること、および、3)培養活性、成長特性や培養密度と無関係に、腫瘍細胞にインビトロでもよく結合すること、である。得られた５種の抗グリオーマHMAbの内少なくとも二つはこの基準を満たしているようにみえ、その特性が明らかにされている。この二つのHMAbをBT34/A5とBT32/A6と名づける。本発明は、HMAb BT34/A5とBT32/A6の可変領域の軽鎖と重鎖をコードするcDNA 配列を与える。本発明は、相当するアミノ酸配列、特定された可変域鎖を持つIg MイソタイプのヒトMAb、および、同じ可変域鎖を持つその他の蛋白や蛋白複合体を含む。特に本発明は、本発明の軽・重鎖の超可変域と同一、または、90 %同等の超可変域（相補性決定域、または、CDR）を持つ軽・重鎖所有蛋白ないし蛋白複合体を含む。当業者であれば分かるように、免疫複合体とは抗原結合成分子構造と複合体を形成した薬剤類、毒物類、サイトカイン類、核種、酵素類、および、その他の診断用ないし治療用の分子を含む。本発明はさらに本発明のHHAb が結合する細胞表面マーカー即ち抗原を含む。ヒトMAbの調製細胞融合は次のようにして行なった。すなわち、ヒト骨髄腫細胞様細胞系統TM -H2-SP2と、８人の別々の脳腫瘍患者（BT-24，BT-27，BT-32，BT-34，BT-38，BT -39，BT-54、および、BT-55と名づけた）から得られた末梢血Ｂリンハ球（PBL）とからハイブリドーマを調製した。患者は、男女から成り、５才から55才までで、各種神経上皮性腫瘍を患っていた。その腫瘍としては、線維性星状細胞腫、小星状細胞腫、原始的神経上皮性腫瘍、およびグリオーマが含まれる。融合は、前に記載したやり方（ダンら、Dan et al．1992）で行なった。細胞は96穴のトレー上でインキュベートした。その際、新鮮な組織培養液と牛胎児血清(FCS)に、L -グルタミン（292mg/l）とL-アスパラギン（44mg/l）を添加したものを用いた。ハイブリドーマの生育は0-19.5%の範囲にあった。この生育とは目でみえる（肉眼で見える）コロニー（細胞数50-100個を越えるコロニー）を含むマイクロウェルの数を接種した全ウェル数で割り、それをパーセントで表わしたものである。すべての標品において細胞融合に使えるPBLの数は、6.0 X 10⁶から5.8 X 10⁷ の範囲であった。リンパ球にたいする骨髄腫細胞の割合は、各細胞融合例について、1:4と一定にしたが、実際に蒔いた密度は骨髄細胞の数にして融合混合液1ml 当り1.0 x 10⁵から2.5 x 10⁵の範囲に亘った。いくつかの融合例では低い接種密度を選んだがこれは、始めからモノクロナール性を得られやすくするためであった。一方高い接種密度では、ハイブリドーマの生育が促進されるようにみえた。すべての融合例において、ポリエチレン・グリコールの濃度は、50%（v /v）とした。通常、ハイブリドーマの生育は融合開始後４から６週後から認識できるようになり、マイクロウエル内での出現はしばしばその後数週間継続して観察された。一般に、もっとも早期に出現するハイブリドーマ・コロニーが、もっとも安定性の高い傾向があった。96マイクロウェル（0.28cm²/ウェル）培養が終わるまでに肉眼的に観察できたコロニーで24ウェル・プレート（2.01cm²/ウェル）で生育できる程の量まで増やすことができなかったものもあった。例えば、BT-54との細胞融合の場合、最初、96マイクロウェルで生育した７個のコロニーの内、持続的に培養できたのはただ１個だけであった。融合後３か月以後はハイブリドーマ生育不良の例は観察されなかった。このハイブリドーマについて、ヒト免疫グロブリンの存在と、および自己腫瘍の3M KCl抽出物またはグルタールアルデヒド固定グリオーマ細胞系統を用いた反応性についてスクリーニングした。前記融合によるハイブリドーマと推定される新生物を含む合計1,121個のウェルをスクリーニングした。この内、162個（14.5%）が腫瘍抽出物またはグリオーマ細胞系統と反応した。BT-27とBT-32の融合例では、いくつかのグリオーマ細胞系統との反応性を調べた結果、個々のマイクロウェルで複数ELISA（酵素結合イムノソルベント検定法）が陽性と判定されるものが見いだされた。最後の二つの融合例、すなわち、BT-54とBT-55では、ELISAに改変を加え、反応性IgM種を含むマイクロウェルだけを検出するようにした。この改変は、コントロールとしてTM-H2の代わりにハイブリドーマBT27/2D2の培養上澄み液を用い、さらにアルカリホスファターゼ複合山羊抗ヒトIgMを第２の抗体として加えることであった。この根拠は次の通りである。すなわち、融合例BT-24，BT-27，BT -32、および、BT-34から得られた34個のハイブリドーマに存在する免疫グロブリン鎖を分析してみたところ、34個全てがIgMを含むことが判明したこと、さらに、これらハイブリドーマを数個丁寧に調べてみたところ、抗腫瘍活性には、IgMだけがあずかっていることが明らかになったことである。患者BT-27の細胞から得られたハイブリドーマBT27/2D2は、免疫反応性に関する各種ELISAにおいて一貫して陰性であったので、非特異的IgMコントロール（1-4μg/ml）として選んだ。前記一連の融合例から得た合計９種の高い免疫グロブリン生産性を持つハイブリドーマについて、FACS-IIIフロー・サイトメーターを用いてヒト・グリオーマ細胞系統SK-MG-1との反応性についてスクリーニングした。BT27/1A2，BT27/2A3 ，BT32/A6，BT34/A5、および、BT54/B8と名づけたハイブリドーマから得られた５種の上清液が、この特定のグリオーマ細胞系統を標識していることが判明した。５種全てが腫瘍反応性IgM種を含んでいた。したがって、８例の融合実験で、６週後に肉眼で観察できた合計59個のハイブリドーマの内、グリオーマ細胞系統の細胞表面と反応しかつ持続的に培養されるものはたった５個（8.4%）であった。ここで特記すべきことは、BT27/2A3によるヒトグリオーマ細胞系統SK-MG-1の標識は、テスト前にSK-MG-1細胞を高い細胞密度に維持すると強化されることである。５個のハイブリドーマ上清液はすべてμ重鎖を含んでいることが判明した。BT 34/A5だけがラムダ軽鎖を含んでおり、他の４個のHMAbはカッパ軽鎖を含んでいた。各HMAbは、フロー・サイトメトリー（FCM）分析とFITC複合山羊抗ヒトIgM（ IgG分画、μ鎖特異的、キャペル研究所、Capple Laboratories，Cochranville， PA）によって、SK-MG-1の細胞表面を標識することが判明した。このことから、これらのIgM分子は腫瘍細胞膜に結合することは明らかである（データは提示しない）。約６か月継続培養後評価したBT27/1A2のIgM濃度は5.0μg/mlであり、BT27/2A3 では44μg/mlであり、BT32/A6では3.5μg/mlであり、BT34/A5では 2.4μg/mlであり、かつ、BT54/B8では22.4μg/mlであった。さらに６か月の継続培養後では、IgMの生産レベルはほぼ同等であることが判明した。５個のHMAbの内３個について、ELISAで相対的反応性を調べた。上清液の最初の濃度においては、反応性の順序は、BT27/2A3>BT27/1A2>BT32/A6であった。これはそれぞれのIgM濃度の順序と同じであった。ELISAによって最終力価を求めると、コントロールのIgM基礎値よりも有意に高いO.D．指示値が得られた。すなわち、BT/2A3では1:16、BT27/1A2では1:4、BT32/A6では1:2であった。この定量法では、最初の手順で等量、すなわち、50μlのPBS添加を含むのであるから、ELIS Aでテストされる最初の希釈度は1:2であった。いずれの希釈曲線においても、初期平坦相は認められなかった。これは、用いたELISA測定条件では、腫瘍抽出量が制限因子となっていないことを示している。モノクローン性の決定マニアチスら(Maniatis，et al.，1982)にしたがって、TM-H2-SP2，BT27/1A2 ，BT27/2A3、BT32/A6およびBT27/2D2からゲノムDNAを分離した。10μgのDNAを、 BamHi，HindIII制限酵素（>3単位／μg DNA、ベーリンガー・マンハイム、Boehi nger-Mannheim、西ドイツ）で37℃で一晩消化した。方法は、メーカーの指示した条件にしたがって行なった。消化後、DNAを、0.8%（w/v）アガロースゲル上で電気泳動にかけ(マニアチスら、Maniatis et al.，1982)、常法により、Genescr een Plus Membrane（エヌ・イー・エヌ、NEN，ボストン、マサチューセッッ州）に移した。ニシン精子DNA（ベーリンガー・マンハイム、Boehinger-Mannheim、西ドイツ）によって予備ハイブリダイゼーションをした後、そのサザーン・ブロットを比放射活性5-6 x 10⁸/μgの³²P-標識J_Hプローブ(オンコール社、Oncor In c.，Gaithersburg，MD)で、65℃で一晩ハイブリダイズさせた。このプローブはヒトJ_H全域を含み、合計5.6kbpの長さを持つ（ラベッチら、Ravetch，et al.，1 981）。洗浄後、このブロットを遮蔽を強化して-70℃でコダックX-線フィルムに暴露した。サザーン・ブロット分析により、ハイブリドーマBT27/1A2，BT27/2A3およびBT 32/A6はそれぞれJ_H遺伝子領域にたいして相同な２個の再構成バンドを持つことが判明した。ハイブリドーマBT27/2D2はそのようなバンドを３本持っているようであった。本実験で用いたＢ細胞融合の相手方すなわちTM-H2-SP2は、一本しかバンドを持っておらず、明白な欠損があった。さらに、「ハイブリドーマ」のいずれにも、J_H領域にTM-H2-SP2型の再構成の兆候は認められなかった。コントロールとして、60-70%のＴ細胞由来遺伝材料から成る正常PBL DNAをサザーン・ブロットで調べたところ、胎盤性（胚細胞系統）DNAとその配列が一致していることが判明した。さらに、標本の各々に無関係の相同配列を含む低MWのバンドがあった。このIg重鎖遺伝子は、ヒトの14番染色体にあり、４個の別々の要素から成っている。すなわち、V_H（可変域）、D_H（多様域）、J_H（接合域）、および、C_H（定常域）である。胚細胞性DNAにおいては、これら領域は介在配列によって隔てられている。この介在配列はその細胞が一旦Ｂ細胞分化に向かうと、切り離されて捨てられる。最初は、再構成を経るのはただ一本の染色体だけで、他方は、胚細胞性構成のまま留まると考えられていた（対立遺伝子排除原理）。しかしながらマウスの重鎖遺伝子においては、第２遺伝子もほとんど必ず再構成される（ノッテンバーグとワイスマン、Nottenburg and Weismann，1981）。このことからある任意の細胞においてその機能的再構成の確率はきわめて低くなければならない、という仮説が提出された(コールクロフら、Coleclough，et al.，1981)。したがって、一つの細胞において、二つが非機能的という状況、または、一つが機能的で、もう一つは非機能的という状況に出会うことはあろうが、二つが機能的な重鎖の再構成が起こるということはめったにないと思われる。この所見はマウスでは正しく、高等な哺乳動物種でも同様に妥当なようである（コルスマイヤーら、Korsmeye r，et al.，1983）。この実験で使用した重鎖プローブは、ヒト胚細胞性J_H領域全長をカバーする。胚細胞性DNAの再構成の起こる状況では、制限酵素BamHIとHindIIIによる消化は長さにおいて、5.6kbp J_Hプローブとは異なるDNA断片を与えると思われる。各ハイブリドーマ塩基配列の中にはこのような断片が二つ観察されたが、これは各ハイブリドーマについて二つの重鎖再構成が検出されたことを示すもので、このことはこの３個のハイブリドーマの各々がモノクロナール起源であることと一致する。フロー・サイトメトリー培養ヒト細胞系統と株についてフロー・サイトメトリーによる分析を行なった。細胞を集密状態になるまで培養し、少なくとも標識24時間前に培養液を新しくしてその状態に維持した。懸濁培養細胞系統は、高い細胞密度すなわちほとんど飽和状態の培養で維持し使用した。スクリーニングは前述した方法にしたがって、２回以上別々に行い、HMAbの免疫反応活性維持を確かめるため確立された陽性細胞系統と平行して行なった。ヒト細胞系統によるFCMスクリーニングの結果を第１，２表にまとめた。異なる分類項目に属するいくつかの神経外胚葉腫瘍および非神経外胚葉腫瘍組織についてテストした。５種のHMAbは調べた30個の細胞系統にたいし同様なパターンの反応性を示し、目立った例外はほとんどなかった。わずかな例外としては例えば、ヒト上皮子宮頸癌細胞系統ME180は、BT27/1A2とBT27/2A3とは反応したが、BT3 2/A6とは反応しなかった。抗体BT34/A5とBT54/B8はいずれもグリオーマ細胞系統 SKI-1とは反応しなかったが、メラノーマ細胞系統M-4は標識した。 HMAb BT32/A6だけが変わった反応パターンを示した。抗体BT27/1A2とBT27/2A3 と１つの反応パターンを呈し、抗体BT34/A5とBT54/B8とは別の反応パターンを示した。しかしこれらは互いに僅かしか違っていなかった。このHMAbのいずれも、試験した血液由来細胞系統のいずれとも反応しなかった。一連のヒト腫瘍細胞系統にたいする反応パターンには若干の違いはあるものの、５個のHMAbはすべて、それぞれ異なる腫瘍を持つ異なる患者から得られたものであるにも拘わらず、生化学的な組成という点でも、生体内分布という点でも、同じ分子構造を認識しているようである。免疫パーオキシダーゼ染色一連の腫瘍細胞を用いた免疫パーオキシダーゼ染色試験法には、抗体BT32/A6 を選んだ。腫瘍細胞は、完全培養液中で2-3日間培養してカバーグラス上に生育させ、PBSで洗い、2%フォルムアルデヒドで室温20分間固定した。PBSで洗浄した後、細胞を1%正常山羊血清と共に60分インキュベートした。あらためてPBSで洗浄した後、細胞を10-20μg/mlのMAbまたは、コントロールのヒト骨髄腫IgMと共に室温で120分インキュベートした。さらにPBSで洗浄した後、細胞を、ビオチン化山羊抗ヒトIgMで室温で60分染色し、HRP標識ストレプトアビジンと共にさらに 60分インキュベートし、その後PBSで洗浄した。パーオキシダーゼ反応は、0.06% ジアミノベンジジと50mMトリス-HCl，pH7.0に溶解した0.01%過酸化水素とを用いて開始させ、10分間続けた。細胞は、ヘマトキシリンで短時間対照染色した。第３表から明らかなように、染色の結果は、大部分フローサイトメトリーの結果を確認することになった。ただ例外として、この方法では、メラノーマ、神経芽細胞腫細胞系統にたいするHMAbの結合は陽性であった。正常ヒト星状細胞との反応性培養ヒト星状細胞について、HMAbによる標識性を調べた。すべての抗体試薬はヒト・グリオーマの確立された細胞系統（U-373）にたいして免疫反応性であることをチェックした。HMAb BT27/1A2，BT27/2A3，および、BT32/A6のいずれも２人から採取した別々の培養星状細胞を標識しなかった。抗体BT34/A5およびBT54/ B8も、１人から採取した正常ヒト星状細胞を標識しなかった。相対的親和性５個のHMAbの相対的抗体親和性を定量するために、ド・ベルナードとデイビス（De Bernado and Davis，1987）の変法を用いた。５個のHMAbと、患者BT-37 （多形性膠芽腫）から得た腫瘍抽出物とを、４℃で長時間インキュベーション（ 18時間）、または、短時間インキュベーション（４時間）してELISAで調べた結果を、O.D．測定値で表わした。各HMAbについて、二つのインキュベーション時間におけるO.D．値を比較したところ、BT32/A6とBT54/B8では、長時間のインキュベーションの方がO.D．が統計的に有意に高い（p<0.05）ことが明らかになった。他の３個のHMAb（BT27/1A2，BT27/2A3およびBT34/A5）では、いずれも、４ ℃で長時間インキュベーションした後でも、反応性に有意な増加は見られなかった。これらの結果から、BT32/A6とBT54/B8は、低温では、親和性の低い抗体となることが示唆された。長時間インキュベートすると（４℃で18時間）、５個のHMAbはすべて、コントロールに比べ、ELISA上で陽性である（p<0.05）ことが確かめられた。一方、短時間インキュベーションでは（４℃で４時間）、わずかにBT27/1A2，BT27/2A3と BT34/A5だけが有意に陽性であったが、BT32/A6とBT54/B8は有意な反応性を示さなかった。これは恐らくその親和性が低いためであろう。抗原特定のための予備実験培養神経外胚葉細胞系統から得た全脂質抽出物について、そのドット・ブロットを調べた。LN-340とM-4はそれぞれグリオーマとメラノーマ細胞系統であるが、すでに５個のHMAbのいずれとも反応しないことが確かめられている。グリオーマ細胞系統U-373由来の糖脂質にたいする反応を調べてみると、コントロールのH MAb BT27/2D2に比べると、５個のHMAbすべてにおいて、反応性のある兆候が窺われた。グリオーマ細胞系統SK-MG-1については、BT54/B8を除くすべてのHMAbが、脂質抽出物にたいしてある程度の反応性を示すようであった。もっとも、これらのドット・ブロットの状態は全く満足すべきものとはいえなかった。 SK-MG-1グリオーマ細胞から調製した全脂質抽出物について、BT34/A5と、コントロールとして親細胞系統TM-H2を用いて、免疫クロマトグラフィを行なった。Rf=0.60の単一特異バンドが観察された。Rf=0.80の非特異バンドがBT34/A5とT M-H2のレーンに認められた。BT27/2D2を対照としてBT27/1A2とBT27/2A3について別に実験を行ったが、同様の結果、すなわちRf=0.60において特異的バンドが得られた。HMAb BT54/B8による免疫クロマトグラフィでは、何ら特異的バンド・パターンは得られなかったが、この結果はドット・ブロットの実験と一致していた。上記の結果は、このHMAb類は決定基として糖脂質あるいはガングリオシドを認識していることを示唆するが、糖蛋白との関連は見いだされなかった。図面の簡単な説明第1A-1D図は、掻きとったSK-MG-1細胞のフローサイトメータ分析の結果である。第2Aと2B図は、グリオーマ細胞でPI透過性のあるものを、BT32/A6で標識したもの（第2B図）と、コントロール（第2A図）で標識したもののフロー・サイトメータ分析の結果である。第３図は、SK-MG-1細胞の集密培養を各種スプリット比で通過させた時の、非生存細胞にたいする生存細胞の割合を示す。第４図は、種々のスプリット比における細胞生育率を示す。第５図は、種々のスプリット比について、細胞周期の各相における細胞数の相対値を示す。この図に見られる傾向は第４図の生育率の増加と一致する。第６図は、培養スプリット比と、MAb BT32/A6によるSK-MG-1細胞標識の度合いを示す。ヒト・モノクロナール抗体BT32/A6 今後の分析にはHMAb BT32/A6を選んだ。 BT32/A6の培養液上清は、細胞を10%ウシ胎児血清（FBS）、1% L-グルタミン、 1% HT（ギブコ、Gibco，Grand Island，NY）を添加したRPMI-1640培養液を用い、T175 sq．cm．フラスコ（コスター Costar，Cambridge，MA）か、または、31 撹拌フラスコ（コンテス、Kontes，Vineland，NJ）中で育成して調製した。４または５日の培養後、1-2 x 10⁶の細胞密度において、500xgで10分間遠心して上清を収集した。この上清を直接または使用前に濃縮精製して用いた。培養液上清を濃縮するには、ミニトラン濃縮器（ミリポア、Millipore，Bradford，MA）にて、100,000分子量分画接線流膜を用いた。IgM抗体の精製には、混合式イオン交換 ABx（ジェイ・ティー・ベーカー社、J.T．Baker Inc.，Philipsburg，NJ）、Ｑ −セファロースファストフロー、および、スーパーローズ-6のカラムクロマトフラフィで行なった。MAbの最終濃度は、抗原捕捉ELISAにて、ポリクロナール・ヒトIgM（カッペル研、Cappel Labs.，Malvern，PA）で作成した標準曲線を用いて定量した。すでに報告したように（ダンら、Dan，et al.，1992）、SK-MG-1グリオーマ細胞（もとはAJと命名されていた。Pfreundshuh，et al.，1978）のFCM分析の結果、「小型」、および、「大型」細胞と呼ばれる、明らかに異なる二つの細胞群の存在が明らかになった（前方拡散像による）。この所見は、培養フラスコから機械的に剥がし取ったSK-MG-1細胞について調べた結果に基づく。SK-MG-1細胞を細胞にたいしてはより穏やかなトリプシンまたはEDTAで除去し、それについてFCM 分析すると細胞集団はただ一つしか得られないことが判明した（図示せず）。剥がし取ったSK-MG-1細胞について蛍光活性化ソーティングを行なってみると、「小型」細胞は2%のコロニー形成率（CFE）しか持たないのにたいし、「大型」細胞は、38.0%のCFEを持っていた。これはほとんど20倍である。剥がし取ったSK-MG-1グリオーマ細胞をPI（ヨウ化プロピウム）だけで標識すると、PI 蛍光の増加は「小型細胞」だけに観察されたが、「大型」細胞には観察されなかった。死んだ細胞がPIで染色されるのであるから、剥がし落としたSK-MG-1の内、「大型」細胞は生育能力があり、「小型」細胞は生育能力がないものであると結論された。生細胞の表面標識生きていないの「小型」細胞を、前方拡散対90°拡散座標面において小形強調（backgate）してみると、「小型」細胞は縦軸において、生きている「大型」細胞の下に独立の集団として現われる。「大型」細胞の周囲には領域が区切られた（第1A図の'A'）。さらに、生きていて生育能力を持つSK-MG-1グリオーマ細胞のみを通過させる作業をやりやすくするために、すべてのFCM標品にPIを加えた。第1B図において、'B'とマークした領域は、PIによって標識されないSK-MG-1細胞を表わす。'B'の右の二重ピークは、PIを取り込んだSK-MG-1細胞（領域'C'）したがって、非生存性細胞を表わす。この二重ピークはそれぞれ細胞サイクルのG₀ /G₁とG₂/Mピークに相当する。第1C図は、領域'A'と領域'B'からダブルゲートしたSK-MG-1細胞を表わす。したがって、この細胞は、生きており、インビトロでコロニーを形成できる。これらの細胞はコントロールのMAbで標識されていた。H MAb BT32/A6を添加後これらの細胞の平均FITC蛍光は、>36%の係数で増加したことが判明した（第1D図）。したがって、ヒトIgM MAb BT32/A6は、生存活性を持ちインビトロでコロニーを形成できる生存SK-MG-1グリオーマ細胞の表面を標識する。細胞周期非依存性の抗原発現細胞周期全体におけるBT32/A6抗原の発現を、PIにたいして透過性を持ち（第1 B図領域'C'）かつ、MAb BT32/A6で標識したSK-MG-1グリオーマ細胞のみを通行させて調べた。第2B図に示すように、この結果から腫瘍細胞の標識は細胞周期のG₀/G₁およびG₂/Mの両相で起こることが明らかになった。細胞周期のＳ相においてもごく僅かにSK-MG-1細胞の標識化が見られたが、これは、図には反映されていない。細胞周期の各相において標識が観察されるということは、生存SK-MG-1細胞のほぼ100%に見られる蛍光増加所見から裏付けられる。どの時点においてもSK-MG- 1細胞のある割合は、細胞周期のいずれかの相にある。その細胞のほぼ100%が標識されるということは、細胞周期の各相におけるすべてのSK-MG-1細胞がMAb BT3 2/A6によって標識されることを意味する。以上からBT32/A6抗原の生存細胞表面における発現は、調べたSK-MG-1の細胞継代度と培養密度においては細胞周期に影響されない。抗原発現と培養スプリット比 SK-MG-1グリオーマ細胞の集密培養を、0，1:2，1:4，1:8，1:16，1:32、および、1:64のスプリット比で通過させ、つぎに、標準条件で３日間その細胞を培養すると、下記のパラメータに際だった傾向が生じた。そのパラメータとは、1)非生存細胞にたいする生存細胞の割合（第３図）、2)細胞生育率（第４図）、および、3)細胞周期におけるG0/G1，S，および、G2/M相の細胞の相対数（第５図）である。培養細胞の生存率（非生存細胞にたいする生存細胞の割合で決める）と、細胞生育速度（０日目の細胞数に対する３日目の細胞数をパーセントで表わしたもので決める）の間にはきわめてよい相関があった。すなわち、r=0.991でp<0.0 1である。培養細胞生存率、生育速度、および、細胞周期にはこのような傾向が見られるのに反して、SK-MG-1グリオーマ細胞にたいするBT32/A6の標識性を、培養体分割比と関連づけたが、有意な傾向は認められなかった（r=-0.303，p>0.05、第６図）。このデータはスチューデントのt-テストによる回帰直線の勾配がゼロになるという帰無仮説を否定できなかった。したがって、SK-MG-1にたいするMAb BT32/A6の標識性は調べたスプリット比の範囲内では、1)培養細胞の生存性、2) 生育速度、および3)細胞周期に依存しない。補体仲介性細胞毒性ヒト・グリオーマ細胞（SK-MG-1）を、5% FBSと5mM HEPESを含むRPMI-1640養液pH7.2で洗浄した。5 x 10⁵個/mlのSK-MG-1細胞懸濁液50μlを、96-穴プレート（コスター、Costar，Cambridge，MA）の丸底ミクロタイターウェルにて、各50 μlの培養液（コントロール）またはMAbの各種希釈液（試験試料）と一緒に、室温で２時間インキュベートした。すべての標本は２連で同一工程処理した。次に、このミクロタイター・プレートを400xgで５分間速心し、上清を取り除き、培養液50μlまたはウサギ補体（セーダーレーン研究所、Cederlane Laboratories ，Hornby，ON、カナダ）50μlのどちらかを各ウェルに添加した。インキュベーションを37℃で90分継続した。インキュベーション後、プレートを400xgで５分遠心し上清25μlを取って氷上に置いた。分析の終了時、細胞懸濁液標本を等容量の0.2%トリパン・ブルーで染色しヘモサイトメータで生存細胞のパーセントを計測した。２連の標品から平均生存率を求めた。MAbによる比細胞毒性パーセントを、下記の式にしたがって求めた。結果を、第４表にまとめた。 HMAb BT32/A6とBT34/A5の特定標準法（ル・ベーフら、Le Boeuf et al．1989、シュレーダーら、Schroeder et al.，1990）を用いて、HMAb BT32/A6とBT34/A5の軽鎖・重鎖の可変域についてDNA配列を得た。すなわち、ハイブリドーマ細胞系統BT32/A6とBT34/A5からmRN Aを抽出し、V-領域特異性プライマーによるPCRを用いてV-領域cDNAを増幅した。適当なクローニング発現ベクトルを調製し、細菌培養物をアンピシリン含有LB培養液で生育させた。dsDNAの小標本をアルカリ法（分子クローニング法、マニアーチス、Maniatis）にて調製し、ユナイテッド・ステーツ・バイオケミカル（th e United States Biochemical）製キットとプロトコールを用いてDNAの塩基配列を決めた。ヒトIgM軽・重鎖定常域のDNA配列は既知であるから、ヒトIgM可変域の配列決定は、全部を特定することになる。配列表には各種配列が載せてある。HMAb BT34/A5は、363個のヌクレオチドから成るＶ_H(μ)鎖の配列をコードするcDNAを持っている（配列番号１）。30ヌクレオチドから成るＶ_H(μ)BT34/A5の部分的シグナル配列（配列番号２）も明らかにされた。このcDNAのコード配列から、BT34/A5 V_H(μ)は121個のアミノ酸残基（配列番号３）から成り、前述の部分シグナル配列は10個のアミノ酸残基（配列番号４）から成ることが明らかになった。 HMAb BT34/A5のＶ_L(λ)鎖は、333個のヌクレオチド配列（配列番号５）のcDNA コード配列を持ち、これは、111個のアミノ酸残基（配列番号６）から成る蛋白質をコードする。10個のアミノ酸残基（配列番号８）をコードする、30個のヌクレオチド（配列番号７）からなる部分シグナル配列も特定された。 HMAb BT32/A6 Ｖ_L(κ)鎖は、113個のアミノ酸残基（配列番号９）から成る蛋白鎖をコードする339個のヌクレオチド配列（配列番号10）のcDNAコード配列を持つ。20個のアミノ酸残基（配列番号12）をコードする、60個のヌクレオチド（配列番号11）から成る部分シグナル配列も特定された。 HMAbBT32/A6のＶ_H(μ)鎖は完全には特定されず、FR1およびFR2領域の一部の配列が明らかにされただけであった。したがって、このＶ_H(μ)鎖のcDNA部分配列は、120個のアミノ酸残基（配列番号14）から成る蛋白鎖をコードする360個のヌクレオチド（配列番号13）から成る。これらの配列結果の初期の分析から、少なくともBT32/A6のＶ_H(μ)に関しては、抗原結合部位はCDR3領域すなわち配列番号14のアミノ酸92-114にあるらしいことが明らかになった。ここに特定されたＶ鎖の超可変領域、すなわち、相補性決定領域（CDR）は特に興味深い。なぜなら、少なくともこの内のいくつかは抗原結合に関係しているからである。従って本発明はCDRがここに特定されたCDRと少なくとも90%相同な免疫グロブリン可変領域軽・重鎖を持つ分子を含む。従って、HMAb BT34/A5のＶ_H(μ)鎖は、下記の相補性決定領域（CDR）を持つ。すなわち、 CDR１配列番号 15 CDR２配列番号 16 CDR３配列番号 17 HMAb BT34/A5のＶ_L(λ)鎖は下記のCDRを持つ、すなわち、 CDR１配列番号 18 CDR２配列番号 19 CDR３配列番号 20 HMAb BT32/A6のＶ_H(μ)鎖は下記のCDRを持つ、すなわち、 CDR１配列番号 21 CDR２配列番号 22 CDR３配列番号 23 HMAb BT32/A6のＶ_L(κ)鎖は、下記のCDRを持つ、すなわち、 CDR１配列番号 24 CDR２配列番号 25 CDR３配列番号 26。考察ここに掲げたデータから、MAb BT32/A6によって認識される抗原の発現性は他に例のないものであることが明らかになった。なぜなら、SK-MG-1細胞のほとんど100%が（FCMで調べると）、培養細胞密度、培養細胞の生存活性や細胞周期と無関係にこの抗原を発現しているようにみえるからである。HMAb BT34/A5もBT32 /A6に類似しているので、BT34/A5結合に関しても同様の結果が期待される。この抗原認識がこれほど驚くべきものなのは、悪性グリオーマは通常不均一な腫瘍と考えられていることが挙げられる。すなわち、ある腫瘍中ですべての細胞に共通する生物学的共通項が見られるのは例外的なことである。実際この異質性は腫瘍組織の全部と言わないまでも大部分に共通な特質である。異質性は「正常」な機構を通じて形成されるのかもしれないし、癌細胞に固有の遺伝的不安定性の増加のために生じるのかもしれない。従来次のことが指摘されている。すなわち最も厳密に言えば、「腫瘍異質性」という用語は細胞系統に違いのある場合は使うべきでないといわれている。細胞周期性作用やその他の遺伝周辺の現象が腫瘍細胞の変動性の情況を別のレベルでさらに複雑にしている。 SK-MG-1のような継代を重ねてきた系統にたいしても、そのすべての腫瘍細胞を100%認識する腫瘍特異的MAbはほとんど存在しない。コンピュータ支援によるサイトフルオロメトリーを利用した優れた研究において、スターブルーら（Star vrou，et al.，1989）は、ある種の星状細胞腫とグリア芽細胞腫細胞系統（例えば、86HG-63，86HG-39）の培養細胞を100%まで認識する二つのMAb，MUC 8-22とM UC 2-63を報告しているが、このような完全認識の観察例は稀ではあった。同じ研究グループが次の所見を得た。すなわち抗体結合を示す細胞のパーセントは細胞系統によってまちまちであり、しかもそれが個々の細胞系統においても継代が異なるとまちまちになるという。コクナイら（Kokunai，et al.，1990）の報告によれば、あるヒトMAb（CLN-Ig G）は、グリオーマ関連抗原を認識するが、その抗原の細胞表面発現は細胞周期状態の影響を受けるという。CLN-IgGによって認識される抗原の発現は、細胞周期がG2/M相に入るとグリオーマ細胞表面に著明に増加するが、G0/G1相の細胞においては有意に減少することが分かった。これらの所見は治療的見地から重要な意味を持つ。なぜなら通常の補助治療（例えば、放射線治療や化学療法）は、腫分裂を繰り返している瘍細胞に向けられており、かつ腫瘍幹細胞は細胞分裂的には静穏な、非周期性の細胞中にいると考えられているからである。MAbによる腫瘍免疫療法が成功するためには、活発に分裂している細胞にたいするのと同様に、細胞分裂を休止している腫瘍細胞にも狙いを定めなければならない。このことはMAbが細胞周期依存性腫瘍関連抗原にたいするものではなくて細胞系統依存性腫瘍関連抗原にたいするものでなければならないということを意味する。これまでのところ、星状細胞腫関連抗原に対するMAbについては、他にただ一つ報告があるにすぎない。この抗原は、FCM分析で調べたところ細胞周期と無関係に発現されている（サラワルら、Sarawar et al.，1991）。このM2と名づけられた特定のMAbは、広範な中枢神経腫瘍上に発現される抗原を認識する齧歯類MAb である。これの発現される腫瘍としては、若年性星状細胞腫、脳室上皮腫、髄芽細胞腫、髄膜腫、および、乏突起神経膠腫がある。M2はさらに正常ヒト成人脳のあらゆる領域の星状細胞と反応するばかりか、少数の神経細胞や、胎児脳とも反応することが知られている。以上から、ヒトMAb BT32/A6は、生存活性を持つSK-MG-1細胞に細胞周期とは無関係に100%に発現されるグリオーマ関連抗原を認識するが、培養正常ヒト星状細胞上に発現される抗原は認識しない。BT32/A6抗原の発現は、細胞密度、生育速度、または培養細胞の生存活性に影響されない。この特性により、MAb BT32/A6 （およびそれとの類似性から、同様にして得られた他のHMAbも）はヒト悪性グリオーマの治療のための補助的免疫治療剤として好適である。MAb BT32/A6の可変領域配列に基づいて免疫毒素を構築するならば、それによって生体内において、非増殖性の（G0/G1）グリオーマ細胞と増殖性（S，G2/M）細胞の両方を標的とすることが可能となるであろう。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＣ１２Ｐ 21/08 9358−4ＢＣ１２Ｐ 21/08 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＺ，ＶＮ

Claims

【特許請求の範囲】１．ヌクレオチド配列番号１を持つ、ヒト・モノクロナール抗体BT34/A5の重鎖でサブグループμ（Ｖ_H(μ)）の可変領域をコードする単離DNA。２．さらに、前記DNAの5'末端から延びるヌクレオチドシグナル配列を含み、かつそのシグナル配列はその3'末端においてヌクレオチド配列番号２を含む、請求項１で請求される単離DNA。３．ヌクレオチド配列番号５を持つ、ヒト・モノクロナール抗体BT34/A5の軽鎖でサブグループλ（Ｖ_L(λ)）の可変領域をコードする単離DNA。４．さらに、前記DNAの5'末端から延びるヌクレオチドシグナル配列を含み、かつそのシグナル配列はその3'末端においてヌクレオチド配列番号７を含む、請求項３で請求される単離DNA。５．ヌクレオチド配列番号13を持つ、ヒト・モノクロナール抗体BT32/A6の重鎖でサブグループμ（Ｖ_H(μ)）の可変領域をコードする単離DNA。６．ヌクレオチド配列番号９を持つ、ヒト・モノクロナール抗体BT32/A6の軽鎖でサブグループκ（Ｖ_L(κ)）の可変領域をコードする単離DNA。７．さらに前記DNAの5'末端から延びるヌクレオチドシグナル配列を含み、かつそのシグナル配列はヌクレオチド配列番号11を持つ、請求項６で請求される単離 DNA。８．アミノ酸配列番号３を持つ免疫グロブリンＶ_H(μ)鎖。９．さらにそのC-末端にアミノ酸配列番号４を持つシグナル配列を含む、請求項８で請求されるＶ_H(μ)鎖。 10．アミノ酸配列番号15(CDR1)、配列番号16(CDR2)、および配列番号17(CDR3)またはそれらにたいし少なくとも90%相同な配列を含む相補性決定領域(CDR)を持つ免疫グロブリンＶ_H(μ)鎖。 11．アミノ酸配列番号６を持つ免疫グロブリンＶ_L(λ)鎖。 12．さらにそのC-末端にアミノ酸配列番号８を持つシグナル配列を含む、請求項 11で請求されるＶ_L(λ)鎖。 13．アミノ酸配列番号18(CDR1)、配列番号19(CDR2)、および配列番号20(CD R3)または、それらにたいし少なくとも90%相同な配列を含むCDRを持つ免疫グロブリンＶ_L(λ)鎖。 14．それぞれアミノ酸配列番号３と４を持つＶ_H(μ)鎖とＶ_L(λ)鎖を持つ免疫グロブリン。 15．モノクロナール抗体である、請求項14で請求される免疫グロブリン。 16．イソタイプＭである、請求項15で請求される免疫グロブリン。 17．ヒト・モノクロナール抗体BT34/A5。 18．アミノ酸配列番号15(CDR1)、配列番号16(CDR2)、および、配列番号17(CDR3) 、または、それらと少なくとも90%相同な配列を持つCDRを含むＶ_H(μ)鎖を持つ免疫複合体あり、かつアミノ酸配列番号18(CDR1)、配列番号19(CDR2)、および、配列番号20(CDR3)、または、それらと少なくとも90%相同な配列を持つCDRを含むＶ_L(λ)鎖を持つ免疫複合体。 19．免疫毒素である、請求項18で請求される免疫複合体。 20．アミノ酸配列番号14を持つ免疫グロブリンＶ_H(μ)鎖。 21．アミノ酸配列番号21(CDR1)、配列番号22(CDR2)、および、配列番号23(CDR3) または、それらにたいし少なくとも90%相同な配列、を含むCDRを持つ免疫グロブリンＶ_H(μ)鎖。 22．アミノ酸配列番号10を持つ免疫グロブリンＶ_L(κ)鎖。 23．さらに、アミノ酸配列番号12を持つシグナル配列を含む、請求項22で請求されるＶ_L(κ)鎖。 24．アミノ酸配列番号24(CDR1)、配列番号25(CDR2)、および、配列番号26(CDR3) または、それらにたいし少なくとも90%相同な配列、を含むCDRを持つ免疫グロブリンＶ_L(κ)鎖。 25．それぞれアミノ酸配列番号14と10を持つＶ_H(μ)鎖対を持つ免疫グロブリン。 26．モノクロナール抗体である、請求項25で請求される免疫グロブリン。 27．イソタイプＭである、請求項26で請求される免疫グロブリン。 28．ヒト・モノクロナール抗体BT32/A6。 29．アミノ酸配列番号21(CDR1)、配列番号22(CDR2)、および、配列番号23 (CDR3)、または、それらと少なくとも90%相同な配列を持つCDRを含むＶ_H(μ₎鎖を持つ免疫複合体であり、かつアミノ酸配列配列番号24(CDR1)、配列番号25(CDR 2)、および、配列番号26(CDR3)、または、それらと少なくとも90%相同な配列を持つCDRを含むＶ_L(κ)鎖を持つ免疫複合体。 30．免疫毒素である、請求項29で請求される免疫複合体。 31．細胞周期に依存しないグリオーマ関連細胞表面抗原であって、HMAb BT32/A6 によって特異的に結合され、かつ正常ヒト星状細胞の表面には存在しないグリオーマ関連細胞表面抗原。 32．細胞周期に依存しないグリオーマ関連細胞表面抗原であって、HMAb BT34/A5 によって特異的に結合され、かつ正常ヒト星状細胞の表面には存在しないグリオーマ関連細胞表面抗原。