JPS63179895A - モノクロ−ナル抗体 - Google Patents
モノクロ−ナル抗体Info
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- JPS63179895A JPS63179895A JP1114687A JP1114687A JPS63179895A JP S63179895 A JPS63179895 A JP S63179895A JP 1114687 A JP1114687 A JP 1114687A JP 1114687 A JP1114687 A JP 1114687A JP S63179895 A JPS63179895 A JP S63179895A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
本発明は、胆管癌由来株(HEK)を免疫原として作製
されたハイブリドーマの産生ずる特定の特性を持つモノ
クローナル抗体に関する。
されたハイブリドーマの産生ずる特定の特性を持つモノ
クローナル抗体に関する。
癌研究の究極の目標は、抗癌、制癌作用を示す物質の探
索と、癌の早期発見、即ち早期診断法の確立にあるとい
える。従来、癌に関して種々の薬剤、治療法、試薬が開
発されているが、これらはいずれも癌細胞ばかりでなく
、正常組織、正常細胞にも影響を与え、いかに有効な薬
剤とはいえ、その副作用のために使用が著しく制限され
ているのが現状である。
索と、癌の早期発見、即ち早期診断法の確立にあるとい
える。従来、癌に関して種々の薬剤、治療法、試薬が開
発されているが、これらはいずれも癌細胞ばかりでなく
、正常組織、正常細胞にも影響を与え、いかに有効な薬
剤とはいえ、その副作用のために使用が著しく制限され
ているのが現状である。
免疫反応(抗原−抗体反応)は、非常に特異性が高いも
のであるが、従来のポリクローナル抗体ではいかに吸収
操作を繰り返しても、例えばリンパ球間のサブセットの
ような、非常にマイナーな抗原決定基によって区別され
るものを認識することは困難であった。ミルスティン(
Mi l5tein)らによって開発されたモノクロー
ナル抗体〔ケーラー、ジー、およびミルスティン、シー
、:ネーチ’p−(K′6hler、 G、 and
Milstein、 C,: Nature、)%i6
.495.(1975) )は、この壁を打ち破るもの
であり、癌細胞上の癌特異抗原、あるいは癌関連抗原を
特異的に認識するモノクローナル抗体を得ることにより
、正常組織へのダメージを与えずに癌細胞のみを特異的
に排除できるものと期待される。
のであるが、従来のポリクローナル抗体ではいかに吸収
操作を繰り返しても、例えばリンパ球間のサブセットの
ような、非常にマイナーな抗原決定基によって区別され
るものを認識することは困難であった。ミルスティン(
Mi l5tein)らによって開発されたモノクロー
ナル抗体〔ケーラー、ジー、およびミルスティン、シー
、:ネーチ’p−(K′6hler、 G、 and
Milstein、 C,: Nature、)%i6
.495.(1975) )は、この壁を打ち破るもの
であり、癌細胞上の癌特異抗原、あるいは癌関連抗原を
特異的に認識するモノクローナル抗体を得ることにより
、正常組織へのダメージを与えずに癌細胞のみを特異的
に排除できるものと期待される。
また、モノクローナル抗体を用いた診断薬あるいは検査
試薬は、正常血清成分に対する交叉反応がなく、感度良
く、癌関連抗原、癌特異抗原を検出できるものと思われ
る。
試薬は、正常血清成分に対する交叉反応がなく、感度良
く、癌関連抗原、癌特異抗原を検出できるものと思われ
る。
本発明の目的は、特定の癌抗原に対して特異的に反応す
るモノクローナル抗体を提供することにある。さらには
、上記特定癌に対する抗原検出用試薬を提供することに
ある。
るモノクローナル抗体を提供することにある。さらには
、上記特定癌に対する抗原検出用試薬を提供することに
ある。
〔問題点を解決するための手段〕
本発明は、胃癌、肺癌、食道癌、結腸癌、肝癌、子宮内
膜癌に対して特異的に反応するモノクローナル抗体より
なるものである。
膜癌に対して特異的に反応するモノクローナル抗体より
なるものである。
本発明のモノクローナル抗体は、
[1]Igクラス(サブクラス):IgG、[2]認識
抗原タイプ:分泌型抗原■癌細胞との反応性:少なくと
も胃癌(KATO−DI)、肺癌、食道癌、結腸癌、肝
癌、子宮内膜癌に対して陽性を示す。
抗原タイプ:分泌型抗原■癌細胞との反応性:少なくと
も胃癌(KATO−DI)、肺癌、食道癌、結腸癌、肝
癌、子宮内膜癌に対して陽性を示す。
等の特性を有する。
本発明のモノクローナル抗体は、いわゆる細胞融合によ
って製造される。すなわち、抗体産生細胞と骨髄腫細胞
との間に、融合ハイブリッドを形成させ、該ハイブリッ
ドをクローン化し、上記癌細胞(即ち、上記特性を有す
る特定抗原)に対し特異性を示す抗体を産生ずるクロー
ンを選択することによって製造される。その操作は、免
疫用細胞として下記細胞を使用する以外は、従来既知の
方法に準ずればよい。
って製造される。すなわち、抗体産生細胞と骨髄腫細胞
との間に、融合ハイブリッドを形成させ、該ハイブリッ
ドをクローン化し、上記癌細胞(即ち、上記特性を有す
る特定抗原)に対し特異性を示す抗体を産生ずるクロー
ンを選択することによって製造される。その操作は、免
疫用細胞として下記細胞を使用する以外は、従来既知の
方法に準ずればよい。
抗体産生細胞は、例えば株化癌細胞より得られる抗原に
よって免疫された動物からの肺細胞、リンパ節細胞、B
−リンパ球である。株化癌細胞としては、胆管癌由来の
株化癌細胞(HEK)が例示される。この細胞の性質は
継代用培地RPMr1640+10%牛脂子血清であり
、産生ずる腫瘍マーカーはCEA、KMOI、シアル化
ルイスXである。
よって免疫された動物からの肺細胞、リンパ節細胞、B
−リンパ球である。株化癌細胞としては、胆管癌由来の
株化癌細胞(HEK)が例示される。この細胞の性質は
継代用培地RPMr1640+10%牛脂子血清であり
、産生ずる腫瘍マーカーはCEA、KMOI、シアル化
ルイスXである。
免疫される動物としては、例えばマウス、ラット、ウマ
、ヤギ、ウサギなどが例示される。
、ヤギ、ウサギなどが例示される。
抗体産生細胞は、例えば次のようにして製造される。即
ち、胆管癌由来細胞株を例えば完全フロインドアジュバ
ント(Freund Complete Adjuva
nt)と混和後、動物の免疫用として使用する。免疫は
動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に、約1.5×10
5〜10”cell相当分/回を注射することにより行
われ、初回免疫より約3〜5週間ごとに2度免疫を行い
、さらに1〜3ケ月後に最終免疫を行う。最終免疫より
約3〜5日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取する。
ち、胆管癌由来細胞株を例えば完全フロインドアジュバ
ント(Freund Complete Adjuva
nt)と混和後、動物の免疫用として使用する。免疫は
動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に、約1.5×10
5〜10”cell相当分/回を注射することにより行
われ、初回免疫より約3〜5週間ごとに2度免疫を行い
、さらに1〜3ケ月後に最終免疫を行う。最終免疫より
約3〜5日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取する。
骨髄腫細胞としては、たとえばマウス、ラット、ヒト等
由来のものが使用される。抗体産生細胞と骨髄腫細胞と
は同種動物由来のものであることが好ましい。
由来のものが使用される。抗体産生細胞と骨髄腫細胞と
は同種動物由来のものであることが好ましい。
細胞融合は、例えばジー、ガルファ(G、Ga1fre
)〔ネーチ+ −(Nature) 266、550
(1977) )に記載の方法又はこれに準する方法に
よって行われる。
)〔ネーチ+ −(Nature) 266、550
(1977) )に記載の方法又はこれに準する方法に
よって行われる。
この際、30〜50%ポリエチレングリコール(平均分
子量(1、000〜4,000)を用い、て30〜40
℃の温度下、約1〜3分間程度反応させることによって
行われる。
子量(1、000〜4,000)を用い、て30〜40
℃の温度下、約1〜3分間程度反応させることによって
行われる。
細胞融合によって得られた細胞は目的とするモノクロー
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングに付され
る。即ち、当該細胞を、例えばマイクロプレート中で培
養し、増殖の見られたウェルの培養上清中の抗体価を、
例えば酵素抗体法などによって測定し、適切な抗体を産
生しているウェルを得る。このようなウェルから更に例
えば限界希釈法によってクローニングを行ってクローン
を得る。このクローンは、例えばあらかじめプリスタン
を投与したBALB/Cマウスの腹腔内へ移植し、10
〜14日後にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を
採取し、検定する。選ばれたクローンの産生ずるモノク
ローナル抗体の回収は、免疫グロブリンの精製法として
従来既知の硫安分画法、PEG分画法、エタノール分画
法、陰イオン変換体を応用することで、容易に達成され
る。
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングに付され
る。即ち、当該細胞を、例えばマイクロプレート中で培
養し、増殖の見られたウェルの培養上清中の抗体価を、
例えば酵素抗体法などによって測定し、適切な抗体を産
生しているウェルを得る。このようなウェルから更に例
えば限界希釈法によってクローニングを行ってクローン
を得る。このクローンは、例えばあらかじめプリスタン
を投与したBALB/Cマウスの腹腔内へ移植し、10
〜14日後にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を
採取し、検定する。選ばれたクローンの産生ずるモノク
ローナル抗体の回収は、免疫グロブリンの精製法として
従来既知の硫安分画法、PEG分画法、エタノール分画
法、陰イオン変換体を応用することで、容易に達成され
る。
本発明によって得られたモノクローナル抗体は、正常組
織由来培養細胞、赤血球、白血球及び正常組織とは反応
せず、食道癌、肺癌、胃癌、結腸癌、肝癌、子宮内膜癌
と特異的に反応するものと推測される。すなわち、本発
明からなるモノクローナル抗体は癌の早期発見、予後の
追跡調査に有用な診断薬として、および腫瘍のイメージ
ングあるいは制癌剤とコンジュゲートさせ、ターゲティ
ング療法等への臨床応用が期待される。
織由来培養細胞、赤血球、白血球及び正常組織とは反応
せず、食道癌、肺癌、胃癌、結腸癌、肝癌、子宮内膜癌
と特異的に反応するものと推測される。すなわち、本発
明からなるモノクローナル抗体は癌の早期発見、予後の
追跡調査に有用な診断薬として、および腫瘍のイメージ
ングあるいは制癌剤とコンジュゲートさせ、ターゲティ
ング療法等への臨床応用が期待される。
実施例
(1)免疫用癌関連抗原の調製:
培養面積150dのフラスコにほぼ全面に増殖した株化
胆管癌細胞(HEK細胞)(1,5〜2.0×107個
)を抗ヒト白血球マウス抗体と室温で1時間インキュベ
ートした後、B A L B / c系マウスの腹腔内
へ免疫した。10日〜1ケ月間隔で4回免疫した後、2
週目に採血し、血中抗体価を測定した。最終免疫の3ケ
月後、2.0X10’個のHEK細胞を腹腔内へ免疫し
、4日後に融合に供した。
胆管癌細胞(HEK細胞)(1,5〜2.0×107個
)を抗ヒト白血球マウス抗体と室温で1時間インキュベ
ートした後、B A L B / c系マウスの腹腔内
へ免疫した。10日〜1ケ月間隔で4回免疫した後、2
週目に採血し、血中抗体価を測定した。最終免疫の3ケ
月後、2.0X10’個のHEK細胞を腹腔内へ免疫し
、4日後に融合に供した。
最終免疫より4日後にマウス肺臓を取り出し、以下の細
胞融合に用いた。
胞融合に用いた。
(2)細胞融合およびクローニング:
上記のマウス牌細胞と、マウスミエローマP3Ul(カ
レント トビツク イン マイクロバイオロジー アン
ド イムノロジー(Curr、 Top。
レント トビツク イン マイクロバイオロジー アン
ド イムノロジー(Curr、 Top。
Microbiol、 Immuno+、 ) 、 8
1.1 (197B))とを3:1の割合で混合し、ケ
ーラー(Kohler) らの方法〔イムノロジカル
メソッド(アカデミツクプレス)、ニューヨーク (I
mmunological Method(Acade
mic Press)、 New York)、 39
1. (1979))を一部改変して、45%ポリエチ
レングリコール(平均分子量4,000)を用いて2分
間反応させることにより細胞融合を行った。
1.1 (197B))とを3:1の割合で混合し、ケ
ーラー(Kohler) らの方法〔イムノロジカル
メソッド(アカデミツクプレス)、ニューヨーク (I
mmunological Method(Acade
mic Press)、 New York)、 39
1. (1979))を一部改変して、45%ポリエチ
レングリコール(平均分子量4,000)を用いて2分
間反応させることにより細胞融合を行った。
本細胞を96ウエルマイクロプレートに植え込み、HA
T培地(表1)で9〜14日間培養後、HT培地(表1
)に移行し、更にフラスコ(25ci)に培養できるよ
うになってからD−MEM培地(表1)で培養した。増
殖の見られたウェルの培養上清中の抗体価を酵素抗体法
により測定し、適切なウェルから限界希釈法により、求
めるハイプリドーマのクローニングを行った。
T培地(表1)で9〜14日間培養後、HT培地(表1
)に移行し、更にフラスコ(25ci)に培養できるよ
うになってからD−MEM培地(表1)で培養した。増
殖の見られたウェルの培養上清中の抗体価を酵素抗体法
により測定し、適切なウェルから限界希釈法により、求
めるハイプリドーマのクローニングを行った。
すなわち、マイクロタイタープレートにウェル当たり2
5.000個のマウス腹腔浸出細胞を植え込み、次にD
−MEM培地で、10.5.2.5.1個10.1−と
なるようにハイブリドーマを希釈し、これをマイクロタ
イタープレートに0.1−ずつ植え込み培養した。4日
後にD−MEM培地を0.1 m7加え、以後4〜7日
に1度、培地の半量交換を行った。培養開始後10〜2
0日で肉眼で認められるコロニーが形成され、クローン
株を得た。
5.000個のマウス腹腔浸出細胞を植え込み、次にD
−MEM培地で、10.5.2.5.1個10.1−と
なるようにハイブリドーマを希釈し、これをマイクロタ
イタープレートに0.1−ずつ植え込み培養した。4日
後にD−MEM培地を0.1 m7加え、以後4〜7日
に1度、培地の半量交換を行った。培養開始後10〜2
0日で肉眼で認められるコロニーが形成され、クローン
株を得た。
(以下余白)
表1
(3) スクリーニング法
得られたハイプリドーマについて目的とするモノクロー
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングを次のよ
うに行った。
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングを次のよ
うに行った。
(イ)方法の説明
以下のようにして酵素抗体法を行った。
抗原(各種株化癌細胞、部分精製癌関連抗原または正常
細胞)をコートしたマイクロプレートに検体を加え、3
7℃で1時間反応させ、洗浄後ペルオキシダーゼ標識抗
マウス免疫グロブリン(■gG+ E gA+ r g
M)ウサギ抗体を加え、さらに37℃で1時間反応させ
た。未反応の標識抗体を洗浄除去後、O−フェニレンジ
アミン液を加え、室温にて30分間反応させた後、2M
硫酸を加えて反応を停止させ、490nmの吸光度を測
定した。
細胞)をコートしたマイクロプレートに検体を加え、3
7℃で1時間反応させ、洗浄後ペルオキシダーゼ標識抗
マウス免疫グロブリン(■gG+ E gA+ r g
M)ウサギ抗体を加え、さらに37℃で1時間反応させ
た。未反応の標識抗体を洗浄除去後、O−フェニレンジ
アミン液を加え、室温にて30分間反応させた後、2M
硫酸を加えて反応を停止させ、490nmの吸光度を測
定した。
この方法で各種細胞との反応性を調べた。癌胎児性抗原
(CE A)との交叉反応性は、(、EA感作血球を用
いPHA法で行った。
(CE A)との交叉反応性は、(、EA感作血球を用
いPHA法で行った。
(ロ)スクリーニングの流れ
1次スクリーニング:ターゲットセル(HEK細胞)お
よび正常皮膚繊維芽細胞(CCD4S−3K)を用いた
酵素抗体法で、HEK細胞に対して陽性でCCD、5−
3Kに対して陰性なウェルを選抜。
よび正常皮膚繊維芽細胞(CCD4S−3K)を用いた
酵素抗体法で、HEK細胞に対して陽性でCCD、5−
3Kに対して陰性なウェルを選抜。
2次スクリーニング: 1次スクリーニングで選抜され
た細胞株を2〜3回クローニングし、その培養上清を多
くの癌由来の株化細胞(cell 1ine)や他の正
常組織由来細胞との反応性を検討するとともに、分泌型
或いは細胞膜表覆型抗原のどちらを認識するかを、酵素
抗体法を用いたインヒビジョンテストで同定する。
た細胞株を2〜3回クローニングし、その培養上清を多
くの癌由来の株化細胞(cell 1ine)や他の正
常組織由来細胞との反応性を検討するとともに、分泌型
或いは細胞膜表覆型抗原のどちらを認識するかを、酵素
抗体法を用いたインヒビジョンテストで同定する。
(4)モノクローナル抗体の回収、精製(イ)上記のス
クリーニングによって得られたクローン株を予め0.5
+wl/匹プリスタンを投与した4週令以後のBALB
/Cマウス(雄)の腹腔内へ1.0〜3.Ox 10’
cell/匹移植し、10〜14日後にモノクローナ
ル抗体を高濃度に含む腹水を採取した。
クリーニングによって得られたクローン株を予め0.5
+wl/匹プリスタンを投与した4週令以後のBALB
/Cマウス(雄)の腹腔内へ1.0〜3.Ox 10’
cell/匹移植し、10〜14日後にモノクローナ
ル抗体を高濃度に含む腹水を採取した。
この腹水に0.9%Na CJ液を加え5〜lO倍希釈
した後、硫酸アンモニウムを40%濃度となるように加
え、沈澱画分を分取した。この沈澱画分をなるべく少量
の0.9%NaCJ!液で溶解させた後、0.9%Na
C1液を外液として透析した。
した後、硫酸アンモニウムを40%濃度となるように加
え、沈澱画分を分取した。この沈澱画分をなるべく少量
の0.9%NaCJ!液で溶解させた後、0.9%Na
C1液を外液として透析した。
透析終了後、高速液体クロマトグラフィー(TSK−G
ell G−30005W)を行い、免疫グロブリン画
分を得、精製モノクローナル抗体とした。
ell G−30005W)を行い、免疫グロブリン画
分を得、精製モノクローナル抗体とした。
(ロ)本りローン株は、BSA含無血清培地中でも増殖
させることができる。すなわち、0.5%BSA含無血
清培地(tTc55−9培地)中で増殖させ、培養上清
を集めた。この上清に硫酸アンモニウムを40%濃度と
なるように加え、沈澱画分を分取し、これに0.9%N
aCj!液を加え、溶解させた後、さらに硫酸アンモニ
ウムを40%濃度となるように加え沈澱画分を分取した
。この沈澱画分をなるべく少量の0.9%NaCl1液
で溶解させた後、0.02M生理的リン酸緩衝液を外液
として透析した。透析終了後、この溶液をDEAE−セ
ルロファインカラムに加え、カラムクロマトグラフィー
を行った。
させることができる。すなわち、0.5%BSA含無血
清培地(tTc55−9培地)中で増殖させ、培養上清
を集めた。この上清に硫酸アンモニウムを40%濃度と
なるように加え、沈澱画分を分取し、これに0.9%N
aCj!液を加え、溶解させた後、さらに硫酸アンモニ
ウムを40%濃度となるように加え沈澱画分を分取した
。この沈澱画分をなるべく少量の0.9%NaCl1液
で溶解させた後、0.02M生理的リン酸緩衝液を外液
として透析した。透析終了後、この溶液をDEAE−セ
ルロファインカラムに加え、カラムクロマトグラフィー
を行った。
(5)モノクローナル抗体の特性
かくしてスクリーニングされたクローンの産生ずるモノ
クローナル抗体の性状は、表2及び表3のとおりである
。免疫グロブリンのクラスはオフタロニー法で検定した
。なお、スクリーニングに供した細胞株は以下のように
入手した。
クローナル抗体の性状は、表2及び表3のとおりである
。免疫グロブリンのクラスはオフタロニー法で検定した
。なお、スクリーニングに供した細胞株は以下のように
入手した。
PA−1,HEp−2,KB、 PANC−1,旧AP
aCa−2,C0LO−201、COLO−3200M
、 ZR75−1ノ各細胞は大日本製薬■から、NRC
−12,NBT−2,PC−1,PC−3,PC−9,
PC−10、MKN−28,MKN−45,NATO−
1)1の各細胞は日本免疫生物研究所から、TB−1,
TI!−2,TB−3,TB−4,TI!−5,TE−
6,TE−7,TE−8,7E−9,TE−10,TE
−1)は東北大学から、l5HIKAWA株は大阪大学
から、G−415は筑波大学から、PAは近畿大学から
入手した。
aCa−2,C0LO−201、COLO−3200M
、 ZR75−1ノ各細胞は大日本製薬■から、NRC
−12,NBT−2,PC−1,PC−3,PC−9,
PC−10、MKN−28,MKN−45,NATO−
1)1の各細胞は日本免疫生物研究所から、TB−1,
TI!−2,TB−3,TB−4,TI!−5,TE−
6,TE−7,TE−8,7E−9,TE−10,TE
−1)は東北大学から、l5HIKAWA株は大阪大学
から、G−415は筑波大学から、PAは近畿大学から
入手した。
以上の癌細胞株はいずれも10%FC5(Filtro
n)、2mMのし一グルタミン、1mMのピルビン酸ナ
トリウム、1001)/mlのペニシリン、1)00p
/−のストレプトマイシンを含むRPMI−1640培
地で継代培養した。
n)、2mMのし一グルタミン、1mMのピルビン酸ナ
トリウム、1001)/mlのペニシリン、1)00p
/−のストレプトマイシンを含むRPMI−1640培
地で継代培養した。
Flon−2000,Flow−1)000,CCD+
5−Co、 CCD4s−3K。
5−Co、 CCD4s−3K。
WISI(、FLの各細胞は大日本製薬−から入手した
。
。
1)KG、 NK−3は■ミドリ十字のものである。
以上の細胞はいずれも10%F CS (Filtro
n)、100Iυ/afのペニシリン、1)00P/−
のストレプトマイシンを含むMEM培地で継代培養した
。
n)、100Iυ/afのペニシリン、1)00P/−
のストレプトマイシンを含むMEM培地で継代培養した
。
マウスミエローマP3U1株は大日本製薬から入手した
。この細胞は10%馬血清(Flow)、2mMのし一
グルタミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、1001
0/−のペニシリン、1)00P/−のストレプトマイ
シンを含むD−MEM培地で継代培養した。
。この細胞は10%馬血清(Flow)、2mMのし一
グルタミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、1001
0/−のペニシリン、1)00P/−のストレプトマイ
シンを含むD−MEM培地で継代培養した。
なお、本発明で用いた酵素抗体法は、ケネット(Ken
nett)らの方法〔モノクローナル アンチボディー
(ブレニウム プレス)ニューヨーク ロンドン、 3
76、 (1980))に準じて細胞をそのまま利用す
るエリザ(ELIS^)法(エンザイム リンクド イ
ムノソルベント アッセイ(1!nzyme Link
ed1+*munosorbent As5ay))
(以下、CELIS^と略す)である。
nett)らの方法〔モノクローナル アンチボディー
(ブレニウム プレス)ニューヨーク ロンドン、 3
76、 (1980))に準じて細胞をそのまま利用す
るエリザ(ELIS^)法(エンザイム リンクド イ
ムノソルベント アッセイ(1!nzyme Link
ed1+*munosorbent As5ay))
(以下、CELIS^と略す)である。
(以下余白)
表2
(以下余白)
CEL I SA反応性は、+++、++、+は反応陽
性と判定、士は縦隔性と判定される測定検体の程度で示
した。−は陰性を示した。
性と判定、士は縦隔性と判定される測定検体の程度で示
した。−は陰性を示した。
CEL I SA法におけるO D 4 q。値は、−
:O,OS未満 ± : 0.05以上0.1未満 + ’:o、x以上0.4未満 ++:0.4以上0.7未満 ++十:0.7以上 である。
:O,OS未満 ± : 0.05以上0.1未満 + ’:o、x以上0.4未満 ++:0.4以上0.7未満 ++十:0.7以上 である。
(/’7)、 (1g)
Claims (2)
- (1)胆管癌由来株(HEK)を免疫原として作製され
たハイブリドーマの産生する以下の特性を持つモノクロ
ーナル抗体。 [1]Igクラス(サブクラス):IgG、[2]認識
抗原タイプ:分泌型抗原 [3]癌細胞との反応性:少なくとも胃癌(KATO−
III)(MKN−45)(COLO−201)に対して
陽性を示す。 - (2)癌細胞との反応性が、さらに食道癌(TE−3)
(TE−7)(TE−9)、肺癌(PC−3)に対して
陽性を示す特許請求の範囲第(1)項記載のモノクロー
ナル抗体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1114687A JPS63179895A (ja) | 1987-01-20 | 1987-01-20 | モノクロ−ナル抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1114687A JPS63179895A (ja) | 1987-01-20 | 1987-01-20 | モノクロ−ナル抗体 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63179895A true JPS63179895A (ja) | 1988-07-23 |
Family
ID=11769881
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1114687A Pending JPS63179895A (ja) | 1987-01-20 | 1987-01-20 | モノクロ−ナル抗体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63179895A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0285052A2 (en) * | 1987-03-28 | 1988-10-05 | Green Cross Corporation | Monoclonal antibody |
-
1987
- 1987-01-20 JP JP1114687A patent/JPS63179895A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0285052A2 (en) * | 1987-03-28 | 1988-10-05 | Green Cross Corporation | Monoclonal antibody |
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