JPH046358B2 - - Google Patents
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- JPH046358B2 JPH046358B2 JP60008129A JP812985A JPH046358B2 JP H046358 B2 JPH046358 B2 JP H046358B2 JP 60008129 A JP60008129 A JP 60008129A JP 812985 A JP812985 A JP 812985A JP H046358 B2 JPH046358 B2 JP H046358B2
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Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
〔技術分野〕
本発明は、胃低分化型腺癌由来細胞株(MKN
−45)を免疫原として作成されたハイブリドーマ
の産生する特定の特性を持つモノクローナル抗体
に関する。 癌研究の究極の目標は、抗癌、制癌作用を示す
物質の探索と、癌の早期発見、即ち早期診断法の
確立にあるといえる。従来、癌に関して種々の薬
剤、治療法、試薬が開発されているが、これらは
いずれも癌細胞ばかりでなく、正常組織、正常細
胞にも影響を与え、如何に有効な薬剤とはいえ、
その副作用のために使用が著しく制限されている
のが現状である。 免疫反応(抗原−抗体反応)は、非常に特異性
が高いものであるが、従来のポリクローナル抗体
ではいかに吸収操作を繰り返しても、例えばリン
パ球間のサブセツトのような、非常にマイナーな
抗原決定基によつて区別されるものを認識するこ
とは困難であつた。ミルステイン(Milstein)ら
によつて開発されたモノクローナル抗体〔ケーラ
ー、ジーおよびミルステイン、シー:ネーチヤー
(Ko¨hler、G.and Milstein、C.:Nature)256、
495(1975)〕は、この壁を打ち破るものであり、
癌細胞上の癌特異抗原、あるいは癌関連抗原を特
異的に認識するモノクローナル抗体を得ることに
より、正常組織へのダメージを与えずに癌細胞の
みを特異的に排除できるものと期待される。ま
た、モノクローナル抗体を用いた診断薬あるいは
検査試薬は、正常血清成分に対する交叉反応がな
く、感度良く、癌関連抗原、癌特異抗原を検出で
きるものと思われる。 〔発明が解決しようとする問題点〕 本発明は、特定の癌抗原に対して特異的に反応
するモノクローナル抗体を提供するものである。
さらに本発明は、上記特定癌に対する抗原検出用
試薬を提供するものである。 〔問題点を解決するための手段〕 本発明は、胃癌、特に胃癌の細胞膜抗原に対し
て特異的に反応するモノクローナル抗体よりなる
ものである。 本発明のモノクローナル抗体は、いわゆる細胞
融合によつて製造される。すなわち、抗体産生細
胞と骨髄腫細胞との間に、融合ハイブリツドを形
成させ、該ハイブリツドをクローン化し、上記癌
細胞(即ち、上記特性を有する特定抗原)に対し
特異性を示す抗体を産生するクローンを選択する
ことによつて製造される。その操作は、免疫用細
胞として下記細胞を使用する以外は、従来既知の
方法に準ずればよい。 抗体産生細胞は、例えば株化癌細胞より得られ
る抗原によつて免疫させた動物からの脾細胞、リ
ンパ節細胞、B−リンパ球である。株化癌細胞と
しては、胃低分化型腺癌由来の株化癌細胞
(MKN−45)が例示される。 免疫させる動物としてはマウス、ラツト、馬、
ヤギ、ウサギなどが例示される。 抗体産生細胞は、例えば次のようにして製造さ
れる。即ち、胃癌由来細胞株MKN−45(低分化
型腺癌)を超音波処理等で破壊し、遠心分離
(例、10000〜20000G、10〜60分)を行つて細胞
抽出液を得、この上清を分子量10万〜200万の物
質の分離が可能なゲル濾過担体(例、セフアデツ
クス、セフアクリル、セフアロース、バイオゲル
等)を使用して分子篩し、高分子画分と低分子画
分とに分離する。かくして得られた分子量が約70
万〜150万の高分子画分は、例えば完全フロイン
ドアジユバント(Freund Complete Adjuvant)
と混和後、動物の免疫用として使用する。免疫は
動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に約1.5×105
〜108cell相当分/回を週1〜2回、3〜7週間
投与することによつて行われる。最終免疫より約
3〜5日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取す
る。 骨髄腫細胞としては、マウス、ラツト、ヒト等
由来のものが使用される。抗体産生細胞と骨髄細
胞とは同動物由来のものであることが好ましい。 細胞融合は、例えばジー、ケーラー(G.
Ko¨hler)〔ネーチヤー(Nature)256、495
(1975)〕に記載の方法又はこれに準ずる方法によ
つて行われる。この際、30〜50%ポリエチレング
リコール(平均分子量1000〜4000)を用いて30〜
40℃の温度下、約1〜3分間程度反応させること
によつて行われる。 細胞融合によつて得られた細胞はクローニング
に付される。すなわち、当該細胞を、例えばマイ
クロプレート中で培養し、増殖の見られたウエル
の培養上清中の抗体価を、例えば酵素抗体法など
によつて測定し、さらに例えば限界希釈法によつ
てクローニングを行つてクローンを得る。このク
ローンは、例えばあらかじめプリスタンを投与し
たBALB/Cマウスの腹腔内へ移植し、10〜14
日後にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を
採取し、検定する。得られたクローンは、次い
で、目的とするモノクローナル抗体を産生するク
ローンのスクリーニングに付される。スクリーニ
ングは、酵素抗体法などによつて追跡される。選
ばれたクローンの産生するモノクローナル抗体の
回収は、1gGの精製法として従来既知の硫安分画
法、PEG分画法、エタノール分画法、陰イオン
変換体を応用することで、容易に達成される。 〔発明の効果〕 本発明によつて得られたモノクローナル抗体
は、腺癌系に特異的と考えられ、細胞膜表在型抗
原を認識し、かつ正常組織由来培養細胞、赤血
球、白血球及び正常組織とは反応せず、癌特異的
な抗原を認識するものと推測される。すなわち、
本発明からなるモノクローナル抗体は腫瘍のイメ
ージング及び制癌剤とコンジエゲートさせ、ター
ゲテイングセラピイ(targeting therapy)等へ
の臨床応用が期待される。 実施例 (1) 免疫用癌関連抗原の調製: 株化胃癌細胞(MKN−45株)を超音波処理
法で破壊し、遠心分離(15000G、30分)を行
い細胞抽出液を得た。この上清をセフアロース
4Bのカラムを用い、ゲル濾過し、高分子画分
と低分子画とに分離した。 分子量が約70万〜150万の高分子画分を、完
全フロインドアジユバントと混和後、マウスへ
週1回、5週間免疫した。 最終免疫より4日後にマウス脾臓を取り出
し、以下の細胞融合に用いた。 (2) 細胞融合およびクローニング: 上記のマウス脾細胞と、マウスミエローマ
P3U1〔カレント トピカルマイクロバイオロジ
カル イムノロジー(Curr.top.Microbiol.
Immunol.)、81、1(1970)〕とを4:1の割合
で混合し、ケーラー(Ko¨hler)の方法〔イム
ノロジカル メソツド(アカデミツク プレ
ス)、ニユーヨーク(Immunological Method
(Academic Press)、New York)、391、
(1979)〕を一部改変して、42.6%ポリエチレン
グリコール(平均分子量1000)を用いて2分間
反応させることにより細胞融合を行つた。 本細胞を96ウエルマイクロプレートに植え込
み、HAT培地(表1)で19〜14日間培養後、
HT培地(表1)に移行し、さらにフラスコ
(25cm2)に培養できるようになつてからD−
MEM培地(表1)で培養した。増殖の見られ
たウエルの培養上清中の抗体価を酵素抗体法に
より測定し、適切なウエルから限界希釈法によ
り、求めるハイブリドーマのクローニングを行
つた。 すなわち、マイクロタイタープレートにウエ
ル当たり25000個のマウス腹腔浸出細胞を植え
込み、次にD−MEM培地で、10、5、2.5、1
個/0.1mlとなるようにハイブリドーマを希釈
し、これをマイクロタイタープレートに0.1ml
ずつ植え込み培養した。4日後にD−MEM培
地を0.1ml加え、以後4〜7日に1度培地の半
量交換を行つた。培養開始後10〜20日で肉眼で
認められるコロニーが形成され、クローン株を
得た。
−45)を免疫原として作成されたハイブリドーマ
の産生する特定の特性を持つモノクローナル抗体
に関する。 癌研究の究極の目標は、抗癌、制癌作用を示す
物質の探索と、癌の早期発見、即ち早期診断法の
確立にあるといえる。従来、癌に関して種々の薬
剤、治療法、試薬が開発されているが、これらは
いずれも癌細胞ばかりでなく、正常組織、正常細
胞にも影響を与え、如何に有効な薬剤とはいえ、
その副作用のために使用が著しく制限されている
のが現状である。 免疫反応(抗原−抗体反応)は、非常に特異性
が高いものであるが、従来のポリクローナル抗体
ではいかに吸収操作を繰り返しても、例えばリン
パ球間のサブセツトのような、非常にマイナーな
抗原決定基によつて区別されるものを認識するこ
とは困難であつた。ミルステイン(Milstein)ら
によつて開発されたモノクローナル抗体〔ケーラ
ー、ジーおよびミルステイン、シー:ネーチヤー
(Ko¨hler、G.and Milstein、C.:Nature)256、
495(1975)〕は、この壁を打ち破るものであり、
癌細胞上の癌特異抗原、あるいは癌関連抗原を特
異的に認識するモノクローナル抗体を得ることに
より、正常組織へのダメージを与えずに癌細胞の
みを特異的に排除できるものと期待される。ま
た、モノクローナル抗体を用いた診断薬あるいは
検査試薬は、正常血清成分に対する交叉反応がな
く、感度良く、癌関連抗原、癌特異抗原を検出で
きるものと思われる。 〔発明が解決しようとする問題点〕 本発明は、特定の癌抗原に対して特異的に反応
するモノクローナル抗体を提供するものである。
さらに本発明は、上記特定癌に対する抗原検出用
試薬を提供するものである。 〔問題点を解決するための手段〕 本発明は、胃癌、特に胃癌の細胞膜抗原に対し
て特異的に反応するモノクローナル抗体よりなる
ものである。 本発明のモノクローナル抗体は、いわゆる細胞
融合によつて製造される。すなわち、抗体産生細
胞と骨髄腫細胞との間に、融合ハイブリツドを形
成させ、該ハイブリツドをクローン化し、上記癌
細胞(即ち、上記特性を有する特定抗原)に対し
特異性を示す抗体を産生するクローンを選択する
ことによつて製造される。その操作は、免疫用細
胞として下記細胞を使用する以外は、従来既知の
方法に準ずればよい。 抗体産生細胞は、例えば株化癌細胞より得られ
る抗原によつて免疫させた動物からの脾細胞、リ
ンパ節細胞、B−リンパ球である。株化癌細胞と
しては、胃低分化型腺癌由来の株化癌細胞
(MKN−45)が例示される。 免疫させる動物としてはマウス、ラツト、馬、
ヤギ、ウサギなどが例示される。 抗体産生細胞は、例えば次のようにして製造さ
れる。即ち、胃癌由来細胞株MKN−45(低分化
型腺癌)を超音波処理等で破壊し、遠心分離
(例、10000〜20000G、10〜60分)を行つて細胞
抽出液を得、この上清を分子量10万〜200万の物
質の分離が可能なゲル濾過担体(例、セフアデツ
クス、セフアクリル、セフアロース、バイオゲル
等)を使用して分子篩し、高分子画分と低分子画
分とに分離する。かくして得られた分子量が約70
万〜150万の高分子画分は、例えば完全フロイン
ドアジユバント(Freund Complete Adjuvant)
と混和後、動物の免疫用として使用する。免疫は
動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に約1.5×105
〜108cell相当分/回を週1〜2回、3〜7週間
投与することによつて行われる。最終免疫より約
3〜5日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取す
る。 骨髄腫細胞としては、マウス、ラツト、ヒト等
由来のものが使用される。抗体産生細胞と骨髄細
胞とは同動物由来のものであることが好ましい。 細胞融合は、例えばジー、ケーラー(G.
Ko¨hler)〔ネーチヤー(Nature)256、495
(1975)〕に記載の方法又はこれに準ずる方法によ
つて行われる。この際、30〜50%ポリエチレング
リコール(平均分子量1000〜4000)を用いて30〜
40℃の温度下、約1〜3分間程度反応させること
によつて行われる。 細胞融合によつて得られた細胞はクローニング
に付される。すなわち、当該細胞を、例えばマイ
クロプレート中で培養し、増殖の見られたウエル
の培養上清中の抗体価を、例えば酵素抗体法など
によつて測定し、さらに例えば限界希釈法によつ
てクローニングを行つてクローンを得る。このク
ローンは、例えばあらかじめプリスタンを投与し
たBALB/Cマウスの腹腔内へ移植し、10〜14
日後にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を
採取し、検定する。得られたクローンは、次い
で、目的とするモノクローナル抗体を産生するク
ローンのスクリーニングに付される。スクリーニ
ングは、酵素抗体法などによつて追跡される。選
ばれたクローンの産生するモノクローナル抗体の
回収は、1gGの精製法として従来既知の硫安分画
法、PEG分画法、エタノール分画法、陰イオン
変換体を応用することで、容易に達成される。 〔発明の効果〕 本発明によつて得られたモノクローナル抗体
は、腺癌系に特異的と考えられ、細胞膜表在型抗
原を認識し、かつ正常組織由来培養細胞、赤血
球、白血球及び正常組織とは反応せず、癌特異的
な抗原を認識するものと推測される。すなわち、
本発明からなるモノクローナル抗体は腫瘍のイメ
ージング及び制癌剤とコンジエゲートさせ、ター
ゲテイングセラピイ(targeting therapy)等へ
の臨床応用が期待される。 実施例 (1) 免疫用癌関連抗原の調製: 株化胃癌細胞(MKN−45株)を超音波処理
法で破壊し、遠心分離(15000G、30分)を行
い細胞抽出液を得た。この上清をセフアロース
4Bのカラムを用い、ゲル濾過し、高分子画分
と低分子画とに分離した。 分子量が約70万〜150万の高分子画分を、完
全フロインドアジユバントと混和後、マウスへ
週1回、5週間免疫した。 最終免疫より4日後にマウス脾臓を取り出
し、以下の細胞融合に用いた。 (2) 細胞融合およびクローニング: 上記のマウス脾細胞と、マウスミエローマ
P3U1〔カレント トピカルマイクロバイオロジ
カル イムノロジー(Curr.top.Microbiol.
Immunol.)、81、1(1970)〕とを4:1の割合
で混合し、ケーラー(Ko¨hler)の方法〔イム
ノロジカル メソツド(アカデミツク プレ
ス)、ニユーヨーク(Immunological Method
(Academic Press)、New York)、391、
(1979)〕を一部改変して、42.6%ポリエチレン
グリコール(平均分子量1000)を用いて2分間
反応させることにより細胞融合を行つた。 本細胞を96ウエルマイクロプレートに植え込
み、HAT培地(表1)で19〜14日間培養後、
HT培地(表1)に移行し、さらにフラスコ
(25cm2)に培養できるようになつてからD−
MEM培地(表1)で培養した。増殖の見られ
たウエルの培養上清中の抗体価を酵素抗体法に
より測定し、適切なウエルから限界希釈法によ
り、求めるハイブリドーマのクローニングを行
つた。 すなわち、マイクロタイタープレートにウエ
ル当たり25000個のマウス腹腔浸出細胞を植え
込み、次にD−MEM培地で、10、5、2.5、1
個/0.1mlとなるようにハイブリドーマを希釈
し、これをマイクロタイタープレートに0.1ml
ずつ植え込み培養した。4日後にD−MEM培
地を0.1ml加え、以後4〜7日に1度培地の半
量交換を行つた。培養開始後10〜20日で肉眼で
認められるコロニーが形成され、クローン株を
得た。
【表】
(3) スクリーニング法
得られたハイブリドーマについて目的とする
モノクローナル抗体を産生するクローンのスク
リーニングを次のようになつた。 (イ) 方法の説明 以下のようにして酵素抗体法を行つた。 抗原(各種株化癌細胞または部分精製癌関
連抗原または正常細胞をコートしたマイクロ
プレートに検体を加え、37℃で1時間反応さ
せ、洗浄後ペルオキシダーゼ標識抗マウス免
疫マウス免疫グロブリン(IgG+IgA+IgM)
ウサギ抗体を加え、さらに37℃で1時間反応
させた。未反応の標識抗体を洗浄後、O−フ
エニレンジアミン液を加え、室温にて30分間
反応させた後、2M硫酸を加えて反応を停止
させ、490nmの吸光度を測定した。この方法
で各種細胞との反応性を調べた。なお白血球
との交叉反応性はB−ガラクトシダーゼ(B
−Galactosidase)標識抗体を用いた。その
他、ヒト赤血球との交叉反応性は、ヒトA、
B、O型赤血球を混合し、PHA法で検討し
た。癌胎児性抗原(Carcinoembryonic
antigen(CEA)との交叉反応性は、CEA感
作血球を用いPHA法で行つた。 モノクローナル抗体がMKN−45の分泌物
抗原か或いは細胞膜抗原のどちらかを認識し
ているかの検討のために、MKN−45の培養
上清でモノクローナル抗体とMKN−45細胞
そのものとの反応性が阻害されるかどうかを
調べた。 酵素抗体法を用いたインヒビシヨン テス
ト(Inhibition Test)の具体的な方法は、
以下の通りである。即ち、ハイブリドーマの
培養上清を酵素抗体法でタイトレーシヨンを
行い、それより判断して適当な希釈培率を決
める。次にMKN−45培養上清を5〜25培濃
縮したものを原液として1:5、1:52……
1:5n希釈したものを、適当に希釈したハイ
ブリドーマ培養上清にそれぞれ等量加え、1
時間37℃でインキユベーシヨンする。そし
て、通常の酵素抗体法(ターゲツト:MKN
−45)の系でアツセイ(assay)を行つた。 (ロ) スクリーニングの流れ 1次スクリーニング:ターゲツトセル
(MKN−45)及び正常由来細胞
(Flow2000)を用いた酵素抗体法で、MKN
−45に対して陽性でFlow2000に対して陰性
なウエルを選抜。 2次スクリーニング:さらに他の正常由来
細胞株及び赤血球、白血球を用いたアツセイ
系ですべてに陰性のウエルを選抜。 3次スクリーニング:以上で選抜された細
胞株を2〜3回クローニングし、その培養上
清を多くの癌由来のセルラインとの反応性を
検討する〔測定はCELISA法(ア ニユーデ
イメンシヨン イン バイオロジカル アナ
リシス、第376頁、プレナム プレス、ニユ
ーヨーク、ロンドン、1980年:A New
Dimension in Biological Analysis、p.376、
Plenum Press、New York、London、
1980)によつた。〕とともに、分泌型或いは
細胞膜型抗原のどちらかを認識するかを、酵
素抗体法を用いたインヒビシヨン テストで
同定する。 (4) モノクローナル抗体の回収、精製 (イ) 上記のスクリーニングによつて得られたクロ
ーン株を予め0.5ml/匹プリスタンを投与した
4週令以後のBALB/Cマウス(雄)の腹腔
内へ2.0〜3.0×107cell/匹移植し、10〜14日後
にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を採
取した。 この腹水を0.9%NaCl液を加え5〜10倍希釈
した後、硫酸アンモニウムを40%濃度となるよ
うに加え、沈澱画分を分取した。この沈澱画分
をなるべく少量の0.9%NaCl液で溶解させた
後、0.9%NaCl液を外液として透析した。透析
終了後、高速液体クロマトグラフイー(TSK
−Gell G−3000SW)を行い、IgG画分を得、
精製モノクローナル抗体とした。 (ロ) 本クローン株は、BSA含無血清培地中でも
増殖させることができる。すなわち、0.5%
BSA含無血清培地(RITC55−9培地)中で増
殖させ、培養上清を集めた。この上清に硫酸ア
ンモニウムを40%濃度となるように加え、沈澱
画分を分取し、これに0.9%NaCl液を加え、溶
解させた後、さらに硫酸アンモニウムを40%濃
度となるように加え沈澱画分を分取した。この
沈澱画分をなるべく少量の0.9%NaCl液で溶解
させた後、0.02M生理的リン酸緩衝液を外液と
して透析した。透析終了後、この溶液を再び抗
牛胎児血清抗体(ウサギ)を結合したセフアロ
ース4Bカラムに通した後DEAE−セルロフア
インカラムに加え、カラムクロマトグラフイー
を行つた。 DEAE−セルロフアインクロマトグラフイー
の最初のピーク部分を精製モノクローナル抗体
とした。 (5) モノクローナル抗体の特性 かくしてスクリーニングされたクローンの産
生するモノクローナル抗体の性状は、表2及び
表3のとおりである。免疫グロブリンのクラス
はオクタロニー法で検定した。
モノクローナル抗体を産生するクローンのスク
リーニングを次のようになつた。 (イ) 方法の説明 以下のようにして酵素抗体法を行つた。 抗原(各種株化癌細胞または部分精製癌関
連抗原または正常細胞をコートしたマイクロ
プレートに検体を加え、37℃で1時間反応さ
せ、洗浄後ペルオキシダーゼ標識抗マウス免
疫マウス免疫グロブリン(IgG+IgA+IgM)
ウサギ抗体を加え、さらに37℃で1時間反応
させた。未反応の標識抗体を洗浄後、O−フ
エニレンジアミン液を加え、室温にて30分間
反応させた後、2M硫酸を加えて反応を停止
させ、490nmの吸光度を測定した。この方法
で各種細胞との反応性を調べた。なお白血球
との交叉反応性はB−ガラクトシダーゼ(B
−Galactosidase)標識抗体を用いた。その
他、ヒト赤血球との交叉反応性は、ヒトA、
B、O型赤血球を混合し、PHA法で検討し
た。癌胎児性抗原(Carcinoembryonic
antigen(CEA)との交叉反応性は、CEA感
作血球を用いPHA法で行つた。 モノクローナル抗体がMKN−45の分泌物
抗原か或いは細胞膜抗原のどちらかを認識し
ているかの検討のために、MKN−45の培養
上清でモノクローナル抗体とMKN−45細胞
そのものとの反応性が阻害されるかどうかを
調べた。 酵素抗体法を用いたインヒビシヨン テス
ト(Inhibition Test)の具体的な方法は、
以下の通りである。即ち、ハイブリドーマの
培養上清を酵素抗体法でタイトレーシヨンを
行い、それより判断して適当な希釈培率を決
める。次にMKN−45培養上清を5〜25培濃
縮したものを原液として1:5、1:52……
1:5n希釈したものを、適当に希釈したハイ
ブリドーマ培養上清にそれぞれ等量加え、1
時間37℃でインキユベーシヨンする。そし
て、通常の酵素抗体法(ターゲツト:MKN
−45)の系でアツセイ(assay)を行つた。 (ロ) スクリーニングの流れ 1次スクリーニング:ターゲツトセル
(MKN−45)及び正常由来細胞
(Flow2000)を用いた酵素抗体法で、MKN
−45に対して陽性でFlow2000に対して陰性
なウエルを選抜。 2次スクリーニング:さらに他の正常由来
細胞株及び赤血球、白血球を用いたアツセイ
系ですべてに陰性のウエルを選抜。 3次スクリーニング:以上で選抜された細
胞株を2〜3回クローニングし、その培養上
清を多くの癌由来のセルラインとの反応性を
検討する〔測定はCELISA法(ア ニユーデ
イメンシヨン イン バイオロジカル アナ
リシス、第376頁、プレナム プレス、ニユ
ーヨーク、ロンドン、1980年:A New
Dimension in Biological Analysis、p.376、
Plenum Press、New York、London、
1980)によつた。〕とともに、分泌型或いは
細胞膜型抗原のどちらかを認識するかを、酵
素抗体法を用いたインヒビシヨン テストで
同定する。 (4) モノクローナル抗体の回収、精製 (イ) 上記のスクリーニングによつて得られたクロ
ーン株を予め0.5ml/匹プリスタンを投与した
4週令以後のBALB/Cマウス(雄)の腹腔
内へ2.0〜3.0×107cell/匹移植し、10〜14日後
にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を採
取した。 この腹水を0.9%NaCl液を加え5〜10倍希釈
した後、硫酸アンモニウムを40%濃度となるよ
うに加え、沈澱画分を分取した。この沈澱画分
をなるべく少量の0.9%NaCl液で溶解させた
後、0.9%NaCl液を外液として透析した。透析
終了後、高速液体クロマトグラフイー(TSK
−Gell G−3000SW)を行い、IgG画分を得、
精製モノクローナル抗体とした。 (ロ) 本クローン株は、BSA含無血清培地中でも
増殖させることができる。すなわち、0.5%
BSA含無血清培地(RITC55−9培地)中で増
殖させ、培養上清を集めた。この上清に硫酸ア
ンモニウムを40%濃度となるように加え、沈澱
画分を分取し、これに0.9%NaCl液を加え、溶
解させた後、さらに硫酸アンモニウムを40%濃
度となるように加え沈澱画分を分取した。この
沈澱画分をなるべく少量の0.9%NaCl液で溶解
させた後、0.02M生理的リン酸緩衝液を外液と
して透析した。透析終了後、この溶液を再び抗
牛胎児血清抗体(ウサギ)を結合したセフアロ
ース4Bカラムに通した後DEAE−セルロフア
インカラムに加え、カラムクロマトグラフイー
を行つた。 DEAE−セルロフアインクロマトグラフイー
の最初のピーク部分を精製モノクローナル抗体
とした。 (5) モノクローナル抗体の特性 かくしてスクリーニングされたクローンの産
生するモノクローナル抗体の性状は、表2及び
表3のとおりである。免疫グロブリンのクラス
はオクタロニー法で検定した。
【表】
※〓インヒビシヨン テストにおいて、インヒ
ビシヨンがかからなかつた。
ビシヨンがかからなかつた。
【表】
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 胃低分化型腺癌由来細胞株(MKN−45)を
免疫原として作成されたハイブリドーマの産生す
る以下の特性を持つモノクローナル抗体: Igクラス(Light 鎖):IgG1(K) 認識抗原タイプ:細胞表面抗原 癌細胞との反応性:次の癌細胞に対して陽性
を示す。 食道癌(TE−3)、肺癌(PC−3)、胃癌
(MKN−45)、胃癌(KATO−)、肝癌
(HEK)。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP60008129A JPS61167699A (ja) | 1985-01-19 | 1985-01-19 | モノクロ−ナル抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP60008129A JPS61167699A (ja) | 1985-01-19 | 1985-01-19 | モノクロ−ナル抗体 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61167699A JPS61167699A (ja) | 1986-07-29 |
JPH046358B2 true JPH046358B2 (ja) | 1992-02-05 |
Family
ID=11684675
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP60008129A Granted JPS61167699A (ja) | 1985-01-19 | 1985-01-19 | モノクロ−ナル抗体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61167699A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61250000A (ja) * | 1985-04-27 | 1986-11-07 | Green Cross Corp:The | モノクロ−ナル抗体 |
JPS6236398A (ja) * | 1985-08-12 | 1987-02-17 | Green Cross Corp:The | モノクロ−ナル抗体 |
EP0967277A3 (en) * | 1988-09-06 | 2003-10-15 | Xoma Corporation | Production of chimeric mouse-human antibodies with specificity to human tumor antigens |
-
1985
- 1985-01-19 JP JP60008129A patent/JPS61167699A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS61167699A (ja) | 1986-07-29 |
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