JPS63243097A - モノクロ−ナル抗体 - Google Patents
モノクロ−ナル抗体Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は胆管癌由来株(HEK)を免疫原として作製さ
れたハイブリドーマの産生ずる特定の性質を有するモノ
クローナル抗体に関する。
れたハイブリドーマの産生ずる特定の性質を有するモノ
クローナル抗体に関する。
癌研究の究極の目標は、抗癌、制癌作用を示す物質の探
索と、癌の早期発見、即ち早期診断法の確立にあるとい
える。従来、癌に関して種々の薬剤、治療法、試薬が開
発されているが、これらはいずれも癌細胞ばかりでな(
、正常組織、正常細胞にも影響を与え、いかに有効な薬
剤とはいえ、その副作用のために使用が著しく制限され
ているのが現状である。
索と、癌の早期発見、即ち早期診断法の確立にあるとい
える。従来、癌に関して種々の薬剤、治療法、試薬が開
発されているが、これらはいずれも癌細胞ばかりでな(
、正常組織、正常細胞にも影響を与え、いかに有効な薬
剤とはいえ、その副作用のために使用が著しく制限され
ているのが現状である。
免疫反応(抗原−抗体反応)は、非常に特異性が高いも
のであるが、従来のポリクローナル抗体ではいかに吸収
操作を繰り返しても、例えばリンパ球間のサブセットの
ような、非常にマイナーな抗原決定基によって区別され
るものを認識することは困難であった。ミルスティン(
Mi l5tejn) らによって開発されたモノクロ
ーナル抗体〔ケーラー、ジー、およびミルスティン、シ
ー、:ネーチー1−− (Ki;hler、 G、 a
nd旧1stein、 C,: Nature )35
6、 495 (1975))は、この壁を打ち破るも
のであり、癌細胞上の癌特異抗原、あるいは癌関連抗原
をvf異的に認識するモノクローナル抗体を得ることに
より、正常細胞へのダメージを与えずに癌細胞のみを特
異的に排除できるものと期待される。
のであるが、従来のポリクローナル抗体ではいかに吸収
操作を繰り返しても、例えばリンパ球間のサブセットの
ような、非常にマイナーな抗原決定基によって区別され
るものを認識することは困難であった。ミルスティン(
Mi l5tejn) らによって開発されたモノクロ
ーナル抗体〔ケーラー、ジー、およびミルスティン、シ
ー、:ネーチー1−− (Ki;hler、 G、 a
nd旧1stein、 C,: Nature )35
6、 495 (1975))は、この壁を打ち破るも
のであり、癌細胞上の癌特異抗原、あるいは癌関連抗原
をvf異的に認識するモノクローナル抗体を得ることに
より、正常細胞へのダメージを与えずに癌細胞のみを特
異的に排除できるものと期待される。
また、モノクローナル抗体を用いた診断薬あるいは検査
試薬は、正常血清成分に対する交叉反応がなく、感度良
く、癌関連抗原、癌特異抗原を検出できるものと思われ
る。
試薬は、正常血清成分に対する交叉反応がなく、感度良
く、癌関連抗原、癌特異抗原を検出できるものと思われ
る。
本発明の目的は、特定の癌抗原に対して特異的る反応す
るモノクローナル抗体を提供することにある。さらには
、上記特定癌に対する抗原検出用試薬を提供することに
ある。
るモノクローナル抗体を提供することにある。さらには
、上記特定癌に対する抗原検出用試薬を提供することに
ある。
本発明は食道癌、肺癌、胃癌、結腸癌、HU管癌、子宮
内膜癌に対して特異的に反応するモノクローナル抗体よ
りなるものである。
内膜癌に対して特異的に反応するモノクローナル抗体よ
りなるものである。
即ち、本発明のモノクローナル抗体は胆管癌由来株(H
E K )を免疫原として作製されたハイブリドーマの
産生ずる以下の性質を有するモノクローナル抗体である
: (1)Igクラス(サブクラス):IgM(に)■認識
抗原タイプ:分泌型抗原 ■癌細胞との反応性:少なくとも食道癌(TE−1)、
食道癌(TE−2)、食道癌(TE−7)、食道癌(T
E−9)、食道癌(TE−10> 、肺癌(PC−3)
、胃癌(MKN−45) 、胃癌(KATO−1’l
l) 、胆管癌(HEK) 、子宮内膜癌(I SHI
KAWA) 、結腸癌(COLO−201)に対して
陽性を示す。
E K )を免疫原として作製されたハイブリドーマの
産生ずる以下の性質を有するモノクローナル抗体である
: (1)Igクラス(サブクラス):IgM(に)■認識
抗原タイプ:分泌型抗原 ■癌細胞との反応性:少なくとも食道癌(TE−1)、
食道癌(TE−2)、食道癌(TE−7)、食道癌(T
E−9)、食道癌(TE−10> 、肺癌(PC−3)
、胃癌(MKN−45) 、胃癌(KATO−1’l
l) 、胆管癌(HEK) 、子宮内膜癌(I SHI
KAWA) 、結腸癌(COLO−201)に対して
陽性を示す。
本発明のモノクローナル抗体は、■に示したごとき癌細
胞との反応性を有するほか、食道癌(TE−3)、食道
癌(TE−6)、胃癌(MKN−28)、結腸癌(CO
LO−320DM)に対して陽性を示すモノクローナル
抗体、食道癌(TE−5)に対して陽性を示すモノクロ
ーナル抗体お、 よび食道癌(TE−3)、肺癌(
PC−9)、胃癌(NRC−12) 、卵巣奇形腫(P
A−1)に対して陽性を示すモノクローナル抗体の三種
に分類される。
胞との反応性を有するほか、食道癌(TE−3)、食道
癌(TE−6)、胃癌(MKN−28)、結腸癌(CO
LO−320DM)に対して陽性を示すモノクローナル
抗体、食道癌(TE−5)に対して陽性を示すモノクロ
ーナル抗体お、 よび食道癌(TE−3)、肺癌(
PC−9)、胃癌(NRC−12) 、卵巣奇形腫(P
A−1)に対して陽性を示すモノクローナル抗体の三種
に分類される。
本発明のモノクローナル抗体は、いわゆる細胞融合によ
って製造される。すなわち、抗体産生細胞と骨髄腫細胞
との間に、融合ハイブリッドを形成させ、該ハイブリッ
ドをクローン化し、上記癌細胞(即ち、上記特性を有す
る特定抗原)に対し特異性を示す抗体を産生ずるクロー
ンを選択することによって製造される。その操作は、免
疫用細胞として下記のものを使用する以外は、従来既知
の方法に準ずればよい。
って製造される。すなわち、抗体産生細胞と骨髄腫細胞
との間に、融合ハイブリッドを形成させ、該ハイブリッ
ドをクローン化し、上記癌細胞(即ち、上記特性を有す
る特定抗原)に対し特異性を示す抗体を産生ずるクロー
ンを選択することによって製造される。その操作は、免
疫用細胞として下記のものを使用する以外は、従来既知
の方法に準ずればよい。
抗体産生細胞は免疫原、例えば株化癌細胞より得られる
抗原によって免疫された動物からの肺細胞、リンパ節細
胞、B−リンパ球である。株化癌細胞としては、胆管癌
由来の株化癌細胞(HE K)が例示される。
抗原によって免疫された動物からの肺細胞、リンパ節細
胞、B−リンパ球である。株化癌細胞としては、胆管癌
由来の株化癌細胞(HE K)が例示される。
この細胞の特徴は、癌胎児性抗原(以下、CEAと呼称
)、特開昭61−44.900号で開示されているモノ
クローナル抗体(以下、KMOIと呼称)と反応する抗
原物質(以下、KMOI抗原と呼称)、特開昭61〜6
3700号で開示されている抗原物質(シアル化ルイス
Xともいう。以下、C3LEX−1抗原と呼称)などの
腫瘍マーカーを産生ずることである。
)、特開昭61−44.900号で開示されているモノ
クローナル抗体(以下、KMOIと呼称)と反応する抗
原物質(以下、KMOI抗原と呼称)、特開昭61〜6
3700号で開示されている抗原物質(シアル化ルイス
Xともいう。以下、C3LEX−1抗原と呼称)などの
腫瘍マーカーを産生ずることである。
当該免疫原の調製方法としては、株化癌細胞の培養株を
用いる方法、切除細胞またはその抽出液を用いる方法、
手術時の切除細胞から新たに樹立した株細胞を用いる方
法等が挙げられる。
用いる方法、切除細胞またはその抽出液を用いる方法、
手術時の切除細胞から新たに樹立した株細胞を用いる方
法等が挙げられる。
胆管癌由来株(HB K)としては、胆管癌由来組織よ
り樹立されたものが好適に使用される。
り樹立されたものが好適に使用される。
免疫される動物としては、例えばマウス、ラット、馬、
ヤギ、ウサギなどが例示される。
ヤギ、ウサギなどが例示される。
本発明の免疫原は、例えば、完全フロインドアジュバン
ト(Freund Complete Adjuvan
tll と混和後、動物の免疫用として使用する。免疫
は動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に約10’〜10
8cell相当分/回を注射することにより行われ、初
回免疫より約1〜4週間毎に2〜5度免疫を行い、さら
に約1〜4ケ月後に最終免疫を行う。最終免疫より約3
〜5日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取する。
ト(Freund Complete Adjuvan
tll と混和後、動物の免疫用として使用する。免疫
は動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に約10’〜10
8cell相当分/回を注射することにより行われ、初
回免疫より約1〜4週間毎に2〜5度免疫を行い、さら
に約1〜4ケ月後に最終免疫を行う。最終免疫より約3
〜5日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取する。
骨髄腫細胞としては、たとえばマウス、ラット、ヒト等
由来のものが使用される。たとえば、マウスミエローマ
P3U1、X63−Ag8−6.5.3などが挙げられ
る。抗体産生細胞と骨髄腫細胞とは同種動物由来のもの
であることが好ましい。
由来のものが使用される。たとえば、マウスミエローマ
P3U1、X63−Ag8−6.5.3などが挙げられ
る。抗体産生細胞と骨髄腫細胞とは同種動物由来のもの
であることが好ましい。
細胞融合は、たとえば、ジー、ガルファ (G。
Ga1fre) Cネーチャー (Nature) 2
66、550 (1977))に記載の方法又はこれに
準する方法によって行われる。この際、30〜50%ポ
リエチレングリコール(平均分子量1 、000〜4
、000)を用いて30〜40℃の温度下、約1〜4週
間毎度反応させることによって行われる。
66、550 (1977))に記載の方法又はこれに
準する方法によって行われる。この際、30〜50%ポ
リエチレングリコール(平均分子量1 、000〜4
、000)を用いて30〜40℃の温度下、約1〜4週
間毎度反応させることによって行われる。
細胞融合によって得られた細胞は目的とするモノクロー
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングに付され
る。即ち、当該細胞を、例えばマイクロプレート中で培
養し、増殖の見られたウェルの培養上清中の抗体価を、
例えば酵素抗体法などによって測定し、適切な抗体を産
生じているウェルを得る。このようなウェルから更に例
えば限界希釈法によってクローニングを行ってクローン
を得る。このクローンは、例えばあらかじめプリスタン
を投与したB A L B / Cマウスの腹腔内へ移
植し、10〜14日後にモノクローナル抗体を高濃度に
含む腹水を採取し、検定する。または、ウシ血清アルブ
ミン(0,1〜1%)含有無血清培地中でも増殖させる
ことができる。即ち、0.5%ウシ血清アルブミン含無
血清培地(たとえば、RITC55−9培地)中で増殖
させ、培養上清を集める。選ばれたクローンの産生ずる
モノクローナル抗体の回収は、免疫グロブリンの精製法
として従来既知の硫安分画法、ポリエチレングリコール
分画法、エタノール分画法、陰イオン変換体を応用する
ことで、容易に達成される。
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングに付され
る。即ち、当該細胞を、例えばマイクロプレート中で培
養し、増殖の見られたウェルの培養上清中の抗体価を、
例えば酵素抗体法などによって測定し、適切な抗体を産
生じているウェルを得る。このようなウェルから更に例
えば限界希釈法によってクローニングを行ってクローン
を得る。このクローンは、例えばあらかじめプリスタン
を投与したB A L B / Cマウスの腹腔内へ移
植し、10〜14日後にモノクローナル抗体を高濃度に
含む腹水を採取し、検定する。または、ウシ血清アルブ
ミン(0,1〜1%)含有無血清培地中でも増殖させる
ことができる。即ち、0.5%ウシ血清アルブミン含無
血清培地(たとえば、RITC55−9培地)中で増殖
させ、培養上清を集める。選ばれたクローンの産生ずる
モノクローナル抗体の回収は、免疫グロブリンの精製法
として従来既知の硫安分画法、ポリエチレングリコール
分画法、エタノール分画法、陰イオン変換体を応用する
ことで、容易に達成される。
本発明によって得られたモノクローナル抗体は、分泌型
抗原を認識し、かつ正常細胞由来培養細胞、赤血球、白
血球および正常組織とは反応せず、癌特異的な抗原を認
識するものと推測される。すなわち、本発明からなるモ
ノクローナル抗体は癌の早期発見、予後の追跡調査に有
用な診断薬として、および腫瘍のイメージングあるいは
制癌剤とコンジュゲートさせ、ターゲツティング療法等
への臨床応用が期待される。
抗原を認識し、かつ正常細胞由来培養細胞、赤血球、白
血球および正常組織とは反応せず、癌特異的な抗原を認
識するものと推測される。すなわち、本発明からなるモ
ノクローナル抗体は癌の早期発見、予後の追跡調査に有
用な診断薬として、および腫瘍のイメージングあるいは
制癌剤とコンジュゲートさせ、ターゲツティング療法等
への臨床応用が期待される。
実施例1
(11免疫原の調製:
(1−4)胆管癌細胞の樹立
神戸大学より供与された手術材料(表1参照)から5X
10X2mm程度のブロック4〜5個を細切した。リン
酸緩衝液で遠心洗浄後、0.05%のコラゲナーゼ(和
光純薬社)、100 U /−のトラジロール(バイエ
ル社)を含むリン酸緩衝液3Qmjに懸濁し、37℃で
1時間振盪した。遠心(1000rpmX5分)後上清
を捨て、沈渣をMEMで一度遠心洗浄し1000 U/
mlのディスパーゼ(三光純薬社)を含む10%のウシ
胎児血清を含むMEM培地30m1に懸濁し、37℃で
1時間振盪した。
10X2mm程度のブロック4〜5個を細切した。リン
酸緩衝液で遠心洗浄後、0.05%のコラゲナーゼ(和
光純薬社)、100 U /−のトラジロール(バイエ
ル社)を含むリン酸緩衝液3Qmjに懸濁し、37℃で
1時間振盪した。遠心(1000rpmX5分)後上清
を捨て、沈渣をMEMで一度遠心洗浄し1000 U/
mlのディスパーゼ(三光純薬社)を含む10%のウシ
胎児血清を含むMEM培地30m1に懸濁し、37℃で
1時間振盪した。
3分間静置することにより上清と沈渣を分け、どちらも
遠心洗浄した後、20%のウシ胎児血清を含むRPMI
−1640培地に懸濁し、培養フラスコへ入れ37℃、
5%COzインキュベーク−中に静置した。1週間〜1
0日に1度培地交換し、上皮性様細胞のコロニーが確認
された後は、1週間に2度培地交換した。8代目からは
ウシ胎児血清を10%に下げて継代した。以後の継代は
10%ウシ胎児血清を含むRPMI−1640培地で行
った。この細胞株(HE Kと命名)の培養上清中には
、CEA感作血球を用いる赤血球擬集抑制試験法(以下
、HAI法と呼称)で256〜512ng/m/のCE
A、、KMO1,−RPHA試薬で、1:256のKM
OI抗原が分泌されていた。特開昭61−63700号
で開示されているモノクローナル抗体(前記シアル化ル
イスXを免疫原として得られる。以下、C3LEx−1
と呼称)−RPHA試薬では1:32の値を示した。ア
ルファフェトプロティン(以下、AFPと呼称1−RP
HA試薬ではAFPは検出されなかった。
遠心洗浄した後、20%のウシ胎児血清を含むRPMI
−1640培地に懸濁し、培養フラスコへ入れ37℃、
5%COzインキュベーク−中に静置した。1週間〜1
0日に1度培地交換し、上皮性様細胞のコロニーが確認
された後は、1週間に2度培地交換した。8代目からは
ウシ胎児血清を10%に下げて継代した。以後の継代は
10%ウシ胎児血清を含むRPMI−1640培地で行
った。この細胞株(HE Kと命名)の培養上清中には
、CEA感作血球を用いる赤血球擬集抑制試験法(以下
、HAI法と呼称)で256〜512ng/m/のCE
A、、KMO1,−RPHA試薬で、1:256のKM
OI抗原が分泌されていた。特開昭61−63700号
で開示されているモノクローナル抗体(前記シアル化ル
イスXを免疫原として得られる。以下、C3LEx−1
と呼称)−RPHA試薬では1:32の値を示した。ア
ルファフェトプロティン(以下、AFPと呼称1−RP
HA試薬ではAFPは検出されなかった。
表1 手術材料の所見
患者 二64才、男性
血液型 :A型 RhD(+)
腫瘍 : 7 X 6 X 7 cm Stage
m病理所見: Cholangiocellular
carcinomaCholangioma/bil
e duct cancer腫瘍マーカー AFP
: 陰性CEA ’ 10.2ng
/ mlβ2 マクログロブリン ° 1
. 8 mg/ mlフェリチン : 167.5
ng/ m1CA19 ・ 9:6200 U
/ml(1−ii )免疫 培養面積150dのフラスコはぼ全面に増殖したHEK
細胞(1,5〜2.0X107個)を抗ヒト白血球マウ
ス抗体と室温で1時間インキュベートした後、B A
L B/C系マウスの腹腔内へ免疫した。10日〜1ケ
月間隔で4回免疫した後、2週目に採血し、血中抗体価
を測定した。さらに3ケ月後、2.0XI07個のHE
K細胞を腹腔内へ免疫した。
m病理所見: Cholangiocellular
carcinomaCholangioma/bil
e duct cancer腫瘍マーカー AFP
: 陰性CEA ’ 10.2ng
/ mlβ2 マクログロブリン ° 1
. 8 mg/ mlフェリチン : 167.5
ng/ m1CA19 ・ 9:6200 U
/ml(1−ii )免疫 培養面積150dのフラスコはぼ全面に増殖したHEK
細胞(1,5〜2.0X107個)を抗ヒト白血球マウ
ス抗体と室温で1時間インキュベートした後、B A
L B/C系マウスの腹腔内へ免疫した。10日〜1ケ
月間隔で4回免疫した後、2週目に採血し、血中抗体価
を測定した。さらに3ケ月後、2.0XI07個のHE
K細胞を腹腔内へ免疫した。
最終免疫より4日後にマウス肺臓を摘出し、以下の細胞
融合に用いた。
融合に用いた。
(2)細胞融合およびクローニング:
上記のマウス肺細胞9.0X107個と、マウスミエロ
ーマP3U1 (カレント トビツク インマイクロ
バイオロジー アンド イムノロジー(Curr、 T
op、 Microb+o1. Immunol、)、
81 H1978))3.9X1(17個とを混合し
、ケーラー(+(3hler)らの方法〔イムノロジカ
ル メソッド(アカデミツク プレス)、ニューヨーク
(LnmunologicalMethod (Aca
demic Press)+ Ne1v York +
+391+(1979) )を一部改変して、45%
ポリエチレングリコール(平均分子i、1,000)を
用いて1分間反応させることにより細胞融合を行った。
ーマP3U1 (カレント トビツク インマイクロ
バイオロジー アンド イムノロジー(Curr、 T
op、 Microb+o1. Immunol、)、
81 H1978))3.9X1(17個とを混合し
、ケーラー(+(3hler)らの方法〔イムノロジカ
ル メソッド(アカデミツク プレス)、ニューヨーク
(LnmunologicalMethod (Aca
demic Press)+ Ne1v York +
+391+(1979) )を一部改変して、45%
ポリエチレングリコール(平均分子i、1,000)を
用いて1分間反応させることにより細胞融合を行った。
処理された細胞を96ウエルマイクロプレートに植え込
み、HAT培地(表2)で9〜14日間培養後、HT培
地(表2)に移行し、更にフラスコ(25cn+)に培
養できるようになってからD−MBM培地(表2)で培
養した。増殖の見られたカエルの培養上滑中の抗体価を
酵素抗体法により測定し、適切なウェルから限界希釈法
により、求めるハイブリドーマのクローニングを行った
。
み、HAT培地(表2)で9〜14日間培養後、HT培
地(表2)に移行し、更にフラスコ(25cn+)に培
養できるようになってからD−MBM培地(表2)で培
養した。増殖の見られたカエルの培養上滑中の抗体価を
酵素抗体法により測定し、適切なウェルから限界希釈法
により、求めるハイブリドーマのクローニングを行った
。
すなわち、マイクロタイタープレートにウェル当たり2
5,000個のマウス腹腔浸出細胞を植え込み、次にD
−MEM培地で、10.5.2.5.1個/ 0.1
m7となるようにハイブリドーマを希釈し、これをマイ
クロタイクープレートにQ、 l mlずつ植え込み培
養した。4日後にD−MEM培地を0.1献加え、以後
4〜7日に1度、培地の半量交換を行った。培養開始後
10〜20日で肉眼で認められるコロニーが形成され、
クローン株を得た。
5,000個のマウス腹腔浸出細胞を植え込み、次にD
−MEM培地で、10.5.2.5.1個/ 0.1
m7となるようにハイブリドーマを希釈し、これをマイ
クロタイクープレートにQ、 l mlずつ植え込み培
養した。4日後にD−MEM培地を0.1献加え、以後
4〜7日に1度、培地の半量交換を行った。培養開始後
10〜20日で肉眼で認められるコロニーが形成され、
クローン株を得た。
表2
(3) スクリーニング法
得られたハイブリドーマについて目的とするモノクロー
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングを次のよ
うに行った。
ナル抗体を産生ずるクローンのスクリーニングを次のよ
うに行った。
(イ)方法の説明
以下のようにして酵素抗体法を行った。
抗原(各種株化癌細胞、部分精製癌関連抗原または正常
細胞)をコートしたマイクロプレートに検体を加え、3
7°Cで1時間反応させ、洗浄後ペルオキシダーゼ標識
抗マウス免疫グロブリン(IgG+IgA+IgM)ウ
サギ抗体を加え、さらに37°Cで1時間反応させた。
細胞)をコートしたマイクロプレートに検体を加え、3
7°Cで1時間反応させ、洗浄後ペルオキシダーゼ標識
抗マウス免疫グロブリン(IgG+IgA+IgM)ウ
サギ抗体を加え、さらに37°Cで1時間反応させた。
未反応の標識抗体を洗浄除去後、0−フェニレンジアミ
ン液を加え、室温にて30分間反応させた後、2M硫酸
を加えて反応を停止させ、490r+mの吸光度を測定
した。
ン液を加え、室温にて30分間反応させた後、2M硫酸
を加えて反応を停止させ、490r+mの吸光度を測定
した。
この方法で各種細胞との反応性を調べた。CEAとの交
叉反応性は、CEA感作血球を用いP HA法で行った
。
叉反応性は、CEA感作血球を用いP HA法で行った
。
KMOI抗原、C3LEX−1抗原に対する抗体は、各
々KMOI抗原、C3LEX−1抗原の存在が確認され
ている癌細胞の培養上清と、KMol−RPHA試薬、
CS L E X −1−RP HA試薬を用いるHA
I法で測定した。すなわち、ハイブリドーマ上清と、適
当に希釈した癌細胞(HEK)培養上清を37℃で1時
間反応させた後、残存する抗原量を各RPHA試薬で測
定した。(表4) モノクローナル抗体がHEKの分泌型抗原かあるいは細
胞膜表作型抗原のどちらを認識しているかの検討のため
に、HEKの培養上清でモノクローナル抗体とHEK細
胞そのものとの反応性が阻害されるかどうかを調べた。
々KMOI抗原、C3LEX−1抗原の存在が確認され
ている癌細胞の培養上清と、KMol−RPHA試薬、
CS L E X −1−RP HA試薬を用いるHA
I法で測定した。すなわち、ハイブリドーマ上清と、適
当に希釈した癌細胞(HEK)培養上清を37℃で1時
間反応させた後、残存する抗原量を各RPHA試薬で測
定した。(表4) モノクローナル抗体がHEKの分泌型抗原かあるいは細
胞膜表作型抗原のどちらを認識しているかの検討のため
に、HEKの培養上清でモノクローナル抗体とHEK細
胞そのものとの反応性が阻害されるかどうかを調べた。
酵素抗体法を用いたインヒビジョン テストの具体的な
方法は、以下の通りである。即ち、ハイブリドーマの培
養上清を酵素抗体法でタイトレージョンを行い、それよ
り判断して適当な希釈倍率を決める。次にHEK培養上
清を5〜25倍濃縮したものを原液として、1:5.1
5” ・・・1:5n希釈したものを適当に希釈した
ハイブリドーマ培養上清にそれぞれ等量加え、1時間、
37℃でインキュベーションする。そして、通常の酵素
抗体法(target : HE K )の系でアッセ
イを行った。
方法は、以下の通りである。即ち、ハイブリドーマの培
養上清を酵素抗体法でタイトレージョンを行い、それよ
り判断して適当な希釈倍率を決める。次にHEK培養上
清を5〜25倍濃縮したものを原液として、1:5.1
5” ・・・1:5n希釈したものを適当に希釈した
ハイブリドーマ培養上清にそれぞれ等量加え、1時間、
37℃でインキュベーションする。そして、通常の酵素
抗体法(target : HE K )の系でアッセ
イを行った。
(ロ)スクリーニングの流れ
1次スクリーニング:ターゲットセル(HEK)および
胎児肺由来線維芽細胞(Flou−2000)を用いた
酵素抗体法で、HE Kに対して陽性でFlow−20
00に対して陰性なウェルを選抜。
胎児肺由来線維芽細胞(Flou−2000)を用いた
酵素抗体法で、HE Kに対して陽性でFlow−20
00に対して陰性なウェルを選抜。
2次スクリーニング: 1次スクリーニングで選抜され
た細胞株を2〜3回クローニングし、その培養上清を多
くの癌由来の株化細胞や他の正常組織由来細胞との反応
性を検討するとともに、分泌型或いは細胞膜表作型抗原
のどちらを認識するかを、酵素抗体法を用いたインヒビ
ジョン テストで同定する。
た細胞株を2〜3回クローニングし、その培養上清を多
くの癌由来の株化細胞や他の正常組織由来細胞との反応
性を検討するとともに、分泌型或いは細胞膜表作型抗原
のどちらを認識するかを、酵素抗体法を用いたインヒビ
ジョン テストで同定する。
その結果、細胞融合時の960ウエル(lウェル当たり
の肺細胞9X10’個)のうち、1次スクリーニングで
62ウエルを選抜した。
の肺細胞9X10’個)のうち、1次スクリーニングで
62ウエルを選抜した。
さらに、2次スクリーニングの結果、53ウエルでHE
Kに対する抗体価が保持されており、KMo1様の抗体
を産生じているものが10ウエル、CEAに対する抗体
を産生じていると思われるものが11ウエルあり、C3
LEX−1様の抗体を産生じていると思われるウェルは
見出されなかった。
Kに対する抗体価が保持されており、KMo1様の抗体
を産生じているものが10ウエル、CEAに対する抗体
を産生じていると思われるものが11ウエルあり、C3
LEX−1様の抗体を産生じていると思われるウェルは
見出されなかった。
(4) モノクローナル抗体の回収、精製上記のスク
リーニングによって得られたクローン株3種を予め0.
5ml/匹プリヌタンを投与した4週令以後のBALB
/Cマウス(t&)の腹腔内へ2.0〜3. OX 1
0’ cell/匹移植し、10〜14日後にモノクロ
ーナル抗体を高濃度に含む腹水を採取した。
リーニングによって得られたクローン株3種を予め0.
5ml/匹プリヌタンを投与した4週令以後のBALB
/Cマウス(t&)の腹腔内へ2.0〜3. OX 1
0’ cell/匹移植し、10〜14日後にモノクロ
ーナル抗体を高濃度に含む腹水を採取した。
この腹水に0.9%Na Cff液を加え5〜10倍希
釈した後、硫酸アンモニウムを40%濃度となるように
加え、沈澱画分を分取した。この沈澱画分をなるべく少
量の0.9%NaCl1液で溶解さセた後、0.9%N
a Cf液を外液として透析した。
釈した後、硫酸アンモニウムを40%濃度となるように
加え、沈澱画分を分取した。この沈澱画分をなるべく少
量の0.9%NaCl1液で溶解さセた後、0.9%N
a Cf液を外液として透析した。
透析終了後、高速液体クロマトグラフィー(TSK−G
ell G−3000SW)を行い、免疫グロブリン画
分を得、精製モノクローナル抗体とした。
ell G−3000SW)を行い、免疫グロブリン画
分を得、精製モノクローナル抗体とした。
(5) モノクローナル抗体の特性
かくしてスクリーニングされたクローンの産生ずるモノ
クローナル抗体の性状は、表3及び表5のとおりである
。免疫グロブリンのクラスはオフクロニー法で検定した
。
クローナル抗体の性状は、表3及び表5のとおりである
。免疫グロブリンのクラスはオフクロニー法で検定した
。
なお、スクリーニングに供した細胞株は以下のように入
手した。
手した。
胆管癌細胞株HE Kは前述済みである。PA−1゜H
t!p−2,’IB、 PANC−1,MTAPaC
a−2,C0LO−201,COLO−320DM、
ZR75−1の各細胞は大日本製薬−から、NPC−1
2,NBT−2,PC−1,PC−3,PC−9,PC
−10,MKN−28゜MKN−45,KATO〜■の
各細胞は日本免疫生物研究所から、TE−1,TE−2
,T[!−3,TE−4,TR−5,TE−6,TE−
7,TE−8,TE−飢TE−10,TE−11は東北
大学から、l5HIK静八株は大阪大学から、G−41
5は筑波大学から、PAは近畿大学から入手した。
t!p−2,’IB、 PANC−1,MTAPaC
a−2,C0LO−201,COLO−320DM、
ZR75−1の各細胞は大日本製薬−から、NPC−1
2,NBT−2,PC−1,PC−3,PC−9,PC
−10,MKN−28゜MKN−45,KATO〜■の
各細胞は日本免疫生物研究所から、TE−1,TE−2
,T[!−3,TE−4,TR−5,TE−6,TE−
7,TE−8,TE−飢TE−10,TE−11は東北
大学から、l5HIK静八株は大阪大学から、G−41
5は筑波大学から、PAは近畿大学から入手した。
以上の癌細胞株はいずれも10%ウシ胎児血清(Fil
tron) 、2 m Mのし一グルタミン、1mMの
ピルビン酸ナトリウム、1001LI/ mlのペニシ
リン、1100p/miのストレプトマイシンを含むR
PMI−1640培地で継代培養した。
tron) 、2 m Mのし一グルタミン、1mMの
ピルビン酸ナトリウム、1001LI/ mlのペニシ
リン、1100p/miのストレプトマイシンを含むR
PMI−1640培地で継代培養した。
Ploll−2000,Flow−11000,CCD
+e−COl cc口、、−3K。
+e−COl cc口、、−3K。
WISH,PLの各細胞は大日本製薬−から入手した。
HKG、 NK−3は■ミトリ十字のものである。
以上の細胞はいずれも10%ウシ胎児血清(Piltr
on)、100 ru/ mlのペニシリン、1100
p/ mlのストレプトマイシンを含むMEM培地で継
代培養した。
on)、100 ru/ mlのペニシリン、1100
p/ mlのストレプトマイシンを含むMEM培地で継
代培養した。
マウスミエローマP3U1株は大日本製薬−から入手し
た。10%馬血清(Plow) 、2mMのし−グルタ
ミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、1001 U/
mlのペニシリン、100pir/n+7のストレプト
マイシンを含むD−MEM培地で継代培養した。
た。10%馬血清(Plow) 、2mMのし−グルタ
ミン、1mMのピルビン酸ナトリウム、1001 U/
mlのペニシリン、100pir/n+7のストレプト
マイシンを含むD−MEM培地で継代培養した。
なお、本発明で用いた酵素抗体法は、ケネソト(Ken
nett) らの方法〔モノクローナル アンチボディ
ー(ブレニウム プレス)ニューヨーク ロンドン、
376、 (1980))に準じて細胞をそのまま利用
するエリザ(ELISA)法〔エンザイム リンクド
イムノソルベント アッセイ(Enzyme Link
edImmunosorbent As5ay)) (
以下、CELISAと略す)である。
nett) らの方法〔モノクローナル アンチボディ
ー(ブレニウム プレス)ニューヨーク ロンドン、
376、 (1980))に準じて細胞をそのまま利用
するエリザ(ELISA)法〔エンザイム リンクド
イムノソルベント アッセイ(Enzyme Link
edImmunosorbent As5ay)) (
以下、CELISAと略す)である。
表3=抗体の性状
表4:腫瘍マーカーとの反応性
+は陽性、−は陰性を表わす
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)胆管癌由来株(HEK)を免疫原として作製され
たハイブリドーマの産生する以下の性質を有するモノク
ローナル抗体 (1)Igクラス(サブクラス):IgM(κ)(2)
認識抗原タイプ:分泌型抗原 (3)癌細胞との反応性:少なくとも食道癌(TE−1
)、食道癌(TE−2)、食道癌(TE−7)、食道癌
(TE−9)、食道癌(TE−10)、肺癌(PC−3
)、胃癌(MKN−45)、胃癌(KATO−III)、
胆管癌(HEK)、子宮内膜癌(ISHIKAWA)、
結腸癌(COLO−201)に対して陽性を示す。 (2)癌細胞との反応性が、さらに食道癌(TE−3)
、食道癌(TE−6)、胃癌(MKN−28)、結腸癌
(COLO−320DM)に対して陽性を示す特許請求
の範囲第(1)項記載のモノクローナル抗体。 (3)癌細胞との反応性が、さらに食道癌(TE−5)
に対して陽性を示す特許請求の範囲第(1)項記載のモ
ノクローナル抗体。 (4)癌細胞との反応性が、さらに食道癌(TE−3)
、肺癌(PC−9)、胃癌(NRC−12)、卵巣奇形
腫(PA−1)に対して陽性を示す特許請求の範囲第(
1)項記載のモノクローナル抗体。
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62074989A JPS63243097A (ja) | 1987-03-28 | 1987-03-28 | モノクロ−ナル抗体 |
EP88104941A EP0285052A3 (en) | 1987-03-28 | 1988-03-26 | Monoclonal antibody |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62074989A JPS63243097A (ja) | 1987-03-28 | 1987-03-28 | モノクロ−ナル抗体 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63243097A true JPS63243097A (ja) | 1988-10-07 |
Family
ID=13563197
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62074989A Pending JPS63243097A (ja) | 1987-03-28 | 1987-03-28 | モノクロ−ナル抗体 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0285052A3 (ja) |
JP (1) | JPS63243097A (ja) |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63179895A (ja) * | 1987-01-20 | 1988-07-23 | Green Cross Corp:The | モノクロ−ナル抗体 |
-
1987
- 1987-03-28 JP JP62074989A patent/JPS63243097A/ja active Pending
-
1988
- 1988-03-26 EP EP88104941A patent/EP0285052A3/en not_active Withdrawn
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0285052A3 (en) | 1990-01-17 |
EP0285052A2 (en) | 1988-10-05 |
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