JPS63126498A - Hdl−フラクションのコレステリンの特異的測定法及び測定試薬 - Google Patents
Hdl−フラクションのコレステリンの特異的測定法及び測定試薬Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明はコレステリンエステラーゼを作用させてコレス
テリンを遊離させ、遊離したコレステリンをコレステリ
ンオキシダーゼとm素でH2O2の形成下に酸化し、H
2O2形成又は酸累消区 費を動力学的測定することによシ、血清のタンパク質の
LDL−フラクションの存在下にHDL −フラクショ
ンのコレステリンを特異的に測定するための方法及び試
薬に関する。
テリンを遊離させ、遊離したコレステリンをコレステリ
ンオキシダーゼとm素でH2O2の形成下に酸化し、H
2O2形成又は酸累消区 費を動力学的測定することによシ、血清のタンパク質の
LDL−フラクションの存在下にHDL −フラクショ
ンのコレステリンを特異的に測定するための方法及び試
薬に関する。
従来技術
血清中の全コレステリン並ひに個々のコレステリンを含
有するりビドフラクションの測定は臨床化学実験室にお
いて著しくN要である。過コレステリン血症及び過グリ
セリド血症はアテローム性動脈硬化症及び心臓硬基の発
生を容易にする。従つ℃、個々の冠状疾患への危険は血
清中のコレステリン及びトリグリセリドを測定すること
によシ把握することができる。爽に、リポタンパク買パ
ターンにおける病的な変化を知ることができれば、より
m実な証明となる。
有するりビドフラクションの測定は臨床化学実験室にお
いて著しくN要である。過コレステリン血症及び過グリ
セリド血症はアテローム性動脈硬化症及び心臓硬基の発
生を容易にする。従つ℃、個々の冠状疾患への危険は血
清中のコレステリン及びトリグリセリドを測定すること
によシ把握することができる。爽に、リポタンパク買パ
ターンにおける病的な変化を知ることができれば、より
m実な証明となる。
全コレステリンに対する個々のりビドフラクションの量
は心臓硬基の危険に関する報告をし、この際1方では非
常に広い臨床的な段階を示し、よシ高い血清コレステリ
ン濃度はよ#)高い心臓硬塞に導びぎ、他方では血fp
tHDLーコレステリンとアテローム性血管変性の#,
次との間の逆の関係がなシ立つ。血清のリポタンパク質
は4つのグループに分けることができる:乳麿脂粒、プ
レーβ−リポタンパク質(超低密度リポタンパク質;
Very low denaizy 1ipoproz
ein 又はVLDLとも呼ばれる)、β−リポタンパ
ク質(低密度リポタンパク質; Low densit
’/ 1ipo−prozein又はLDLとも呼ばれ
る)及びα−リポタンパク質(高密度リポタンパク質;
Hlghdensizy 1ipoprozein又
はHDLとも呼はれる)。
は心臓硬基の危険に関する報告をし、この際1方では非
常に広い臨床的な段階を示し、よシ高い血清コレステリ
ン濃度はよ#)高い心臓硬塞に導びぎ、他方では血fp
tHDLーコレステリンとアテローム性血管変性の#,
次との間の逆の関係がなシ立つ。血清のリポタンパク質
は4つのグループに分けることができる:乳麿脂粒、プ
レーβ−リポタンパク質(超低密度リポタンパク質;
Very low denaizy 1ipoproz
ein 又はVLDLとも呼ばれる)、β−リポタンパ
ク質(低密度リポタンパク質; Low densit
’/ 1ipo−prozein又はLDLとも呼ばれ
る)及びα−リポタンパク質(高密度リポタンパク質;
Hlghdensizy 1ipoprozein又
はHDLとも呼はれる)。
血清全コレステリンの測定に関しては、約15年来、簡
単で、しかも非常に正確な完全酵素分析法があυ、この
分析法は手動によっても又それと同様に良好に自動分析
システムによっても各試料の前調製なしに実施可能であ
り、通常次の反応工程: コレステリン+脂肪酸 Δ4−コレステンー3−オン+H2O2によシ進行する
。生じたH2O2を有利に比色法で、場合によシ動力学
的に測定することができる。
単で、しかも非常に正確な完全酵素分析法があυ、この
分析法は手動によっても又それと同様に良好に自動分析
システムによっても各試料の前調製なしに実施可能であ
り、通常次の反応工程: コレステリン+脂肪酸 Δ4−コレステンー3−オン+H2O2によシ進行する
。生じたH2O2を有利に比色法で、場合によシ動力学
的に測定することができる。
他のコレステリン含有リポタンパク質粒子を分離した後
、血清中のHDL−コレステリンの測定を行なうことは
すでに公知である。このリポタンパク質の分離は、超遠
心分離、電気泳動又は捌々の沈殿法、例えは免疫沈殿法
、燐タンゲス+7酸/Ml”、’y”キストランスルフ
ェート/ Mg2+又はヘパリン/ Mg2+での沈殿
又はポリエチレングリコールでの沈殿によシ行なうこと
ができる。すべてこれらの方法は費用がかかシ多くの工
程及び比較的長い時間を要する。
、血清中のHDL−コレステリンの測定を行なうことは
すでに公知である。このリポタンパク質の分離は、超遠
心分離、電気泳動又は捌々の沈殿法、例えは免疫沈殿法
、燐タンゲス+7酸/Ml”、’y”キストランスルフ
ェート/ Mg2+又はヘパリン/ Mg2+での沈殿
又はポリエチレングリコールでの沈殿によシ行なうこと
ができる。すべてこれらの方法は費用がかかシ多くの工
程及び比較的長い時間を要する。
西ドイツ国特許公開第3208253.3号公報力ら、
LDL−72クシヨンのコレスフ−11’Jlikを直
接測定することが公知である。この測定は一定条件下に
LDL−フラクション中のコレステリン分の反応速度は
その濃度に対して直線的に依存し、かつこOw!得られ
た測定値の動力学的測定の際に反応配合物中のLDL−
コレステリン濃度に対して直接比例するという認識に基
づいている。この方法はLDLの測定のために非常に好
適であるが、HDL一部分の測定はこれKよ)可能では
ない。
LDL−72クシヨンのコレスフ−11’Jlikを直
接測定することが公知である。この測定は一定条件下に
LDL−フラクション中のコレステリン分の反応速度は
その濃度に対して直線的に依存し、かつこOw!得られ
た測定値の動力学的測定の際に反応配合物中のLDL−
コレステリン濃度に対して直接比例するという認識に基
づいている。この方法はLDLの測定のために非常に好
適であるが、HDL一部分の測定はこれKよ)可能では
ない。
発明が解決しようとする問題点
従って、本発明の課超は、血清中のHDI、を簡単な方
法で、しかも1工程で実施可能な方法及び試薬を見い出
すことである。特に、同時にこの方法を用いて全コレス
テリン鷺を測定することができる方法を提供すべきであ
った。
法で、しかも1工程で実施可能な方法及び試薬を見い出
すことである。特に、同時にこの方法を用いて全コレス
テリン鷺を測定することができる方法を提供すべきであ
った。
問題点を解決するための手段
この課粗は、コレステリンエステラーゼを作用させてコ
レステリンを遊離させ、遊離したコレステリンをコレス
テリンオキシダーゼ及び酸素を用いてH2O2の形成下
に酸化し、H2O2−形成又は酸素消費の動力学的測定
を行なうことにより、血清のリポタンパク質■LDL−
フジクションの存在においてHDL−フラクションの;
レステリンを特異的に測定する方法において、該測定を
温度20〜40℃で酸化反応の開始後2分〜15分の範
囲内に所定の時間域で実施し、反応溶液中での測定の間
コレステリンエステラーゼ濃度0.05〜60U/ゴ、
コレステリンエステラーゼ濃度0.1〜50U/1It
l、胆汁酸群の界面活性剤濃度1.0〜20 mmol
/l 、非イオン系界面活性剤濃度0.1〜109/l
及びP)l値5〜9を保持することによ)解決する。
レステリンを遊離させ、遊離したコレステリンをコレス
テリンオキシダーゼ及び酸素を用いてH2O2の形成下
に酸化し、H2O2−形成又は酸素消費の動力学的測定
を行なうことにより、血清のリポタンパク質■LDL−
フジクションの存在においてHDL−フラクションの;
レステリンを特異的に測定する方法において、該測定を
温度20〜40℃で酸化反応の開始後2分〜15分の範
囲内に所定の時間域で実施し、反応溶液中での測定の間
コレステリンエステラーゼ濃度0.05〜60U/ゴ、
コレステリンエステラーゼ濃度0.1〜50U/1It
l、胆汁酸群の界面活性剤濃度1.0〜20 mmol
/l 、非イオン系界面活性剤濃度0.1〜109/l
及びP)l値5〜9を保持することによ)解決する。
好適な界面活性剤の組合わせの存在において、コレステ
リンエステラーゼ及びコレステリンオキシダーゼを用い
る血清リポタンパク質のコレステリンO反応は2相で経
過するということが意外にも確認された。この反応は、
まずLDL −コレステリン濃度(依存するが、HDL
−コレステリン濃度に依存しない速度でM過する。その
先の反応の経過において、反応条件に依存する時点から
、反応速度はHDL−コレステリン磯度に依存する。す
なわち、HDL−フラクショ/の反応は時間的に遅れて
開始する。反応条件の好適な選択において、HDL−反
応金、LDL−コレステリンがすでに十分に反応し℃し
まった時点に観察することができる。こうして、相応し
て選択した時間域内での吸光変化はHDL−コレステリ
ン濃度に比例する。こうして、簡単な方法を用いて、他
のコレステリン含有リビドフラクションの存在において
、HDLを直接測定することが可能となった。
リンエステラーゼ及びコレステリンオキシダーゼを用い
る血清リポタンパク質のコレステリンO反応は2相で経
過するということが意外にも確認された。この反応は、
まずLDL −コレステリン濃度(依存するが、HDL
−コレステリン濃度に依存しない速度でM過する。その
先の反応の経過において、反応条件に依存する時点から
、反応速度はHDL−コレステリン磯度に依存する。す
なわち、HDL−フラクショ/の反応は時間的に遅れて
開始する。反応条件の好適な選択において、HDL−反
応金、LDL−コレステリンがすでに十分に反応し℃し
まった時点に観察することができる。こうして、相応し
て選択した時間域内での吸光変化はHDL−コレステリ
ン濃度に比例する。こうして、簡単な方法を用いて、他
のコレステリン含有リビドフラクションの存在において
、HDLを直接測定することが可能となった。
本発明方法にとってに*なことは、HDL−反応が有利
な時点に行なわれるように反応条件を調節することであ
る。
な時点に行なわれるように反応条件を調節することであ
る。
不発明方法におい℃は、まずコレステリンエステラーゼ
を反応浴液に添加することによりコレステリンの遊離に
作用させる。コレステリンエステラーゼは種々の生物、
例えは微生物又は動物の組織から得られる。微生物由来
コレステリンは、例えばシンイドモナス属薗又はカンジ
ダMidから得られる。しかし、特に好適であるのは膵
臓(例えば牛又は豚の膵臓)から■コレステリンエステ
ラーゼである。反応浴液中のコレステリンエステラーゼ
C)@Rは0.05〜60U/I!Ltである。0.0
5〜10υ/1のコレステリンエステラーゼ濃度が有利
であり、0.05〜11J/ILIが特に有利である。
を反応浴液に添加することによりコレステリンの遊離に
作用させる。コレステリンエステラーゼは種々の生物、
例えは微生物又は動物の組織から得られる。微生物由来
コレステリンは、例えばシンイドモナス属薗又はカンジ
ダMidから得られる。しかし、特に好適であるのは膵
臓(例えば牛又は豚の膵臓)から■コレステリンエステ
ラーゼである。反応浴液中のコレステリンエステラーゼ
C)@Rは0.05〜60U/I!Ltである。0.0
5〜10υ/1のコレステリンエステラーゼ濃度が有利
であり、0.05〜11J/ILIが特に有利である。
測定単位Uはコレステリンエステラーゼに関して次の定
義を基礎にしている=1Uとは37℃で、1分あたシコ
レステリルリル−ト1μmolが反応する酵素量であシ
、この際反応混合物はコレステリンエステラーゼの他に
次の物質を含有している: 燐酸カリウム塩緩衝剤p)17.0 0.2 mol/
A’塩化ナトリウ= 0.15mol/
lコール醸ナトリウム 4 /l/1ナツト
(Thesis)o16 I!/1フェノール
2 g/14−アミノアンチぎり7 0
.3 Vl西洋わさびからのペルオキシダーゼ 20U/紅 ノカルジア・エリスロポリス (Nocardia eryzhropolis)から
のコレステリンオキシダーゼ [1,2U/11コ
レステリルリル−) 0.45971遊離したコ
レステリンを次いでコレステリンオキシダーゼで酸化し
、コレステノン及ヒH2O2にする。コレステリンオキ
シダーゼは同様に種種の生物から得られる。プレビパク
テリクム属(Brevivaczerium )、 ノ
カルジア属(Nocardia ) 又はストレゾト
マイセス属(St、repzomyces ) の菌
から得られるコレステリンオキシダーゼが有利である。
義を基礎にしている=1Uとは37℃で、1分あたシコ
レステリルリル−ト1μmolが反応する酵素量であシ
、この際反応混合物はコレステリンエステラーゼの他に
次の物質を含有している: 燐酸カリウム塩緩衝剤p)17.0 0.2 mol/
A’塩化ナトリウ= 0.15mol/
lコール醸ナトリウム 4 /l/1ナツト
(Thesis)o16 I!/1フェノール
2 g/14−アミノアンチぎり7 0
.3 Vl西洋わさびからのペルオキシダーゼ 20U/紅 ノカルジア・エリスロポリス (Nocardia eryzhropolis)から
のコレステリンオキシダーゼ [1,2U/11コ
レステリルリル−) 0.45971遊離したコ
レステリンを次いでコレステリンオキシダーゼで酸化し
、コレステノン及ヒH2O2にする。コレステリンオキ
シダーゼは同様に種種の生物から得られる。プレビパク
テリクム属(Brevivaczerium )、 ノ
カルジア属(Nocardia ) 又はストレゾト
マイセス属(St、repzomyces ) の菌
から得られるコレステリンオキシダーゼが有利である。
コレステリンオキシダーゼの濃度は0.1〜50U/f
f14である。
f14である。
1〜30U/No@度でコレステリンオキシダーゼを使
用するのが有利であシ、特に5〜25U/dで使用する
のが有利である。
用するのが有利であシ、特に5〜25U/dで使用する
のが有利である。
コレステリンオキシダーゼに関する測定単位υは矢のよ
うな定義を基礎としている;1Uは1分あ庭925℃で
コレステリン1μmolが反応する#木葉であシ、この
際反応混合物は#素の他に次の物/l[を含有する: 燐酸カリ+7ム塩aH1lEi剤p)17.5 0.4
7 mol/j!テゾト■ 3 i
/1n−プロパツール 2.59/1コレス
テリン 0.1251171本発明方法
において重要であるのは更に、反応治液中に胆汁酸群か
らの界面活性剤が存在することである。この界面活性剤
は1.0〜20mmol / lの濃度で存在する。有
利には、胆汁酸群の界面活性剤の濃度は1.5〜8mm
ol/l?である。胆汁酸群O界面活性剤は公知である
。コール酸の誘導体を使用するのが有利であシ、この際
コール酸ナトリウムが特に有利である。
うな定義を基礎としている;1Uは1分あ庭925℃で
コレステリン1μmolが反応する#木葉であシ、この
際反応混合物は#素の他に次の物/l[を含有する: 燐酸カリ+7ム塩aH1lEi剤p)17.5 0.4
7 mol/j!テゾト■ 3 i
/1n−プロパツール 2.59/1コレス
テリン 0.1251171本発明方法
において重要であるのは更に、反応治液中に胆汁酸群か
らの界面活性剤が存在することである。この界面活性剤
は1.0〜20mmol / lの濃度で存在する。有
利には、胆汁酸群の界面活性剤の濃度は1.5〜8mm
ol/l?である。胆汁酸群O界面活性剤は公知である
。コール酸の誘導体を使用するのが有利であシ、この際
コール酸ナトリウムが特に有利である。
反応溶液中には更に非イオン系界面活性剤が存在する。
この非イオン系界面活性剤の濃度は0.1〜109/l
、有利に0.4〜4g/!である。非イオン系界面活性
剤としては、有利にポリエチレンオキシド基を含有する
界面活性剤を使用する。同様に糖ペースの界面活性剤が
好適である。非イオン系界面活性剤の例はアルキル−又
はアルアルキル−ポリエチレンオキシドエーテル、例え
drs−ドデシルポリエチレングリコールエーテル、イ
ソートリデカノールポリエチレンオヤシドエーテル及び
インーオクチルフエノールポリエチレンオキシドエーテ
ルである。
、有利に0.4〜4g/!である。非イオン系界面活性
剤としては、有利にポリエチレンオキシド基を含有する
界面活性剤を使用する。同様に糖ペースの界面活性剤が
好適である。非イオン系界面活性剤の例はアルキル−又
はアルアルキル−ポリエチレンオキシドエーテル、例え
drs−ドデシルポリエチレングリコールエーテル、イ
ソートリデカノールポリエチレンオヤシドエーテル及び
インーオクチルフエノールポリエチレンオキシドエーテ
ルである。
有利な実施形においては、非イオン系界面活性剤を、オ
キシダーゼの添加後、但し測定よシ1〜14分曲に添加
する。
キシダーゼの添加後、但し測定よシ1〜14分曲に添加
する。
反応溶液の一値は5〜9の範囲にある。必要な一値範囲
の調節のためKはこの範囲で有効な緩衝剤を添加する。
の調節のためKはこの範囲で有効な緩衝剤を添加する。
使用する緩衡剤の種類は重要ではない。トリス/Hロー
緩衝剤及び特に燐酸塩緩衝剤を使用するのが有利である
。
緩衝剤及び特に燐酸塩緩衝剤を使用するのが有利である
。
本発明による方法は20〜40℃の温度範囲で実施され
る。25〜37°Co温度で作業するのが有利である。
る。25〜37°Co温度で作業するのが有利である。
本発明にxiなパラメーターのすべて全保持することに
よ、9、)(DL−フラクションのコレステリンの測定
を、酸化反応開始後2分〜15分の時間範囲で行なう。
よ、9、)(DL−フラクションのコレステリンの測定
を、酸化反応開始後2分〜15分の時間範囲で行なう。
この測定をオキシダーゼ反応の開始後6〜10分の時間
範囲で行なうのが有利である。
範囲で行なうのが有利である。
H2O2形成の測定をあまシ有利でない反応条件及び測
定条件で行なわなければならない場合、測定のために選
択した時間域内でなおLDL−フラクションの残シの反
応が行なわれ、こうしてHDL −72クシヨンの測定
は妨害される。この妨害を回避するために、本発明によ
る方法の更なる実施形において、抗−LDL−抗体の添
加によシこの種の特異性の損失を阻止する。この抗血清
はLDLの反応を早期の時点で停止する。このためには
自体公知の抗−LDL−抗体又は抗−アポリボプロチイ
ン(Apolipoprozein ) −B −の 抗体単独で、又は混合物ち形で使用することができる。
定条件で行なわなければならない場合、測定のために選
択した時間域内でなおLDL−フラクションの残シの反
応が行なわれ、こうしてHDL −72クシヨンの測定
は妨害される。この妨害を回避するために、本発明によ
る方法の更なる実施形において、抗−LDL−抗体の添
加によシこの種の特異性の損失を阻止する。この抗血清
はLDLの反応を早期の時点で停止する。このためには
自体公知の抗−LDL−抗体又は抗−アポリボプロチイ
ン(Apolipoprozein ) −B −の 抗体単独で、又は混合物ち形で使用することができる。
この抗体は有利に10−6〜10−’mmo1/l(Q
濃度で脱脂r−グロブリン又はIgG−調剤として存在
する。
濃度で脱脂r−グロブリン又はIgG−調剤として存在
する。
すでに上記のように、本発明方法においてはLDL −
7ラクシヨン中に含有されるコレステリンの遊離が先ず
行なわれ、こうして測定シグナルははじめLDL−フラ
クションのコレステリン含量に比例する。従つ℃、本発
明による方法を用い一’C11つの試料配合物からLD
L−コレステリンもHDL−コレステリンも測定するこ
とが可能である。反応速度は先ずLDL−依存性であり
、かつ後にHDL−依存性であるので、各々の反応相の
中でLDL−もしくはHDL−依存性吸光度変化のため
のそれぞれ適当な時間域を選択することができる。この
ためには、オキシダーゼ反応の開始後はじめの1分間以
内に、血清■LDL −フラクション中に結合するコレ
ステリ/のだめの尺度として、 H2O2形成を動力学
的に測定する。引き続き、オキシダーゼ反応の開始後2
〜15分の時間域において、血清のHDL−フラクショ
ン中に結合しているコレステリンのための尺度としてH
2O2形成を動力学的に測定する。
7ラクシヨン中に含有されるコレステリンの遊離が先ず
行なわれ、こうして測定シグナルははじめLDL−フラ
クションのコレステリン含量に比例する。従つ℃、本発
明による方法を用い一’C11つの試料配合物からLD
L−コレステリンもHDL−コレステリンも測定するこ
とが可能である。反応速度は先ずLDL−依存性であり
、かつ後にHDL−依存性であるので、各々の反応相の
中でLDL−もしくはHDL−依存性吸光度変化のため
のそれぞれ適当な時間域を選択することができる。この
ためには、オキシダーゼ反応の開始後はじめの1分間以
内に、血清■LDL −フラクション中に結合するコレ
ステリ/のだめの尺度として、 H2O2形成を動力学
的に測定する。引き続き、オキシダーゼ反応の開始後2
〜15分の時間域において、血清のHDL−フラクショ
ン中に結合しているコレステリンのための尺度としてH
2O2形成を動力学的に測定する。
史に、本発明による方法の有利な実施形によれば、HD
L−コレステリンの測定vk第2の反応溶液を添加する
ことによりコレステリンエステラーゼの濃度を高めて、
全コレステリン量の反応を短時間内に完全に行なうこと
が可能である。
L−コレステリンの測定vk第2の反応溶液を添加する
ことによりコレステリンエステラーゼの濃度を高めて、
全コレステリン量の反応を短時間内に完全に行なうこと
が可能である。
こうして試料中のコレステリン全itを測定することが
できる。このためにはHDL−測定が終了するとすぐに
、付加的に、すなわち)(DL−コレステリン測定のた
めに前記した量を越えて、コレステリンエステラーゼ及
び場合によシコレステリンオヤシダーゼ及び/又は界面
活性剤を高濃度で添加することで十分である。
できる。このためにはHDL−測定が終了するとすぐに
、付加的に、すなわち)(DL−コレステリン測定のた
めに前記した量を越えて、コレステリンエステラーゼ及
び場合によシコレステリンオヤシダーゼ及び/又は界面
活性剤を高濃度で添加することで十分である。
全コレステリンの迅速で完全な反応のために好適な試薬
の十分量の添加も公知技術によシ容易に行なうことがで
きる。
の十分量の添加も公知技術によシ容易に行なうことがで
きる。
こうして、本発明方法を用いて、試料中でLDL−フラ
クション、HDL−フラクション並びに全コレステリン
の量を平行して測定することも可能である。
クション、HDL−フラクション並びに全コレステリン
の量を平行して測定することも可能である。
H2O2及びコレステノンが生じるコレステリンオキシ
ダーゼを用いる遊離コレステノン■測定及びこの酸化反
応の反応成分の変化の動力学的測定は、例えば西独特許
公告第2558556号公報から公知である。この除虫
じたH、102 k、専門家がしばしば行なうH2O2
−測定のための比色法を適用して検出するのが有利であ
る。本発明方法に非常に好適である典型的なH2O2−
測定は、ペルオキシダーゼの存在下にフェノール又はフ
ェノール誘導体と4−アミノアンチざリン又はその誘導
体との呈色反応に基づく。この測定法は専門家にとって
は公知なことであプ、より詳細な記載は必要ない。
ダーゼを用いる遊離コレステノン■測定及びこの酸化反
応の反応成分の変化の動力学的測定は、例えば西独特許
公告第2558556号公報から公知である。この除虫
じたH、102 k、専門家がしばしば行なうH2O2
−測定のための比色法を適用して検出するのが有利であ
る。本発明方法に非常に好適である典型的なH2O2−
測定は、ペルオキシダーゼの存在下にフェノール又はフ
ェノール誘導体と4−アミノアンチざリン又はその誘導
体との呈色反応に基づく。この測定法は専門家にとって
は公知なことであプ、より詳細な記載は必要ない。
本発明のもう1つ011題はコレステリンエステラーゼ
、コレステリンオキシダーゼ、胆汁酸詳の界面活性剤、
非イオン系界面活性剤、nm剤−5〜9及びH2O,の
光度定量用システムを含有する、血清のリポタンパク質
のLDL−フラクションの存在においてHDL−72ク
シヨンのコレステリンを特異的に測定するための試薬に
おいて、コレステリンエステラーゼをO,OS〜30U
/1JoII&で、コレステリンオキシダーゼを0.1
〜5 Q U /IJIZ)濃度で、胆汁酸群0界面活
性剤を1.0〜20 m mal l’P’!F’、か
つ非イオン系界面活性剤を0.1〜10.9/lの績度
で、それぞれ試験に使用する希釈に関して含有するHD
L −72クシヨンのコレステリンの%異的測定試薬で
ある。
、コレステリンオキシダーゼ、胆汁酸詳の界面活性剤、
非イオン系界面活性剤、nm剤−5〜9及びH2O,の
光度定量用システムを含有する、血清のリポタンパク質
のLDL−フラクションの存在においてHDL−72ク
シヨンのコレステリンを特異的に測定するための試薬に
おいて、コレステリンエステラーゼをO,OS〜30U
/1JoII&で、コレステリンオキシダーゼを0.1
〜5 Q U /IJIZ)濃度で、胆汁酸群0界面活
性剤を1.0〜20 m mal l’P’!F’、か
つ非イオン系界面活性剤を0.1〜10.9/lの績度
で、それぞれ試験に使用する希釈に関して含有するHD
L −72クシヨンのコレステリンの%異的測定試薬で
ある。
本発明による方法を自動分析装置で行なうためには個々
の反応成分が担持材料上又は担持材料中に含浸されてい
るのがよい。担持材料としては吸収性、膨潤性又は膜形
成性担持材料、例えば試験片のために公知の担持材料、
例えば紙及び類似の7リース材料、例えばティーバック
紙を使用することができる。この際、反応成分は多くの
、接触している担体上に分配され℃いてもよい。
の反応成分が担持材料上又は担持材料中に含浸されてい
るのがよい。担持材料としては吸収性、膨潤性又は膜形
成性担持材料、例えば試験片のために公知の担持材料、
例えば紙及び類似の7リース材料、例えばティーバック
紙を使用することができる。この際、反応成分は多くの
、接触している担体上に分配され℃いてもよい。
有利な実施形において、本発明による試薬は付加的にL
DL及び/又はアポリボプロティンBに対する抗体を含
有する。
DL及び/又はアポリボプロティンBに対する抗体を含
有する。
HDL中に含有されるコレステリンを、他のリポタンパ
ク質7ラクシヨンをあらかじめ分離することなく直接測
定することも可能である。史に、LDL−フラクション
中に含有されるコレステリン及び血清中に含有される全
コレステリンを測定することも可能である。該方法は簡
単に実施することができ、かつ自動化可能である。
ク質7ラクシヨンをあらかじめ分離することなく直接測
定することも可能である。史に、LDL−フラクション
中に含有されるコレステリン及び血清中に含有される全
コレステリンを測定することも可能である。該方法は簡
単に実施することができ、かつ自動化可能である。
実施例
次に実施例及び添付図面につき本発明を更に詳細に説明
する。
する。
例1
LDL−コレステリン含量が同じであfi、HDL−コ
レステリン含量が異なる2種の人血清を異なる割合いで
混合し、一定のLDL−コレステリン含量で、HDL−
コレステリンを上昇量で含有する一連の試料を作る。該
試料名0.02mを次の組成の試薬各2.0紅と共に約
30℃で恒温保持する; 燐酸カリクム緩衝剤、−6,70,1Mトリブロムヒド
ロキシ安息香酸 8.6 mM 4−アミ、tアンチtリン1.6InMコール酸ナトリ
ウム 3mM ? IJエチレンf IJ ” −ル6000 0.1
%テジト[F] 0.1%豚膵臓か
らのコレステリンエステ ラーゼ 1U/酎ノカルゾア属
菌からのコレステリ ンオキシダーゼ 1U/Idペルオキシダ
ーゼ 2.50/d第1図は、546 nm
における吸光増加は先ずHDL−コレステリン濃度にほ
とんど依存せず、しかしながらその後の経過においては
明らかにHDL−コレステリン濃度に依存するというこ
とを示している。こうして最初の1分の間は、吸光度の
上昇はHDL−コレステリン濃度の尺度ではなく(第2
図)、1方第6番目の1分間における吸光度の上昇はH
DL−コレステリン濃度に比例する(第6図)。
レステリン含量が異なる2種の人血清を異なる割合いで
混合し、一定のLDL−コレステリン含量で、HDL−
コレステリンを上昇量で含有する一連の試料を作る。該
試料名0.02mを次の組成の試薬各2.0紅と共に約
30℃で恒温保持する; 燐酸カリクム緩衝剤、−6,70,1Mトリブロムヒド
ロキシ安息香酸 8.6 mM 4−アミ、tアンチtリン1.6InMコール酸ナトリ
ウム 3mM ? IJエチレンf IJ ” −ル6000 0.1
%テジト[F] 0.1%豚膵臓か
らのコレステリンエステ ラーゼ 1U/酎ノカルゾア属
菌からのコレステリ ンオキシダーゼ 1U/Idペルオキシダ
ーゼ 2.50/d第1図は、546 nm
における吸光増加は先ずHDL−コレステリン濃度にほ
とんど依存せず、しかしながらその後の経過においては
明らかにHDL−コレステリン濃度に依存するというこ
とを示している。こうして最初の1分の間は、吸光度の
上昇はHDL−コレステリン濃度の尺度ではなく(第2
図)、1方第6番目の1分間における吸光度の上昇はH
DL−コレステリン濃度に比例する(第6図)。
例2
LDL−コレステリン含量が同じであfi、HDL−コ
レステリン含量が異なる2mC1人血&を異なる割合い
で混合し、一定のLDL−コレステリン含量で、1(D
L−コレステリンを上昇量で含有する一連の試料を作る
。該試料名0.02111Jを次の組成の試薬各2.Q
rnlと共に約60℃で恒温保持する: 燐酸カリクム駿衝剤、pki6.7 0.1Mトリブロ
ムヒドロキシ安息香酸 8.6 mM4−アミノアン
チピリン 1.6mMコール酸ナトリウム
3 mMポポリチレングリコール6000
0.1%テジトo 0.1%豚膵
臓からのコレステリンエステ ラーゼ IU/瓜!ブレビバ
クテリウム属菌からのコ レステリンオキシダーゼ 1U/mAペルオキシ
ダーゼ 2.5U/獣例1におけるように
、ここでも546 nlHにおける吸光度上昇はほとん
どHDL−コレステリン濃度に依存せず、第6番目の1
分間においてはHDL−コレステリン濃度に比例する。
レステリン含量が異なる2mC1人血&を異なる割合い
で混合し、一定のLDL−コレステリン含量で、1(D
L−コレステリンを上昇量で含有する一連の試料を作る
。該試料名0.02111Jを次の組成の試薬各2.Q
rnlと共に約60℃で恒温保持する: 燐酸カリクム駿衝剤、pki6.7 0.1Mトリブロ
ムヒドロキシ安息香酸 8.6 mM4−アミノアン
チピリン 1.6mMコール酸ナトリウム
3 mMポポリチレングリコール6000
0.1%テジトo 0.1%豚膵
臓からのコレステリンエステ ラーゼ IU/瓜!ブレビバ
クテリウム属菌からのコ レステリンオキシダーゼ 1U/mAペルオキシ
ダーゼ 2.5U/獣例1におけるように
、ここでも546 nlHにおける吸光度上昇はほとん
どHDL−コレステリン濃度に依存せず、第6番目の1
分間においてはHDL−コレステリン濃度に比例する。
例3
例1に記載した反応混合物から出発し、次の成分の濃度
を変化させる: テジト[F]、コール酸ナトリウム、コレステリンエス
テラーゼ、コレステリンオキシダーゼ。
を変化させる: テジト[F]、コール酸ナトリウム、コレステリンエス
テラーゼ、コレステリンオキシダーゼ。
例1に記載した実皺を、このように変化させて実施する
。観察されたHDL 碗度に対する依存性を異なる時間
域内に得られる回帰線データの形で次の表中に示す。
。観察されたHDL 碗度に対する依存性を異なる時間
域内に得られる回帰線データの形で次の表中に示す。
例4
反応温合物はシンイドモナス属菌からのコレステリンエ
ステラーゼQ、5U/WLt及びストレゾトーrイセx
lj4菌からのコレステリンオキシr −ゼ2U/ml
を含有しておシ;それ以外は組成は例1と同じである。
ステラーゼQ、5U/WLt及びストレゾトーrイセx
lj4菌からのコレステリンオキシr −ゼ2U/ml
を含有しておシ;それ以外は組成は例1と同じである。
ここでも相応して選択した時間域内でのHDL−コレス
テリン濃度への著しい依存性が観察された;37℃にお
ける恒温保持第4番目の1分間に、例えば第2図もしく
は第3図に相応する評価において回帰直線Y;1.02
x + 1.5■/dJが得られる。同様な結果はカ
ンシダ・シリンドラセ−(Condidacylind
racea )からのコレステリンエステラーゼ1.5
U/aiA及びストレプトマイセスからのコレステリン
−オキシダーゼ2U/ILIjの組合わせからも得られ
る(y=1.138−0.9)。
テリン濃度への著しい依存性が観察された;37℃にお
ける恒温保持第4番目の1分間に、例えば第2図もしく
は第3図に相応する評価において回帰直線Y;1.02
x + 1.5■/dJが得られる。同様な結果はカ
ンシダ・シリンドラセ−(Condidacylind
racea )からのコレステリンエステラーゼ1.5
U/aiA及びストレプトマイセスからのコレステリン
−オキシダーゼ2U/ILIjの組合わせからも得られ
る(y=1.138−0.9)。
例5
例1に記載したように行なうが、ナツト[F]のかわシ
に他の非イオン系界面活性剤を使用する。
に他の非イオン系界面活性剤を使用する。
観察されたHDL−コレステリン濃度への依存性を、種
々の時間域の評価において得られた回帰線データの形で
表にあられした。
々の時間域の評価において得られた回帰線データの形で
表にあられした。
例6
光度測定自動分析装置で、適切に選択した時間域内での
吸光度差を介して人血清中C) HDL −コレステリ
ン含量を調べた。検量線の作成は公知!(DL−コレス
テリン含量の人血清を用いて行なう。試薬は基本的に例
1の試薬に相当するがこの際専門家はコレステリンエス
テラーゼ及び/又はコレステリンオキシダーゼの活性、
コール酸ナトリウム及びナツトの濃度、時間域を変える
ことによシ、もしくは市販の抗−B−抗血清を添加する
ことにより、使用する自動分析装置にテストを合わせる
。例1に対してコレステリンオキシダーゼQ活性eO,
36U/lll1に低下させ、30℃で吸光度上昇を恒
温保持の第7番目の1分間以内に測定する時、例えばす
でに確立L ?、: I(DL−コレステリンのための
燐タングステン酸塩−沈殿法を用いた時と同様な値を達
成することができることを第4図は示している。
吸光度差を介して人血清中C) HDL −コレステリ
ン含量を調べた。検量線の作成は公知!(DL−コレス
テリン含量の人血清を用いて行なう。試薬は基本的に例
1の試薬に相当するがこの際専門家はコレステリンエス
テラーゼ及び/又はコレステリンオキシダーゼの活性、
コール酸ナトリウム及びナツトの濃度、時間域を変える
ことによシ、もしくは市販の抗−B−抗血清を添加する
ことにより、使用する自動分析装置にテストを合わせる
。例1に対してコレステリンオキシダーゼQ活性eO,
36U/lll1に低下させ、30℃で吸光度上昇を恒
温保持の第7番目の1分間以内に測定する時、例えばす
でに確立L ?、: I(DL−コレステリンのための
燐タングステン酸塩−沈殿法を用いた時と同様な値を達
成することができることを第4図は示している。
第5図は、この条件下に、LDLに対する脱脂抗体8
x 10”−6mol / lの添加が方法の一致を更
に改良することを示している。
x 10”−6mol / lの添加が方法の一致を更
に改良することを示している。
回帰直m(標準主要成分分析):
第4図 Y=0.771 !+3.551 (#/an
)第5図 Y=’0.981 +0.034 (TR
9/dl)例7 例6に記載されたと同じように実施する。平行実験にお
いて、光反測定のための時間域と脱脂抗−LDL−抗血
清の添加を相互に独立して変化させた。人血清の集合物
に関して得られたデータを燐タングステン酸(pws)
沈殿法の結果との比較を次の表中に回帰線データの形で
示す。
)第5図 Y=’0.981 +0.034 (TR
9/dl)例7 例6に記載されたと同じように実施する。平行実験にお
いて、光反測定のための時間域と脱脂抗−LDL−抗血
清の添加を相互に独立して変化させた。人血清の集合物
に関して得られたデータを燐タングステン酸(pws)
沈殿法の結果との比較を次の表中に回帰線データの形で
示す。
例8
測定域の好適な選択により、すべての臨床化学におい℃
しばしば使用される測定温度におい”(、HDL−コレ
ステリンのための確立された燐タングステン酸塩沈殿法
の結果との良好な一致が達せられる。回帰線データの形
で次に示した、27人血清の集合物についての一連の方
法比較に関して、本発明による方法の次の実施形を選択
した: 装 置:日立705 測定波長: 505 nm 比較波長: 600 nm 罰飾硼M : HDL−コレステリン含量公知の人血清 試料容ffi:10μ) 試薬容t:0.5N 試薬組成: 燐酸カリクム緩WJ剤p)16.7 0.1Mトリフ
ロムヒドロキシ安息香酸 8.6凸4−アミノアンチ
ビリ/1.6鹿 コール酸ナトリウム 5 mMポポリチレング
リコールMG6000 0.1%ナツト[F](非イオ
ン系界面活性剤)1.5 g/11 豚膵臓からのコレステリン−ニス テ2−ゼ 0.25U/dコレ
ステリンオキシダーゼ 下記ペルオキシダーゼ
2.50/!u
しばしば使用される測定温度におい”(、HDL−コレ
ステリンのための確立された燐タングステン酸塩沈殿法
の結果との良好な一致が達せられる。回帰線データの形
で次に示した、27人血清の集合物についての一連の方
法比較に関して、本発明による方法の次の実施形を選択
した: 装 置:日立705 測定波長: 505 nm 比較波長: 600 nm 罰飾硼M : HDL−コレステリン含量公知の人血清 試料容ffi:10μ) 試薬容t:0.5N 試薬組成: 燐酸カリクム緩WJ剤p)16.7 0.1Mトリフ
ロムヒドロキシ安息香酸 8.6凸4−アミノアンチ
ビリ/1.6鹿 コール酸ナトリウム 5 mMポポリチレング
リコールMG6000 0.1%ナツト[F](非イオ
ン系界面活性剤)1.5 g/11 豚膵臓からのコレステリン−ニス テ2−ゼ 0.25U/dコレ
ステリンオキシダーゼ 下記ペルオキシダーゼ
2.50/!u
第1図は一定のLDL−コレステリン濃度84■/dl
において異なるHDL−コレステリン濃度を有する試料
の反応経過を示すグラフ図であり、曲#1におけるHD
L−コレステリン濃度は65.6 w/al 、曲i!
j12、曲線3、曲線4、曲線5のHDL−コレステリ
ン濃度はそれぞれ56.5■/dJ 、 47.4ダ/
dA! 、 38.3 ’119/dl、29.2■/
dlである。 第2図は時間域Δt、=Q〜1分における第1図を評価
したグラフ図である。 第6図は時間域Δz=5〜6分における第1図を評価し
たグラフ図である。 第4図は本発明によるHDL−コレステリン測定(抗−
Apo−β−抗体の株加なし)と燐タングステン酸沈殿
法(PWS)とを比較したグラフ図である。 第5図は本発明によるHDL−コレステリン鉤定(抗−
Apo−β−抗体8 ・10−’ mol/lの添加)
とPwSとの比較グラフ図である。 FJG、2 FIG、3 理論値ΣIDL−コレステリン量img/dllFIG
、4
において異なるHDL−コレステリン濃度を有する試料
の反応経過を示すグラフ図であり、曲#1におけるHD
L−コレステリン濃度は65.6 w/al 、曲i!
j12、曲線3、曲線4、曲線5のHDL−コレステリ
ン濃度はそれぞれ56.5■/dJ 、 47.4ダ/
dA! 、 38.3 ’119/dl、29.2■/
dlである。 第2図は時間域Δt、=Q〜1分における第1図を評価
したグラフ図である。 第6図は時間域Δz=5〜6分における第1図を評価し
たグラフ図である。 第4図は本発明によるHDL−コレステリン測定(抗−
Apo−β−抗体の株加なし)と燐タングステン酸沈殿
法(PWS)とを比較したグラフ図である。 第5図は本発明によるHDL−コレステリン鉤定(抗−
Apo−β−抗体8 ・10−’ mol/lの添加)
とPwSとの比較グラフ図である。 FJG、2 FIG、3 理論値ΣIDL−コレステリン量img/dllFIG
、4
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、コレステリンエステラーゼを作用させてコレステリ
ンを遊離させ、遊離したコレステリンをコレステリンオ
キシダーゼ及び酸素を用いてH_2O_2の形成下に酸
化し、H_2O_2−形成又は酸素消費の動力学的測定
を行なうことにより、血清のリポタンパク質のLDL−
フラクションの存在においてHDL−フラクションのコ
レステリンを特異的に測定する方法において、該測定を
温度20〜40℃で酸化反応の開始後2分〜15分の範
囲内で所定の時間域で実施し、反応溶液中での測定の間
コレステリンエステラーゼ濃度0.05〜30U/ml
、コレステリンオキシダーゼ濃度0.1〜50U/ml
、胆汁酸群の界面活性剤濃度1.0〜20mmol/l
、非イオン系界面活性剤濃度0.1〜10g/l及びp
H値5〜9を保持することを特徴とするHDL−フラク
ションのコレステリンの特異的測定法。 2、非イオン系界面活性剤をオキシダーゼの添加後で、
かつ測定の1〜14分前に添加する特許請求の範囲第1
項記載の方法。 3、測定をオキシダーゼ反応の開始後3〜10分の範囲
内に実施する特許請求の範囲第1項又は第2項に記載の
方法。 4、コレステリンエステラーゼ濃度を0.05〜10U
/mlに保持する特許請求の範囲第1項又は第2項に記
載の方法。 5、コレステリンオキシダーゼ濃度を1〜30U/ml
に保持する特許請求の範囲第1項又は第2項記載の方法
。 6、胆汁酸群の界面活性剤濃度を1.5〜8mmol/
lに保持する特許請求の範囲第1項又は第2項記載の方
法。 7、非イオン系界面活性剤濃度を0.4〜4g/lに保
持する特許請求の範囲第1項又は第2項記載の方法。 8、温度25〜37℃で測定を行なう特許請求の範囲第
1項から第7項までのいずれか1項記載の方法。 9、胆汁酸群の界面活性剤としてコール酸ナトリウムを
使用する特許請求の範囲第1項から第8項までのいずれ
か1項記載の方法。 10、非イオン系界面活性剤として、ポリエチレンオキ
シド基を有する界面活性剤を使用する特許請求の範囲第
1項から第9項までのいずれか1項記載の方法。 11、膵臓からのコレステリンエステラーゼを使用する
特許請求の範囲第9項記載の方法。 12、抗−LDL−抗体及び/又は抗−アポリポプロテ
インB−抗体の存在下に反応を実施する特許請求の範囲
第1項から第11項までのいずれか1項記載の方法。 13、オキシダーゼ反応の開始後、最初の2分間の範囲
内に付加的にH_2O_2−形成を、血清のLDL−フ
ラクション中で結合するコレステリンに関する尺度とし
て動力学的に測定する特許請求の範囲第1項から第12
項までのいずれか1項記載の方法。 14、HDL−コレステリンの測定後、界面活性剤及び
/又はコレステリンエステラーゼを、試料中に含有され
る全コレステリンがH_2O_2形成下に酸化され、か
つコレステリン全含有量の尺度としての呈色反応の終値
が測定されるような量で添加する特許請求の範囲第1項
から第13項までのいずれか1項記載の方法。 15、コレステリンエステラーゼ、コレステリンオキシ
ダーゼ、胆汁酸群の界面活性剤、非イオン系界面活性剤
、緩衝剤pH5〜9及びH_2O_2の光度定量用シス
テムを含有する、血清のリポタンパク質のLDL−フラ
クションの存在においてHDL−フラクションのコレス
テリンを特異的に測定するための試薬において、コレス
テリンエステラーゼを0.05〜30U/mlの濃度で
、コレステリンオキシダーゼを0.1〜50U/mlの
濃度で、胆汁酸群の界面活性剤を1.0〜20mmol
/lの濃度で、かつ非イオン系界面活性剤を0.1〜1
0g/lの濃度で、それぞれ試験に使用する希釈に関し
て含有するHDL−フラクションのコレステリンの特異
的測定試薬。 16、LDLに対する抗体及び/又はアポリポプロテイ
ンBを含有する特許請求の範囲第15項記載の試薬。 17、薄片状担持材料上又は中に含浸されて存在する特
許請求の範囲第15項又は第16項記載の試薬。 18、担持材料が吸収性、膨潤性又は膜形成性材料であ
る特許請求の範囲第17項記載の試薬。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3636851.2 | 1986-10-29 | ||
DE19863636851 DE3636851A1 (de) | 1986-10-29 | 1986-10-29 | Verfahren und reagenz zur spezifischen bestimmung des cholesterins der hdl-fraktion |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63126498A true JPS63126498A (ja) | 1988-05-30 |
JPH0734760B2 JPH0734760B2 (ja) | 1995-04-19 |
Family
ID=6312758
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62269522A Expired - Lifetime JPH0734760B2 (ja) | 1986-10-29 | 1987-10-27 | Hdl−フラクションのコレステリンの特異的測定法及び測定試薬 |
Country Status (8)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4892815A (ja) |
EP (1) | EP0265933B1 (ja) |
JP (1) | JPH0734760B2 (ja) |
AT (1) | ATE85366T1 (ja) |
AU (1) | AU588143B2 (ja) |
CA (1) | CA1309645C (ja) |
DE (2) | DE3636851A1 (ja) |
FI (1) | FI90882C (ja) |
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WO2014034823A1 (ja) | 2012-08-31 | 2014-03-06 | 協和メデックス株式会社 | 高密度リポ蛋白中のコレステロールの測定方法 |
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