JPS6253148B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、枝つくり酵素の製造方法に関する。
アミロースのような直鎖状グルカンのα−1・
4結合に作用してアミロペクチンまたはグリコー
ゲンのようなα−1・6結合の枝分れ構造を生成
する酵素は、枝つくり酵素(Q−酵素、あるいは
ブランチング エンザイム、EC2.4.1.18)と呼ば
れ古くから知られている。
4結合に作用してアミロペクチンまたはグリコー
ゲンのようなα−1・6結合の枝分れ構造を生成
する酵素は、枝つくり酵素(Q−酵素、あるいは
ブランチング エンザイム、EC2.4.1.18)と呼ば
れ古くから知られている。
この枝つくり酵素は、澱粉やグリコーゲンの合
成に関与する場合が多く、馬鈴薯、イネ種実、ト
ウモロコシ種実などの澱粉合成の活発な組織、グ
リコーゲンを含む動物の組織、大腸菌などの微生
物に存在することが知られている。このうち、馬
鈴薯と大腸菌の酵素は、高純度に精製され、その
作用特異性についてもくわしく検討されている
〔例えば、G.S.Drumond et al.、Eur.J.Biochem.
、Vol.26、168−176(1972年)、C.Boyer et al.
、Biochemistry、Vol.16、3693−3699(1977年)
参照〕。しかしながら、これらの研究は、何れも
生体中での澱粉またはグリコーゲンの生合成、代
謝を明らかにするために行なわれたものである。
成に関与する場合が多く、馬鈴薯、イネ種実、ト
ウモロコシ種実などの澱粉合成の活発な組織、グ
リコーゲンを含む動物の組織、大腸菌などの微生
物に存在することが知られている。このうち、馬
鈴薯と大腸菌の酵素は、高純度に精製され、その
作用特異性についてもくわしく検討されている
〔例えば、G.S.Drumond et al.、Eur.J.Biochem.
、Vol.26、168−176(1972年)、C.Boyer et al.
、Biochemistry、Vol.16、3693−3699(1977年)
参照〕。しかしながら、これらの研究は、何れも
生体中での澱粉またはグリコーゲンの生合成、代
謝を明らかにするために行なわれたものである。
本発明者らは、長年、食品製造への酵素利用の
研究を行つてきた。加工食品、なかでも澱粉質を
含有する食品の場合、澱粉の老化は、保存性の低
下、消化率の低下などをもたらしている。そし
て、澱粉の老化を防止するため食品製造に際して
糖類を添加する方法が経験的に採用されている。
しかしながら、これらの方法では、澱粉の持つ接
着性、粘性などの物性が変化し、賦形力が低下
し、甘味が増大するなどの欠点が生じる。
研究を行つてきた。加工食品、なかでも澱粉質を
含有する食品の場合、澱粉の老化は、保存性の低
下、消化率の低下などをもたらしている。そし
て、澱粉の老化を防止するため食品製造に際して
糖類を添加する方法が経験的に採用されている。
しかしながら、これらの方法では、澱粉の持つ接
着性、粘性などの物性が変化し、賦形力が低下
し、甘味が増大するなどの欠点が生じる。
本発明者らは、澱粉の持つ長所を失うことな
く、澱粉の老化を防止するために枝つくり酵素を
利用することに着目し、その酵素の大量生産を目
ざして微生物を広く検索した。その結果、バチル
ス属に属する細菌バチルス・メガテリウム10−5
株が、多量の枝つくり酵素を産生することを見い
だし、本発明を完成した。
く、澱粉の老化を防止するために枝つくり酵素を
利用することに着目し、その酵素の大量生産を目
ざして微生物を広く検索した。その結果、バチル
ス属に属する細菌バチルス・メガテリウム10−5
株が、多量の枝つくり酵素を産生することを見い
だし、本発明を完成した。
本発明の酵素は、バチルス属に属する細菌によ
つて多量に産生されること、クエン酸またはグル
コース−1−リン酸によつて活性化作用を受けな
い点で、これまでに報告されている枝つくり酵素
とは全く異なつている。
つて多量に産生されること、クエン酸またはグル
コース−1−リン酸によつて活性化作用を受けな
い点で、これまでに報告されている枝つくり酵素
とは全く異なつている。
次に、本発明における枝つくり酵素の諸性質に
ついて述べる。
ついて述べる。
(1) 作 用
本酵素をアミロース(グルコース重合度約
500)に作用させると、還元力はほとんど生成
しないにもかかわらず、ヨウ素呈色はその作用
が進むにつれて漸次減少し、660nmにおける
吸光度が作用前の約10%以下に低下する。
500)に作用させると、還元力はほとんど生成
しないにもかかわらず、ヨウ素呈色はその作用
が進むにつれて漸次減少し、660nmにおける
吸光度が作用前の約10%以下に低下する。
(イ) アミロースからの生成物に、細菌類化型α
−アミラーゼまたは豚膵臓α−アミラーゼを
作用させて、その作用物をペーパークロマト
グラフイーで分析すると、イソマルトシルマ
ルトースおよびさらに高重合度の分枝デキス
トリンを生じる。この結果からα−1・4結
合のアミロースからα−1・6結合を含む生
成物が生じているものと考えられる。
−アミラーゼまたは豚膵臓α−アミラーゼを
作用させて、その作用物をペーパークロマト
グラフイーで分析すると、イソマルトシルマ
ルトースおよびさらに高重合度の分枝デキス
トリンを生じる。この結果からα−1・4結
合のアミロースからα−1・6結合を含む生
成物が生じているものと考えられる。
(ロ) アミロースからの生成物に、イソアミラー
ゼを作用させ、次いで、細菌糖化型α−アミ
ラーゼを作用させて得られる作用物をペーパ
ークロマトグラフイーで分析したが、イソマ
ルトシルマルトースは検出されなかつた。こ
れは、アミロースからの生成物に存在するα
−1・6結合がイソアミラーゼの作用により
分解されるものと考えられる。
ゼを作用させ、次いで、細菌糖化型α−アミ
ラーゼを作用させて得られる作用物をペーパ
ークロマトグラフイーで分析したが、イソマ
ルトシルマルトースは検出されなかつた。こ
れは、アミロースからの生成物に存在するα
−1・6結合がイソアミラーゼの作用により
分解されるものと考えられる。
(ハ) アミロースからの生成物に、イソアミラー
ゼを作用させると、ヨウ素呈色はその作用の
進行とともに漸次増大し、660nmにおける
吸光度が作用前の約1.1〜10倍に増加する。
これは、イソアミラーゼによりα−1・6結
合が切断され、直鎖状デキストリンが生じる
ためと考えられる。
ゼを作用させると、ヨウ素呈色はその作用の
進行とともに漸次増大し、660nmにおける
吸光度が作用前の約1.1〜10倍に増加する。
これは、イソアミラーゼによりα−1・6結
合が切断され、直鎖状デキストリンが生じる
ためと考えられる。
(ニ) アミロースからの生成物に、β−アミラー
ゼを作用させ、その分解率を測定すると、原
料アミロースの場合の約50%に低下した。こ
れは、生成したα−1・6結合によりβ−ア
ミラーゼの分解限度が低下するためと考えら
れる。
ゼを作用させ、その分解率を測定すると、原
料アミロースの場合の約50%に低下した。こ
れは、生成したα−1・6結合によりβ−ア
ミラーゼの分解限度が低下するためと考えら
れる。
(ホ) アミロースからの生成物を、イソアミラー
ゼで分解させ、次いで、その分解物のグルコ
ース平均重合度を末端基定量法(還元力と全
糖量の割合により算出する。)で求めると約
14となり、アミロペクチンのイソアミラーゼ
分解物の場合における約21よりも、グリコー
ゲンのイソアミラーゼ分解物の場合における
約12に近かつた。また、アミロースからの生
成物を、完全メチル化した後、酸分解し、次
いでガスクロマトグラフイーを行うと、生成
物中の分枝鎖長は、グルコース平均重合度約
14と算出される。
ゼで分解させ、次いで、その分解物のグルコ
ース平均重合度を末端基定量法(還元力と全
糖量の割合により算出する。)で求めると約
14となり、アミロペクチンのイソアミラーゼ
分解物の場合における約21よりも、グリコー
ゲンのイソアミラーゼ分解物の場合における
約12に近かつた。また、アミロースからの生
成物を、完全メチル化した後、酸分解し、次
いでガスクロマトグラフイーを行うと、生成
物中の分枝鎖長は、グルコース平均重合度約
14と算出される。
(2) 基質特異性
アミロースのほか、アミロペクチン、澱粉に
も作用する。
も作用する。
また、グルコース平均重合度18の低分子アミ
ロースにも作用する。
ロースにも作用する。
(3) 活性測定法
部分的に精製し、α−アミラーゼを除去した
後の酵素液100μを、0.1%アミロース(PH
7.5、0.05Mリン酸塩緩衝液)100μに加え、
25℃で10分間作用させた後、これにN/300ヨ
ウ素溶液(0.004MKI、0.005N HClを含む)3
mlを加え、660nmにおける吸光度を測定す
る。この条件で1分間に吸光度の1%を減少す
る酵素活性を1単位とする。
後の酵素液100μを、0.1%アミロース(PH
7.5、0.05Mリン酸塩緩衝液)100μに加え、
25℃で10分間作用させた後、これにN/300ヨ
ウ素溶液(0.004MKI、0.005N HClを含む)3
mlを加え、660nmにおける吸光度を測定す
る。この条件で1分間に吸光度の1%を減少す
る酵素活性を1単位とする。
また、アミラーゼが存在する場合でも、例え
ば放線菌の産生するアミラーゼ阻害剤〔S.
Ueda et al.、Agr.Biol.Chem.、Vol.37(9)、
2025〜2030(1973年)〕を用いれば、本酵素は
阻害を受けないので、前記方法により容易に活
性を測定できる。
ば放線菌の産生するアミラーゼ阻害剤〔S.
Ueda et al.、Agr.Biol.Chem.、Vol.37(9)、
2025〜2030(1973年)〕を用いれば、本酵素は
阻害を受けないので、前記方法により容易に活
性を測定できる。
(4) 至適PHと安定PH
PH4〜6は酢酸緩衝液、PH6〜8はリン酸塩
緩衝液、PH8〜10はグリシン−NaOH緩衝液を
用いる。
緩衝液、PH8〜10はグリシン−NaOH緩衝液を
用いる。
至適PHは、前項に述べる活性測定法のうち、
アミロース溶液のPHを変えて行なう。また、安
定PHは、酵素液を各PH緩衝液で25℃、2時間保
つた後、PH7.5に戻し、残存活性を測定する。
アミロース溶液のPHを変えて行なう。また、安
定PHは、酵素液を各PH緩衝液で25℃、2時間保
つた後、PH7.5に戻し、残存活性を測定する。
結果は、第1図に示す如く、本酵素の至適PH
は7.6付近であり、安定PHは6.5〜8.5である。
は7.6付近であり、安定PHは6.5〜8.5である。
(5) 至適温度と温度安定性
至適温度は、前述の活性測定方法のうち、温
度のみを変えて行なう。また、温度安定性は、
酵素溶液をPH7.5で各温度に10分間保つた後、
25℃で残存活性を測定する。
度のみを変えて行なう。また、温度安定性は、
酵素溶液をPH7.5で各温度に10分間保つた後、
25℃で残存活性を測定する。
結果は、第2図に示す如く、本酵素の至適温
度は25℃付近であり、温度安定性は45℃付近ま
でである。
度は25℃付近であり、温度安定性は45℃付近ま
でである。
(6) 阻害、活性化および安定化
亜鉛、水銀またはカドミウムの2.5×10-3M
の存在で阻害される。
の存在で阻害される。
システイン残基に特異的に作用するp−クロ
ロマーキユリ安息香酸の10-5Mの存在で阻害さ
れる。本酵素を活性化する物質については不明
であるが、多くの報告に見られるようなクエン
酸、グルコース−1−リン酸による活性化は見
られない。
ロマーキユリ安息香酸の10-5Mの存在で阻害さ
れる。本酵素を活性化する物質については不明
であるが、多くの報告に見られるようなクエン
酸、グルコース−1−リン酸による活性化は見
られない。
SH還元試薬は、本酵素の安定化に効果があ
り、ジチオトレイトール、2−メルカプトエタ
ノール、還元型グルタチオン、システインの順
に有効である。
り、ジチオトレイトール、2−メルカプトエタ
ノール、還元型グルタチオン、システインの順
に有効である。
また、20%グリセロールの存在下では、耐熱
性が増加する。0.1%牛血清アルブミンも若干
の効果が見られるが、カルシウム、マグネシウ
ムには耐熱性を高める効果は見られない。
性が増加する。0.1%牛血清アルブミンも若干
の効果が見られるが、カルシウム、マグネシウ
ムには耐熱性を高める効果は見られない。
(7) 精製方法
通常の酵素の精製方法と同様に行うことがで
きる。
きる。
(8) 分子量
シユクロース密度勾配超遠心法およびゲル
過法により測定したところ、本酵素の分子量は
70000±20000である。
過法により測定したところ、本酵素の分子量は
70000±20000である。
(9) 結晶構造および元素分析
明らかでない。
(10) 等電点
焦点電気泳動法により測定すると、本酵素の
等電点はPH4.5付近である。
等電点はPH4.5付近である。
(11) デイスク電気泳動
7.5%ポリアクリルアミドゲル(PH9.4)を用
い、実施例1の精製酵素標品を4℃、ゲル1本
当り2.5mAで2時間泳動させると、酵素活性
区分は単一であつて、ブロムフエノールブルー
に対する移動度は約0.19である。
い、実施例1の精製酵素標品を4℃、ゲル1本
当り2.5mAで2時間泳動させると、酵素活性
区分は単一であつて、ブロムフエノールブルー
に対する移動度は約0.19である。
本発明の枝つくり酵素の製造方法に用いられる
細菌は、バチルス属に属し枝つくり酵素産生能を
有す細菌であり、次に述べるバチルス・メガテリ
ウム10−5株は、本発明の目的に有効に使用する
ことができる。
細菌は、バチルス属に属し枝つくり酵素産生能を
有す細菌であり、次に述べるバチルス・メガテリ
ウム10−5株は、本発明の目的に有効に使用する
ことができる。
バチルス・メガテリウム10−5株は、大阪市北
区の土壌から発見、分離したものであり、昭和56
年1月28日に工業技術院微生物工業技術研究所に
寄託申請され、FERM−P No.5859号で受託さ
れた。
区の土壌から発見、分離したものであり、昭和56
年1月28日に工業技術院微生物工業技術研究所に
寄託申請され、FERM−P No.5859号で受託さ
れた。
次に、バチルス・メガテリウム10−5株の菌学
的性質を記載する。
的性質を記載する。
形態学的性質
a 細胞形態
(i) 肉汁寒天斜面培養(28℃、24時間)の場
合平均の大きさは(1.25〜1.5)×(2〜
4)μmであり、両端に丸味を帯びた桿菌
で、多形性は有しない。細胞内に顆粒を有
し、異染顆粒染色法では染まらないが、脂
肪球染法により染まる。ときには、2連も
しくはそれ以上に連らなり、また非常に長
い細胞もみられる。
合平均の大きさは(1.25〜1.5)×(2〜
4)μmであり、両端に丸味を帯びた桿菌
で、多形性は有しない。細胞内に顆粒を有
し、異染顆粒染色法では染まらないが、脂
肪球染法により染まる。ときには、2連も
しくはそれ以上に連らなり、また非常に長
い細胞もみられる。
shadow formの形成もみられる。
(ii) グルコース肉汁寒天斜面培養(28℃、24
時間)の場合 平均の大きさは(1.5〜2.0)×(2.0〜
2.5)μmであり、両端に丸味を帯びた桿
菌で、多形性を有しない。細胞内の顆粒
は、脂肪球染色、フクシン染色により染ま
りやすくなる。普通の細胞は少し短かくな
るが、鎖状細胞は非常に長い細胞が多くな
る。
時間)の場合 平均の大きさは(1.5〜2.0)×(2.0〜
2.5)μmであり、両端に丸味を帯びた桿
菌で、多形性を有しない。細胞内の顆粒
は、脂肪球染色、フクシン染色により染ま
りやすくなる。普通の細胞は少し短かくな
るが、鎖状細胞は非常に長い細胞が多くな
る。
b 運動性、鞭毛
肉汁寒天斜面培地にて、28℃で6時間培養
した場合、第3図の電子顕微鏡写真(×
10000)に示すように、よく運動する。
した場合、第3図の電子顕微鏡写真(×
10000)に示すように、よく運動する。
c 胞 子
(i) 肉汁寒天培地、土壌浸出液寒天培地にお
いて、培養1〜2日の早い時期に形成され
る。
いて、培養1〜2日の早い時期に形成され
る。
(ii) sporangia
sporangiaに、ふくらみはほとんど見ら
れず、胞子は端よりの位置に形成される。
れず、胞子は端よりの位置に形成される。
(iii) 胞子型、大きさ
平均の大きさは(1.0〜1.5)×(1.25〜
2.5)μmの楕円または膵臓体をしてい
る。
2.5)μmの楕円または膵臓体をしてい
る。
d グラム染色
肉汁寒天培地にて、28℃で6時間および24
時間培養した菌は、何れも陽性である。
時間培養した菌は、何れも陽性である。
e 抗酸性
肉汁寒天培地にて、28℃で24時間培養した
菌は、陰性である。
菌は、陰性である。
f カプセル(夾膜)
肉汁寒天培地にて、28℃で18時間培養し、
リン−タングステン酸法にて染色し、電子顕
微鏡観察を行なつた結果、菌体の周りに影を
生じたことにより、カプセルが存在するもの
と判定する。
リン−タングステン酸法にて染色し、電子顕
微鏡観察を行なつた結果、菌体の周りに影を
生じたことにより、カプセルが存在するもの
と判定する。
g 異染顆粒
肉汁寒天培地にて、28℃で24時間培養した
菌は、陰性である。
菌は、陰性である。
h 脂肪球染色
肉汁寒天培地およびグルコース肉汁寒天培
地にて、28℃で24時間培養した菌は、何れも
陽性である。
地にて、28℃で24時間培養した菌は、何れも
陽性である。
培養的性質
a 肉汁寒天平板培養(28℃、5日)
菌の生育は非常に早く、5日後には4〜5
mmのコロニーとなる。コロニーは、不透明な
鈍光を帯びた黄白色の円形で、表面は平滑で
あり台状の隆起をしている。周縁は全縁で内
容は均質である。色素は形成しない。
mmのコロニーとなる。コロニーは、不透明な
鈍光を帯びた黄白色の円形で、表面は平滑で
あり台状の隆起をしている。周縁は全縁で内
容は均質である。色素は形成しない。
b 肉汁寒天斜面培養(28℃、5日)
菌の生育は非常に早く、良好である。コロ
ニーは、半透明であり、脂肪様の湿光をもつ
た平滑な表面で、黄白色をしており、外周は
少しもり上つた偏平状をなし、糸状の生育を
する。
ニーは、半透明であり、脂肪様の湿光をもつ
た平滑な表面で、黄白色をしており、外周は
少しもり上つた偏平状をなし、糸状の生育を
する。
c 肉汁液体培養(28℃、2日)
菌の生育が早く、1日で液体はよく濁り、
粒状の生育もみられる。2日で濁りはほとん
どなくなり、大きな薄片状の沈澱を生じる。
表面にリングを形成しない。色素、ガスを生
成しない。
粒状の生育もみられる。2日で濁りはほとん
どなくなり、大きな薄片状の沈澱を生じる。
表面にリングを形成しない。色素、ガスを生
成しない。
d 肉汁穿刺培養(28℃、5日)
穿刺部を中心とした寒天表面に、コロニー
の形成が見られ、寒天上層部にはせん毛状の
菌の生育が見られる。
の形成が見られ、寒天上層部にはせん毛状の
菌の生育が見られる。
e 肉汁ゼラチン穿刺培養
(i) 20℃、10日、袋状に液化
(ii) 28℃、10日、液化し、冷却しても凝固し
にくくなる。
にくくなる。
(iii) 肉汁ゼラチン寒天平面培養(28℃、5
日)で、広い分解ハローを示す。
日)で、広い分解ハローを示す。
f リトマス ミルク(28℃、14日)
(i) リトマスは青色から赤紫に、ブロムクレ
ゾールパープルは青色からうすい青黄色と
なり、酸の生成はほとんど見られない。凝
固も起きない。
ゾールパープルは青色からうすい青黄色と
なり、酸の生成はほとんど見られない。凝
固も起きない。
(ii) ミルク寒天平面培養(28℃)で、短期間
に広い分解ハローを示す。
に広い分解ハローを示す。
g proteose−peptone acid agarでの生育
菌はよく生育し、黄白色で表面にしわが形
成される。
成される。
h グルコース肉汁寒天斜面での生育
肉汁寒天斜面と同様の生育がみられる。
i チロシン寒天での生育
菌はよく生育し、表面にしわが形成される。
j クエン酸塩寒天での生育
肉汁寒天と同様の生育が見られ、培地はピ
ンク色となり、アルカリ性を示した。
ンク色となり、アルカリ性を示した。
k 馬鈴薯楔子での生育
菌はよく生育し、やわらく粘液性を示し、
水溶液中にも落下する。菌は黄色をしてお
り、表面はしわ状となる。ポテトは腐敗し、
灰白色に変色する。
水溶液中にも落下する。菌は黄色をしてお
り、表面はしわ状となる。ポテトは腐敗し、
灰白色に変色する。
l 大豆寒天での生育
菌の生育は早く、良好である。コロニーは
不透明で、湿光をもつたしわ状の表面で、黄
白色をしており、台状で糸状の生育が見られ
る。
不透明で、湿光をもつたしわ状の表面で、黄
白色をしており、台状で糸状の生育が見られ
る。
m グルコース・アスパラギン寒天での生育
肉汁寒天と同様の生育が見られ、コロニー
は白色をしている。
は白色をしている。
n tomato−yeast milkでの生育
可溶化(peptonize)する。
生理的性質
a 硝酸塩の還元 陽 性
b 脱窒反応 ガス生成なく生育する。
c MR試験 陰 性
d VP反応 陰 性
e インドールの生成 陰 性
f 硫化水素の生成 陽 性
g デンプンの分解 陽 性
h クエン酸の利用 陽 性
i 無機窒素源の利用
アンモニウム塩、硝酸塩ともに利用できる。
j 色素の生成
ミルク寒天培地、馬鈴薯楔子での生育で、
黄色色素を生成する。
黄色色素を生成する。
土壌抽出液を含む胞子形成培地での生育
で、灰白色色素を生成する。
で、灰白色色素を生成する。
k ウレアーゼ 陽 性
l カタラーゼ 陽 性
m 生育の範囲
PH5.5〜9.3で生育し、生育最適PHは7附近
である。また、10〜40℃で生育し、生育最適
温度は30℃附近である。45℃では生育しな
い。
である。また、10〜40℃で生育し、生育最適
温度は30℃附近である。45℃では生育しな
い。
n 酸素に対する態度 好気性
o O−Fテスト(Hugh−Leifson)試験 陰
性 p 糖類からの酸およびガスの生成(28℃、14
日) ソルビトール、ラムノースからは酸を生成
しないが、アラビノース、キシロース、グル
コース、シユクロース、ラクトース、マンニ
トール、グリセロールから酸を生成する。
性 p 糖類からの酸およびガスの生成(28℃、14
日) ソルビトール、ラムノースからは酸を生成
しないが、アラビノース、キシロース、グル
コース、シユクロース、ラクトース、マンニ
トール、グリセロールから酸を生成する。
また、前記の何れの糖類からもガスの生成
は認められない。
は認められない。
q セルロースの分解 陰 性
本菌株は、上述の菌学的性質からバージーズ・
マニユアル・オブ・デタミネイテイブ・バクテリ
オロジー(Bergey´s Mannual of Determinative
Bacteriology)第7版および第8版に基づき、バ
チルス・メガテリウム(Bacillus megaterium)
であると同定した。
マニユアル・オブ・デタミネイテイブ・バクテリ
オロジー(Bergey´s Mannual of Determinative
Bacteriology)第7版および第8版に基づき、バ
チルス・メガテリウム(Bacillus megaterium)
であると同定した。
本発明の枝つくり酵素を製造するための培養
は、細菌の通常の培養方法に準じて液体培養、固
体培養などが行なわれる。液体培養の場合には、
静置培養でもよいが、振とう培養または通気撹拌
培養の方が好ましい。培養に用いられる培地とし
ては、バチルス属に属する細菌が必要とする栄養
源を含有するものであれば、合成培地、半合成培
地、または天然培地を自由に用いることができ
る。特に、本発明の酵素の生産量を増大させるた
めには、シユクロース、アミロース、澱粉、澱粉
部分分解物などの糖を含有する培地を用いること
が好ましい。一般には、PHを中性ないし微アルカ
リ性にした培地に、バチルス属に属する細菌を植
菌し、20〜35℃で、1〜5日間培養する。
は、細菌の通常の培養方法に準じて液体培養、固
体培養などが行なわれる。液体培養の場合には、
静置培養でもよいが、振とう培養または通気撹拌
培養の方が好ましい。培養に用いられる培地とし
ては、バチルス属に属する細菌が必要とする栄養
源を含有するものであれば、合成培地、半合成培
地、または天然培地を自由に用いることができ
る。特に、本発明の酵素の生産量を増大させるた
めには、シユクロース、アミロース、澱粉、澱粉
部分分解物などの糖を含有する培地を用いること
が好ましい。一般には、PHを中性ないし微アルカ
リ性にした培地に、バチルス属に属する細菌を植
菌し、20〜35℃で、1〜5日間培養する。
以上のようにして得た培養物は、そのまま用い
るか、または菌体もしくは上清から粗酵素液さら
には精製酵素液とし、必要に応じて、例えば凍結
乾燥法などによつて粉末酵素を製造して使用す
る。
るか、または菌体もしくは上清から粗酵素液さら
には精製酵素液とし、必要に応じて、例えば凍結
乾燥法などによつて粉末酵素を製造して使用す
る。
このようにして調整した枝つくり酵素は、食品
製造に使用される澱粉質に作用させ、得られる加
工食品の保存性の向上、消化率の向上のみなら
ず、品質の改善に大きく寄与することができる。
製造に使用される澱粉質に作用させ、得られる加
工食品の保存性の向上、消化率の向上のみなら
ず、品質の改善に大きく寄与することができる。
次に、実施例について述べる。
実施例 1
シユクロース2.0w/v%、ポリペプトン
1.0w/v%、肉エキス0.5w/v%、リン酸2カ
リウム0.1w/v%、塩化ナトリウム0.1w/v
%、硫酸マグネシウム0.03w/v%、炭酸カルシ
ウム(別滅菌)0.5w/v%および水からなる培
養液(PH7.0)の15にバチルス・メガテリウム
10−5株FERM−P No.5859を植菌し、28℃で
48時間、通気撹拌培養した。培養物を遠心分離
(3000×g)し、得られた菌体を超音波処理によ
り破砕した後、遠心分離(10000×g)し、上清
(粗酵素液)約1.7を得た。本液には、ml当り約
9.6単位の枝つくり酵素を含有していた。
1.0w/v%、肉エキス0.5w/v%、リン酸2カ
リウム0.1w/v%、塩化ナトリウム0.1w/v
%、硫酸マグネシウム0.03w/v%、炭酸カルシ
ウム(別滅菌)0.5w/v%および水からなる培
養液(PH7.0)の15にバチルス・メガテリウム
10−5株FERM−P No.5859を植菌し、28℃で
48時間、通気撹拌培養した。培養物を遠心分離
(3000×g)し、得られた菌体を超音波処理によ
り破砕した後、遠心分離(10000×g)し、上清
(粗酵素液)約1.7を得た。本液には、ml当り約
9.6単位の枝つくり酵素を含有していた。
本酵素の精製は、硫酸アンモニウムを加え、飽
和度0.3〜0.65の沈澱画分を集め、5mM2−メル
カプトエタノールを含む10mMトリス塩酸緩衝液
(PH7.5)に溶解し、同緩衝液で透析した後、
DEAE−セフアデツクスA−50カラムに吸着さ
せ、塩化ナトリウム濃度を高めた同緩衝液で溶出
させて活性画分を集め、同緩衝液で透析した後、
4−アミノ・ブチル−セフアロース4Bカラムク
ロマトグラフイーで活性画分を集めて行なつた。
和度0.3〜0.65の沈澱画分を集め、5mM2−メル
カプトエタノールを含む10mMトリス塩酸緩衝液
(PH7.5)に溶解し、同緩衝液で透析した後、
DEAE−セフアデツクスA−50カラムに吸着さ
せ、塩化ナトリウム濃度を高めた同緩衝液で溶出
させて活性画分を集め、同緩衝液で透析した後、
4−アミノ・ブチル−セフアロース4Bカラムク
ロマトグラフイーで活性画分を集めて行なつた。
得られた精製酵素は、粗酵素液に対して約2000
倍の比活性を有し、活性収率は約30%であつた。
本精製酵素を、アミロース(平均グルコース重合
度500)に作用させた時のヨウ素呈色の低下およ
びアミロースからの生成物にイソアミラーゼを作
用させた時のヨウ素呈色の増加の様子を第4図に
示す。
倍の比活性を有し、活性収率は約30%であつた。
本精製酵素を、アミロース(平均グルコース重合
度500)に作用させた時のヨウ素呈色の低下およ
びアミロースからの生成物にイソアミラーゼを作
用させた時のヨウ素呈色の増加の様子を第4図に
示す。
第4図から明らかなように、枝つくり酵素の作
用により、660nmにおける吸光度は、作用前の
約10%以下に低下し、またアミロースからの生成
物にイソアミラーゼを作用させることにより、
660nmにおける吸光度は、作用前の約1.1〜10倍
に増加する。
用により、660nmにおける吸光度は、作用前の
約10%以下に低下し、またアミロースからの生成
物にイソアミラーゼを作用させることにより、
660nmにおける吸光度は、作用前の約1.1〜10倍
に増加する。
実施例 2
液化澱粉(D.E.2.0)2.5w/v%、コーンステ
イープリカー0.5w/v%、脱脂大豆0.2w/v
%、酵母エキス0.1w/v%、塩化アンモニウム
0.3w/v%、リン酸2カリウム0.1w/v%、硫
酸マグネシウム・7水塩0.04w/v%、水および
炭酸カルシウム0.5w/v%、(別滅菌)からなる
培養液(PH7.0)の18にバチルス・メガテリウ
ム10−5株FERM−P No.5859を植菌し、35℃
で40時間、通気撹拌培養した。培養物を25℃の嫌
気化に3日間保つて自己消化させた後、この液の
枝つくり酵素活性を、アミラーゼ阻害剤の存在下
で測定したところ、ml当り約18.6単位であつた。
イープリカー0.5w/v%、脱脂大豆0.2w/v
%、酵母エキス0.1w/v%、塩化アンモニウム
0.3w/v%、リン酸2カリウム0.1w/v%、硫
酸マグネシウム・7水塩0.04w/v%、水および
炭酸カルシウム0.5w/v%、(別滅菌)からなる
培養液(PH7.0)の18にバチルス・メガテリウ
ム10−5株FERM−P No.5859を植菌し、35℃
で40時間、通気撹拌培養した。培養物を25℃の嫌
気化に3日間保つて自己消化させた後、この液の
枝つくり酵素活性を、アミラーゼ阻害剤の存在下
で測定したところ、ml当り約18.6単位であつた。
図において、第1図は、PHと相対活性の関係を
示す線図であり、実線が枝つくり酵素の至適PH、
破線がそのPH安定性を示す。第2図は、温度と相
対活性の関係を示す線図であり、実線が枝つくり
酵素の至適温度、破線がその温度安定性を示す。
第3図は、バチルス・メガテリウム10−5株の細
胞を電子顕微鏡で10000倍に拡大した写真であ
る。第4図は、反応時間と相対吸光度の関係を示
す線図であり、実線がアミロースへの枝つくり酵
素の作用、破線が枝つくり酵素による生成物への
イソアミラーゼの作用を示す。
示す線図であり、実線が枝つくり酵素の至適PH、
破線がそのPH安定性を示す。第2図は、温度と相
対活性の関係を示す線図であり、実線が枝つくり
酵素の至適温度、破線がその温度安定性を示す。
第3図は、バチルス・メガテリウム10−5株の細
胞を電子顕微鏡で10000倍に拡大した写真であ
る。第4図は、反応時間と相対吸光度の関係を示
す線図であり、実線がアミロースへの枝つくり酵
素の作用、破線が枝つくり酵素による生成物への
イソアミラーゼの作用を示す。
Claims (1)
- 1 バチルス属に属し枝つくり酵素産生能を有す
る細菌を、栄養培地で培養して枝つくり酵素を生
成せしめ、これを採取することを特徴とする枝つ
くり酵素の製造方法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1734081A JPS57138387A (en) | 1981-02-07 | 1981-02-07 | Preparation of branching enzyme |
US06/336,941 US4454161A (en) | 1981-02-07 | 1982-01-04 | Process for the production of branching enzyme, and a method for improving the qualities of food products therewith |
FR8201863A FR2499588B1 (fr) | 1981-02-07 | 1982-02-05 | Enzyme branchante et production d'aliments ameliores |
GB8203414A GB2095681B (en) | 1981-02-07 | 1982-02-05 | Process for the production of branching enzyme |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1734081A JPS57138387A (en) | 1981-02-07 | 1981-02-07 | Preparation of branching enzyme |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS57138387A JPS57138387A (en) | 1982-08-26 |
JPS6253148B2 true JPS6253148B2 (ja) | 1987-11-09 |
Family
ID=11941318
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1734081A Granted JPS57138387A (en) | 1981-02-07 | 1981-02-07 | Preparation of branching enzyme |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS57138387A (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE59915126D1 (de) * | 1998-10-09 | 2010-03-04 | Bayer Bioscience Gmbh | Nucleinsäuremoleküle codierend ein verzweigungsenzym aus bakterien der gattung neisseria sowie verfahren zur herstellung von alpha-1,6-verzweigten alpha-1,4-glucanen |
WO2006035848A1 (ja) * | 2004-09-30 | 2006-04-06 | Ezaki Glico Co., Ltd. | グリコーゲンの製造方法 |
-
1981
- 1981-02-07 JP JP1734081A patent/JPS57138387A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS57138387A (en) | 1982-08-26 |
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