JPS62126973A - 新規なアミラ−ゼ - Google Patents
新規なアミラ−ゼInfo
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- JPS62126973A JPS62126973A JP26585485A JP26585485A JPS62126973A JP S62126973 A JPS62126973 A JP S62126973A JP 26585485 A JP26585485 A JP 26585485A JP 26585485 A JP26585485 A JP 26585485A JP S62126973 A JPS62126973 A JP S62126973A
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- amylase
- maltose
- enzyme
- starch
- bacillus
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
本発明は、バシルス属細菌による新規なマルトース生成
アミラーゼに関するものである。
アミラーゼに関するものである。
澱粉からマルトースを生成する酵素として、澱粉の作用
様式と生産物の種類により、種々のものが知られている
。β−アミラーゼは、大豆、麦芽、小麦などの植物やバ
シルス属細菌により生産される(アミラーゼシンポジウ
ム、6巻、39頁(1971)、アグリカルチャーバイ
オロジカルケミストリー(Agriculture B
iological Chemistry)38巻、
1023(1974)、同40巻、1515頁(197
6)など)が知られている。この酵素は、澱粉をその非
還元性末端から厳格にエクソ型でマルトース単位で加水
分解し、生成マルトースはβ−型である。アスペルギル
スオリーゼ(Aspergillus oryzae)
や、ある種の細菌や放線菌の生産するα−アミラーゼの
中に、澱粉からマルトースを比較的多く生成するものは
あるが、これらの酵素はエンド型の分解機作をもった酵
素であり、マルトースの他に、グルコース、マルトトリ
オース、その他のオリゴ糖を多量に生成する。
様式と生産物の種類により、種々のものが知られている
。β−アミラーゼは、大豆、麦芽、小麦などの植物やバ
シルス属細菌により生産される(アミラーゼシンポジウ
ム、6巻、39頁(1971)、アグリカルチャーバイ
オロジカルケミストリー(Agriculture B
iological Chemistry)38巻、
1023(1974)、同40巻、1515頁(197
6)など)が知られている。この酵素は、澱粉をその非
還元性末端から厳格にエクソ型でマルトース単位で加水
分解し、生成マルトースはβ−型である。アスペルギル
スオリーゼ(Aspergillus oryzae)
や、ある種の細菌や放線菌の生産するα−アミラーゼの
中に、澱粉からマルトースを比較的多く生成するものは
あるが、これらの酵素はエンド型の分解機作をもった酵
素であり、マルトースの他に、グルコース、マルトトリ
オース、その他のオリゴ糖を多量に生成する。
最近、 H,Out、trupとB、 E、 Norm
anは、バシルスステアロサーモフィラス(Bacil
lus 1tearot、hermo −philus
)の生産する新規なマルトース生成酵素について報告し
ている(第35回ブトモルドスターチコンベンション(
35th Detmold St、arch Conv
enjion1984年4月25日〜27日))。この
酵素は111粉の非還元性末端からエキソ型でマルトー
スを生成するが、生成マルトースはα−型であることβ
−アミラーゼのように、厳格にマルトース単位で加水分
解するものではなく、反応初期には、マルトテトラオー
ス(G4)、マルトトリオース(G3)、マルトース(
G2)の他に、少量のマルトペンタオース(G5)やマ
ルトヘキサオース(G6)も生成すること、シャーディ
ンガー(Shardinger)デキストリンをマルト
ースとグルコースに分解すること、及びマルトトリオー
スをマルトースとグルコースに分解すると報告されてい
る。このため、この酵素による澱粉分解物中には6〜8
%のグルコースが含まれる。
anは、バシルスステアロサーモフィラス(Bacil
lus 1tearot、hermo −philus
)の生産する新規なマルトース生成酵素について報告し
ている(第35回ブトモルドスターチコンベンション(
35th Detmold St、arch Conv
enjion1984年4月25日〜27日))。この
酵素は111粉の非還元性末端からエキソ型でマルトー
スを生成するが、生成マルトースはα−型であることβ
−アミラーゼのように、厳格にマルトース単位で加水分
解するものではなく、反応初期には、マルトテトラオー
ス(G4)、マルトトリオース(G3)、マルトース(
G2)の他に、少量のマルトペンタオース(G5)やマ
ルトヘキサオース(G6)も生成すること、シャーディ
ンガー(Shardinger)デキストリンをマルト
ースとグルコースに分解すること、及びマルトトリオー
スをマルトースとグルコースに分解すると報告されてい
る。このため、この酵素による澱粉分解物中には6〜8
%のグルコースが含まれる。
本発明者は、澱粉からマルトースを特異的に生成するア
ミラーゼ生産菌を求めて、広く微生物の検索を行ってき
た結果、土壌中より分離し、バシルス・メガテリウム(
BacilluSmegateriu+m)と同定した
細菌が新規で、且つ耐熱性のマルトース生成酵素を生産
することを認めた0本酵素は、澱粉を、その非還元性末
端からマルトース単位で加水分解すると考えられるが、
生成糖はα−型であることを、生成物の変旋光及びガス
クロマトグラフによる分析により確認した0本酵素はア
ミロペクチンのα−1,6−グルコシド結合は分解する
ことができないため、リミットデキストリンを残すが、
アミロペクチンのフル1ヘースへの分解率は、β−アミ
ラーゼの場合に比べて、2〜3%高く、より分岐結合(
α−1,6−ゲリコシト結合)近くまで分解できるもの
と考えられる。また1反応物期には、マルトース以外の
生成物は観察されず、マルトトリオースに対する親和性
が小さいため、最終反応物中には、グルコースは殆んど
存在しないなど、新規な酵素と考えられた。本発明者は
、この#素をアミラーゼG2と命名した。
ミラーゼ生産菌を求めて、広く微生物の検索を行ってき
た結果、土壌中より分離し、バシルス・メガテリウム(
BacilluSmegateriu+m)と同定した
細菌が新規で、且つ耐熱性のマルトース生成酵素を生産
することを認めた0本酵素は、澱粉を、その非還元性末
端からマルトース単位で加水分解すると考えられるが、
生成糖はα−型であることを、生成物の変旋光及びガス
クロマトグラフによる分析により確認した0本酵素はア
ミロペクチンのα−1,6−グルコシド結合は分解する
ことができないため、リミットデキストリンを残すが、
アミロペクチンのフル1ヘースへの分解率は、β−アミ
ラーゼの場合に比べて、2〜3%高く、より分岐結合(
α−1,6−ゲリコシト結合)近くまで分解できるもの
と考えられる。また1反応物期には、マルトース以外の
生成物は観察されず、マルトトリオースに対する親和性
が小さいため、最終反応物中には、グルコースは殆んど
存在しないなど、新規な酵素と考えられた。本発明者は
、この#素をアミラーゼG2と命名した。
以下に、本酵素の性質の詳細を記載する。
(1)作用; アミロース、アミロペクチン、グリコー
ゲンのα−1,4−グルコシド結合を、その非還元性末
端からマルトース単位で加水分解する。生成糖はα−フ
マル1−−スあることがらα−アミラーゼの一種と考え
られるが。
ゲンのα−1,4−グルコシド結合を、その非還元性末
端からマルトース単位で加水分解する。生成糖はα−フ
マル1−−スあることがらα−アミラーゼの一種と考え
られるが。
エンド型の分解作用を示さず、アミロペクチン、グリコ
ーゲンからはリミットデキストリンを残す。サイクロデ
キストリンを分解せず、またマルトトリオースの分解力
も弱い、生成糖がα−型であることを除けば。
ーゲンからはリミットデキストリンを残す。サイクロデ
キストリンを分解せず、またマルトトリオースの分解力
も弱い、生成糖がα−型であることを除けば。
植物や細菌のβ−アミラーゼに似ているが、アミロペク
チンやこれを含む澱粉に対する分解限度は2〜3%高い
。
チンやこれを含む澱粉に対する分解限度は2〜3%高い
。
(2)作用温度範囲及び最適温度; 1%可溶性澱粉。
0、058リン酸緩衝液の下で作用させたとき、約75
℃まで作用し、最適温度は約60℃である(第1図(a
))。
℃まで作用し、最適温度は約60℃である(第1図(a
))。
(3)作用pH範囲及び最適pH; 約3〜約11の
広いpH範囲に作用する。最適pHは約7〜7.5であ
る(0.05Mリン酸緩衝液、1%可溶性澱粉の下で作
用、(第1図(b))。
広いpH範囲に作用する。最適pHは約7〜7.5であ
る(0.05Mリン酸緩衝液、1%可溶性澱粉の下で作
用、(第1図(b))。
(4)A安定性; 0.05Mトリス緩衝液(pH7
,0)の下で加熱した場合、50℃、10分間の加熱ま
では失活が認められない、60℃10分間の加熱で約1
0%失活し、65℃10分間の加熱で約70%失活し、
そして、60℃10分間の加熱で90%以上失活した(
第1図(C))。
,0)の下で加熱した場合、50℃、10分間の加熱ま
では失活が認められない、60℃10分間の加熱で約1
0%失活し、65℃10分間の加熱で約70%失活し、
そして、60℃10分間の加熱で90%以上失活した(
第1図(C))。
(5)ρII安定性; 0.IM級衝液の下、室温(
30℃)で3時間放置後、残存活性を測定した。その結
果、P旧、5〜8の範囲で安定であった(第1図(d)
)。
30℃)で3時間放置後、残存活性を測定した。その結
果、P旧、5〜8の範囲で安定であった(第1図(d)
)。
(6)安定化; カルシウムイオンによる熱安定性の増
加は認められなかった。
加は認められなかった。
(7)阻害剤; 本酵素は、lXl0−’MのlIgc
12、AgN03 、 Cu5O4、N15O4により
、それぞれ約85%、約75%、約70%、約60%阻
害された。また、lXl0””Mのρ−クロロマーキュ
リベンゾエートにより約70%阻害された。
12、AgN03 、 Cu5O4、N15O4により
、それぞれ約85%、約75%、約70%、約60%阻
害された。また、lXl0””Mのρ−クロロマーキュ
リベンゾエートにより約70%阻害された。
(8)精製方法; 本酵素は、液体培養液の上澄から、
硫安分画、DEAIE−セファロースカラムクロマトグ
ラフィー、同カラムによる再クロマトグラフィーとバイ
オゲルA0.5mによるカラムクロマトグラフィーによ
り、ディスク電気泳動的に均一まで精製することができ
る。
硫安分画、DEAIE−セファロースカラムクロマトグ
ラフィー、同カラムによる再クロマトグラフィーとバイ
オゲルA0.5mによるカラムクロマトグラフィーによ
り、ディスク電気泳動的に均一まで精製することができ
る。
(9)分子量; セファデックスG −200により測
定した分子量は約60 、000であった。
定した分子量は約60 、000であった。
(lO)力価測定法: 0.1Mリン酸緩衝液に溶解
させた2%可溶性澱粉0.5mQに、適量の酵素を加え
、水で全量1IIIQとし、40°Cで反応させる。
させた2%可溶性澱粉0.5mQに、適量の酵素を加え
、水で全量1IIIQとし、40°Cで反応させる。
この条件で、1分間に1μモルのグルコースに相当する
還元力を生成する酵素量を1単位とした。
還元力を生成する酵素量を1単位とした。
以上の酵素的性質について、本発明以前に知られている
、植物起源のβ−アミラーゼ、バシルス居細菌のβ−ア
ミラーゼ及びバシルスステアロサーモフィラスのマルト
ース生成アミラーゼと比較した結果は、第1表に示す通
りである。
、植物起源のβ−アミラーゼ、バシルス居細菌のβ−ア
ミラーゼ及びバシルスステアロサーモフィラスのマルト
ース生成アミラーゼと比較した結果は、第1表に示す通
りである。
すなわち、植物系β−アミラーゼ及びバシルス属のβ−
アミラーゼはβ−マルトースのみを生成するのに対し、
本発明の#素はα−フマル1〜−スみを生成する。バシ
ルスステアロサーモフィラスのアミラーゼは、本発明の
酵素と同様α−マルトースを生成するが、反応初期には
、マルトテトラオースやマルトトリオース及び微量のマ
ルトヘキサオースやマルトペンタオースを生成すると報
告されている。従って、これら酵素は本発明の酵素とは
本質的に異なっている。また、最適pl+、最適温度、
分子景などの酵素的性質においても差が認めらめること
から、本発明の酵素は新規な酵素ということができる0
本発明は、この知見に基づいてなされたものである。
アミラーゼはβ−マルトースのみを生成するのに対し、
本発明の#素はα−フマル1〜−スみを生成する。バシ
ルスステアロサーモフィラスのアミラーゼは、本発明の
酵素と同様α−マルトースを生成するが、反応初期には
、マルトテトラオースやマルトトリオース及び微量のマ
ルトヘキサオースやマルトペンタオースを生成すると報
告されている。従って、これら酵素は本発明の酵素とは
本質的に異なっている。また、最適pl+、最適温度、
分子景などの酵素的性質においても差が認めらめること
から、本発明の酵素は新規な酵素ということができる0
本発明は、この知見に基づいてなされたものである。
すなわち、本発明は、1t()を、その非還元性末端か
らα−マルトースを生成するバシルス屈由来新規アミラ
ーゼに関するものである。
らα−マルトースを生成するバシルス屈由来新規アミラ
ーゼに関するものである。
本発明の酵素を生産する例示菌として、バシルス メガ
テリウム(Bacillus megatcrium)
を挙げる。
テリウム(Bacillus megatcrium)
を挙げる。
本菌の菌学的性質は下記に示す通りであり、*工研菌寄
第7978号として、工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。
第7978号として、工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。
(1)形態; 巾0.7〜1.3X2.4〜5.0μ、
通常、2個以上連なり、短鎖状に生成する。ダラム陰性
。
通常、2個以上連なり、短鎖状に生成する。ダラム陰性
。
(2)胞子; 両末端近くに2個。胞子をもつ細胞のふ
くらみは殆んど認められない。
くらみは殆んど認められない。
(3)生育; 好気的に生育。嫌気下では殆んど生育は
認められない。
認められない。
(4)肉汁; 混濁、沈降する。
(5)肉汁寒天; 生育良好、表面なめらか、淡褐色を
示すが、色素の生成なし。
示すが、色素の生成なし。
(6】グルコース肉汁寒天; 肉汁培地よりよく生育す
る。
る。
(7)グルコース硝酸塩寒天; よく生育する。表面な
めらか。淡褐色を示す。
めらか。淡褐色を示す。
(8)チロシン寒天; 褐色色素を生成する。
(9)グルコース・アスパラギン寒天; かなりよく生
育する。
育する。
(10)ポテト: 生育良好、表面なめらかで、淡褐色
を示す。培地中に褐色色素を生成する。
を示す。培地中に褐色色素を生成する。
(11)クエン酸の利用; 陽性・
(12)澱粉の加水分解; 陽性。
(13)アセチルメチルカルビノール; 生成しない。
(14)ゼラチン; 分解する。
(15)ミルク; 凝固し、ペプトン化する。
(16)硝酸塩の還元; 陽性。
(17)カタラーゼ; 陽性。
(18)炭水化物の利用; D−グルコース、D−フラ
クトース、D−ガラクトース、D−マンノース、D−リ
ボース、し−ラムノース、L−アラビノース、D−キシ
ロース、D−マンニトール、D−ソルビトール、マルト
ース、蔗糖などを利用し、いずれもガスを生成すること
なく生産する。
クトース、D−ガラクトース、D−マンノース、D−リ
ボース、し−ラムノース、L−アラビノース、D−キシ
ロース、D−マンニトール、D−ソルビトール、マルト
ース、蔗糖などを利用し、いずれもガスを生成すること
なく生産する。
(19)最適生育温度;40℃前後。
(20)最高生育温度; 約50°C0(21)死滅温
度;100℃、20分間の加熱でも死滅しない。
度;100℃、20分間の加熱でも死滅しない。
以上の菌学的性質について、パージェイスマニュアルオ
フデタミネーティブバクテリオロジー(Bergey’
s Mannual of Determinativ
eBact、ariology)の第7版及び第8版(
ザウィリアムスアンドゥイルキンスカンパニー(The
Williamsand Vilkins Comp
any)、1957年及び1974年)を参 。
フデタミネーティブバクテリオロジー(Bergey’
s Mannual of Determinativ
eBact、ariology)の第7版及び第8版(
ザウィリアムスアンドゥイルキンスカンパニー(The
Williamsand Vilkins Comp
any)、1957年及び1974年)を参 。
照し、本菌をバシルスメガテリウム(Bacillus
megaterium)G −2と命名した。
megaterium)G −2と命名した。
バシルス メガテリウムG2を培養して、アミラーゼG
2を生産するための一般的培養は、次のようにして行わ
れる。
2を生産するための一般的培養は、次のようにして行わ
れる。
培養は、通常、液体培地による通気、攪拌培養により行
われる。窒素源としては、肉エキス、ペプトン、酵母エ
キス、カゼイン、コーンステイープリカー、大豆粕など
1通常、微生物の培養に際し、よく用いられる有機窒素
源、あるいはこれに補足する窒素源として、塩化アンモ
ン、リン酸アンモン、硝酸塩などの無機窒素源が用いら
れる。
われる。窒素源としては、肉エキス、ペプトン、酵母エ
キス、カゼイン、コーンステイープリカー、大豆粕など
1通常、微生物の培養に際し、よく用いられる有機窒素
源、あるいはこれに補足する窒素源として、塩化アンモ
ン、リン酸アンモン、硝酸塩などの無機窒素源が用いら
れる。
炭素源としては、澱粉、デキス1〜リン、マルトース、
グルコース、シュークロスなどが使用される。
グルコース、シュークロスなどが使用される。
培養はPH5〜9.温度20〜60℃で好気的に行われ
る。
る。
アミラーゼG2は、菌体外に生産される酵素であるので
、培養終了後、濾過または遠心分離により除菌し、上澄
液を回収する。
、培養終了後、濾過または遠心分離により除菌し、上澄
液を回収する。
培養上澄液は、必要により濃縮し、硫酸アンモニウム、
硫酸ナトリウムなどによる塩析によるか、または、アセ
トン、インプロパツール、エタノール、メタノールなど
の有機溶媒を加えて、酵素を沈澱物として収得し、乾燥
、保存する。
硫酸ナトリウムなどによる塩析によるか、または、アセ
トン、インプロパツール、エタノール、メタノールなど
の有機溶媒を加えて、酵素を沈澱物として収得し、乾燥
、保存する。
アミラーゼG2を用いて、澱粉を糖化する反応は、次の
ようにして行う。
ようにして行う。
澱粉は、先ず、酸または澱粉液化酵素α−アミラーゼに
より液化される。澱粉の液化度(DE)は、マルトース
の収量に著しく影響し、液化度の小さい液化澱粉を使用
する方が収量よくフル1〜−スが得られる。(DEは固
形分中の還元力をグルコースとして表わした百分率)。
より液化される。澱粉の液化度(DE)は、マルトース
の収量に著しく影響し、液化度の小さい液化澱粉を使用
する方が収量よくフル1〜−スが得られる。(DEは固
形分中の還元力をグルコースとして表わした百分率)。
基質濃度は1通常、5〜40%1反応pHは5〜8.温
度は50〜60℃で行われる。
度は50〜60℃で行われる。
本酵素はアミロペクチンのα−1,6−グルコシド結合
を分解することができないので、アミロペクチン、ある
いはこれを含むml)又はその派生物を基質として用い
るときには、α−1,6−グルコシド結合を分解するイ
ソアミラーゼやプルラナーゼなどのα−1,6−グルコ
シダーゼの存在下で反応を行うと、@J!化反応を促進
し、収量よくマルトースを製造することができる。
を分解することができないので、アミロペクチン、ある
いはこれを含むml)又はその派生物を基質として用い
るときには、α−1,6−グルコシド結合を分解するイ
ソアミラーゼやプルラナーゼなどのα−1,6−グルコ
シダーゼの存在下で反応を行うと、@J!化反応を促進
し、収量よくマルトースを製造することができる。
次に、実施例により、本発明の詳細な説明する。
実施例1
大豆タンパク2%、米ぬか2%、K 211PO40,
3%、HgSO4411200,1%、可溶性澱第32
%、CDCl 21 X10−3M、 MnC121X
IO−’ M、CuSO42,5xlO−’ M、Fe
C122,5X 10− ’ M、ラウリル硫酸ナトリ
ウム2.5X10−2%からなる培地(pH7,0)3
0m Qを200m Q容三角フラスコに入れ、120
6Cで15分殺菌後、バシルスメガテリウム(微工研菌
寄第7978号)を接種し、30℃で3日間振盪培養(
160rpm) シた。培養後、遠心分離して得た上澄
液について、生産されたアミラーゼG2活性を測定した
結果、培地IIIIQ当り、9.0単位であった。
3%、HgSO4411200,1%、可溶性澱第32
%、CDCl 21 X10−3M、 MnC121X
IO−’ M、CuSO42,5xlO−’ M、Fe
C122,5X 10− ’ M、ラウリル硫酸ナトリ
ウム2.5X10−2%からなる培地(pH7,0)3
0m Qを200m Q容三角フラスコに入れ、120
6Cで15分殺菌後、バシルスメガテリウム(微工研菌
寄第7978号)を接種し、30℃で3日間振盪培養(
160rpm) シた。培養後、遠心分離して得た上澄
液について、生産されたアミラーゼG2活性を測定した
結果、培地IIIIQ当り、9.0単位であった。
実施例2
実施例1で得られた培養上澄液に、硫安を8%飽和にな
るように添加し、生成した沈澱物を遠心分離機により回
収し、水に溶解し、lX10− ’ MのL−システィ
ンを含む蒸留水に対し、−夜透析したものを澱粉糖化用
酵素液とした(酵素の回収率は約82%であった)。
るように添加し、生成した沈澱物を遠心分離機により回
収し、水に溶解し、lX10− ’ MのL−システィ
ンを含む蒸留水に対し、−夜透析したものを澱粉糖化用
酵素液とした(酵素の回収率は約82%であった)。
可溶性澱粉、短鎖アミロース(DPI7)、アミロペク
チン(トウモロコシ製)、グリコーゲン(カキ製)各2
0m gに、アミラーゼを6X10−’単位加え、全i
12mQとし、pl+7.40℃で、3日間反応をおこ
なった。反応後、糖化液の糖組成を液体クロマトグラフ
法により測定した結果は、第2表に示す通りであった。
チン(トウモロコシ製)、グリコーゲン(カキ製)各2
0m gに、アミラーゼを6X10−’単位加え、全i
12mQとし、pl+7.40℃で、3日間反応をおこ
なった。反応後、糖化液の糖組成を液体クロマトグラフ
法により測定した結果は、第2表に示す通りであった。
第2表
実施例3
DE5.81の液化ポテト澱粉各100m gに、トリ
ス緩衝液(pH7,0)0.04M、アミラーゼG2ま
たは麦芽β−アミラーゼを液化澱粉固形分g当り、それ
ぞれ1.3.5.1O115,20,30単位を加え、
60℃で3日間反応を行った。反応後、糖化液の糖組成
を分析した結果は、第2図に示す通りであり、β−アミ
ラーゼ(黒丸)に比ベアミラーゼ(白丸)は分解力が優
れ、約2%マルトースの収量が高かった。
ス緩衝液(pH7,0)0.04M、アミラーゼG2ま
たは麦芽β−アミラーゼを液化澱粉固形分g当り、それ
ぞれ1.3.5.1O115,20,30単位を加え、
60℃で3日間反応を行った。反応後、糖化液の糖組成
を分析した結果は、第2図に示す通りであり、β−アミ
ラーゼ(黒丸)に比ベアミラーゼ(白丸)は分解力が優
れ、約2%マルトースの収量が高かった。
実施例4
DEl、43の液化澱粉tgに、アミラーゼ2Gを5単
位と、クレブシラニューモニア(Klebsiclla
pncumoniac)の生産するプルラナーゼ(ナ
ガセ生化学より入手することができる)を、l、2また
は3単位加え、p117.55℃テ3tEIn!]!i
Jにを行った。反応後、糖化液の糖組成を分析した結果
は第3表に示す通りであった。
位と、クレブシラニューモニア(Klebsiclla
pncumoniac)の生産するプルラナーゼ(ナ
ガセ生化学より入手することができる)を、l、2また
は3単位加え、p117.55℃テ3tEIn!]!i
Jにを行った。反応後、糖化液の糖組成を分析した結果
は第3表に示す通りであった。
第3表
第1図(a)、(b)、(c)と(d)は、それぞれア
ミラーゼG2の最適温度、最適pl+、熱安定性とpl
+安定性を示している。 第2図は、DIE5.81の液化ポテト澱粉をアミラー
ゼG2と麦芽β−アミラーゼで糖化したときの酵素量と
マルトース生成率の関係を示している。 犬山 次:部− 才1[1a
ミラーゼG2の最適温度、最適pl+、熱安定性とpl
+安定性を示している。 第2図は、DIE5.81の液化ポテト澱粉をアミラー
ゼG2と麦芽β−アミラーゼで糖化したときの酵素量と
マルトース生成率の関係を示している。 犬山 次:部− 才1[1a
Claims (1)
- 澱粉を、その非還元性末端からα−マルトースを生成す
るバシルス属由来新規アミラーゼ。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26585485A JPS62126973A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | 新規なアミラ−ゼ |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26585485A JPS62126973A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | 新規なアミラ−ゼ |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62126973A true JPS62126973A (ja) | 1987-06-09 |
JPH0133160B2 JPH0133160B2 (ja) | 1989-07-12 |
Family
ID=17422998
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP26585485A Granted JPS62126973A (ja) | 1985-11-26 | 1985-11-26 | 新規なアミラ−ゼ |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS62126973A (ja) |
-
1985
- 1985-11-26 JP JP26585485A patent/JPS62126973A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0133160B2 (ja) | 1989-07-12 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |