JPS61212290A - スクワレンの製造法 - Google Patents
スクワレンの製造法Info
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- JPS61212290A JPS61212290A JP5379985A JP5379985A JPS61212290A JP S61212290 A JPS61212290 A JP S61212290A JP 5379985 A JP5379985 A JP 5379985A JP 5379985 A JP5379985 A JP 5379985A JP S61212290 A JPS61212290 A JP S61212290A
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- Japan
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- squalene
- culture
- atcc
- pseudomonas
- methylomonas
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- Pending
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明はスクワレンの製造法に関し、さらに用されるス
クワランの原料である。スクワレンは、組成としてＣＩ
ＩＨ５Ｇ を示す不飽和炭化水素で、２ 、６．１０
．１．５．、１９．２５−へキサメチル−２，６，１０
，１４，１８，２２−テトラコサへキサエンであり、こ
のスクワレンを水素添加することＫより、スクワラン（
２、６、１０゜１５．１９．２３−ヘキサメチルテトラ
コサン）を得ることが出来る。
クワランの原料である。スクワレンは、組成としてＣＩ
ＩＨ５Ｇ を示す不飽和炭化水素で、２ 、６．１０
．１．５．、１９．２５−へキサメチル−２，６，１０
，１４，１８，２２−テトラコサへキサエンであり、こ
のスクワレンを水素添加することＫより、スクワラン（
２、６、１０゜１５．１９．２３−ヘキサメチルテトラ
コサン）を得ることが出来る。
〔従来技術１発明が解決しようとする問題点〕スクワレ
ンは、特殊な深海さめの肝油中に多量に含まれているこ
とが知られており、従来、フィリピン、スペイン、台湾
、その他からさめ肝油を輸入し、その中よりスクワレン
な抽出精製していた。しかしながら、この特殊深海ざめ
の漁獲量の変動とスクワレン藩破増大および安定的確保
から、天然品に頼らないスクワレンの製造法が望まれて
いる。
ンは、特殊な深海さめの肝油中に多量に含まれているこ
とが知られており、従来、フィリピン、スペイン、台湾
、その他からさめ肝油を輸入し、その中よりスクワレン
な抽出精製していた。しかしながら、この特殊深海ざめ
の漁獲量の変動とスクワレン藩破増大および安定的確保
から、天然品に頼らないスクワレンの製造法が望まれて
いる。
微生物によるスクワレンの生産に関しては、糸状萌によ
る方法（油化学第６１巻、１号−ｐ−５２〜５４．１９
８２）が知られているが、糸状菌を用いる方法は、微生
物の培養の点において生産性が低（問題が多い。
る方法（油化学第６１巻、１号−ｐ−５２〜５４．１９
８２）が知られているが、糸状菌を用いる方法は、微生
物の培養の点において生産性が低（問題が多い。
本発明者らは、細菌を用いるスクワレンの生産技術を確
立することを目的とした。
立することを目的とした。
〔問題を解決するための手段１作用〕
本発明者らは、スクワレンを生産する細菌を見出すべく
研究を重ねた結果、シュードモナス属、プロタミノバク
タ−属、メチロモナス属。
研究を重ねた結果、シュードモナス属、プロタミノバク
タ−属、メチロモナス属。
メタノモナス属、メチロバチルス属、アクロモバクタ−
属、アルテロモナス属、ハイホミクロビウム属、プロト
モナス属またはメチロバクテリウム属に属する菌株が菌
体中にスクワレンを生産することを見出して本発明を完
成した。
属、アルテロモナス属、ハイホミクロビウム属、プロト
モナス属またはメチロバクテリウム属に属する菌株が菌
体中にスクワレンを生産することを見出して本発明を完
成した。
本発明において使用される細菌としては、シュードモナ
ス属、プロタミノバクタ−属、メチロモナス属、メタノ
モナス属、メチロバチルス属、γりロモバクター属、ア
ルテロモナス属。
ス属、プロタミノバクタ−属、メチロモナス属、メタノ
モナス属、メチロバチルス属、γりロモバクター属、ア
ルテロモナス属。
ハイホミクロビウム属、プロトモナス属またはメチロバ
クテリウム属に属し、スクワレンを主側として、シュー
ドモナス インスエタ ＡＴＣＣ２１２７６、ＡＴＣＣ
２１４５５、ＡＴＣＣ２１９６２，シュードモナス メ
タノリカ ＡＴＣＣ２１７０４，ＡＴＣＣ２１９６０、
シュードモナス、メチロトロファ ＮＣＩＢ １０５
０Ｂ、ＮＣＩＢ １０５０９゜ＮＣＩＢ １０５１
０、ＮＣＩＢ １０５１１゜ＮＣＩＢ １０５１
２、 ＮＣＩＢ １０５１！ｌ、ＮＣＩＢ １
０５１４．Ｎ（、ＩＢ １０５１５゜ＮＣＩＢ
１０５９２．ＮＣＩＢ １０５９１ＮＣＩＢ
１０５９４．ＮＣＩＢ １０５９５゜ＮＣＩＢ
１０５９６．シュードモナス エスピー ＡＴＣＣ２
１４３？、シュードモナスメタノリス ＢＮＫ−８４（
微工研菌寄第２２４７号）、同ＢＮＭ−５６（微工研菌
寄第２２４８号）、同Ｂ−１５３９（微工研菌寄第２２
５０号）、プロタミノバクタ−カンデイダスＡＴＣＣ２
１３７１ＡＴＣＣ２１９５９、プロタミノバクタ−チア
ミノファガス ＡＴＣＣ２１３７１、ＡＴＣＣ２１９５
７、メチロモナス クララ ＡＴＣＣ５’１２２６゜メ
チロモナス メタノリカ ＮＲＲＬＢ−５４５８、メチ
ロモナス サラシカ ＡＴＣＣ３３１４６、メチロモナ
ス メタツカタラレスリカ Ｂ−７８（微工研菌寄第４
０３６号）、同Ｂ−４２（微工研菌寄第４０３７号）、
四Ｂ−４５２（微工研菌寄第４０３８号）、メチロモナ
ス メタノ７ラクトリカ Ｂ−１４５（微工研菌寄第４
０３９号）、四Ｂ−１３４（微工研菌寄第４０４０号）
、同３３−１４８（微工研醒寄第４０４１号）、同Ｂ−
６５（微工研菌寄第４０４２号）、同Ｂ−５８（微工研
菌寄第４０４３号）、メタノモナス メチロボラ ＡＴ
ＣＣ２１８５２，同ＡＴＣＣ２１３６９゜同ＡＴＣＣ２
１９５８，同ＡＴＣＣ２１９６３、メタノモナス メチ
ロボラ サブエスピー チアミ／ヒイラ ＡＴＣＣ２１
３７０゜メチロバチルス グリコゲネス ＡＴＣＣ２９
４７５、アクロモバクタ−メタノモナスＡＴＣＣ２１２
７５、同ＡＴＣＣ２１４５２、同ＡＴＣＣ２１９６１、
アルテロモナスサラソメタノリカ ＡＴＣＣ５３１４５
，／％イホミクロビウム エスピー ＤＳＭ １Ｂ６
９、ハイホミクロビウム プルガレ ＮＣＩＢ９６９８
−プロトモナス エクストルクエンスＪＣＭ ２８０
２ｎよびメチロバクテリウムオルガノフイラム ＡＴＣ
Ｃ２７Ｂ８などがある。これらの菌はすべて公知である
。また。
クテリウム属に属し、スクワレンを主側として、シュー
ドモナス インスエタ ＡＴＣＣ２１２７６、ＡＴＣＣ
２１４５５、ＡＴＣＣ２１９６２，シュードモナス メ
タノリカ ＡＴＣＣ２１７０４，ＡＴＣＣ２１９６０、
シュードモナス、メチロトロファ ＮＣＩＢ １０５
０Ｂ、ＮＣＩＢ １０５０９゜ＮＣＩＢ １０５１
０、ＮＣＩＢ １０５１１゜ＮＣＩＢ １０５１
２、 ＮＣＩＢ １０５１！ｌ、ＮＣＩＢ １
０５１４．Ｎ（、ＩＢ １０５１５゜ＮＣＩＢ
１０５９２．ＮＣＩＢ １０５９１ＮＣＩＢ
１０５９４．ＮＣＩＢ １０５９５゜ＮＣＩＢ
１０５９６．シュードモナス エスピー ＡＴＣＣ２
１４３？、シュードモナスメタノリス ＢＮＫ−８４（
微工研菌寄第２２４７号）、同ＢＮＭ−５６（微工研菌
寄第２２４８号）、同Ｂ−１５３９（微工研菌寄第２２
５０号）、プロタミノバクタ−カンデイダスＡＴＣＣ２
１３７１ＡＴＣＣ２１９５９、プロタミノバクタ−チア
ミノファガス ＡＴＣＣ２１３７１、ＡＴＣＣ２１９５
７、メチロモナス クララ ＡＴＣＣ５’１２２６゜メ
チロモナス メタノリカ ＮＲＲＬＢ−５４５８、メチ
ロモナス サラシカ ＡＴＣＣ３３１４６、メチロモナ
ス メタツカタラレスリカ Ｂ−７８（微工研菌寄第４
０３６号）、同Ｂ−４２（微工研菌寄第４０３７号）、
四Ｂ−４５２（微工研菌寄第４０３８号）、メチロモナ
ス メタノ７ラクトリカ Ｂ−１４５（微工研菌寄第４
０３９号）、四Ｂ−１３４（微工研菌寄第４０４０号）
、同３３−１４８（微工研醒寄第４０４１号）、同Ｂ−
６５（微工研菌寄第４０４２号）、同Ｂ−５８（微工研
菌寄第４０４３号）、メタノモナス メチロボラ ＡＴ
ＣＣ２１８５２，同ＡＴＣＣ２１３６９゜同ＡＴＣＣ２
１９５８，同ＡＴＣＣ２１９６３、メタノモナス メチ
ロボラ サブエスピー チアミ／ヒイラ ＡＴＣＣ２１
３７０゜メチロバチルス グリコゲネス ＡＴＣＣ２９
４７５、アクロモバクタ−メタノモナスＡＴＣＣ２１２
７５、同ＡＴＣＣ２１４５２、同ＡＴＣＣ２１９６１、
アルテロモナスサラソメタノリカ ＡＴＣＣ５３１４５
，／％イホミクロビウム エスピー ＤＳＭ １Ｂ６
９、ハイホミクロビウム プルガレ ＮＣＩＢ９６９８
−プロトモナス エクストルクエンスＪＣＭ ２８０
２ｎよびメチロバクテリウムオルガノフイラム ＡＴＣ
Ｃ２７Ｂ８などがある。これらの菌はすべて公知である
。また。
これらの菌株より得られた変異株も使用することが出来
る。
る。
これらのスクワレン生産細菌を培養するに当って用いら
れる栄養培地としては、各菌株が生育可能な栄養培地で
あれば特に制限はないが。
れる栄養培地としては、各菌株が生育可能な栄養培地で
あれば特に制限はないが。
合成培地が好ましい。炭素源として通常はメタノールお
よび／またはメチルアミンが使用される。
よび／またはメチルアミンが使用される。
なお、プロトモナス エクストルフェンスおよびメチロ
バクテリウム オルガノフイラムではメタノールおよび
／またはメチルアミンにかえてフラクトースな、どの糖
類およびグリセロールなどの糖アルコール類を用いるこ
とができる。
バクテリウム オルガノフイラムではメタノールおよび
／またはメチルアミンにかえてフラクトースな、どの糖
類およびグリセロールなどの糖アルコール類を用いるこ
とができる。
さらに培地成分として通常の窒素源、無機物の適量が使
用される。
用される。
窒素源としては、通常はたとえば硫酸アンモニウム、尿
素、硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、ペプトン
、肉エキス等が用いられ、無機塩類としては１通常はた
とえばリン酸塩、マグネシウム塩、鉄塩、その他必ｌ！
に応じて微量金属塩が用いられる。さらに、アミノ酸、
核酸、ビタミン、酵母エキス、麦芽エキス等生育促進物
質も使用される。又、使用菌株が栄養要求性を示す場合
には、その要求性物質を培地に添加する。
素、硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、ペプトン
、肉エキス等が用いられ、無機塩類としては１通常はた
とえばリン酸塩、マグネシウム塩、鉄塩、その他必ｌ！
に応じて微量金属塩が用いられる。さらに、アミノ酸、
核酸、ビタミン、酵母エキス、麦芽エキス等生育促進物
質も使用される。又、使用菌株が栄養要求性を示す場合
には、その要求性物質を培地に添加する。
また、メチロモナス サラシカ ＡＴＣＣ３４１４６、
アルテロモナス サランメタノリカ Ａ’ＦＣＣ３３１
４５などは生育ＫＮａＣ１の添加を必要とするので、培
地中ＫＮａＣＡ！を２〜４％添加するか、あるいは培地
作成に用いる水として海水を使用する必要がある。
アルテロモナス サランメタノリカ Ａ’ＦＣＣ３３１
４５などは生育ＫＮａＣ１の添加を必要とするので、培
地中ＫＮａＣＡ！を２〜４％添加するか、あるいは培地
作成に用いる水として海水を使用する必要がある。
培養温度は通常２５〜４５℃の範囲で各菌株にとって生
育・増殖に適した温度を選択すればよい。培養ｐＨは１
通常６〜８の範囲で、各菌株にとって生育・増殖に適し
たｐ’Ｈを選択する。
育・増殖に適した温度を選択すればよい。培養ｐＨは１
通常６〜８の範囲で、各菌株にとって生育・増殖に適し
たｐ’Ｈを選択する。
培養方式は、回分培養あるいは連続培養のいずれでもよ
い。
い。
窒素源として、アンモニウム塩を使用する場合は、菌体
が増殖するに伴って培養液中のｐＨが低下するので、培
養期間中の培地のｐＨを一定に保つためにアンモニア、
苛性カリもしくは苛性ソーダ等を添加して培養液のｐＨ
な調節する必要がある。これらの中でアンモニアが特に
好ましい。
が増殖するに伴って培養液中のｐＨが低下するので、培
養期間中の培地のｐＨを一定に保つためにアンモニア、
苛性カリもしくは苛性ソーダ等を添加して培養液のｐＨ
な調節する必要がある。これらの中でアンモニアが特に
好ましい。
このようＫして培養して得られた培養液から。
たとえばろ過もしくは遠心分離などの通常の固液分離手
段によって菌体を分離し、そのままあるいは乾燥した菌
体を得る。
段によって菌体を分離し、そのままあるいは乾燥した菌
体を得る。
得られた菌体からスクワレンの分離、抽出は常法に従っ
て行なうことができる。たとえば。
て行なうことができる。たとえば。
メタノールに菌体を懸濁させた懸濁液を５０〜９０℃で
１〜数時間加熱抽出する。あるいは。
１〜数時間加熱抽出する。あるいは。
まずメタノール、水酸化ナトリウムおよびピロガロール
の混合物を用いて菌体中のリン脂質などのけん化性物質
なけん化し、このけん化液からｎ−ヘキサンのような水
き混合しない有機溶媒を加えてスクワレンを抽出する。
の混合物を用いて菌体中のリン脂質などのけん化性物質
なけん化し、このけん化液からｎ−ヘキサンのような水
き混合しない有機溶媒を加えてスクワレンを抽出する。
ついで、この抽出物をシリカゲルおよびフロリジルなど
を用いて分別精製を行なって単離する。
を用いて分別精製を行なって単離する。
菌体から得られたスクワレンのＩ’ｆｌ定には、ベーパ
ークロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、元素
分析、核磁気共鳴スペクトルおよび質量分析などの手段
が用いられる。
ークロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、元素
分析、核磁気共鳴スペクトルおよび質量分析などの手段
が用いられる。
また、定量法としては、スクワランを内部標準物質とす
るガスクロマトグラフィー分析法によることができる。
るガスクロマトグラフィー分析法によることができる。
以下実施例によってさらに具体的に説明する。
実施例 １
純水１１あたり（ＮＨ４）２ＳＯ４５／、ＫＨ２ＰＯ４
１、４Ｊ／ 、Ｎａ２ＨＰＯ４２、１１１゜Ｍｇ８０４
−７Ｈ２００，２ｇ −ＣａＣＪ２−２Ｈ２０３０Ｑ−
ＦｓＣ６Ｈ５０７・ＸＨ２Ｏ５０ｍ９、ＭｎＣＪ２・４
Ｈ２０５１９，ＺｎＳＯ４−７Ｈ２０５１１９、ＣｕＳ
Ｏ４−５Ｈ２００，５Ｗ、酵母エキス ０゜２ｇ、ビタ
ミン混合液 ０．１ｄ、およびメタノール ８１１７を
溶解し、ｐＨが７．１に調節された液 ２００−を１６
容三角フラスコに入れ１２０℃で２０分間殺菌し、これ
を培地とした。
１、４Ｊ／ 、Ｎａ２ＨＰＯ４２、１１１゜Ｍｇ８０４
−７Ｈ２００，２ｇ −ＣａＣＪ２−２Ｈ２０３０Ｑ−
ＦｓＣ６Ｈ５０７・ＸＨ２Ｏ５０ｍ９、ＭｎＣＪ２・４
Ｈ２０５１９，ＺｎＳＯ４−７Ｈ２０５１１９、ＣｕＳ
Ｏ４−５Ｈ２００，５Ｗ、酵母エキス ０゜２ｇ、ビタ
ミン混合液 ０．１ｄ、およびメタノール ８１１７を
溶解し、ｐＨが７．１に調節された液 ２００−を１６
容三角フラスコに入れ１２０℃で２０分間殺菌し、これ
を培地とした。
ビタミン混合液の組成は
ビオチン ２０μｇパントテン
酸カルシウム ４ｒｎ９葉 酸
２ｏ“ｙイノシトール
２０ダニコチン酸 ４
■ピリドキシン塩酸塩 ４ｍｇチアミン塩
酸塩 ４ｍｇｐ−アミ７安息香酸
２■リボフラビン ２１
１９純 水 １０００
ｍ／である（以下の実施例でも同様）。これＫ、前記と
同様な培地を用いて３０℃で２４時間前培養された各菌
株の培養液をそれぞれ１容量％接種し、５０℃で回転振
とう培養を行なった。培養開始後２４時間で培養液中の
メタノール濃度は０．００１％以下となった。この培養
液を遠心分離し、菌体重量および菌体中のスクワレン含
量を測定した。
酸カルシウム ４ｒｎ９葉 酸
２ｏ“ｙイノシトール
２０ダニコチン酸 ４
■ピリドキシン塩酸塩 ４ｍｇチアミン塩
酸塩 ４ｍｇｐ−アミ７安息香酸
２■リボフラビン ２１
１９純 水 １０００
ｍ／である（以下の実施例でも同様）。これＫ、前記と
同様な培地を用いて３０℃で２４時間前培養された各菌
株の培養液をそれぞれ１容量％接種し、５０℃で回転振
とう培養を行なった。培養開始後２４時間で培養液中の
メタノール濃度は０．００１％以下となった。この培養
液を遠心分離し、菌体重量および菌体中のスクワレン含
量を測定した。
結果を第１表に示す。
実施例 ２
海水１１あたり（ＮＨ４）２８０４ ５ｆｉ。
ＫＨ２ＰＯ４１，４１１，ＮａＨＰＯ４２，１ｇ。
ＭｇＳＯ４・７Ｈ２００＋ ２ｊＪ、ＣａＣｊ２・２Ｈ
２０３０Ｗ、ＦｅＣ６Ｈ５０７ＸＨ２Ｏ５０Ｗ。
２０３０Ｗ、ＦｅＣ６Ｈ５０７ＸＨ２Ｏ５０Ｗ。
ＭｎＣ！Ｉ２−４Ｈ２０５＃、ＺｎＳＯ４・７Ｉ（２０
５ＮＦ、ＣｕＳＯ４・５Ｈ２００，５ｉｙ−ビタミンＢ
１２１０μｙおよびメタノール ８−を溶解し、ｐＨが
７．１に調節された液２００ｄを１１容三角フラスコに
入れ１２０℃で２０分間殺菌し、これを培地とした。
５ＮＦ、ＣｕＳＯ４・５Ｈ２００，５ｉｙ−ビタミンＢ
１２１０μｙおよびメタノール ８−を溶解し、ｐＨが
７．１に調節された液２００ｄを１１容三角フラスコに
入れ１２０℃で２０分間殺菌し、これを培地とした。
これに、前記と同様な培地を用いて３０℃で２４時間前
培養されたメチロモナス サラシ力ロ ＡＴＣＣ３５１４６およびアルテ寸モナスサラソメタノ
リカ Ａ’ｌ’ＣＣ５３１４５をそれぞれ１容量％接種
し、３０℃で回転振とう培養を行なった。
培養されたメチロモナス サラシ力ロ ＡＴＣＣ３５１４６およびアルテ寸モナスサラソメタノ
リカ Ａ’ｌ’ＣＣ５３１４５をそれぞれ１容量％接種
し、３０℃で回転振とう培養を行なった。
培養開始後２４時間で培養液中のメタノール濃度は０．
００１％以下となった。この培養液を遠心分離し、菌体
重量および菌体中のスクワレン含量を測定した。
００１％以下となった。この培養液を遠心分離し、菌体
重量および菌体中のスクワレン含量を測定した。
結果を第２表に示す。
＠２表
実施例 ３
純水１）あたり（Ｎｆ（４）ｚｓ０４ ５ ｇ、ＫＩ（
２ＰＯ４１，４ｇ、Ｎａ２ＨＰＯ４２，１ｇ、Ｍ、？Ｓ
Ｏ４，７Ｈ２００，２、ｌｉｔ 、ＣａＣｌ２”２Ｈ２
０５０１９、ＦｅＣ６Ｈ：０７・ＸＨ２Ｏ３０１！９Ｍ
ｎＣＪ２ ・４Ｈ２０５ＩＲｇ、ＺｎＳＯ４７Ｈ２０５
＃。
２ＰＯ４１，４ｇ、Ｎａ２ＨＰＯ４２，１ｇ、Ｍ、？Ｓ
Ｏ４，７Ｈ２００，２、ｌｉｔ 、ＣａＣｌ２”２Ｈ２
０５０１９、ＦｅＣ６Ｈ：０７・ＸＨ２Ｏ３０１！９Ｍ
ｎＣＪ２ ・４Ｈ２０５ＩＲｇ、ＺｎＳＯ４７Ｈ２０５
＃。
Ｃｕ５ＯｔＨ５Ｈ２００，５Ｗ、酵母エキス ０゜２ｙ
％ビタミン混合液 ０．１ｍおよびメチルアミン塩酸塩
５ｙを溶解し、ｐＨが７．１に調節された液２００−
を１１容三角フラスコに入れ１２０℃で２０分間殺歯し
、これを培地とした。
％ビタミン混合液 ０．１ｍおよびメチルアミン塩酸塩
５ｙを溶解し、ｐＨが７．１に調節された液２００−
を１１容三角フラスコに入れ１２０℃で２０分間殺歯し
、これを培地とした。
これに、前記と同様な培地を用いて３０℃で２４時間前
培養された各菌株の培養液をそれぞれ１容量％接種し、
３０℃で回転振とう培養を行なった。培養開始後３６時
間後に培養液を遠心分離し、菌体重量および菌体中のス
クワレン含量を測定した。
培養された各菌株の培養液をそれぞれ１容量％接種し、
３０℃で回転振とう培養を行なった。培養開始後３６時
間後に培養液を遠心分離し、菌体重量および菌体中のス
クワレン含量を測定した。
結果を第３表に示す。
第５表
実施例 ４
実施例１と同様な方法で培養したシュードモナス メタ
ノリス ＢＮＫ−８４の凍結乾燥菌体 １０１１をイン
プロパツール ４５ｉｔｊに懸濁し、これにピロガロー
ル １．５ｙ、５０％ＮａＯＨ１５＊ｊ、水 １５１を
入れて％９０℃で１００分間加熱し、アルカリケン化処
理を行なったのち、ヘキサン ２５０Ｗ１１を加え転溶
した。この転溶な２回行なった後、ヘキサン層を濃縮し
て抽出物を得た。
ノリス ＢＮＫ−８４の凍結乾燥菌体 １０１１をイン
プロパツール ４５ｉｔｊに懸濁し、これにピロガロー
ル １．５ｙ、５０％ＮａＯＨ１５＊ｊ、水 １５１を
入れて％９０℃で１００分間加熱し、アルカリケン化処
理を行なったのち、ヘキサン ２５０Ｗ１１を加え転溶
した。この転溶な２回行なった後、ヘキサン層を濃縮し
て抽出物を得た。
和光製シリカゲル Ｃ−５００５Ｇ、９をヘキサンに懸
濁し、カラムに充填した。このカラムの充填層上面に前
記抽出物を載せてヘキサン有画分を分取した。
濁し、カラムに充填した。このカラムの充填層上面に前
記抽出物を載せてヘキサン有画分を分取した。
分取されたスクワレン含有液を濃縮乾固して。
スクｑレンを９５％含有する濃縮物を９゜５Ｗ９得た。
スクワレンの確認は質量分析および核磁気共鳴スペクト
ルで行なった。
ルで行なった。
本発明によれば、スクワレンを細菌中より安価Ｋかつ安
定的に得ることが可能である。
定的に得ることが可能である。
特許出願人 三菱瓦斯化学株式会社
代表者長野和吉
Claims (1)
- シュードモナス属、プロタミノバクター属、メチロモナ
ス属、メタノモナス属、メチロバチルス属、アクロモバ
クター属、アルテロモナス属、ハイホミクロビウム属、
プロトモナス属またはメチロバクテリウム属に属するス
クワレン生産細菌を、栄養培地に好気的に培養して菌体
内にスクワレンを蓄積させ、菌体中に蓄積されたスクワ
レンを取り出すことを特徴とするスクワレンの製造法
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5379985A JPS61212290A (ja) | 1985-03-18 | 1985-03-18 | スクワレンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5379985A JPS61212290A (ja) | 1985-03-18 | 1985-03-18 | スクワレンの製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61212290A true JPS61212290A (ja) | 1986-09-20 |
Family
ID=12952861
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5379985A Pending JPS61212290A (ja) | 1985-03-18 | 1985-03-18 | スクワレンの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61212290A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2012531917A (ja) * | 2009-07-01 | 2012-12-13 | ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア | 微細藻類コロニーからの細胞外テルペノイドの抽出法 |
| JP2016220569A (ja) * | 2015-05-28 | 2016-12-28 | 国立大学法人広島大学 | 微生物、炭化水素の生産方法、廃液の処理方法及び微生物のスクリーニング方法 |
-
1985
- 1985-03-18 JP JP5379985A patent/JPS61212290A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2012531917A (ja) * | 2009-07-01 | 2012-12-13 | ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア | 微細藻類コロニーからの細胞外テルペノイドの抽出法 |
| JP2016220569A (ja) * | 2015-05-28 | 2016-12-28 | 国立大学法人広島大学 | 微生物、炭化水素の生産方法、廃液の処理方法及び微生物のスクリーニング方法 |
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