JPS6283894A - 助酵素ｑ↓１↓１の製造法 - Google Patents
助酵素ｑ↓１↓１の製造法Info
- Publication number
- JPS6283894A JPS6283894A JP60222833A JP22283385A JPS6283894A JP S6283894 A JPS6283894 A JP S6283894A JP 60222833 A JP60222833 A JP 60222833A JP 22283385 A JP22283385 A JP 22283385A JP S6283894 A JPS6283894 A JP S6283894A
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- JP
- Japan
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- coenzyme
- strain
- protomonas
- culture
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、助酵素Ｑ の製造法に関し、さらに詳細には
、微生物を使用した助酵素Ｑ４．の製造法に係わる。
、微生物を使用した助酵素Ｑ４．の製造法に係わる。
助醇素Ｑ は、下に示される構造式を有し、生体内の末
端呼吸系の電子伝導体として重要な役割を果し、心臓機
能亢進剤、膵機能充進剤、重症筋無力症治療剤、肺気腫
治療剤、再生不良性貧血治療剤および円形脱毛症治療剤
などの医薬品ならびに飼料添加剤として有用な化合物で
ある。
端呼吸系の電子伝導体として重要な役割を果し、心臓機
能亢進剤、膵機能充進剤、重症筋無力症治療剤、肺気腫
治療剤、再生不良性貧血治療剤および円形脱毛症治療剤
などの医薬品ならびに飼料添加剤として有用な化合物で
ある。
〔従来技術、発明が解決しようとする問題点〕従来、助
酵素Ｑは、微生物、動物または植物の組織から抽出し、
さらに精製することにより製造されている。
酵素Ｑは、微生物、動物または植物の組織から抽出し、
さらに精製することにより製造されている。
助酵素ＱとしてＱ６〜Ｑ１０を生産する微生物は数多く
知られている。しかし、助酵素Ｑ を生産する微生物と
して、１９７９年ＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓＭ１６が１名
取および長崎より初めて報告されているのみである。し
かし、この菌株における助醇素Ｑ の全助酵：ＡＱに対
する含有率は、比較的低く、助酵素Ｑ を精製するため
には、多くの困難を有している（たとえば、Ｙｏｈｅｉ
Ｎａｔｏｒｉ ａｎｄ Ｔｏｍｏｈｉｓａ Ｎａ
ｇａｓａｋｉ 。
知られている。しかし、助酵素Ｑ を生産する微生物と
して、１９７９年ＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓＭ１６が１名
取および長崎より初めて報告されているのみである。し
かし、この菌株における助醇素Ｑ の全助酵：ＡＱに対
する含有率は、比較的低く、助酵素Ｑ を精製するため
には、多くの困難を有している（たとえば、Ｙｏｈｅｉ
Ｎａｔｏｒｉ ａｎｄ Ｔｏｍｏｈｉｓａ Ｎａ
ｇａｓａｋｉ 。
Ａｇｒｉｃ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、、 ４３ ７９７
〜８０１（＋ ９７ ９ ）、Ｙｏｈｅｉ Ｎ
ａｔｏｒｊ ａｎｄ Ｔｏｍｏ−ｈｉｓａ Ｎ
ａｇａｓａｋｉ 、Ａｇｒｉｃ Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ
１１４５ ２１７５−２１８２（＋９８１））。
〜８０１（＋ ９７ ９ ）、Ｙｏｈｅｉ Ｎ
ａｔｏｒｊ ａｎｄ Ｔｏｍｏ−ｈｉｓａ Ｎ
ａｇａｓａｋｉ 、Ａｇｒｉｃ Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ
１１４５ ２１７５−２１８２（＋９８１））。
本発明者らは、助酵素Ｑ １に多量に含有し、しかも助
酵素Ｑ１．の全助酵素Ｑに対する含有率の高い菌株の取
得を目的とした。
酵素Ｑ１．の全助酵素Ｑに対する含有率の高い菌株の取
得を目的とした。
本発明者らは、助酵素Ｑ を多量に生産する細菌を見出
すべく研９ｅｔ−重ねた結果、助酵素Ｑをほとんど生産
しないような助酵素Ｑ 生成能が低い菌株を親株として
変異処理を行なって誘導された助酵素Ｑ を多量に生産
する萌株を得１す ることに成功し、この菌株を使用することにより本発明
を完成した。
すべく研９ｅｔ−重ねた結果、助酵素Ｑをほとんど生産
しないような助酵素Ｑ 生成能が低い菌株を親株として
変異処理を行なって誘導された助酵素Ｑ を多量に生産
する萌株を得１す ることに成功し、この菌株を使用することにより本発明
を完成した。
すなわち、本発明は、プロトモカス属に属し、助酵素Ｑ
生産能が低い菌株から誘導され、助酵素Ｑ 生産能が
増大された菌株を培養して該凶体内に助酵素Ｑ を生成
蓄積させ、該菌体から助酵素Ｑ を採取することを特徴
とする助酵素Ｑ の製造法である。
生産能が低い菌株から誘導され、助酵素Ｑ 生産能が
増大された菌株を培養して該凶体内に助酵素Ｑ を生成
蓄積させ、該菌体から助酵素Ｑ を採取することを特徴
とする助酵素Ｑ の製造法である。
本発明において使用される菌株は、胞子を形成せず、ピ
ンクコロニーを形成し、極鞭毛を有するメタノール資化
性のダラム陰性桿菌でダラム陰性メタノール資化性細菌
のグループ２（Ｊ。
ンクコロニーを形成し、極鞭毛を有するメタノール資化
性のダラム陰性桿菌でダラム陰性メタノール資化性細菌
のグループ２（Ｊ。
Ｇｅｎ、 Ａｐｐｌ、 Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ、、
２５ ３４３−５６０（＋９７９）Ｋ属し、従来、Ｐ
ｓ ｅ ｕ ｄ ｏｍｏ ｎ ａ ｓＰｒｏｔａｍｉ
ｎｏｂａｃｔｅｒ、 ＭｙｃｏｐｌａｎａおよびＴｈ１
ｏ−ｂａｃｉｌｌｕｓ属と呼ばれた１群に属する菌株で
ある。これらの菌株は部上と駒形によｊ） ＋ ９８４
年、Ｐｒｏｔｏｍｏｎａｓ属細菌として提案されている
（ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａ −ｔｉｃ Ｂａｃｔｅｒ
ｉｏｌｏｇｙ 第３４巻、第１８８−２０１頁、１９
８４年）。しかし、助酵素Ｑ１１を多量に生産する野生
株は現在のところ知られておらず１これらＰｒｏｔｏｍ
ｏｎａｓ属細菌を変異処理し、助酵素Ｑ 生産株を造成
しなければならない。
２５ ３４３−５６０（＋９７９）Ｋ属し、従来、Ｐ
ｓ ｅ ｕ ｄ ｏｍｏ ｎ ａ ｓＰｒｏｔａｍｉ
ｎｏｂａｃｔｅｒ、 ＭｙｃｏｐｌａｎａおよびＴｈ１
ｏ−ｂａｃｉｌｌｕｓ属と呼ばれた１群に属する菌株で
ある。これらの菌株は部上と駒形によｊ） ＋ ９８４
年、Ｐｒｏｔｏｍｏｎａｓ属細菌として提案されている
（ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａ −ｔｉｃ Ｂａｃｔｅｒ
ｉｏｌｏｇｙ 第３４巻、第１８８−２０１頁、１９
８４年）。しかし、助酵素Ｑ１１を多量に生産する野生
株は現在のところ知られておらず１これらＰｒｏｔｏｍ
ｏｎａｓ属細菌を変異処理し、助酵素Ｑ 生産株を造成
しなければならない。
変異処理方法としては、特に制限はないが、実用上、通
常行なわれているＵＶ処理、Ｎ−メチル−Ｎ−ニトロ−
Ｎ−ニドシングアニジン（ＮＴＧ）処理およびエチルメ
タノサルフ７ネー）（ＥＭＳ）処理などが好ましい。
常行なわれているＵＶ処理、Ｎ−メチル−Ｎ−ニトロ−
Ｎ−ニドシングアニジン（ＮＴＧ）処理およびエチルメ
タノサルフ７ネー）（ＥＭＳ）処理などが好ましい。
スクリーニングのマーカーとしては、たとえばコロニー
の色および薬剤耐性などが採用される。
の色および薬剤耐性などが採用される。
このようにして、たとえば親株であるプロトモカス エ
クストルフェンス ＢＰ−４１（微工研菌寄第４８９６
号）からプロトモナス エクストルフェンス ＤＢ−７
３７（微工研菌寄第８３８６号）、同ＤＢ−７７５（微
工絣菌寄第８３８７号）、同ＤＢ−１０４６（微工研菌
寄第８３８８号）および同ＤＢ−１０６５（微工研菌寄
第８３８９号）などの助酵素Ｑ を多量に生産する変異
株が得られる。これらの変異株の菌学的性質はコロニー
の色または薬剤７−カーの耐性が異り、かつ助酵素Ｑ
の生産能が増大されているほかは親株のそれと実質的に
異るところはない。
クストルフェンス ＢＰ−４１（微工研菌寄第４８９６
号）からプロトモナス エクストルフェンス ＤＢ−７
３７（微工研菌寄第８３８６号）、同ＤＢ−７７５（微
工絣菌寄第８３８７号）、同ＤＢ−１０４６（微工研菌
寄第８３８８号）および同ＤＢ−１０６５（微工研菌寄
第８３８９号）などの助酵素Ｑ を多量に生産する変異
株が得られる。これらの変異株の菌学的性質はコロニー
の色または薬剤７−カーの耐性が異り、かつ助酵素Ｑ
の生産能が増大されているほかは親株のそれと実質的に
異るところはない。
なお、親株のプロトモナス エクストルフェンス ＢＰ
−４１（ＦＥＲＭ−Ｐ ４８９６ ）は、かつては、プ
ータミノバクター メタノリカとして同定（特公昭５７
−３５ ）された菌株であったが、部上と駒形の論文中
で、プロトモナスエクストルク二ンスとして再同定され
ている（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａ
ｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａ −ｔｉｃ Ｂａｃｔ
ｅｒｉｏｌｏｇｙ、第３４巻、第１８８−２０１頁、１
９８４年）微生物である。
−４１（ＦＥＲＭ−Ｐ ４８９６ ）は、かつては、プ
ータミノバクター メタノリカとして同定（特公昭５７
−３５ ）された菌株であったが、部上と駒形の論文中
で、プロトモナスエクストルク二ンスとして再同定され
ている（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａ
ｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａ −ｔｉｃ Ｂａｃｔ
ｅｒｉｏｌｏｇｙ、第３４巻、第１８８−２０１頁、１
９８４年）微生物である。
変異株スクリーニング用培地は親株および変異株の両者
が生育、増殖しうる培地であればよく、特に制限はない
。また、変異株増殖用培地すなわち補酵素Ｑ 生産用培
地は変異株が増殖しうる培地であればよく、これまた特
に制限はない。すなわち、炭素源、窒素掠および無機塩
さらに必要に応じて生育促進物質などを含有する通常の
培地が使用される。
が生育、増殖しうる培地であればよく、特に制限はない
。また、変異株増殖用培地すなわち補酵素Ｑ 生産用培
地は変異株が増殖しうる培地であればよく、これまた特
に制限はない。すなわち、炭素源、窒素掠および無機塩
さらに必要に応じて生育促進物質などを含有する通常の
培地が使用される。
炭素源としては、これらの細菌が資化しうるものであれ
ばいずれでもよく、Ｌ−７ラビノース、Ｄ−午シロース
、Ｄ−マンノース、Ｄ−７ラクトース、ガラクトース、
グリセロール、コ・・り酸、クエン酸、酢酸およびメタ
ノール々どをそれぞれ単独あるいは組合わせて使用する
ことが出来る。
ばいずれでもよく、Ｌ−７ラビノース、Ｄ−午シロース
、Ｄ−マンノース、Ｄ−７ラクトース、ガラクトース、
グリセロール、コ・・り酸、クエン酸、酢酸およびメタ
ノール々どをそれぞれ単独あるいは組合わせて使用する
ことが出来る。
窒素源としては、硫酸７ンモ二ウム、尿素、Ｅｌ［７ン
モニウム、すん酸アンモニウム、ペプトン、肉エキスな
どが用いられる。無機塩類としては、りん酸塩、マグネ
シウム塩、鉄塩、その他必要に応じて微量金属塩が用い
られる。生育促進物質としては、たとえばアミノ酸、核
酸、ビタミン、酵母エキスおよび麦芽エキスなどが使用
される。また、使用前株が栄養要求性を示す場合には、
その要求性物質を培地に添加する。
モニウム、すん酸アンモニウム、ペプトン、肉エキスな
どが用いられる。無機塩類としては、りん酸塩、マグネ
シウム塩、鉄塩、その他必要に応じて微量金属塩が用い
られる。生育促進物質としては、たとえばアミノ酸、核
酸、ビタミン、酵母エキスおよび麦芽エキスなどが使用
される。また、使用前株が栄養要求性を示す場合には、
その要求性物質を培地に添加する。
培養条件は、温度２０〜４０℃の範囲で、各菌株にとっ
て、生育、増殖に適した温度を選択すればよい。培養ｐ
Ｈは、通常６〜８の範囲で各菌株にとって生育、増殖に
適したｐＨを選択する。培養方式は、回分培養あるいは
連続培養のいずれでもよい。窒素源として、アンモニウ
ム塩を使用する場合は、菌体が増殖するに伴って培養液
中のｐＨが低下するので、培養期間中の培地のｐＨを一
定に保つために、アンそニア、苛性カリもしくは苛性ン
ー４などを添加して培養液のｐＨを調節する必要がある
。これらの中でアンモニアが特に好ましい。
て、生育、増殖に適した温度を選択すればよい。培養ｐ
Ｈは、通常６〜８の範囲で各菌株にとって生育、増殖に
適したｐＨを選択する。培養方式は、回分培養あるいは
連続培養のいずれでもよい。窒素源として、アンモニウ
ム塩を使用する場合は、菌体が増殖するに伴って培養液
中のｐＨが低下するので、培養期間中の培地のｐＨを一
定に保つために、アンそニア、苛性カリもしくは苛性ン
ー４などを添加して培養液のｐＨを調節する必要がある
。これらの中でアンモニアが特に好ましい。
このようＫして、細６Ｍを培養した後、菌体を培養液よ
り分離回収する。菌体の分離回収には、通常の固液分離
手段が採用される。たとえば、培養液をそのｔま遠心分
離する方法、培養液中に使用した細菌よりも大きい他の
微生物の細胞をろ過助剤として加えたり、あるいはプレ
コートすることにより培養液から菌体をろ過分離する方
法、培養液に種々の凝集剤を加え菌体を凝集させこれを
ろ過あるいは遠心分離により培養液から菌体を分離する
方法および培養液のｐＨを５以下にすることＫよ妙、あ
るｈは、ｐＨを５以下にし、さらに５０〜１００℃で加
熱することにより菌体を分離する方法などを適用しうる
。分離された菌体は、その１１．あるいは噴霧乾燥機な
どにより乾燥され、以下の助酵素Ｑ１、の抽出、精製が
行なわれる。
り分離回収する。菌体の分離回収には、通常の固液分離
手段が採用される。たとえば、培養液をそのｔま遠心分
離する方法、培養液中に使用した細菌よりも大きい他の
微生物の細胞をろ過助剤として加えたり、あるいはプレ
コートすることにより培養液から菌体をろ過分離する方
法、培養液に種々の凝集剤を加え菌体を凝集させこれを
ろ過あるいは遠心分離により培養液から菌体を分離する
方法および培養液のｐＨを５以下にすることＫよ妙、あ
るｈは、ｐＨを５以下にし、さらに５０〜１００℃で加
熱することにより菌体を分離する方法などを適用しうる
。分離された菌体は、その１１．あるいは噴霧乾燥機な
どにより乾燥され、以下の助酵素Ｑ１、の抽出、精製が
行なわれる。
助酵素Ｑ の分離抽出は、常法に従って行なうことか出
来る。
来る。
すなわち、たとえば、エタノールに菌体を懸濁させて５
０〜９０℃で１〜数時間加熱抽出する。あるいは、まず
メタノール、水酸化ナトリウムおよびピロガロールの混
合物を用いて菌体中のりん脂質などのけん化性物質をけ
ん化し、このけん化液からｎ−へキサンの如き水と混合
しない有機溶媒を加えて助酵ＸＱ を抽出する。
０〜９０℃で１〜数時間加熱抽出する。あるいは、まず
メタノール、水酸化ナトリウムおよびピロガロールの混
合物を用いて菌体中のりん脂質などのけん化性物質をけ
ん化し、このけん化液からｎ−へキサンの如き水と混合
しない有機溶媒を加えて助酵ＸＱ を抽出する。
ついでこの抽出物をシリカゲルおよびフロリジルならび
にハイポラスポリマーのような多孔性樹脂などを用いて
分別精ＩＫを行なって単離する。
にハイポラスポリマーのような多孔性樹脂などを用いて
分別精ＩＫを行なって単離する。
菌体から得られた助酵素Ｑ の同定には一般に、高速液
体クロマトグラフィー、元素分析、融点測定、赤外部お
よび紫外部吸収スペクトル、核磁気共鳴スペクトルなら
びに質１分析などの手段がそれぞれ用いられる。
体クロマトグラフィー、元素分析、融点測定、赤外部お
よび紫外部吸収スペクトル、核磁気共鳴スペクトルなら
びに質１分析などの手段がそれぞれ用いられる。
実施例によって本発明をさらに具体的に説明する。
実施例
純水１ノあたり、（ＮＨ４）２ＳＯ４Ｓｉ、ＫＨｚＰＯ
４Ｌ ４ｇ、Ｎａ２ＨＰＯ４２，１ｇ、ＭｇＳＯ４・７
Ｈ２００，２＆ 、ＣａＣｌ２・２Ｈ２０３０＋１１９
、ＦｅＣ６Ｈ５Ｏγ・ＸＨ２Ｏ３０ｍに）、？ｖｌｎ（
、Ｊ２ ・４Ｈ２０５ダ、 ＺｎＳＯ４−７ＨｚＯ５ｍ
ｐ、ＣｕＳＯ４−５Ｈ２００，５■、酵母工午ス ｏ、
２ｇ、パントテン酸カルシウム ４ダおよびメタノール
８１１Ｌｌを溶解し、ｐＨが７．１に調整された培地
（培地Ｂ 以下同様）で３０℃１８時間生育させた親株
のプロトモナス エクストルフェンス ＢＰ−４１（微
工研菌寄第４８９６号）の歯体をＮ−メチル−Ｎ’−二
トローＮ−ニトロソゲ７ニジ７ ０．５ｗｖ／ｍｌを含
む０．１Ｍりん酸緩衝液（ｐＨ７，０） 中に１０
個／ゴとなるように懸濁し、３０℃で３０分間振盪した
。その後、遠心分離で集菌した菌体を０．１Ｍりん酸緩
衝液（ｐＨ７，０）で洗浄後、この菌体を再度０゜１Ｍ
りん酸緩衝液に懸濁させた菌体懸濁液（１０８個／ＩＩ
Ｌｌ）Ｏ，ｔｍ／を１０１１Ｌｌの培地Ｂに接種し、２
日間培養を行なった。
４Ｌ ４ｇ、Ｎａ２ＨＰＯ４２，１ｇ、ＭｇＳＯ４・７
Ｈ２００，２＆ 、ＣａＣｌ２・２Ｈ２０３０＋１１９
、ＦｅＣ６Ｈ５Ｏγ・ＸＨ２Ｏ３０ｍに）、？ｖｌｎ（
、Ｊ２ ・４Ｈ２０５ダ、 ＺｎＳＯ４−７ＨｚＯ５ｍ
ｐ、ＣｕＳＯ４−５Ｈ２００，５■、酵母工午ス ｏ、
２ｇ、パントテン酸カルシウム ４ダおよびメタノール
８１１Ｌｌを溶解し、ｐＨが７．１に調整された培地
（培地Ｂ 以下同様）で３０℃１８時間生育させた親株
のプロトモナス エクストルフェンス ＢＰ−４１（微
工研菌寄第４８９６号）の歯体をＮ−メチル−Ｎ’−二
トローＮ−ニトロソゲ７ニジ７ ０．５ｗｖ／ｍｌを含
む０．１Ｍりん酸緩衝液（ｐＨ７，０） 中に１０
個／ゴとなるように懸濁し、３０℃で３０分間振盪した
。その後、遠心分離で集菌した菌体を０．１Ｍりん酸緩
衝液（ｐＨ７，０）で洗浄後、この菌体を再度０゜１Ｍ
りん酸緩衝液に懸濁させた菌体懸濁液（１０８個／ＩＩ
Ｌｌ）Ｏ，ｔｍ／を１０１１Ｌｌの培地Ｂに接種し、２
日間培養を行なった。
この培養液 ０．１ゴを生理食塩水で希釈後、培地Ｂに
寒天 ２０ ｇｌｌを添加した寒天平板培地上に塗布し
、４日間培養を行ない、親株の）０ニーとはピンク色の
濃さが異るコロニーを単離した。
寒天 ２０ ｇｌｌを添加した寒天平板培地上に塗布し
、４日間培養を行ない、親株の）０ニーとはピンク色の
濃さが異るコロニーを単離した。
これらのコロニーの中より、助醇素Ｑ を多量に生産す
る変異株としてＤＢ−７３７（微工研菌寄第８３８６号
）、同ＤＢ−７７５（徴工研菌寄第８３８７号）、同Ｄ
Ｂ−１０４６（微工研菌寄第８３８８号）、および同Ｄ
Ｂ−１０６３（微工研菌寄第８３８９号）を得た。
る変異株としてＤＢ−７３７（微工研菌寄第８３８６号
）、同ＤＢ−７７５（徴工研菌寄第８３８７号）、同Ｄ
Ｂ−１０４６（微工研菌寄第８３８８号）、および同Ｄ
Ｂ−１０６３（微工研菌寄第８３８９号）を得た。
培地Ｂを用いて３０℃で３日間前培養して得られた各菌
株の培養液をそれぞれ培地Ｂに１容 ′盪％接種し、３
０℃で回転振とり培養を行なった。培養開始後、４８時
間で培養液中のメタノール濃度は０．００１Ｗｔ９６
以下となった。この培養液を遠心分離し、耐体を得た。
株の培養液をそれぞれ培地Ｂに１容 ′盪％接種し、３
０℃で回転振とり培養を行なった。培養開始後、４８時
間で培養液中のメタノール濃度は０．００１Ｗｔ９６
以下となった。この培養液を遠心分離し、耐体を得た。
このａ体から助酵素Ｑをｑ ｏ ｗｔ９６イソプロパノ
ール水溶液で抽出し、へ牛サン転溶を行ない、さらに得
られたヘキサン溶液中の還元型動酵素Ｑを硝酸鉄で酸化
したのち、このへキサン溶液十について、高速液体クロ
マトグラフィーで助酵素Ｑ１１分析および助酵素Ｑ１．
含量を測定した。
ール水溶液で抽出し、へ牛サン転溶を行ない、さらに得
られたヘキサン溶液中の還元型動酵素Ｑを硝酸鉄で酸化
したのち、このへキサン溶液十について、高速液体クロ
マトグラフィーで助酵素Ｑ１１分析および助酵素Ｑ１．
含量を測定した。
結果を第１表に示す。
本発明によれば、！＃を利用して助酵素Ｑ１１を安価に
かつ安定的に得ることが可能であり、しかも原料として
工業的に大量生産される物質をも使用することができる
。
かつ安定的に得ることが可能であり、しかも原料として
工業的に大量生産される物質をも使用することができる
。
特許出願人 三菱瓦斯化学株式会社
代表者長野和吉
Claims (1)
- プロトモナス属に属し、助酵素Ｑ＿１＿１生産能が低い
菌株から誘導され、助酵素Ｑ＿１＿１生産能が増大され
た菌株を培養して該菌体内に助酵素Ｑ＿１＿１を生成蓄
積させ、該菌体から助酵素Ｑ＿１＿１を採取することを
特徴とする助酵素Ｑ＿１＿１の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60222833A JPS6283894A (ja) | 1985-10-08 | 1985-10-08 | 助酵素ｑ↓１↓１の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60222833A JPS6283894A (ja) | 1985-10-08 | 1985-10-08 | 助酵素ｑ↓１↓１の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6283894A true JPS6283894A (ja) | 1987-04-17 |
Family
ID=16788624
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60222833A Pending JPS6283894A (ja) | 1985-10-08 | 1985-10-08 | 助酵素ｑ↓１↓１の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6283894A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH04115811U (ja) * | 1991-03-25 | 1992-10-15 | 株式会社テノツクス | バツチヤープラント用材料供給装置 |
| WO2019208676A1 (ja) * | 2018-04-27 | 2019-10-31 | 株式会社カネカ | 補酵素ｑ１０の製造方法 |
-
1985
- 1985-10-08 JP JP60222833A patent/JPS6283894A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH04115811U (ja) * | 1991-03-25 | 1992-10-15 | 株式会社テノツクス | バツチヤープラント用材料供給装置 |
| WO2019208676A1 (ja) * | 2018-04-27 | 2019-10-31 | 株式会社カネカ | 補酵素ｑ１０の製造方法 |
| JPWO2019208676A1 (ja) * | 2018-04-27 | 2021-05-13 | 株式会社カネカ | 補酵素ｑ１０の製造方法 |
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