JPS60251895A - ピロロキノリンキノンの製造方法 - Google Patents

ピロロキノリンキノンの製造方法

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JPS60251895A
JPS60251895A JP59107406A JP10740684A JPS60251895A JP S60251895 A JPS60251895 A JP S60251895A JP 59107406 A JP59107406 A JP 59107406A JP 10740684 A JP10740684 A JP 10740684A JP S60251895 A JPS60251895 A JP S60251895A
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pseudomonas
pqq
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methanol
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飴山 實
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    • C12P17/00Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/18Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
    • C12P17/182Heterocyclic compounds containing nitrogen atoms as the only ring heteroatoms in the condensed system
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    • Y10S435/874Pseudomonas

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 技術分野 本発明は細胞を用いて下記化学構造式(1)のピロロキ
ノリンキノン(以下PQQと略称する)を製造する方法
に関する。
従来技術 PQQはキノ酵素のアポ型酵素をボロ化して酵素を活性
化する能力を有し、メタノール資化性細菌のメタノール
脱水素酵素、酢酸菌のアルコール脱水素酵素、アルデヒ
ド脱水素酵素、グリセリン脱水素酵素又はグルコース脱
水素酵素などの補酵素として機能しているほか、動物、
植物及び微生物起源の銅を含むアミン酸化酵素、アミン
脱水素酵素及びコリン脱水素酵素又はカルボニル試薬で
阻害される他の多くの酸化還元酵素の補酵素として、生
理学的に重要な機能を有する物質である。
更に他の酸化還元酵素や転移酵素の補酵素、例えばチア
ミンピロリン酸、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチ
1′、ニコチンアミトアデニンシヌクレメチド;1;ス
フエート、ピリドギザールボスフェー1〜、フラヒンア
デニンシヌクレオチド、フラピンモノヌクレオチドなと
は、それぞれ、ビタミンBl、ニコチン酸、ビタミンB
6、ビタミンB2なとの型で+n取することが必須であ
る。これと同様に、PQQは重要な酵素反応の補酵素と
なって機能していることから未同定ではあるがPQQも
ビタミン作用を有する極めて重要な物質であるといえる
。いずれにせよ、PQQは補酵素として酵素反応又は物
質代謝系を活性化するものであり、医薬品として重要な
役割を果す物質である。
従来、PQQの製造法としては有機化学的合成法が知ら
レテイル〔例えばJAC5,、103巻、5599〜5
600頁(1981)参照〕。しかしながら、有機化学
的合成法には、合成反応が多段階から成るために製造に
時間を要し、異性体をはじめとする副生物の除去のため
に煩雑な操作を必要とし、またPQQの収率も低いとい
う問題があった。
発明の目的及び構成 本発明者らはかかる従来のPQQの合成法の問題点を排
除し、高純度のPQQを簡単な操作で短時間かつ高収率
で経済的に製造できる方法を開発すべく鋭意研究をすす
めた結果、細胞、特に微生物を培養することによりPQ
Qを大量かつ経済的に供給することができることを見出
し、本発明をするに至った。
すなわち、本発明に従ったPQQの製造方法は、プロタ
ミノバクタ−属もしくはバラコツカス属に属するピロロ
キノリンキノン生産能を有する菌、またはシュードモナ
スAm−2,’シュードモナスP1−1、シュードモナ
スP2−2、シュードモナスP2−3およびシュードモ
ナスN1−1のいずれか一種の菌を栄養培地中で培養し
て培養物中にピロロキノリンキノンを生成せしめこれを
採取することから成る。
灸盟夕講廣友で効果の具体的説明 PQQの製造方法として細胞を培養してその培養液中に
PQQ(及びその類縁化合物)を生成蓄積せしめ、これ
を例えば抽出によって採取する方法としては、本発明者
による方法(特願昭57− z2oss号明細書)があ
るが、その後、より実用的な方法を開発すべく検副した
結果、本発明の菌を使用することによりPQQM積量を
飛躍的に増大させることに成功したものである。
本発明において使用することのできる微生物を以下に例
示する。
】、 バラコツカス デニトリフィカンス(Parac
occus denitrificans) IFO1
33012、プロタミノバクター ルヘル (Protamimobacter ruber ) 
IFo 37083、 シュードモナス(Pseudo
monas ) A 1 2(微工研菌寄第7599号
) 4、 シュードモナス(Pseudomonas ) 
P 1−1(微工研菌寄第7598号) 5、 シュードモナス(Pseudomonas ) 
P 2 2(微工研菌寄第7600号) 6、 シュードモナス(Pseudomonas ) 
P 2−3(微工研菌寄第7597号) 7、 シュードモナス(Pseudomonas ) 
N L 1(微工研菌寄第7596号) これらのうち、3〜7の菌は本発明者により分離された
新菌種であり、その菌学的性質は以下の表の通りである
(L、1.下空欄) 以」−の菌学的性質を基準としてBergey’s M
annual lof Determinative 
Bacteriology第8版(1974)の分類基
準により検索すると、いずれも■グラム陰性桿菌、■運
動性、■カタラーゼ、オ )キシダーセ、ウレアーゼ活
性を有する、■′インド )−ルを生成しない、■メタ
ノール、エタノールを資化する、■至適pH6,8〜7
.3、■至適温度30℃ [であることから、メタノー
ル資化性シュードモナス属菌であると同定した。シュー
ドモナス属に含まれる種について検索したが、これらと
一致する 1公知の菌種を見出すことはできなかった。
本発明において使用される培養培地の炭素源と 1して
は例えばメタノールが使用される。その濃度は0.1〜
5.0%、好ましくは0.5〜3%が良い結果を与える
。メタノールは培養前に全量加えておいてもよく、また
培養中に適宜添加して行っても 1よい。
窒素源としては、アミノ酸、核#1類のほかに蛋白質加
水分解物、酵母エキス、コーンスティブリ 」カーのよ
うな有機態のものや、アンモニウム塩、肖酸塩などの無
機態のものを使用することができ0 本発明方法は前記したように、メタノールを原4として
直接発酵法により培養液中にPQQを生気蓄積させる方
法の他に、別途に培養して調製しb微生物細胞の洗浄細
胞懸濁液にPQQ生合成のm躯体となりうる化合物、す
なわち、メタノール、Lタノールなどのアルコール類、
マニトール、フレクトース、グルコースなどの糖質とグ
ルタミン疫、アスパラギン酸、アラニン、千ロジン、ト
ーイなどのアミノ酸の混合物を加えて反応させ、反乙液
中に生成するPQQを取得することもできる。
本発明方法における培養は好気的条件下に、例しば通気
攪拌や往復振盪方法によって培養するこヒができる。培
養条件は、特に限定ばないが、−間約に言えば、温度θ
〜40℃、pH2〜9及び20〜00時間程度の条件で
実施する。
培養液又は培養物からのPQQの摂取方法は慣目方法に
従って行うことができる。例えば、イオノ交換クロマト
グラフィー、濃縮物のゲル濾過法、凍結乾燥物の溶媒抽
出法あるいはアフィニイティクロマトグラフィーなどが
できる。
PQQの補酵素活性の検定と、培養液中の生成物の濃度
の検定は、次のようにして行うことができる。キノ酵素
のアポ酵素の調製には、発明者らがすでに発表した方法
(Fε8sLetLers+ 130巻、179〜18
3頁、1981年)において使用したシュートモナスエ
ルギノサIFO3445のD−グルコース脱水素酵素活
性欠損変異株を用いることができる。
本菌株ばPQQ生成能を欠くが、その細胞膜中には通雷
のレヘルのアポD−グルコース脱水素酵素を生成蓄積し
ている。このような変異株より調製した細胞膜画分にP
QQを含む培養液、反応液あるいは菌体抽出液を加える
ことによって、アポ酵素はボロ化され、D−グルコース
脱水素酵素活性か発現する。発現する酵素活性の強度が
、添加されたPQQの量に比例関係を示すPQQの濃度
域を、化学合成したPQQを用いて測定し検量線を作成
することによって、培養液等の試料中に含まれるPQQ
量をめる(第1図、検量線)。PQQを定量することは
、PQQを補酵素とする他の種類のキノ酵素からアポ酵
素を調製し、これにPQQを添加することによって酵素
を活性化することで同様に行うことができる。また、P
QQの定量は高速液体クロマトグラフィーによっても行
うことができる。
中V 以下に本発明の詳細な説明するが、本発明の範囲をこれ
らの実施例に限定するものではないことはいうまでもな
い。
実施例1 500 ml容三角フラスコにメタノール1%、NaN
O30,2%、(NH4)2So40.2%、K211
PO40,1%、MgS%y 7H200,02%、 
I(aBO30,00005%、 Cu5O,y 5J
O0,000004%、MnSO4・)l、o O−0
0002%、(NH4)、 Mo040.00002%
、ZnSO4’ 7I(,00,00004%、Co 
CIp・2 Fl zOO,0015%、KCI 0.
004%、Pe5o4’ 71120 0.0001%
を含む培地(pH7,0) 100 mlを加え、これ
にパラコツカス デニトリフィカンスIFO13301
を接種して30℃で100〜120rpmで振盪培養し
た。
第2図はその培養経過を示したもので、菌の成育が対数
増殖期末期から定常期初期にあたる時期に培養液中のP
QQの蓄積が最高になることを示している。第2図は、
培養中の培養液の一部を無菌的にとり出し、遠心分離し
て菌体を除去して得られる」二ン1ft0.1mlを3
3マイクログラムのアポI)−グルコース脱水素酵素を
含む細胞膜画分に加え、室温で30分放置して酵素をホ
ロ化させたのち、発現した酵素活性の強度から培養液中
のPQQ濃度を算出してグラフに示したものであり、菌
の成育は600 nmでの吸光度で表示した。
酵素活性をめるために、予めホロ化した上記の酵素液(
0,11m1)に50m11)リスヒドロキシアミノメ
タン−塩@緩衝?fK、pH8,75、にアジ化ナトリ
ウムを24mM含むもの1ml、6.7mM 2.6−
シクロロフエノールインドフエノール0.04m1.6
 mMフエナンンメトスルフエI−0,2mlを加え、
反応液全量を水で2.9 mlとし、25℃で600 
nmの吸光度変化を調べ、同様に調製した盲検との間で
吸光度に増減が生じないことを確認した。次いで8mM
アジ化ナトリウムを含む1Mグルコースを一方のキュベ
y l〜に0.1 ml加え、その時点以降の吸光度変
化をレコーダーで記録した。ボロ化の程度及びボロ酵素
の濃度と2.6−シクロロフエノールインドフエノール
の退色とがよい相関を示す。化学合成されたPQQを用
いて、同様の操作によって得た第1図の検量線から各試
料中のPQQ濃度を算出した。
PQQが最高に生成される時点で培養を停止し、菌体を
除去して得られる培養液を予め0.002 Mリン酸カ
リウム、pl+7.0、で緩衝化しておいたDEAEセ
ファデックスA−25カラム(生化学工業91製)に吸
着させ、0.2 M KCIを含む同緩衝液によって不
純物を溶出させた後、0.6 M KCIを含む緩衝液
によって溶出されてくる両分にPQQが含まれていた。
得られたPQQ画分を下記条件で液体クロマトグラフィ
ー分析を行ったところ、化学合成されたPQQと両者は
ピークの保持時間(13分)が一致していた。
機 器二日本分光製高速液体クロマ1−グラフ、)・ラ
イl−1−ター カラム: H’W−4OS (+−ヨハール)溶Mlt
l&:水−7−1=l−=MJル(1: 1)検出器:
UV(254nm) 流速: 1.0 ml/ min 次に、PQQ画分から大量分取して、PQQを単離し、
PQQ325μgを得た。
実施例2. 3. 4. 5. 6及び7実施例1と同
様にして第3表に示した微生物を培養し、培養液中のP
QQ量を定量した。
第3表 実施例 培養時間(hr) PQQ量(μg/mり2 
94 5.8 3 45 4.9 4 60 4.6 5 50 14.5 6 60 7.8 7 50 26.1 脚注 実施例2ニブロタミノバククー ルベルIP0370B
実施例3:シュードモナス A1−2 (微工研菌寄第7599号) 実施例4:シュードモナス Pl−1 (微工研菌寄第7598号) 実施例5:シュードモナス P2−2 (微工研菌寄第7600号) 実施例6:シュードモナス P2−3 (微゛工研菌寄第7597号) 実施例7:シュードモナス N1−1 (微工研菌寄第7596号) 実施例8 5ON容培養タンクに、実施例1で用いたのと同一の組
成の培地301を加え、これにシュードモナスN1−1
 (微工研菌寄第7596号)を接種し、301/分の
通気及び500rpmの攪拌条件下に通気培養した。培
地中のメタノールを追加してメタノール濃度を1%に維
持しながら、50時間培養した。
PQQ生成量は30μg/mlであった。
実施例9 実施例1において、メタノール濃度を変えて64hr培
養を行った。
メタノール濃度 PQQ量(8g7m1)0、1 0.
5 0、25 1.8 0、5 2.0 1.0 4.5 3、0 3.6 実施例IO 実施例1に示した培地と同組成の培地を用いてブロクミ
ノバクター ルベル IPo 370Bの培養を行い、
得られた菌体を蒸留水で洗浄後、0D600−10、O
になるように菌体に蒸留水を加えてこれを洗浄細胞懸濁
液とした。
洗浄細胞懸濁液をOD6ω=1.0になるように0.1
Mリン酸カリウム緩衝液(al17.0゛)で希釈後に
メタノール濃度が1.0%、グルタミン酸濃度が0.6
%になるようにメタノール又はグルタミン酸を加えて3
0℃で反応を行った。生成したPQQは実施例1と同様
に定量した。
結果を以下の第4表に示す。
第4表 添加物 PQQiJi度(Xug/m1)6時間後 1
5時間後 メタノール 2.8’ 4.3 メタノール→− グルタミン酸 4.、8 3.8 な し 0.2 0.6
【図面の簡単な説明】
第1図は培養液等の試料中に含まれるPQQの量をめる
検量線を示すグラフ図であり、図の縦軸は0.16 m
gの膜を用いた場合の600 nmにおける1分当りの
吸光度差(へ〇D釦。/分/ 0.16 mg蛋白質)
を示し、横軸はPQQモル濃度(XIO”)を示す。 第2図は実施例1の培養経過を示すグラフ図であり、図
の横軸は培養時間(時間)を示し、左縦軸はPQQiJ
1度(μg/ml)を示し、右縦軸は菌の成育を(OD
600)で示したものであり、曲線(イ)はPQQi度
、曲線(ロ)は菌の成育を示す。 特許出願人 宇部興産株式会社 特許出願代理人 弁理士 青 木 朗 弁理士西舘和之 弁理士 石 1) 敬 弁理士 山 口 昭 之 弁理士西山雅也 第1図 ×10モルPQQ。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、 ブロタミノバククー属もしくはバラコツカス属に
    属するピロロキノリンキノン生産能を有する菌。またば
    シュードモナスAl−2、シュードモナスP1−1、シ
    ュードモナスP2−2、シュードモナスP2−3および
    シュードモナスN1−1のいずれか一種の菌を栄養培地
    で培養して培養物中にピロロキノリンキノンを生成せし
    め、これを採取することを特徴とするピロロキノリンキ
    ノンの製造方法。 2、 プロタミノパククー属もしくはバラコツカス属に
    属するピロロキノリンキノン生産能を有する菌またはシ
    ュードモナスA1−2、シュードモナスP1−1、シュ
    ートモナスP2−2、シュードモナスP2−3およびシ
    ュードモナスN1−1のいずれか一種の菌を栄養培地で
    培養して得られる菌体を分離し、この菌体の存在下にア
    ルコールまたは糖質とアンモニウム塩またはアミノ酸と
    を反応させてピロロキノリンキノンを生成せしめること
    を特徴とするピロロキノリンキノンの製造方法。
JP59107406A 1984-05-29 1984-05-29 ピロロキノリンキノンの製造方法 Granted JPS60251895A (ja)

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