JPS6022915B2 - L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼの製造法 - Google Patents
L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼの製造法Info
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- JPS6022915B2 JPS6022915B2 JP53088637A JP8863778A JPS6022915B2 JP S6022915 B2 JPS6022915 B2 JP S6022915B2 JP 53088637 A JP53088637 A JP 53088637A JP 8863778 A JP8863778 A JP 8863778A JP S6022915 B2 JPS6022915 B2 JP S6022915B2
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- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、L−Q−グリセロリン酸オキシダーゼ(L−
Q−亀ycero−3一phosphaに:02oxj
dored肌tase;以下L−Q一〇Pーオキシダー
ゼと称す)の製造法に関する。
Q−亀ycero−3一phosphaに:02oxj
dored肌tase;以下L−Q一〇Pーオキシダー
ゼと称す)の製造法に関する。
L一Q一GPーオキシダーゼは、L一Qーグリセロー3
−リン酸および酸素からジヒドロキシアセトン−3ーリ
ン酸および過酸化水素を生ずる反応を触媒するものであ
って、下記反応式〔1〕L−Gが十02一DHAP+日
202 〔1〕(ただし式中、L−○蛇はL
−Q−グリセロ−3ーリン酸を意味し、DHAPはヒド
ロキシアセトンー3−リン酸を意味する)で表わされ、
ストレブトコツカス(Streptococcus)属
、ラクトバシルス(Lacto蛇cillus)属「
oィコノストック(戊uconostoc)属、ベデイ
オ コッカ ス(pediococcus)属に属する
菌が生産することが知られている(特関昭53−728
92号公報)。
−リン酸および酸素からジヒドロキシアセトン−3ーリ
ン酸および過酸化水素を生ずる反応を触媒するものであ
って、下記反応式〔1〕L−Gが十02一DHAP+日
202 〔1〕(ただし式中、L−○蛇はL
−Q−グリセロ−3ーリン酸を意味し、DHAPはヒド
ロキシアセトンー3−リン酸を意味する)で表わされ、
ストレブトコツカス(Streptococcus)属
、ラクトバシルス(Lacto蛇cillus)属「
oィコノストック(戊uconostoc)属、ベデイ
オ コッカ ス(pediococcus)属に属する
菌が生産することが知られている(特関昭53−728
92号公報)。
しかしながら、公知のL−Q−GPーオキシダーゼは、
分子量約15万で、Km値=28hMであり、特にKm
値が大きく反応性が悪いものであった。本発明者らは、
種々研究した結果、上記の種々の微生物とその贋を異に
するアヱロコッカス(Aerococc雌)属に属する
菌、アェロコッカス・ビ リ タ ン ス IFO12
219( Aerococcusvjri池nsIFO
12219、同IFO12317が同様にL−Q一GP
ーオキシダーゼを生産することを見出した。本発明は上
記の知見に基いて完成されたもので、アェロコッカス属
に属するL−Q−GP−オキシダーゼ生産菌を培地に培
養し、その培養物からL−Q−GPーオキシダーゼを採
取することを特徴とするL一Q一GPーオキシダーゼの
製造法であって、このL−Q−GPーオキシダーゼは生
体内物質代謝におけるL−Q−グリセロ−3−リン酸を
基質とする酸イ控酵素であるため、血清またはその他の
試料中のL−Q−グリセロ−3ーリン酸、グリセリン、
グリセライド、ホスフアチジン酸、その他のリン脂質の
定量、グリセロキナーゼなどの酵素活性の測定などに、
必要に応じて他の酵素や呈色試験との組合せを用いて、
研究用試薬、診断用試薬として有用な用途を有するもの
である。
分子量約15万で、Km値=28hMであり、特にKm
値が大きく反応性が悪いものであった。本発明者らは、
種々研究した結果、上記の種々の微生物とその贋を異に
するアヱロコッカス(Aerococc雌)属に属する
菌、アェロコッカス・ビ リ タ ン ス IFO12
219( Aerococcusvjri池nsIFO
12219、同IFO12317が同様にL−Q一GP
ーオキシダーゼを生産することを見出した。本発明は上
記の知見に基いて完成されたもので、アェロコッカス属
に属するL−Q−GP−オキシダーゼ生産菌を培地に培
養し、その培養物からL−Q−GPーオキシダーゼを採
取することを特徴とするL一Q一GPーオキシダーゼの
製造法であって、このL−Q−GPーオキシダーゼは生
体内物質代謝におけるL−Q−グリセロ−3−リン酸を
基質とする酸イ控酵素であるため、血清またはその他の
試料中のL−Q−グリセロ−3ーリン酸、グリセリン、
グリセライド、ホスフアチジン酸、その他のリン脂質の
定量、グリセロキナーゼなどの酵素活性の測定などに、
必要に応じて他の酵素や呈色試験との組合せを用いて、
研究用試薬、診断用試薬として有用な用途を有するもの
である。
本発明におけるL−Q−GP−オキシダーゼ生産菌とし
ては、例えばアェロコッカス・ビリタンスIFO122
19、アエロコツカス・ビリタンス花012317が挙
げられる。
ては、例えばアェロコッカス・ビリタンスIFO122
19、アエロコツカス・ビリタンス花012317が挙
げられる。
本発明を実施するに当っては、L−Q−GP−オキシダ
ーゼ生産菌を、酵素を生産する通常の方法で培養する。
ーゼ生産菌を、酵素を生産する通常の方法で培養する。
培養の形態は通常液体培養で行なうのが有利である。培
地の栄養源としては、微生物の培養に通常用いられるも
のが広く使用され得る。炭素源としては同化可能な炭素
化合物であればよく、例えばグルコース、シユクロース
、ラクトース、マルトース、フラクトース、糠蜜、グリ
セロール、ピルビン酸などが使用される。窒素源として
は利用可能な窒素化合物であればよく、例えばべプトン
、ポリベプトン、肉エキス、酵母エキス、大豆粉、カゼ
イン加水分解物などが用いられる。その他、リン酸塩、
炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、力ルシウム、カリウム
、ナトリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類が必要に
応じて使用される。培養温度は菌が発育し、L−Q−G
P−オキシダーゼを生産する範囲内で適宜変更し得るが
、好ましくは25〜370程度がよく、また培養時間は
条件によって異なるが、L−Q−GP−オキシダーゼが
最高収量に達する時期を見計って適当な時期に培養を終
了すればよく、通常10〜4鞘時間程度である。
地の栄養源としては、微生物の培養に通常用いられるも
のが広く使用され得る。炭素源としては同化可能な炭素
化合物であればよく、例えばグルコース、シユクロース
、ラクトース、マルトース、フラクトース、糠蜜、グリ
セロール、ピルビン酸などが使用される。窒素源として
は利用可能な窒素化合物であればよく、例えばべプトン
、ポリベプトン、肉エキス、酵母エキス、大豆粉、カゼ
イン加水分解物などが用いられる。その他、リン酸塩、
炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、力ルシウム、カリウム
、ナトリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類が必要に
応じて使用される。培養温度は菌が発育し、L−Q−G
P−オキシダーゼを生産する範囲内で適宜変更し得るが
、好ましくは25〜370程度がよく、また培養時間は
条件によって異なるが、L−Q−GP−オキシダーゼが
最高収量に達する時期を見計って適当な時期に培養を終
了すればよく、通常10〜4鞘時間程度である。
次いで、このようにして得られた培養物からL−Q−G
P−オキシダーゼを採取するのであるが、本酵素は主と
して菌体内に存在する。
P−オキシダーゼを採取するのであるが、本酵素は主と
して菌体内に存在する。
本酵素を採取するには、まず得られた培養物を炉過また
は遠心分離などの手段によりその菌体を採取し、次いで
この菌体を種々の機械的方法、またリゾチームなどの酵
素的方法にて破壊し、また必要に応じてエチレンジアミ
ン四酢酸(EDTA)やトリトン×−100(Trit
onX−100:商品名)。アデカトール SO−12
0(商品名)などの界面活性剤を添加して本酵素を可溶
化して分離、採取する。さらにこのようにして得られた
L一Q−GPーオキシダーゼ含有溶液は濃縮するか、ま
たは濃縮することなく可溶性塩類、例えば硫安などを用
いて塩析せしめるが、親水性有機溶媒、例えばメタノー
ル、エタノール、アセトン、イソプロパノールなどの添
加により本酵素を沈澱せしめればよい。次いで、この沈
澱物は水または緩衝液に溶解し、半透膜にて透析せしめ
て低分子量の不純物を除去することができる。また、吸
着剤あるいはゲル炉過剤などによる吸着クロマトグラフ
ィーイオン交換クロマトグラフィーあるいはゲル炉過な
どの手段によりL−Q一GPーオキシダーゼを精製する
。さらにこれらの手段により得られた酵素溶液は減圧濃
縮、限外炉過膜濃縮、さらに凍結乾燥などの処理により
精製されたL−Q−GP−オキシダーゼを得る。次に、
本発明のL一Q−CP−オキシダ−ゼの力価の測定法、
その性状などについて述べる。
は遠心分離などの手段によりその菌体を採取し、次いで
この菌体を種々の機械的方法、またリゾチームなどの酵
素的方法にて破壊し、また必要に応じてエチレンジアミ
ン四酢酸(EDTA)やトリトン×−100(Trit
onX−100:商品名)。アデカトール SO−12
0(商品名)などの界面活性剤を添加して本酵素を可溶
化して分離、採取する。さらにこのようにして得られた
L一Q−GPーオキシダーゼ含有溶液は濃縮するか、ま
たは濃縮することなく可溶性塩類、例えば硫安などを用
いて塩析せしめるが、親水性有機溶媒、例えばメタノー
ル、エタノール、アセトン、イソプロパノールなどの添
加により本酵素を沈澱せしめればよい。次いで、この沈
澱物は水または緩衝液に溶解し、半透膜にて透析せしめ
て低分子量の不純物を除去することができる。また、吸
着剤あるいはゲル炉過剤などによる吸着クロマトグラフ
ィーイオン交換クロマトグラフィーあるいはゲル炉過な
どの手段によりL−Q一GPーオキシダーゼを精製する
。さらにこれらの手段により得られた酵素溶液は減圧濃
縮、限外炉過膜濃縮、さらに凍結乾燥などの処理により
精製されたL−Q−GP−オキシダーゼを得る。次に、
本発明のL一Q−CP−オキシダ−ゼの力価の測定法、
その性状などについて述べる。
‘1} 力価の測定法0.2Mトリス塩酸緩衝液(pH
8.0) 0.2の【パーオキシダーゼ(0.5帆/
肌,45U/泌) 〇.1
のZ0.3(W/V)4−アミノアンチピリン〇.・泌 0.1MDLーグリセロー3ーリン酸 0.1の【0
.2%(V/V)N,N−ジメチルアニリン
0.2のZ蒸留水
0.3の【上記組成の反応液1
.0の‘を小試験管に取り、3分間37℃で予備加温し
、これに20仏その酵素液を添加して1び分間反応せし
め、次いでこれに0.25%(W/V)ラウリルベンゼ
ンスルホン酸ナトリウム2.0の‘を加えて反応を停止
し、これを56則血の波長でその吸光度を測定する。
8.0) 0.2の【パーオキシダーゼ(0.5帆/
肌,45U/泌) 〇.1
のZ0.3(W/V)4−アミノアンチピリン〇.・泌 0.1MDLーグリセロー3ーリン酸 0.1の【0
.2%(V/V)N,N−ジメチルアニリン
0.2のZ蒸留水
0.3の【上記組成の反応液1
.0の‘を小試験管に取り、3分間37℃で予備加温し
、これに20仏その酵素液を添加して1び分間反応せし
め、次いでこれに0.25%(W/V)ラウリルベンゼ
ンスルホン酸ナトリウム2.0の‘を加えて反応を停止
し、これを56則血の波長でその吸光度を測定する。
酵素活性の算出は次式に従う。酵素灘(U小)=(鈴)
X(輪 (ただし、△Aは565mm‘こおける10分間での吸
光値を示す。
X(輪 (ただし、△Aは565mm‘こおける10分間での吸
光値を示す。
)‘2ー 基質特異性:L−G斑に基質特異性を有する
。
。
前記の力価の測定法におけるDL‐G斑の代りに、第1
表に記載の化合物を基質として用いてその相対活性を測
定したもので、その結果は第1表に示す通りである。第
1表 ‘3’ 酵素作用:L−G蛇および酸素からDHAPお
よび過酸化水素を生ずる反応を触媒する。
表に記載の化合物を基質として用いてその相対活性を測
定したもので、その結果は第1表に示す通りである。第
1表 ‘3’ 酵素作用:L−G蛇および酸素からDHAPお
よび過酸化水素を生ずる反応を触媒する。
その酵素反応式は、以下の通りである。
L‐Gが十02一DHAF十日202
‘4)至適pH
ジメチルグルタル酸−NaOH緩衝液(pH5.0〜7
.0)、トリスー塩酸緩衝液(pH7.0〜9.0)を
用いて、アェロコツカス・ビリダンス『012219よ
り得られたL一Q−GPーオキシダーゼの至通解を求め
た結果、第1図に示す通りであって、本酵素の至適軸は
7.5〜8.9寸近と認められる。
.0)、トリスー塩酸緩衝液(pH7.0〜9.0)を
用いて、アェロコツカス・ビリダンス『012219よ
り得られたL一Q−GPーオキシダーゼの至通解を求め
た結果、第1図に示す通りであって、本酵素の至適軸は
7.5〜8.9寸近と認められる。
‘51熱安定性
アエロコツカス・ビリダンスIFO12219より得ら
れたL−Q−GP−オキシダーゼを0.1Mジメチルグ
ルタル酸−NaOH緩衝液(pH7.0)に溶解し(0
.5U/の【)、これを0〜70qoで10分間加熱し
た後、その溶液中の残存活性を測定した。
れたL−Q−GP−オキシダーゼを0.1Mジメチルグ
ルタル酸−NaOH緩衝液(pH7.0)に溶解し(0
.5U/の【)、これを0〜70qoで10分間加熱し
た後、その溶液中の残存活性を測定した。
その結果は第2図に示す通りで4ぴ0付近まで安定であ
る。【6)pH安定性 アエロコツカス・ビリダンスIFO12219より得ら
れたL−Q一GPーオキシダーゼを、0.1Mジメチル
グルタル酸一NaOH緩衝液(冊5.0〜7.0)、ト
リス−塩酸緩衝液(pH7.0〜9.0)に溶解し(0
.5U/の【)、4500で10分間加溢した後、それ
ぞれの残存活性を測定した。
る。【6)pH安定性 アエロコツカス・ビリダンスIFO12219より得ら
れたL−Q一GPーオキシダーゼを、0.1Mジメチル
グルタル酸一NaOH緩衝液(冊5.0〜7.0)、ト
リス−塩酸緩衝液(pH7.0〜9.0)に溶解し(0
.5U/の【)、4500で10分間加溢した後、それ
ぞれの残存活性を測定した。
その結果は、第3図に示す通りである。また上記緩衝液
を用い、酵素濃度0.5m9/机とし、30ooで2餌
寿間処理した場合の残存活性を測定した結果、第4図に
示す通りで、舟6〜9付近で安定であった。
を用い、酵素濃度0.5m9/机とし、30ooで2餌
寿間処理した場合の残存活性を測定した結果、第4図に
示す通りで、舟6〜9付近で安定であった。
【71分子量:セフアデツクスG−150を用いるゲル
炉適法において分子量74000付近であり、SDSー
ポリアクリルアミドゲル電気泳動法において分子量75
00の廿近である。
炉適法において分子量74000付近であり、SDSー
ポリアクリルアミドゲル電気泳動法において分子量75
00の廿近である。
{81 Km値:約3.2hM付近である。
このKm値の測定方法は、公知の方法に準じて行なった
もので、詳しくは以下の通りでる。
もので、詳しくは以下の通りでる。
0.2M トリス塩酸緩衝液(pH8.0) 0.
2泌パーオキシダーゼ(45U/の【) 0.
1M0.3(W/V)%4ーアミノアンチピリン0.1
の【0.2(W/V)%N,Nージメチルアニリソ〇.
2のZL一Q一GP−オキシダーゼ(0.05U/の‘
)〇.・泌蒸留水 0
.2泌合計 0.9私〔反応停止液〕 0.25(W/V)%ラウリルベンゼンスルホン酸ナト
リウム 2.0泌〔操
作〕上記反応液0.9のZを小試験管に取り、370に
加溢する。
2泌パーオキシダーゼ(45U/の【) 0.
1M0.3(W/V)%4ーアミノアンチピリン0.1
の【0.2(W/V)%N,Nージメチルアニリソ〇.
2のZL一Q一GP−オキシダーゼ(0.05U/の‘
)〇.・泌蒸留水 0
.2泌合計 0.9私〔反応停止液〕 0.25(W/V)%ラウリルベンゼンスルホン酸ナト
リウム 2.0泌〔操
作〕上記反応液0.9のZを小試験管に取り、370に
加溢する。
これに0.靴M,0.75mM,1.仇hM,3,帆,
5,帆,7,帆,他M,2皿MのL−G班溶液0.1の
‘を添加して反応を開始し、37℃で正確に10分間反
応した後2.0の‘の反応停止液を添加し反応を停止し
た。次いで反応終了液を、波長56別皿で吸光度測定す
る。このときの最終基質濃度と酵素活性の関係をLin
eweaver−Burkらの方法により算出する。■
金属イオン、EDTAおよびPCMB(pークロロマ
ーキュリー安息香酸)添加における影響:第2表に示す
通りである。
5,帆,7,帆,他M,2皿MのL−G班溶液0.1の
‘を添加して反応を開始し、37℃で正確に10分間反
応した後2.0の‘の反応停止液を添加し反応を停止し
た。次いで反応終了液を、波長56別皿で吸光度測定す
る。このときの最終基質濃度と酵素活性の関係をLin
eweaver−Burkらの方法により算出する。■
金属イオン、EDTAおよびPCMB(pークロロマ
ーキュリー安息香酸)添加における影響:第2表に示す
通りである。
第2表
■ リン酸化糖添加における影響:第3表に示す通りで
ある。
ある。
第 3 表(L−G3P濃度:1.0mM■ 界面活性
剤添加における影響:第4表に示す通りである。
剤添加における影響:第4表に示す通りである。
第4
さらに、アエロコツカス・ビリダンス
FO12317より得られたL−Q−GPーオキシダー
ゼも同様の性状を有するものであった。
ゼも同様の性状を有するものであった。
次に実施例を挙げて本発明を具体的に述べるが、本発明
はこれによって何んら限定されるものではない。
はこれによって何んら限定されるものではない。
実施例 1
グリセリン1.0%、ラクトース2.0%、ポリベプト
ン1.0%、酵母エキス1.0%、肉エキス0.5%、
KH2P040.1%、K2HP040.1%、NaC
IO.2%、MgS04・7400.05%の組成より
なる培地(pH7.0)を30そ客のジャーフアレメー
タに入れ、10夕のシリコンKS−66(消泡剤、商品
名、信越化学K.K.製)を添加後120q0,20分
間滅菌する。
ン1.0%、酵母エキス1.0%、肉エキス0.5%、
KH2P040.1%、K2HP040.1%、NaC
IO.2%、MgS04・7400.05%の組成より
なる培地(pH7.0)を30そ客のジャーフアレメー
タに入れ、10夕のシリコンKS−66(消泡剤、商品
名、信越化学K.K.製)を添加後120q0,20分
間滅菌する。
袷後1畑時間予備培養したアェロコツカス・ビリダンス
IFO−12213『0一12317をそれぞれ、20
0の【桶菌し、30qoで1即時間培養し、培養後、培
養液を5,00仇pmで10分間遠心して集菌し、得ら
れた菌体はさらに、500叫の1仇hMリン酸塩緩衝液
(pH7.0)で洗浄後、リゾチーム溶液(0.4雌/
舷,10のMリン酸塩緩衝液)400羽中に懸濁し、3
70で6■ご間作用せしめて菌体を破壊し、酵素を可溶
化した後、5,00M司転で18分間遠心分離して酵素
液を得る。この際のL一Q−GPーオキシダーゼ活性は
次に示す通りであった。菌 株 酵素活性(u/
の【培養液)アエロコツカス・ビリタンスmO−122
19 0.80アエロコツカス・ビ
リタンスmO−12317 0.78
実施例 2アェロコツカス・ビリダンスm○−1221
9を実施例1に記載方法と同様にして培養、得た酵素液
420の‘(16,00肌)に硫安溶液を用いて硫安濃
度0.24〜0.48飽和で沈澱した画分を遠心分離に
て集め、その沈澱物をlowMリン酸緩衝液(pH7.
0)50泌に溶解し、これを1仇hMリン酸緩衝液(p
H7.0)に対してセルロースアセテート透析チーフを
用いて透析して、精製したL−Q−GPーオキシダーゼ
を得た。
IFO−12213『0一12317をそれぞれ、20
0の【桶菌し、30qoで1即時間培養し、培養後、培
養液を5,00仇pmで10分間遠心して集菌し、得ら
れた菌体はさらに、500叫の1仇hMリン酸塩緩衝液
(pH7.0)で洗浄後、リゾチーム溶液(0.4雌/
舷,10のMリン酸塩緩衝液)400羽中に懸濁し、3
70で6■ご間作用せしめて菌体を破壊し、酵素を可溶
化した後、5,00M司転で18分間遠心分離して酵素
液を得る。この際のL一Q−GPーオキシダーゼ活性は
次に示す通りであった。菌 株 酵素活性(u/
の【培養液)アエロコツカス・ビリタンスmO−122
19 0.80アエロコツカス・ビ
リタンスmO−12317 0.78
実施例 2アェロコツカス・ビリダンスm○−1221
9を実施例1に記載方法と同様にして培養、得た酵素液
420の‘(16,00肌)に硫安溶液を用いて硫安濃
度0.24〜0.48飽和で沈澱した画分を遠心分離に
て集め、その沈澱物をlowMリン酸緩衝液(pH7.
0)50泌に溶解し、これを1仇hMリン酸緩衝液(p
H7.0)に対してセルロースアセテート透析チーフを
用いて透析して、精製したL−Q−GPーオキシダーゼ
を得た。
なお、その回収率は83.6%であつた。実施例3:G
班の定量 上記力価の測定法の反応系におけるDL−G班の代りに
耳hM,L−○がを0〜50rそを用いて、さらにこれ
に水を加えて10の‘とする。
班の定量 上記力価の測定法の反応系におけるDL−G班の代りに
耳hM,L−○がを0〜50rそを用いて、さらにこれ
に水を加えて10の‘とする。
この反応液に上記実施例2で得た酵素液(22肌/泌)
20ムそを添加し、370で10分間反応を行い、力価
の測定法に従い反応を停止し、56別mで比色定量した
。その結果は第5図に示す通りで、吸光度約1.2付近
まで良好な直線性が得られ、また、対照に用いた日20
2の結果とも良く一致した。なお図中○‐0は軌M.L
−ば−グリセロー3ーリン酸、●−●は2.前M過酸化
水素を用いた検量線を示す。
20ムそを添加し、370で10分間反応を行い、力価
の測定法に従い反応を停止し、56別mで比色定量した
。その結果は第5図に示す通りで、吸光度約1.2付近
まで良好な直線性が得られ、また、対照に用いた日20
2の結果とも良く一致した。なお図中○‐0は軌M.L
−ば−グリセロー3ーリン酸、●−●は2.前M過酸化
水素を用いた検量線を示す。
第1図は本発明のL−Q−GP−オキシダーゼの至適p
Hを示し、第2図は本発明のL一Q−GP−オキシダー
ゼの熱安定性を示し、第3図および第4図は本発明のL
−Q一GP−オキシダーゼのpH安定性を示し、第5図
は本発明のL−Q−GP−オキシダーゼのG解の定量曲
線を示すものである。 第1図 第2図 第3図 第4図 第5図
Hを示し、第2図は本発明のL一Q−GP−オキシダー
ゼの熱安定性を示し、第3図および第4図は本発明のL
−Q一GP−オキシダーゼのpH安定性を示し、第5図
は本発明のL−Q−GP−オキシダーゼのG解の定量曲
線を示すものである。 第1図 第2図 第3図 第4図 第5図
Claims (1)
- 1 アエロコツカス属に属するL−α−グリセロリン酸
オキシダーゼ生産菌を培地に培養し、その培養物からL
−α−グリセロリン酸オキシダーゼを採取することを特
徴とするL−α−グリセロリン酸オキシダーゼの製造法
。
Priority Applications (8)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP53088637A JPS6022915B2 (ja) | 1978-07-20 | 1978-07-20 | L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼの製造法 |
GB7924637A GB2030149B (en) | 1978-07-20 | 1979-07-16 | Process for l- -glycerophosphate oxidase |
DK301679A DK147183C (da) | 1978-07-20 | 1979-07-18 | Fremgangsmaade til fremstilling af l-alfa-glycerophosphatoxidase |
FR7918591A FR2431534A1 (fr) | 1978-07-20 | 1979-07-18 | Procede pour la production de l'a-glycerophosphate oxydase |
CA332,153A CA1125205A (en) | 1978-07-20 | 1979-07-19 | PROCESS FOR PRODUCTION OF L-.alpha.-GLYCEROPHOSPHATE OXIDASE |
IT24490/79A IT1122216B (it) | 1978-07-20 | 1979-07-19 | Procedimento per la produzione di l-alfa-glicerofosfato ossidasi |
DE2929277A DE2929277C2 (de) | 1978-07-20 | 1979-07-19 | Verfahren zur Herstellung von L-α-Glycerophosphatoxidase |
US06/059,583 US4275161A (en) | 1978-07-20 | 1979-07-20 | Process for the manufacture of L-α-glycerophosphate oxidase |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP53088637A JPS6022915B2 (ja) | 1978-07-20 | 1978-07-20 | L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼの製造法 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58145212A Division JPS6023835B2 (ja) | 1983-08-09 | 1983-08-09 | L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼ |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5515746A JPS5515746A (en) | 1980-02-04 |
JPS6022915B2 true JPS6022915B2 (ja) | 1985-06-04 |
Family
ID=13948321
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP53088637A Expired JPS6022915B2 (ja) | 1978-07-20 | 1978-07-20 | L−α−グリセロリン酸オキシダ−ゼの製造法 |
Country Status (8)
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---|---|
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JP (1) | JPS6022915B2 (ja) |
CA (1) | CA1125205A (ja) |
DE (1) | DE2929277C2 (ja) |
DK (1) | DK147183C (ja) |
FR (1) | FR2431534A1 (ja) |
GB (1) | GB2030149B (ja) |
IT (1) | IT1122216B (ja) |
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JPS59140900A (ja) * | 1983-01-28 | 1984-08-13 | Toyo Jozo Co Ltd | 新規な酵素的高感度測定法 |
GB8618469D0 (en) * | 1986-07-29 | 1986-09-03 | Genzyme Biochemicals Ltd | Enzymes |
GB2213822B (en) * | 1987-12-15 | 1991-12-18 | Toyo Jozo Kk | Dna having genetic information of l-´-glycerophosphate oxidase and application thereof |
UA72065C2 (en) * | 2004-09-10 | 2005-01-17 | Viridans Ltd Liability Company | Strain aerococcus viridans 167k imb b-7069 with antibacterial activity and "viabac" preparation comprising this strain |
Family Cites Families (2)
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---|---|---|---|---|
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US4166005A (en) * | 1976-12-10 | 1979-08-28 | Eastman Kodak Company | Process for the production of α-glycerophosphate oxidase |
-
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- 1978-07-20 JP JP53088637A patent/JPS6022915B2/ja not_active Expired
-
1979
- 1979-07-16 GB GB7924637A patent/GB2030149B/en not_active Expired
- 1979-07-18 DK DK301679A patent/DK147183C/da active
- 1979-07-18 FR FR7918591A patent/FR2431534A1/fr active Granted
- 1979-07-19 IT IT24490/79A patent/IT1122216B/it active
- 1979-07-19 DE DE2929277A patent/DE2929277C2/de not_active Expired
- 1979-07-19 CA CA332,153A patent/CA1125205A/en not_active Expired
- 1979-07-20 US US06/059,583 patent/US4275161A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DK147183B (da) | 1984-05-07 |
GB2030149B (en) | 1982-07-21 |
CA1125205A (en) | 1982-06-08 |
DK301679A (da) | 1980-01-21 |
US4275161A (en) | 1981-06-23 |
IT7924490A0 (it) | 1979-07-19 |
FR2431534B1 (ja) | 1983-07-08 |
GB2030149A (en) | 1980-04-02 |
DK147183C (da) | 1984-10-22 |
DE2929277A1 (de) | 1980-01-31 |
FR2431534A1 (fr) | 1980-02-15 |
JPS5515746A (en) | 1980-02-04 |
DE2929277C2 (de) | 1986-11-06 |
IT1122216B (it) | 1986-04-23 |
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