JPS5814198B2 - Nadh−ペルオキシダ−ゼ、その製法及びこれを用いるh↓2o↓2の測定法 - Google Patents
Nadh−ペルオキシダ−ゼ、その製法及びこれを用いるh↓2o↓2の測定法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0065—Oxidoreductases (1.) acting on hydrogen peroxide as acceptor (1.11)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/26—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
- C12Q1/28—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase involving peroxidase
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、公知のNADH−ベルオキンダーゼとは種々
の特性において異なる微生物からの新規NADH−ベル
オキシダーゼ、その製法並びに、殊に特異的なオキシダ
ーゼの存在下での複合反応でH202を測定するために
この新規酵素を使用することに関する。
の特性において異なる微生物からの新規NADH−ベル
オキシダーゼ、その製法並びに、殊に特異的なオキシダ
ーゼの存在下での複合反応でH202を測定するために
この新規酵素を使用することに関する。
多くの重要な物質例えばグルコース、尿酸、コレステリ
ン、アミノ酸、アルコール等は、その反応でH202を
生じるオキシダーゼを用いて酵素的に測定される。
ン、アミノ酸、アルコール等は、その反応でH202を
生じるオキシダーゼを用いて酵素的に測定される。
このH2O2は、引続き種々の方法で例えばクロモゲン
の酸化、カタラーゼを用いるアルコールの酸化(ハンツ
の反応; Hantz’s cheReaktion
)、アルデヒドーデヒドロゲナーゼを用いるアルコール
の酸化等により測定される。
の酸化、カタラーゼを用いるアルコールの酸化(ハンツ
の反応; Hantz’s cheReaktion
)、アルデヒドーデヒドロゲナーゼを用いるアルコール
の酸化等により測定される。
これらのすべての指示反応はいくつかの欠点を有する。
例えばクロモゲンの過酸化は薬剤により阻害され、ハン
ツの反応の使用下における検査は非常に長い反応時間を
必要とし、アルデヒドーデヒドロゲナーゼ上での反応実
施は煩雑であり、かつこの酵素は非常に不安定であるこ
と等である。
ツの反応の使用下における検査は非常に長い反応時間を
必要とし、アルデヒドーデヒドロゲナーゼ上での反応実
施は煩雑であり、かつこの酵素は非常に不安定であるこ
と等である。
従って、これらの欠点を有せず、殊に特異的オキシダ?
ゼとの組合せの際にも使用できるH20の簡単な測定法
が必要である。
ゼとの組合せの際にも使用できるH20の簡単な測定法
が必要である。
H202を形成する特異的オキシダーゼ反応を酵素的測
定に有利に使用されるNADH一反応と組合わせること
は理論的には可能である。
定に有利に使用されるNADH一反応と組合わせること
は理論的には可能である。
ここでNADHは還元型のニコチンアミドーアデニンー
ジヌクレオチドを意味する。
ジヌクレオチドを意味する。
反応:1で触媒作用をするNADH−ベルオキシダーゼ
(NADH−POD)は既に公知であるCABB55巻
415頁(1955年)、JBC225巻557頁(1
957年)参照〕。
(NADH−POD)は既に公知であるCABB55巻
415頁(1955年)、JBC225巻557頁(1
957年)参照〕。
EC一屋1.11.1.1を有するこの酵素は、ストレ
プトコツカス・ファエカリス( S treptoco
ccnsfaecalis )1 0 C I及びラク
トハシルス・カセイ( Lactobacillns
casei )中に発見され、最適pH値5、4、H2
02に対するミハエリス定数?M2X10−’及びNA
DHに対するミハエリス定数1.4X10−’を有する
ことが明らかである。
プトコツカス・ファエカリス( S treptoco
ccnsfaecalis )1 0 C I及びラク
トハシルス・カセイ( Lactobacillns
casei )中に発見され、最適pH値5、4、H2
02に対するミハエリス定数?M2X10−’及びNA
DHに対するミハエリス定数1.4X10−’を有する
ことが明らかである。
多くのオキシダーゼにとっては、アルカリ性領域のpH
値のみが好適であるが、この公知NADH−ベルオキシ
ダーゼはpH7.0で既に実際に不活性である[ Ar
ch. B iochem . B iophys.1
11巻535頁(1965年)参照〕ので、しかも、不
適当なミー・工9ス定数に基づき、この公知NADH−
ベルオキシダーゼは、実際に特異的なオキシダーゼとの
複合反応でのH20一測定のためには不適当である。
値のみが好適であるが、この公知NADH−ベルオキシ
ダーゼはpH7.0で既に実際に不活性である[ Ar
ch. B iochem . B iophys.1
11巻535頁(1965年)参照〕ので、しかも、不
適当なミー・工9ス定数に基づき、この公知NADH−
ベルオキシダーゼは、実際に特異的なオキシダーゼとの
複合反応でのH20一測定のためには不適当である。
ところで、この公知NADH−ベルオキシダーゼとは明
らかに異なり、これらの欠点を有せず、酵素的H202
一測定の際に殊に特異的オキシダー?との複合反応で使
用するのに好適なもう12のNADH−ベルオキシダー
ゼを発見した。
らかに異なり、これらの欠点を有せず、酵素的H202
一測定の際に殊に特異的オキシダー?との複合反応で使
用するのに好適なもう12のNADH−ベルオキシダー
ゼを発見した。
従って、本発明の目的は、酢酸カリウム0.1モルを含
有する0.2M}リスー(ヒドロキシメチル)一アミノ
メタン緩衝液( pH 6.0 )中、25℃で測定し
たH20に対するミハエ9ス定数KMが2.8×1 0
−’ Mで、NADHに対するそれが1.7×10−
’Mであり、安定pH一値幅4.5〜9,0、最適pH
一値6〜7を有し、NADHをH20で酸化してNAD
とH20にする反応に作用するNADH−ベルオキシダ
ーゼである。
有する0.2M}リスー(ヒドロキシメチル)一アミノ
メタン緩衝液( pH 6.0 )中、25℃で測定し
たH20に対するミハエ9ス定数KMが2.8×1 0
−’ Mで、NADHに対するそれが1.7×10−
’Mであり、安定pH一値幅4.5〜9,0、最適pH
一値6〜7を有し、NADHをH20で酸化してNAD
とH20にする反応に作用するNADH−ベルオキシダ
ーゼである。
このNADH−ベルオキシダーゼは、pn 6〜7で測
定の際に、50℃で2時間損失がなかった。
定の際に、50℃で2時間損失がなかった。
この新規酵素はグリセリン/水(1:1)中で安定であ
り、pn6.oで15分間加熱する際の温度安定性は5
0℃までで100%、60℃までで65%、65℃まで
で15.5%であり、70℃までで1%以下である。
り、pn6.oで15分間加熱する際の温度安定性は5
0℃までで100%、60℃までで65%、65℃まで
で15.5%であり、70℃までで1%以下である。
作用至適温度は室温であんpH 5.0 , 5.4
, 6.0 ,7.0 , 7.5 , 8.0及び9
.5における酵素活性はそれぞれ67%,98%,10
0%,88%,56%,37%及び19%である。
, 6.0 ,7.0 , 7.5 , 8.0及び9
.5における酵素活性はそれぞれ67%,98%,10
0%,88%,56%,37%及び19%である。
その活性化剤は、低級の有機カルボン酸塩、例えば酢酸
塩、酪酸塩、コハク酸塩、蓚酸塩、ギ酸塩、乳酸塩であ
り硫酸塩及び塩化物も使用でき、その作用効果は前記の
順序で低下する。
塩、酪酸塩、コハク酸塩、蓚酸塩、ギ酸塩、乳酸塩であ
り硫酸塩及び塩化物も使用でき、その作用効果は前記の
順序で低下する。
?の阻害剤は重金属であり、その分子量は59000で
ある(ディスクー電気泳動による)。
ある(ディスクー電気泳動による)。
この新規酵素は、その低いKM値に基づき、H202一
測定にとって他の公知酵素よりも著るしく好適である。
測定にとって他の公知酵素よりも著るしく好適である。
KMが大きくなるに従がい、測定時にH20一濃度も常
に高くなければならない。
に高くなければならない。
しかしながら、H20一濃度が高くなると、試料中に通
例存在するカタラーゼの影響も大きくなる。
例存在するカタラーゼの影響も大きくなる。
しかしながら、カタラーゼとH20との競合によシ、結
果は正しくなる。
果は正しくなる。
本発明の新規酵素は、公知酵素と同様にフラポプロテイ
ンであるので黄色である。
ンであるので黄色である。
グリセリン/水1:1中で、この酵素は、+4℃で数ケ
月安定である。
月安定である。
NADPHを有して、NADHに比べて約8%の反応速
度を有する公知酵素とは反対に、NADPHはNADH
と代替できない。
度を有する公知酵素とは反対に、NADPHはNADH
と代替できない。
この酵素は、トリス緩衝液中、アセテートー又はグロピ
オネートーイオンの存在で、最適pH値6.0を有し、
酢酸ナトリウム緩衝液中、pH5.4(従って、公知酵
素の最適条件下)での活性は、約20%低い。
オネートーイオンの存在で、最適pH値6.0を有し、
酢酸ナトリウム緩衝液中、pH5.4(従って、公知酵
素の最適条件下)での活性は、約20%低い。
pH9.0ではこの活性はなお最適の約20%である。
本発明により、この新規酵素は、ストレプトコツカス・
ファエカリス( S treptococcusfae
calis) AT C C 8 0 4 3から得ら
れる。
ファエカリス( S treptococcusfae
calis) AT C C 8 0 4 3から得ら
れる。
その取得は、該微生物の可溶化によるか又は界面活性剤
での処理により、酵素を遊離させ、次いで、これを溶液
から単離させることにより行なう。
での処理により、酵素を遊離させ、次いで、これを溶液
から単離させることにより行なう。
好適な可溶化法は、例えば、超音波作用、ガラスパール
を用いる磨砕、高い剪断力の作用等である。
を用いる磨砕、高い剪断力の作用等である。
これらのすべての可溶化法は公知であり、微生物にとっ
て慣用のことである。
て慣用のことである。
界面活性剤での処理は有利に、25〜60℃の温度で行
なう。
なう。
約4.5〜6.0の弱酸性pH値で45〜55℃での処
理が有利である。
理が有利である。
一般に、15〜30分で充分でアシ、その作用時間は、
欠点なしに著るしく超過することができる。
欠点なしに著るしく超過することができる。
例えば55℃で3時間の反応時間でもなお非常に良好な
収率が得られる。
収率が得られる。
この場合、機械的可溶化法の際よりも少ない不純物が溶
解し従って当初から純粋な酵素が得られるので、界面活
性剤での処理が有利である。
解し従って当初から純粋な酵素が得られるので、界面活
性剤での処理が有利である。
界面活性剤としては非イオン性のものが有利である。
特に、ポリエ%レングリコールエステル例えば、アルキ
ルアリールポリエ%レングリコールエステル例えばトリ
トン( Triton ) X−1 0 0が有利であ
る。
ルアリールポリエ%レングリコールエステル例えばトリ
トン( Triton ) X−1 0 0が有利であ
る。
この可溶化法の特別な利点は、障害性のNADH−オキ
シダーゼの含分が特に僅かであることにもある。
シダーゼの含分が特に僅かであることにもある。
ここの酵素を得るために、例えば遠心分離により溶液か
ら不溶物を除き、得られる澄明な上澄液からこの酵素を
含有する蛋白質フラクションを沈殿させることができる
。
ら不溶物を除き、得られる澄明な上澄液からこの酵素を
含有する蛋白質フラクションを沈殿させることができる
。
沈殿のために、生化学に慣用の手段例えば硫酸アルミニ
ウムを用いる塩析、有機溶剤例えばアセトン又はメタノ
ールによる沈殿、ポリイオン例えばポリエ%レンイミン
等を用いる沈殿が好適である。
ウムを用いる塩析、有機溶剤例えばアセトン又はメタノ
ールによる沈殿、ポリイオン例えばポリエ%レンイミン
等を用いる沈殿が好適である。
粗製酵素の精製は例えば吸着剤例えばカルボキシメ%ル
セルロース網状化デキストラン、イオン交換体等を用い
るクロマトグラフイにより行なうことができる。
セルロース網状化デキストラン、イオン交換体等を用い
るクロマトグラフイにより行なうことができる。
更に、この酵素から、酸処理によ如付随物質を除くこと
もできる。
もできる。
この酸処理は、4.2〜4.8のPH一値で、10〜2
5分間行なうのが有利である。
5分間行なうのが有利である。
従って、有利な精製法は、酵素水溶液をpH4.2〜4
.8に調節し、不溶分を分離除去し、上澄液中に存在す
る酵素をポリエ%レンイミンで分別することによりなる
。
.8に調節し、不溶分を分離除去し、上澄液中に存在す
る酵素をポリエ%レンイミンで分別することによりなる
。
この取得法のすべての工程を緩衝液中で実施することが
理解される。
理解される。
この際特に好適な緩衝液は、燐酸塩緩衝液、トリスー緩
衝液及び酢酸塩緩衝液である。
衝液及び酢酸塩緩衝液である。
しかしながら、他の慣用の緩衝液例えばグリシン緩衝液
、ホウ酸塩緩衝液等も使用可能である。
、ホウ酸塩緩衝液等も使用可能である。
本発明のもう1つの目的は、この新規NADH−ベルオ
キシダーゼを、特異的オキシダーゼを用いる単純又は複
合一反応でのH202の測定に使用することである。
キシダーゼを、特異的オキシダーゼを用いる単純又は複
合一反応でのH202の測定に使用することである。
この測定は、6.0〜9.0のpH一値で行なうのが有
利である。
利である。
こうして、特異的オキシダーゼ反応をNADH−NAD
一反応の測定と連結することができる。
一反応の測定と連結することができる。
最後の反応は、公知のように、NADH一濃度変化に比
例する吸光度変化の測定により、特に簡単に追跡するこ
とができる。
例する吸光度変化の測定により、特に簡単に追跡するこ
とができる。
本発明における特異的オキシダーゼとは、特定の基質及
び酸素と反応して、H202を形成させる酸素である。
び酸素と反応して、H202を形成させる酸素である。
本発明における特異的オキシダーゼとしては、グリコー
スオキシダーゼ、D−アミノ酸オキシダーゼ、L−アミ
ノ酸オキシダーゼ、コレステリンオキシダーゼ、アルコ
ールオキシダーゼ、ウリカーゼ及びキサンチンオキシダ
ーゼが有利に使用される。
スオキシダーゼ、D−アミノ酸オキシダーゼ、L−アミ
ノ酸オキシダーゼ、コレステリンオキシダーゼ、アルコ
ールオキシダーゼ、ウリカーゼ及びキサンチンオキシダ
ーゼが有利に使用される。
これに応じて、複合反応でグルコース、D一アミノ酸例
えばD−アラ二ン、L−アミノ酸例えばL一ロイシン、
コレステリン及びコレステリンエステル、低級アルコー
ル、尿酸、キサンチン及びヒポキサンチンが測定できる
。
えばD−アラ二ン、L−アミノ酸例えばL一ロイシン、
コレステリン及びコレステリンエステル、低級アルコー
ル、尿酸、キサンチン及びヒポキサンチンが測定できる
。
単純反応では、H202そのもの(即ちオキシダーゼ系
の存在における中間生成物として生じるものだけでない
)を測定することができる。
の存在における中間生成物として生じるものだけでない
)を測定することができる。
本発明のNADH−ベルオキシダーゼの測定は、次の試
験により有利に実施できる: トリスー酢酸カリウム緩衝液 (トリス0.2M+酢酸カリウム0.15M)〔トリス
2.42g+酢酸カリウム1.41をH20?0ml中
に溶かし、2N酢酸でpH6.0に調節しH2Oを加え
て100mlとした)2.68mlNADH(6mM)
[NADH57mgをH20 1ml中に溶かした〕
0.201rll 試料NAI)H−ベルオキシダーゼ 0.02mlを
混合し、365nmXd=1crr1、25℃で、前変
化( Vorlauf )△E /ymrを記録する。
験により有利に実施できる: トリスー酢酸カリウム緩衝液 (トリス0.2M+酢酸カリウム0.15M)〔トリス
2.42g+酢酸カリウム1.41をH20?0ml中
に溶かし、2N酢酸でpH6.0に調節しH2Oを加え
て100mlとした)2.68mlNADH(6mM)
[NADH57mgをH20 1ml中に溶かした〕
0.201rll 試料NAI)H−ベルオキシダーゼ 0.02mlを
混合し、365nmXd=1crr1、25℃で、前変
化( Vorlauf )△E /ymrを記録する。
この前変化(吸光度減少)はNADH−オキシダーゼの
計算のだめに役立つ。
計算のだめに役立つ。
H202〔40mモル( 30%H200.05dをH
20IOrI1lで稀釈)1 0.10m
/を混合し、吸光度変化/一を測定する(△E/−+m
LNADH−ベルオキシダーゼー活性の計算のために、
NADH−オキシダーゼー前変化の△E/−inを引く
。
20IOrI1lで稀釈)1 0.10m
/を混合し、吸光度変化/一を測定する(△E/−+m
LNADH−ベルオキシダーゼー活性の計算のために、
NADH−オキシダーゼー前変化の△E/−inを引く
。
トリスー酢酸塩一緩衝液を使用するのが有利であるが、
NADH−PODの使用は、この緩衝液のみに限定され
ない。
NADH−PODの使用は、この緩衝液のみに限定され
ない。
NADH−PODを用いるH202の測定は、特に、酢
酸ナトリウム、ピベラジン、燐酸カリウム、二燐酸カリ
ウム、ホウ酸塩/クエン酸塩、グ9シルーグリシン、ト
リエタノールアミン・HCl又はHEPES(N−2−
ヒドロキシエチルピペラジンーN一エタンースルホン酸
)を緩衝液系として用いて実施することができる。
酸ナトリウム、ピベラジン、燐酸カリウム、二燐酸カリ
ウム、ホウ酸塩/クエン酸塩、グ9シルーグリシン、ト
リエタノールアミン・HCl又はHEPES(N−2−
ヒドロキシエチルピペラジンーN一エタンースルホン酸
)を緩衝液系として用いて実施することができる。
相応する方法で、H202一測定を実施することもでき
、この際NADH−PODを過剰に加え、吸光度変化に
応用するH202一量を測定する。
、この際NADH−PODを過剰に加え、吸光度変化に
応用するH202一量を測定する。
この測定は最終点法で、又は動的に即ち、特定の短時間
内の吸光度変化を測定することによシ行なう?とができ
る。
内の吸光度変化を測定することによシ行なう?とができ
る。
前記のトリスー酢酸カリウム緩衝液中、PH8−ORび
前記測定条件下におけるH202一測定の詳細及び時間
経過を添付図面に示す。
前記測定条件下におけるH202一測定の詳細及び時間
経過を添付図面に示す。
第1図は、横軸にH20一量を示し、縦軸に吸光度変化
を示す検量線図であり、第2図は、25℃における時間
と吸光度減少の関係を示す図である。
を示す検量線図であり、第2図は、25℃における時間
と吸光度減少の関係を示す図である。
最初に、H2020.4μMolを添加した。これら2
つの図面は、本発明による酵素が定量的なH202一測
定に使用できることを示している。
つの図面は、本発明による酵素が定量的なH202一測
定に使用できることを示している。
次に実施例につき本発明を説明する。
例l
酵素の取得及び精製
ストレプトコツカス・ファエカリスATCC8043を
0.02M燐酸カリウム( pH 5.0 )中のトリ
トン(TRITON)X−100の1%溶液と共に30
分間55゛℃に加熱する。
0.02M燐酸カリウム( pH 5.0 )中のトリ
トン(TRITON)X−100の1%溶液と共に30
分間55゛℃に加熱する。
次いで、4℃に冷却し、不溶分を分離除去する。
活性1.77U/一及び特異活性0.77U/■を有す
る水溶液が得られる。
る水溶液が得られる。
得られた溶液に、全活性が沈殿中に認められるまで硫酸
アンモニウムを加える。
アンモニウムを加える。
沈殿を涙過し、燐酸塩緩衝液(pH5.0)中に入れ、
モレキュラシーブを通して脱塩する。
モレキュラシーブを通して脱塩する。
こうして得た酵素溶液を直接又は予め濃縮の後に凍結菟
燥によシ又は3.0M硫酸アンモニウム液(pH約7)
中に入れて使用することができる。
燥によシ又は3.0M硫酸アンモニウム液(pH約7)
中に入れて使用することができる。
出発溶液を、予め酵素の分離をすることなく、硫酸アン
モニウム沈殿により次のように更に精製するのが有利で
ある: 溶液を酢酸でpH4.4に調節し、20分間放置?る。
モニウム沈殿により次のように更に精製するのが有利で
ある: 溶液を酢酸でpH4.4に調節し、20分間放置?る。
次いで、不溶分を沢別する。上澄液をポリエチレンイミ
ン溶液に少量宛加え、その都度生じる不溶分を沢過する
。
ン溶液に少量宛加え、その都度生じる不溶分を沢過する
。
酵素含有フラクションを改めて緩衝液中に溶かし、ジエ
チルアミノエチルセルロースを通すクロマトグラフイに
かける。
チルアミノエチルセルロースを通すクロマトグラフイに
かける。
引続き、網状化されたデキストランを通して脱塩する,
こうして、約45U/7vの製品が得られる。
こうして、約45U/7vの製品が得られる。
例2
NADH−PODの活性と試験に使用した緩衝液との関
係 0.1M緩衝液(H201mM,NADH0.4mM)
中で測定。
係 0.1M緩衝液(H201mM,NADH0.4mM)
中で測定。
例3
試験系でのpn値がNADH−PODの活性に及ぼす影
響: 0.1M}リスー酢酸塩緩衝液(H2021mM及びN
ADH0.4mM)中で測定 例4 ウリカーゼを用いる尿酸測定 次式に応じて測定を行なう: ウリカーゼ、本発明によるNADH−POD及びNAD
Hを、それぞれ酢酸カリウム0.15Mを含有する種々
のpH値の0.2M}!Jスー酢酸塩緩衝液中に溶かす
。
響: 0.1M}リスー酢酸塩緩衝液(H2021mM及びN
ADH0.4mM)中で測定 例4 ウリカーゼを用いる尿酸測定 次式に応じて測定を行なう: ウリカーゼ、本発明によるNADH−POD及びNAD
Hを、それぞれ酢酸カリウム0.15Mを含有する種々
のpH値の0.2M}!Jスー酢酸塩緩衝液中に溶かす
。
次いで、尿酸0.2μモル食有水溶液を最初に添加した
。
。
次の結果が得られた:スピルギルス・フラプスからのウ
リカーゼIU,試験料3−、25℃、365nm) で
の尿酸測定精度(4)(pH8で5分反応時間の際の値
=100係に比べて) 例5 グリコースオキシダーゼ(COD)を用いるグリコース
測定 次式に従って測定する: 測定は、pH 7.0で、GOD210U.NADH−
POD0.2U及びムタロターゼ60Uの使用下に実施
した。
リカーゼIU,試験料3−、25℃、365nm) で
の尿酸測定精度(4)(pH8で5分反応時間の際の値
=100係に比べて) 例5 グリコースオキシダーゼ(COD)を用いるグリコース
測定 次式に従って測定する: 測定は、pH 7.0で、GOD210U.NADH−
POD0.2U及びムタロターゼ60Uの使用下に実施
した。
尿中のグルコースの測定は、公知法COD−ペリドR[
GOD−Perid R :西ドイツ特許第1648
840号明細書、及びH.U.ベルクマイヤーの前記文
献3版2巻、1257頁(1974年)参照〕で得られ
た値の100%が得られた。
GOD−Perid R :西ドイツ特許第1648
840号明細書、及びH.U.ベルクマイヤーの前記文
献3版2巻、1257頁(1974年)参照〕で得られ
た値の100%が得られた。
例6
D−アミノ酸オキシダーゼ(D−AOD)を用いるD−
アラニンの測定 測定は次式により行なう: 測定は、pH8.5で、NADH−POD0.25U,
D−AOD20U,ラクテートデヒドロゲナーゼ5Uの
使用下に、25℃で実施した。
アラニンの測定 測定は次式により行なう: 測定は、pH8.5で、NADH−POD0.25U,
D−AOD20U,ラクテートデヒドロゲナーゼ5Uの
使用下に、25℃で実施した。
25℃で20分恒温保持の際に、測定精度は100%で
あった。
あった。
参照方法:H.U.ベルグマイヤーの前記文献3版■巻
1731頁(1974年)のM. グラスル(Graβl)の方法 例7 クロタルス・テリフイクス( Crotaluster
rificus )からのし−アミノ酸オキシターゼ(
L−AOD)を用いるし一ロイシンの測定測定は次式に
従って行なう: pH7.5〜8.0で、トリスーアセテートー緩衝液(
0.2M)(これは酢酸塩0.15Mを含有)中で実施
した。
1731頁(1974年)のM. グラスル(Graβl)の方法 例7 クロタルス・テリフイクス( Crotaluster
rificus )からのし−アミノ酸オキシターゼ(
L−AOD)を用いるし一ロイシンの測定測定は次式に
従って行なう: pH7.5〜8.0で、トリスーアセテートー緩衝液(
0.2M)(これは酢酸塩0.15Mを含有)中で実施
した。
試験時に本発明によるNADH−POD0.2U及びL
−AOD0.7Uの添加の際に、測定精度は約100%
であった。
−AOD0.7Uの添加の際に、測定精度は約100%
であった。
L一口イシン0,2μモルの濃度の際に、反応時間は約
20分であった。
20分であった。
例8
コレステリンオキシダーゼ及びコレステリンエステラー
ゼを用いるコレステリンエステルー測定測定は次式に従
って行なう: 慣用のコレステリンー標準液及び血清を使用した。
ゼを用いるコレステリンエステルー測定測定は次式に従
って行なう: 慣用のコレステリンー標準液及び血清を使用した。
コレステリン0.2μモルを有する慣用の標準液を用い
ての測定精度は、6.0〜9.0OpH値、9〜12分
で98〜102%であった。
ての測定精度は、6.0〜9.0OpH値、9〜12分
で98〜102%であった。
試験量3一中で、NADH−POD0.IU,コレステ
リンオキシダーゼ2Uを使用した。
リンオキシダーゼ2Uを使用した。
エステル化されたコレステリン分のエタノール性KOH
を用いる鹸化下における血清中のコレステリン測定で測
定精度は95〜105チであった。
を用いる鹸化下における血清中のコレステリン測定で測
定精度は95〜105チであった。
例9
メタノールーオキシダーゼ(MOD)を用いるアルコー
ルの測定 測定は次式に従って行なう: 測定は9.0〜9.5のpH値でグリシンーピ口燐酸ナ
トリウム緩衝液中で、セミ力ルバジドの添加のもとに行
なった。
ルの測定 測定は次式に従って行なう: 測定は9.0〜9.5のpH値でグリシンーピ口燐酸ナ
トリウム緩衝液中で、セミ力ルバジドの添加のもとに行
なった。
使用した酵素量は、NADH−POD0.3U及びMO
D8Uであった。
D8Uであった。
メタノール及びエタノール0.2μモルでの測定精度は
100チであった。
100チであった。
イソプロパノールを用いてもこの測定を実施することが
できた。
できた。
例10
キサンチンオキシダーゼ(XOD)を用いるキサンチン
及びヒポキサンチンの測定 測定は次式に従って行なう: 測定はpH8.0で、トリスー緩衝液を用い、前記の例
に記載と同様にして行なった。
及びヒポキサンチンの測定 測定は次式に従って行なう: 測定はpH8.0で、トリスー緩衝液を用い、前記の例
に記載と同様にして行なった。
測定精度はキサンチンもしくはヒポキサンチン100%
であった。
であった。
参照方法として、H.U.ベルクマイヤーのメトーデン
・デル・エンツイマテイッシエン・アナリイゼ3版、■
巻1988頁(1974年)に記載の方法を使用した。
・デル・エンツイマテイッシエン・アナリイゼ3版、■
巻1988頁(1974年)に記載の方法を使用した。
第1図はH202量と吸光度変化の関係を示す検量線図
、第2図は時間と吸光度低下の関係を示す図である。
、第2図は時間と吸光度低下の関係を示す図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 酢酸カリウム0.1モルを含有する0.2Mトリス
緩衝液( pH 6.0 )中、25℃で測定したH2
02に対するミハエリス定数が2.8・10−5Mであ
り、NADHに対するミハエリス定数が1.7・10−
5Mであり、安定pH一値幅は4.5〜9.0、最適p
H一値は6〜7、作用至適温度は室温であり,、590
000分子量を有し、グリセリン/水(1:1)中で安
定であり、その活性化剤は低級の有機カルボン酸塩であ
り、その阻害剤は重金属であることを特徴とする、NA
DHをH,02により酸化してNADとH20にする作
用をするNADH−ベルオキシダーゼ。 2 ストレプトコツカス・ファエカリスATCC804
3から、可溶化によるか又は界面活性剤での処理により
酵素を遊離させ、この溶液から酵素を取得することを特
徴とする、酢酸カリウム0.1モル含有0.2Mトリス
緩衝液(pH6.0)中、25℃で測定したH202に
対するミノ・エリス定数が2.8・10−5Mであり、
NADHに対するミハエリス定数が1.7・10−5M
であり、安定pH一値幅は4.5〜9.0、最適pH一
値は6〜7、作用至適温度は室温であり、59000の
分子量を有し、グリセリン/水(1:1)中で安定であ
り、かつその活性化剤は低級の有機カルボン酸塩、その
阻害剤は重金属である、NADH−ベルオキシダーゼの
製法。 3 酵素溶液を4.2〜4.8のpH値に調節し、不溶
分を分離除去し、瀘液でポリエチレンイミンを用いて分
別を行なう、特許請求の範囲第2項記載の方法。 4 酢酸カリウム0.1モル含有0.2Mトリス緩衝液
(pH6.0)中、25℃で測定したH202に対する
ミハエリス定数が2.8・10−5Mで、NADHに対
するミハエリス定数が1.7・10−5Mであり、安定
pH−値幅は4.5〜9.0、最適pH一値は6〜7、
作用至適温度は室温であり、59000の分子量を有し
、グリセリン/水(1:1)中で安定であり、その活性
化剤は低級の有機カルボン酸塩であり、その阻害剤は重
金属であり、NADHをH202により酸化してNAD
とH20とになる作用をするNADH−ベルオキシダー
ゼを用いることを特徴とする、pH6.0〜9.0での
特異的オキンダーゼを用いる単純反応又は複合反?で、
NADH濃度変化に比例する吸光度変化を測定すること
よジなるH20の測定法。 5 グ9コースオキシダーゼ、D−アミノ酸オキシダー
ゼ、L−アミノ酸オキシダーゼ、コレステリンオキシダ
ーゼ、アルコールオキシダーゼ、ウリカーゼ又はキサン
チンオキシダーゼを用いる複合反応で実施する、特許請
求の範囲第4項記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE000P26337280 | 1976-07-27 | ||
DE2633728A DE2633728C3 (de) | 1976-07-27 | 1976-07-27 | NADH-Peroxidase, ihre Gewinnung und Verwendung |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5315492A JPS5315492A (en) | 1978-02-13 |
JPS5814198B2 true JPS5814198B2 (ja) | 1983-03-17 |
Family
ID=5984055
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP52090216A Expired JPS5814198B2 (ja) | 1976-07-27 | 1977-07-27 | Nadh−ペルオキシダ−ゼ、その製法及びこれを用いるh↓2o↓2の測定法 |
Country Status (9)
Country | Link |
---|---|
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JP (1) | JPS5814198B2 (ja) |
CH (1) | CH636904A5 (ja) |
DE (1) | DE2633728C3 (ja) |
FI (1) | FI56845C (ja) |
FR (1) | FR2359850A1 (ja) |
GB (1) | GB1528309A (ja) |
IT (1) | IT1081816B (ja) |
NL (1) | NL188045C (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62140999A (ja) * | 1985-12-16 | 1987-06-24 | 川鉄機材工業株式会社 | 重量物懸吊装置 |
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---|---|---|---|---|
DE2806371A1 (de) * | 1978-02-10 | 1979-08-23 | Guenther Kohlbecker | Verfahren zur enzymatischen bestimmung von oxalat mittels oxalat-oxidase |
GB2015532B (en) * | 1978-02-27 | 1982-06-16 | Yamasa Shoyu Kk | -lysine -oxidase |
EP0007176A3 (en) * | 1978-06-12 | 1980-02-20 | Cetus Corporation | Method for producing epoxides and glycols from alkenes |
US4341868A (en) | 1978-08-18 | 1982-07-27 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | Method and test composition for the determination of the substrate for xanthine oxidase |
DE2965849D1 (en) * | 1978-08-18 | 1983-08-18 | Kyowa Hakko Kogyo Kk | Method and test composition for the determination of a substrate for xanthine-oxidase, including a novel xanthine-oxidase and method for the preparation thereof |
EP0117032B1 (en) * | 1983-01-12 | 1989-04-19 | Alcoholism And Drug Addiction Research Foundation | Rapid analysis of ethanol in body fluids |
DE3313178A1 (de) * | 1983-04-12 | 1984-10-18 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren zur enzymatischen bestimmung von sulfit |
JPS59205999A (ja) * | 1983-05-10 | 1984-11-21 | Wako Pure Chem Ind Ltd | 還元型補酵素の定量方法 |
JPS6131097A (ja) * | 1984-07-23 | 1986-02-13 | Toyo Jozo Co Ltd | 新規な高感度酵素的測定法 |
DE3725851A1 (de) * | 1986-08-12 | 1988-02-18 | Takara Shuzo Co | Nad(p)h-oxidase, verfahren zu ihrer isolierung und anwendung |
US5385827A (en) * | 1989-09-20 | 1995-01-31 | Clark; John R. | Method of geochemical prospecting |
CA2965481C (en) * | 2014-10-31 | 2023-03-21 | Rohm And Haas Company | Oxidative esterification process for making methyl methacrylate |
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---|---|---|---|---|
IT986838B (it) * | 1972-05-12 | 1975-01-30 | Sclavo Inst Sieroterapeut | Complesso di reagenti per la deter minazione enzimatica del glucosio sistema glucosio ossidasi perossi dasi con metodo manuale e automati co con lettura a termine o in cinetica |
-
1976
- 1976-07-27 DE DE2633728A patent/DE2633728C3/de not_active Expired
-
1977
- 1977-06-07 IT IT24454/77A patent/IT1081816B/it active
- 1977-06-09 NL NLAANVRAGE7706337,A patent/NL188045C/xx not_active IP Right Cessation
- 1977-06-29 US US05/811,422 patent/US4186052A/en not_active Expired - Lifetime
- 1977-07-13 FI FI772186A patent/FI56845C/fi not_active IP Right Cessation
- 1977-07-22 CH CH913877A patent/CH636904A5/de not_active IP Right Cessation
- 1977-07-25 GB GB31143/77A patent/GB1528309A/en not_active Expired
- 1977-07-27 JP JP52090216A patent/JPS5814198B2/ja not_active Expired
- 1977-07-27 FR FR7723161A patent/FR2359850A1/fr active Granted
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62140999A (ja) * | 1985-12-16 | 1987-06-24 | 川鉄機材工業株式会社 | 重量物懸吊装置 |
Also Published As
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---|---|
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DE2633728B2 (de) | 1978-10-05 |
CH636904A5 (de) | 1983-06-30 |
US4186052A (en) | 1980-01-29 |
DE2633728C3 (de) | 1979-07-12 |
JPS5315492A (en) | 1978-02-13 |
FI56845B (fi) | 1979-12-31 |
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DE2633728A1 (de) | 1978-02-02 |
NL188045B (nl) | 1991-10-16 |
FR2359850B1 (ja) | 1980-04-18 |
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