JPS5951997B2 - ストレプトコツカス・サ−モフイルスに属する新規微生物及び該微生物を含有する組成物 - Google Patents
ストレプトコツカス・サ−モフイルスに属する新規微生物及び該微生物を含有する組成物Info
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は高い酸素吸収能を有するストレプトコッカス・
サーモフイ／１／ ス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｔ
ｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）に属する新規な微生物（以下
「本菌」と記載する）及び本菌の生菌菌体を含有する組
成物に関する。
サーモフイ／１／ ス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｔ
ｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）に属する新規な微生物（以下
「本菌」と記載する）及び本菌の生菌菌体を含有する組
成物に関する。
本発明の目的は、高い酸素吸収能を有する点に有用性の
高い新規微生物を提供することにある。
高い新規微生物を提供することにある。
本発明の他の目的は、嫌気性微生物と共存させて好気的
条件下で保存したとき、嫌気性微生物の死滅を防止し得
る新規微生物を提供することにある。
条件下で保存したとき、嫌気性微生物の死滅を防止し得
る新規微生物を提供することにある。
更に本発明の他の目的は、嫌気性微生物の生菌菌体を含
有する培養物を好気的条件下で保存しても、該微生物の
死滅を防止し得る組成物を提供することにある。
有する培養物を好気的条件下で保存しても、該微生物の
死滅を防止し得る組成物を提供することにある。
本明細書における「生残率」は試験開始時の生菌数に対
する保存後の生菌数の百分率であり、「サーモフィルス
菌」はストレプトコッカス・サーモフィルスに属する公
知の微生物の総称であり、′ビフィズス菌」はビフィド
バクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属
に属する微生物の総称である。
する保存後の生菌数の百分率であり、「サーモフィルス
菌」はストレプトコッカス・サーモフィルスに属する公
知の微生物の総称であり、′ビフィズス菌」はビフィド
バクテリウム（Ｂｉｆｉｄｏ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属
に属する微生物の総称である。
サーモフィルス菌は、牛乳及び乳製品に広く存在し、ス
イスチーズ、ブリックチーズなどのスターター及びヨー
グルトのスターターとして利用される有用菌である（中
西武雄著、「牛乳と乳製品の微生物」、第２２頁、地球
出版株式会社、昭和４２年２月２５日発行）。
イスチーズ、ブリックチーズなどのスターター及びヨー
グルトのスターターとして利用される有用菌である（中
西武雄著、「牛乳と乳製品の微生物」、第２２頁、地球
出版株式会社、昭和４２年２月２５日発行）。
サーモフィルス菌の菌学的性質についてはＢｅｒｇｅｙ
’ ｓ ｍａｎｎｕａｌ ｏｆ ｄｅｔｅｒ
ｍｉｎａｔｉｖｅｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ （Ｒ，
Ｅ、 Ｂｕｃｈａｎａｎ ＆Ｎ、 Ｅ、 Ｇｉｂｂ
ｏｎｓ共編、第８版、第５０３〜５ｏ４頁、Ｔｈｅ Ｗ
ｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ Ｃｏｍｐａ
ｎｙ、Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ、 Ｕ、Ｓ、 Ａｏ、１９７
４年）に詳細に記載されている。
’ ｓ ｍａｎｎｕａｌ ｏｆ ｄｅｔｅｒ
ｍｉｎａｔｉｖｅｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ （Ｒ，
Ｅ、 Ｂｕｃｈａｎａｎ ＆Ｎ、 Ｅ、 Ｇｉｂｂ
ｏｎｓ共編、第８版、第５０３〜５ｏ４頁、Ｔｈｅ Ｗ
ｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ Ｃｏｍｐａ
ｎｙ、Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ、 Ｕ、Ｓ、 Ａｏ、１９７
４年）に詳細に記載されている。
一方、ストレプトコツカス属に属する微生物の酸素吸収
能についてはスＩ・レプトコツカス・アガラクテイエ、
ストレプトコッカス・クレモリス、ストレフ０トコツカ
ス・フェカリス、ストレフ０トコツカス・ファシウム、
ストレプトコッカス・ラクチス、ストレプトコッカス・
リケファシエンス及びストレプトコッカス・マスチチジ
スに関する報告か′あるが（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂ
ａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ、第５６巻、第４９９頁、１９
４８年。
能についてはスＩ・レプトコツカス・アガラクテイエ、
ストレプトコッカス・クレモリス、ストレフ０トコツカ
ス・フェカリス、ストレフ０トコツカス・ファシウム、
ストレプトコッカス・ラクチス、ストレプトコッカス・
リケファシエンス及びストレプトコッカス・マスチチジ
スに関する報告か′あるが（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂ
ａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ、第５６巻、第４９９頁、１９
４８年。
日本農芸化学会誌、第３４巻、第２７２頁、１９６０年
。
。
Ｉ、 Ｃ，Ｇｕｎｓａｌｕｓ ＆Ｒ，Ｙ、 ５ｔａｉ
ｎｅｒ共編、Ｔｈｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ 、第４２５頁
、１Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ Ｉｎｃ、 １９６
１年。
ｎｅｒ共編、Ｔｈｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ 、第４２５頁
、１Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ Ｉｎｃ、 １９６
１年。
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆＢａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ 、第
９４巻、第１８４頁、１９６７年。
９４巻、第１８４頁、１９６７年。
Ａｐｐｌｉｅｄ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ、第１９巻
、第６０８頁、１９７０年。
、第６０８頁、１９７０年。
Ｔｈｅ Ａｕ５ｔｒａｌｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ
ＤａｉｒｙＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第３３巻、第１４
８頁、１９７８年。
ＤａｉｒｙＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第３３巻、第１４
８頁、１９７８年。
薬学雑。誌、第９９巻、第３５４頁、１９７９年）、サ
ーモフィルス菌に関する報告は、Ｔｉｎ５ｏｎら（Ｔｈ
ｅ Ａｕ５ｔｒａｌｉａｎＪｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｄａ
ｉｒｙ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第３７巻、第１４頁、
１９８２年）があるのみである。
ーモフィルス菌に関する報告は、Ｔｉｎ５ｏｎら（Ｔｈ
ｅ Ａｕ５ｔｒａｌｉａｎＪｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｄａ
ｉｒｙ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第３７巻、第１４頁、
１９８２年）があるのみである。
Ｔｉｎ５ｏｎらによればサーモフィルス菌の酸素吸収能
は、０．１％酵。
は、０．１％酵。
母エキスを含む脱脂乳を基質とした場合３３．５℃にお
いて１２ｍｇの乾燥菌体重量当り９０分間で７．３マイ
クロモル酸素分子であったと報告している。
いて１２ｍｇの乾燥菌体重量当り９０分間で７．３マイ
クロモル酸素分子であったと報告している。
この酸素吸収能を乾燥菌体重量１ｍｇ、１分間当りに換
算すれば６．フロナノモル（ｎ ｍｏｌｅ）酸素分子
（以下「ナノモル」と記載する）と極めて少ないのであ
る。
算すれば６．フロナノモル（ｎ ｍｏｌｅ）酸素分子
（以下「ナノモル」と記載する）と極めて少ないのであ
る。
本発明者らは、サーモフィルス菌と嫌気性微生物との共
存について研究を行なっていたが、酸素吸収能がサーモ
フィルス菌のそれの１．５倍以上も高い新規な微生物の
存在することを発見し、本発明を完成した。
存について研究を行なっていたが、酸素吸収能がサーモ
フィルス菌のそれの１．５倍以上も高い新規な微生物の
存在することを発見し、本発明を完成した。
次に本発明について詳述する。
■） ストレフ０トコツカス・サーモフィルスに属する
菌株の分離 ストレプトコッカス・サーモフィルスに属する菌株は、
下記の小浜らの方法（農業技術研究所報告Ｇ（畜産）、
第５号、第４１頁、１９５３年。
菌株の分離 ストレプトコッカス・サーモフィルスに属する菌株は、
下記の小浜らの方法（農業技術研究所報告Ｇ（畜産）、
第５号、第４１頁、１９５３年。
）に従って、分離した。
即ち生牛乳を４５〜５０℃に４〜５日放置した凝固物又
は自然酸敗孔を多数検鏡し、その中で連鎖状球菌の存在
を認めた試料ヲ、１１５℃１５分間滅菌シタ１０％（Ｗ
／Ｗ） 還元脱脂乳培地に５％（Ｖ／Ｖ）の割合で接種
し、４５〜５０℃で凝固するまで培養した。
は自然酸敗孔を多数検鏡し、その中で連鎖状球菌の存在
を認めた試料ヲ、１１５℃１５分間滅菌シタ１０％（Ｗ
／Ｗ） 還元脱脂乳培地に５％（Ｖ／Ｖ）の割合で接種
し、４５〜５０℃で凝固するまで培養した。
さらに、同様の方法で２〜３回凝固を繰り返した後、そ
の−白金耳量を採取し、Ｍ−１７寒天培地（Ａｐｐｌｉ
ｅｄＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ、第２９巻、第６号、第
８０７頁、１９７５年。
の−白金耳量を採取し、Ｍ−１７寒天培地（Ａｐｐｌｉ
ｅｄＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ、第２９巻、第６号、第
８０７頁、１９７５年。
）に塗抹し、４０℃で２〜３日培養し、生成した多数の
コロニーから、菌株を分離した。
コロニーから、菌株を分離した。
分離菌株の菌学的性質を、前記Ｂｅｒｇｅｙ’ｓｍａｎ
ｎｕａｌ ｏｆ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｖｅ ｂａｃ
ｔｅｒｉｏｌｏｇｙ記載のサーモフィルス菌のそれと比
較し、ストレプトコッカス・サーモフィルスと同定した
４０菌株を得た。
ｎｕａｌ ｏｆ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｖｅ ｂａｃ
ｔｅｒｉｏｌｏｇｙ記載のサーモフィルス菌のそれと比
較し、ストレプトコッカス・サーモフィルスと同定した
４０菌株を得た。
２） サーモフィルス菌の酸素吸収能
生牛乳の凝固物及び旧然酸敗乳から分離した前記のスト
レプトコッカス・サーモフィルスに属する４０菌株、標
準菌株として農林水産省畜産試験場の森地氏から分譲を
受けたストレプトコッカス・サーモフィルレス９Ｙ株（
ＩＤＦ株）（日本畜産学会報、第５３巻、第１６１頁、
１９８２年）及びＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕ１
ｔｕｒｅ Ｃｏ１１ｅｃｔｉｏｎ （以下ＡＴＣＣと略
記する）に寄託されているストレプトコッカス・サーモ
フィルス１９２５８株の計４２の菌株について、酸素吸
収能を次の方法により測定した。
レプトコッカス・サーモフィルスに属する４０菌株、標
準菌株として農林水産省畜産試験場の森地氏から分譲を
受けたストレプトコッカス・サーモフィルレス９Ｙ株（
ＩＤＦ株）（日本畜産学会報、第５３巻、第１６１頁、
１９８２年）及びＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕ１
ｔｕｒｅ Ｃｏ１１ｅｃｔｉｏｎ （以下ＡＴＣＣと略
記する）に寄託されているストレプトコッカス・サーモ
フィルス１９２５８株の計４２の菌株について、酸素吸
収能を次の方法により測定した。
まず、これらの菌株を液体培地（日本農芸化学会誌、第
４５巻、第４２３頁、１９７１年）に５％（Ｖ／Ｖ）接
種し、３７℃で１６時間静置培養し、得られた培養液か
ら遠心分離機を用いて菌体を分離し、菌体を滅菌生理食
塩水で無菌的に洗浄し、滅菌生理食塩水１ｍｌ中に乾燥
重量にして３〜５ｍｇの菌体量の割合で菌体を分散した
菌液を調製した。
４５巻、第４２３頁、１９７１年）に５％（Ｖ／Ｖ）接
種し、３７℃で１６時間静置培養し、得られた培養液か
ら遠心分離機を用いて菌体を分離し、菌体を滅菌生理食
塩水で無菌的に洗浄し、滅菌生理食塩水１ｍｌ中に乾燥
重量にして３〜５ｍｇの菌体量の割合で菌体を分散した
菌液を調製した。
各菌株の酸素吸収能をワールブルグ検圧法（吉川ら編：
化学の領域増刊第１３号、「ワールブルグ検圧計」、南
江堂、１９５４年２月）によって測定した。
化学の領域増刊第１３号、「ワールブルグ検圧計」、南
江堂、１９５４年２月）によって測定した。
その概略は次のとおりである。
２側室容器を使用し、反応容器の主室に、前記菌液１．
Ｏｍｌ 肖１６．０の０．１モル滅菌リン酸緩衝液０
．５ｍｌを入れ１、側室２個所に基質溶液として２０％
（Ｗ／Ｗ）滅菌還元脱脂乳０．７５ｍ１ずつ計１．５ｍ
ｌを入れ、副室に二酸化炭素吸収剤として２０％（Ｗ／
Ｖ）水酸化カリウム溶液０．２ｍｌを浸み込ませた濾紙
片を入れた。
Ｏｍｌ 肖１６．０の０．１モル滅菌リン酸緩衝液０
．５ｍｌを入れ１、側室２個所に基質溶液として２０％
（Ｗ／Ｗ）滅菌還元脱脂乳０．７５ｍ１ずつ計１．５ｍ
ｌを入れ、副室に二酸化炭素吸収剤として２０％（Ｗ／
Ｖ）水酸化カリウム溶液０．２ｍｌを浸み込ませた濾紙
片を入れた。
なお、基質溶液は、発酵乳中の酸素吸収能を推定するた
め、最終濃度１０％（Ｗ／Ｗ）になるように滅菌還元脱
脂乳を用いた。
め、最終濃度１０％（Ｗ／Ｗ）になるように滅菌還元脱
脂乳を用いた。
測定は３７℃で行い、あらかじめ容器を５分間振とうし
て温度平衝に達した後、側室の基質溶液を加え、酸素吸
収量を３分おきに測定し、最大吸収速度を求めて酸素吸
収能とした。
て温度平衝に達した後、側室の基質溶液を加え、酸素吸
収量を３分おきに測定し、最大吸収速度を求めて酸素吸
収能とした。
供試菌株の酸素吸収能の結果を第１表に示す。
第１表から明らかなように、分離した４０菌株のうち３
６菌株の酸素吸収能は１８．５ナノモル以下であったの
に対し、他の４菌株の酸素吸収能は、３０．０〜７８．
５ナノモルであった。
６菌株の酸素吸収能は１８．５ナノモル以下であったの
に対し、他の４菌株の酸素吸収能は、３０．０〜７８．
５ナノモルであった。
標準菌株の酸素吸収能は９Ｙ株が１９．８ナノモル、Ａ
ＴＣＣ１９２５８株が１０．１ナノモルであった。
ＴＣＣ１９２５８株が１０．１ナノモルであった。
なお、本発明者らは酸素吸収能の値が高かった４菌株に
ついて前記Ｔｉｎ５ｏｎらと同一の方法による酸素吸収
能の測定を試みた。
ついて前記Ｔｉｎ５ｏｎらと同一の方法による酸素吸収
能の測定を試みた。
しかしながらこれらの４菌株の酸素吸収能が顕著に高い
ので、Ｔｉｎ５ｏｎらと同様に９０分間の測定は不能で
あった。
ので、Ｔｉｎ５ｏｎらと同様に９０分間の測定は不能で
あった。
従ってこれらの４菌株の酸素吸収能についてＴｉｎ５ｏ
ｎらが報告している７、３マイクロモル酸素分子の値に
到達するまでの所要時間をＴｉｎ５ｏｎと同一の方法に
より測定した。
ｎらが報告している７、３マイクロモル酸素分子の値に
到達するまでの所要時間をＴｉｎ５ｏｎと同一の方法に
より測定した。
その結果Ｔｉｎ５ｏｎらの値が９０分であるのに対して
、５ＴＨ−０１株及び５ＴＨ−２３株は２６分、５ＴＨ
−１シ株は２８分、そして５ＴＨ−５０株は２１分（参
考までに９Ｙ株は４６分、ＡＴＣＣ１９２５８株は１４
０分であった）であり、いずれの菌株の酸素吸収能も他
の菌株のそれよりも顕著に高いことを認めた。
、５ＴＨ−０１株及び５ＴＨ−２３株は２６分、５ＴＨ
−１シ株は２８分、そして５ＴＨ−５０株は２１分（参
考までに９Ｙ株は４６分、ＡＴＣＣ１９２５８株は１４
０分であった）であり、いずれの菌株の酸素吸収能も他
の菌株のそれよりも顕著に高いことを認めた。
３） 本菌の菌学的性質
更に本発明者らはこれらの４菌株について菌学的性質を
試験したが、酸素吸収能が高いことを除きその他の菌学
的性質は各菌株とも前記Ｂｅｒｇｅｙ’ｓ ｍａｎｎ
ｕａｌ ｏｆ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｖｅｂａｃ
ｔｅｒｉｏｌｏｇｙに記載されたサーモフィルス菌と同
一の次のとおりで゛あった。
試験したが、酸素吸収能が高いことを除きその他の菌学
的性質は各菌株とも前記Ｂｅｒｇｅｙ’ｓ ｍａｎｎ
ｕａｌ ｏｆ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｖｅｂａｃ
ｔｅｒｉｏｌｏｇｙに記載されたサーモフィルス菌と同
一の次のとおりで゛あった。
（Ａ）Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８時間
好気培養したときの菌の形態： ■ 大きさく直径）：０．７〜０．９μｍ■ 形状：球
状または楕円状で連鎖 （Ｂ） Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８
時間好気培養したときのコロニーの形態 ■ 形状：円形 ■ 隆起：凸円状 ■ 周縁：円滑 ■ 大きさく直径）：０．５〜１．５ｍｍ■ 色調：白
色で不透明 ■ 表面：円滑で光沢あり （Ｃ） ガス：産生せず （Ｄ） ２０℃以下で生育せず （Ｅ） ４５℃で生育 （Ｆ） 運動性なし く０ 胞子形成せず ■ ダラム陽性 （Ｉ） ベンジジン陰性 （Ｊ） カタラーゼ陰性 ■ ６５℃３０分間の加熱で生存 （９２％（Ｗ／Ｖ）塩化ナトリウム存在下で生育せず Ｎｏ、１％（Ｗ／Ｖ）メチレンブルー添加孔で生育せず （ｌ ｌｌ（９，６で生育せず （０）糖からの酸生成 グルコース、フラクトース、シュークロース及びラクト
ースは陽性。
好気培養したときの菌の形態： ■ 大きさく直径）：０．７〜０．９μｍ■ 形状：球
状または楕円状で連鎖 （Ｂ） Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８
時間好気培養したときのコロニーの形態 ■ 形状：円形 ■ 隆起：凸円状 ■ 周縁：円滑 ■ 大きさく直径）：０．５〜１．５ｍｍ■ 色調：白
色で不透明 ■ 表面：円滑で光沢あり （Ｃ） ガス：産生せず （Ｄ） ２０℃以下で生育せず （Ｅ） ４５℃で生育 （Ｆ） 運動性なし く０ 胞子形成せず ■ ダラム陽性 （Ｉ） ベンジジン陰性 （Ｊ） カタラーゼ陰性 ■ ６５℃３０分間の加熱で生存 （９２％（Ｗ／Ｖ）塩化ナトリウム存在下で生育せず Ｎｏ、１％（Ｗ／Ｖ）メチレンブルー添加孔で生育せず （ｌ ｌｌ（９，６で生育せず （０）糖からの酸生成 グルコース、フラクトース、シュークロース及びラクト
ースは陽性。
アラビノース、キシロース、ラフィノース、マルトース
、トレハロース、イヌリン、マニトール、ソルビトール
、サリシン及びグリセロールは陰性。
、トレハロース、イヌリン、マニトール、ソルビトール
、サリシン及びグリセロールは陰性。
枦）アルギニンからアンモニアを生成せずそしてこれら
の４菌株を２０代以上継代培養しても高い酸素吸収能を
保持していた。
の４菌株を２０代以上継代培養しても高い酸素吸収能を
保持していた。
従って本発明者らは、これらの微生物を新規な微生物と
設定し、５ＴＨ−０１株、５ＴＨ−１７株、５ＴＨ−２
３株及び５ＴＨ−５０株をそれぞれストレプトコッカス
・サーモフィルスＭ−８２０２、ストレプトコッカス・
サーモフィルスＭ−８２０３、ストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０４及びストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０５と命名し、昭和５７年１０月
２２日に工業技術院微生物工業技術研究所に寄託し、そ
れぞれ微工研菌寄第６７７７号、微工研菌寄第６７７８
号、微工研菌寄第６７７９号及び微工研菌寄第６７８０
号なる受託番号を得た。
設定し、５ＴＨ−０１株、５ＴＨ−１７株、５ＴＨ−２
３株及び５ＴＨ−５０株をそれぞれストレプトコッカス
・サーモフィルスＭ−８２０２、ストレプトコッカス・
サーモフィルスＭ−８２０３、ストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０４及びストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０５と命名し、昭和５７年１０月
２２日に工業技術院微生物工業技術研究所に寄託し、そ
れぞれ微工研菌寄第６７７７号、微工研菌寄第６７７８
号、微工研菌寄第６７７９号及び微工研菌寄第６７８０
号なる受託番号を得た。
次に本菌の培養物を含有する組成物について述べる。
前記のように本菌は高い酸素吸収能を有するので、嫌気
性微生物と本菌とを共存させて好気的条件下で保存した
としても、本菌が酸素を吸収するので、嫌気性微生物の
生存に望ましい条件をつくり出すことかで゛きる。
性微生物と本菌とを共存させて好気的条件下で保存した
としても、本菌が酸素を吸収するので、嫌気性微生物の
生存に望ましい条件をつくり出すことかで゛きる。
有用な嫌気性微生物は多数知られているが食品、医薬品
、飼料等に最も広く利用されているのはビフィズス菌で
ある。
、飼料等に最も広く利用されているのはビフィズス菌で
ある。
この菌は、偏性嫌気性菌であり、酸素が存在する状態で
保存した場合極めて死滅し易いことが知られている。
保存した場合極めて死滅し易いことが知られている。
本発明の組成物は、本菌の高い酸素吸収能により嫌気性
微生物の保存中における死滅を顕著に防止し得る。
微生物の保存中における死滅を顕著に防止し得る。
本発明の組成物は、嫌気性微生物の生菌菌体を含有する
培養物と本菌の生菌菌体を含有する培養物との混合物か
らなり、一般的には該混合物１ｇ当り少なくとも１×１
０８、望ましくは５×１０８〜２×１０９の本菌生菌菌
体を含有している。
培養物と本菌の生菌菌体を含有する培養物との混合物か
らなり、一般的には該混合物１ｇ当り少なくとも１×１
０８、望ましくは５×１０８〜２×１０９の本菌生菌菌
体を含有している。
、嫌気性微生物の生菌菌体を含有する培養物は、例えば
ビフィズス菌を公知の方法で培養した培養物、この培養
物の公知の方法による濃縮物、この培養物から公知の方
法で分離した菌体、又はこの菌体の懸濁液を包含する。
ビフィズス菌を公知の方法で培養した培養物、この培養
物の公知の方法による濃縮物、この培養物から公知の方
法で分離した菌体、又はこの菌体の懸濁液を包含する。
本菌の生菌菌体を含有する培養物は、本菌を公知の方法
で培養した培養物、この培養物の公知の方法による濃縮
物、この培養物から公知の方法で分離した菌体、又はこ
の菌体の懸濁液を包含する。
で培養した培養物、この培養物の公知の方法による濃縮
物、この培養物から公知の方法で分離した菌体、又はこ
の菌体の懸濁液を包含する。
そして嫌気性微生物の生菌菌体を含有する培養物と本菌
の生菌菌体を含有するそれとを混合し、得られた混合ｖ
！ＩＪ１ｇ当りの本菌の生菌菌体数が嫌気性微生物の死
滅を防ぎつる数になるように調製される。
の生菌菌体を含有するそれとを混合し、得られた混合ｖ
！ＩＪ１ｇ当りの本菌の生菌菌体数が嫌気性微生物の死
滅を防ぎつる数になるように調製される。
本菌を前“記のように培養して得られる培養物中には、
例えば１０％（Ｗ／Ｗ）還元脱脂乳培地によす３７℃で
１６時間培養したとき通常培養物１ｇ当り２×１０８の
生菌菌体が含まれ、液体培地（日本農芸化学会誌、第４
５巻、第４２３頁、１９７１年。
例えば１０％（Ｗ／Ｗ）還元脱脂乳培地によす３７℃で
１６時間培養したとき通常培養物１ｇ当り２×１０８の
生菌菌体が含まれ、液体培地（日本農芸化学会誌、第４
５巻、第４２３頁、１９７１年。
）により３７℃で１６時間培養したとき通常培養物１ｇ
当り１×１０９の生菌菌体が含まれている。
当り１×１０９の生菌菌体が含まれている。
従って本菌の培養物の生菌数から、嫌気性微生物の培養
物に添加すべき本菌の培養物の量が決定される。
物に添加すべき本菌の培養物の量が決定される。
このようにして調製された本発明の組成物は、好気的条
件下での保存によっても嫌気性微生物の死滅が少ないの
で、嫌気性微生物の生菌数が重要な意味を有する例えば
ビフィズス菌の生菌菌体を含有する発酵乳、乳酸菌飲料
、整腸用医薬品等として利用できる。
件下での保存によっても嫌気性微生物の死滅が少ないの
で、嫌気性微生物の生菌数が重要な意味を有する例えば
ビフィズス菌の生菌菌体を含有する発酵乳、乳酸菌飲料
、整腸用医薬品等として利用できる。
次に本菌と嫌気性微生物との共存による嫌気性微生物の
死滅防止効果について試験例を示して詳述する。
死滅防止効果について試験例を示して詳述する。
（試験１）
■ 使用菌株
サーモフィルス菌として前記９Ｙ株及び
ＡＴＣＣ１９２５８株、本菌の例として前記Ｍ−８２０
５株（ＳＴＨ−５０株）、そして嫌気性微生物の代表例
としてビフィズス菌、即ちビフィドバクテリウム・ロン
ガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ
）ＡＴＣＣ１５７０８を用いた。
５株（ＳＴＨ−５０株）、そして嫌気性微生物の代表例
としてビフィズス菌、即ちビフィドバクテリウム・ロン
ガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ
）ＡＴＣＣ１５７０８を用いた。
■ スターターの調製
サーモフィルス菌及び本菌のスターターは、１１５℃で
１５分間滅菌した１０％（Ｗ／Ｗ）還元脱脂乳にこれら
の菌の前培養物を３％（Ｖ／Ｖ）接種し、３７℃で１６
時間培養して調製された。
１５分間滅菌した１０％（Ｗ／Ｗ）還元脱脂乳にこれら
の菌の前培養物を３％（Ｖ／Ｖ）接種し、３７℃で１６
時間培養して調製された。
ビフィドバクテリウム・ロンガムのスターターは、１１
５℃テ１５分間滅菌シタ０．２５％（Ｗ／Ｗ） の酵母
エキスを含む１５％（ｗ７ｗ）還元脱脂乳に、前培養物
を１０％（Ｖ／Ｖ）接種し、３７℃で５時間培養して調
製された。
５℃テ１５分間滅菌シタ０．２５％（Ｗ／Ｗ） の酵母
エキスを含む１５％（ｗ７ｗ）還元脱脂乳に、前培養物
を１０％（Ｖ／Ｖ）接種し、３７℃で５時間培養して調
製された。
■ 培養物の調製
０．１％（Ｗ／Ｗ）のカザミノ酸を添加した牛乳を均質
後９０℃で１０分間殺菌し、前記■で調製したビフィド
バクテリウム・ロンガムのスターターを５％（Ｖ／Ｖ）
の割合で接種し、３７℃で７時間発酵し、直ちに冷却し
、培養物を調製した。
後９０℃で１０分間殺菌し、前記■で調製したビフィド
バクテリウム・ロンガムのスターターを５％（Ｖ／Ｖ）
の割合で接種し、３７℃で７時間発酵し、直ちに冷却し
、培養物を調製した。
一方、前記■で調製したサーモフィルス菌及び本菌のス
ターターをソイペプトン１％（Ｗ／Ｖ）、酵母エキス０
．５％（Ｗ／Ｖ）、乳糖１％（Ｗ／Ｖ）、コハク酸ナト
リウム２％（Ｗ／Ｖ）、リン酸１カリウム０．２％（Ｗ
／Ｖ）及びリン酸２カリウム０．２％（Ｗ／Ｖ）からな
る液体培地に５％（Ｖ／Ｖ）の割合でそれぞれ別個に接
種し、３７℃で１６時間培養し、サーモフィルス菌及び
本菌の培養物を調製した。
ターターをソイペプトン１％（Ｗ／Ｖ）、酵母エキス０
．５％（Ｗ／Ｖ）、乳糖１％（Ｗ／Ｖ）、コハク酸ナト
リウム２％（Ｗ／Ｖ）、リン酸１カリウム０．２％（Ｗ
／Ｖ）及びリン酸２カリウム０．２％（Ｗ／Ｖ）からな
る液体培地に５％（Ｖ／Ｖ）の割合でそれぞれ別個に接
種し、３７℃で１６時間培養し、サーモフィルス菌及び
本菌の培養物を調製した。
これらの培養物を常法により遠心分離し、サーモフィル
ス菌及び本菌の菌体をそれぞれ別個に集めた。
ス菌及び本菌の菌体をそれぞれ別個に集めた。
集めた各菌体を滅菌生理食塩水で洗浄し、４ Ｘ １０
１０１Ｏ７の濃度で滅菌生理食塩水に懸濁し、各菌体の
懸濁液を調製した。
１０１Ｏ７の濃度で滅菌生理食塩水に懸濁し、各菌体の
懸濁液を調製した。
なおサーモフィルス菌及び本菌の生菌数は■のｂ）記載
の方法により測定した。
の方法により測定した。
■ 試験方法
前記ビフィドバクテリウム・ロンガムの培養物１ｇ当り
各サーモフィルス菌及び本菌を３×１０７．１×１０８
．５×１０８．２×１０９の割合でそれぞれ別個に加え
、均一に混合し、試料を調製し、通気性を有する滅菌済
の紙カップに充填し、蓋をした。
各サーモフィルス菌及び本菌を３×１０７．１×１０８
．５×１０８．２×１０９の割合でそれぞれ別個に加え
、均一に混合し、試料を調製し、通気性を有する滅菌済
の紙カップに充填し、蓋をした。
調製直後の試料及び５℃で７日間好気的（家庭用冷蔵庫
内）に保存した後の試料のビフィドバクテリウム・ロン
ガムの生菌数を次の方法により測定し、ビフィドバクテ
リウム・ロンガムの保存後の生残率を算出して試験した
。
内）に保存した後の試料のビフィドバクテリウム・ロン
ガムの生菌数を次の方法により測定し、ビフィドバクテ
リウム・ロンガムの保存後の生残率を算出して試験した
。
ａ） ビフィドバクテリウム・ロンガム生菌数の測定
発酵乳又は試料を光間の嫌気性菌用希釈液（臨床検査、
第１８巻、第１１６３頁、１９７４年。
第１８巻、第１１６３頁、１９７４年。
）で段階的に希釈した後、ビフィズス菌の選択培地であ
るＭＧＬＰ寒天培地（前日ら：食品衛生学雑誌、第２３
巻、第３９頁、１９８２年。
るＭＧＬＰ寒天培地（前日ら：食品衛生学雑誌、第２３
巻、第３９頁、１９８２年。
）を用いた高層寒天培養法で測定した。
ｂ） サーモフィルス菌及び本菌の生菌数の測定
常法に従い、市販ＢＣＰ加プレートカウント寒天培地を
用いた混釈平板培養法で測定した。
用いた混釈平板培養法で測定した。
■ 試験結果
ビフィドバクテリウム・ロンガムの生菌数及び生残率を
田店ともに第２表に示す。
田店ともに第２表に示す。
第２表から明らかなように、ビフィズス菌とサーモフィ
ルス菌を共存させることによって、ビフィズス菌の生残
率は向上するが、特に本菌においてその効果は顕著であ
った。
ルス菌を共存させることによって、ビフィズス菌の生残
率は向上するが、特に本菌においてその効果は顕著であ
った。
９Ｙ株及びＡＴＣＣ１９２５８株を用いた場合、ビフィ
ズス菌の生残率は、培養物１ｇ当り１×１０８の添加で
１．０％以下、２×１０９の添加で６．３％以下である
のに対して、本菌を用いた場合には、１×１０８．５×
１０８及び２×１０９の添加でそれぞれ７．０％、１６
．５％及び３４．３％と上記２株の５〜７倍の高い生残
率を示した。
ズス菌の生残率は、培養物１ｇ当り１×１０８の添加で
１．０％以下、２×１０９の添加で６．３％以下である
のに対して、本菌を用いた場合には、１×１０８．５×
１０８及び２×１０９の添加でそれぞれ７．０％、１６
．５％及び３４．３％と上記２株の５〜７倍の高い生残
率を示した。
このように本菌は、１ｇ当り１×１０８以上の添加、望
ましくは５×１０８〜２×１０９の添加でビフィズス菌
の生残性に対して、格段の効果を有することか゛判明し
た。
ましくは５×１０８〜２×１０９の添加でビフィズス菌
の生残性に対して、格段の効果を有することか゛判明し
た。
次に本菌と種々の嫌気性微生物との共存における本菌の
効果について記載する。
効果について記載する。
（試験２）
■ 使用菌株 熾※ 本
菌の１例として前記Ｍ−８２０５株（ＳＴＨ−５０株）
、そして嫌気性微生物の代表例としてビフィドバクテリ
ウム・ビフィダム ＡＴＣＣ１５６９６、ビフィドバクテリウム・インファ
ンチスＡＴＣＣ１５６９７及びビフィドバクテリウム・
アドレツセンチスＡＴＣＣ１５７０６のビフィズス菌を
用いた。
菌の１例として前記Ｍ−８２０５株（ＳＴＨ−５０株）
、そして嫌気性微生物の代表例としてビフィドバクテリ
ウム・ビフィダム ＡＴＣＣ１５６９６、ビフィドバクテリウム・インファ
ンチスＡＴＣＣ１５６９７及びビフィドバクテリウム・
アドレツセンチスＡＴＣＣ１５７０６のビフィズス菌を
用いた。
■ スターターの調製
・前記試験１と同一の方法による。
■ 培養物の調製
前記試験１と同一の方法による。
■ 試験方法
各ビフィズス菌による培養物１ｇ当り本菌を５Ｘ１０”
の割合で加えたこと以外は、前記試験１と同一の方法に
よる。
の割合で加えたこと以外は、前記試験１と同一の方法に
よる。
■ 試験結果
ビフィズス菌の生菌数及び生残率を…凄ともに第３表に
示す。
示す。
第３表から明らかなように、いずれの゛ビフィズス菌も
本菌を培養物１ｇ当り５×１０８添加することによって
５℃で７日間保存後において１０％以上の生残率を示し
た。
本菌を培養物１ｇ当り５×１０８添加することによって
５℃で７日間保存後において１０％以上の生残率を示し
た。
このように公知の各種ビフィズス菌の生残性に対して、
本菌は、格段の効果を示し、極めて良好なビフィズス菌
の保護作用を有することが判明した。
本菌は、格段の効果を示し、極めて良好なビフィズス菌
の保護作用を有することが判明した。
実施例 １
９０ｋｇの脱脂乳に１０ｋｇの脱脂粉乳を溶解し、９０
℃で３０分間殺菌し、冷却し、ストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０３（ＳＴＨ−１７）の前培養物
３ｋｇを接種し、４０℃で１８時間発酵した。
℃で３０分間殺菌し、冷却し、ストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０３（ＳＴＨ−１７）の前培養物
３ｋｇを接種し、４０℃で１８時間発酵した。
一方、９０℃で３０分間殺菌した酵母エキス０．２％（
Ｗ／Ｗ）及び還元脱脂乳１２％（Ｗ／Ｗ）からなる培地
２０１に、ビフィドバクテリウム・ビフィダム ＡＴＣＣ１５６９６（７）前ｔ＝養ｅｙを５％ （Ｗ／
Ｗ） の割合で接種し、３７℃で８時間発酵した。
Ｗ／Ｗ）及び還元脱脂乳１２％（Ｗ／Ｗ）からなる培地
２０１に、ビフィドバクテリウム・ビフィダム ＡＴＣＣ１５６９６（７）前ｔ＝養ｅｙを５％ （Ｗ／
Ｗ） の割合で接種し、３７℃で８時間発酵した。
これとは別にペクチン０．８ｋｇ、砂糖１５ｋｇ、脂肪
含量５０％（Ｗ／Ｗ）のクリーム５ｋｇ及び香料０．２
ｋｇを５９ｋｇの水に溶解し、８５℃で１０分間殺菌し
、約４０℃に冷却したシロップ液８０ｋｇに、前記のス
トレプトコッカス・サーモフィルスの発酵乳１００ｋｇ
及びビフィドバクテリウム・ビフィダムの発酵乳２０ｋ
ｇを混合し、調乳液２００ｋｇを調製した。
含量５０％（Ｗ／Ｗ）のクリーム５ｋｇ及び香料０．２
ｋｇを５９ｋｇの水に溶解し、８５℃で１０分間殺菌し
、約４０℃に冷却したシロップ液８０ｋｇに、前記のス
トレプトコッカス・サーモフィルスの発酵乳１００ｋｇ
及びビフィドバクテリウム・ビフィダムの発酵乳２０ｋ
ｇを混合し、調乳液２００ｋｇを調製した。
この調乳液を１５０ｋｇ／ｃｍ□の条件で均質し、５０
０ｍ１の紙容器に充填し、本菌及びビフイズス菌の生菌
を含有するドリンクヨーグルト約３５０本を製造した。
０ｍ１の紙容器に充填し、本菌及びビフイズス菌の生菌
を含有するドリンクヨーグルト約３５０本を製造した。
得られたドリンクヨーグルトはストレプトコッカス・サ
ーモフィルス２，４×１０８／ｍ１、ビフィドバクテリ
ウム・ビフィダム８．５×１０７／ｍ１の生菌菌体を含
有し、ｐＨ４，９、乳酸濃度０．８５％であった。
ーモフィルス２，４×１０８／ｍ１、ビフィドバクテリ
ウム・ビフィダム８．５×１０７／ｍ１の生菌菌体を含
有し、ｐＨ４，９、乳酸濃度０．８５％であった。
このドリンクヨーグルトを５℃で７日間保存した後のビ
フィドバクテリウム・ビフィダムの生菌数は１．３ Ｘ
１０７／ｍｌであり生残率は１５．３％であった。
フィドバクテリウム・ビフィダムの生菌数は１．３ Ｘ
１０７／ｍｌであり生残率は１５．３％であった。
実施例 ２
市販のポリペプトン１％（ＷＯＷ）、ソイペグ１〜ン１
％（ＷＯＷ）、酵母エキス０．５％（ｗ、、’ｗ）、乳
糖１％（ＷＯＷ）、リン酸１カリウム０．２％（Ｗ／
Ｗ）からなる培地（ｐＨ６，８） ２００１を９０℃で
３０分間殺菌し、３７℃に冷却レストレプトコツカス・
サーモフィルスＭ−８２０５（ＳＴＨ−５０）の前培養
物５１を接種し、３７℃で１８時間培養した。
％（ＷＯＷ）、酵母エキス０．５％（ｗ、、’ｗ）、乳
糖１％（ＷＯＷ）、リン酸１カリウム０．２％（Ｗ／
Ｗ）からなる培地（ｐＨ６，８） ２００１を９０℃で
３０分間殺菌し、３７℃に冷却レストレプトコツカス・
サーモフィルスＭ−８２０５（ＳＴＨ−５０）の前培養
物５１を接種し、３７℃で１８時間培養した。
培養後直ちに約５℃に冷却し、シャープレス型遠心分離
機（１５，０００ｒｐｍ）により菌体を集め培地と同量
の９０℃で３０分間殺菌した生理食塩水に懸濁し、前記
と同様に遠心分離して、再度集菌した。
機（１５，０００ｒｐｍ）により菌体を集め培地と同量
の９０℃で３０分間殺菌した生理食塩水に懸濁し、前記
と同様に遠心分離して、再度集菌した。
得られた菌体を９０℃で３０分間殺菌した脱脂粉乳１０
％（ＷＯＷ）、蔗′糖１％（ＷΔ■及びグルタミン酸ソ
ーダ１％（ＷＯＷ）からなる溶液１０１に懸濁し、常法
に従って凍結乾燥し、４．５ Ｘ １０１０／ｇの生菌
数を有する粉末的１．２ｋｇを得た。
％（ＷＯＷ）、蔗′糖１％（ＷΔ■及びグルタミン酸ソ
ーダ１％（ＷＯＷ）からなる溶液１０１に懸濁し、常法
に従って凍結乾燥し、４．５ Ｘ １０１０／ｇの生菌
数を有する粉末的１．２ｋｇを得た。
また９０℃で３０分間殺菌した酵母エキス０．２％（Ｗ
ＯＷ）及び脱脂粉乳１２％（ＷＯＷ）からなる培地０．
５１にビフィドバクテリウム・インファンチスＡＴＣＣ
１５６９７の前培養物を５％（Ｖ／Ｖ）の割合で接種し
３７℃で８時間発酵した。
ＯＷ）及び脱脂粉乳１２％（ＷＯＷ）からなる培地０．
５１にビフィドバクテリウム・インファンチスＡＴＣＣ
１５６９７の前培養物を５％（Ｖ／Ｖ）の割合で接種し
３７℃で８時間発酵した。
これとは別に、トマトピユーレ７．５ｋｇ、砂糖０．２
ｋｇ、食塩Ｌｏｇ、グルタミン酸ソーダ３ｇ□及び香料
１０ｇを水１．７１と混合し、８５℃で１０分間殺菌し
、冷却し、この混合液に上記ストレプトコッカス・サー
モフィルスの粉末１５０ｇ及びビフィドバクテリウム・
インファンチスの発酵乳５００ｇを添加し、均一に混合
し、本菌及びビフィズス菌の生菌を含有する乳酸菌飲料
的１０ｋｇを調製し、２００ｍ１の紙容器４０本に充填
した。
ｋｇ、食塩Ｌｏｇ、グルタミン酸ソーダ３ｇ□及び香料
１０ｇを水１．７１と混合し、８５℃で１０分間殺菌し
、冷却し、この混合液に上記ストレプトコッカス・サー
モフィルスの粉末１５０ｇ及びビフィドバクテリウム・
インファンチスの発酵乳５００ｇを添加し、均一に混合
し、本菌及びビフィズス菌の生菌を含有する乳酸菌飲料
的１０ｋｇを調製し、２００ｍ１の紙容器４０本に充填
した。
得られた乳酸菌飲料は、ストレプトコッカス・サーモフ
ィルス６、２ Ｘ １０”／ｍｌ、ビフィドバクテリウ
ム・インファンチス１．３×１０８／ｍｌの生菌菌体を
含有し、ｐＨ４，６０であった。
ィルス６、２ Ｘ １０”／ｍｌ、ビフィドバクテリウ
ム・インファンチス１．３×１０８／ｍｌの生菌菌体を
含有し、ｐＨ４，６０であった。
この飲料を５℃で７日間保存した後のビフィドバクテリ
ウム・インファンチスの生菌数は３． Ｉ Ｘ １０７
／ｍｌであり、生残率は２３．８％であった。
ウム・インファンチスの生菌数は３． Ｉ Ｘ １０７
／ｍｌであり、生残率は２３．８％であった。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ ワールブルグ検圧法により測定したとき、少なくと
も３０ナノモル（ｎ ｍｏｌｅ）酸素分子／（ｍｇ乾
燥菌体重量・分）の酸素吸収能を示すストレプトコッカ
ス・サーモフィルス。 ２ ストレプトコッカス・サーモフィルスが下記の菌学
的性質を示すことを特徴とする特許請求の範囲第１項に
記載の微生物。 （Ａ） ワールブルグ検圧法により測定したとき、少
なくとも３０ナノモル（ｎ ｍｏｌｅ）酸素分子／（
ｍｇ乾燥菌体重量・分）の酸素吸収能。 （Ｂ） Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８
時間好気培養したときの菌の形態： ■ 大きさく直径）：０．７〜０．９μｍ■ 形状：球
状または楕円状で連鎖 （Ｃ）Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８時間
好気培養したときのコロニーの形態 ■ 形状：円形 ■ 隆起：凸円状 ■ 周縁：円滑 ■ 大きさく直径）：０．５〜１．５ｍｍ■ 色調：白
色で不透明 ■ 表面：円滑で光沢あり （Ｄ） ガス：産生せず （Ｅ） ２０℃以下で生育せず （Ｆ） ４５℃で生育 （Ｇ） 運動性なし くＥｌ 胞子形成せず （Ｉ＞ ダラム陽性 （Ｊ） ベンジジン陰性 Ｋ カタラーゼ陰性 （Ｌ） ６５℃３０分間の加熱で生存 Ｍ ２％（Ｗ／Ｖ）塩化ナトリウム存在下で生育せず （Ｎ）０．１％（Ｗ／Ｖ）メチレンブルー添加孔で生育
せず （０） Ｊ９．６で生育せず （Ｐ） 糖からの酸生成 グルコース、フラクトース、シュークロース及びラクト
ースは陽性。 アラビノース、キシロース、ラフィノース、マルトース
、トレハロース、イヌリン、マニトール、ソルビトール
、サリシン及びグリセロールは陰性。 Ｑ アルギニンからアンモニアを生成せず３ ストレプ
トコッカス・サーモフィルスがストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０２（微工研菌寄第６７７７号）
、ストレプトコッカス・サーモフィルスＭ−８２０３（
微工研菌寄第６７７８号）、ストレプトコッカス・サー
モフィルスＭ−８２０４（微工研菌寄第６７７９号）又
はストレプトコッカス・サーモフィルスＭ−８２０５（
微工研菌寄第６７８０号）からなる群より選択された１
種または２種以上の微生物であることを特徴とする特許
請求の範囲第１項又は第２項に記載の微生物。 ４ ワールブルグ検圧法で測定したとき、少なくとも３
０ナノモル（ｎ ｍｏｌｅ）酸素分子／ （ｍｇ乾燥
菌体重量・分）の酸素吸収能を示すストレゾ１〜コツカ
ス・サーモフィルスの生菌菌体と嫌気性微生物の生菌菌
体を含有することを特徴とする組成物。 ５ ス１へレプトコツカス・サーモフィルスが下記の菌
学的性質を示すことを特徴とする特許請求の範囲第４項
に記載の組成物。 （Ａ） ワールブルグ検圧法により測定したとき、少
なくとも３０ナノモル（ｎ ｍｏｌｅ）酸素分子／（
ｍｇ乾燥菌体重量・分）の酸素吸収能。 （Ｂ） Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８
時間好気培養したときの菌の形態： ■ 大きさく直径）：０，７〜０．９μｍ■ 形状：球
状または楕円状で連鎖 （Ｃ）Ｍ−１７寒天平板培地を用い、３７℃で４８時間
好気培養したときのコロニーの形態 ■ 形状：円形 ■隆起：凸円状 ■周縁：円滑 ■ 大きさく直径）：０，５〜１．５ｍｍ■ 色調：白
色で不透明 ■ 表面：円滑で光沢あり （Ｄ） ガス：産生ぜず （Ｅ） ２０℃以下で生育せず （Ｆ） ４５℃で生育 （Ｇ） 運動性なし Ｉ 胞子形成せず （Ｉ） ダラム陽性 （Ｊ）ベンジジン陰性 Ｋ カタラーゼ陰性 （０６５℃３０分間の加熱で生存 Ｍ ２％（Ｗ／Ｖ）塩化ナトリウム存在下で生育せず （Ｎ）０．１％（Ｗ／Ｖ）メチレンブルー添加乳で生育
せず （０） ｌｌ（９，６で生育せず （Ｐ） 糖からの酸生成 グルコース、フラクトース、シュークロース及びラクト
ースは陽性。 アラビノース、キシロース、ラフィノース、マルトース
、ｌ−レバロース、イヌリン、マニトール、ソルビトー
ル、サリシン及びグリセロールは陰性。 （Ｑ アルギニンからアンモニアを生成せず６ ストレ
プトコッカス・サーモフィルスがストレプトコッカス・
サーモフィルスＭ−８２０２（微工研菌寄第６７７７号
）、ストレプトコッカス・サーモフィルスＭ−８２０３
（微工研菌寄第６７７８号）、ストレプトコッカス・サ
ーモフィルスＭ−８２０４（微工研菌寄第６７７９号）
及びストレプトコッカス・サーモフィルスＭ−８２０５
（微工研菌寄第６７８０号）からなる群より選ばれる１
種又は２種以上の微生物であることを特徴とする特許請
求の範囲第４項または第５項に記載の組成物。 ７ 嫌気性微生物がビフィドバクテリウム属に属する微
生物であることを特徴とする特許請求の範囲第４項ない
し第６項のいずれかに記載の組成物。 ８ 組成物１ｇ当り１×１０８〜２×１０９の該ストレ
プトコッカス・サーモフィルスを含有することを特徴と
する特許請求の範囲第４項ないし第７項のいずれかに記
載の組成物。
Priority Applications (5)
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|---|---|---|---|
| JP57195375A JPS5951997B2 (ja) | 1982-11-09 | 1982-11-09 | ストレプトコツカス・サ−モフイルスに属する新規微生物及び該微生物を含有する組成物 |
| US06/547,825 US4601985A (en) | 1982-11-09 | 1983-11-02 | Microorganism belonging to streptococcus thermophilus and a composition containing said microorganism |
| DE8383306780T DE3375804D1 (en) | 1982-11-09 | 1983-11-08 | A new microorganism belonging to streptococcus thermophilus and a composition containing said microorganism |
| EP83306780A EP0112020B2 (en) | 1982-11-09 | 1983-11-08 | A new microorganism belonging to streptococcus thermophilus and a composition containing said microorganism |
| FI834115A FI76372C (fi) | 1982-11-09 | 1983-11-09 | Foerfarande foer framstaellning av en komposition innehaollande en ny mikroorganism, som hoer till streptococcus thermophilus. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57195375A JPS5951997B2 (ja) | 1982-11-09 | 1982-11-09 | ストレプトコツカス・サ−モフイルスに属する新規微生物及び該微生物を含有する組成物 |
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| JPS5985288A JPS5985288A (ja) | 1984-05-17 |
| JPS5951997B2 true JPS5951997B2 (ja) | 1984-12-17 |
Family
ID=16340118
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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| JP57195375A Expired JPS5951997B2 (ja) | 1982-11-09 | 1982-11-09 | ストレプトコツカス・サ−モフイルスに属する新規微生物及び該微生物を含有する組成物 |
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- 1983-11-08 DE DE8383306780T patent/DE3375804D1/de not_active Expired
- 1983-11-09 FI FI834115A patent/FI76372C/fi not_active IP Right Cessation
Also Published As
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