JPH10510718A

JPH10510718A - 血管内皮増殖因子−ｂ

Info

Publication number: JPH10510718A
Application number: JP8526450A
Authority: JP
Inventors: エリクソン，ウルフ; オロフソン，ビルギッタ; アリターロ，カリ; パジュソラ，カトリ
Original assignee: ルードヴィッヒ・インスティテュート・フォア・キャンサー・リサーチ; ヘルシンキ・ユニバーシティ・ライセンシング・リミテッド・オイ
Priority date: 1995-03-01
Filing date: 1996-03-01
Publication date: 1998-10-20
Anticipated expiration: 2016-03-01
Also published as: JP2000228982A; PT814827E; US5840693A; AU741856B2; US6331301B1; US20050064493A1; US7341996B2; ES2202432T3; EP0814827A1; US20030170253A1; JP3297687B2; EP0814827A4; CN1176603A; CN1146440C; DE69629181D1; JP3275024B2; US5928939A; AU5302196A; DK0814827T3; CA2211687C

Abstract

(57)【要約】血管内皮細胞の有糸分裂と増殖を促進する性質を有するＰＤＧＦファミリーの成長因子からのＶＥＧＦ−Ｂポリペプチドと、これらポリペプチドをコードするＤＮＡ配列と、それらを含有する医薬組成物と、それらと反応する抗体。前記ＶＥＧＦ−Ｂポリペプチドは、血管新生を刺激することと、更に、診断における使用とに於いて有用である。

Description

【発明の詳細な説明】血管内皮増殖因子−Ｂ発明の背景血管新生、すなわち、既存の血管からの新しい毛細血管の増殖は、組織の正常な成長と発達に必要な基本的プロセスである。それは、血管の樹枝状分岐（ｖａｓｃｕｌａｒｔｒｅｅ）の発達と分化、および、胚形成、身体の成長、組織および器官の修復と再生、黄体と子宮内膜の周期的成長、および、神経システムの発達と分化を含む多様な基本的生理学的プロセスにとっての必須条件である。女性の生殖システムに於いて、血管新生は、濾胞においてはその発達中に起こり、黄体においては排卵の後に起こり、胎盤においては妊娠状態を確立し維持するために起こる。血管新生は、更に、たとえば、傷や骨折の治癒等の体の修復プロセスの一部としても起こる。又、血管新生は、腫瘍成長の因子でもある。というのは、腫瘍は成長するためには、連続的に新しい毛細血管の成長を刺激しなければならないからである。毛細血管は、内皮細胞と、周細胞（ルジェー細胞）とから成る。これら二つの細胞タイプは、管、分岐、および全毛細血管ネットワークを形成するためのすべての遺伝情報を有している。特定の血管新生分子がこのプロセスを開始させることができる。血管新生の生理学的重要性に鑑みて、血管新生を刺激することができる因子の単離、キャラクタリゼーション、及び精製に多大な努力がささげられてきた。血管新生を刺激する多数のポリペプチドが精製され、その分子的、生化学的、および生物学的特性についてのキャラクタライズが行われてきた。このような血管新生の調節因子の概観のために、クラーグスブルン（Ｋｌａｇｓｂｒｕｎ）他，”ＲｅｇｕｌａｔｏｒｓｏｆＡｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ“，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．，５３：２１７−３９（１９９１）とフォークマン（Ｆｏｌｋｍａｎ）他，”Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ，“Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６７：１０９３１−９３４（１９９２）とを参照。最近の結果は、血管システムの確立と維持に於いて、いくつかの内皮のレセプタ−チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）を関連付けている。血管内皮細胞に対する分裂促進因子として特異性の高い一つのそのような増殖因子は、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）と命名されている。フェッラーラ（Ｆｅｒｒａｒａ）他，“ＴｈｅＶａｓｃｕｌａｒＥｎｄｏｔｈｅｌｉａｌＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒＦａｍｉｌｙｏｆＰｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ，” Ｊ．ＣｅｌｌｕｌａｒＢｉｏｃｈｅｍ．，４７：２１１−２１８（１９９１）；コノリー（Ｃｏｎｎｏｌｌｙ），“ＶａｓｃｕｌａｒＰｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙＦａｃｔｏｒ：ＡＵｎｉｑｕｅＲｅｇｕｌａｔｏｒｏｆＢｌｏｏｄＶｅｓｓｅｌＦｕｎｃｔｉｏｎ，”Ｊ．ＣｅｌｌｕｌａｒＢｉｏｃｈｅｍ．，４７：２１９−２２３（１９９１）を参照。ＶＥＧＦは、ウシ下垂体濾胞細胞を含む多数の細胞ラインによって調整された培地中に検出された強力に血管に作用するたん白質である。ＶＥＧＦは、二つの２４ｋＤサブユニットから成る、グリコシル化された陽イオン性の４６−４８ｋＤダイマーである。それは、スルフヒドリル還元剤によって不活性化され、酸性ｐＨと加熱とに対する抵抗性を有し、固定化されたヘパリンに結合する。ＶＥＧＦは皮内注射後に血管からの液体の漏洩を増加させるため、時として、血管透過性亢進因子（ＶＰＦ）と称される。それは、又、ｖａｓｃｕｌｏｔｒｏｐｉｎという名でも呼ばれる。これまで４つの異なった分子種のＶＥＧＦが検出されている。１６５アミノ酸種は、約４６ｋＤの分子量を有し、正常な細胞と組織に見られる主要な分子形態である。より数が少なく、位置１１６と１５９との間で４４個のアミノ酸が欠失した短い形態（ＶＥＧＦ₁₂₁）と、位置１１６に２４個の高塩基性残基の挿入を有する長い形態（ＶＥＧＦ₁₈₉）と、ＶＥＧＦ₁₈₉に見られる前記２４アミノ酸挿入を含む、４１個のアミノ酸の挿入を有するもう一つのより長い形態（ＶＥＧＦ₂₀₆ ）も、知られている。ＶＥＧＦ₁₂₁とＶＥＧＦ₁₆₅とは、可溶性のたん白質である。ＶＥＧＦ₁₈₉とＶＥＧＦ₂₀₆とは、大半が、細胞結合型である。ＶＥＧＦの全てのアイソフォームは、生物学的に活性である。例えば、皮内に投与された時、これらの種はそれぞれ、エバンスブルーの血管外遊出を誘発させることができる。前記種々のＶＥＧＦ種は、同じ遺伝子によってコードされ、メッセンジャーＲＮＡの選択的スプライシングから生じる。この結論は、ヒトゲノムＤＮＡのサザンブロット分析によって支持されており、これは、ＶＥＧＦ₁₆₅のためのプローブを使用しても、あるいは、ＶＥＧＦ₂₀₆における挿入を有するプローブを使用しても、いずれの場合にも、制限パターンが同じであることを示している。推定ｍＲＮＡスプライシングの領域に於けるゲノム・クローンの分析も、選択的スプライシングと矛盾なく一致するイントロン／エキソン構造を示している。ＶＥＧＦの様々なアイソフォームは、細胞放出、区画化、バイオアベイラビリティを調節し、更に、恐らくは、それら増殖因子のシグナリング特性を調整するであろう異なった化学特性を有している。ＶＥＧＦ遺伝子のヌクレオチド配列の分析は、ＶＥＧＦが血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）ファミリーのメンバーであることを示している。ＶＥＧＦとＰ１ＧＦとは、二つの内皮のＲＴＫ、ｆｌｔ−１（ＶＥＧＦレセプター１，ＶＥＧＦＲ１）とｆｌｋ−１／ＫＤＲ（ＶＥＧＦレセプター２，ＶＥＧＦＲ２）とに対するリガンドである。ＶＥＧＦのアミノ酸配列は、ＰＤＧＦのＡおよびＢ鎖の配列に対する約２０％の相同性と、更に、両方の成熟ＰＤＧＦ鎖に見られる８つのシステイン残基の完全な保存とを示している。ＶＥＧＦ₁₆₅、ＶＥＧＦ₁₈₉およびＶＥＧＦ₂₀₆は、又、カルボキシ末端領域内に於いて８つのさらなるシステイン残基をも有している。ＶＥＧＦのアミノ−末端配列の前には、典型的なシグナル配列に対応する２６個のアミノ酸がある。成熟たん白質は、介在するプロシーケンスなしに、シグナル配列の切断の後、直接的に生成される。Ａｓｎ⁷⁴に於ける潜在的グリコシル化部位の存在は、ＶＥＧＦが糖たん白質であるという他の証拠と一致しているが、前記ポリペプチドは、グリコシル化種と非グリコシル化種との両方の形態で存在することが報告されている。他のサイトカインと同様に、ＶＥＧＦは、それが見られる特定の生物学的環境(biological context)に依り、様々な作用を有することができる。ＶＥＧＦとその高親和性レセプターであるｆｌｔ−１とＫＤＲ／ｆｌｋ−１とが、血管システムの形成と維持、更に、生理的および病的血管新生とに必要である。ＶＥＧＦは、強力な内皮細胞分裂促進因子であり、正常な胚の発達、傷の治癒、および組織の再生と再編成中に於いて内皮細胞増殖を促進することに依って、イン・ヴィヴォでの血管新生の誘発に直接寄与する。ＶＥＧＦは、又、固形腫瘍の成長と転移、虚血−誘発網膜症等の病的プロセスにも関係している。ＶＥＧＦの最も顕著な特徴はその特異性である。それは、毛細血管およびヒト臍帯血管内皮細胞に対して、１ｎｇ／ｍｌでイン・ヴィトロで分裂促進性であるが、副腎皮質細胞、角膜又は水晶体上皮細胞、血管平滑筋細胞、角膜内皮細胞、顆粒膜細胞、ケラチン生成細胞、ＢＨＫ−２１繊維芽細胞、３Ｔ３細胞、ラット胚繊維芽細胞、ヒト胎盤繊維芽細胞、およびヒト肉腫細胞に対してはそうではない。従って、ＶＥＧＦの標的細胞特異性は、血管内皮細胞に限定される。ＶＥＧＦは、血管新生につながる全ての一連の事象を引き起こすことができ、イン・ヴィヴォで角膜に於ける、又、治癒骨移植片モデルに於ける血管新生を刺激する。それは、小さな血管と大きな血管の両方から単離された内皮細胞の増殖を刺激することができる。ＶＥＧＦｍＲＮＡの発現は、卵巣の黄体、又は発達中の脳に於ける毛細血管の生理的増殖に時間的又空間的に、関連している。ＶＥＧＦ発現は、低酸素症によって引き起こされるので、内皮細胞増殖と血管新生とは、特に虚血部位に於いて刺激されるようである。ＶＥＧＦは、又、単球に対する強力な誘引物質でもある。更に、ＶＥＧＦは、内皮細胞に於いて、プラスミノーゲンアクチベーターと、プラスミノーゲンアクチベータインヒビターを誘導する。ＶＥＧＦ等の腫瘍細胞放出血管新生分子とＶＥＧＦに対するモノクローナル抗体とは、横紋筋肉腫等のある種の腫瘍の成長を阻害することが示されている。キム（Ｋｉｍ）他，“ＩｎｈｉｂｉｔｏｎｏｆＶａｓｃｕｌａｒＥｎｄｏｔｈｅｌｉａｌＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ−ＩｎｄｕｃｅｄＡｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓＳｕｐｐｒｅｓｓｅｓＴｕｍｏｒＧｒｏｗｔｈｉｎｖｉｖｏ，”Ｎａｔｕｒｅ，３６２：８４１−８４４（１９９３）参照。これは、ＶＥＧＦの作用を阻止することが、腫瘍一般の治療、特に、高度に血管が発達した、勢いのある腫瘍の治療に於いて、潜在的な治療上の重要性を有するものであることを示唆している。発明の要旨本発明の課題は、内皮細胞の増殖を促進する特性を有する新規な増殖因子を提供することにある。本発明の別の課題は、内皮細胞の増殖を促進する新規な増殖因子をコードする単離ＤＮＡ配列を提供することにある。本発明の更に別の課題は、診断および／又は治療用途に於いて有用な新規な製品を提供することにある。これらおよびその他の課題は、本発明に依って、下記の特徴的なアミノ酸配列（配列認識番号１６）Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓを示し、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特性を有するたん白質をコードする単離ＤＮＡを提供することによって達成され、そのＤＮＡは、図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）と、図３のＤＮＡ（配列認識番号４）と、図５のＤＮＡ（配列認識番号６）と、図７のＤＮＡ（配列認識番号８）と、図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）と、図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）と、図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）と、それらＤＮＡ配列の少なくとも一つとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡとから成るグループから選択される。本発明の別の態様に依れば、前記諸課題は、又、下記の特徴的なアミノ酸配列（配列認識番号１６）Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓを示し、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特性を有するたん白質を提供することによって達成され、たん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）と、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）と、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）と、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）と、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）と、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）と、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）と、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）とから成るグループから選択されるアミノ酸配列に実質的に対応するアミノ酸配列を含む。本発明の更に別の態様に於いて、前記諸課題は、そのようなたん白質を含有する医薬調合物を提供すること、および、そのようなたん白質と反応する、もしくは、そのようなたん白質を認識する抗体を提供することによって達成される。以後、血管内皮増殖因子Ｂ又はＶＥＧＦ−Ｂと称する本発明の新規な増殖因子は、ＶＥＧＦと、胎盤増殖因子（ＰｌＧＦ）とに対して高い構造的類似性を有する。前記ＶＥＧＦ−Ｂの全ての形態は、前記特徴的アミノ酸配列（配列認識番号１６）Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓを有し（ここで、Ｘａａは、可変残基を示す）、これは、ＰＤＧＦ／ＶＥＧＦファミリの増殖因子の特徴である。この特徴的なアミノ酸配列は、図４，６，８，１１，１３および１５に於いて、アミノ酸７０から８２に見られる。本発明の臨床上の使用は、診断用としての使用、傷の治癒に於ける血管新生の促進、そして血管新生の阻害を含む。癌の生体組織検査標本に於けるＶＥＧＦ− Ｂの定量化は、将来の転移のリスクのインジケーターとして有用であろう。慢性的創傷に対するＶＥＧＦ−Ｂ調合物の局所的適用によって、血管新生と創傷の治癒を促進することができる。ＶＥＧＦ−Ｂは、ＶＥＧＦと類似の方法で使用することができる。本発明の更に別の態様に依れば、前記諸課題は、典型的にはテスト・キットの形態をとる診断／予知手段を提供することによって達成される。たとえば、本発明の一具体例に於いて、本発明の新規な増殖因子に対する抗体と、前記抗体と本発明の新規増殖因子との間の結合を検出、より好ましくは評価するための手段と、を有する診断／予知テスト・キットが提供される。本発明の前記診断／予知手段の一好適具体例に於いて、増殖因子−抗体相互作用が、抗体と増殖因子との間の結合後に於いて、基質に結合した標識の量を測定することによって確証されるようにするために、抗体又は新規増殖因子のいずれかが標識化され、そして、抗体又は増殖因子のいずれかが、基質結合されている。本発明の特に好適な具体例に於いて、診断／予知手段は、従来式ＥＬＩＳＡキットとして提供することができる。更に別の具体例に於いて、前記診断／予知手段は、テスト個体のＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のゲノム配列構造を確定するためにＰＣＲ手段を含むことができ、そして、そのテスト個体の配列構造をなんらかの異常を検出するために本出願に開示する配列構造と比較することができる。この際、ＶＥＧＦ−Ｂ発現に於けるなんらかの異常が所定の病状に関連しているかどうかを確立することを予想している。本発明の更に別の態様は、ＶＥＧＦ−Ｂを認識し、適当に標識化された抗体に関する。本発明の更に別の態様は、ＶＥＧＦ−Ｂたん白質又はそれに対する抗体のいずれかを含有する医薬組成物の提供に関する。ＶＥＧＦ−Ｂたん白質を含有する組成物には、オプションとして、更に、ＶＥＧＦ又はヘパリン、あるいはこれらの両方を含ませることができる。本発明の更に別の態様に依れば、血管新生の欠如又は減少によって特徴付けられる状態を治療するための、ＶＥＧＦ−Ｂたん白質とヘパリンとを含有する薬剤の製品が提供される。更に別の態様に於いて、本発明は、ＶＥＧＦ−Ｂたん白質を含むたん白質ダイマー、特に、ジスルフィド結合ダイマーに関する。本発明のたん白質ダイマーは、ＶＥＧＦ−Ｂたん白質のホモダイマーと、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦとのヘテロダイマーとの両方を含む。本発明の更に別の態様に依れば、細胞からのＶＥＧＦおよび／又はＶＥＧＦ− Ｂの放出を容易にするための方法であって、前述した増殖因子の一方又は両方を発現する細胞をヘパリンに対して露出させる工程を有する方法が提供される。本発明の更に別の態様は、内皮細胞の増殖を促進する本発明の新規な増殖因子をコードする、ここに開示されるＤＮＡ配列の少なくとも一部に対して相補的なアンチ・センスヌクレオチド配列を有するベクターの提供に関する。本発明の更に別の態様に依れば、アンチ・センス配列を有するそのようなベクターは、ＶＥＧＦ−Ｂ発現を阻害するか、あるいは少なくともそれを弱めるために使用することができる。ＶＥＧＦ−Ｂ発現を阻害するためのこのタイプのベクターの使用は、ＶＥＧＦ−Ｂ発現が、腫瘍が、血管新生の準備ためにＶＥＧＦ−Ｂを産生する場合等の疾患に関連している場合に、好適である。このような腫瘍細胞を、アンチ・センスヌクレオチド配列を有するベクターでトランスフォーメーションすることによって、血管新生が抑制、又は、遅延され、腫瘍の成長も阻害又は遅延されるであろう。図面の簡単な説明図１は、ＶＥＧＦ−Ｂの（部分的）ｃＤＮＡクローンのヌクレオチド配列（配列認識番号１）と、ｃＤＮＡの第１リーディングフレームによってコードされるたん白質セグメントのアミノ酸配列（配列認識番号２）とを示している。図２は、ＶＥＧＦ−Ｂの（部分的）ｃＤＮＡクローンのヌクレオチド配列（配列認識番号１）と、ｃＤＮＡの第２リーディングフレームによってコードされるたん白質セグメントのアミノ酸配列（配列認識番号３）とを反復している。図３は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇の全長ｃＤＮＡクローンのコード領域のヌクレオチド配列（配列認識番号４）を示している。図４は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇のアミノ酸配列（配列認識番号５）を示している。図５は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₇₄のｃＤＮＡクローンのコード領域のヌクレオチド配列（配列認識番号６）を示している。図６は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₇₄のアミノ酸配列（配列認識番号７）を示している。図７は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₁₂のｃＤＮＡクローンのヌクレオチド配列（配列認識番号８）を示している。図８は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₁₂のアミノ酸配列（配列認識番号９）を示している。図９は、ｍＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇，ｍＶＥＧＦ₁₆₄，ｈＰｌＧＦ，ｍＰＤＧＦＡおよびｍＰＤＧＦＢのアミノ酸配列の比較を示している。図１０は、ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇のクローンのヌクレオチド配列（配列認識番号１０）を示している。図１１は、ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇のアミノ酸配列（配列認識番号１１）を示している。図１２は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のヌクレオチド配列（配列認識番号１２）を示している。図１３は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のアミノ酸配列（配列認識番号１３）を示している。図１４は、ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のヌクレオチド配列（配列認識番号１４）を示している。図１５は、ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のアミノ酸配列（配列認識番号１５）を示している。図１６は、マウスおよびヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇およびＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆アイソフォームのアミノ酸配列（配列認識番号５，１１，１３＆１５）比較を示している。図１７は、ＶＥＧＦ−Ｂのマウスおよびヒトの遺伝子の概略構造を示している。図１８は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆アイソフォームの親水性分析を示している。図１９は、ＶＥＧＦ／ＰＤＧＦファミリーの増殖因子の系統発生分析を示している。図２０は、ヒト臍帯血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）とウシの毛細血管内皮（ＢＣＥ）細胞の、ＶＥＧＦ−Ｂ，ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦによる、［³Ｈ］チミジン取り込みの誘導を示すグラフである。図２１は、いくつかのマウスとヒトの組織に於けるＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆転写産物の発現のノザンブロット分析である。図２２は、トランジェントにマウスＶＥＧＦ−ＢｃＤＮＡをトランスフェクションしたＣｏｓ−１細胞からの細胞培養培地および洗浄剤可溶化細胞溶解物の免疫沈降法とＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の結果を示している。図２３Ａは、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とヒトＶＥＧＦ₁₆₅とを別々に発現するトランスフェクションＣｏｓ−１細胞からの細胞培養培地の免疫沈降法とＳＤＳ− ＰＡＧＥ分析の結果を示している。図２３Ｂは、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とヒトＶＥＧＦ₁₆₅とを同時に発現するＣｏｓ−１細胞の細胞培養培地（Ｍ）と洗浄剤可溶化細胞溶解物（Ｌ）の免疫沈降法とＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の結果を示している。図２３Ｃは、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とヒトＶＥＧＦとを別々に又は、組み合わせて発現するＣｏｓ−１細胞及び、模擬(mock)トランスフェクションコントロール細胞からの細胞培養培地の免疫沈降法およびＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の結果を示している。図２４は、ＶＥＧＦ−Ｂプロモーター−レポータークローンの導出の略図、そして、図２５は、１．５５ｋｂヒトＶＥＧＦ−Ｂプロモーターフラグメントのヌクレオチド配列（配列認識番号１７）を示している。好適実施例の詳細説明従って、本発明は、ＶＥＧＦの血管新生およびその他の特性を共有するが、組織においてはＶＥＧＦと異な分布と発現を示す、以後ＶＥＧＦ−Ｂ増殖因子と称する新規な血管新生内皮増殖因子に関する。ＶＥＧＦ−Ｂ増殖因子は、血小板由来増殖因子のファミリのメンバーであり、血管新生内皮細胞および／又は中胚葉細胞の有糸分裂と増殖とを促進する増殖因子である。それらは、図１および２（配列認識番号１）、図３（配列認識番号４）、図５（配列認識番号６）、図７（配列認識番号８）、図１０（配列認識番号１０）、図１２（配列認識番号１２）、又は図１４（配列認識番号１４）に示すＤＮＡ配列のいずれか一つに対応、又は、それとストリンジェントな条件下に於いてハイブリダイズ可能なＤＮＡ配列の発現によって産生される。本発明の範囲には、上記ＤＮＡ配列のいずれか一つとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡ配列によってコードされるすべての血管新生たん白質が含まれると意図される。適当なハイブリダイゼーション条件には、たとえば、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＰＥ緩衝液、５ｘデンハルト溶液、０．５％ＳＤＳそして、１００μｇ／ｍｌの鮭精子ＤＮＡで４２℃で一晩、その後、５５℃で２ｘＳＳＣ中で２ｘ３０分間の洗浄、という条件が含まれる。本発明は、又、上記ＤＮＡ配列のいずれか一つと対応、又は、それとストリンジェントな条件下でハイブリダイズする単離および／又は精製ＤＮＡにも関する。別の態様に於いて、本発明は、ＶＥＧＦ−Ｂ増殖因子の抗体、特に、モノクローナル抗体に関する。ＶＥＧＦ−Ｂたん白質は、たん白質チロシンキナーゼ増殖因子レセプターと相互作用するものであると考えられている。このようなレセプターの詳細は当該技術に於いて公知である。［たとえば、ウィルクス，エイ，エフ（Ｗｉｌｋｓ，Ａ．Ｆ．），“ＰｒｏｔｅｉｎＴｙｒｏｓｉｎｅＫｉｎａｓｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒＲｅｃｅｐｔｏｒｓａｎｄＴｈｅｉｒＬｉｇａｎｄｓｉｎＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ，ａｎｄＣａｎｃｅｒ，”Ａｄｖ．ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．，６０：４３−７３（１９９３）参照］。様々な成体マウス組織が、ＶＥＧＦ−Ｂに対応する転写産物の発現について、ノザンブロッティングによってテストされた。ｍＲＮＡのサイズは、１．３−１．４ｋｂであった。マウスの多組織ノザンブロット（ＭＴＮ，Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）を、上述したｐＰＣ６７酵母発現ベクター由来の≒０．９ｋｂＳａｌＩ／ＮｏｔＩフラグメントでプローブした。前記プローブは、ランダムプライミングを使用して、³²Ｐ−ｄＣＴＰによって標識化した（比活性１０⁸−１０⁹ｃｐｍ／μｇＤＮＡ）。前記ブロットを、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＰＥ緩衝液、２％ＳＤＳ、１０ｘデンハルト溶液、１００μｇ／ｍｌの鮭精子ＤＮＡ、そして１ｘ１０⁶ｃｐｍの前記標識化プローブ／ｍｌを使用して、４２℃で一晩ハイブリダイゼーションした。前記ブロットを、０．０５％ＳＤＳを含有する２ｘＳＳＣ中で、室温で２ｘ３０分間、その後、０．１％ＳＤＳを含有する０．１ｘＳＳＣ中で、５２℃で２ｘ２０分間洗浄した。前記ブロットを、その後、強化スクリーンを使用して３日間、−７０℃で露出した。コダック社製ＸＡＲフィルムを使用した。前記フィルムの視覚検査よって測定した相対発現レベルを以下の表にリストする。Ｃｌｏｎｔｅｃｈからのヒトの多組織ノザンブロット（ＭＮＴ）を、マウスの部分的ｃＤＮＡを用いて、プローブして、様々なヒト組織に於ける相対ＶＥＧＦ −Ｂ発現レベルを測定した。転写産物のサイズは、１．３−１．４ｋｂであった。条件は、上述したマウスのノザンブロットに使用したものと同じであった。ヒトのノザンブロットの相対的ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物レベルを、次の表２にリストする。比較の目的のために、表２は、文献からの様々な哺乳類システムに於けるＶＥＧＦの相対的発現レベルデータもリストしている。表１と表２の比較から、ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物のマウスとヒトの組織発現レベルは、比較的類似しており、最高の発現レベルが、心臓と骨格筋とに見られることが理解される。脳と腎臓組織においては、かなりの相違が見られる。又、そこから最も一般的なヒトの腫瘍のいくつかが発生する、前立腺、膵臓および腸等の、筋細胞と上皮細胞との両方を大きな比率で含有する組織は、比較的高いレベルでＶＥＧＦ−Ｂを発現することも銘記されるべきである。ヒトの組織に於けるＶＥＧＦとＶＥＧＦ−Ｂの相対的発現レベルの比較は、いくつかの顕著な相違を示している。ＶＥＧＦは、ヒトの心臓組織によってはやや弱く発現されるが、ＶＥＧＦ−Ｂは、同組織によって非常に強く発現される。他方、ＶＥＧＦはヒトの肺組織によって強く発現されるが、ＶＥＧＦ−Ｂはヒトの肺組織によって弱く発現されるだけである。同様に、ヒトの肝臓組織は、ＶＥＧＦを中レベルで発現するが、ＶＥＧＦ−Ｂは非常に弱く発現されるだけである。これらのデータは、その全体的類似にも拘わらず、ＶＥＧＦとＶＥＧＦ−Ｂの作用が、完全に同一ではないことを証明している。ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物の発現を、マウスとヒトの組織に於いて、ノザンブロッティングによって更に分析し、ＶＥＧＦ転写産物の発現と比較した。マウスとヒトの多組織ノザン（ＭＴＮ）ブロット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）を、³²Ｐ−標識化マウスＶＥＧＦ−Ｂプローブ（クローンｐｃｉｆ２の≒０．９ｋｂＳａｌＩ／ＮｏｔＩインサート）でハイブリタイズさせた。ＶＥＧＦ発現は³²Ｐ標識化ＶＥＧＦ₁₆₅ｃＤＮＡをプローブとして用いて分析した。ハイブリダイゼーションを、５０％脱イオン化ホルムアミド、５ｘＳＳＣｐＨ７．０，１％ＳＤＳ，５ｘデンハルト溶液、および１００μｇ／ｍｌの変性鮭精子ＤＮＡ中で、４２℃で行った。フィルターを、０．５％ＳＤＳを含む２ｘＳＳＣ中で、５２℃で２ｘ３０分間洗浄し、補力スクリーンを使用して、−７０℃で２−５日間、コダック社製ＸＡＲフィルムに露出した。ＣＢＡマウスからの成体マウス組織と、ＣＢＡとＮＭＲＩマウスとの交配から得た胚のインサイチュハイブリダイゼーション分析を、過去に於いてコルホーネン（Ｋｏｒｈｏｎｅｎ）他，Ｂｌｏｏｄ，８０，２５４８−５５（１９９２）によって記載されているものと実質的に同様に行った。ＲＮＡプローブ（３８３ｂｐアンチセンスプローブと、１６９ｂｐセンスプローブ）を、ｐｃｉｆ２ｃＤＮＡクローンから得た４４０ｂｐＳａｌＩ／ＳａｃＩフラグメントを含む線状化プラスミドから作成した。放射性標識化ＲＮＡを、Ｔ７およびＳＰ６ＲＮＡポリメラーゼと、［³⁵Ｓ］ＵＴＰ（ＡｍｅｒｓｈａｍＩｎｃ．）を使用して合成した。プローブのアルカリ加水分解は省略した。ヘマトキシリンを対比染色に使用した。センスストランドと、ＲＮＡｓｅＡ−処理済みセクションによるコントロールハイブリダイゼーションでは、バックグランド以上のシグナルは検出されなかった。マウス組織に於いては、１．４ｋｂＶＥＧＦ−Ｂ転写産物の最も多量の発現が、心臓、脳、骨格筋および腎臓において検出された。主要な３．７ｋｂのＶＥＧＦ転写産物が、心臓、脳、肺、骨格筋、および腎臓において発現された。ヒトの組織に於いては、１．４ｋｂＶＥＧＦ−Ｂ転写産物と、主要な３．７と４．５ｋｂのＶＥＧＦ転写産物との最も多量の発現が、心臓、骨格筋、膵臓、および前立腺において検出された。従って、明白な量的相違が存在するものの、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦとは、多くのヒトとマウスの組織において同時発現されるようである。ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物の発現を、更に、成体マウス心臓および骨格筋からのセクションと、初期（Ｅ１０）マウス胚からのセクションに於けるインサイチュハイブリダイゼーションによって調べた。成体心臓に於いて、ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物は、心筋ににおいて顕著に発現されるのに対して、動脈平滑筋においてはなんら特異的なシグナルは検出されない。成体横紋筋では、ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物は、いくつかの筋原繊維によって発現されるが、それ以外で前記転写産物が欠如しているようである。Ｅ１０マウス胚では、ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物は、主として成長中の心臓に於いて検出される。成体マウス心臓の心筋は、顕著なシグナルを有する。横紋筋に於いては、ＶＥＧＦ−Ｂ発現は、筋原繊維の部分集団において見られる。Ｅ１０マウス胚の成長中の心臓に於いても、強いシグナルが得られた。他の胚組織は、より低いレベル、もしくは検出不能なレベルのＶＥＧＦ−Ｂ転写産物を発現した。総括すると、これらのテストは、ＶＥＧＦ−Ｂ転写産物が主として筋肉組織に於いて発現されることを示している。ＶＥＧＦ−Ｂは、特に、心臓と骨格筋とに於いて豊富であり、これらの組織とその他の組織とに於いてＶＥＧＦと同時発現する。トランスフェクション細胞に於いては、ＶＥＧＦ−Ｂは、細胞表面に結合したジスルフィド結合ホモダイマーを形成し、ＶＥＧＦと同時発現される時には、ＶＥＧＦとヘテロダイマーを形成する。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆アイソフォーム特異的プローブを使用したいくつかのマウスとヒトの組織に於けるＶＥＧＦ− Ｂ₁₈₆転写産物の発現のノザンブロット分析を図２１に示す。ＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子の染色体位置を、サザンブロッティングと、体細胞雑種のポリメラーゼ連鎖反応による分析と、中期染色体の蛍光インサイチュハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）とによって評価した。前記ＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子は、染色体１１ｑ１３上の、サイクリンＤ１遺伝子の近傍に見つかった。興味深いことに、サイクリンＤ１遺伝子は、多数のヒトの癌腫において増幅されるが、ＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子は、増幅されたサイクリンＤ１を含有するいくつかの乳がん細胞ラインに於いては増幅されなかった。しかしながら、ＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子に於ける突然変異は、血管の奇形および／又は心血管疾病に関連しているかもしれない。特に銘記のない限り、下記の例では、オースベル（Ａｕｓｕｂｅｌ）他，（ｅｄｓ．），ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ（１９９２）に記載されている標準的分子生物学技術および手順を使用した。例１：二つのリーディングフレームを有する部分的ｃＤＮＡクローンマウスＶＥＧＦ−Ｂをコードする部分的ｃＤＮＡクローンを次のようにして同定した。１４．５日齢のマウス胚から単離されたポリＡ＋ｍＲＮＡから得られたｃＤＮＡライブラリー（Ｅ１４．５）［シェヴレイ，ピー(ＣｈｅｖｒａｙＰ．)およびネイサンズ，ディ（ＮａｔｈａｎｓＤ．），“Ｐｒｏｔｅｉｎｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｃｌｏｎｉｎｇｉｎｙｅａｓｔ：ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｍａｍｍａｌｉａｎｐｒｏｔｅｉｎｓｔｈａｔｒｅａｃｔｗｉｔｈｔｈｅｌｅｕｃｉｎｅｚｉｐｐｅｒｏｆＪｕｎ，”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８９：５７８９ −９３（１９９２）］から、ジュリス，ジェィ（ＧｙｕｒｉｓＪ．），ゴレミス，イー（ＧｏｌｅｍｉｓＥ．），チェルトコフ，エイチ（ＣｈｅｒｔｋｏｖＨ．）およびブレント，アール（ＢｒｅｎｔＲ．），“Ｃｄｉ１，ａＨｕｍａｎＧｌａｎｄＳＰｈａｓｅＰｒｏｔｅｉｎＰｈｏｓｐｈａｔａｓｅＴｈａｔＡｓｓｏｃｉａｔｅｓｗｉｔｈＣｄｋ２，“Ｃｅｌｌ，７５：７９１−８０３（１９９３）に記載されている酵母ツーハリブリッド相互作用トラップ・スクリーニング技術を使用して、細胞質レチノイン酸−結合たん白質タイプ１（ＣＲＡＢＰ−Ｉ）と相互作用する可能性のある細胞質たん白質をスクリーニングした。このスクリーニング技術は、結合ドメインを有し、転写的に不活性であることが知られている融合たん白質（“ｂａｉｔ”）と、基礎転写を示さず、かつ、前記ｂａｉｔによって結合されるレポーター遺伝子と、キメラとして発現されるたん白質をコードし、そのアミノ末端が、活性化ドメインと、他の有用な部分を有する発現ライブラリー（ｔｈｅ“ｐｒｅｙ”）、とを含む。スクリーニングされたライブラリーは、Ｄｒ．ＰｉｅｒｒｅＣｈｅｖｒａｙｏｆｔｈｅＪｏｈｎｓＨｏｐｋｉｎｓＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ＳｃｈｏｏｌｏｆＭｅｄｉｃｉｎｅ，７２５ＮｏｒｔｈＷｏｌｆｅＳｔ．，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，ＭＤ２１２０５から入手した酵母発現ベクターｐＰＣ６７中の１４．５日歯令マウス胚プラスミドライブラリーであった。一つの陽性のｃＤＮＡクローン（ｐｃｉｆ−２）がスクリーニングから回収された。その陽性クローンを、周知の、従来技術を使用してシークエンシングしたところ、ＶＥＧＦと、ＰＤＧＦファミリーの増殖因子の他のメンバーとに対して相同性の高いたん白質をコードすることが分かった。前記プラスミドｐＰＣ６７中の≒０．９ｋｂＳａｌＩ／ＮｏｔＩインサートを、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔにクローニングし、Ｔ７，Ｔ３ベクタープライマーを内部プライマーと共に使用して、完全にシークエンシングした。プラスミドｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔは、ＳｔｒａｔａｇｅｎｅＩｎｃ．，ＬａＪｏｌｌａ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａから市販されている。前記ｃＤＮＡインサートは、８８６塩基対長で、異なるリーディングフレームにおいて、２つのポリペプチドをコードし、それらはそれぞれＶＥＧＦのＮ−末端とＣ−末端とに相向性があることがわかった。この新規な増殖因子を、以後、ＶＥＧＦ−Ｂと称する。前記クローンは、部分的であり、アミノ末端領域と、全シグナル配列とにおいていくつかのアミノ酸が欠如している。図１は、このＶＥＧＦ−Ｂの部分的ｃＤＮＡクローンのヌクレオチド配列（配列認識番号１）と、その第１リーディングフレームにおいてコードされるアミノ酸配列（配列認識番号２）とを示している。図１のＤＮＡ配列は、前記酵母発現ベクターｐＰＣ６７中のクローン（ｐｃｉｆ−２）を従来式にシークエンシングすることによって得た。そのクローンは、８８６の塩基対を有し、マウスＶＥＧＦ−Ｂの一部をコードしてした。前記単離ｃＤＮＡ配列は、ＶＥＧＦ−Ｂを含有する、たとえばマウス又はヒトの、哺乳類ゲノムＤＮＡ、とハイブリダイズするであろう。コード配列の他に、ゲノムＤＮＡは、単数又は複数の特定の組織に於いてＶＥＧＦ−Ｂの発現を引き起こし、誘導する単数又は複数のプロモーター配列を有するであろう。従って、ＶＥＧＦ−Ｂのコード配列は、ある種の筋繊維に対して特異的な筋肉−特異的プロモーターエレメントにつながっているかもしれない。前記ヌクレオチド配列は、二つの異なるリーディングフレームに於いて、二つの異なるアミノ酸配列に翻訳される。コード配列内の塩基対３０９−３１１において一つの停止コドン（ＴＧＡ）が存在する。従って、ＶＥＧＦ−Ｂには、複数のスプライシング・バリアントがある。クローニングされたｃＤＮＡ配列の５‘末端は、ＶＥＧＦ，ＰｌＧＦおよびＰＤＧＦＡおよびＢのＮ−末端ドメインに対してかなりの相同性を有する１０２アミノ酸長のたん白質をコードする。特に、多数のシステイン残基が、このグループのたん白質中おいてに完全に保存されている。前記ヌクレオチド配列（配列認識番号１）の他に、図１は、更に、この第１たん白質の推定アミノ酸配列（配列認識番号２）を示している。異なったリーディングフレームで前記ｃＤＮＡのＣ−末端（塩基対３０８−４７５）が翻訳されると、ＶＥＧＦ₁₆₅，ＶＥＧＦ₁₈₉，ＶＥＧＦ₂₀₆のＣ−末端部分に対して相同性の高いたん白質が生成される。図２も、図１のヌクレオチド配列（配列認識番号１）を示しているが、ここでは、第２リーディングフレームにコードされ、５４アミノ酸長である第２のたん白質の推定アミノ酸配列（配列認識番号３）が示されている。従って、ＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子は、一次転写産物の選択的スプライシングを使用して、異なったたん白質をコードするようである。前記第２ペプチドをコードする前記クローンの最後の部分は、ＶＥＧＦ−Ｂの他のスプライシング・バリアントに於いて機能的たん白質として発現されるかもしれない。上述したたん白質は、約５ないし１０個のアミノ酸からなる付加的なＮ−末端配列と、更に、約２１ないし２８個のアミノ酸のリーダー配列と結合して存在するかもしれない。従って、そのように結合されたアミノ酸配列は、内皮細胞の増殖を促進する特性を示し、そのように結合されたペプチド配列をコードするＤＮＡ配列は、図１および２のＤＮＡ配列と、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、そのようなアミノ酸配列と、それらをコードするＤＮＡとが、本発明の範囲に含まれると明らかに理解される。例２：マウスＶＥＧＦ−Ｂの全長ｃＤＮＡのクローニング前述の例１で同定されたＣＤＮＡクローンの約０．９ｋｂのＳａｌＩ／ＮｏｔＩｃＤＮＡインサートをプローブとして使用して、ＳｔｒａｔａｇｅｎｅＩｎｃ．，ｏｆＬａＪｏｌｌａ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａから入手した成体マウス心臓ラムダＺＡＰ−ＩＩｃＤＮＡライブラリーを、標準式技術を使用してスクリーニングした。前記ライブラリーを、指示に従って、滴定し、プレーティングして、フィルターを作成した。５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＰＥ，５ｘデンハルト溶液、１％ＳＤＳおよび１００ｕｇの鮭精子ＤＮＡ／ｍｌ中での４２℃ でのプレハイブリダイゼーションの後、前記フィルターを、同じ温度で、かつ、変性放射性標識化プローブを含有する同じ溶液中で１０⁶ｃｐｍ／ｍｌのハイブリダイゼーション溶液を使用して、ハイブリダイゼーションした。前記プローブは、ランダムプライミングキット（Ａｍｅｒｓｈａｍ）を使用して標識化した。１６時間後、前記フィルターを、０．５％ＳＤＳ含有の２ｘＳＳＣ中で、２ｘ３０分間、５２℃で洗浄した。前記フィルターを、−７０℃で一晩、補力スクリーンを使用して露出した。プレート上のすべてのプラークが陽性になるまで、陽性クローンを２回再スクリーニングした。いくつかの陽性クローンからのインサートを、供給業者によって指示されているように、イン・ヴィヴォエキサイションによって、プラスミドｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＳＫ＋にサブクローニングした。いくつかのクローンを、制限酵素分析によってマッピングしたところ、ＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩの制限フラグメントの長さによって特徴付けられる二つの異なるグループに分類されることが分かった。これらのグループの第１のものは、それぞれが、２４０ｂｐＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩ制限フラグメントを有する、前記制限マッピングされたクローンの内の三つを有していた。もう一つののグループは、３４０ｂｐＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩフラグメントを有するクローンであった。このフラグメントの分析は、例５に記載する。２４０ｂｐＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩ制限フラグメントを示した三つのクローンを、完全、又は部分的にシークエンシング（Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ２．０，Ｕ．Ｓ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、そして、これらのクローンの特徴を次のように要約する。ヌクレオチド配列分析は、前記ｃＤＮＡクローンの内の二つは、長さに於いて異なり、一方が突然変異を有していたものの、実質的に同じであることを示した。前記クローンの内の一方は、全長であり、最初の２１個のアミノ酸が切断可能なシグナル配列である１８８のアミノ酸残基をコードするオープンリーディングフレームを含有していた。これら実質的に同一の二つのクローンの内の他方は、開始コドンのＧの位置が末端となっていた。別のクローンの配列分析により、前記Ｇの前の配列は、ＡＣＣＡＴであると推定できた。これらのクローンの両方は、図３に示す同じコード領域ヌクレオチド配列（配列認識番号４）を有していることが分かった。図面に於いて、前記単離クローンには存在していなかった開始コドン（ＴＡＧ）の最初のチミンとアデニンとは省略されている。これら二つのｃＤＮＡクローンの両方のコード領域のオープンリーディングフレームの推定アミノ酸配列が図４に示されている（配列認識番号５）。この配列によってコードされたん白質を、以後ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇と称する。ここに使用されるたん白質名のそれぞれに於いて、その下付き数字は、シグナル配列を除いた成熟たん白質に於けるアミノ酸の数を示す。予想されたように、これらの二つのクローンによってコードされるアミノ酸配列と、例１のｃＤＮＡクローンから推定された部分的アミノ酸配列との比較は、顕著な類似性を示した。しかし、それぞれがＶＥＧＦの異なった部分に対する相同性を有するアミノ酸配列をコードする、例１のクローンにおける二つのオープンリーディングフレームは、両方共に、例２に依る上述の二つのクローンのそれぞれにおける同じリーディングフレーム中に存在している。例１のクローンのフレームシフトは、二つの追加アデニン単位の挿入によって引き起こされ、その結果、例１のクローンのＣ−末端部分はフレーム外にずれることになる。この理由は、現在ではわからないが、クローニングにおけるアーティファクトに依るものであるかもしれない。前述の３つのクレーンのうち第３のクローンのコード領域は、２１ｂｐの挿入を有することを除いて、前の二つのクローンのそれらと同一のヌクレオチド配列を有していた。図５は、この第３クローンのヌクレオチド配列（配列認識番号６）を示している。確認を容易にするために、前記２１の追加塩基は、図中に於いて下線を引かれている。この挿入によって、成熟たん白質中に於いて７つの追加のアミノ酸残基が生じる。従って、このより長いｃＤＮＡによってコードされるたん白質を、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₇₄と称する。図５のｃＤＮＡによってコードされるたん白質のアミノ酸配列が、図６に示されている（配列認識番号７）。この図に於いても、確認を容易にするために、前記７つの追加アミノ酸には下線が引かれている。これらの追加アミノ酸は、スプライス部位に於いて前記配列中に挿入されており、マウスゲノムＤＮＡクローンのシークエンシングは、これら追加アミノ酸が、実際に選択的スプライシングの結果であることを示している。更に、ＰＤＧＦのレセプター結合部位位置に関して今日知られていることに基づくと、前記挿入は、恐らくレセプター結合部位の一部であるたん白質中の位置において起こる。従って、前記挿入は、恐らく、レセプター結合に影響を与え、アンタゴニストおよび／又は異なるレセプター特異性に対する影響に於いて、機能的重要性を持つものであるかもしれない。例３：ハイブリッドｃＤＮＡクローン既に指摘したように、例１のこの元のｃＤＮＡクローンは、全長ではなく、アーティファクトを含んでいるものである可能性がある。しかし、もしもＶＥＧＦ −Ｂ₁₆₇および／又はＶＥＧＦ−Ｂ₁₇₄をコードする前述のクローンの末端５‘ヌクレオチド配列を追加すると、例１のこのオープンリーディングフレームは、１３３個のアミノ酸のたん白質をコードし、１１２アミノ酸長で、従って、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₁₂と称される成熟たん白質を生成することになる。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₁₂をコードするこのハイブリッドｃＤＮＡ配列（配列認識番号８）が、図７に示され、対応するたん白質のアミノ酸配列（配列認識番号９）が図８に示されている。図９は、マウス血管内皮増殖因子Ｂの１６７アミノ酸バリアント（ｍＶＥＧＦ −Ｂ₁₆₇）と、マウス血管内皮増殖因子（ｍＶＥＧＦ₁₆₄）と、ヒト胎盤増殖因子（ｈＰｌＧＦ）と、マウス血小板由来増殖因子Ａ（ｍＰＤＧＦＡ）と、マウス血小板由来増殖因子Ｂ（ｍＰＤＧＦＢ）とを比較する目的の、複数のアミノ酸配列のアラインメントを示している。マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇と同一のアミノ酸残基は、箱内に示されている。これら配列の相同関係は、明らかであり、図は、ＰＤＧＦ／ＶＥＧＦファミリーの増殖因子に属する増殖因子の保存された構造を示し、ＶＥＧＦ−Ｂが、このグループの他の増殖因子の構造的ホモローグであることをはっきりと示している。これらアミノ酸配列の対比較は、マウスＶＥＧＦ −Ｂが、マウスＶＥＧＦ₁₆₄に対して約４３％同一であり、ヒトＰｌＧＦに対して約３０％同一であり、更に、マウスＰＤＧＦＡおよびＢに対して約２０％同一であることを示している。保存されたシステイン残基が特に注目に値する。前記５つの増殖因子のＮ−末端ドメイン（すなわち、ＰＤＧＦ様ドメイン）に於ける最初の８つのシステイン残基がこのファミリーのすべてのメンバーによって共有されていることが理解され、従って、分子内および分子間ジスルフィド結合に関係しているこれら８つのシステイン残基が、これらの増殖因子間に於いて不変であることが明らかである。更に、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ₁₆₄のＣ− 末端ドメインは、又、８つのさらなる保存システイン残基といくらかの領域にわたるアミノ酸塩基性に対して重要な類似性をも示している。例４：ヒトＶＥＧＦ−ＢｃＤＮＡのクローニング λｇｔｌｌ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）中のヒト繊維肉腫ｃＤＮＡライブラリーＨＴ１０８０の１０⁶λ−クローンを、標準式手順に従って、前記マウスＶＥＧＦ− Ｂクローンｐｃｉｆ２の：≒０．９ｋｂインサートを用いてスクリーニングした。いくつかの陽性クローンの中の、一つの、Ｈ．１と命名したものをより詳しく分析し、そのヌクレオチド配列を決定した。そのヌクレオチド配列は、ヒトＶＥＧＦ−Ｂの２０７アミノ酸アイソフォームがコードされていることを示した。このアイソフォームの分析は、例６に於いて後述する。前記Ｈ．１配列に基づき、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇アイソフォームに対応する推定ヒトｃＤＮＡの全コード領域を増幅する二つのオリゴヌクレオチドをデザインした。５‘−ＣＡＣＣＡＴＧＡＧＣＣＣＴＣＴＧＣＴＣＣ−３’（正方向）（配列認識番号１８）５‘−ＧＣＣＡＴＧＴＧＴＣＡＣＣＴＴＣＧＣＡＧ−３’（逆方向）（配列認識番号１９）これらのオリゴヌクレオチドを利用して、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって、オリゴ−ｄＴプライムドヒト赤白血病細胞（ＨＥＬ）ＲＮＡからのヒトＶＥＧＦ−Ｂの全コード領域を増幅した。この増幅産物を、ＴＡクローニングキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）のｐＣＲ−ＩＩ−ベクターにクローニングし、標準式技術を使用してシークエンシングした。ヒトＶＥＧＦ−ＢｃＤＮＡクローンのヌクレオチド配列を図１０に示し（配列認識番号１０）、ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆ ₇ の推定アミノ酸配列を、図１１に示す（配列認識番号１１）。例２の全長マウスｃＤＮＡクローンと、例４の全長ヒトｃＤＮＡクローンとは、それぞれ、Ｎ−末端疎水性推定シグナル配列を含有する１８８個のアミノ酸のポリペプチドをコードする。ＶＥＧＦとの類推に依り、シグナルペプチダーゼ切断部位は、Ａｌａ２１とＰｒｏ２２との間に位置するものと考えられる。シグナルペプチダーゼの推定切断部位を、図１６に於いて矢印によって示す。従って、これら二つのクローンのプロセッシングされたＶＥＧＦ−Ｂポリペプチドは、それぞれ１６７個のアミノ酸を有している。例５例２に於いて単離された３４０ｂｐＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩフラグメントを示したクローンを分析したところ、その大部分は、２４０ｂｐＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩフラグメントを示した例２の最初の二つのクローンと同一であることが分かった。その相違は、配列のＣ−末端部分に於いて挿入が存在することに依るものである。この３４０ｂｐＳｐｅＩ／ＢａｍＨＩＤＮＡフラグメントは、２０７個のアミノ酸を含むマウスＶＥＧＦ−Ｂの別のアイソフォームをコードする。このたん白質をコードするＤＮＡのコード領域（配列認識番号１２）が図１２に示され、それが翻訳れたアミノ酸配列（配列認識番号１３）は、図１３に示されている。２１アミノ酸のリーダー配列の切断後、成熟たん白質は、１８６個のアミノ酸を有し、これをｍＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆と称する。このアイソフォームは、明らかに、図１７を参照して後述するように、選択的ＤＮＡスプライシングの結果、生じるものである。例６：例４に記載したようにして単離された前記Ｈ．１クローンは、ヒトＶＥＧＦ− Ｂの２０７アミノ酸のアイソフォームをコードすることが分かった。このたん白質をコードするＤＮＡのコード領域（配列認識番号１４）が図１４に示され、それが翻訳されたアミノ酸配列（配列認識番号１５）が、図１５に示されている。ここでも、ｈＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆と命名する、このアイソフォームは、選択的スプライシングの産生物であるようである。例５のｍＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆と、例６のｈＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆との両方が、ＶＥＧＦ −Ｂ₁₆₇のコード配列のヌクレオチド４１４と４１５との間に１０１の塩基対の挿入部を有している。この挿入部の後、これらｃＤＮＡクローンのヌクレオチド配列は、対応するＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇の配列と同一であった。その１０１塩基対挿入部の位置は、ＶＥＧＦ中のエキソン５−エキソン６接続部に対応している。この挿入によって、フレームシフトが生じ、これによって、二つのＶＥＧＦ−ＢアイソフォームのＣ−末端ドメインは、互いに全く異なったものになっている。二つの主要なＶＥＧＦ−Ｂアイソフォーム、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とに対応する、配列認識番号１１と１５とに於けるアミノ酸１１６から始まるＣ−末端アミノ酸配列の相違は、これら二つのアイソフォームの互い異なる生化学的特徴によって反映されている。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇のＣ−末端ドメインは、強塩基性（正味のチャージ＋１３）であり、ヘパリンに結合する。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のＣ−末端ドメインは、弱塩基性（正味のチャージ＋５）であり、そのＣ−末端に疎水性アミノ酸残基が長い領域にわたって存在している。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の疎水性末端が、膜貫通ドメインとして振る舞う可能性は低い、というのは、このＶＥＧＦ−Ｂのバリアントは、細胞から分泌されるからである。従って、Ｎ−末端ドメインが同一であるにもかかわらず、これらの二つの主要なＶＥＧＦ−Ｂのアイソフォームは、互いに非常に異なる生化学的特徴を有している。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆には高塩基性ヘパリン−結合ドメインがないことにより、前記たん白質は、細胞から自由に分泌されることが可能となる。しかしながら、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の分泌は、非常に低速であり、トランスフェクション細胞を使用したパルス・チェイス実験では、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーは、１時間以内では培地中に見つからなかった。これに対して、ＶＥＧＦホモダイマーとＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆・ＶＥＧＦダイマーとは、３０分以内に培地中に出現した。図１６は、マウスおよびヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇およびＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のアミノ酸配列（配列認識番号５，１１，１３および１５）のアラインメントを１文字コードで示している。同一の残基は、箱内に示され、これに対して、マウスおよびヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇およびＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆アイソフォーム間で異なるアミノ酸残基は、箱の外側に示されている。マウスおよびヒトＶＥＧＦ−Ｂは、約８８％のアミノ酸配列同一性を示し、特にそのＣ−末端領域に於いて、高塩基性である。マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のＣ−末端ドメインは、アミノ酸レベルに於いて約８５％同一である。マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇のＣ−末端ドメインはアミノ酸レベルにおいて約８４％同一である。両方のポリペプチドは、Ｎ−結合グリコシレート化のコンセンサス配列（Ｎ−Ｘ−Ｔ／Ｓ）を欠如している。矢印は、Ａｌａ²¹とＰｒｏ²²との間のシグナルペプチダーゼのための推定切断サイトを示している。シグナル配列を除くと、マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇アミノ酸配列は、高度に相同であり、１６７の残基において２０の置換があるにすぎない。これらの置換部は、Ｎ−末端、アミノ酸６０と１４５との周囲の二つの領域、に集中している。両方のＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇たん白質のすべてのシステイン残基は不変であるが、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇のＣ−末端の８つのシステイン残基は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆アイソフォームに於いては保存されていない。マウスおよびヒト配列は、残基６６と１２９との間の領域に於いて、一つの進化的に保存された置換（Ｑ１０５Ｒ）を除いて同一であることが注目される。これは、レセプター結合部位がたん白質のこの部分に見られるため（ＰＤＧＦ構造と比較して）、重要である。このことから、マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂが、レセプターレベルで交差反応結合を示し、従って、同一又は類似の生物学的活性を示す可能性がある、と結論される。例７：マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のエキソンイントロン構造ヒトＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子の構造を、ヒトゲノムＤＮＡをテンプレートとして使用したＰＣＲ反応から得た、クローン化ＰＣＲフラグメントの制限マッピングとヌクレオチド配列分析とによって調べた。この際、ゲノムλクローンから同定された、第１エキソンとイントロンについては除いた。マウス遺伝子の構造を、異なる組み合わせのプライマーを使用して増幅されたクローン化ＰＣＲフラグメントの制限マッピングとヌクレオチド配列分析とによって調べた。これらのＰＣＲ増幅に於けるテンプレートとして、全長マウスＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子を含有する単離ゲノムλクローンを使用した。手順前記マウスＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のいくつかのλクローンを、供給業者（ＳｔｒａｔａｇｅｎｅＩｎｃ．）による指示に従って、１２９／Ｓｗ λＦＩＸゲノムライブラリーから単離した。ＶＥＧＦ−Ｂの、前述のｐｃｉｆ２ｃＤＮＡの≒０．９ｋｂＳａｌＩ／ＮｏｔＩインサート（配列認識番号１）を、プローブとして使用した。いくつかの陽性クローンからのλＤＮＡを、プレート溶解物から単離した。前記陽性λ−クローンの一つ（クローン１０）を、ＢａｍＨＩフラグメントとしてｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＳＫ（ＳｔｒａｔａｇｅｎｅＩｎｃ．）にサブクローニングした。この同じクローンからの単離ＤＮＡも、ＰＣＲ反応のテンプレートとして使用し（１００ｎｇのλＤＮＡ／反応）、マウスＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のコード領域を、異なった組み合わせのプライマーを使用して増幅した。これらのプライマーのヌクレオチド配列は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とマウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とをコードするｃＤＮＡクローンから得た。ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ（２．５Ｕ／反応）を使用した。生成されたＰＣＲフラグメントを、ＴＡ−クローニングベクターｐＣＲＩＩ（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＩｎｃ．）に直接にクローニングした。マウスＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のエキソンイントロン構造を、サブクローニングされたＢａｍＨＩゲノムフラグメントと、クローニングされたＰＣＲ生成物とのヌクレオチド配列分析によって確定した。ヒトゲノムλ−クローンを、ＥＭＢＬ−３ＳＰ６／Ｔ７（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）中のヒトのゲノムライブラリーの１ｘ１０⁶クローンをスクリーニングすることによって単離した。その際、プローブとしてヒトＶＥＧＦ−ＢｃＤＮＡの５ ‘配列にわたる９０ｂｐのＰＣＲ−フラグメントを使用し、高度にストリンジェントな条件を用いた。洗浄条件は、１ｘＳＳＣ、室温で３０分間での１回の洗浄と、１ｘＳＳＣ、６５℃で３０分間の２回の洗浄、であった。前記ＰＣＲのプライマーは、５‘−ＣＡＣＣＡＴＧＡＧＣＣＣＴＣＴＧＣＴＣＣ−３’（正方向）（配列認識番号１８）と、５‘−ＧＧＧＣＡＴＣＡＧＧＣＴＧＧＧＡＧＡＣＡＧ−３’（逆方向）（配列認識番号１９）とであった。陽性λ−クローンを、ＳａｃＩフラグメントとしてｐＧＥＭ３Ｚベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）にサブクローニングしたところ、遺伝子の５‘−領域を坦持していることが分かった。ヒトＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子の残りの部分を、ゲノムＤＮＡをテンプレートとして使用したＰＣＲによって増幅した。ヒトｃＤＮＡ配列から得た異なった組み合わせのプライマーを使用した。ＤｙｎａｚｙｍｅＤＮＡポリメラーゼ（２．５Ｕ／反応、Ｆｉｎｎｚｙｍｅｓ）を使用した。増幅されたＰＣＲフラグメントを、ＴＡ−クローニングベクターｐＣＲＩＩ（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＩｎｃ．）に直接にクローニングした。マウスとヒトのＶＥＧＦ− Ｂ遺伝子の短いイントロンのエキソン−イントロン境界と、長さとを、ベクター特異的プライマー又は、ｃＤＮＡ配列から得た適当なプラィマーを使用したヌクレオチド配列分析によって判定した。長いイントロンの長さは、アガロース・ゲル電気泳動によって分析した時の増幅ＰＣＲフラグメントの長さに基づいて計算した。結果その結果は、マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のコード化部分は、ＤＮＡの約４ｋｂに渡っており、両方の遺伝子が長さが１９ｂｐ（Ｅ７）から２３６ｂｐ（Ｅ６）の範囲である７つのコードエキソンに分割されることを示した。図１７は、マウスとヒトのＶＥＧＦ−Ｂの遺伝子の構造の略図である。塩基対としてのエキソンのサイズは、箱内に示され、イントロンのサイズは、箱の間に示されている。イントロンは、一定縮尺では示されていない。マウスとヒトのＶＥＧＦ− Ｂ遺伝子の非翻訳化隣接領域の構造は、確定されず、グレーのボックスで示されている。両方の遺伝子のエキソン−イントロン接続部を、次の表３に示す。前述したように、エキソン６は、遺伝子が異なる２つのＶＥＧＦ−Ｂアイソフォームの転写産物を生成することを可能にする選択的スプライス受容部位を有している。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇は、エキソン１−５、エキソン６の最後の部分、そしてエキソン７（ＴＧＡ）を用いてなる。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆は、エキソン１ないし５、エキソン６の最初の部分を用いてなり、エキソン６の最後の部分中（ＴＡＧ）において終止している。エキソン６の最初の部分の挿入が、フレームシフトを導入し、エキソン６の最後の部分に於いて終止コドンを生成するため、エキソン７は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆に於いて翻訳されない。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の終止コドン（ＴＡＧ）の位置は、エキソン６Ｂにおいて示され、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇の終止コドン（ＴＧＡ）の位置は、エキソン７において示されている。両方の遺伝子に於けるイントロンは、１６１ｂｐから約２．６ｋｂの範囲である。各エキソンの長さと、二つの遺伝子に於けるスプライス接続部の位置とは、同一であった。そして、すべてのスプライス供与、及び受容部位は、規範的なＧＴ／ＡＧ則に従っている、パジェット（Ｐａｄｇｅｔｔ）他，ＡｎｎｕａｌＲｅｖ．ｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，５５：１１１９−５０（１９８６）。マウスとヒトの遺伝子の間の唯一の特筆すべき相違は、イントロン１，４および６の長さであり、それらはマウスの遺伝子に於いてのほうが長いということである。すべてのエキソンイントロン境界が、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦとの間で保存されていることが分かったが、ＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子に於けるイントロンは、一般的に、ＶＥＧＦ遺伝子に於けるよりも小さかった。ＶＥＧＦ−Ｂのエキソン５の後の３００ｂｐ−イントロンは、ＶＥＧＦにおける対応のものとは異なっている。ＶＥＧＦにおけるものは、長さが３ｋｂであり、ＶＥＧＦ₁₈₉とＶＥＧＦ₂₀₆との転写産物に見られる選択的スプライシングされたエキソンを有し、それは多数の塩基性アミノ酸残基をコードする。このＶＥＧＦ−Ｂにおけるイントロンをより詳しく調べたが、ＶＥＧＦの第６番目のエキソンに対応するエキソンは見つからなかった。その代わり、このイントロンの３‘ 末端とそれに続くエキソンとは、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆をコードするｃＤＮＡクローンの対応する配列と同一であることが分かった。これは、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆のｍＲＮＡが、ｍＲＮＡスプライシング中における、選択的スプライス受容部位の使用によって形成され、その結果、これらのｍＲＮＡ中に１０１ｂｐイントロン配列の挿入が起こるという事実によって説明可能である。図１８は、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の比較親水性分析を示している。これらのプロファイルは、９つの残基の枠を使用するキール（Ｋｙｌｅ）およびドゥーリトル（Ｄｏｌｉｔｔｌｅ）に従って作成された。予想されるように、親水性／疎水性のパターンは、アミノ酸１からアミノ酸１１５まで本質的に同一である。アミノ酸１１５の後に於いて、親水性／疎水性パターンは、エキソン６の最初の部分によって引き起こされるフレームシフトに依り、変化する。従って、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とは、類似と非類似の両方の活性を示すものと予期される。図１９は、ＶＥＧＦ／ＰＤＧＦファミリーの増殖因子の５つのメンバーのアミノ酸配列の系統発生的関係を示す系統樹である。置換又は代替の数は、図の左側から右側にかけて減少している。ＶＥＧＦ−Ｂは、ＶＥＧＦと血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）グループの間に位置していることが分かる。図９および１６の複数のアミノ酸配列アラインメントと、図１９の系統発生分析は、ＰＡＭ２５０ディスタンステーブルを使用して、ヘリン（Ｈｅｉｎ），ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．１８３，ｐｐ．６２６− ４５，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓＩｎｃ．，ＳａｎＤｉｅｇｏ（１９９０）に従って行った。例８：抗体の産生ａ．マウスＶＥＧＦ−Ｂに対する抗血清マウスＶＥＧＦ−Ｂに対する抗血清を、ラビットを、プロセッシングされたＶＥＧＦ−ＢのＮ−末端領域を有し、かぎ穴式吸着（ｋｅｙｈｏｌｅｌｉｍｐｅｔ）ヘモシアニンと結合させた１８−ｍｅｒオリゴペプチドで免疫化することによって産生させた。前記ペプチドがキャリアたん白質に結合できるようにするため、ＳＰＤＰ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を用いて、システイン残基をＮ−末端およびＣ−末端アミノ酸残基として導入した。前記オリゴペプチドの配列は、Ｃ−Ｐ−Ｖ−Ｓ−Ｑ−Ｆ−Ｄ−Ｇ−Ｐ−Ｓ−Ｈ−Ｑ− Ｋ−Ｋ−Ｖ−Ｖ−Ｐ−Ｃ（配列認識番号２１）であった。各ラビットには、ＣｏｍｐｌｅｔｅＦｒｅｕｎｄｓＡｄｊｖａｎｔ中で懸濁させたペプチド結合体の３００μｇの皮下注射を行った。ＩｎｃｏｍｐｌｅｔｅＦｒｅｕｎｄｓＡｄｊｕｖａｎｔ中で懸濁させた同量の抗原を用いて、皮下追加抗原刺激（ｂｏｏｓｔｅｒ）注射を与えた。第２回目の追加抗原刺激注射後に血清が得られた。ｂ．ヒトＶＥＧＦ−Ｂに対する抗血清ヒトＶＥＧＦ−Ｂに対する抗ペプチド抗血清を、ラビットを、下記のＮ−末端領域アミノ酸残基配列（配列認識番号２２）を有する派生（ｂｒａｎｃｈｅｄ）２３−ｍｅｒオリゴペプチドで免疫化することによって産生させた。Ｓ−Ｑ−Ｐ−Ｄ−Ａ−Ｐ−Ｇ−Ｈ−Ｑ−Ｒ−Ｋ−Ｖ−Ｖ−Ｓ−Ｗ−Ｉ−Ｄ−Ｖ− Ｙ−Ｔ−Ｒ−Ａ−Ｔ。前記派生２３−ｍｅｒオリゴペプチドは、タム（Ｔａｍ），“Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃｐｅｐｔｉｄｅｖａｃｃｉｎｅｄｅｓｉｇｎ：ｓｙｎｔｈｅｓｉｓａｎｄｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｏｆａｈｉｇｈ−ｄｅｎｓｉｔｙｍｕｌｔｉｐｌｅａｎｔｉｇｅｎｉｃｐｅｐｔｉｄｅｓｙｓｔｅｍ”，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，Ｖｏｌ．８５，ｐａｇｅｓ５４０９ −４１３（１９８８）に従って合成した。第１回目の免疫化に於いて、ラビットに、ＣｏｍｐｌｅｔｅＦｒｅｕｎｄｓＡｄｊｕｖａｎｔ中で懸濁された５００μｇの前記派生ペプチドを皮下注射した。引き続いての追加抗原刺激に於いては、ＩｎｃｏｍｐｌｅｔｅＦｒｅｕｎｄｓＡｄｊｕｖａｎｔ中で懸濁された２００μｇの前記抗原を注射した。第２回目と第３回目の追加抗原刺激の後、従来技術によって抗血清を採集した。例９：ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇の生化学的特徴、ホモダイマー化およびＶＥＧＦとのヘテロダイマー化ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇の生化学的特徴を、トランスフェクションされたヒト胚腎臓２９３ＥＢＮＡ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｉｎｃ．）中において調べた。ヒトＶＥＧＦ−Ｂ１６７とヒトＶＥＧＦ１６５とをコードするｃＤＮＡインサート［ケック（Ｋｅｃｋ）他，Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｖｏｌ．２４６，ｐａｇｅｓ１３０９−３１２（１９８９）参照］を、個々に、ｐＲＥＰ７発現ベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｉｎｃ．）にクローニングした。ヒト胚腎臓２９３ＥＢＮＡ細胞（エプスタイン・バーウィルス核抗原−１を発現する）を、燐酸カルシウム沈殿法を使用して、それぞれの発現プラスミドによるトランジェントなトランスフェクションによってトランスフェクションし、これらの細胞を、４８時間インキュベートした。コントロールとして、細胞を、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ｃＤＮＡを反対方向で含有する発現ベクターによってもトランスフェクションした。細胞の単層を、メチオニン非含有およびシステイン非含有培地中で、３０分間インキュベートし、その後、同じ培地中で、２時間、１００μＣｉ／ｍｌ［³⁵Ｓ］メチオニンおよび［³⁵Ｓ］システイン（Ｐｒｏｍｉｘ，ＡｍｅｒｓｈａｍＩｎｃ．）で標識化した。標識化培地を、血清を含まない通常の培地と置き換え、標識化されたたん白質を、６時間チェイスした。指示されている場合、チェイス中にはヘパリンが含まれていた（１００μｇ／ｍｌ）。前記チェイス時間後に、培地を採集し、細胞を１０ｍＭＴｒｉｓｐＨ７．５，５０ｍＭＮａＣｌ，０．５％デオキシコール酸ナトリウム，０．５％ＮｏｎｉｄｅｔＰ−４０，０．１％ＳＤＳおよび０．１Ｕ／ｍｌａｐｒｏｔｉｎｉｎ中で溶解した。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ＤＮＡを含有するプラスミドでトランスフェクションされた細胞中で発現された。ヘパリンで処理された、あるいは、処理されていない細胞からの培地上清のアリコットと、洗浄剤可溶化細胞溶解物を、例８に記載したようにして得たＶＥＧＦ−Ｂに対する特異的抗ペプチド抗血清で免疫沈降させ、特に指示されている場合を除き、還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析した。そのデータは、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ホモダイマーとＶＥＧＦ −Ｂ₁₆₇−ＶＥＧＦ₁₆₅ヘテロダイマーとがヘパリンによって細胞から放出されることを示している。ヘパリン処理（１−１００μｇ／ｍｌ）又は１．２ＭＮａＣｌによって、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇が細胞から放出され、上清中に見つかった。細胞がヘパリンによって処理されなかった場合には、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇は、細胞結合状態にとどまり、培養培地中には放出されなかった。同じ条件下で、ＶＥＧＦ₁₈₆ ホモダイマーは、細胞から分泌され、ヘパリン処理無しで培養上清中に見つかる。還元条件下に於いて、ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇は、２１ｋＤａの分子量（Ｍｒ）として移動する。非還元条件下での培養上清の分析は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇が、分子量４２ｋＤａ種として移動し、ダイマー構造を示すことを示した。これらの結果は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇が、恐らくは細胞外ヘパラン硫酸プロテオグリカンとのイオン性相互作用によって、細胞表面に結合したジスルフィド結合ダイマーを形成することを示唆している。細胞表面への結合は、ＶＥＧＦのより長いスプライスバリアントに於いて観察されるように、Ｃ−末端塩基性ドメインによって仲介される可能性がある。ＶＥＧＦがＰｌＧＦとヘテロダイマーを形成することが示されたので、ＶＥＧＦ₁₆₅も、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とヘテロダイマーを形成できるか否かをテストすることにした。この目的のために、２９３ＥＢＮＡ細胞を、ヒトＶＥＧＦ₁₆₅とヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇との両方をコードする発現ベクターで、コトランスフェクションしたところ、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇は、ＶＥＧＦ₁₆₅と組み合わされて発現された。代謝標識化したたん白質を、ヘパリンの存在下でチェイスし、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇又はＶＥＧＦ₁₆₅のいずれかに対する抗血清で免疫沈降法を行った。ヒトＶＥＧＦに対する抗血清は、Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓからのものであった。非還元条件下に於いて、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇・ＶＥＧＦ₁₆₅ヘテロダイマーは、分子量４２−４６ｋＤａ種として移動した。その結果は、ＶＥＧＦ− Ｂは、ＶＥＧＦとジスルフィド結合ヘテロダイマーを形成することが出来、これは、ヘパリンの不在下では細胞結合状態にとどまる、ということを示している。ＶＥＧＦ₁₆₅のホモダイマーは、培地中に効率的に分泌されるので、ＶＥＧＦ− Ｂが、前記ヘテロダイマーの分泌を決定するようである。ＶＥＧＦ−Ｂは、正常には、続いておこる輸送の為にソース細胞の小胞体中に於いて合成される。組換えＶＥＧＦ−Ｂは、ＶＥＧＦ−Ｂたん白質をコードするＤＮＡ配列を、適当な操作可能にリンクされたプロモーターと、コントロール配列とともに、周知のプラスミドｐＢＲ３２２やその誘導体のような適当なベクターに挿入し、Ｅ．ｃｏｌｉやＣｏｓ細胞等の適当な宿主細胞を、その結果得られる当該技術に於いて周知のベクター又は他のシステムによってトランスフォーメーション又はトランスフェクションし、その結果得られるトランスフォーマット又はトランスフェクタントをＶＥＧＦ−Ｂ発現についてスクリーニングし、次に、ＶＥＧＦ−Ｂの発現に関して陽性の細胞ライン又はバクテリア細胞ストックを培養することによって生産することができる。トランスフェクション又はトランスフォーメーションされるべき細胞のタイプに応じて、真核ベクター又は原核ベクターのいずれかがを使用される。組換えＶＥＧＦ−Ｂの生産のための特に好適なシステムは、組換えたん白質の産出量が極めて優れていることが証明されているバキュロウィルス−昆虫細胞システムである。例１０：バキュロウィルスシステムを使用したＶＥＧＦ−Ｂ発現１それ自身のシグナルペプチドを有するＶＥＧＦ−Ｂａ）クローニングとトランスフェクション完全ヒトＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇遺伝子を、市販されているプラスミドｐＣＲＩＩ（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＣｏｒｐ．）に挿入した。その結果得られるプラスミドｐＣＲII−ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇からのＨｉｎｄIII−ＸｂａＩフラグメントと３‘− ５’−接続部の両方をシークエンシングした。前記フラグメントはＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ の全オープンリーディングフレームをコードしており、次にｐＦＡＳＴＢＡＣｌにクローニングされた。Ｂａｃｍｉｄ−ＤＮＡを、“Ｂａｃ−Ｔｏ−Ｂａｃ（商標名）ＢａｃｕｌｏｖｉｒｕｓＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＳｙｓｔｅｍ”（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓＩｎｃ．）のための製造業者の指示に従って作成し、Ｓｆ９００ＩＩ−ａｄａｐｔｅｄＳｆ９細胞（Ｄｒ．ＣｈｒｉｓｔｉａｎＯｋｅｒ−Ｂｌｏｍから得た）にリポフェクションした。Ｓｆ９細胞は、ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｌｏｎＣｅｌｌＲｅｐｏｓｉｔｏｒｙＬｉｎｅＢａｎｋ，ＲｏｃｋｖｉｌｌｅＭＤ（ＡＴＣＣＣＲＬ−１７１１）からのものである。トランスフェクションされた細胞を、次に、２５ｃｍ²の培養皿中で標準ＴＭＮ−ＦＨ培地上で培養した。ｂ）たん白質発現のアッセイトランスフェクションの約７２時間後に、前記細胞を溶解し、１ｍｌの培養上清と細胞溶解物とを、例９に記載した免疫沈降法とウェスタンブロッティングとで、発現されたＶＥＧＦ−Ｂについてアッセイした。４つの個別にトランスフェクションされた細胞培養物の内の三つからの溶解物が、ウェスタンブロッティングでのシグナルの強度が異なるものの、ＶＥＧＦ−Ｂについて陽性であることが分かった。各ケースの発現されたＶＥＧＦ−Ｂポリペプチドは、例９の哺乳類細胞に於いて発現されたたん白質にサイズに於いて、対応していることが分かった。ウェスタンブロッティングに於いて最も強いシグナルを提示した細胞からのウィルスストックを、細胞を感染させて培地から新たなウィルスを収集することによって２ラウンド増幅した。その結果得られた上清を分析した。非感染細胞も、ネガティブコントロールとして分析した。経時分析は、感染後４８時間と７２時間の間に収集された細胞が、最も多量のＶＥＧＦ−Ｂを含有していることを示した。感染の９６時間後、ウィルスによって誘発された細胞溶解の結果として、ＶＥＧＦ−Ｂは、免疫沈降法とウェスタンブロッティングとによって培養上清中でも検出することができた。組換えＶＥＧＦ−Ｂは、２０％と４０％の間（ＮＨ₄）₂ＳＯ₄によって溶解物から沈殿させることができた。１０．２メリチンシグナルペプチドを有するＶＥＧＦ−Ｂ（ｐＶＴＢａｃ）ａ）クローニングおよびトランスフェクションヌクレオチド位置６８−１４１からのボリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）フラグメントを使用して、例１０．１のプラスミドｐＣＲII−ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇中のシグナル切断部位の直後にＢａｍＨＩ制限部位を導入した。この修飾ｐＣＲII−ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇コンストラクトからのＢａｍＨＩフラグメントを、ＢａｍＨＩ開裂ｐＶＴＢａｃにクローニングした［テッシール（Ｔｅｓｓｉｅｒ）他，“Ｅｎｈａｎｃｅｄｓｅｃｒｅｔｉｏｎｆｒｏｍｉｎｓｅｃｔｃｅｌｌｓｏｆａｆｏｒｅｉｇｎｐｒｏｔｅｉｎｆｕｓｅｄｔｏｔｈｅｈｏｎｅｙｂｅｅｍｅｌｌｉｔｉｎｓｉｇｎａｌｐｅｐｔｉｄｅ”，Ｇｅｎｅ，Ｖｏｌ．９８，ｐａｇｅ１７７（１９９１）］。３‘−と５’−接続部の両方を、シークエンシングした。Ｓｆ９細胞を、ヒトＶＧＥＦ−Ｂ₁₆₇遺伝子を含む前述したｐＶＴＢａｃベクターと、線状化したバキュロウィルスＤＮＡ（Ｉｎｓｅｃｔｉｎ（商標名），ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎＣｏｒｐ．）とでコトランスフェクションした。これらトランスフェクション細胞を、次に、ＴＭＮ−ＦＨ培地中で培養した。ｂ）たん白質発現のアッセイトランスフェクションの４８時間後、上清を採集し、これを、免疫沈降法によって一次スクリーニングした。４つの陽性のプラークが単離された。１０．３マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆をコードするｃＤＮＡインサート（マウスＶＥＧＦ− Ｂ₁₈₆ｃＤＮＡ（配列認識番号１２）クローン由来のＥｃｏＲＩ切断ｃＤＮＡフラグメント）を、ｐＦＡＳＴＢＡＣｌにクローニングした。マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ （配列認識番号４）由来のＥｃｏＲＩ切断ｃＤＮＡフラグメントもｐＦＡＳＴＢＡＣｌにクローニングした。その結果得られたプラスミドを、前述の１０．１に記載されたようにしてバクテリアにトランスフォーメーションし、組換えプラスミドを単離し、Ｓｆ９およびＳｆ２１細胞にルポフェックションした。組換えバキュロウィルスを含む上清を、Ｓｆ２１細胞に複数ラウンド再感染させることによって増幅した。前記バキュロウィルスストックの最終タイターを、プラーク滴定によって測定したところ、１ミリリットルのストック上清に対して、４ｘ１０⁸ないし２ｘ１０⁹の範囲のバキュロウイルス粒子が見出された。例１１：組換えＶＥＧＦ−Ｂの大量生産Ｓｆ２１細胞［ヴォーン（Ｖａｕｇｈｎ）他，ＩｎＶｉｔｒｏ，１３：２１３−１７（１９７７）参照］に、１細胞当たり１０のウィルス粒子の複数の感染によって、例１０のバキュロウィルスストックを感染させた。これらの感染Ｓｆ２１細胞を、無血清培地（Ｓｆ９００ＩＩ，Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ）１ｍｌ当たり２ｘ１０⁶の細胞の密度で接種し、９６時間ローラーフラスコ内で増殖させた。次に、培養培地と細胞とを回収した。細胞溶解物と培地とのアリコットを、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析した。全たん白質パターンを、ゲルをＣｏｏｍａｓｓｉｅＢｒｉｌｌｉａｎｔＢｌｕｅで染色することによって可視化し、発現されたＶＥＧＦ−Ｂアイソフォームの存在を、例８に記載したように、ヒトおよびマウスＶＥＧＦ−Ｂに対する特異的抗ペプチド抗体を使用したイムノブロソティングによって可視化した。分析に依れば、ヒトとマウスとの両方のＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ポリペプチドは２１．５ｋＤａの予想されたサイズであった。両方のたん白質は前記感染細胞中で細胞内に保持され、培地中には放出されていなかった。これに対して、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆は、ダイマー形態として培地中に容易に分泌された。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーは、５２−５４ｋＤａ種として移動し、これは、昆虫細胞産生たん白質が、トランスフェクションＣｏｓ −１細胞から分泌されたＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆にみられるものと同じ共有結合修飾を受けなかったことを示唆した。例１２：ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆を発現するＣｏｓ−１細胞のトランスフェクションと分析マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とヒトＶＥＧＦ₁₆₅をコードするｃＤＮＡインサートを、ｐＳＧ５発現ベクター［グリーン（Ｇｒｅｅｎ）他，ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄＲｅｓ．，１６：３６９（１９８８）］にクローニングした。Ｃｏｓ−１細胞を、１０％胎児ウシ血清、２ｍＭグルタミン、および適当な抗生物質を含む最小必須培地（ＭＥＭ）中に維持した。トランスフェクションのために、前記細胞を、９０ｍｍペトリ皿に再びプレーティングした。燐酸カルシウム沈殿法を使用して、別々又は組み合わせて、前記発現ベクターでこれらの細胞をトランスフェクションさせ、３６−４８時間インキュベートした。細胞の単層を、メチオニンとシステインとを含まない培地中で、３０分間インキュベートし、次に、１００ μＣｉ／ｍｌの［³⁵Ｓ］−メチオニンおよび［³⁵Ｓ］−システインを含む同じ培地中で２時間インキュベートした（ＰｒｏｍｉｘＡｍｅｒｓｈａｍＩｎｃ. ）。パルスチェイス実験のために、前記細胞を、３０分間標識化し、通常の培地で２回洗浄し、次に、胎児ウシ血清を含まないＭＥＭ培地中で６時間までインキュベートした。チェイス時間後に培地を回収し、細胞を、５０ｍＭＮａＣｌ，０．５％デオキシコール酸塩、０．５％ｎｏｎｉｄｅｔＰ−４０および０．１％ＳＤＳを含有する１０ｍＭＴｒｉｓ緩衝液ｐＨ７．５中で可溶化した。培地と細胞溶解物のアリコットに対して、例８ａからのマウスＶＥＧＦ−Ｂに対する特異的抗血清と、Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓから市販されているヒトＶＥＧＦ特異的抗血清とを使用した免疫沈降法を行った。沈降物を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析した。例１３：トランスフェクションＣｏｓ−１細胞に発現されたＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ の生化学的特性マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の生化学的特性を、適当な発現ベクターで例１２に記載したようにトランジェントにトランスフェクションしたＣｏｓ−１細胞で調べた。これら細胞を、代謝標識化し、これらの標識化細胞からのたん白質を、ＶＥＧＦ−Ｂに対する抗ペプチド抗体を使用して免疫沈降させた。沈降物を、還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析した。細胞培養培地（Ｍ）と洗浄剤可溶化細胞溶解物（Ｌ）との両方を、分析した。その結果を図２２に示す。細胞結合型ＶＥＧＦ −Ｂ₁₈₆が、還元条件下で分子量約２４，０００のポリペプチドとして移動したことが判る。これに対して、トランスフェクション細胞の培地中に存在するＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆は、分子量３２，０００種として移動し、これは、たん白質が、その細胞内輸送および分泌中に於いて共有結合的に修飾されたことを示唆している。対応する分子は、コントロールとして使用した擬似（ｍｏｃｋ）トランスフェクションＣｏｓ−１細胞からの細胞溶解物や培地には検出されなかった。非還元条件下での培地の免疫沈降法とＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析は、分子量約６０，０００種を示し、これは、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆がジスルフィド結合ホモダイマーを形成したことを示唆した。標識化中に１００ｕｇ／ｍｌのヘパリンを含有させても、トランスフェクション細胞からのＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーの分泌又は放出には影響がなかった。例１４：ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーの生合成ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーの生合成を、パルスチェイス実験によって調べた。トランスフェクションＣｏｓ−１細胞を、３０分間代謝標識化し、次に、４時間までチェイスした。洗浄剤可溶化細胞溶解物と培地との免疫沈降法とＳＤＳ −ＰＡＧＥ分析とは、細胞結合型の分子量約２４，０００種がチェイス時間全体を通じて溶解物中に容易に検出されることを示した。この分子種の強度の減少は、培地中に存在する分子量３２，０００たん白質の増加と関連していた。分子量３２，０００種は、１時間のチェイス後に培地中に現れた。４時間のチェイス時間後に、最高レベルの分泌ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆が得られた。細胞溶解物中には、中間体は検出されなかったが、分泌された分子量３２，０００たん白質は、わずかに不均一であるようであった。前記修飾の性質は現在まだ未知であるが、Ｎ−結合グリコシル化は、この修飾のためのコンセンサス部位が不在であるため除外することができる。例１５：ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆によるヘテロダイマーの形成上述したように、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦとは、多くの組織に於いて同時発現され、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇・ＶＥＧＦ₁₆₅ヘテロダイマーは、トランスフェクション細胞内で同時発現された時に容易に形成される。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆もＶＥＧＦ₁₆₅ とヘテロダイマーを形成することができるか否かを調べるために、Ｃｏｓ−１細胞を、適当な発現ベクターとを用いて、単独又は組み合わせて、上述したようにして、トランスフェクションした。これらトランスフェクション細胞からの培地中に存在する代謝標識化たん白質について、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦとに対する抗血清を使用した免疫沈降法を行った。図２３Ａは、それぞれＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ とＶＥＧＦとを別々に発現するトランジェントにトランスフェクションされたＣｏｓ−１細胞の細胞培養培地からの免疫沈降物の還元条件下に於けるＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の結果を示している。前記抗血清が、検出可能な交叉反応性無く、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦとに対してそれぞれ特異的であることが判る。Ｃｏｓ−１細胞を、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とＶＥＧＦ₁₆₅のための発現ベクターでコトランスフェクションした。その結果得られたＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とＶＥＧＦ₁₆₅とを同時発現する細胞からの細胞培養培地（Ｍ）と洗浄剤可溶化溶解物（Ｌ）とについて、還元条件下で免疫沈降法とＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析とを行った。その結果を図２３Ｂに示す。このテストは、マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とヒトＶＥＧＦ₁₆₅が細胞内及び分泌型ヘテロダイマーを形成することを示した。マウスＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とヒトＶＥＧＦ₁₆₅を別々に又は組み合わせて、発現する細胞からの培養培地に対して、ＶＥＧＦ−ＢとＶＥＧＦに対する抗体を使用した免疫沈降法と、非還元条件下でのＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析とを行った。コントロールとして、模擬トランスフェクション細胞からの細胞培養培地を、分析した。その結果を図２３Ｃに示す。ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆が、分泌ジスルフィド結合ホモダイマーを形成し、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とＶＥＧＦ₁₆₅とが、分泌ジルスフィド結合ヘテロダイマーを形成することが分かった。ＶＥＧＦとのヘテロダイマー形成がＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の分泌と放出とに影響を与えたか否かを調べるために、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とＶＥＧＦ₁₆₅との発現ベクターでトランジェントにトランスフェクションされたＣｏｓ−１細胞を使用して、パルスチェイス実験を行った。３０分間の標識化時間後、細胞結合型ジスルフィド結合ヘテロダイマーを回収することができ、分泌されたヘテロダイマーが、３０分間のチェイス時間後に既に培地から回収された。分泌されたヘテロダイマーは、標識化後の２時間までの間に培地中に蓄積した。４時間のチェイス時点で、恐らくは複合体の分解に依る、培地中のヘテロダイマーの量の減少があった。いくらかのＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆・ＶＥＧＦヘテロダイマーが、チェイス時間を通じて細胞結合状態のままであった。これらの結果は、ＶＥＧＦとのヘテロダイマー形成が、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーの分泌と比較して、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の分泌を促進するものであることを示唆した。更に、３０分間の標識化時間後に於いて既にヘテロダイマーが存在していたことは、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーのゆっくりとした放出が、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆がダイマー化する能力の欠陥に依るものではないことを示唆した。例１６：分泌されたＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーの精製分泌されたＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーを、次のようにして、バキュロウィルス感染Ｓｆ２１細胞の無血清培養培地から単離した。ａ．最初の分離培養培地中の主要なコンタミナントたん白質は、バキュロウィルス感染細胞によって分泌される酸性たん白質である、バキュロウィルスたん白質ｇｐ６４／６７である。このたん白質を除去するために、培養培地を、限外濾過で２０倍に濃縮し、次に、２０ｍＭのＮａＣＬを含有する２０ｍＭの燐酸緩衝液ｐＨ６．５中で平衡化させたＳｅｐｈａｄｅｘＧ−２５カラムを通過させた。次に、溶出したたん白質を、同じ緩衝液中で平衡化させたＣＭ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）イオン交換カラムを通過させた。このカラムを、未結合のたん白質を除去するために、燐酸緩衝液で洗浄し、結合したたん白質を、溶出緩衝液のＮａＣｌ濃度を段階的に増加させることによって溶出させた。主要なｇｐ６４／６７バキュロウィルスコードたん白質は、それらの条件下に於いて前記イオン交換カラムに結合しなかったのに対して、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーは、９０ｍＭのＮａＣｌ濃度で溶出した。溶出フラクションのＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析によって判断すると、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーは、この手順によって５−１５％の純度になっていた。ｂ．均質状態への精製前記ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆ホモダイマーを、ＦＬＰＣシステム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）に結合させたＭｏｎｏＳカラムで均質状態にまで精製した。結合したたん白質を、２０ｍＭの燐酸緩衝液ｐＨ６．５中でのＮａＣｌのリニアグラジェントで溶出した。例１７：前記二つのＶＥＧＦ−Ｂスプライスアイソフォームが、異なった組織分布を示すか否かと、さらに別のアイソフォームが存在するか否かとを調べるために、マウスの脳、心臓、肝臓および腎臓、そしてヒトの胚心臓と骨格筋とから抽出された全ＲＮＡを使用して、ＲＴ−ＰＣＲ分析を行った。その転写産物を、マウスとヒトＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子のエキソン４ないし７と、エキソン３ないし７とをそれぞれカバーする４対の特異的プライマーを使用したＰＣＲによって分析した。手順マウスおよびヒト組織からの全ＲＮＡを、チャーグウィン（Ｃｈｉｒｇｗｉｎ）他，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１８：５２９４−９９（１９７９）によって開示されている標準式手順を使用して、単離した。反応当たり２ないし５μｇの全ＲＮＡを、トリｍｙｅｌｏｓｔｏｓｉｓウィルス逆転写酵素（２０Ｕ／反応）を使用したファーストストランドｃＤＮＡ合成用に使用した。反応は、オリゴー（ｄＴ）₁₈を用いて始めた。これらの反応のアリコットを、ＴａｑＤＮＡポリメラーゼ（２．５Ｕ／反応）を使用したＰＣＲ反応におけるテンプレートとして使用した。マウスｃＤＮＡを増幅するために、二対のプライマーを使用した。これらの対は、エキソン４に位置する共通の５‘−プライマー、５‘−ＣＡＣＡＧＣＣＡＡＴＧＴＧＡＡＴＧＣＡ（正方向）（配列認識番号２３）を、それぞれエキソン６Ｂと７とに位置する二つの異なった３’−プライマー、５‘−ＧＣＴＣＴＡＡＧＣＣＣＣＧＣＣＣＴＴＧＧＣＡＡＴＧＧＡＧＧＡＡ（逆方向）（配列認識番号２４）、５’−ＡＣＧＴＡＧＡＴＣＴＴＣＡＣＴＴＴＣＧＣＧＧＣＴＴＣＣＧ（逆方向）（配列認識番号２５）（この最後のプライマーは、ＢｇｌＩＩ部位と、５‘末端に４つの追加の塩基を有する）とを組み合わせることによって得た。アガロースゲル電気泳動による分析後、増幅されたバンドを、ナイロンフィルター（ＧｅｎｅｓｃｒｅｅｎＰｌｕｓ）にトランスファーし、続いてエキソン６Ａと６Ｂとに対して特異的なオリゴヌクレオチドプローブでハイブリダイゼーションした。前記オリゴヌクレオチドプローブは、５’−ＣＴＣＴＧＴＴＣＣＧＧＧＣＴＧＧＧＡＣＴＣＴＡ（エキソン６Ａ）（配列認識番号２６）と、５‘−ＴＣＡＧＧＧＣＧＴＴＧＡＣＧＧＣＧＣＴＧＧＧＴＧＣＡＡ（エキソン６Ｂ）（配列認識番号２７）とであった。このオリゴヌクレオチドプローブを、高特異性活性となるようなターミナルトランスフェラーゼを使用して［³²Ｐ］ｄＣＴＰで標識化した。毎ｍｌの溶液当たり１ｘ１０⁶ ｃｐｍの標識化プローブを使用して、５ｘデンハルト溶液と、０．５％ＳＤＳと、１００μｇ／ｍｌの鮭精子ＤＮＡとを含有する、６ｘＳＳＣ中で、３７℃でハイブリダイゼーションを行った。フィルターを、２ｘ１５分間、０．５％ＳＤＳを含有する６ｘＳＳＣ中で、同じ温度で洗浄し、フィルムに露出した。ヒトｃＤＮＡの増幅に使用する二対のプライマーは、二つの異なった５‘−プライマー、すなわち、エキソン３に位置する５’−ＣＣＴＧＡＣＧＡＴＧＧＣＣＴＧＧＡＧＴＧＴ（正方向）（配列認識番号２８）と、エキソン４に位置する５‘−ＴＧＴＣＣＣＴＧＧＡＡＧＡＡＣＡＣＡＧＣＣ（正方向）（配列認識番号２９）とを用いてエキソン７に位置する、共通の３’−プライマー、５‘−ＧＣＣＡＴＧＴＧＴＣＡＣＣＴＴＣＧＣＡＧ（逆方向）（配列認識番号１９）と組み合わせたものである。増幅産生物のアリコットを、アガロースゲル電気泳動によって分析した。前記アリコットを、ＴＡ−クローニングベクターｐＣＲＩＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｉｎｃ．）中に直接にクローニングし、生成されたプラスミドを、ヌクレオチドシークエンシングによって分析した。ＧＡＰＤＨの増幅はコントロールとして用いた。結果増幅されたＰＣＲ産生物のアガロースゲル電気泳動に依る分析は、それぞれ２１５と３１６ｂｐの二つの主要なバンドを示した。これらのサイズは、ＶＥＧＦ −Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とに対応する二つのｍＲＮＡと一致する。これら二つのバンドは、同じ強度であり、これは、前記二つのアイソフォームが、調べたすべてのマウスおよびヒト組織中に於いて大体同じレベルで発現されたことを示唆するものであった。マウス組織からの増幅産生物の正体を確かめるために、ＰＣＲ−増幅ＤＮＡを、フィルターにトランスファーし、それぞれエキソン６Ａと６Ｂとに対する特異的オリゴヌクレオチドプローブでプローブした。オートラジオグラムは、エキソン６−特異的プローブは前記３１６ｂｐバンドとハイブリダイズするのに対して、エキソン６Ｂ特異的プローブは前記２１５ｂｐと３１６ｂｐとの両方の増幅バンドとハイブリダイズすることを示した。これらの結果は、二つのＶＥＧＦ−Ｂのアイソフォームを作り出すためのエキソン６における受容部位の選択的利用と一致するものであり、従って、すべての増幅産物がＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ −Ｂ₁₈₆アイソフォームの配列から予想されたものと一致した。ヒト胚心臓および筋から単離された全ＲＮＡのＰＣＲ分析の産生物のアガロースゲル電気泳動によって３２９ｂｐと４３０ｂｐの二つの主要な増幅バンドが可視化された。総合すると、これらのデータは、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇とＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆とが組織に於ける二つの主要なＶＥＧＦ−Ｂのアイソフォームであることを示している。ＰＣＲの産生物のパターンと、プライマーの位置とは、もしもＶＥＧＦ−Ｂのより長いスプライスアイソフォームが存在するとすれば、そのような転写産物は、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₈₆の場合よりも、わずかに５‘側に位置するスプライス受容部位を使用するものであることを示している。更に、ヘパリン結合ドメイン、すなわち、ＶＥＧＦ−Ｂのエキソン６に対応する配列を欠如した、ＶＥＧＦ₁₂₁に対応するＰＣＲ産物は、検出されなかった。しかしながら、エキソン５をエキソン７にスプライシングすることによって、ＶＥＧＦ₁₂₁に対応するＶＥＧＦ−Ｂのアイソフォームをコードする転写産物が作り出されるかもしれず、このＶＥＧＦ−Ｂの推定アイソフォームは、この例に於いて分析されたもの以外の組織に於いて発現されるかもしれない。例１８：細胞増殖の刺激ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇が内皮細胞増殖を刺激する能力を、ヒト臍帯血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）と、ウシ毛細血管内皮（ＢＣＥ）細胞への［³Ｈ］チミジン導入の分析を通じて確認した。２９３ＥＢＮＡ細胞に、１μｇ／ｍｌヘパリンの存在下で、ＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇ 、ＶＥＧＦ₁₆₅にのための発現ベクター、又はエンプティベクター（模擬）を上述した要領でトランスフェクションした。これらの細胞から調整された培地を、それぞれの培地中で希釈し、ヒト臍帯血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）と、ウシ毛細血管内皮（ＢＣＥ）細胞とに投与し、［³Ｈ］チミジンの取り込みを測定した。ポジティブコントロールとして、組換えｂＦＧＦを、ＢＣＥ細胞に添加した。詳述すると、ヒトＶＥＧＦ−ＢとヒトＶＥＧＦ₁₆₅とを含有する調整された培地を、ヘパリン（１μｇ／ｍｌ）の存在下で、適当な発現ベクター又は、エンプティーベクター（模擬）でトランスフェクションされた２９３ＥＢＮＡ細胞から、トランスフェクションの４８時間後に収集した。第２パッセージ（ｓｅｃｏｎｎｄｐａｓｓａｇｅ）ＨＵＶＥＣを、１０％ウシ胎児血清を添加したＭ−１９９培地中で、９６−ウェルプレート（４ｘ１０³細胞／ウェル）にプレーティングし、２４時間インキュベートした。調整された培地を、増殖培地によって希釈し、細胞を４８時間刺激した。１０μＣｉ／ｍｌの［³Ｈ］チミジン（ＡｍｅｒｓｈａｍＩｎｃ．）を含有する新たな調整された培地を前記細胞に添加し、刺激を更に４８時間継続した。細胞を、ＰＢＳで洗浄し、トリプシン処理し、取り込まれた放射能を、液体シンチレーション計数によって測定した。ＢＣＥ細胞を、２４−ウェルプレートに接種し、１０％胎児ウシ血清を添加した最小必須培地（ＭＥＭ）中で集密するまで増殖させた。細胞を、３％の胎児ウシ血清を添加したＭＥＭ中で７２時間飢餓させ、その後、無血清培地に希釈した調整された培地を、前記細胞に添加し、これらの細胞を２４時間刺激した。［³Ｈ］チミジンは、刺激期間の最後の４時間にわたって含ませた（１μＣｉ／ｍｌ）。ｂＦＧＦによる刺激を、６ｎｇ／ｍｌの組換えｂＦＧＦ（ＳｙｎｅｒｇｅｎＩｎｃ．）を使用して、上述したように行った。細胞を、ＰＢＳで洗浄し、ＮａＯＨで溶解し、取り込まれた放射能を、液体シンチレーション計数によって測定した。図２０は、前記模擬トランスフェクション細胞から調整された培地によって誘発された基礎活性との比較に於ける、ヒト臍帯血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）と、ウシ毛細血管内皮（ＢＣＥ）細胞におけるＶＥＧＦ−Ｂ₁₆₇に依る［³Ｈ］チミジン取り込みの誘発の倍率を示す棒グラフである。比較の目的のために、ＶＥＧＦ₁₆₅ とｂＦＧＦとに依る誘発も示されている。棒は並列したサンプルの平均±標準偏差を示している。いくつかの他の独立した実験に於いても類似の結果が得られた。これらのテスト結果は、ＶＥＧＦ−ＢがＨＵＶＥＣとＢＣＥとの両方の細胞に於いて［³Ｈ］チミジン取り込み明らかにを誘発し、イン・ヴィトロでの内皮細胞の増殖を刺激したことを示しており、これによって、ＶＥＧＦ−Ｂが内皮増殖因子であることが示される。例１９：ヒトＶＥＧＦ−ＢプロモーターＤＮＡクローンと活性の同定バクテリオファージλＥＭＢＬ中のヒトゲノムＤＮＡライブラリーを、ＶＥＧＦ−Ｂ第１および第２エキソンからの配列を含む５‘ＰＣＲフラグメントをプローブとして使用して、スクリーニングした。二つの陽性クローンが得られ、これらの内の一つを、ＳａｃＩフラグメントとしてＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＳＫＩＩプラスミドにサブクローニングした。１．４ｋｂのフラグメントが得られ、これは、ｃＤＮＡ中に存在するＮｃｏＩ部位（ＡＴＧ翻訳開始部位の１００ｂｐ以内の上流側に位置する）から上流側に約０．４ｋｂの配列を含んでいた。更に、他方のλクローンからの約６ｋｂのＸｈｏＩフラグメントを、ｐＧＥＭＥＸプラスミドにサブクローニングした。このサブクローンは、ＮｃｏＩ部位から上流側に約１．５ｋｂの配列を有していた。ＳａｃＩ／ＮｃｏＩフラグメントとＥｃｏＲＩ（ポリリンカー）−ＮｃｏＩフラグメントを、それぞれの転写方向で、ｐＧＬ３ｂａｓｉｃベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）にサブクローニングした。これらのサブクローンのＤＮＡと、ＳＶ４０プロモーターを有するｐＧＬ３コントロールベクターからのＤＮＡを、燐酸カルシウム沈殿法を使用して、ＨｅＬａ細胞にトランスフェクションした。トランスフェクションの２日後、トランスフェクション細胞の溶解物から、ルシフェラーゼ活性を測定した。その結果は、４００ｐｂＳａｃＩ／ＮｃｏＩフラグメントがｐＧＬ３コントロールベクターの活性の約３０％に等しいプロモーター活性を有しているのに対して、１．５ｋｂフラグメントはバックグランド活性を与えるに過ぎないことを示した。より強い、あるいはより活性度の高いプロモーター、たとえば、ＣＭＶプロモーターや延長因子１−アルファプロモーター、を使用すれば、恐らく、ヒトの細胞および組織に於いてより高い活性が得られるであろう。クローニングされたフラグメントの構造を図２４に示す。前記ＮｃｏＩ部位の上流側の１．５ｋｂフラグメントをシークエンシングした。その結果得られた配列（配列認識番号１７）を図２５に示す。得られた配列は、ヌクレオチド１６６−１８７間の２つの８−塩基対部分（図中箱内）から成る推定サイレンサーエレメント［ワイスマン（Ｗｅｉｓｓｍａｎ）およびシンガー（Ｓｉｎｇｅｒ），ＭｏｌｅｃｕｌａｒａｎｄＣｅｌｌｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，１１：４２２８−２３４（１９９１）］を明らかにした。このサイレンサーが、１．５ｋｂフラグメントの活性の相対的欠如の原因であるのかもしれない。例２０：ＲＴ−ＰＣＲに依る、メラノーマ、正常皮膚および筋肉中のＶＥＧＦ −ＢｍＲＮＡの分析正常な皮膚とメラノーマ組織とを、ｔｈｅＤｅｐａｒｔｍｅｎｔｏｆＲａｄｉｏｔｈｅｒａｐｙａｎｄＯｎｃｏｌｏｇｙ，ＨｅｌｓｉｎｋｉＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙＣｅｎｔｒａｌＨｏｓｐｉｔａｌにかかっている患者から得た。４つの転移性メラノーマ標本を、外科切除後に新規な状態で得て、すぐに、Ｔｉｓｓｕｅ−ｔｅｋ（Ｍｉｌｅｓ）中に埋め込み、液体窒素中で凍結した。正常皮膚のサンプルは、乳がんの外科手術および皮膚斑点の摘出を受けているボランティア患者から得た。すべての標本は、その診断を確認するために病理学者によって検査された。全ＲＮＡを、グアニジウム・イソチオアネート法［チョムジンスキー（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ）他，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１６２：１５６−１５９（１９８７）］によって単離した。ｃＤＮＡを、０．２μｇのランダム・ヘキサデオキシヌクレオチド・プライマーと、５ユニットのマウス逆転写酵素と、テンプレートとしての５μｇの全ＲＮＡと、ファーストストランドｃＤＮＡ合成キット（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を使用して合成した。３７℃での１時間のインキュベーション後、その反応混合物を、−７０℃で保存した。ＰＣＲ増幅のためのネガティブコントロールサンプルを、類似の方法で作成したが、但しここでは逆転写酵素は添加しなかった。β−アクチンも、それが構成的に高レベルで発現され、その発現は、様々な細胞に於いて大きな違いを示さないので、内部標準としてテストした。ＰＣＲ増幅のために、次に示すようにプライマー配列を、ＶＥＧＦ−Ｂおよび β−アクチン遺伝子から選択した。ＶＥＧＦ−Ｂセンス：５‘−ＧＣＣＡＴＧＴＧＴＣＡＣＣＴＴＣＧＣＡＧ−３’ （配列認識番号１９）、ＶＥＧＦ−Ｂアンチセンス：５‘−ＴＧＴＣＣＣＴＧＧＡＡＧＡＡＣＡＣＡＧＣＣ−３’（配列認識番号２９）、 β−アクチンセンス：５‘−ＣＧＧＧＡＡＡＴＣＧＴＧＣＧＴＧＡＣＡＴ−３ ’（配列認識番号３０）、 β−アクチンアンチセンス：５‘−ＧＧＡＧＴＴＧＡＡＧＧＴＡＧＴＴＴＣＧＴＧ−３’（配列認識番号３１）［β−アクチン配列は、ウング（Ｎｇ）他，Ｍｏｌ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．５：２７２０−７３２（１９８５）からのヌクレオチド２１０５−２１２５と２４１１−２４３２からなる］。前記ｃＤＮＡ反応産物からの４μｌのアリコットを、５分間、９４℃で加熱し、ＰＣＲＩ増幅のためのテンプレートとして使用した。ＰＣＲは、２０ｐｍｏｌのプライマーと、１０ｘＰＣＲ緩衝液と、１μｌの２０ｍＭｄＮＴＰと、２．５ＵのＴａｑポリメラーゼと用いて行った。最終容積を、ＤＥＰＣ処理水によって、１００μｌに調節した。９５℃で１分間の変性と、６２℃で４５秒間のアニーリングと、７２℃で５０秒間のポリマー化とを、ＶＥＧＦ−Ｂに対しては合計３５サイクル、そしてβ−アクチンに対しては合計２５サイクル行った。各５サイクル後に、１５μｌのアリコットを分析のために採取した。５μｌの前記ＰＣＲ反応混合物の電気泳動を、エチジウムブロマイドを含む２％アガロースゲル中で行った。サイズマーカーＤＮＡフラグメントの長さは、２４から７２６塩基対の範囲であった（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｍａｄｉｓｏｎ,ＷＩ,ＵＳＡからの ΦＸ１７４ＤＮＡ／ＨｉｎｆＩマーカー）。従って、テストされたサンプルは、４つの転移性メラノーマ、筋肉、正常皮膚、ネガティブコントロール（逆転写酵素無し）そして前記ΦＸ１７４ＤＮＡ／ＨｉｎｆＩサイズ・マーカー、を含んでいた。ＶＥＧＦ−Ｂ（ＰＣＲ産物の長さ：３２３および２３４ｂｐ）と、β−アクチンとに対するＲＴ−ＰＣＲ分析の結果は、ＶＥＧＦ− Ｂが、調べられたすべてのメラノーマに於いて、筋肉組織に於ける発現とほぼ同様のレベルで、高レベルで発現されることを示している。他方、正常皮膚は、非常にわずかなＶＥＧＦ−ＢＲＮＡしか有していない。ノザン・ブロッティングおよびハイブリダイゼーション分析からも類似の結論を導くことができる。上記結果は、ＶＥＧＦ−Ｂが、血管新生、特に筋肉の血管新生に於いて役割を有する、内皮細胞に対する新規な増殖因子であることを示している。虚血心臓又は四肢の側枝動脈増殖は、タケシタ（Ｔａｋｅｓｈｉｔａ）他，Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，１４７：１６４９−６０（１９９５）に記載された技術を利用してＶＥＧＦ−Ｂ巨丸剤（ｂｏｌｕｓ）を動脈投与することによって促進させることができる。ＶＥＧＦ−Ｂの細胞結合は、血管新生と内皮細胞増殖の調節にいくつかの関係を持っているかもしれない。発育中の胚と、収縮性組織とに於いて、細胞結合型ＶＥＧＦ−Ｂは、血管樹枝状組織の確立と維持との間に於ける過剰増殖内皮細胞に対する空間的指示（ｓｐａｔｉａｌｃｕｅｓ）を提供するのかもしれない。それは、又、その細胞結合を通じて、成人血管に於ける損傷を受けた内皮の再生を支持することができるかもしれない。動脈損傷の再内皮化は、アサハラ（Ａｓａｈａｒａ）他，Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，９１（１１）：２７９３− ８０２（１９９５）によって記載された技術を使用してＶＥＧＦ−Ｂを直接的に適用することによって促進させることができるであろう。ＶＥＧＦ−Ｂが、ヘテロダイマーの形成によってＶＥＧＦの分泌を調整することができる能力は、ＶＥＧＦシグナリングに於いてＶＥＧＦ−Ｂが間接的な役割を果たし、これによって、ポトジェンス（Ｐｏｔｇｅｎｓ）他，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６９（５２）：３２８７９−８５（１９９４）に記載されているように、レセプター結合および／又は活性化を調節すること、を示唆している。これらの増殖因子の複数のヘテロダイマー複合体の形成は、内皮細胞のための多様な調節シグナルのための基礎を提供することができるかもしれない。ＶＥＧＦ−Ｂは、イン・ヴィトロで、内皮細胞の集団に対する増殖因子として使用可能である。ＶＥＧＦ−Ｂは、望ましい血管新生、すなわち、新たな血管および毛細血管の形成を促進するために使用可能である。タケシタ（Ｔａｋｅｓｈｉｔａ）他，前述、参照。たとえば、妊娠を開始および／又は維持するための補助剤として、黄体や、子宮内膜の発達を促進するのに有用であろう。又、その内皮細胞に対する作用に依り、骨の修復にも有用であろう。ＶＥＧＦ−Ｂの投与は、又、胚形成、更に、体の成長と血管の発達と分化とを支持するのにも有用であろう。傷に対してＶＥＧＦ−Ｂを局所的に適用することは、傷の治癒を促進するのに有用であろうし、ＶＥＧＦ−Ｂを経口投与することは、胃および／又は十二指腸潰瘍の治癒を促進するのに有用であろう。ＶＥＧＦ−Ｂの、ヘテロダイマーの形成によってＶＥＧＦの分泌を調節する能力は、ＶＥＧＦアゴニストが有用であるような疾病に於いて、ＶＥＧＦ−Ｂの治療的な役割を提供する可能性がある。前述のポトジェンス（Ｐｏｔｇｅｎｓ）他，参照。ＶＥＧＦ−Ｂは、中胚葉細胞に対して、直接的、又は、血液供給に於ける改善を通じて、増殖効果を提供することができる。ＶＥＧＦ−Ｂは、メラノーマ等の腫瘍に於いて過剰に発現されることが判っている。従って、ＶＥＧＦ−Ｂの発現のアッセイは、腫瘍の診断に於ける手段として使用することができ、たとえば、モノクローナル抗体を使用した、ＶＥＧＦ− Ｂ発現の抑制は、腫瘍の成長を遅延させるために有用であろう。ＶＥＧＦ−Ｂの腫瘍アッセイは、転移リスクのインジケーターとして有用であろう。たとえば、新血管新生と増殖とを定量化するための、タカハシ（Ｔａｋａｈａｓｈｉ）他，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．，５５：３９６４−６８（１９９５）によって記載されている手順に類似するＶＥＧＦ−Ｂ抗体の使用は、大腸癌からの転移リスクのインジケータとして使用できるであろう。組織化学による体液又は腫瘍自体におけるＶＥＧＦ−Ｂのアッセイは腫瘍予知因子として有用であろう。コンドウ（Ｋｏｎｄｏ）他，ＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｅｔＢｉｏｐｈｙｓｉｃａＡｃｔａ，１２２１（２）：２１１−１４（１９９４）によって記載されている手法に類似のＥＬＩＳＡは、腫瘍スクリーニングとしてＶＥＧＦ−Ｂアップレギュレーションを検出するのに有用であろう。ブーコック（Ｂｏｏｃｏｃｋ）他，Ｊ．Ｎａｔｌ．ＣａｎｃｅｒＩｎｓｔ．，８７：５０６−１６（１９９５）によって記載されている技術を使用した、ＶＥＧＦ−Ｂ発現の固相酵素免疫検定法は、卵巣がんの診断指標として有用であろう。ウェインデル（Ｗｅｉｎｄｅｌ）他，Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇｅｒｙ，３５：４３９−４８（１９９４）によって記載されているＶＥＧＦアッセイに類似のＶＥＧＦ−Ｂ発現のアッセイは、脳腫瘍における悪性腫瘍のインジケーターとして有用であろう。更に、腫瘍の成長には、血管新生が必要であることから、ＶＥＧＦ−Ｂの投与は、抗腫瘍形成剤をテストするために、実験動物に於いて腫瘍の成長を促進するのにも有用であろう。ＶＥＧＦ−Ｂは、又、腫瘍の低酸素症領域の微小血管質を増加させ、それらを放射線、放射線増感剤等に対してより敏感にさせるのに有用であろう。ＶＥＧＦ−Ｂの血管新生作用は、虚血状態を治療するのに有用であろう。ボータース（Ｂａｕｔｅｒｓ）他，ＡｍｅｒｉｃａｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，２６７（４Ｐｔ２）：Ｈ１２６３−７／（１９９４）に記載されている技術によって、ＶＥＧＦ−Ｂの動脈内巨丸剤（ｂｏｌｕｓ）を投与することは、下肢虚血の治療と、四肢に於ける潅流を増加させるのに有用であろう。メスリ（Ｍｅｓｒｉ）他，ＣｉｒｃｕｌａｔｉｏｎＲｅｓｅａｒｃｈ，７６：１６１−６７（１９９５）によって記載されている手順を使用して、組織虚血（たとえば、心筋虚血）を治療するために、ＶＥＧＦ−Ｂを発現するウィルスを形質導入した繊維芽細胞を注射した組織中で、血管新生反応を作り出すことができるであろう。ＶＥＧＦ−Ｂ又はアゴニストは、たとえば、心筋梗塞、虚血四肢、深静脈血栓症、および／又は分娩後の血管障害等の、動脈および／又は静脈閉塞に於ける側枝循環の発達を刺激するために利用できるであろう。前出のタケシタ（Ｔａｋｅｓｈｉｔａ）他を参照。ＶＥＧＦ−Ｂ／ＶＥＧＦ−Ｂレセプターシステムは、新しい薬品としての、開発のために、アゴニスト／アンタゴニストとして小さな分子を検出するためのアッセイシステムとして使用可能である。検出可能な小分子の具体例としては、これらに限定されるものではないが、有機化学薬品、ペプチド、およびＲＮＡ分子がある。薬剤的有効量のＶＥＧＦ−Ｂたん白質を、水、ミネラルオイル、ポリエチレングリコール、スターチ、タルカム、ラクトース、増粘剤（ｔｈｉｃｋｅｎｅｒ）、安定剤、懸濁剤、等の単数又は複数の適当なキャリア又はアジュバントと混合することによって、医薬組成物を作ることができる。このような組成物は、溶液、懸濁液、錠剤、カプセル、クリーム、膏薬、軟膏、その他の従来形状の形態とすることができる。例７に示したように、ＶＥＧＦ−Ｂたん白質は、抗体を生産するのにも使用することができる。一般に、従来式抗体生産技術を使用して、ＶＥＧＦ−Ｂ抗体を生産することができる。たとえば、特異的モノクローナル抗体を、組換えＤＮＡ発現によって得られた融合たん白質の免疫化を通じて生産することができる。標識化モノクローナル抗体は、特に、体内での異常なレベルのＶＥＧＦ−Ｂに関連する状態をスクリーニングするのに有用であろう。たとえば、ファヴァ（Ｆａｖａ）他，ＪｏｕｒｎａｌｏｆＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＭｅｄｉｃｉｎｅ，１８０：３４１−４６（１９９４）によって記載されている手法に類似の免疫蛍光測定技術による滑液および／又は関節組織のＶＥＧＦ−Ｂのアッセイは、慢性関節リウマチの診断インジケーターとして有用であろう。アイロ（Ａｉｅｌｌｏ）他，ｉｎＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｅｄｉｃｉｎｅ，３３１（２２）：１４８０−８７（１９９４）によって記載されている技術を使用した眼液（ｏｃｃｕｌａｒｆｌｕｉｄ）におけるＶＥＧＦ−Ｂの放射線免疫検定法は、糖尿病性網膜症、虹彩又は網膜血管閉塞の新血管新生の診断インジケーターとして有用であろう。血液、尿、又はその他の体液中のＶＥＧＦ−Ｂレベルのイムノアッセイは、腫瘍マーカーとしても有用であろう。前出のコンドウ（Ｋｏｎｄｏ）他，参照。ＶＥＧＦ−Ｂに対するこれらのモノクローナル抗体は、又、体内での高いレベルのＶＥＧＦ−Ｂに関連する血管新生の阻害において有用であり、たとえば、哺乳類に於ける急速に増殖する血管新生依存性腫瘍においては、この血管新生阻害によって、そのような腫瘍の成長を遅延させることができるであろう。キム（Ｋｉｍ）他，ｉｎＮａｔｕｒｅ，３６２（６２４３）：８４１−４４（１９９３）によって記載されているものに類似の技術を使用した、ＶＥＧＦ−Ｂに対して特異的なモノクローナル抗体による治療は、イン・ヴィヴォでの腫瘍の成長を阻害又は抑制するために有用であろう。アサノ（Ａｓａｎｏ）他，ｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓｅａｒｃｈ，５５：５２９６−５３０１（１９９５）に記載されているような手順を使用した、ＶＥＧＦ−Ｂに対するモノクローナル抗体の静脈および／又は皮下注射は、新血管新生と、固形腫瘍の一次および転移成長とを阻害するのに有用であろう。ヒトの治療のためには、そのようなモノクローナル抗体のｃｈｉａｓｅｒｉｚａｔｉｏｎ又はｈｕｍａｎｉｚａｔｉｏｎが好ましい。治療は、例えば１０ないし５００μｇ０、好ましくは、５０−１００μｇのモノクローナル抗体を、週二回、腹膜内注射することによって行うことができる。抗体等のＶＥＧＦ−Ｂアンタゴニストは、又、糖尿病性網膜症、乾癬関節症および／又は血管腫等の血管腫瘍における新しい血管を阻害するのにも有用であろう。アイロ（Ａｉｅｌｌｏ）他，前出、参照。以上の記載および例は、単に本発明を説明するために記載されたものであって、限定することを意図したものではない。当業者に於いては、本発明の精神および内容を具体化している開示した実施例の改変がありうるであろうから、本発明は、付随のクレームとその均等物の範囲内に於けるすべてを含むものであると理解されるべきである。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】１９９６年９月１６日【補正内容】請求の範囲：１．特徴的なアミノ酸配列Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ（配列認識番号１６）を有し、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特性を有するたん白質をコードする単離核酸であって、前記核酸は、図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）と、図３のＤＮＡ（配列認識番号４）と、図５のＤＮＡ（配列認識番号６）と、図７のＤＮＡ（配列認識番号８）と、図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）と、図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）と、図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）と、前記ＤＮＡ配列の少なくとも一つとストリンジェントな条件下でハイブリダズする核酸とから成るグループから選択される単離核酸。２．前記核酸はｃＤＮＡである請求項１の核酸。３．図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。４．核酸配列が哺乳類ＤＮＡである請求項１の核酸。５．前記核酸はマウスＤＮＡである請求項４の核酸。６．前記核酸はヒトＤＮＡである請求項４の核酸。７．前記核酸は血管内皮細胞の増殖を促進するたん白質をコードする請求項１の核酸。８．図３のＤＮＡ（配列認識番号４）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。９．図５のＤＮＡ（配列認識番号６）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１０．図７のＤＮＡ（配列認識番号８）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１１．図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１２．図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１３．図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１４．プロモーター配列と操作可能にリンクされた請求項１の核酸を有するベクター。１５．前記ベクターは真核ベクターである請求項１４のベクター。１６．前記ベクターは原核ベクターである請求項１４のベクター。１７．前記ベクターはプラスミドである請求項１４のベクター。１８．特徴的な配列Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ（配列認識番号１６）を示し、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特性を有する単離たん白質であって、前記たん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）と、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）と、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）と、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）と、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）と、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）と、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）と、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）とから成るグループから選択されるアミノ酸配列に実質的に対応するアミノ酸配列を有する単離たん白質。１９．前記たん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２０．前記たん白質は、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２１．前記たん白質は、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２２．前記たん白質は、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２３．前記たん白質は、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２４．前記たん白質は、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２５．前記たん白質は、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２６．前記たん白質は、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２７．前記たん白質は哺乳類たん白質である請求項１８の単離たん白質。２８．前記たん白質はマウスたん白質である請求項２７の単離たん白質。２９．前記たん白質はヒトたん白質である請求項２７の単離たん白質。３０．前記たん白質は血管内皮細胞の増殖を促進する請求項１８の単離たん白質。３１．図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）と、図３のＤＮＡ（配列認識番号４）と、図５のＤＮＡ（配列認識番号６）と、図７のＤＮＡ（配列認識番号８）と、図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）と、図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）と、図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）と、前記ＤＮＡ配列の少なくとも一つとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡとから成るグループから選択されるＤＮＡの発現によって作り出される単離たん白質。３２．内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進するのに有効な量の請求項１８のたん白質と、少なくとも一つの従来式製薬用キャリア又は希釈剤とを有する医薬組成物。３３．請求項１８のたん白質と反応する抗体。３４．前記抗体はモノクローナル抗体である請求項３３の抗体。３５．請求項１４のベクターによってトランスフォーメーション又はトランスフェクションされて、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特徴を有するたん白質を発現する宿主細胞。３６．前記宿主細胞は真核細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。３７．前記宿主細胞はＣＯＳ細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。３８．前記宿主細胞は原核細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。３９．前記宿主細胞は２９３ＥＢＮＡ細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。４０．前記宿主細胞は昆虫細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。４１．サンプル中のＶＥＧＦ−Ｂの量を検出するために、ＶＥＧＦ−Ｂと反応する請求項３３の抗体を有する、テストサンプル中のＶＥＧＦ−Ｂを定量的に検出するための診断手段。４２．前記抗体は標識化抗体である請求項４１の診断手段。４３．テストＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子と請求項１の核酸配列との配列比較を容易にするために、ポリメラーゼ連鎖反応によってテストＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子を増幅するために、請求項１の核酸配列に対して相補的な少なくとも一対のプライマーを有する、テストサンプル中のＶＥＧＦ−Ｂを検出するための診断手段。４４．有効ＶＥＧＦ−Ｂ結合量の請求項３３の抗体と、少なくとも一つの薬学的に許容可能なキャリア又はアジュバントと、を有する医薬組成物。４５．内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進するのに有効な量の請求項１８のたん白質と、ＶＥＧＦとを有する医薬組成物。４６．更に、細胞増殖促進量の前記たん白質が、細胞と結合しない状態で存在することを確実にするのに有効な量のヘパリンを有する請求項４５の医薬組成物。４７．更に、細胞増殖促進量の前記たん白質が、細胞と結合しない状態で存在することを確実にするのに有効な量のヘパリンを有する請求項３２の医薬組成物。４８．血管新生の刺激に有効な量の請求項１８のたん白質と、ヘパリンとを有する医薬組成物。４９．請求項１８のたん白質を有する単離たん白質ダイマー。５０．前記たん白質ダイマーは前記たん白質のホモダイマーである請求項４９の単離たん白質ダイマー。５１．前記たん白質ダイマーは前記たん白質とＶＥＧＦとのヘテロダイマーである請求項４９の単離たん白質ダイマー。５２．前記たん白質ダイマーはジスルフィド−結合ダイマーである請求項４９の単離たん白質ダイマー。５３．請求項１８のたん白質と、ＶＥＧＦから成るグループから選択される少なくとも一つのたん白質を、その少なくとも１つのたん白質を発現する細胞から放出させるのを促進する方法であって、前記細胞をヘパリンに対して露出する工程を有する方法。５４．請求項１の核酸配列の少なくとも一部に対して相補的なアンチセンスヌクレオチド配列を有するベクター。５５．ＶＥＧＦ−Ｂを発現する細胞からのＶＥＧＦ−Ｂの発現を遅延させる方法であって、前記細胞に請求項５４のベクターをトランスフェクションする工程を有する方法。５６．前記細胞は腫瘍細胞である請求項５５の方法。５７．図２５の配列（配列認識番号１７）に対応するヌクレオチド配列、又は、前記核酸配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸を有する単離核酸。５８．ＶＥＧＦ−Ｂたん白質を発現するべく、適当なプロモーターに操作可能にリンクされた、請求項１の核酸配列を有するベクターでトランスフォーメーション又はトランスフェクションされた宿主細胞。５９．前記ＶＥＧＦ−Ｂたん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）と、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）と、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）と、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）と、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）と、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）と、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）と、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）とから成るグループから選択されるアミノ酸配列に実質的に対応するアミノ酸配列からなる請求項５８の宿主細胞。６０．請求項１の核酸配列に対して相補的な少なくとも一対のプライマーを有するテストサンプル中のＶＥＧＦ−Ｂを検出するための診断手段。６１．請求項１８のたん白質とＶＥＧＦから成るグループから選択される少なくとも１つのたん白質を、前記少なくとも一つのたん白質を発現する細胞から得るための方法であって、前記細胞をヘパリンに対して露出して、前記少なくとも１つのたん白質の放出を誘発させる工程と、放出されたたん白質を収集する工程、とを有する方法。６２．請求項１のヌクレオチド配列を、適当なプロモーターと操作可能にリンクされた関係で、ベクターに導入する工程を有するＶＥＧＦ−Ｂたん白質の発現に適したベクターを作る方法。６３．前記単離核酸分子は、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣｐＨ７．０又は５ｘＳＳＰＥ緩衝液、１％ないし２％のＳＤＳ、５ないし１０ｘデンハルト溶液、そして、１００μｇ／ｍｌの鮭精子ＤＮＡ中に於いて、４２℃で、マウスＶＥＧＦ−Ｂをコードする核酸分子とハイブリダイズするヒトＶＥＧＦ−Ｂ分子をコードする単離核酸分子。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号ＦＩＧ０１Ｎ 33/53 Ｃ１２Ｐ 21/02 33/566 21/08 // Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ｂ 21/08 Ａ６１Ｋ 37/02 ＡＤＳ (Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｒ 1:19） (31)優先権主張番号０８／５６９，０６３ (32)優先日 1995年12月６日 (33)優先権主張国米国（ＵＳ） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＡＵ，ＣＡ，ＣＮ，ＦＩ，ＪＰ，ＮＯ，ＮＺ (72)発明者オロフソン，ビルギッタスウェーデン国エス−117 26 ストックホルムクリングホルンスガタン 106 ３ティアール (72)発明者アリターロ，カリフィンランド国エフアイエヌ−02100 エスポーニーリキンティエ４エイ (72)発明者パジュソラ，カトリフィンランド国エフアイエヌ−00900 ヘルシンキカステホルマンティエ４エイ８

Claims

【特許請求の範囲】１．特徴的なアミノ酸配列Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ（配列認識番号１６）を有し、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特性を有するたん白質をコードする単離核酸であって、前記核酸は、図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）と、図３のＤＮＡ（配列認識番号４）と、図５のＤＮＡ（配列認識番号６）と、図７のＤＮＡ（配列認識番号８）と、図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）と、図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）と、図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）と、前記ＤＮＡ配列の少なくとも一つとストリンジェントな条件下でハイブリダズする核酸とから成るグループから選択される単離核酸。２．前記核酸はｃＤＮＡである請求項１の核酸。３．図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。４．核酸配列が哺乳類ＤＮＡである請求項１の核酸。５．前記核酸はマウスＤＮＡである請求項４の核酸。６．前記核酸はヒトＤＮＡである請求項４の核酸。７．前記核酸は血管内皮細胞の増殖を促進するたん白質をコードする請求項１の核酸。８．図３のＤＮＡ（配列認識番号４）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。９．図５のＤＮＡ（配列認識番号６）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１０．図７のＤＮＡ（配列認識番号８）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１１．図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１２．図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１３．図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）に対応するｃＤＮＡを有する請求項１の核酸。１４．プロモーター配列と操作可能にリンクされた請求項１の核酸を有するベクター。１５．前記ベクターは真核ベクターである請求項１４のベクター。１６．前記ベクターは原核ベクターである請求項１４のベクター。１７．前記ベクターはプラスミドである請求項１４のベクター。１８．特徴的な配列Ｐｒｏ−Ｘａａ−Ｃｙｓ−Ｖａｌ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ｘａａ−Ａｒｇ−Ｃｙｓ− Ｘａａ−Ｇｌｙ−Ｃｙｓ−Ｃｙｓ（配列認識番号１６）を示し、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特性を有する単離たん白質であって、前記たん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）と、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）と、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）と、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）と、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）と、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）と、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）と、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）とから成るグループから選択されるアミノ酸配列に実質的に対応するアミノ酸配列を有する単離たん白質。１９．前記たん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２０．前記たん白質は、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２１．前記たん白質は、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２２．前記たん白質は、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２３．前記たん白質は、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２４．前記たん白質は、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２５．前記たん白質は、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２６．前記たん白質は、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）に対応するアミノ酸配列を有する請求項１８の単離たん白質。２７．前記たん白質は哺乳類たん白質である請求項１８の単離たん白質。２８．前記たん白質はマウスたん白質である請求項２７の単離たん白質。２９．前記たん白質はヒトたん白質である請求項２７の単離たん白質。３０．前記たん白質は血管内皮細胞の増殖を促進する請求項１８の単離たん白質。３１．図１および２のＤＮＡ（配列認識番号１）と、図３のＤＮＡ（配列認識番号４）と、図５のＤＮＡ（配列認識番号６）と、図７のＤＮＡ（配列認識番号８）と、図１０のＤＮＡ（配列認識番号１０）と、図１２のＤＮＡ（配列認識番号１２）と、図１４のＤＮＡ（配列認識番号１４）と、前記ＤＮＡ配列の少なくとも一つとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡとから成るグループから選択されるＤＮＡの発現によって作り出される単離たん白質。３２．内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進するのに有効な量の請求項１８のたん白質と、少なくとも一つの従来式製薬用キャリア又は希釈剤とを有する医薬組成物。３３．請求項１８のたん白質と反応する抗体。３４．前記抗体はモノクローナル抗体である請求項３３の抗体。３５．請求項１４のベクターによってトランスフォーメーション又はトランスフェクションされて、内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進する特徴を有するたん白質を発現する宿主細胞。３６．前記宿主細胞は真核細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。３７．前記宿主細胞はＣＯＳ細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。３８．前記宿主細胞は原核細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。３９．前記宿主細胞は２９３ＥＢＮＡ細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。４０．前記宿主細胞は昆虫細胞である請求項３５のトランスフェクションされた宿主細胞。４１．サンプル中のＶＥＧＦ−Ｂの量を検出するために、ＶＥＧＦ−Ｂと反応する請求項３３の抗体を有する、テストサンプル中のＶＥＧＦ−Ｂを定量的に検出するための診断手段。４２．前記抗体は標識化抗体である請求項４１の診断手段。４３．テストＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子と請求項１の核酸配列との配列比較を容易にするために、ポリメラーゼ連鎖反応によってテストＶＥＧＦ−Ｂ遺伝子を増幅するために、請求項１の核酸配列に対して相補的な少なくとも一対のプライマーを有する、テストサンプル中のＶＥＧＦ−Ｂを検出するための診断手段。４４．有効ＶＥＧＦ−Ｂ結合量の請求項３３の抗体と、少なくとも一つの薬学的に許容可能なキャリア又はアジュバントと、を有する医薬組成物。４５．内皮細胞又は中胚葉細胞の増殖を促進するのに有効な量の請求項１８のたん白質と、ＶＥＧＦとを有する医薬組成物。４６．更に、細胞増殖促進量の前記たん白質が、細胞と結合しない状態で存在することを確実にするのに有効な量のヘパリンを有する請求項４５の医薬組成物。４７．更に、細胞増殖促進量の前記たん白質が、細胞と結合しない状態で存在することを確実にするのに有効な量のヘパリンを有する請求項３２の医薬組成物。４８．血管新生の刺激に有効な量の請求項１８のたん白質と、ヘパリンとを有する医薬組成物。４９．請求項１８のたん白質を有する単離たん白質ダイマー。５０．前記たん白質ダイマーは前記たん白質のホモダイマーである請求項４９の単離たん白質ダイマー。５１．前記たん白質ダイマーは前記たん白質とＶＥＧＦとのヘテロダイマーである請求項４９の単離たん白質ダイマー。５２．前記たん白質ダイマーはジスルフィド−結合ダイマーである請求項４９の単離たん白質ダイマー。５３．請求項１８のたん白質と、ＶＥＧＦから成るグループから選択される少なくとも一つのたん白質を、その少なくとも１つのたん白質を発現する細胞から放出させるのを促進する方法であって、前記細胞をヘパリンに対して露出する工程を有する方法。５４．請求項１の核酸配列の少なくとも一部に対して相補的なアンチセンスヌクレオチド配列を有するベクター。５５．ＶＥＧＦ−Ｂを発現する細胞からのＶＥＧＦ−Ｂの発現を遅延させる方法であって、前記細胞に請求項５４のベクターをトランスフェクションする工程を有する方法。５６．前記細胞は腫瘍細胞である請求項５５の方法。５７．図２５の配列（配列認識番号１７）に対応するヌクレオチド配列、又は、前記核酸配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸を有する単離核酸。５８．ＶＥＧＦ−Ｂたん白質を発現するべく、適当なプロモーターに操作可能にリンクされた、請求項１の核酸配列を有するベクターでトランスフォーメーション又はトランスフェクションされた宿主細胞。５９．前記ＶＥＧＦ−Ｂたん白質は、図１のアミノ酸配列（配列認識番号２）と、図２のアミノ酸配列（配列認識番号３）と、図４のアミノ酸配列（配列認識番号５）と、図６のアミノ酸配列（配列認識番号７）と、図８のアミノ酸配列（配列認識番号９）と、図１１のアミノ酸配列（配列認識番号１１）と、図１３のアミノ酸配列（配列認識番号１３）と、図１５のアミノ酸配列（配列認識番号１５）とから成るグループから選択されるアミノ酸配列に実質的に対応するアミノ酸配列からなる請求項５８の宿主細胞。６０．請求項１の核酸配列に対して相補的な少なくとも一対のプライマーを有するテストサンプル中のＶＥＧＦ−Ｂを検出するための診断手段。６１．請求項１８のたん白質とＶＥＧＦから成るグループから選択される少なくとも１つのたん白質を、前記少なくとも一つのたん白質を発現する細胞から得るための方法であって、前記細胞をヘパリンに対して露出して、前記少なくとも１つのたん白質の放出を誘発させる工程と、放出されたたん白質を収集する工程、とを有する方法。６２．請求項１のヌクレオチド配列を、適当なプロモーターと操作可能にリンクされた関係で、ベクターに導入する工程を有するＶＥＧＦ−Ｂたん白質の発現に適したベクターを作る方法。６３．前記単離核酸分子は、５０％ホルムアミド、５ｘＳＳＣｐＨ７．０又は５ｘＳＳＰＥ緩衝液、１％ないし２％のＳＤＳ、５ないし１０ｘデンハルト溶液、そして、１００μｇ／ｍｌの鮭精子ＤＮＡ中に於いて、４２℃で、マウスＶＥＧＦ−Ｂをコードする核酸分子とハイブリダイズするヒトＶＥＧＦ−Ｂ分子をコードする単離核酸分子。