JPH0737B2 - スタウロスポリン発酵法 - Google Patents
スタウロスポリン発酵法Info
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- JPH0737B2 JPH0737B2 JP2333494A JP33349490A JPH0737B2 JP H0737 B2 JPH0737 B2 JP H0737B2 JP 2333494 A JP2333494 A JP 2333494A JP 33349490 A JP33349490 A JP 33349490A JP H0737 B2 JPH0737 B2 JP H0737B2
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- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/886—Streptomyces
- Y10S435/898—Streptomyces hygroscopicus
Description
するための新規微生物的方法に関する。
107,297号はストレプトマイセス・スタウロスポレウス
(Streptomyces staurosporeus)nov.sp.NRRL11,184の
発酵によるスタウロスポリン(該文献中にAM−2282と称
されている)の製造を開示している。スタウロスポリン
の分子構造に関する情報はジャーナル・オブ・ケミカル
・ソサイエティー、ケミカル・コミュニケーションズ
(J.Chem.Soc.Chem.Comm)、1978:800〜801、1978中に
記載されていた。
して)を有することが知られ、また血圧低下活性を有す
ることが報告されている。米国特許第4,735,039号はス
タウロスポリンがまた殺虫活性を有することを開示して
いる。
学的方法に関する。新方法はストレプトマイセス・ハイ
グロスコピカス(Streptomyces hygroscopicus)のスタ
ウロスポリン産生株、最も好ましくはストレプトマイセ
ス・ハイグロスコピカス(Streptomyces hygroscopicu
s)C39280−450−9株(ATCC53730)あるいはそのスタ
ウロスポリン産生突然変異体または変異体を、炭素およ
び窒素の資化性源を含む水性普通培地中で、液内好気性
条件下に実質量のスタウロスポリンが前記培地中に前記
生産菌により生産されるまで培養し、次いでスタウロス
ポリンを前記培地から回収することを含む。
トレプトマイセス・ハイグロスコピカス(Streptomyces
hygroscopicus)C39280−450−9株として示されるス
トレプトマイセス・ハイグロスコピカス(Streptomyces
hygroscopicus)の新規株である。この株は日本国、静
岡県沼津市で捕集した土壌試料から分離された。C39280
−450−9株の生物学的に純粋な培養株はアメリカン・
タイプ・カルチャー・コレクション(American Type Cu
lture,Rockville,Maryland)に寄託され、ATCC53730と
してその微生物の永久コレクションに加えられた。C392
80と称されるこの培養株はまた、ブリストル・マイヤー
ズ・スクイブ・ファルマシューティカル・リサーチ・ア
ンドデベロープメント・ディビジョン・カルチャー・コ
レクション(Bristotol−Myers Squibb Pharmaceutical
Research and Development Division Culture Collect
ion,5Research Parkway,Wallingford,Connecticut0649
2)において凍結乾燥管および低温貯蔵バイアル中に休
眠菌株として維持されている。
株がストレプトマイセス・ハイグロスコピカス(Strept
omyces hygroscopicus)の新規株であることを示す。C3
9280−450−9株はシャーリングおよびゴットリーブ(S
hirling&Gottlieb)〔インタナショナル・ジャーナル
・オブ・システマチック・バクテリオロジー(Int.J.Sy
st.Bacteriology)、16;313〜340、1966;同上、18;69〜
189、1968;同上、22;265〜394、1972〕、スタネックほ
か(Staneck&Roberts)、〔アプライド・ミクロバイオ
ロジー(Appl.Microbiol.)、28;226〜31、1974〕、シ
ャール(K.P.Schaal)〔M.グッド・フェローほか(M.Go
od Fellow and D.E.Minnikin)編、細菌分類学における
化学的方法(Chemical Methods in Bacterial Systemat
ics)、アカデミック・プレス(Academic Press In
c.)、PP.359〜381、1985〕により記載された物質およ
び操作により決定し、次の性質を有する。
基質および気中菌糸の形成、(2)気中菌糸上の分枝胞
子柄から生ずる分節胞子のら旋鎖、胞子鎖は2〜6回転
を有する、(3)滑らかな胞子刻紋、が包含される。
る。吸湿性変化がISP培地No.4および修正ベンネットの
培地中に明らかである。可溶性馬鈴薯デンプンおよびグ
ルコースが生育に利用される。イノシトールの利用は疑
問である。生理学的特徴は表2中に総括される。
分は、LL−ジアミノピメリン酸、ガラクトース、リボー
スおよびマンノースであった、従って生産菌の細胞壁帰
属はI型であった。リン脂質分析はホスファチルエタノ
ールアミンおよびホスファチジルグリセロールの存在が
検出され、リン脂質としてPII型として分類された。
れをストレプトマイセス(Streptomyces)種として分類
する。さらにストレプトマイセス・ハイグロスコピカス
(Streptomyces hygroscopicus)株としての分類は微生
物体のら旋状胞子鎖の密集および以後の吸湿特性により
確証される。
の好ましい株に限定することが意図されていないことを
理解すべきである。ストレプトマイセス・ハイグロスコ
ピカス(Streptomyces hygroscopicus)の他のスタウロ
スポリン産生株、殊に既知操作例えばX線または紫外線
による照射、ナイトロジェンマスタードによる処理、フ
ァージ暴露などにより生ずる寄託株の変異体または突然
変異体を発明の範囲内に包含することが殊に望ましくか
つ意図されている。
ス・ハイグロスコピカス(Streptomyces hygroscopicu
s)のスタウロスポリン産生株、好ましくはC39280−450
−9株(ATCC53730)の確認特性を有するストレプトマ
イセス・ハイグロスコピカス(Streptomyces hygroscop
icus)の株あるいはその突然変異体または変異体を、通
常の水性普通培地中で培養することにより製造すること
ができる。微生物体は放射菌類に対する既知栄養源、す
なわち、炭素および窒素の資化性源、加えて、場合によ
り無機塩および他の既知増殖因子を含む普通培地中で増
殖させる。液内好気性条件が多量の抗生物質の生成に対
して好ましく使用されるが、しかし限定量の生産には表
面培養およびボトルもまた使用できる。他の放線菌類の
培養に対して行われる一般的操作を本発明に適用でき
る。
ス、グルコース、ラムノース、フルクトース、グリセロ
ールまたは溶性デンプンを含有すべきである。資化性窒
素源例えば魚粉、ペプトン、落花生粕、綿実粕またはコ
ーンスティープリカーもまた使用すべきである。栄養無
機塩もまた、ナトリウム、カリウム、アンモニウム、カ
ルシウム、リン酸、硫酸、塩化物、臭化物、硝酸、炭酸
などのイオンを与えるように培地中に加えることができ
る。
うことができる任意の温度例えば10〜37℃で行なうこと
ができ、通常約28℃の温度で行なわれる。発酵はフラス
コ中、あるいは種々の容量の実験室または工業的発酵槽
中で行なうことができる。タンク発酵を用いるとき、小
容量の培地に生産菌の斜面培養菌株または凍結乾燥菌株
を接種することにより普通ブロス中に増殖形接種菌を生
成させることが望ましい。この方法で生育可能な活性接
種菌を得た後、それを、スタウロスポリンの大規模生産
のための生産培地を仕込んだ発酵タンクに無菌的に移
す。増殖形接種菌を調製する培地は、それが生産菌の良
好な増殖を得させさえすればタンク中に用いるものと同
じであっても又異なっていてもよい。発酵の間のかくは
んを機械的撹拌装置により与えることができる。消泡剤
例えばラード油またはシリコーン油を、必要であれば添
加することができる。抗生物質の生産は高速液体クロマ
トグラフィー(HPLC)検定により、または普通の生物学
的検定によりモニターすることができる。
施例4に記載するような通常の抽出およびクロマトグラ
フィー技術により培地から回収することができる。
に記載されている該抗生物質の特性と同じ特性を示す。
本発明の範囲を限定するものではない。
中に−80℃で貯蔵した凍結保存菌株として維持した。凍
結保存菌株を調製するため、C39280−450−9株を試験
管中に、ISP培地No.4〔ディフコ(Difco)〕の寒天斜面
上に移した。
へ斜面培養から表面増殖を移すことにより調製した。
転振とう機上で培養した。増殖形菌株を、 スクロース 100g グリセロール 200g 脱イオン水 十分量 1リットルまで からなる凍結保護溶液等容量と混合した。
c)〕に移し、ドライアイス−アセトン浴中で凍結し
た。凍結した増殖形菌株を次いでレブコ(Revco)超低
温フリーザー中に−80℃で貯蔵した。
じ組成を有する無菌栄養培地100mlを入れた500ml三角フ
ラスコに移すことにより増殖形菌株を調製した。増殖形
菌株を28℃で72時間、250回転/分にセットした回転振
とう機上で培養した。
100mlをそれぞれ入れた500ml三角フラスコ中へ接種し
た。
上で培養した。スタウロスポリンの生成はHPLC分析によ
りモニターした。130μg/mlの最適生成は6日の発酵で
達せられた。
をダイカライト(Dicalite)濾過補助剤を用いて濾過し
た。菌糸マットをテトラヒドロフラン(THF)(2リッ
トル)中で1時間かくはんした後濾過し、さらにアセト
ン(1リットル)で洗浄した。濾液を減圧下に濃縮して
水溶液とし、ブライン(1リットル)で容積を増加し、
水層をクロロホルム(1リットル,2回)で抽出すると粗
抽出物45gが得られた。粗抽出物のCHCl3−CH3OH−THF
(1:1:1,v/v)可溶性物質をシリカゲル〔リクロプレプ
(Licroprep)Si60,40〜63μm、EMサイエンス(EM Sci
ence)〕16g上に吸着させ、他の54gのシリカゲルを入れ
た150mlVLC(真空液体クロマトグラフィー)カラムに装
填した。ヘキサン−THF段階勾配溶出を行なった。半精
製スタウロスポリンがヘキサン−THF(1:4,v/v)で溶離
した。画分は合わせて3gであった。
た。溶出画分をCHCl3−CH3OH−THF(1:1:1,v/v)に溶解
し、THF−CHCl3(2:1,v/v)で平衡させたカラムに装填
した。流量は1.3ml/分であった。スタウロスポリンは3/
4ベッド体積で溶出した(1.4g)。この物質を、THFで平
衡させた第2LH−20カラムに装填した。スタウロスポリ
ン(1.16g)が1ベッド容積で溶出した。
で(1H−NMR、13C−NMR、UV、IR、質量スペクトル、HPL
C PR−C18)、スタウロスポリンに対する公表された理
化学データに一致した。
Claims (2)
- 【請求項1】ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス
(Streptomyces hygroscopicus)のスタウロスポリン産
生株を水性普通培地中で液内好気性条件下に、実質量の
スタウロスポリンが前記培地中に前記生産菌株により生
産されるまで培養し、共生産物質を実質的に含まない培
地からスタウロスポリンを回収することを含む、スタウ
ロスポリンを製造する方法。 - 【請求項2】生産菌がストレプトマイセス・ハイグロス
コピカス(Streptomyces hygroscopicus)C39280−450
−9株(ATCC53730)あるいはそのスタウロスポリン産
生突然変異体または変異体である、請求項(1)記載の
方法。
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