JPH0614777A - 新規セファロスポリンcアシラーゼ及びその製造方法 - Google Patents

新規セファロスポリンcアシラーゼ及びその製造方法

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JPH0614777A
JPH0614777A JP5037030A JP3703093A JPH0614777A JP H0614777 A JPH0614777 A JP H0614777A JP 5037030 A JP5037030 A JP 5037030A JP 3703093 A JP3703093 A JP 3703093A JP H0614777 A JPH0614777 A JP H0614777A
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val
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JP5037030A
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Mineo Niwa
峰雄 丹羽
Yoshimasa Saito
善正 斎藤
Hitoshi Sasaki
斉 佐々木
Yoshinori Ishii
芳則 石井
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Fujisawa Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Fujisawa Pharmaceutical Co Ltd
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    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P35/00Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin
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Abstract

(57)【要約】 【構成】 新規な変異型セファロスポリンCアシラー
ゼ、それをコードするDNA、そのDNAを含有する発
現ベクター、該発現ベクターを導入した形質転換体およ
び該形質転換体を培養することによる変異型セファロス
ポリンCアシラーゼの製造法。上記形質転換体の培養物
またはその処理物を用いる式: 【化1】 (R1 はアセトキシ、ヒドロキシまたは水素。R2 はカ
ルボン酸アシル。) で示される化合物(I) またはその塩
の製造法。 【効果】 高い酵素力および高いプロセッシング効率を
もつ変異型セファロスポリンCアシラーゼ、該酵素を高
収率発現する発現系並びに該酵素の製造方法を提供す
る。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、新規セファロスポリン
Cアシラーゼ(以下、CCアシラーゼという)に関す
る。より詳細には、新規な変異型CCアシラーゼ、それ
をコードする遺伝子、その遺伝子を含有する発現ベクタ
ー、該発現ベクターで形質転換された微生物及び変異型
CCアシラーゼの製造法に関する。更に、本発明は上記
形質転換体の培養物またはその処理物を用いたセファロ
スポリン化合物の製造法に関する。
【0002】
【従来の技術】CCアシラーゼは、一般にセファロスポ
リンCを7−アミノセファロスポラン酸(7−ACA)
に加水分解する酵素である。今まで、CCアシラーゼと
して分類される酵素としては、セファロスポリンCアシ
ラーゼSE83、N176及びV22の三酵素が見つか
っており、それらのアミノ酸配列は、Journal of Ferme
ntation and Bioengineering, Vol.72, p232-243 (199
1) に開示されている。この文献では、CCアシラーゼ
のアミノ酸配列の番号表記はそのN末端部位のメチオニ
ン基から始まっている。
【0003】しかし、本明細書においてはCCアシラー
ゼのアミノ酸配列の番号表記はN末端部のメチオニン基
に隣接するスレオニン基から始まる(後記配列表参
照)。これは原核生物中でCCアシラーゼ遺伝子を発現
することによって得られる成熟CCアシラーゼのα−サ
ブユニットのN末端部のメチオニンは、通常、宿主細胞
の酵素(例えば、アミノペプチダーゼなど)によって脱
離して、N末端アミノ酸としてスレオニン基をもつ成熟
CCアシラーゼとなるからである。
【0004】上記文献は、組換えDNA技術による天然
型CCアシラーゼの製造についても開示するものであ
り、発現されたCCアシラーゼは細胞内でプロセッシン
グを受けてα−サブユニットとβ−サブユニットからな
る活性体となることが知られている。しかしながら、大
腸菌中における該プロセッシングの効率は、一般に低
い。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、新規
な変異型セファロスポリンCアシラーゼ、それをコード
するDNA、該DNAを含む発現ベクター、該ベクター
を導入した形質転換体、及び該形質転換体を培養するこ
とによる変異型セファロスポリンCアシラーゼの製造方
法を提供することである。また、本発明の他の目的は、
上記形質転換体の培養物またはその処理物を用いたセフ
ァロスポリン化合物の製造法を提供することである。
【0006】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、より高い
酵素活性、より高いプロセッシング効率などのより望ま
しい特性を有するCCアシラーゼを得るべく鋭意研究を
重ねた結果、かかる望ましい性質を持つ変異型CCアシ
ラーゼの製造に成功し、本発明を完成した。
【0007】即ち本発明は、下記 (1)〜(4) の特徴を有
する新規な変異型CCアシラーゼに関するものである。 (1)天然型CCアシラーゼのアミノ酸配列305位のシ
ステインがセリン等の他のアミノ酸で置換されてなる変
異型CCアシラーゼ。 (2)天然型CCアシラーゼのアミノ酸配列269位のメ
チオニンがチロシン、フェニルアラニン、ロイシン等の
他のアミノ酸で置換されてなる変異型CCアシラーゼ。 (3)天然型CCアシラーゼのアミノ酸配列271位のア
ラニンがチロシン等の他のアミノ酸で置換されてなる変
異型CCアシラーゼ。 (4)上記 (1)〜(3) から選択される2もしくは3カ所の
点変異部をもつ変異型CCアシラーゼ。
【0008】言い換えると、変異型CCアシラーゼは、
α−サブユニットとβ−サブユニットとにプロセッシン
グされる前の前駆体形として次式で示すことができる。 A1-268 −X1 −Tyr−X2 −A272-304 −X3 −A306-773 式中、A1-268 は、天然型CCアシラーゼのThr1
らGly268 までのアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列
を示す。A272-304 は、天然型CCアシラーゼのGln
272 からTyr304 までのアミノ酸配列と同一のアミノ
酸配列を示す。A306-773 は、天然型CCアシラーゼの
Val306 からAla773 までのアミノ酸配列と同一の
アミノ酸配列を示す。X1 は、Metまたはその他のア
ミノ酸を、X2 は、Alaまたはその他のアミノ酸を、
3 はCysまたはその他のアミノ酸を示す。但し、X
1 がMetであり、かつX2 がAlaであるとき、X3
はCys以外のアミノ酸である。また本発明は、上記式
中、X1 がTyr、X2 がAlaおよびX3 がSerで
ある変異型セファロスポリンCアシラーゼに関する。
【0009】この明細書では、個々の変異型CCアシラ
ーゼの命名について、この分野の学会で広く用いられて
いる次のような命名法を便宜的に採用する。即ち、天然
型CCアシラーゼのアミノ酸配列の305位のシステイ
ン残基をセリンで置換した変異型CCアシラーゼは変異
型CCアシラーゼC305Sと命名され、ここでCは置
換されるシステイン(アミノ酸)残基の一文字記号を意
味し、305は天然型CCアシラーゼのアミノ酸配列の
置換位置を意味し、Sは前記システイン(アミノ酸)残
基を置換したセリン(他のアミノ酸)の一文字記号を意
味する。言い換えれば、例えば、変異型CCアシラーゼ
M269YまたはM269Tは天然型CCアシラーゼの
アミノ酸配列の269位のメチオニン残基をチロシンま
たはトレオニンでそれぞれ置換した変異型CCアシラー
ゼを意味する。そして、変異型CCアシラーゼM269
Y/C305Sは天然型CCアシラーゼのアミノ酸配列
の269位のメチオニン残基をチロシンで置換し、天然
型CCアシラーゼのアミノ酸配列の305位のシステイ
ン残基をセリンで置換した変異型CCアシラーゼを意味
する。
【0010】かかる特徴を有する本発明の変異型CCア
シラーゼのアミノ酸配列、ならびにそれをコードするD
NAのヌクレオチド配列の具体例を後記配列表に記す。
配列番号1に、プラスミドpYSC305SとpCK3
05で発現される、変異型CCアシラーゼC305Sの
前駆体をコードするDNAのヌクレオチド配列およびそ
れから推定したアミノ酸配列を示す。配列番号2に、プ
ラスミドpCK305B中における変異型CCアシラー
ゼC305Sの前駆体をコードするDNAのヌクレオチ
ド配列およびそれから推定したアミノ酸配列を示す。配
列番号3に、プラスミドpCK269Y中における変異
型CCアシラーゼM269Yの前駆体をコードするDN
Aのヌクレオチド配列およびそれから推定したアミノ酸
配列を示す。配列番号4に、プラスミドpYSA271
YおよびpCK271Y中における変異型CCアシラー
ゼA271Yの前駆体をコードするDNAのヌクレオチ
ド配列およびそれから推定したアミノ酸配列を示す。配
列番号5に、プラスミドp269Y305S中における
変異型CCアシラーゼM269Y/C305Sの前駆体
をコードするDNAのヌクレオチド配列およびそれから
推定したアミノ酸配列を示す。
【0011】本発明の変異型CCアシラーゼは、組換え
DNA技術、ポリペプチド合成法などによって調製する
ことができる。
【0012】組換えDNA技術を用いる場合には、新規
CCアシラーゼは、そのアミノ酸配列をコードするDN
Aを含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞を培地
中で培養し、該培養物から新規CCアシラーゼを採取す
ることによって調製することができる。
【0013】この過程について、その詳細を以下に詳し
く説明する。宿主細胞としては、微生物〔細菌(例え
ば、Escherichia coliBacillus subtilis など)、酵
母菌(例えば、Saccharomyces cerevisiaeなど)、動物
細胞系および培養植物細胞など〕が挙げられる。微生物
として好適には、細菌、特にEscherichia 属に属する菌
株(例えば E. coli JM109 ATCC 53323, E. coli HB101
ATCC 33694, E. coli HB101-16 FERM BP-1872, E. col
i 294 ATCC 31446 など)、酵母、特にSaccharomyces
属に属する菌株(例えば、Saccharomyces cerevisiae A
H22 )、動物細胞(例えばマウスL929細胞、チャイ
ニーズハムスター卵巣(CHO)細胞など)などが挙げ
られる。
【0014】細菌、特に E. coliを宿主細胞として用い
る場合、一般に発現ベクターは少なくともプロモーター
−オペレーター領域、開始コドン、新規CCアシラーゼ
のアミノ酸配列をコードするDNA、終止コドン、ター
ミネーター領域および複製可能単位から構成される。酵
母または動物細胞を宿主細胞として用いる場合、発現ベ
クターは、少なくともプロモーター、開始コドン、シグ
ナルペプチドおよび新規CCアシラーゼのアミノ酸配列
をコードするDNA、及び終止コドンを含んでいること
が好ましい。エンハンサー配列、新規CCアシラーゼの
5’側及び3’側の非翻訳領域、スプライシング接合
部、ポリアデニレーション部位及び複製可能単位もまた
発現ベクターに組み込むことが可能である。
【0015】プロモーター−オペレーター領域は、プロ
モーター、オペレーター及び Shine-Dalgarno(SD) 配列
(例えば、AAGGなど)を含むものである。好ましく
はプロモーター−オペレーター領域は、常套的に用いら
れるプロモーター−オペレーター領域(例えば、E. col
i のPL−プロモーター及びtrp−プロモーター)及
びCCアシラーゼ N−176染色体遺伝子のプロモー
ターを含んでいてもよい。
【0016】酵母中で新規CCアシラーゼを発現させる
ためのプロモーターとしては、S. cerevisiae の場合、
TRP1遺伝子、ADHIもしくはADHII遺伝子、
および酸ホスファターゼ(pH05)遺伝子のプロモー
ターが挙げられる。および哺乳動物細胞中で新規CCア
シラーゼを発現させるためのプロモーターとしては、S
V40初期プロモーターまたは後期プロモーター、HT
LV−LTR−プロモーター、マウスメタロチオネイン
I(MMT)−プロモーター、ワクシニア−プロモータ
ーなどが含まれる。
【0017】好適な開始コドンとしては、メチオニンコ
ドン(ATG)が含まれる。
【0018】シグナルペプチドとしては、一般に使用さ
れる他の酵素のシグナルペプチド(天然型t−PAのシ
グナルペプチド、天然型プラスミノーゲンのシグナルペ
プチド)などが含まれる。
【0019】新規CCアシラーゼのアミノ酸配列をコー
ドするDNAは、従来の方法で調製することができる。
例えば、DNA合成機を用いて一部のまたは全てのDN
Aを合成したり、および/または形質転換体〔例えば、
E. coli JM109(pCCN176−2) FERM BP-3047
〕から得られる適切なベクター(例えば、pCCN1
76−2)に挿入された天然型CCアシラーゼをコード
する完全なDNA配列を適切な方法、例えば適切な酵素
(例えば、制限酵素、アルカリホスファターゼ、ポリヌ
クレオチドキナーゼ、DNAリガーゼ、DNAポリメラ
ーゼなど)での処理に加えて、常套の変異方法〔例え
ば、カセット変異法〔徳永,Tら、Eur. J.Biochem. Vo
l.153, p445-449 (1985) 参照〕、PCR変異法〔樋
口,Rら、Nucleic Acids Res. Vol.16, p7351-7367 (1
988)参照〕、クンケル法〔Kunkel, T. Aら. ,Methods
Enzymol. Vol. 154, p367 (1987)など参照〕のような適
切な方法で処理することによって調製することができ
る。
【0020】終止コドンとしては、常用の終止コドン
(例えば、TAG、TGAなど)が含まれる。
【0021】ターミネーター領域としては、天然または
合成のターミネーター(例えば、合成fdファージター
ミネーターなど)が含まれる。
【0022】複製可能単位とは、宿主細胞中においてそ
の全DNA配列を複製することができる能力をもつDN
A化合物をいい、天然のプラスミド、人工的に修飾され
たプラスミド(例えば、天然のプラスミドから調製され
たDNAフラグメント)および合成プラスミドが含まれ
る。好適なプラスミドとしては、 E. coliではプラスミ
ドpBR322、もしくはその人工的修飾物(pBR3
22を適当な制限酵素で処理して得られるDNAフラグ
メント)が、酵母では酵母2μプラスミド、もしくは酵
母染色体DNAが、また哺乳動物細胞ではプラスミド p
RSVneo ATCC 37198 、プラスミド pSV2dhfr ATCC 3714
5、プラスミド pdBPV-MMTneo ATCC 37224、プラスミド
pSV2neo ATCC 37149 などが挙げられる。
【0023】エンハンサー配列としては、SV40のエ
ンハンサー配列(72b.p.)が含まれる。
【0024】ポリアデニレーション部位としては、SV
40のポリアデニレーション部位が含まれる。
【0025】スプライシング接合部位としては、SV4
0のスプライシング接合部位が含まれる。
【0026】プロモーター、開始コドン、新規CCアシ
ラーゼのアミノ酸配列をコードするDNA、終止コドン
およびターミネーター領域は、連続的かつ環状に適当な
複製可能単位(プラスミド)に連結させることができ、
この際所望により、常法(例えば、制限酵素での消化、
T4DNAリガーゼを用いるライゲーション)で適当な
DNAフラグメント(例えば、リンカー、他のレストリ
クションサイトなど)を用いることにより、発現ベクタ
ーを得る。
【0027】宿主細胞は、上述の発現ベクターを用いて
形質転換(形質移入)される。形質転換(形質移入)は
従来の方法(例えば、 E. coliは Kushner法、哺乳動物
細胞はリン酸カルシウム法、マイクロインジェクション
など)を用いて行うことができ、形質転換体(形質移入
体)が得られる。
【0028】本発明の工程で新規CCアシラーゼを製造
するために、かくして得られた上記発現ベクターを含む
形質転換体は、栄養培養水溶液中で培養される。
【0029】栄養培地は、炭素源(例えば、グルコー
ス、グリセリン、マンニトール、フルクトース、ラクト
ースなど)および無機窒素もしくは有機窒素源(例えば
硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、カゼインの加水
分解物、酵母抽出物、ポリペプトン、バクトトリプト
ン、ビーフ抽出物など)を含んでいてもよい。所望によ
り、他の栄養源〔例えば、無機塩(例えば、二リン酸ナ
トリウムまたは二リン酸カリウム、リン酸水素二カリウ
ム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化カルシ
ウム)、ビタミン類(例えば、ビタミンB1 )、抗生物
質(例えば、アンピシリン、カナマイシン)など〕を培
地中に添加してもよい。哺乳動物細胞を培養するため
に、胎児ウシ血清および抗生物質を配合した Dulbecco'
s Modified Eagle's Minimum Essenntial Medium (DME
M) がしばしば用いられる。
【0030】形質転換体(形質移入体)の培養は、通常
pH5.5−8.5(好適にはpH7−7.5)、18
−40℃(好適には20−30℃)で5−50時間実施
される。
【0031】かくして製造された新規CCアシラーゼが
培養液中に存在する場合は、その培養物を濾過または遠
心することにより、培養濾液(上清)を得る。新規CC
アシラーゼは、該培養濾液から、天然または合成蛋白質
を精製並びに単離するために一般に用いられる常法(例
えば、透析、ゲル濾過、抗CCアシラーゼモノクローナ
ル抗体を用いたアフィニティーカラムクロマトグラフィ
ー、適当な吸着材上でのカラムクロマトグラフィー、高
速液体クロマトグラフィーなど)を用いて精製すること
ができる。
【0032】製造された新規CCアシラーゼが、培養さ
れた形質転換体のペリプラズムおよび細胞質内に存在す
る場合は、細胞を濾過および遠心により集め、当該細胞
の細胞壁および/または細胞膜を、例えば超音波および
/またはライソザイムで処理して、細胞破片を得る。該
細胞破片を適当な水溶液(例えば、8M尿素水溶液、6
Mグアニジウム塩水溶液)に溶解する。新規CCアシラ
ーゼは、該水溶液から先に例示したような常法により精
製することができる。
【0033】本発明は更に、式:
【0034】
【化3】
【0035】(式中、R1 はアセトキシ、ヒドロキシま
たは水素を示す。R2 はカルボン酸アシルを示す。)で
示される化合物(II)またはその塩を、本発明の新規CC
アシラーゼをコードするDNAを含む発現ベクターで形
質転換された微生物の培養物またはその処理物と接触さ
せて、式:
【0036】
【化4】
【0037】(式中、R1 は前記と同意義である。)で
示される化合物(I) またはその塩の製造方法を提供する
ものである。
【0038】R2 で示されるカルボキン酸アシルとして
は、脂肪族、芳香族または複素環カルボン酸アシルが挙
げられ、その適切な例としては、アミノ基、カルボキシ
基、C1−C6のアルカノイルアミノ基、ベンズアミド
基およびチエニル基等からなる群から選択される1つも
しくは2つの適当な置換基を有していてもよいC1−C
6のアルカノイルが挙げられる。
【0039】化合物(I)および化合物(II)の適当な
塩としては、アルカリ金属塩(例えば、ナトリウム塩、
カリウム塩、リチウム塩)が挙げられる。
【0040】CCアシラーゼ活性が通常形質転換細胞内
に存在するなら、培養物を処理して得られる物質(以
下、処理物という)としては、以下のものが例示され
る。
【0041】(1)生細胞;濾過または遠心等の常法に
て培養物から分離される。 (2)乾燥細胞;上記(1) の生細胞を凍結乾燥または真
空乾燥等の常法により乾燥させることにより得られる。 (3)無細胞抽出物;上記(1) の生細胞または上記(2)
の乾燥細胞を常法(例えば、有機溶媒を用いた細胞の自
己消化、アルミナ、海砂などを用いた細胞の粉砕、また
は超音波にて細胞を処理すること)により破壊すること
により得られる。 (4)酵素溶液;上記(3) の無細胞抽出物を常法(例え
ば、カラムクロマトグラフィー)により精製または部分
精製することによって得られる。 (5)固定化細胞または酵素;上記(1) もしくは(2) の
細胞または上記(4) の酵素を常法(例えば、アクリルア
ミド、グラスビーズ、イオン交換樹脂などを用いた方
法)により固定化することにより調製される。
【0042】本発明の化合物(II)を酵素と接触させる
ことからなる反応は、水または緩衝液のような水性媒質
中で実施することができる。即ち、通常、化合物(II)
を含む水または緩衝液のような水性媒質中に、培養物ま
たはその処理物を溶解または懸濁することによって行わ
れる。
【0043】該反応混液の好適なpH、化合物(II)の
濃度、反応時間および反応温度は、用いられる培養物ま
たはその処理物の性質によって変わりうる。一般に、該
反応はpH6〜10、好ましくはpH7〜9、5〜40
℃、好ましくは5〜37℃で0.5〜50時間実施され
る。
【0044】反応混液中、基質としての化合物(II)の
濃度は、1〜100mg/mlの範囲で好適に選択する
ことができる。
【0045】このようにして製造された化合物(I)
は、上記反応混液から慣用の方法で精製、単離される。
【0046】以下の実施例において、プラスミド、制限
酵素のような酵素、T4DNAリガーゼ、及び他の物質
は市販のものであり、常法により使用された。DNAの
クローニング、宿主細胞の形質転換、形質転換体の培
養、該培養物からの新規CCアシラーゼの採取などに用
いられた操作は、当業者によく知られているものである
か、もしくは文献から採用できるものである。
【0047】
【実施例・実験例】以下の実施例は、本発明を説明する
ことを目的として挙げられているものであり、本発明は
これらにより何ら限定されるものではない。
【0048】実施例1 オリゴデオキシリボヌクレオ
チドSN−6の合成 DNAオリゴマーSN−6(5’GGTCGCCTAT
AGCGTCACGCATGCCTTCATG 3’)
を381A型DNA合成機(アプライドバイオシステム
ズ社製)を用いて合成した。そのDNAを、CPG(co
ntrolled poreglass)ポリマー支持体から28%アンモ
ニア水で遊離し、その後60℃で9時間加熱することに
より全保護基を除去した。その反応混合物を真空下で減
圧留去し、残渣をTE緩衝液〔10mMトリス塩酸(p
H7.4)−1mM EDTA〕200μlに溶解し
た。得られた粗DNA溶液を、逆相HPLC〔カラム;
COSMOSIL C18, 4.6 mm ×150 mm(ナカライテスク)、
溶離液;A:0.1M トリエチルアンモニウム酢酸緩
衝液(pH7.2〜7.4)、B:アセトニトリル、グ
ラジェント;開始:A(100%)、終わり:A(60
%)+B(40%)、25分間直線グラジェント、流
速;1.2 ml/min 〕に付した。目的のDNAオリゴマ
ーを含む溶出液を集め、真空下で減圧留去した。精製さ
れたDNAをTE緩衝液200μlに溶解し、使用まで
−20℃で保存した。
【0049】次表1、2、3および4に挙げるその他全
てのDNAオリゴマーを、上述と同様の方法で合成、精
製した。
【0050】
【表1】
【0051】
【表2】
【0052】
【表3】
【0053】
【表4】
【0054】実施例2 trpプロモーター制御下での
天然型CCアシラーゼN176の発現ベクターの調製 (1)天然型CCアシラーゼN176のアンピシリン耐
性発現ベクターであるpCC002Aの構築: (i)pCC001Aの構築:プラスミドpCCN17
6−3(1.0μg)〔JOURNAL OF FERMENTATION AND
BIOENGINEERING, Vol. 72, p235 (1991)に、プラスミド
pCCN176−2(これは、常法により E. coli JM1
09 (pCCN176−2)FERM BP−3047か
ら入手可能である)からこのプラスミドを調製する方法
が記載されている〕を、EcoRI及びHindIIIで
消化し、CCアシラーゼN176の全てのコーディング
領域を担持する2.9kbフラグメントをアガロースゲ
ル電気泳動によって単離した。一方、変異型t−PAの
発現ベクターであるpTQiPAΔtrp(1.0μ
g)、〔これは、常法により形質転換体であるco
liHB101−16(pTQiPAΔtrp)FER
M BP−1870から得ることができる。その調製方
法については、欧州特許出願公開明細書第302456
号に記載されている〕をEcoRI及びHindIII で
消化した。得られたtrpプロモーター、t−PAコー
ディング領域の一部分(Cys92からTrp113 )、及
びfdファージセントラルターミネーターの複写配列を
担持する4.3kbDNAを単離した。50mMのトリ
ス塩酸、10mM MgCl2 、10mMジチオスレイ
トール及び1mM ATPからなるライゲーション緩衝
液40μl中、T4DNAリガーゼ(300ユニット、
宝酒造製)の存在下、先に得られた2.9kbのDNA
フラグメントと当該4.3kbのDNAフラグメントを
混合して、16℃、5時間かけて結合させた。該結合物
を用いて、coliJM109を形質転換した。ア
ンピシリン耐性の形質転換体の一つからpCC001A
と命名する所望のプラスミドを取得し、制限酵素マッピ
ングにより、その特性を調べた。
【0055】(ii)pCC002Aの構築 (i) で得られたプラスミドpCC001Aは、trp
ロモーターとアシラーゼ遺伝子との間のt−PA遺伝子
の一部分(Cys92からTrp113 )を含む。この領域
を除去するために、pCC001A(1.0μg)を
laI及びMluIで消化し、得られる6.1kbのD
NAフラグメントを単離した。一方、pCCN176−
3(1μg)をMluIおよびSau3AIで消化し、
アシラーゼのAsp7 からArg71間をコードする18
9bpのDNAを単離した。合成DNAオリゴマー00
2a及び002b(各々0.5nmol、表1参照)
を、T4ポリヌクレオチドキナーゼ(1.5ユニット、
宝酒造製)を用いて、緩衝液(キネーション緩衝液;5
0mMトリス塩酸、10mM MgCl2 、10mMD
TT、1.0mM ATP)中、37℃、1時間でリン
酸化し、該反応混合物を55℃で20分間加熱して酵素
を不活性化させた。その結果得られた混合物を、ライゲ
ーション緩衝液20μl中、T4DNAリガーゼ存在
下、15℃、3時間、先に得られた189bpのSau
3AI/MluIDNAと混合して結合させた。得られ
た結合物に、6.1kb ClaI/MluI DNA
フラグメントを添加し、その混合物を更に追加したT4
DNAリガーゼ(300ユニット)の存在下で4℃、1
6時間インキュベーションした。その結果得られた結合
物を用いて、coliJM109を形質転換した。
これらの形質転換体の一つから、CCアシラーゼN17
6の発現ベクターである所望のプラスミドpCC002
Aを単離して、制限酵素マッピングによりその特性を調
べた。
【0056】(2)カナマイシン耐性CCアシラーゼN
176の発現ベクターであるpCK002の構築 プラスミドpCC002AをDraI(東洋紡績(株)
製)で消化した。その結果得られた混合液をフェノール
で処理して酵素を除去し、エタノールで沈澱させた。回
収されたDNAをライゲーション緩衝液20μlに懸濁
し、リン酸化されたEcoRIリンカー(2μg、ファ
ルマシア製)と混合してT4DNAリガーゼ(300ユ
ニット)とともに4℃で16時間インキュベーションし
た。該反応混合物をフェノールで抽出し、エタノールで
沈澱させた。回収したDNAをEcoRIで消化し、そ
の結果得られたアンピシリン耐性遺伝子を欠失した5.
6kbのDNAをアガロースゲル電気泳動によって単離
した。一方、プラスミドpA097(1μg)〔これ
は、形質転換体coliJM109(pAO97)
FERM BP−3772から常法により得ることがで
きる。〕をEcoRIで消化し、その結果カナマイシン
耐性遺伝子である1.2kbDNAを単離した。ライゲ
ーション緩衝液50μl中、T4DNAリガーゼ(30
0ユニット)を用いて、当該1.2kbのEcoRI
DNAを16℃、2時間反応させ、5.6kbのEco
RI DNAに結合させた。該結合物を用いてco
liJM109を形質転換し、抗生物質マーカーとして
カナマイシン耐性遺伝子を担持する所望のプラスミドp
CK002を得た。
【0057】実施例3 CCアシラーゼN176の高発
現ベクターであるpCK013の構築 (1)pCC013Aの構築 (i)pCC007Aの構築 プラスミドpCC001AをEcoRIおよびMlu
で消化し、その結果得られた6.4kbのDNAフラグ
メントをアガロースゲル電気泳動により単離した。回収
されたDNAを、予めリン酸化しておいた合成DNAオ
リゴマー007a及び007b(各々0.5μg、表1
参照)に、T4DNAリガーゼ(300ユニット)を用
いて16℃、5時間処理し、結合させた。得られた混合
物を用いてcoliJM109を形質転換し、所望
のプラスミドpCC007Aを得た。
【0058】(ii)pCCNt013の構築 プラスミドpCC007A(1.0μg)をClaIと
BamHIで消化し、得られた6.1kbのDNAを5
%ポリアクリルアミドゲル電気泳動により単離した。該
DNAを合成オリゴマー013aと013b(各々0.
5μg、それらの各々はリン酸化されている。表1参
照)に、T4DNAリガーゼ(300ユニット)を用い
て、結合した。該結合混合物を用いてcoliJM
109を形質転換し、所望のプラスミドpCCNt01
3をアンピシリン耐性形質転換体から単離した。
【0059】(iii) pCC013Aの構築 プラスミドpCCNt013をBamHIとMluIで
消化し、その結果得られる6.1kbのDNAを単離し
た。一方、pCC002A(1.0μg)をMluIと
Sau3AIで消化して189bpのDNAフラグメン
トを取得した。得られたDNAをT4DNAリガーゼ
(300ユニット)を用いて、6.1kbのBamHI
MluIのDNAフラグメントに結合し、該結合混合
物を用いてcoliJM109を形質転換した。ア
ンピシリン耐性の形質転換体の一つから、ATリッチな
NH2 末端側DNA配列(天然型CCアシラーゼN17
6のアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列をコードする)
をもつ所望のプラスミドpCC013Aを単離した。
【0060】(2)天然型CCアシラーゼN176のカ
ナマイシン耐性発現ベクターであるpCK013の構築 (i)pΔN176の構築 プラスミドpCK002(1.0μg)をAatII(東
洋紡績(株)製)で消化し、得られたDNAを自己結合
させる為にT4DNAリガーゼ(150ユニット)で処
理した。かかる結合混合物を用いてcoliJM1
09を形質転換し、ユニークなAatII制限酵素切断部
位を担持する所望のプラスミドpΔN176を取得し
た。
【0061】(ii)pCK013の構築 プラスミドpΔN176(1.0μg)をAatIIで消
化し、直線化したDNAを細菌由来のアルカリホスファ
ターゼ(1ユニット、宝酒造製)で、100mMトリス
塩酸緩衝液(pH8.0)中、42℃にて1時間処理し
た。その脱リン酸化されたDNAを単離して、T4DN
Aリガーゼを用いてpCC013A由来の2.5kbの
AatIIDNAに結合した。該結合混合物を用いて
coliJM109を形質転換し、マーカーとしてカナ
マイシン耐性遺伝子を担持する所望のプラスミドpCK
013を取得した。
【0062】実施例4 CCアシラーゼN176をコー
ドするDNAのクンケル法によるポイントミューテーシ
ョン (1)CCアシラーゼN176をコードするDNAのM
13ファージへのサブクローニング (i)mp18VVRの調製 プラスミドpCC013AをEcoRVで消化し、CC
アシラーゼN176のIle92からAsp315 までをコ
ードする795bpのDNAを単離した。該DNAを、
HincIIで消化されたM13mp18に、T4DNA
リガーゼを用いて連結し、該結合混合物を用いて
oliJM109を形質転換した。プラークのうちの一
つから、上記アシラーゼDNA部分がM13のoriを
含むDNAを伴って逆方向に挿入された所望のRF D
NAmp18VVRを単離し、制限酵素マッピングによ
りその特性を調べた。該RF DNAmp18VVRか
ら調製されたファージ溶液を使用するまで4℃で保存し
た。
【0063】上述と同様の方法で、pCC013A由来
の1162bpのHpaI/Eco47III DNAと
HincIIで消化した7250bpのM13mp18か
ら、RF DNAmp18p183を調製した。
【0064】(ii)一本鎖U−mp18VVR−SSの
調製(Kunkel, T.A. et al., MethodsEnzyml. 154, 367
参照) :coliCJ236(dut−,ung
−,F’)(バイオ・ラッドラボラトリーズ製)のシン
グルコロニーをクロラムフェニコール(30μg/m
l)を含有する2XTYブロス2ml中で37℃、16
時間培養した。細胞(0.1ml)を30μg/mlク
ロラムフェニコールを含有する新鮮な2XTYブロス
(50ml)に移し、37℃で培養を継続した。600
nmでの吸光度が0.3に達したとき、該培養物にmp
18VVRのファージ溶液(MOI<0.2)を添加
し、さらに5時間培養を続けた。得られた培養物を4
℃、17,000×gで15分間遠心をした後、再び上
清を遠心した。その結果得られた上清(30ml)を室
温下、30分間RNase(150μg/ml,シグマ
社製)で処理し、7.5mlのPEG溶液(3.5M
NH4 OAcの20%ポリエチレングリコール8,00
0溶液)を添加した。遠心(17,000×g,15
分,4℃)後、残渣を300mM NaCl,100m
Mトリス塩酸(pH8.0)及び0.1mM EDTA
からなる緩衝液200μlに懸濁した。得られた溶液を
フェノール200μlおよびフェノール/CHCl
3 (1/1)200μlで抽出し、続いてCHCl
3 (200μl)で2回洗浄した。該溶液に、7.5M
NH 4 OAc(100μl)とエタノール(600μ
l)を添加してファージDNAを沈澱させた。該DNA
を遠心により回収し、氷冷90%エタノール700μl
で洗浄し、真空下で乾燥させた。精製された1本鎖U−
DNA(U−mp18VVR−SS)をTE緩衝液20
μlで懸濁し、使用するまで4℃で保存した。クンケル
の変異方法に用いる他の1本鎖U−DNAもまた上述と
同様の方法で調製した。
【0065】(2)変異型CCアシラーゼC305Sを
コードするRF DNAの調製 (i)オリゴデオキシリボヌクレオチドのリン酸化 DNAオリゴマーSN−6(1.84μg,約167p
mol)を、T4ポリヌクレオチドキナーゼ(4.5ユ
ニット、宝酒造製)を用いて、50mMトリス塩酸(p
H7.8)、10mM MgCl2 、20mMジチオス
レイトール(DTT)、1mM ATP及び50μg/
mlウシ血清アルブミン(BSA)からなるライゲーシ
ョン緩衝液30μl中で、37℃で1時間リン酸化し
た。
【0066】(ii)アニーリング反応 10mMトリス塩酸(pH8.0)、6mM MgCl
2 及び40mM NaClからなる緩衝液9μl中にお
いて、(i) でリン酸化されたオリゴマー(1μl、約
5.6pmol)を鋳型U−mp18VVR−SS
(0.10pmol、約250ng)と混合した。該混
合物を70℃、5分間加熱して、その後40分かけて3
0℃で冷却して0℃で静置した。
【0067】(iii)in vitroでの2重鎖DNA
の合成 得られたアニーリング溶液(10μl)を、合成緩衝液
〔200mMトリス・塩酸(pH8.0)−40mM
MgCl2 〕1μl、5mM dNTP(dATP,d
CTP,dGTPおよびdTTP)1μl、T4DNA
リガーゼ(300ユニット、宝酒造製)およびT4DN
Aポリメラーゼ(10ユニット、ファルマシア)と混合
した。該混合物を氷上で5分間、25℃で5分間、さら
に37℃で90分間、順次インキューベーションした。
10mMトリス塩酸(pH8.0)および10mM E
DTAからなる緩衝液90μlを添加して、反応を停止
させた。
【0068】(iv)coliJM109の形質転換 (iii)で得られた合成DNA溶液(3μl)をco
liJM109のコンピテントセル(200μl)に添
加し、該セルを氷上で30分間インキュベーションし
て、形質転換体を得た。一方、coliJM109
のシングルコロニーをLブロス(2ml)中で16時間
培養した。該培養物(0.1ml)を新鮮なLブロス
(2ml)に移し、更に2時間培養して、インディケー
ターセルを取得した。形質転換された細胞(200μ
l)に、インディケーターセル(200μl)を加え
て、それらを55℃で前加熱したH−Top寒天(1%
バクトトリプトン、0.8%NaCl、0.8%寒天)
3mlと混合した。該細胞−寒天混合物をHプレート
(1%バクトトリプトン、0.5% NaCl、1.5
%寒天)上に延展し、そのプレートを37℃で16時間
培養した。
【0069】(v)形質転換体から得られたRF DN
Aの特性coliJM109のシングルコロニーを2XTY
ブロス(1.6%バクトトリプトン、1%酵母抽出物、
0.5%NaCl)2ml中で16時間培養した。該培
養物(0.1ml)を新しい2XTYブロス(2ml)
に移し、更に2時間培養した。ステップ(iv)で調製さ
れたプレートのプラークを竹製爪楊枝(15cm)で拾
い、爪楊枝を直ちに先に培養した2XTYブロスに移し
た。培養を37℃、5〜6時間続けた。該培養物1ml
から、室温下15秒、10,000rpmで遠心するこ
とにより、細胞を収集し、上清(次の実験でのRF D
NAの大量調製のために使用されるファージ溶液)につ
いては、使用するまで4℃で保存した。該細胞をGTE
緩衝液〔50mMグルコース、25mMトリス塩酸(p
H8.0)、25mM EDTA〕100μlに懸濁
し、アルカリ−SDS溶液(0.2N NaOH、1%
SDS)200μlと緩やかに混合し、そしてボルテッ
クスTMミキサーを用いて高塩緩衝液(3M KOA
c、3M AcOH)150μlと激しく混合した。得
られた混合液を室温で5分間、10,000rpmで遠
心した。得られた上清(400μl)をイソプロピルア
ルコール300μlで処理し、10,000rpmで5
分間遠心した。その上層部(300μl)を分離し、エ
タノール600μlと混合した。その混液を遠心(1
0,000rpm、5分)した後、得られた沈澱を氷冷
70%エタノール500μlで洗浄し、真空下で乾燥
し、RNase(シグマ社製)1μg/mlを含有する
TE緩衝液50μlに懸濁し、RF DNA mp18
VVRC305S溶液を得た。該RFDNA溶液の一部
分(10μl)をSphIを用いた制限エンドヌクレア
ーゼマッピングに用いた。これは、変異を調べるため、
DNAオリゴマーSN−6がその配列中にSphI認識
部位を計画的に含んでいることによる。
【0070】(3)変異型CCアシラーゼM269Yを
コードするRF DNAの調製 変異型RF DNA(p183M269Yと命名)を上
述の方法と同様にmp18p183の一本鎖U−DNA
(鋳型として)、及びプライマーZ61(ATGCTG
CGCATAATAGCCAGGGATTTCG)から
調製した。
【0071】(4)変異型CCアシラーゼA271Yを
コードするRF DNAの調製 変異型RF DNA(mp18VVRA271Yと命
名)を上述の方法と同様にmp18VVRと合成DNA
オリゴマーSN−16から調製した。
【0072】(5)mp18VVR(SN−21)と名
付けられたRF DNAの調製 Gly238 Ser239 BamHIサイレント変異体を
コードする変異RFDNAを上述の方法と同様の方法に
て、mp18VVRと合成DNAオリゴマーSN−21
から調製した。
【0073】実施例5 発現ベクターの構築 (1)アンピシリン耐性型発現ベクターの構築 (i)pYSC305Sの構築 実施例4で得られたRF DNA(mp18VVRC3
05Sと表示)(10μg)をBstBI(5ユニッ
ト、ニューイングランドバイオラボラトリーズ製)およ
XhoI(5ユニット、東洋紡績(株)製)で消化し
た。得られた162bpのDNAフラグメントを5%の
PAGEにかけて消化混合物から単離した。一方、pC
C013A(10μg)をXhoI(5ユニット)およ
NcoI(5ユニット、東洋紡績(株)製)で消化
し、128bpのDNAフラグメントを単離した。さら
に、pCC013A(10μg)をBstBI(5ユニ
ット)及びNcoI(5ユニット)で消化し、大型DN
Aを単離した。162bpのBstBI/XhoI D
NA、128bpのXhoI/NcoI DNAおよび
6kbのBstBI/NcoI DNAをライゲーショ
ン緩衝液20μl中で4℃、16時間条件で連結した。
該ライゲーション混合物を用いてcoliJM10
9を形質転換した。アンピシリン耐性の形質転換体の一
つから、pYSC305Sと称する所望のプラスミドを
単離し、制限エンドヌクレアーゼ消化により、その特性
を調べた。
【0074】(ii)pYSA271Yの構築 変異型CCアシラーゼA271Yの発現ベクター(pY
SA271Y)を、上述と同様の方法でmp18VVR
A271Yから調製した。
【0075】(iii)pEX21の構築 Gly238 /Ser239 BamHIサイレント変異体
の発現ベクター(pEX21)を、上述と同様の方法で
mp18VVR(SN−21)から調製した。
【0076】(2)カナマイシン耐性型発現ベクターの
構築 (i)pCK305の構築 プラスミドpYSC305SをMluI及びNcoIで
消化し、872bpのDNAを単離した。一方、pCK
013をNcoI及びMluIで消化し、大型DNA
(約6.0kb)を単離した。得られたDNAをT4D
NAリガーゼを用いて先に得られた872bpのDNA
フラグメントと連結し、マーカーとしてカナマイシン耐
性遺伝子を担持する所望のプラスミドpCK305を得
た。
【0077】(ii)pCK271Yの構築 プラスミドpCK271Yをまた、上述と同様の方法
で、pCK013およびpYSA271Yから調製し
た。
【0078】(iii)pCK305Bの構築 pCK305をBstBI及びMluIで消化して得ら
れる大型DNAと、pEX21をBstBI及びMlu
Iで消化して得られる小型DNAとからプラスミドpC
K305Bを調製した。
【0079】(iv)pCK269Yの構築 p183M269YをMluIとNcoIで消化した。
小型DNAフラグメント(872bp)を単離し、それ
を、MluIとNcoIを用いて消化したpCK013
の大型DNA(5.9kb)に、ライゲーション緩衝液
20μl〔50mMトリス塩酸(pH7.8)、10m
M MgCl2 、20mMジチオスレイトール、1mM
ATP、50μg/ml BSA〕中で連結した。該
結合混合物を用いてcoliJM109を形質転換
した。これらの形質転換体の一つから、所望のプラスミ
ドpCK269Yを単離し、制限エンドヌクレアーゼ消
化により、その特性を調べた。
【0080】実施例6 M269YC305S二重変異
型アシラーゼの発現ベクターであるp269Y305S
の構築 (1)pCK305のBstBI/NcoI DNAの
変異化と増幅 変異化と増幅は、ザイモリアクターAB−180(AT
TO Co.Ltd.)を使用して、Taq緩衝液〔5
0mM KCl、50mMトリス塩酸(pH8.3)、
1.5mM MgCl2 、0.001%(w/v)ゼラ
チン〕中、Taqポリメラーゼ(宝酒造製)を用いて行
った。プライマーSN−57(CATCGCGTCTT
CGAAATCCCTGGCTATTATGCGCAG
CAT)およびSN−42(ATAACCGGGCCA
TGGCGAGTCTCGACG)(各々125pmo
l)を、dNTP(各200μmol)とTaqポリメ
ラーゼ(1.25U)を含むTaq緩衝液(100μ
l)中でpCK305(0.5fmol)と混合した。
該混合液の液表面を、鉱油を数滴添加することによって
被覆した。該混合液を、初期変性(98℃、2分間)、
次に30サイクルの増幅(98℃2分間、48℃2分
間、72℃3分間)、最終延長(72℃、8分間)処理
に供した。得られた混合液の水層をクロロホルムで洗浄
し、フェノールで抽出してエタノールで処理した。遠心
後、回収されたDNAをBstI及びNcoIで消化し
た。その結果得られた290bpのDNAを単離し、そ
れをpCK305をBstI及びNcoI消化すること
によって得られる大型DNAフラグメントに結合した。
該結合混合物を用いて、coliJM109を形質
転換した。その形質転換体の一つから、所望のプラスミ
ドp269Y305Sを単離し、制限エンドヌクレアー
ゼ消化により、その特性を調べた(図1)。
【0081】実施例7 変異型アシラーゼのDNA配列 (1)pYSC305Sの配列 (i)M13mp18へのサブクローニング:pYSC
305SをEcoRVとSmaIで消化し、変異型CC
アシラーゼC305SのGly268 からAsp315 まで
をコードする265bpのDNAを単離した。一方、M
13mp18をSmaIで消化し、直線化DNAを単離
した。当該DNAを先に得られた256bpのSma
EcoRV DNAに、T4DNAリガーゼを用いて
結合し、該結合混合物を用いてcoliJM103
を形質転換した。プラークの一つから、変異型アシラー
ゼDNA部分(NH2 からCOOHまで)をM13ファ
ージのoriを含む部分を伴って、右回り方向に担持す
る、所望の一本鎖ファージDNAmp18C305S
(+)を得た。
【0082】(ii)M13mp19へのサブクローニン
グ (i) で得られたmp18C305S(+)からRF D
NAを調製し、EcoRI及びHindIII で消化し
て、316bpのDNAフラグメントを取得した。一
方、M13mp19をEcoRI及びHindIII で消
化し、大型DNA(約7.2kb)を単離した。当該D
NAをT4DNAリガーゼを用いて先に得られた316
bpのDNAに結合し、該結合混合物を用いてco
liJM103を形質転換した。プラークの一つから、
変異型アシラーゼDNA部分をmp18C305S
(+)に対して逆方向に担持する、所望の一本鎖ファー
ジDNAmp19C305S(−)を得た。
【0083】(iii)シークエンス反応 1本鎖ファージDNAmp18C305S(+)および
mp19C305S(−)のDNA配列をT7ポリメラ
ーゼ(Sequenase TM)を用いてモデル370ADNAシ
ークエンサー(アプライドバイオシステムズ製)にて、
決定した。両鎖のヌクレオチド配列を測定したところ、
pYSC305SのDNA配列は、予想されたものと一
致することが確認された(表3参照)。pYSA271
YのDNA配列を上述と類似の方法で測定したところ、
予想されたものと一致することがわかった。
【0084】(3)pCK269Y、p269Y305
S及びpCK305Bのヌクレオチド配列決定 pCK269Y、p269Y305S及びpCK305
Bのヌクレオチド配列を直接、373A型DNAシーク
エンサー(アプライドバイオシステムズ社製)を用い
て、Dye DeoxyTM法にて決定した。DNAオリ
ゴマーSN63(GATGCGCTGCTGAAGGC
GATG、コーディング鎖:ヌクレオチドNo.671
−691)およびSN64(GGGCTCGAAATC
GTTGCCGAA、逆鎖:ヌクレオチド鎖No.99
8−1018)をプライマーに用いた。決定された配列
は予想されたものと一致していた。
【0085】実施例8 組換えcoliの培養 (1)coliJM109/pYSC305Sの培
coliJM109をpYSC305S(1ml)
で形質転換して調製された形質転換体であるcol
JM109/pYSC305Sのグリセロールストッ
クを、50μg/mlアンピシリン含有100mlLブ
ロス(1%バクトトリプトン、0.5%酵母抽出物、
0.5% NaCl、pH7.4)に移し、該混合物を
30℃で8時間培養した。該培養物(0.2ml)を5
0μg/mlアンピシリン含有20mlMSブロス
(1.2%バクトトリプトン、2.4%酵母抽出物、
1.25%グリセロール、0.11%ロイシン、0.1
1%プロリン、0.11%イソロイシン、1.25%
2 HPO4 、0.38% KH2PO4 、50μg/
mlチアミン・塩酸、2mM MgSO4 ・7H2 O、
0.2mM CaCl2 ・2H2 O、0.05mM F
eSO4 ・7H2 O)に添加し、該混合液を30℃で1
6時間培養した。得られた培養物(3.4ml)を、1
%のグリセロールと25μg/mlのアンピシリンを含
む2%M9CAブロス(2%カザミノ酸、1.52%
Na2 HPO4 ・12H2 O、0.3% KH 2
4 、0.1% NH4 Cl、0.05% NaCl、
2mM MgSO4・7H2 O、0.2mM CaCl
2 ・2H2 O、50μg/mlチアミン・塩酸、pH
7.2)に添加し、その混合液を20℃で激しく振盪し
ながら培養した(350−400rpm/min)。8
時間目に、3−インドールアクリル酸を最終濃度が20
μg/mlになるように該培養物に添加し、更に40時
間培養を継続した。得られた培養物のうち20mlを4
℃下、7,000rpmで5分間遠心することにより、
細胞を集め、それをTE緩衝液(pH8.0)20ml
に懸濁し、超音波処理により破砕した。該破砕物を、4
℃、15,000rpmで20分間遠心して不溶解物質
を除去した。得られた上清は4℃で保存され、CCアシ
ラーゼ活性およびGL−7ACAアシラーゼ活性を測定
するために、及び精製された変異型CCアシラーゼC3
05Sを調製するために使用された。
【0086】アンピシリン耐性発現ベクターpCC00
2A、pCC013A、pYSC305S、pYSA2
71YおよびpEX21をそれぞれ担持する他の全ての
coliを上述と同様な方法で培養した。カナマイ
シン耐性発現ベクターpCK013、pCK305B、
pCK305、pCK269Y、pCK271Y及びp
269Y305Sをそれぞれ担持するその他のco
liを上述と同様の方法で、アンピシリンの代わりにカ
ナマイシンを含有した対応ブロス中で培養した。
【0087】実施例9 アシラーゼの精製と特性 (1)CCアシラーゼN176の精製 培養物20mlから得られたcoliJM109/
pCC013Aの破砕物(20ml)に、硫酸アンモニ
ウム(4.18g、最終濃度:35%飽和)を添加し、
該混合物を室温で20分間攪拌した。得られた混合液を
遠心(20℃、15,000rpm、20分間)し、上
清を集めて硫酸アンモニウム処理した(5.56g、最
終濃度:75%飽和)。遠心(20℃、15,000r
pm、20分間)により沈澱物を集め、それを100m
Mトリス塩酸(pH9.0)5mlに溶解した。得られ
た溶液を4℃で100mMトリス塩酸緩衝液各々4Lに
対して2回の透析を行った。得られた透析物をMill
ex−HVTM(0.45μm、ミリポア)で濾過し、高
速液体クロマトグラフィーにより精製した〔カラム;T
SKgelTM DEAE TOYOPEARL−5PW
(東ソー)、溶離液;A:20mMトリス塩酸(pH
8.0)、B:0.5M NaCl−トリス塩酸(pH
8.0)、グラジェント;始め:A(80%)+B(2
0%)、終わり(30分後):A(50%)+B(50
%)、流速;1.0ml/min〕。約0.16M濃度
のNaCl溶液と共に溶出したメインピークを集め、ト
リス塩酸(pH9.0)4Lに対して透析して、純粋な
天然型組換えCCアシラーゼN176を得た。
【0088】精製されたアシラーゼを逆相HPLCカラ
ム〔COSMOSIL4.6mm×50mm(ナカライ
テスク製)、溶離液;A:0.05%トリフルオロ酢酸
(TFA)、B:60%アセトニトリル含有0.05%
TFA、グラジェント;開始:A(40%)+B(60
%)、終わり(20分後):A(0%)+B(100
%)〕、およびドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリル
アミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)で分析した。
そのようにして得られたアシラーゼの純度は、HPLC
及びSDS−PAGEにより、約95%であった。他の
変異型アシラーゼについて、上述と同様の方法で精製、
分析を行った。
【0089】(2)比活性の測定 (i)GL−7ACAアシラーゼ活性 37℃で10分間プレインキュベーションしたGL−7
ACA溶液200μl〔0.15Mトリス塩酸(pH
8.7)中に10mg/ml、pHは1N NaOHで
8.7に再調整された〕に、サンプルアシラーゼ20μ
lを添加して、該混合液を37℃で5分間インキュベー
ションした。これに、5%酢酸を220μl添加するこ
とにより反応を止めた。得られた混合液を遠心し(室温
下、10,000rpmで5分間)、上清を用いて7A
CAの生成を測定した。HPLC条件:カラム;TSK
gel ODS−80 TMCTR 4.4mm×10
0mm(東ソー製)、溶離液;5%(w/v)酢酸アン
モニウム含有3%(v/v)アセトニトリル、流速;
1.0ml/min、注入量;10μl、検出器254
nm1ユニットを、37℃で1分間にGL−7ACAか
ら1.0μmolの7ACAを生成しうる活性として定
義した。
【0090】(ii)CCアシラーゼ活性 37℃で10分間プレインキュベーションしたCCアシ
ラーゼ溶液200μl〔10mg/mlセファロスポリ
ンCナトリウム塩を含む0.15Mトリス塩酸(pH
8.7)溶液、pHは1N NaOHで8.7に再調整
された〕に、サンプルアシラーゼ20μlを添加して、
該混合液を37℃で30分間インキュベーションした。
これに、5%酢酸を220μl添加することにより反応
を止めた。得られた混合液を遠心し(室温下、10,0
00rpmで5分間)、上清を用いて7ACAの生成を
測定した。 HPLC条件:カラム;TSKgel ODS−80
TMCTR 4.4mm×100mm(東ソー製)、溶
離液;20mM,テトラブチルアンモニウムブロマイド
−10%(w/v)アセトニトリル、流速;1.0ml
/min、注入量;20μl、検出器254nm 1ユニットを、37℃下で1分間にセファロスポリンC
ナトリウム塩から1.0μmolの7ACAを生成しう
る活性として定義した。変異型アシラーゼの比活性は、
上述の方法に従って測定した。
【0091】(3)天然型および変異型アシラーゼのア
ミノ末端配列の決定 (i)CCアシラーゼN176の両鎖の単離:精製され
たCCアシラーゼN176を逆相HPLCに付した〔カ
ラム;COSMOSIL 5C4(4.6mm×35m
m,ナカライテスク製)、溶離液;0.05%TFA
中、アセトニトリル初濃度36%から20分で60%の
直線グラジェント、流速;1.0ml/min〕。CC
アシラーゼN176のβ鎖およびα鎖は、それぞれ約4
8%および約51%濃度のアセトニトリルと共に溶出さ
れた。各溶出液を集め、凍結乾燥して、アシラーゼのα
(β)鎖を得た。
【0092】(ii)アミノ末端配列の決定 当該α(β)鎖のアミノ末端配列を、気相シークエンサ
ー470A(アプライドバイオシステムズ社製)で決定
し、予想されたものと一致することを確認した。
【0093】実施例10 (1)coliJM109/p269Y305Sの
培養coliJM109/p269Y305Sのグリセ
ロールストックを50μg/mlのカナマイシンを含有
するLブロス100mlに加え、30℃で8時間培養し
た。得られた培養物の一部(3.75ml)をN−3ブ
ロス(成分:5%大豆加水分解物,1%グリセロール,
0.608% Na2 HPO4 ,0.7% KH2 PO
4 ,0.7% K2 HPO4 ,0.12%(NH4 2
SO4 ,0.02% NH4 Cl,0.0011% F
eSO4 ,0.096% MgSO4 ,0.0025%
カナマイシン,0.0011% CaCl2 ,0.0
0028% MnSO4 ・nH2 O,0.00028%
AlCl3 ・6H2 O,0.00011% CoCl
2 ・6H2 O,0.000055% ZnSO4 ・7H
2 O,0.000055% NaMoO4 ・2H2 O,
0.000028%CuSO4 ・7H2 O,0.000
014% H3 BO4 )25mlに添加した。培養は2
0〜22℃で行った。16時間後に、グリセロール及び
IAAをそれぞれ最終濃度が1%および20μg/ml
となるように該培養物に添加し、24時間後に再びグリ
セロールを最終濃度1%になるように該培養物に添加し
た。30時間後に培養物の吸光度A600が15.0に
達したとき、細胞を遠心(4℃,7000rpm ,10分
間)により採取し、超音波処理により破砕した。それを
遠心した後、上清を集め、そのGL−7ACAアシラー
ゼ活性を測定した(41.1ユニット/ml培養物)。
【0094】(2)変異型CCアシラーゼM269Y/
C305Sの精製coliJM109/p269Y305Sを上述と
同様の方法で5L容のジャーファーメンター中で培養し
た。2Lの培養物から得られた細胞を20mMトリス塩
酸(pH8.0)1.5L中で懸濁し、マントン−ゴー
リンにより破砕した(500kg/cm,2,3回)。
それを遠心(4℃、7,000rpm 、30分間)した
後、上清をPolymin P(最終濃度0.01%)
で処理した。この混合物を7,000rpm で30分間、
更に15,000rpm で20分間連続的に遠心した。上
清を0.45μm MF膜を用いて濾過滅菌し、粗アシ
ラーゼ20.1g(HPLC分析)を得た。該アシラー
ゼ(4.8g)をQAE−トーヨーパール550Cカラ
ムクロマトグラフィー〔条件:カラム;5.0×13c
m(260ml),開始平衡溶液;20mMトリス塩酸
(pH8.0),溶出液;0.5M NaCl−20m
Mトリス塩酸(pH8.0),流速;10ml/mi
n〕により精製して、3.45gの精製された変異型C
CアシラーゼM269Y/C305Sを得た。精製され
たM269Y/C305Sの比活性は、実施例9−(2)
で述べた方法に従って測定されたCCアシラーゼと同様
に2.14ユニット/mgであった。
【0095】(3)天然型CCアシラーゼ及び変異型C
CアシラーゼC305Sの発現の比較coliHB101を常法によりプラスミドpCK
305またはpCK013で形質転換することによって
調製されたcoliHB101/pCK305(ま
たはHB101/pCK013)のグリセロールストッ
ク溶液(1ml)を、50μg/mlのカナマイシンを
含有するLブロス20mlに移し、該混合物を30℃で
8時間培養した。該培養物(0.2ml)を50μg/
mlのカナマイシンを含有するMSブロス(成分:1.
2%バクトトリプトン,2.4%酵母抽出物,1.25
%グリセロール,0.11%ロイシン,0.11%プロ
リン,0.11%イソロイシン,1.25% K2 HP
4 ,0.38% KH2PO4 ,50μg/mlチア
ミン塩酸,2mM MgSO4 ・7H2 O,0.2mM
CaCl2 ・2H2 O,0.05mM FeSO4
7H2 O)20mlに添加し、30℃で16時間培養し
た。得られた培養物(6ml)を1%グリセロールおよ
び25μg/mlカナマイシンを含有する2%のM9C
Aブロス(成分:2%カザミノ酸,1.52% Na2
HPO4 ・12H2 O,0.3% KH2 PO4 ,0.
1% NH4 Cl,0.05% NaCl,2mM M
gSO 4 ・7H2 O,0.2mM CaCl2 ・2H2
O,50μg/mlチアミン塩酸,pH7.2)に添加
し、該混合物を30℃で激しく攪拌しながら(350〜
400rpm/min)培養した。6時間後、該培養物
に3−インドールアクリル酸(IAA)を最終濃度が4
0μg/mlとなるように添加し、培養を更に40時間
続けた。細胞を4℃、14,000rpm で15分間遠心
することにより採取し、TE緩衝液(pH8.0)40
mlに再懸濁して超音波処理により破砕した。該破砕物
を4℃、14,000rpm で20分間遠心して上清
(“スープ”画分と称する)を得た。残渣を100mM
トリス塩酸(pH8.0),1mM EDTAおよび8
M尿素を含む緩衝液40mlに懸濁し、超音波処理によ
り破砕した。それを遠心して不溶解物を除去した後、上
清を回収した(“ppt”画分と称する)。変異型CC
アシラーゼC305Sおよび天然型CCアシラーゼN1
76それぞれの“スープ”画分と“ppt”画分を15
% SDS−PAGEにより分析した。細胞の不溶解性
前駆体蛋白質は、天然型CCアシラーゼから変異型CC
アシラーゼC305Sへの変異により非常に減少した。
結果は、逆相HPLCで測定した“スープ”中の成熟ア
シラーゼ(天然型CCアシラーゼまたは変異型CCアシ
ラーゼC305S)の量と一致していた(表5)。
【0096】
【表5】
【0097】実施例11 〔カセット変異による変異型
CCアシラーゼM269(269位のMetを他のアミ
ノ酸で置換したもの)の調製〕 pCKH274QのBstBI位とNheI位の間のD
NAを、対応する変異アミノ酸配列をコードする合成D
NAオリゴマーで置換することによって、変異CCアシ
ラーゼM269YおよびM269T以外のM269変異
体を調製した(カセット変異法)。
【0098】(1)pCKH274Qの調製 (i)mp18p183(H274Q)の調製 実施例4に記載したクンケル法により、His274 〜A
la276 のDNA配列にNheI部位を担持する変異型
RF DNA mp18p183(H274Q)を、m
p18p183および合成DNAオリゴマーZ84(3
0−mer,5’−CCGGTCGCAGGCTAGC
TGATGCTGCGCATA)とから調製した。
【0099】(ii)pCKH274Qの調製 実施例5−(2)− (iv) の記載と同様の方法で、pCK
013のMluIとNcoIとの間の小型DNAを、m
p18p183(H274Q)の対応するDNAで置換
することによって、pCKH274Qを調製した。
【0100】(2)M269Vの調製 実施例2−(1)−(ii)と同様の方法で、合成オリゴマー
であるSO−M269Vc(5’−CGAAATCCC
AGGCGTCTATGCGCAGCATCAT)およ
びSO−M269Vr(5’−CTAGATGATGC
TGCGCATAGACGCCTGGGATTT)をT
4ポリヌクレオチドキナーゼでリン酸化した。得られた
オリゴマーをBstBIおよびNheIで消化したpC
KH274Qの大型DNAに結合し、所望の発現ベクタ
ーpCKM269Vを得た。変異型CCアシラーゼの他
の発現ベクターであるM269E,M269L,M26
9W,M269S,M269N,M269A,M269
I,M269K,M269H,M269P,M269
R,M269C,M269D,M269G,M269Q
及びM269Fを、pCKH274Q及び表6および表
7に挙げる合成オリゴマーから、上述と同様の方法にて
調製した。M269E変異体用の発現ベクターpCKM
269E、及びM269L変異体用の発現ベクターpC
KM269Lを、オリゴマーであるSO−M269E
(コーディング鎖)とSO−M269L(逆鎖)のペア
BstBI及びNheIで消化した大型DNAに挿入
することによって調製した。得られた該ベクターをSm
I制限酵素部位を持つ(pCKM269E)か持たな
い(pCKM269L)かによって区別した。
【0101】
【表6】
【0102】
【表7】
【0103】(3)pCKM269Tの調製 実施例4の記載と同様の方法で、pCK013のMlu
I位とNcoI位との間の小型DNAを、クンケル法に
より合成オリゴマーZ63(24mer,5’−GCT
GCGCATAGGTACCCGGGATTT)とmp
18p183とから構築されたmp18p183(M2
69T)の対応するDNAで置換することによって、p
CKM269Tを調製した。
【0104】(4)pCKM269Fの調製 実施例2−(1)−(ii)と同様の方法で、合成オリゴマー
SO−M269Fc(5’−CGAAATCCCTGG
TTTCTATGCGCAGCATCAT)およびSO
−M269Fr(5’−CTAGATGATGCTGC
GCATAGAAACCAGGGATTT)をT4ポリ
ヌクレオチドキナーゼでリン酸化した。得られたオリゴ
マーをBstBIおよびNheIで消化したpCKH2
74Qの大型DNAに結合し、所望の発現ベクターpC
KM269Fを得た。
【0105】(5)pCKM269Lの調製 実施例2−(1)−(ii)と同様の方法で、合成オリゴマー
SO−M269E(コーディング鎖,5’−CGAGA
TCCCGGGCGAGTATGCGCAGCATCA
T)およびSO−M269L(逆鎖,5’−CTAGA
TGATGCTGCGCATATAAGCCTGGGA
TCT)をT4ポリヌクレオチドキナーゼでリン酸化し
た。得られたオリゴマーをBstBIおよびNheIで
消化したpCKH274Qの大型DNAに結合した。該
ライゲーション混合物を用いてcoliJM109
を形質転換した。得られた形質転換体から、SmaI部
位を一つ持ち、かつBstBI部位およびNheI部位
のどちらも持たないプラスミドが所望のプラスミドpC
KM269Lであることを確認した。
【0106】(6)M269変異型アシラーゼ発現ベク
ターを担持するcoliJM109の培養coliJM109をpCKM269Y(pCKM
269FまたはpCKM269L)で形質転換した。シ
ングルコロニーを50μg/mlカナマイシン(5m
l)を含有するLブロス中で、37℃で16時間培養し
た。得られた培養物のうちの一部(0.8ml)を80
%のグリセロール水溶液(0.2ml)と混合し、
coliJM109/pCKM269Yのグリセロール
ストックを得た。該coliJM109/pCKM
269Y(pCKM269FまたはpCKM269L)
のストック(1ml)を実施例8に記載と同様の方法で
培養した。
【0107】(7)M269変異型アシラーゼの精製と
特性 M269Y,M269F及びM269Lを、上記で得ら
れたそれぞれ対応する培養細胞の破砕物から、実施例9
−(1)に記載と同様の方法で、精製した。実施例9−(2)
に記載の方法に従って、精製されたM269Y,M26
9FおよびM269Lの比活性を測定した。結果を表8
に記載する。
【0108】
【表8】
【0109】
【発明の効果】本発明によれば、高い酵素活性および高
いプロセッシング効率をもつ変異型セファロスポリンC
アシラーゼ、該酵素を高収率発現する発現系並びに該酵
素の製造方法を提供することができる。
【0110】
【配列表】
配列番号:1 配列の長さ:2325 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:peptide 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mutation 存在位置:305 特徴を決定した方法:S 配列 ATG ACT ATG GCA GCT AAT ACG GAT CGC GCG GTC TTG CAG GCG GCG CTG 48 Met Thr Met Ala Ala Asn Thr Asp Arg Ala Val Leu Gln Ala Ala Leu -1 1 5 10 15 CCG CCG CTT TCC GGC AGC CTC CCC ATT CCC GGA TTG AGC GCG TCG GTC 96 Pro Pro Leu Ser Gly Ser Leu Pro Ile Pro Gly Leu Ser Ala Ser Val 20 25 30 CGC GTC CGG CGC GAT GCC TGG GGC ATC CCG CAT ATC AAG GCC TCG GGC 144 Arg Val Arg Arg Asp Ala Trp Gly Ile Pro His Ile Lys Ala Ser Gly 35 40 45 GAG GCC GAT GCC TAT CGG GCG CTG GGC TTC GTC CAT TCG CAG GAC CGT 192 Glu Ala Asp Ala Tyr Arg Ala Leu Gly Phe Val His Ser Gln Asp Arg 50 55 60 CTT TTC CAG ATG GAG CTG ACG CGT CGC AAG GCG CTG GGA CGC GCG GCC 240 Leu Phe Gln Met Glu Leu Thr Arg Arg Lys Ala Leu Gly Arg Ala Ala 65 70 75 GAA TGG CTG GGC GCC GAG GCC GCC GAG GCC GAT ATC CTC GTG CGC CGG 288 Glu Trp Leu Gly Ala Glu Ala Ala Glu Ala Asp Ile Leu Val Arg Arg 80 85 90 95 CTC GGA ATG GAA AAA GTC TGC CGG CGC GAC TTC GAG GCC TTG GGC GTC 336 Leu Gly Met Glu Lys Val Cys Arg Arg Asp Phe Glu Ala Leu Gly Val 100 105 110 GAG GCG AAG GAC ATG CTG CGG GCT TAT GTC GCC GGC GTG AAC GCA TTC 384 Glu Ala Lys Asp Met Leu Arg Ala Tyr Val Ala Gly Val Asn Ala Phe 115 120 125 CTG GCT TCC GGT GCT CCC CTG CCT GTC GAA TAC GGA TTG CTC GGA GCA 432 Leu Ala Ser Gly Ala Pro Leu Pro Val Glu Tyr Gly Leu Leu Gly Ala 130 135 140 GAG CCG GAG CCC TGG GAG CCT TGG CAC AGC ATC GCG GTG ATG CGC CGG 480 Glu Pro Glu Pro Trp Glu Pro Trp His Ser Ile Ala Val Met Arg Arg 145 150 155 CTG GGC CTG CTT ATG GGT TCG GTG TGG TTC AAG CTC TGG CGG ATG CTG 528 Leu Gly Leu Leu Met Gly Ser Val Trp Phe Lys Leu Trp Arg Met Leu 160 165 170 175 GCG CTG CCG GTG GTC GGA GCC GCG AAT GCG CTG AAG CTG CGC TAT GAC 576 Ala Leu Pro Val Val Gly Ala Ala Asn Ala Leu Lys Leu Arg Tyr Asp 180 185 190 GAT GGC GGC CGG GAT TTG CTC TGC ATC CCG CCG GGC GCC GAA GCC GAT 624 Asp Gly Gly Arg Asp Leu 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【0111】配列番号:3 配列の長さ:2325 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:peptide 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mutation 存在位置:269 特徴を決定した方法:S 配列 ATG ACT ATG GCA GCT AAT ACG GAT CGC GCG GTC TTG CAG GCG GCG CTG 48 Met Thr Met Ala Ala Asn Thr Asp Arg Ala Val Leu Gln Ala Ala Leu -1 1 5 10 15 CCG CCG CTT TCC GGC AGC CTC CCC ATT CCC GGA TTG AGC GCG TCG GTC 96 Pro Pro Leu Ser Gly Ser Leu Pro Ile Pro Gly Leu Ser Ala Ser Val 20 25 30 CGC GTC CGG CGC GAT GCC TGG GGC ATC CCG CAT ATC AAG GCC TCG GGC 144 Arg Val Arg Arg Asp Ala Trp Gly Ile Pro His Ile Lys Ala Ser Gly 35 40 45 GAG GCC GAT GCC TAT CGG GCG CTG GGC TTC GTC CAT TCG CAG GAC CGT 192 Glu Ala Asp Ala Tyr Arg Ala Leu Gly Phe Val His Ser Gln Asp Arg 50 55 60 CTT TTC CAG ATG GAG CTG ACG CGT CGC AAG GCG CTG GGA CGC GCG GCC 240 Leu Phe Gln Met Glu Leu Thr Arg Arg Lys Ala Leu Gly Arg Ala Ala 65 70 75 GAA TGG CTG GGC GCC GAG GCC GCC GAG GCC GAT ATC CTC GTG CGC CGG 288 Glu Trp Leu Gly Ala Glu Ala Ala 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Leu Leu Cys Ile Pro Pro Gly Ala Glu Ala Asp 195 200 205 CGG CTC GAG GCG GAT CTC GCG ACC CTG CGG CCC GCG GTC GAT GCG CTG 672 Arg Leu Glu Ala Asp Leu Ala Thr Leu Arg Pro Ala Val Asp Ala Leu 210 215 220 CTG AAG GCG ATG GGC GGC GAT GCC TCC GAT GCT GCC GGC GGC GGC AGC 720 Leu Lys Ala Met Gly Gly Asp Ala Ser Asp Ala Ala Gly Gly Gly Ser 225 230 235 AAC AAC TGG GCG GTC GCT CCG GGC CGC ACG GCG ACC GGC AGG CCG ATC 768 Asn Asn Trp Ala Val Ala Pro Gly Arg Thr Ala Thr Gly Arg Pro Ile 240 245 250 255 CTC GCG GGC GAT CCG CAT CGC GTC TTC GAA ATC CCT GGC TAT TAT GCG 816 Leu Ala Gly Asp Pro His Arg Val Phe Glu Ile Pro Gly Tyr Tyr Ala 260 265 270 CAG CAT CAT CTG GCC TGC GAC CGG TTC GAC ATG ATC GGC CTG ACC GTG 864 Gln His His Leu Ala Cys Asp Arg Phe Asp Met Ile Gly Leu Thr Val 275 280 285 CCG GGC GTG CCG GGC TTC CCG CAC TTC GCG CAT AAC GGC AAG GTC GCC 912 Pro Gly Val Pro Gly Phe Pro His Phe Ala His Asn Gly Lys Val Ala 290 295 300 TAT TGC GTC ACC CAT GCC TTC ATG GAC ATC CAC GAT CTC TAT CTC GAG 960 Tyr Cys Val Thr His Ala Phe Met Asp Ile His Asp Leu Tyr Leu Glu 305 310 315 CAG TTC GCG GGG GAG GGC CGC ACT GCG CGG TTC GGC AAC GAT TTC GAG 1008 Gln Phe Ala Gly Glu Gly Arg Thr Ala Arg Phe Gly Asn Asp Phe Glu 320 325 330 335 CCC GTC GCC TGG AGC CGG GAC CGT ATC GCG GTC CGG GGT GGC GCC GAT 1056 Pro Val Ala Trp Ser Arg Asp Arg Ile Ala Val Arg Gly Gly Ala Asp 340 345 350 CGC GAG TTC GAT ATC GTC GAG ACG CGC CAT GGC CCG GTT ATC GCG GGC 1104 Arg Glu Phe Asp Ile Val Glu Thr Arg His Gly Pro Val Ile Ala Gly 355 360 365 GAT CCG CGC GAT GGC GCA GCG CTC ACG CTG CGT TCG GTC CAG TTC GCC 1152 Asp Pro Arg Asp Gly Ala Ala Leu Thr Leu Arg Ser Val Gln Phe Ala 370 375 380 GAG ACC GAT CTG TCC TTC GAC TGC CTG ACG CGG ATG CCG GGC GCA TCG 1200 Glu Thr Asp Leu Ser Phe Asp Cys Leu Thr Arg Met Pro Gly Ala Ser 385 390 395 ACC GTG GCC CAG CTC TAC GAC GCG ACG CGC GGC TGG GGC CTG ATC GAC 1248 Thr Val Ala Gln Leu Tyr Asp Ala Thr Arg Gly Trp Gly Leu Ile Asp 400 405 410 415 CAT AAC CTC GTC GCC GGG GAT GTC GCG GGC TCG ATC GGC CAT CTG GTC 1296 His Asn Leu Val Ala Gly Asp Val Ala Gly Ser Ile Gly His Leu Val 420 425 430 CGC GCC CGC GTT CCG TCC CGT CCG CGC GAA AAC GGC TGG CTG CCG GTG 1344 Arg Ala Arg Val Pro Ser Arg Pro Arg Glu Asn Gly Trp Leu Pro Val 435 440 445 CCG GGC TGG TCC GGC GAG CAT GAA TGG CGG GGC TGG ATT CCG CAC GAG 1392 Pro Gly Trp Ser Gly Glu His Glu Trp Arg Gly Trp Ile Pro His Glu 450 455 460 GCG ATG CCG CGC GTG ATC GAT CCG CCG GGC GGC ATC ATC GTC ACG GCG 1440 Ala Met Pro Arg Val Ile Asp Pro Pro Gly Gly Ile Ile Val Thr Ala 465 470 475 AAT AAT CGC GTC GTG GCC GAT GAC CAT CCC GAT TAT CTC TGC ACC GAT 1488 Asn Asn Arg Val Val Ala Asp Asp His Pro Asp Tyr Leu Cys Thr Asp 480 485 490 495 TGC CAT CCG CCC TAC CGC GCC GAG CGC ATC ATG AAG CGC CTG GTC GCC 1536 Cys His Pro Pro Tyr Arg Ala Glu Arg Ile Met Lys Arg Leu Val Ala 500 505 510 AAT CCG GCT TTC GCC GTC GAC GAT GCC GCC GCG ATC CAT GCC GAT ACG 1584 Asn Pro Ala Phe Ala Val Asp Asp Ala Ala Ala Ile His Ala Asp Thr 515 520 525 CTG TCG CCC CAT GTC GGG TTG CTG CGC CGG AGG CTC GAG GCG CTT GGA 1632 Leu Ser Pro His Val Gly Leu Leu Arg Arg Arg Leu Glu Ala Leu Gly 530 535 540 GCC CGC GAC GAC TCC GCG GCC GAA GGG CTG AGG CAG ATG CTC GTC GCC 1680 Ala Arg Asp Asp Ser Ala Ala Glu Gly Leu Arg Gln Met Leu Val Ala 545 550 555 TGG GAC GGC CGC ATG GAT GCG GCT TCG GAG GTC GCG TCT GCC TAC AAT 1728 Trp Asp Gly Arg Met Asp Ala Ala Ser Glu Val Ala Ser Ala Tyr Asn 560 565 570 575 GCG TTC CGC AGG GCG CTG ACG CGG CTG GTG ACG GAC CGC AGC GGG CTG 1776 Ala Phe Arg Arg Ala Leu Thr Arg Leu Val Thr Asp Arg Ser Gly Leu 580 585 590 GAG CAG GCG ATA TCG CAT CCC TTC GCG GCT GTC GCG CCG GGC GTC TCA 1824 Glu Gln Ala Ile Ser His Pro Phe Ala Ala Val Ala Pro Gly Val Ser 595 600 605 CCG CAA GGC CAG GTC TGG TGG GCC GTG CCG ACC CTG CTG CGC GAC GAC 1872 Pro Gln Gly Gln Val Trp Trp Ala Val Pro Thr Leu Leu Arg Asp Asp 610 615 620 GAT GCC GGA ATG CTG AAG GGC TGG AGC TGG GAC CAG GCC TTG TCT GAG 1920 Asp Ala Gly Met Leu Lys Gly Trp Ser Trp Asp Gln Ala Leu Ser Glu 625 630 635 GCC CTC TCG GTC GCG TCG CAG AAC CTG ACC GGG CGA AGC TGG GGC GAA 1968 Ala Leu Ser Val Ala Ser Gln Asn Leu Thr Gly Arg Ser Trp Gly Glu 640 645 650 655 GAG CAT CGG CCG CGC TTC ACG CAT CCG CTT GCC ACG CAA TTC CCG GCC 2016 Glu His Arg Pro Arg Phe Thr His Pro Leu Ala Thr Gln Phe Pro Ala 660 665 670 TGG GCG GGG CTG CTG AAT CCG GCT TCC CGT CCG ATC GGT GGC GAT GGC 2064 Trp Ala Gly Leu Leu Asn Pro Ala Ser Arg Pro Ile Gly Gly Asp Gly 675 680 685 GAT ACC GTG CTG GCG AAC GGG CTC GTC CCG TCA GCC GGG CCG CAG GCG 2112 Asp Thr Val Leu Ala Asn Gly Leu Val Pro Ser Ala Gly Pro Gln Ala 690 695 700 ACC TAT GGT GCC CTG TCG CGC TAC GTC TTC GAT GTC GGC AAT TGG GAC 2160 Thr Tyr Gly Ala Leu Ser Arg Tyr Val Phe Asp Val Gly Asn Trp Asp 705 710 715 AAT AGC CGC TGG GTC GTC TTC CAC GGC GCC TCC GGG CAT CCG GCC AGC 2208 Asn Ser Arg Trp Val Val Phe His Gly Ala Ser Gly His Pro Ala Ser 720 725 730 735 GCC CAT TAT GCC GAT CAG AAT GCG CCC TGG AGC GAC TGT GCG ATG GTG 2256 Ala His Tyr Ala Asp Gln Asn Ala Pro Trp Ser Asp Cys Ala Met Val 740 745 750 CCG ATG CTC TAT AGC TGG GAC AGG ATC GCG GCA GAG GCC GTG ACG TCG 2304 Pro Met Leu Tyr Ser Trp Asp Arg Ile Ala Ala Glu Ala Val Thr Ser 755 760 765 CAG GAA CTC GTC CCG GCC TGA 2325 Gln Glu Leu Val Pro Ala 770
【0112】配列番号:4 配列の長さ:2325 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:peptide 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mutation 存在位置:271 特徴を決定した方法:S 配列 ATG ACT ATG GCA GCT AAT ACG GAT CGC GCG GTC TTG CAG GCG GCG CTG 48 Met Thr Met Ala Ala Asn Thr Asp Arg Ala Val Leu Gln Ala Ala Leu -1 1 5 10 15 CCG CCG CTT TCC GGC AGC CTC CCC ATT CCC GGA TTG AGC GCG TCG GTC 96 Pro Pro Leu Ser Gly Ser Leu Pro Ile Pro Gly Leu Ser Ala Ser Val 20 25 30 CGC GTC CGG CGC GAT GCC TGG GGC ATC CCG CAT ATC AAG GCC TCG GGC 144 Arg Val Arg Arg Asp Ala Trp Gly Ile Pro His Ile Lys Ala Ser Gly 35 40 45 GAG GCC GAT GCC TAT CGG GCG CTG GGC TTC GTC CAT TCG CAG GAC CGT 192 Glu Ala Asp Ala Tyr Arg Ala Leu Gly Phe Val His Ser Gln Asp Arg 50 55 60 CTT TTC CAG ATG GAG CTG ACG CGT CGC AAG GCG CTG GGA CGC GCG GCC 240 Leu Phe Gln Met Glu Leu Thr Arg Arg Lys Ala Leu Gly Arg Ala Ala 65 70 75 GAA TGG CTG GGC GCC GAG GCC GCC GAG GCC GAT ATC CTC GTG CGC CGG 288 Glu Trp Leu Gly Ala Glu Ala Ala Glu Ala Asp Ile Leu Val Arg Arg 80 85 90 95 CTC GGA ATG GAA AAA GTC TGC CGG CGC GAC TTC GAG GCC TTG GGC GTC 336 Leu Gly Met Glu Lys Val Cys Arg Arg Asp Phe Glu Ala Leu Gly Val 100 105 110 GAG GCG AAG GAC ATG CTG CGG GCT TAT GTC GCC GGC GTG AAC GCA TTC 384 Glu Ala Lys Asp Met Leu Arg Ala Tyr Val Ala Gly Val Asn Ala Phe 115 120 125 CTG GCT TCC GGT GCT CCC CTG CCT GTC GAA TAC GGA TTG CTC GGA GCA 432 Leu Ala Ser Gly Ala Pro Leu Pro Val Glu Tyr Gly Leu Leu Gly Ala 130 135 140 GAG CCG GAG CCC TGG GAG CCT TGG CAC AGC ATC GCG GTG ATG CGC CGG 480 Glu Pro Glu Pro Trp Glu Pro Trp His Ser Ile Ala Val Met Arg Arg 145 150 155 CTG GGC CTG CTT ATG GGT TCG GTG TGG TTC AAG CTC TGG CGG ATG CTG 528 Leu Gly Leu Leu Met Gly Ser Val Trp Phe Lys Leu Trp Arg Met Leu 160 165 170 175 GCG CTG CCG GTG GTC GGA GCC GCG AAT GCG CTG AAG CTG CGC TAT GAC 576 Ala Leu Pro Val Val Gly Ala Ala Asn Ala Leu Lys Leu Arg Tyr Asp 180 185 190 GAT GGC GGC CGG GAT TTG CTC TGC ATC CCG CCG GGC GCC GAA GCC GAT 624 Asp Gly Gly Arg Asp Leu Leu Cys Ile Pro Pro Gly Ala Glu Ala Asp 195 200 205 CGG CTC GAG GCG GAT CTC GCG ACC CTG CGG CCC GCG GTC GAT GCG CTG 672 Arg Leu Glu Ala Asp Leu Ala Thr Leu Arg Pro Ala Val Asp Ala Leu 210 215 220 CTG AAG GCG ATG GGC GGC GAT GCC TCC GAT GCT GCC GGC GGC GGC AGC 720 Leu Lys Ala Met Gly Gly Asp Ala Ser Asp Ala Ala Gly Gly Gly Ser 225 230 235 AAC AAC TGG GCG GTC GCT CCG GGC CGC ACG GCG ACC GGC AGG CCG ATC 768 Asn Asn Trp Ala Val Ala Pro Gly Arg Thr Ala Thr Gly Arg Pro Ile 240 245 250 255 CTC GCG GGC GAT CCG CAT CGC GTC TTC GAA ATC CCG GGC ATG TAC TAT 816 Leu Ala Gly Asp Pro His Arg Val Phe Glu Ile Pro Gly Met Tyr Tyr 260 265 270 CAG CAT CAT CTG GCC TGC GAC CGG TTC GAC ATG ATC GGC CTG ACC GTG 864 Gln His His Leu Ala Cys Asp Arg Phe Asp Met Ile Gly Leu Thr Val 275 280 285 CCG GGC GTG CCG GGC TTC CCG CAC TTC GCG CAT AAC GGC AAG GTC GCC 912 Pro Gly Val Pro Gly Phe Pro His Phe Ala His Asn Gly Lys Val Ala 290 295 300 TAT TGC GTC ACC CAT GCC TTC ATG GAC ATC CAC GAT CTC TAT CTC GAG 960 Tyr Cys Val Thr His Ala Phe Met Asp Ile His Asp Leu Tyr Leu Glu 305 310 315 CAG TTC GCG GGG GAG GGC CGC ACT GCG CGG TTC GGC AAC GAT TTC GAG 1008 Gln Phe Ala Gly Glu Gly Arg Thr Ala Arg Phe Gly Asn Asp Phe Glu 320 325 330 335 CCC GTC GCC TGG AGC CGG GAC CGT ATC GCG GTC CGG GGT GGC GCC GAT 1056 Pro Val Ala Trp Ser Arg Asp Arg Ile Ala Val Arg Gly Gly Ala Asp 340 345 350 CGC GAG TTC GAT ATC GTC GAG ACG CGC CAT GGC CCG GTT ATC GCG GGC 1104 Arg Glu Phe Asp Ile Val Glu Thr Arg His Gly Pro Val Ile Ala Gly 355 360 365 GAT CCG CGC GAT GGC GCA GCG CTC ACG CTG CGT TCG GTC CAG TTC GCC 1152 Asp Pro Arg Asp Gly Ala Ala Leu Thr Leu Arg Ser Val Gln Phe Ala 370 375 380 GAG ACC GAT CTG TCC TTC GAC TGC CTG ACG CGG ATG CCG GGC GCA TCG 1200 Glu Thr Asp Leu Ser Phe Asp Cys Leu Thr Arg Met Pro Gly Ala Ser 385 390 395 ACC GTG GCC CAG CTC TAC GAC GCG ACG CGC GGC TGG GGC CTG ATC GAC 1248 Thr Val Ala Gln Leu Tyr Asp Ala Thr Arg Gly Trp Gly Leu Ile Asp 400 405 410 415 CAT AAC CTC GTC GCC GGG GAT GTC GCG GGC TCG ATC GGC CAT CTG GTC 1296 His Asn Leu Val Ala Gly Asp Val Ala Gly Ser Ile Gly His Leu Val 420 425 430 CGC GCC CGC GTT CCG TCC CGT CCG CGC GAA AAC GGC TGG CTG CCG GTG 1344 Arg Ala Arg Val Pro Ser Arg Pro Arg Glu Asn Gly Trp Leu Pro Val 435 440 445 CCG GGC TGG TCC GGC GAG CAT GAA TGG CGG GGC TGG ATT CCG CAC GAG 1392 Pro Gly Trp Ser Gly Glu His Glu Trp Arg Gly Trp Ile Pro His Glu 450 455 460 GCG ATG CCG CGC GTG ATC GAT CCG CCG GGC GGC ATC ATC GTC ACG GCG 1440 Ala Met Pro Arg Val Ile Asp Pro Pro Gly Gly Ile Ile Val Thr Ala 465 470 475 AAT AAT CGC GTC GTG GCC GAT GAC CAT CCC GAT TAT CTC TGC ACC GAT 1488 Asn Asn Arg Val Val Ala Asp Asp His Pro Asp Tyr Leu Cys Thr Asp 480 485 490 495 TGC CAT CCG CCC TAC CGC GCC GAG CGC ATC ATG AAG CGC CTG GTC GCC 1536 Cys His Pro Pro Tyr Arg Ala Glu Arg Ile Met Lys Arg Leu Val Ala 500 505 510 AAT CCG GCT TTC GCC GTC GAC GAT GCC GCC GCG ATC CAT GCC GAT ACG 1584 Asn Pro Ala Phe Ala Val Asp Asp Ala Ala Ala Ile His Ala Asp Thr 515 520 525 CTG TCG CCC CAT GTC GGG TTG CTG CGC CGG AGG CTC GAG GCG CTT GGA 1632 Leu Ser Pro His Val Gly Leu Leu Arg Arg Arg Leu Glu Ala Leu Gly 530 535 540 GCC CGC GAC GAC TCC GCG GCC GAA GGG CTG AGG CAG ATG CTC GTC GCC 1680 Ala Arg Asp Asp Ser Ala Ala Glu Gly Leu Arg Gln Met Leu Val Ala 545 550 555 TGG GAC GGC CGC ATG GAT GCG GCT TCG GAG GTC GCG TCT GCC TAC AAT 1728 Trp Asp Gly Arg Met Asp Ala Ala Ser Glu Val Ala Ser Ala Tyr Asn 560 565 570 575 GCG TTC CGC AGG GCG CTG ACG CGG CTG GTG ACG GAC CGC AGC GGG CTG 1776 Ala Phe Arg Arg Ala Leu Thr Arg Leu Val Thr Asp Arg Ser Gly Leu 580 585 590 GAG CAG GCG ATA TCG CAT CCC TTC GCG GCT GTC GCG CCG GGC GTC TCA 1824 Glu Gln Ala Ile Ser His Pro Phe Ala Ala Val Ala Pro Gly Val Ser 595 600 605 CCG CAA GGC CAG GTC TGG TGG GCC GTG CCG ACC CTG CTG CGC GAC GAC 1872 Pro Gln Gly Gln Val Trp Trp Ala Val Pro Thr Leu Leu Arg Asp Asp 610 615 620 GAT GCC GGA ATG CTG AAG GGC TGG AGC TGG GAC CAG GCC TTG TCT GAG 1920 Asp Ala Gly Met Leu Lys Gly Trp Ser Trp Asp Gln Ala Leu Ser Glu 625 630 635 GCC CTC TCG GTC GCG TCG CAG AAC CTG ACC GGG CGA AGC TGG GGC GAA 1968 Ala Leu Ser Val Ala Ser Gln Asn Leu Thr Gly Arg Ser Trp Gly Glu 640 645 650 655 GAG CAT CGG CCG CGC TTC ACG CAT CCG CTT GCC ACG CAA TTC CCG GCC 2016 Glu His Arg Pro Arg Phe Thr His Pro Leu Ala Thr Gln Phe Pro Ala 660 665 670 TGG GCG GGG CTG CTG AAT CCG GCT TCC CGT CCG ATC GGT GGC GAT GGC 2064 Trp Ala Gly Leu Leu Asn Pro Ala Ser Arg Pro Ile Gly Gly Asp Gly 675 680 685 GAT ACC GTG CTG GCG AAC GGG CTC GTC CCG TCA GCC GGG CCG CAG GCG 2112 Asp Thr Val Leu Ala Asn Gly Leu Val Pro Ser Ala Gly Pro Gln Ala 690 695 700 ACC TAT GGT GCC CTG TCG CGC TAC GTC TTC GAT GTC GGC AAT TGG GAC 2160 Thr Tyr Gly Ala Leu Ser Arg Tyr Val Phe Asp Val Gly Asn Trp Asp 705 710 715 AAT AGC CGC TGG GTC GTC TTC CAC GGC GCC TCC GGG CAT CCG GCC AGC 2208 Asn Ser Arg Trp Val Val Phe His Gly Ala Ser Gly His Pro Ala Ser 720 725 730 735 GCC CAT TAT GCC GAT CAG AAT GCG CCC TGG AGC GAC TGT GCG ATG GTG 2256 Ala His Tyr Ala Asp Gln Asn Ala Pro Trp Ser Asp Cys Ala Met Val 740 745 750 CCG ATG CTC TAT AGC TGG GAC AGG ATC GCG GCA GAG GCC GTG ACG TCG 2304 Pro Met Leu Tyr Ser Trp Asp Arg Ile Ala Ala Glu Ala Val Thr Ser 755 760 765 CAG GAA CTC GTC CCG GCC TGA 2325 Gln Glu Leu Val Pro Ala 770
【0113】配列番号:5 配列の長さ:2325 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 特徴を表す記号:CDS 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:peptide 存在位置:4..2322 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mutation 存在位置:269,305 特徴を決定した方法:S 配列 ATG ACT ATG GCA GCT AAT ACG GAT CGC GCG GTC TTG CAG GCG GCG CTG 48 Met Thr Met Ala Ala Asn Thr Asp Arg Ala Val Leu Gln Ala Ala Leu -1 1 5 10 15 CCG CCG CTT TCC GGC AGC CTC CCC ATT CCC GGA TTG AGC GCG TCG GTC 96 Pro Pro Leu Ser Gly Ser Leu Pro Ile Pro Gly Leu Ser Ala Ser Val 20 25 30 CGC GTC CGG CGC GAT GCC TGG GGC ATC CCG CAT ATC AAG GCC TCG GGC 144 Arg Val Arg Arg Asp Ala Trp Gly Ile Pro His Ile Lys Ala Ser Gly 35 40 45 GAG GCC GAT GCC TAT CGG GCG CTG GGC TTC GTC CAT TCG CAG GAC CGT 192 Glu Ala Asp Ala Tyr Arg Ala Leu Gly Phe Val His Ser Gln Asp Arg 50 55 60 CTT TTC CAG ATG GAG CTG ACG CGT CGC AAG GCG CTG GGA CGC GCG GCC 240 Leu Phe Gln Met Glu Leu Thr Arg Arg Lys Ala Leu Gly Arg Ala Ala 65 70 75 GAA TGG CTG GGC GCC GAG GCC GCC GAG GCC GAT ATC CTC GTG CGC CGG 288 Glu Trp Leu Gly Ala Glu Ala Ala Glu Ala Asp Ile Leu Val Arg Arg 80 85 90 95 CTC GGA ATG GAA AAA GTC TGC CGG CGC GAC TTC GAG GCC TTG GGC GTC 336 Leu Gly Met Glu Lys Val Cys Arg Arg Asp Phe Glu Ala Leu Gly Val 100 105 110 GAG GCG AAG GAC ATG CTG CGG GCT TAT GTC GCC GGC GTG AAC GCA TTC 384 Glu Ala Lys Asp Met Leu Arg Ala Tyr Val Ala Gly Val Asn Ala Phe 115 120 125 CTG GCT TCC GGT GCT CCC CTG CCT GTC GAA TAC GGA TTG CTC GGA GCA 432 Leu Ala Ser Gly Ala Pro Leu Pro Val Glu Tyr Gly Leu Leu Gly Ala 130 135 140 GAG CCG GAG CCC TGG GAG CCT TGG CAC AGC ATC GCG GTG ATG CGC CGG 480 Glu Pro Glu Pro Trp Glu Pro Trp His Ser Ile Ala Val Met Arg Arg 145 150 155 CTG GGC CTG CTT ATG GGT TCG GTG TGG TTC AAG CTC TGG CGG ATG CTG 528 Leu Gly Leu Leu Met Gly Ser Val Trp Phe Lys Leu Trp Arg Met Leu 160 165 170 175 GCG CTG CCG GTG GTC GGA GCC GCG AAT GCG CTG AAG CTG CGC TAT GAC 576 Ala Leu Pro Val Val Gly Ala Ala Asn Ala Leu Lys Leu Arg Tyr Asp 180 185 190 GAT GGC GGC CGG GAT TTG CTC TGC ATC CCG CCG GGC GCC GAA GCC GAT 624 Asp Gly Gly Arg Asp Leu Leu Cys Ile Pro Pro Gly Ala Glu Ala Asp 195 200 205 CGG CTC GAG GCG GAT CTC GCG ACC CTG CGG CCC GCG GTC GAT GCG CTG 672 Arg Leu Glu Ala Asp Leu Ala Thr Leu Arg Pro Ala Val Asp Ala Leu 210 215 220 CTG AAG GCG ATG GGC GGC GAT GCC TCC GAT GCT GCC GGC GGC GGC AGC 720 Leu Lys Ala Met Gly Gly Asp Ala Ser Asp Ala Ala Gly Gly Gly Ser 225 230 235 AAC AAC TGG GCG GTC GCT CCG GGC CGC ACG GCG ACC GGC AGG CCG ATC 768 Asn Asn Trp Ala Val Ala Pro Gly Arg Thr Ala Thr Gly Arg Pro Ile 240 245 250 255 CTC GCG GGC GAT CCG CAT CGC GTC TTC GAA ATC CCT GGC TAT TAT GCG 816 Leu Ala Gly Asp Pro His Arg Val Phe Glu Ile Pro Gly Tyr Tyr Ala 260 265 270 CAG CAT CAT CTG GCC TGC GAC CGG TTC GAC ATG ATC GGC CTG ACC GTG 864 Gln His His Leu Ala Cys Asp Arg Phe Asp Met Ile Gly Leu Thr Val 275 280 285 CCG GGC GTG CCG GGC TTC CCG CAC TTC GCG CAT AAC GGC AAG GTC GCC 912 Pro Gly Val Pro Gly Phe Pro His Phe Ala His Asn Gly Lys Val Ala 290 295 300 TAT AGC GTC ACG CAT GCC TTC ATG GAC ATC CAC GAT CTC TAT CTC GAG 960 Tyr Ser Val Thr His Ala Phe Met Asp Ile His Asp Leu Tyr Leu Glu 305 310 315 CAG TTC GCG GGG GAG GGC CGC ACT GCG CGG TTC GGC AAC GAT TTC GAG 1008 Gln Phe Ala Gly Glu Gly Arg Thr Ala Arg Phe Gly Asn Asp Phe Glu 320 325 330 335 CCC GTC GCC TGG AGC CGG GAC CGT ATC GCG GTC CGG GGT GGC GCC GAT 1056 Pro Val Ala Trp Ser Arg Asp Arg Ile Ala Val Arg Gly Gly Ala Asp 340 345 350 CGC GAG TTC GAT ATC GTC GAG ACT CGC CAT GGC CCG GTT ATC GCG GGC 1104 Arg Glu Phe Asp Ile Val Glu Thr Arg His Gly Pro Val Ile Ala Gly 355 360 365 GAT CCG CGC GAT GGC GCA GCG CTC ACG CTG CGT TCG GTC CAG TTC GCC 1152 Asp Pro Arg Asp Gly Ala Ala Leu Thr Leu Arg Ser Val Gln Phe Ala 370 375 380 GAG ACC GAT CTG TCC TTC GAC TGC CTG ACG CGG ATG CCG GGC GCA TCG 1200 Glu Thr Asp Leu Ser Phe Asp Cys Leu Thr Arg Met Pro Gly Ala Ser 385 390 395 ACC GTG GCC CAG CTC TAC GAC GCG ACG CGC GGC TGG GGC CTG ATC GAC 1248 Thr Val Ala Gln Leu Tyr Asp Ala Thr Arg Gly Trp Gly Leu Ile Asp 400 405 410 415 CAT AAC CTC GTC GCC GGG GAT GTC GCG GGC TCG ATC GGC CAT CTG GTC 1296 His Asn Leu Val Ala Gly Asp Val Ala Gly Ser Ile Gly His Leu Val 420 425 430 CGC GCC CGC GTT CCG TCC CGT CCG CGC GAA AAC GGC TGG CTG CCG GTG 1344 Arg Ala Arg Val Pro Ser Arg Pro Arg Glu Asn Gly Trp Leu Pro Val 435 440 445 CCG GGC TGG TCC GGC GAG CAT GAA TGG CGG GGC TGG ATT CCG CAC GAG 1392 Pro Gly Trp Ser Gly Glu His Glu Trp Arg Gly Trp Ile Pro His Glu 450 455 460 GCG ATG CCG CGC GTG ATC GAT CCG CCG GGC GGC ATC ATC GTC ACG GCG 1440 Ala Met Pro Arg Val Ile Asp Pro Pro Gly Gly Ile Ile Val Thr Ala 465 470 475 AAT AAT CGC GTC GTG GCC GAT GAC CAT CCC GAT TAT CTC TGC ACC GAT 1488 Asn Asn Arg Val Val Ala Asp Asp His Pro Asp Tyr Leu Cys Thr Asp 480 485 490 495 TGC CAT CCG CCC TAC CGC GCC GAG CGC ATC ATG AAG CGC CTG GTC GCC 1536 Cys His Pro Pro Tyr Arg Ala Glu Arg Ile Met Lys Arg Leu Val Ala 500 505 510 AAT CCG GCT TTC GCC GTC GAC GAT GCC GCC GCG ATC CAT GCC GAT ACG 1584 Asn Pro Ala Phe Ala Val Asp Asp Ala Ala Ala Ile His Ala Asp Thr 515 520 525 CTG TCG CCC CAT GTC GGG TTG CTG CGC CGG AGG CTC GAG GCG CTT GGA 1632 Leu Ser Pro His Val Gly Leu Leu Arg Arg Arg Leu Glu Ala Leu Gly 530 535 540 GCC CGC GAC GAC TCC GCG GCC GAA GGG CTG AGG CAG ATG CTC GTC GCC 1680 Ala Arg Asp Asp Ser Ala Ala Glu Gly Leu Arg Gln Met Leu Val Ala 545 550 555 TGG GAC GGC CGC ATG GAT GCG GCT TCG GAG GTC GCG TCT GCC TAC AAT 1728 Trp Asp Gly Arg Met Asp Ala Ala Ser Glu Val Ala Ser Ala Tyr Asn 560 565 570 575 GCG TTC CGC AGG GCG CTG ACG CGG CTG GTG ACG GAC CGC AGC GGG CTG 1776 Ala Phe Arg Arg Ala Leu Thr Arg Leu Val Thr Asp Arg Ser Gly Leu 580 585 590 GAG CAG GCG ATA TCG CAT CCC TTC GCG GCT GTC GCG CCG GGC GTC TCA 1824 Glu Gln Ala Ile Ser His Pro Phe Ala Ala Val Ala Pro Gly Val Ser 595 600 605 CCG CAA GGC CAG GTC TGG TGG GCC GTG CCG ACC CTG CTG CGC GAC GAC 1872 Pro Gln Gly Gln Val Trp Trp Ala Val Pro Thr Leu Leu Arg Asp Asp 610 615 620 GAT GCC GGA ATG CTG AAG GGC TGG AGC TGG GAC CAG GCC TTG TCT GAG 1920 Asp Ala Gly Met Leu Lys Gly Trp Ser Trp Asp Gln Ala Leu Ser Glu 625 630 635 GCC CTC TCG GTC GCG TCG CAG AAC CTG ACC GGG CGA AGC TGG GGC GAA 1968 Ala Leu Ser Val Ala Ser Gln Asn Leu Thr Gly Arg Ser Trp Gly Glu 640 645 650 655 GAG CAT CGG CCG CGC TTC ACG CAT CCG CTT GCC ACG CAA TTC CCG GCC 2016 Glu His Arg Pro Arg Phe Thr His Pro Leu Ala Thr Gln Phe Pro Ala 660 665 670 TGG GCG GGG CTG CTG AAT CCG GCT TCC CGT CCG ATC GGT GGC GAT GGC 2064 Trp Ala Gly Leu Leu Asn Pro Ala Ser Arg Pro Ile Gly Gly Asp Gly 675 680 685 GAT ACC GTG CTG GCG AAC GGG CTC GTC CCG TCA GCC GGG CCG CAG GCG 2112 Asp Thr Val Leu Ala Asn Gly Leu Val Pro Ser Ala Gly Pro Gln Ala 690 695 700 ACC TAT GGT GCC CTG TCG CGC TAC GTC TTC GAT GTC GGC AAT TGG GAC 2160 Thr Tyr Gly Ala Leu Ser Arg Tyr Val Phe Asp Val Gly Asn Trp Asp 705 710 715 AAT AGC CGC TGG GTC GTC TTC CAC GGC GCC TCC GGG CAT CCG GCC AGC 2208 Asn Ser Arg Trp Val Val Phe His Gly Ala Ser Gly His Pro Ala Ser 720 725 730 735 GCC CAT TAT GCC GAT CAG AAT GCG CCC TGG AGC GAC TGT GCG ATG GTG 2256 Ala His Tyr Ala Asp Gln Asn Ala Pro Trp Ser Asp Cys Ala Met Val 740 745 750 CCG ATG CTC TAT AGC TGG GAC AGG ATC GCG GCA GAG GCC GTG ACG TCG 2304 Pro Met Leu Tyr Ser Trp Asp Arg Ile Ala Ala Glu Ala Val Thr Ser 755 760 765 CAG GAA CTC GTC CCG GCC TGA 2325 Gln Glu Leu Val Pro Ala 770
【図面の簡単な説明】
【図1】変異型CCアシラーゼM269Y/C305S
の発現ベクターp269Y/C305Sの制限酵素地図
を示す図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 //(C12N 9/80 C12R 1:19) (C12N 1/21 C12R 1:19)

Claims (7)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 宿主細胞中でα−サブユニットとβ−サ
    ブユニットにプロセッシングされる前の前駆体形として
    のアミノ酸配列が、式: A1-268 −X1 −Tyr−X2 −A272-304 −X3 −A306-773 (式中、A1-268 は、天然型CCアシラーゼのThr1
    からGly268 までのアミノ酸配列と同一のアミノ酸配
    列を示す。A272-304 は、天然型CCアシラーゼのGl
    272 からTyr304 までのアミノ酸配列と同一のアミ
    ノ酸配列を示す。A306-773 は、天然型CCアシラーゼ
    のVal306 からAla773 までのアミノ酸配列と同一
    のアミノ酸配列を示す。X1 は、Metまたはその他の
    アミノ酸を、X2 は、Alaまたはその他のアミノ酸
    を、X3 はCysまたはその他のアミノ酸を示す。但
    し、X1 がMetであり、かつX2 がAlaであると
    き、X3 はCys以外のアミノ酸である。)で示され
    る、変異型セファロスポリンCアシラーゼ。
  2. 【請求項2】 X1 がTyr、X2 がAlaおよびX3
    がSerである請求項1記載の変異型セファロスポリン
    Cアシラーゼ。
  3. 【請求項3】 請求項1または請求項2記載のセファロ
    スポリンCアシラーゼをコードするDNA。
  4. 【請求項4】 請求項3記載のDNAを含む発現ベクタ
    ー。
  5. 【請求項5】 請求項4記載の発現ベクターによって形
    質転換された宿主細胞。
  6. 【請求項6】 請求項5記載の宿主細胞を培地で培養
    し、得られる培養物から変異型セファロスポリンCアシ
    ラーゼを採取することを特徴とする請求項1および請求
    項2記載の変異型セファロスポリンCアシラーゼの製造
    方法。
  7. 【請求項7】 式: 【化1】 (式中、R1 はアセトキシ、ヒドロキシまたは水素を示
    す。R2 はカルボン酸アシルを示す。)で示される化合
    物(II)またはその塩に請求項5の形質転換体の培養物
    またはその処理物を接触させて、式: 【化2】 (式中、R1 は前記と同意義。)で示される化合物
    (I)またはその塩を得ることを特徴とする化合物
    (I)の製造法。
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