JPH06125669A - Ｗｘ遺伝子発現の確認方法およびモチコムギの作出方法 - Google Patents
Ｗｘ遺伝子発現の確認方法およびモチコムギの作出方法Info
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- JPH06125669A JPH06125669A JP4277562A JP27756292A JPH06125669A JP H06125669 A JPH06125669 A JP H06125669A JP 4277562 A JP4277562 A JP 4277562A JP 27756292 A JP27756292 A JP 27756292A JP H06125669 A JPH06125669 A JP H06125669A
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Abstract
(57)【要約】 （修正有）
【目的】 穀物、特にコムギにおける３種の遺伝子の発
現の有無を個々に確認できる分析方法、３種のＷｘタン
パク質が産性されないモチコムギの作出手段の提供。 【構成】 穀物Ｗｘ遺伝子の発現産物である複数のＷｘ
タンパク質を、二次元電気泳動法を用いて分離する。特
に、コムギＷｘ遺伝子の発現産物であるＷｘタンパク質
Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を好ましくは
等電点電気泳動とＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気
泳動との組合わせによる二次元電気泳動法で分離する。
Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１およびＷｘ−Ｂ１の発現を欠いた
６倍体コムギ変異体とＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ｄ１の発現を欠
いた６倍体コムギ変異体とを交配し、Ｗｘタンパク質が
産性されないモチコムギを作出する。
現の有無を個々に確認できる分析方法、３種のＷｘタン
パク質が産性されないモチコムギの作出手段の提供。 【構成】 穀物Ｗｘ遺伝子の発現産物である複数のＷｘ
タンパク質を、二次元電気泳動法を用いて分離する。特
に、コムギＷｘ遺伝子の発現産物であるＷｘタンパク質
Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を好ましくは
等電点電気泳動とＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気
泳動との組合わせによる二次元電気泳動法で分離する。
Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１およびＷｘ−Ｂ１の発現を欠いた
６倍体コムギ変異体とＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ｄ１の発現を欠
いた６倍体コムギ変異体とを交配し、Ｗｘタンパク質が
産性されないモチコムギを作出する。
Description
【０００１】〔発明の背景〕
【産業上の利用分野】本発明は、穀物、特にコムギのＷ
ｘ遺伝子発現の確認方法ならびにこの確認方法を利用す
ることができるモチコムギの作出方法およびこの作出方
法によって得られるモチコムギに関するものである。
ｘ遺伝子発現の確認方法ならびにこの確認方法を利用す
ることができるモチコムギの作出方法およびこの作出方
法によって得られるモチコムギに関するものである。
【０００２】
【従来の技術】種子にモチ性が認められる作物として
は、イネ、トウモロコシ、オオムギ、ジャガイモ、ア
ワ、ソルガムなどが知られており、普通（ウルチ）系統
のものにおいてはＷｘタンパク質が存在しているのに対
して、モチ性系統ではこのＷｘタンパク質の存在が見ら
れない。Ｗｘタンパク質はＷｘ遺伝子の発現産物であっ
てアミロース合成に関与するデンプン合成酵素(Granule
Bound Starch Synthase : GBSS)としての機能を有す
る。このＷｘ遺伝子は、イネなどの２倍体植物ではには
１種の遺伝子として存在しており、低率（１０-4）では
あるが突然変異によって欠落し（植物育種学、上巻、基
礎編藤巻ら著、培風館、第８０〜８２頁、１９９２
年）、これによってＷｘタンパク質が産性されず普通系
統のものがモチ性となる。これに対して、コムギでは３
種のＷｘ遺伝子を有する６倍体のもの（普通系統）およ
び２種のＷｘ遺伝子を有する４倍体のもの（マカロニ種
など）が存在していることが知られている。６倍体であ
る普通系コムギ（Triticum aestivum L.、ゲノム構成Ａ
ＡＢＢＤＤ）では、３種のＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ
−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を染色体腕７ＡＳ、４ＡＬおよ
び７ＤＳ上に持つことがサザン法によって確認されてい
る（Chaoら、Theor.Appl.Genet. 、第７８巻、４９５〜
５０４頁、１９８９年）が、Ｗｘ遺伝子の発現産物であ
るＷｘタンパク質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による電気泳
動によって単一のバンドとしてしか検出されていない
（山守ら、育種学雑誌、４０巻（別冊１）第４１０〜４
１１頁、１９９０年）。また、６倍体コムギ（普通系
統）および４倍体コムギ（マカロニ系統など）について
は現在のところモチ性のものは知られていない。
は、イネ、トウモロコシ、オオムギ、ジャガイモ、ア
ワ、ソルガムなどが知られており、普通（ウルチ）系統
のものにおいてはＷｘタンパク質が存在しているのに対
して、モチ性系統ではこのＷｘタンパク質の存在が見ら
れない。Ｗｘタンパク質はＷｘ遺伝子の発現産物であっ
てアミロース合成に関与するデンプン合成酵素(Granule
Bound Starch Synthase : GBSS)としての機能を有す
る。このＷｘ遺伝子は、イネなどの２倍体植物ではには
１種の遺伝子として存在しており、低率（１０-4）では
あるが突然変異によって欠落し（植物育種学、上巻、基
礎編藤巻ら著、培風館、第８０〜８２頁、１９９２
年）、これによってＷｘタンパク質が産性されず普通系
統のものがモチ性となる。これに対して、コムギでは３
種のＷｘ遺伝子を有する６倍体のもの（普通系統）およ
び２種のＷｘ遺伝子を有する４倍体のもの（マカロニ種
など）が存在していることが知られている。６倍体であ
る普通系コムギ（Triticum aestivum L.、ゲノム構成Ａ
ＡＢＢＤＤ）では、３種のＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ
−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を染色体腕７ＡＳ、４ＡＬおよ
び７ＤＳ上に持つことがサザン法によって確認されてい
る（Chaoら、Theor.Appl.Genet. 、第７８巻、４９５〜
５０４頁、１９８９年）が、Ｗｘ遺伝子の発現産物であ
るＷｘタンパク質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ法による電気泳
動によって単一のバンドとしてしか検出されていない
（山守ら、育種学雑誌、４０巻（別冊１）第４１０〜４
１１頁、１９９０年）。また、６倍体コムギ（普通系
統）および４倍体コムギ（マカロニ系統など）について
は現在のところモチ性のものは知られていない。
【０００３】〔発明の概要〕
【発明が解決しようとする課題】コムギにおける３種の
Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１の
発現の有無を個々に確認できる分析方法が確立できれ
ば、この分析方法を利用して特定のＷｘ遺伝子の発現を
欠いた変異体を見つけ出し、適当な変異体の組合わせを
選択して交配することにより、コムギにおいてＷｘタン
パク質が産性されない、すなわちＷｘ遺伝子の発現を欠
いたモチ性系統のものを作出することができる。本発明
は穀物、特にコムギにおける３種の遺伝子の発現の有無
を個々に確認できる分析方法および３種のＷｘタンパク
質が産性されないモチコムギを作出する手段を提供する
ことを目的とするものである。
Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１の
発現の有無を個々に確認できる分析方法が確立できれ
ば、この分析方法を利用して特定のＷｘ遺伝子の発現を
欠いた変異体を見つけ出し、適当な変異体の組合わせを
選択して交配することにより、コムギにおいてＷｘタン
パク質が産性されない、すなわちＷｘ遺伝子の発現を欠
いたモチ性系統のものを作出することができる。本発明
は穀物、特にコムギにおける３種の遺伝子の発現の有無
を個々に確認できる分析方法および３種のＷｘタンパク
質が産性されないモチコムギを作出する手段を提供する
ことを目的とするものである。
【０００４】
【課題を解決するための手段】従来のＳＤＳ−ＰＡＧＥ
法でＷｘタンパク質が単一のバンドとしてしか検出され
ない原因は、コムギの胚乳中では１種のＷｘ遺伝子しか
発現していないためか、あるいは、複数の遺伝子が発現
しているがその産物の分子量が同一もしくは近接するこ
とによりＳＤＳ−ＰＡＧＥ法では分離できず単一のタン
パク質として検出されるため、の２点が考えられる。そ
こで本発明者等は、コムギのChinese Spring(CS)および
そのnullisomic-tetrasomic(NT) 系統のＷｘタンパク質
を二次元電気泳動法を用いて解析することによって、３
種遺伝子由来の産物を検出することに成功した。この知
見をもとに本発明を完成するに至った。すなわち、本発
明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法は、穀物のＷｘ遺伝
子の発現産物である複数のＷｘタンパク質を二次元電気
泳動法を用いて分離することを特徴とするものであり、
この好ましい態様は、コムギＷｘ遺伝子の発現産物であ
るＷｘタンパク質Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−
Ｄ１を二次元電気泳動法を用いて分離することを特徴と
するものであり、このさらに好ましい態様は、二次元電
気泳動法が等電点電気泳動とＳＤＳ−ポリアクリルアミ
ドゲル電気泳動との組合わせのものである。また、本発
明によるモチコムギの作出方法は、コムギＷｘ遺伝子Ｗ
ｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を有しそのうち
の２種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コムギ変異体と残
りの１種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コムギ変異体と
を交配し、その後代において上記３種の遺伝子の発現を
欠いた個体を得ることを特徴とするものであり、この好
ましい態様は、交配がＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１およびＷｘ
−Ｂ１の発現を欠いたコムギ変異体とＷｘ遺伝子Ｗｘ−
Ｄ１の発現を欠いたコムギ変異体との組合わせによるも
のである。本発明によるモチコムギの別の作出方法は、
コムギＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−
Ｄ１を有しそのうちの２種の遺伝子Ａ１およびＢ１の発
現を欠いた６倍体コムギ変異体と、二粒系コムギゲノム
構成ＡＡＢＢ個体とを交配し、その後代において上記２
種の遺伝子の発現を欠いた４倍体個体を得ることを特徴
とするものである。本発明はまた、上記作出方法によっ
て得られるモチコムギに関するものでもある。
法でＷｘタンパク質が単一のバンドとしてしか検出され
ない原因は、コムギの胚乳中では１種のＷｘ遺伝子しか
発現していないためか、あるいは、複数の遺伝子が発現
しているがその産物の分子量が同一もしくは近接するこ
とによりＳＤＳ−ＰＡＧＥ法では分離できず単一のタン
パク質として検出されるため、の２点が考えられる。そ
こで本発明者等は、コムギのChinese Spring(CS)および
そのnullisomic-tetrasomic(NT) 系統のＷｘタンパク質
を二次元電気泳動法を用いて解析することによって、３
種遺伝子由来の産物を検出することに成功した。この知
見をもとに本発明を完成するに至った。すなわち、本発
明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法は、穀物のＷｘ遺伝
子の発現産物である複数のＷｘタンパク質を二次元電気
泳動法を用いて分離することを特徴とするものであり、
この好ましい態様は、コムギＷｘ遺伝子の発現産物であ
るＷｘタンパク質Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−
Ｄ１を二次元電気泳動法を用いて分離することを特徴と
するものであり、このさらに好ましい態様は、二次元電
気泳動法が等電点電気泳動とＳＤＳ−ポリアクリルアミ
ドゲル電気泳動との組合わせのものである。また、本発
明によるモチコムギの作出方法は、コムギＷｘ遺伝子Ｗ
ｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を有しそのうち
の２種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コムギ変異体と残
りの１種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コムギ変異体と
を交配し、その後代において上記３種の遺伝子の発現を
欠いた個体を得ることを特徴とするものであり、この好
ましい態様は、交配がＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１およびＷｘ
−Ｂ１の発現を欠いたコムギ変異体とＷｘ遺伝子Ｗｘ−
Ｄ１の発現を欠いたコムギ変異体との組合わせによるも
のである。本発明によるモチコムギの別の作出方法は、
コムギＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−
Ｄ１を有しそのうちの２種の遺伝子Ａ１およびＢ１の発
現を欠いた６倍体コムギ変異体と、二粒系コムギゲノム
構成ＡＡＢＢ個体とを交配し、その後代において上記２
種の遺伝子の発現を欠いた４倍体個体を得ることを特徴
とするものである。本発明はまた、上記作出方法によっ
て得られるモチコムギに関するものでもある。
【０００５】〔発明の具体的説明〕普通系コムギ（Trit
icum aestivum L.（遺伝子型：ＡＡＢＢＤＤ））におけ
る３種のＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ
−Ｄ１は３つの別々の染色体腕７ＡＳ、４ＡＬおよび７
ＤＳ上に存在しており（Chaoら、１９８９年、前記）、
このＷｘ遺伝子の発現によって産生されるＷｘタンパク
質（Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１）は、デ
ンプン粒に結合したタンパク質でアミロース合成に関与
するデンプン合成酵素（顆粒性澱粉合成酵素(Granule B
ound StarchSynthase : GBSS) ）である。Ｗｘ遺伝子発現の確認方法 本発明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法は、穀物のＷｘ
遺伝子の発現産物である複数のＷｘタンパク質を二次元
電気泳動法を用いて分離することを特徴とするものであ
り、特に、コムギにおけるＷｘ遺伝子の発現産物である
Ｗｘタンパク質Ａ１、Ｂ１およびＤ１を二次元電気泳動
法を用いて分離することを特徴とするものであることは
前記したところである。従来のＳＤＳ−ＰＡＧＥによる
電気泳動では、上記３種のＷｘタンパク質が単一のバン
ドとしてしか検出できなかったが、本発明における二次
元電気泳動法により、これら３種のＷｘタンパク質を個
々に分離確認すること、すなわち３種のＷｘ遺伝子の発
現の有無を確認することが可能となった。本発明による
二次元電気泳動は、具体的にはたとえばタンパク質の有
する固有の当電点の差を利用して分離を行う等電点電気
泳動およびタンパク質の分子量の差を利用して分離を行
うＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（以後、Ｓ
ＤＳ−ＰＡＧＥともいう）との組合わせによるものであ
る。等電点電気泳動とＳＤＳ−ＰＡＧＥの組合わせによ
る二次元電気泳動の好ましい方法は、基本的にはＯ´Ｆ
ａｒｒｅｌ１の二次元電気泳動法に従って実施すること
ができる。二次元電気泳動の方法は、基本的には、分析
しようとする試料、すなわちコムギ種子のデンプン（好
ましくは精製されたもの）について一次元目の泳動とし
て等電点電気泳を行った後、泳動方向を９０度変えて二
次元目の電気泳動としてＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ビスアクリ
ルアミド濃度を下げたゲルを用いたＳＰＳ−ＰＡＧＥ
（後述））を行って目的のＷｘタンパク質を二次元方向
に分離し、分離試料について染色操作を施した後に染色
パターンを解析することによってＷｘタンパク質の有
無、すなわちＷｘ遺伝子（Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１、Ｗ
ｘ−Ｄ１）の発現の有無を確認することができる。
icum aestivum L.（遺伝子型：ＡＡＢＢＤＤ））におけ
る３種のＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ
−Ｄ１は３つの別々の染色体腕７ＡＳ、４ＡＬおよび７
ＤＳ上に存在しており（Chaoら、１９８９年、前記）、
このＷｘ遺伝子の発現によって産生されるＷｘタンパク
質（Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１）は、デ
ンプン粒に結合したタンパク質でアミロース合成に関与
するデンプン合成酵素（顆粒性澱粉合成酵素(Granule B
ound StarchSynthase : GBSS) ）である。Ｗｘ遺伝子発現の確認方法 本発明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法は、穀物のＷｘ
遺伝子の発現産物である複数のＷｘタンパク質を二次元
電気泳動法を用いて分離することを特徴とするものであ
り、特に、コムギにおけるＷｘ遺伝子の発現産物である
Ｗｘタンパク質Ａ１、Ｂ１およびＤ１を二次元電気泳動
法を用いて分離することを特徴とするものであることは
前記したところである。従来のＳＤＳ−ＰＡＧＥによる
電気泳動では、上記３種のＷｘタンパク質が単一のバン
ドとしてしか検出できなかったが、本発明における二次
元電気泳動法により、これら３種のＷｘタンパク質を個
々に分離確認すること、すなわち３種のＷｘ遺伝子の発
現の有無を確認することが可能となった。本発明による
二次元電気泳動は、具体的にはたとえばタンパク質の有
する固有の当電点の差を利用して分離を行う等電点電気
泳動およびタンパク質の分子量の差を利用して分離を行
うＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（以後、Ｓ
ＤＳ−ＰＡＧＥともいう）との組合わせによるものであ
る。等電点電気泳動とＳＤＳ−ＰＡＧＥの組合わせによ
る二次元電気泳動の好ましい方法は、基本的にはＯ´Ｆ
ａｒｒｅｌ１の二次元電気泳動法に従って実施すること
ができる。二次元電気泳動の方法は、基本的には、分析
しようとする試料、すなわちコムギ種子のデンプン（好
ましくは精製されたもの）について一次元目の泳動とし
て等電点電気泳を行った後、泳動方向を９０度変えて二
次元目の電気泳動としてＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ビスアクリ
ルアミド濃度を下げたゲルを用いたＳＰＳ−ＰＡＧＥ
（後述））を行って目的のＷｘタンパク質を二次元方向
に分離し、分離試料について染色操作を施した後に染色
パターンを解析することによってＷｘタンパク質の有
無、すなわちＷｘ遺伝子（Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１、Ｗ
ｘ−Ｄ１）の発現の有無を確認することができる。
【０００６】（１）デンプン試料の調製Ｗｘ 遺伝子発現の確認のための試料としてのコムギデン
プンの調製は、デンプンを分離精製するための合目的的
な任意の方法を用いることができ、このような方法とし
てはたとえば、EchtおよびSchwartzの方法（Ｇｅｎｅｔ
ｉｃｓ，９９，２７５〜２８４，１９８１年）があげら
れ、この方法に基づいて粗製デンプンまたは精製デンプ
ンを得ることができる。EchtおよびSchwartzの方法に基
づく調製法の概要は次の通りである。まず、各種系統の
種子（通常は胚を取り除いた完熟種子）を粉砕した後に
ふるい（通常６０μｍ）にかけ、この粉に冷却した緩衝
液または水、好ましくは緩衝液（たとえばドデシル硫酸
ナトリウムを含む緩衝液（ＳＤＳ緩衝液：後記(2) 参
照）を４℃程度に冷却したもの）を加え、ホモジナイズ
した後適当なフィルター（ミラクロスなど）で濾過す
る。瀘液を遠心洗浄（通常１５０００rpm で５分間）
し、上清（後に可溶性タンパク質サンプルとして利用で
きる）を除き、蒸留水およびアセトンなどで同様の洗浄
をした後に乾燥（エバポレーターによる真空乾燥など）
を行う。この方法において乾燥以外の操作は全て低温下
（通常４℃下程度）で行い、乾燥させたデンプンは使用
されるまでは−２０℃程度の低温で保存されることが望
ましい。この方法の詳細は後記実験例に記載されてい
る。調製された粗デンプンまたは精製デンプンは、次に
一次元目の電気泳動に供するための試料に調製する必要
がある。この調製は次のような方法によって行うことが
できる。上記のように調製されたデンプン（好ましくは
精製デンプン）に対してＬｙｓｉｓ緩衝液（たとえば、
尿素（通常８Ｍ）、ノニデット（Nonidet)- Ｐ４０（界
面活性剤を主成分として含む、通常２％）、アンフォリ
ン（Ampholine 、ポリアミノポリカルボン酸を主成分と
して含む、通常２％）、β−メルカプトエタノール（通
常５％）、ポリビニルピロリドン（通常５％）からなる
緩衝液）を一定の割合で（通常デンプン１０ｍｇに対し
て３００μｌ程度）加え、通常、１００℃で２分間熱処
理を加えて氷中などの低温で１０分間程度冷却するかあ
るいは加熱を加えずに室温で１時間程度放置する。これ
を遠心（通常１５０００rpm で１０分間）することによ
り、上清を電気泳動用の試料とすることができる。この
ようにして得られたデンプン溶出液を好ましくは１００
〜３００μ、より好ましくは２００μｌ程度の量で一次
元目の電気泳動、好ましくは等電点電気泳動に供試す
る。試料としての上清の量は通常の泳動の場合には１０
〜２０μｌであり、このような量では最終的にＷｘタン
パク質のスポットの確認が極めて困難であるが、上記の
ような量を使用することによって３種のＷｘタンパク質
のスポットの確認が可能となる。なお、デンプン試料の
濃度の大小に対応してこの使用量を変化させることがで
きる。
プンの調製は、デンプンを分離精製するための合目的的
な任意の方法を用いることができ、このような方法とし
てはたとえば、EchtおよびSchwartzの方法（Ｇｅｎｅｔ
ｉｃｓ，９９，２７５〜２８４，１９８１年）があげら
れ、この方法に基づいて粗製デンプンまたは精製デンプ
ンを得ることができる。EchtおよびSchwartzの方法に基
づく調製法の概要は次の通りである。まず、各種系統の
種子（通常は胚を取り除いた完熟種子）を粉砕した後に
ふるい（通常６０μｍ）にかけ、この粉に冷却した緩衝
液または水、好ましくは緩衝液（たとえばドデシル硫酸
ナトリウムを含む緩衝液（ＳＤＳ緩衝液：後記(2) 参
照）を４℃程度に冷却したもの）を加え、ホモジナイズ
した後適当なフィルター（ミラクロスなど）で濾過す
る。瀘液を遠心洗浄（通常１５０００rpm で５分間）
し、上清（後に可溶性タンパク質サンプルとして利用で
きる）を除き、蒸留水およびアセトンなどで同様の洗浄
をした後に乾燥（エバポレーターによる真空乾燥など）
を行う。この方法において乾燥以外の操作は全て低温下
（通常４℃下程度）で行い、乾燥させたデンプンは使用
されるまでは−２０℃程度の低温で保存されることが望
ましい。この方法の詳細は後記実験例に記載されてい
る。調製された粗デンプンまたは精製デンプンは、次に
一次元目の電気泳動に供するための試料に調製する必要
がある。この調製は次のような方法によって行うことが
できる。上記のように調製されたデンプン（好ましくは
精製デンプン）に対してＬｙｓｉｓ緩衝液（たとえば、
尿素（通常８Ｍ）、ノニデット（Nonidet)- Ｐ４０（界
面活性剤を主成分として含む、通常２％）、アンフォリ
ン（Ampholine 、ポリアミノポリカルボン酸を主成分と
して含む、通常２％）、β−メルカプトエタノール（通
常５％）、ポリビニルピロリドン（通常５％）からなる
緩衝液）を一定の割合で（通常デンプン１０ｍｇに対し
て３００μｌ程度）加え、通常、１００℃で２分間熱処
理を加えて氷中などの低温で１０分間程度冷却するかあ
るいは加熱を加えずに室温で１時間程度放置する。これ
を遠心（通常１５０００rpm で１０分間）することによ
り、上清を電気泳動用の試料とすることができる。この
ようにして得られたデンプン溶出液を好ましくは１００
〜３００μ、より好ましくは２００μｌ程度の量で一次
元目の電気泳動、好ましくは等電点電気泳動に供試す
る。試料としての上清の量は通常の泳動の場合には１０
〜２０μｌであり、このような量では最終的にＷｘタン
パク質のスポットの確認が極めて困難であるが、上記の
ような量を使用することによって３種のＷｘタンパク質
のスポットの確認が可能となる。なお、デンプン試料の
濃度の大小に対応してこの使用量を変化させることがで
きる。
【０００７】（２）等電点電気泳動 等電点電気泳動の具体的な操作方法は、基本的には前記
O'Farrel1 の方法に従うことができるが、一般的な操作
の概要は以下に示す通りである。まず、泳動用の支持溶
液を作成する。支持溶液は、アクリルアミドを基本とす
るゲル（通常３０％）溶液が好ましい。ゲル用溶液とし
ては、通常この目的に用いられる任意のものが適用でき
るが、下記のような組成配合のものが一般的である。 尿素 ３０％アクリルアミド溶液（高純度品） 純水 １０％ＮＰ−４０ アンフォライン（ｐＨ３．５〜１０） アンフォライン（ｐＨ５〜８） １０％過硫酸アンモニウム ＴＥＭＤ（テトラメチルエチレンジアミン） 上記の配合およびアンフォラインの組合せは、必要に応
じて支持溶液としての機能を維持する範囲で任意に変化
させることができる。次に、ゲル溶液を垂直に立てた等
電点電気泳動用ガラス管に注入してゲル化させ、上側に
前記Ｌｙｓｉｓ緩衝液を重層する。一方の陽極電極槽に
酸性溶液（たとえば０．０１Ｎリン酸溶液）を入れ、他
方の陰極電極槽に塩基性溶液（たとえば０．０２Ｎ Ｎ
ａＯＨ）を入れて適当な条件で予備通電した後、デンプ
ン試料を前記したように１００〜３００μｌ、より好ま
しくは２００μｌ程度ゲル上に重層する。適当な泳動条
件、通常、４００Ｖ（定電圧）で１６〜１８時間、必要
に応じて更に８００Ｖ（定電圧）で１時間程度泳動を行
う。泳動条件は全体で５０００〜１００００Ｖ・時間と
なるようにすることが望ましい。泳動終了後、ガラス管
よりゲルを抜き出して適当な緩衝液（たとえばＳＤＳ緩
衝液：０．１ＭトリスＨＣｌ（ｐＨ６．８）、２．３％
ＳＤＳ、５％β−メルカプトエタノール、１０％グリセ
ロール）で平衡化し、これを二次元目のＳＤＳ−ＰＡＧ
Ｅのために使用する。
O'Farrel1 の方法に従うことができるが、一般的な操作
の概要は以下に示す通りである。まず、泳動用の支持溶
液を作成する。支持溶液は、アクリルアミドを基本とす
るゲル（通常３０％）溶液が好ましい。ゲル用溶液とし
ては、通常この目的に用いられる任意のものが適用でき
るが、下記のような組成配合のものが一般的である。 尿素 ３０％アクリルアミド溶液（高純度品） 純水 １０％ＮＰ−４０ アンフォライン（ｐＨ３．５〜１０） アンフォライン（ｐＨ５〜８） １０％過硫酸アンモニウム ＴＥＭＤ（テトラメチルエチレンジアミン） 上記の配合およびアンフォラインの組合せは、必要に応
じて支持溶液としての機能を維持する範囲で任意に変化
させることができる。次に、ゲル溶液を垂直に立てた等
電点電気泳動用ガラス管に注入してゲル化させ、上側に
前記Ｌｙｓｉｓ緩衝液を重層する。一方の陽極電極槽に
酸性溶液（たとえば０．０１Ｎリン酸溶液）を入れ、他
方の陰極電極槽に塩基性溶液（たとえば０．０２Ｎ Ｎ
ａＯＨ）を入れて適当な条件で予備通電した後、デンプ
ン試料を前記したように１００〜３００μｌ、より好ま
しくは２００μｌ程度ゲル上に重層する。適当な泳動条
件、通常、４００Ｖ（定電圧）で１６〜１８時間、必要
に応じて更に８００Ｖ（定電圧）で１時間程度泳動を行
う。泳動条件は全体で５０００〜１００００Ｖ・時間と
なるようにすることが望ましい。泳動終了後、ガラス管
よりゲルを抜き出して適当な緩衝液（たとえばＳＤＳ緩
衝液：０．１ＭトリスＨＣｌ（ｐＨ６．８）、２．３％
ＳＤＳ、５％β−メルカプトエタノール、１０％グリセ
ロール）で平衡化し、これを二次元目のＳＤＳ−ＰＡＧ
Ｅのために使用する。
【０００８】（３）ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電
気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ） ＳＤＳ−ＰＡＧＥの具体的な操作方法については一般的
な文献もしくは書物、（たとえばLaemmli:Nature, ２２
７；６８０〜６８５，１９７０年）の方法を参照するこ
とができるが、好ましくはLaemmli の変法である低ビス
濃度ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動法（Hiran
o,J.Protein chem.８：１１５〜１３０，１９８９およ
びKagawa and Hirano,Japan J.Breed.３８：３２７〜３
３２，１９８８）を参照することができる。操作の概要
は以下に示す通りである。まず、泳動用の分離ゲル用溶
液を作成する。分離ゲル用溶液としては、下記のような
組成配合のものが一般的である。 分離ゲル用緩衝液 分離ゲル用アクリルアミド溶液 純水 １０％過硫酸アンモニウム ＴＥＭＤ 分離ゲル用アクリルアミド溶液は通常次のような配合で
ある。 分離ゲル用アクリルアミドストック液（アクリルアミ
ド：ビス＝３０：０．１３５： アクリルアミド（電気泳動用） メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） 純水 分離ゲル用緩衝液は通常下記のような配合である。 分離ゲル用緩衝液（１Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ８．８／
０．２７％ＳＤＳ）： トリス（電気泳動用） ＳＤＳ 純水 このように調製した分離ゲル溶液を泳動用のガラス板の
間に注入してゲル化させる。濃縮ゲル用溶液を調製す
る。濃縮ゲル用溶液としては、下記のような組成配合の
ものが一般的である。 濃縮ゲル用緩衝液 ３ｍｌ 濃縮ゲル用アクリルアミド溶液 １ｍｌ 純水 ２ｍｌ １０％過硫酸アンモニウム ３０μｌ ＴＥＭＤ ２０μｌ 濃縮ゲル用アクリルアミド溶液は通常次のような配合で
ある。 濃縮ゲル用アクリルアミドストック液（アクリルアミ
ド：ビス＝３０：０．８） アクリルアミド（電気泳動用） メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） 純水 濃縮ゲル用緩衝液としては、通常次のような配合が用い
られる。 分離ゲル用緩衝液（０．２５Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ
６．８／０．２％ＳＤＳ）： トリス（電気泳動用） ＳＤＳ 純水 このように調製した濃縮ゲル用溶液を分離ゲル上に注入
してゲル化させる。電気泳動用アガロース（高純度のも
のが望ましい）用溶液（通常ＳＤＳ緩衝液中アガロ−ス
１％（Ｗ／Ｖ））を濃縮ゲル上に加えてゲル化させる。
分離ゲル用溶液および濃縮ゲル用溶液の配合割合は、必
要に応じてそれらの機能を維持する範囲で任意に変化さ
せることができる。泳動用緩衝液槽に泳動用緩衝液を加
えて適当な泳動条件、通常ゲル１枚当たり２０ｍＡ（定
電流）で泳動を行う。この時、コントロールとしてブロ
ムフェノールブルー（ＢＰＢ）などの色素を標準物質と
して泳動用緩衝液に加えておくことが望ましい。泳動用
緩衝液は通常次のような配合である。 電気泳動用緩衝液： トリス グリシン ＳＤＳ 純水 標準物質を目安として適当な時点で泳動を停止し、分離
ゲルを取り出した後に染色操作を行う。染色方法は、タ
ンパク質を染色するためのものであれば一般的に用いら
れる任意の方法が可能であり、たとえば、クマシーブリ
リアントブルーによる染色などがある。上記したような
二次元電気泳動により得られる結果（Chinese-Spring(C
S)およびそのnullisomic-tetrasomic(NT) 系統を用いた
Ｗｘタンパク質の二次元電気泳動法による解析）は図１
〜２に示される通りであり、３種のＷｘタンパク質の存
在の有無を個々に確認できることがわかる。すなわち、
図１に示される通り、コムギChinese-Spring(CS)系統の
タンパクは高分子量と低分子量の二つのサブユニットグ
ループ（ＳＧ）に分かれること、高分子量のＳＧはＮ７
ＡＴ７Ｂ、Ｎ７ＡＴ７Ｄでは検出されないこと、Ｎ４Ａ
Ｔ４Ｂ、Ｎ４ＡＴ４Ｄでは低分子量ＳＧの酸性側のサブ
ユニットが薄くなるか欠失していること、一方Ｎ７ＤＴ
７Ａ、Ｎ７ＤＴ７Ｂでは逆に塩基性側のサブユニットが
欠失していること、が認められる。これらの結果より、
明らかに高分子量のＳＧは７Ａ染色体上のＷｘ−Ａ１遺
伝子にコードされていることが、また、低分子量のＳＧ
は４Ａ染色体上のＷｘ−Ｂ１遺伝子および７Ｄ染色体上
のＷｘ−Ｄ１遺伝子にコードされており各々の遺伝子由
来のＳＧの等電点は若干異なるため両者のサブユニット
が部分的に重なった形になっていることも明かになっ
た。これらの結果を単純なダイアグラムにすると図２の
ようになる。また、図３は、３種遺伝子のうちＷｘ−Ａ
１だけが発現していない変異個体（ｗｘＡ）、Ｗｘ−Ａ
１およびＷｘ−Ｂ１の両方が発現していない変異個体
（ｗｘＡＢ）、Ｗｘ−Ｄ１だけが発現していない変異個
体（ＷｘＤ）における泳動図およびそのダイアグラムを
示すものである。
気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ） ＳＤＳ−ＰＡＧＥの具体的な操作方法については一般的
な文献もしくは書物、（たとえばLaemmli:Nature, ２２
７；６８０〜６８５，１９７０年）の方法を参照するこ
とができるが、好ましくはLaemmli の変法である低ビス
濃度ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動法（Hiran
o,J.Protein chem.８：１１５〜１３０，１９８９およ
びKagawa and Hirano,Japan J.Breed.３８：３２７〜３
３２，１９８８）を参照することができる。操作の概要
は以下に示す通りである。まず、泳動用の分離ゲル用溶
液を作成する。分離ゲル用溶液としては、下記のような
組成配合のものが一般的である。 分離ゲル用緩衝液 分離ゲル用アクリルアミド溶液 純水 １０％過硫酸アンモニウム ＴＥＭＤ 分離ゲル用アクリルアミド溶液は通常次のような配合で
ある。 分離ゲル用アクリルアミドストック液（アクリルアミ
ド：ビス＝３０：０．１３５： アクリルアミド（電気泳動用） メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） 純水 分離ゲル用緩衝液は通常下記のような配合である。 分離ゲル用緩衝液（１Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ８．８／
０．２７％ＳＤＳ）： トリス（電気泳動用） ＳＤＳ 純水 このように調製した分離ゲル溶液を泳動用のガラス板の
間に注入してゲル化させる。濃縮ゲル用溶液を調製す
る。濃縮ゲル用溶液としては、下記のような組成配合の
ものが一般的である。 濃縮ゲル用緩衝液 ３ｍｌ 濃縮ゲル用アクリルアミド溶液 １ｍｌ 純水 ２ｍｌ １０％過硫酸アンモニウム ３０μｌ ＴＥＭＤ ２０μｌ 濃縮ゲル用アクリルアミド溶液は通常次のような配合で
ある。 濃縮ゲル用アクリルアミドストック液（アクリルアミ
ド：ビス＝３０：０．８） アクリルアミド（電気泳動用） メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） 純水 濃縮ゲル用緩衝液としては、通常次のような配合が用い
られる。 分離ゲル用緩衝液（０．２５Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ
６．８／０．２％ＳＤＳ）： トリス（電気泳動用） ＳＤＳ 純水 このように調製した濃縮ゲル用溶液を分離ゲル上に注入
してゲル化させる。電気泳動用アガロース（高純度のも
のが望ましい）用溶液（通常ＳＤＳ緩衝液中アガロ−ス
１％（Ｗ／Ｖ））を濃縮ゲル上に加えてゲル化させる。
分離ゲル用溶液および濃縮ゲル用溶液の配合割合は、必
要に応じてそれらの機能を維持する範囲で任意に変化さ
せることができる。泳動用緩衝液槽に泳動用緩衝液を加
えて適当な泳動条件、通常ゲル１枚当たり２０ｍＡ（定
電流）で泳動を行う。この時、コントロールとしてブロ
ムフェノールブルー（ＢＰＢ）などの色素を標準物質と
して泳動用緩衝液に加えておくことが望ましい。泳動用
緩衝液は通常次のような配合である。 電気泳動用緩衝液： トリス グリシン ＳＤＳ 純水 標準物質を目安として適当な時点で泳動を停止し、分離
ゲルを取り出した後に染色操作を行う。染色方法は、タ
ンパク質を染色するためのものであれば一般的に用いら
れる任意の方法が可能であり、たとえば、クマシーブリ
リアントブルーによる染色などがある。上記したような
二次元電気泳動により得られる結果（Chinese-Spring(C
S)およびそのnullisomic-tetrasomic(NT) 系統を用いた
Ｗｘタンパク質の二次元電気泳動法による解析）は図１
〜２に示される通りであり、３種のＷｘタンパク質の存
在の有無を個々に確認できることがわかる。すなわち、
図１に示される通り、コムギChinese-Spring(CS)系統の
タンパクは高分子量と低分子量の二つのサブユニットグ
ループ（ＳＧ）に分かれること、高分子量のＳＧはＮ７
ＡＴ７Ｂ、Ｎ７ＡＴ７Ｄでは検出されないこと、Ｎ４Ａ
Ｔ４Ｂ、Ｎ４ＡＴ４Ｄでは低分子量ＳＧの酸性側のサブ
ユニットが薄くなるか欠失していること、一方Ｎ７ＤＴ
７Ａ、Ｎ７ＤＴ７Ｂでは逆に塩基性側のサブユニットが
欠失していること、が認められる。これらの結果より、
明らかに高分子量のＳＧは７Ａ染色体上のＷｘ−Ａ１遺
伝子にコードされていることが、また、低分子量のＳＧ
は４Ａ染色体上のＷｘ−Ｂ１遺伝子および７Ｄ染色体上
のＷｘ−Ｄ１遺伝子にコードされており各々の遺伝子由
来のＳＧの等電点は若干異なるため両者のサブユニット
が部分的に重なった形になっていることも明かになっ
た。これらの結果を単純なダイアグラムにすると図２の
ようになる。また、図３は、３種遺伝子のうちＷｘ−Ａ
１だけが発現していない変異個体（ｗｘＡ）、Ｗｘ−Ａ
１およびＷｘ−Ｂ１の両方が発現していない変異個体
（ｗｘＡＢ）、Ｗｘ−Ｄ１だけが発現していない変異個
体（ＷｘＤ）における泳動図およびそのダイアグラムを
示すものである。
【０００９】モチコムギの作出方法 前述のように、普通系コムギ（Triticum aesutivum L.
）には３種のＷｘ遺伝子、すなわちＷｘ−Ａ１、Ｗｘ
−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１（遺伝子型ＡＡＢＢＤＤ）が存
在しており、このＷｘ遺伝子の発現産物であるＷｘタン
パク質、すなわちＷｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−
Ｄ１タンパク質は、デンプン粒に結合したタンパク質で
あってアミロース合成に関与するデンプン合成酵素であ
る。従って、コムギにおいてこのタンパク質が欠失する
とアミロースが合成されず、アミロペクチンだけからな
るデンプン、すなわちモチデンプンになる。本発明は、
モチコムギの作出方法にも関するものであり、この作出
方法は基本的に、３種のＷｘ遺伝子のうちの特定のＷｘ
遺伝子の発現を欠いた適当な組み合わせによる６倍体コ
ムギ変異体同士の交配によりすべてのＷｘ遺伝子の発現
を欠いた６倍体個体を作出するもの、および特定のＷｘ
遺伝子の発現を欠いた６倍体個体と４倍体（二粒系）コ
ムギゲノム構成ＡＡＢＢ個体との適当な組み合わせによ
る交配により４倍体個体を作出するものである。これら
の作出方法は、上述してきたような本発明によるＷｘ遺
伝子の確認方法の確立により、コムギにおける３種のＷ
ｘ遺伝子の発現の有無、すなわちＷｘ遺伝子発現産物も
しくはＷｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１タンパ
ク質の存在の有無が個々に確認できるようになり、これ
によって本発明作出方法が可能になった。なお、本発明
において「個体」とは、植物体および種子の両者を包含
するものである。
）には３種のＷｘ遺伝子、すなわちＷｘ−Ａ１、Ｗｘ
−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１（遺伝子型ＡＡＢＢＤＤ）が存
在しており、このＷｘ遺伝子の発現産物であるＷｘタン
パク質、すなわちＷｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−
Ｄ１タンパク質は、デンプン粒に結合したタンパク質で
あってアミロース合成に関与するデンプン合成酵素であ
る。従って、コムギにおいてこのタンパク質が欠失する
とアミロースが合成されず、アミロペクチンだけからな
るデンプン、すなわちモチデンプンになる。本発明は、
モチコムギの作出方法にも関するものであり、この作出
方法は基本的に、３種のＷｘ遺伝子のうちの特定のＷｘ
遺伝子の発現を欠いた適当な組み合わせによる６倍体コ
ムギ変異体同士の交配によりすべてのＷｘ遺伝子の発現
を欠いた６倍体個体を作出するもの、および特定のＷｘ
遺伝子の発現を欠いた６倍体個体と４倍体（二粒系）コ
ムギゲノム構成ＡＡＢＢ個体との適当な組み合わせによ
る交配により４倍体個体を作出するものである。これら
の作出方法は、上述してきたような本発明によるＷｘ遺
伝子の確認方法の確立により、コムギにおける３種のＷ
ｘ遺伝子の発現の有無、すなわちＷｘ遺伝子発現産物も
しくはＷｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１タンパ
ク質の存在の有無が個々に確認できるようになり、これ
によって本発明作出方法が可能になった。なお、本発明
において「個体」とは、植物体および種子の両者を包含
するものである。
【００１０】（１）６倍体モチコムギの作出方法 本発明による６倍体モチコムギの作出方法は、コムギＷ
ｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を有
しそのうちの２種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コムギ
変異体と、残りの１種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コ
ムギ変異体とを交配し、その後代において上記３種の遺
伝子の発現を欠いた個体を得ることを特徴とするもので
あり、必要となる上記変異体は、代表的には前記したよ
うな本発明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法を用いるこ
とによって所望の組合わせのものを選択することができ
る。Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ
１のうちの２種の発現を欠いた６倍体コムギ変異体とし
ては、Ｗｘ−Ａ１とＷｘ−Ｂ１、Ｗｘ−Ｂ１とＷｘ−Ｄ
１、およびＷｘ−Ａ１とＷｘ−Ｄ１の組合わせのものが
ありうるが、その代表例としては、Ｗｘ−Ａ１タンパク
質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発現を同時に欠く変異体で
ある。従って、６倍体モチコムギの作出方法の代表例
は、Ｗｘ−Ａ１タンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発
現を共に欠いているがＷｘ−Ｄ１タンパク質の発現能力
を維持している６倍体変異体と、Ｗｘ−Ａ１タンパク質
とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発現能力を共に有しているが
Ｗｘ−Ｄ１タンパク質の発現のみを欠いた６倍体変異体
とを交配することによって全て（３種）のＷｘ遺伝子の
発現を欠いた、すなわち３種のＷｘタンパク質の産性の
ないモチ性の個体を得るものである。この作出方法の具
体的な内容を以下に説明する。Ｗｘ−Ａ１タンパク質と
Ｗｘ−Ｂ１タンパク質の発現を共に欠いているがＷｘ−
Ｄ１タンパク質の発現能力を維持している６倍体コムギ
（たとえば、パンコムギ関東１０７号）の遺伝子型をａ
ａｂｂＤＤと表記すれば、Ｗｘ−Ｄ１タンパク質の発現
のみを欠いたコムギはＡＡＢＢｄｄと表記することがで
きる。この両者を通常の方法によって交配することによ
り、一代雑種個体（Ｆ１種子）を得ることができる。コ
ムギの交配によるＦ１種子の生産方法に関しては一般的
な文献あるいは書物（たとえば植物遺伝学実験法、常脇
恒一郎編集、ｐ２７８〜２７９、１９８２年）を参照す
ることができるが、基本的な操作手順は次のようにす
る。片方のコムギが開花する２〜３日前におしべをピン
セットなどで取り去り（除雄）、パーチメント袋（硫酸
紙）をかぶせる。２〜３日後に袋をはずし、このコムギ
のめしべに他方のコムギの花粉を毛筆ふでなどでふりか
ける。他からの花粉の飛来を避けるため再び袋をかぶせ
る。交配が成功していれば３０〜４０日後に種子が得ら
れる。このようにして得られるＦ１種子は３種の遺伝子
に関してヘテロ（すなわち３性雑種）になるので、その
遺伝子型はＡａＢｂＤｄと表記される。次に、このＦ１
個体を自家受粉させて雑種第２代（Ｆ２個体）を得る。
コムギの自家受粉による種子生産方法については一般的
な文献あるいは書物（たとえば上記植物遺伝学実験法、
第２７７頁を参照することができるが、基本的な操作手
順は、他からの花粉の飛来を避けるため開花１〜３日前
にパーチメント（硫酸紙）袋をかぶせるようにする。上
記のようにして得られるＦ２種子の一粒づつについて、
電気泳動法によりＷｘタンパク質の存在の有無を分析す
る。電気泳動は、本発明によるＷｘ遺伝子の確認方法に
おける二次元電気泳動法を用いればよい。電気泳動分析
の結果Ｗｘタンパク質が検出されないモチ性のコムギ個
体を選抜する。Ｗｘ遺伝子は互いに異なる３つの染色体
上にあるので（Chaoら、Theor.Appl.Genet. 第７８巻、
４９５〜５０４頁、１９８９年、前記）、このＦ２世代
においてはメンデルの法則（分離および独立の法則）に
従って１／６４（＝１／４×１／４×１／４）の割合で
遺伝子型ａａｂｂｄｄのコムギ個体が得られる。すなわ
ち３性雑種のＦ２世代においてはメンデルの法則により
遺伝子型Ａ−Ｂ−Ｄ、Ａ−Ｂ−ｄｄ、Ａ−ｂｂＤ−、ａ
ａＢ−Ｄ−、Ａ−ｂｂｄｄ、ａａＢ−ｄｄ、ａａｂｂｄ
Ｄ、ａａｂｂＤ−、ａａｂｂｄｄの個体がそれぞれ２
７：９：９：９：３：３：３：１（計６４）の比で分離
し（「育種学」、松尾孝嶺著、養賢堂、９８頁、１９７
８年）（ここで、Ａ−はＡＡまたはＡａ、Ｂ−はＢＢま
たはＢｂ、Ｄ−はＤＤまたはＤｄを表す）、従って、Ｆ
２種子において１／６４の割合で遺伝子型ａａｂｂｄｄ
のコムギ個体が得られる。このコムギの表現型は３種の
Ｗｘタンパク質（Ａ１、Ｂ１、Ｄ１）発現が欠失したも
のであり、従って、このコムギ個体はＷｘタンパク質の
発現を欠いたモチコムギとなる。最終的に得られるＷｘ
タンパク質の発現を欠いたコムギ種子（粉）についてア
ミロース含量を測定し、そのモチ性（アミロース０％）
を確認する。アミロース量の測定方法に関しては、一般
的な文献あるいは書物（たとえば黒田ら、育種学雑誌、
第３９巻（別冊２）１４２〜１４３頁、１９８９年）を
参照することができ、通常ヨード・ヨードカリ呈色反応
が用いられる。交配の組合わせとして、Ｗｘ−Ｂ１タン
パク質とＷｘ−Ｄ１タンパク質の発現を欠いた６倍体変
異体とＷｘ−Ａ１タンパク質のみの発現を欠いた６倍体
変異体との組合わせ、およびＷｘ−Ａ１タンパク質とＷ
ｘ−Ｄ１タンパク質の発現を欠いた６倍体変異体とＷｘ
−Ｂ１タンパク質のみの発現を欠いた６倍体変異体との
組合わせの場合においても、上述した方法と同様にして
それぞれＦ２世代において１／６４の割合でＷｘタンパ
ク質発現を欠いたモチコムギを得ることができる。また
交配の一方の変異体である２種の遺伝子の発現を欠いた
６倍体変異体としては、上記の他に１種づつ遺伝子の発
現を欠いたものの交配によって得られたものを使用する
ことも可能である。このようにして得られるモチ性Ｆ２
個体およびその後代の個体（Ｆ３以後の種子または植物
体）はすべてモチコムギとなり、本発明はこれらもすべ
て包含するものである。
ｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を有
しそのうちの２種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コムギ
変異体と、残りの１種の遺伝子の発現を欠いた６倍体コ
ムギ変異体とを交配し、その後代において上記３種の遺
伝子の発現を欠いた個体を得ることを特徴とするもので
あり、必要となる上記変異体は、代表的には前記したよ
うな本発明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法を用いるこ
とによって所望の組合わせのものを選択することができ
る。Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ
１のうちの２種の発現を欠いた６倍体コムギ変異体とし
ては、Ｗｘ−Ａ１とＷｘ−Ｂ１、Ｗｘ−Ｂ１とＷｘ−Ｄ
１、およびＷｘ−Ａ１とＷｘ−Ｄ１の組合わせのものが
ありうるが、その代表例としては、Ｗｘ−Ａ１タンパク
質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発現を同時に欠く変異体で
ある。従って、６倍体モチコムギの作出方法の代表例
は、Ｗｘ−Ａ１タンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発
現を共に欠いているがＷｘ−Ｄ１タンパク質の発現能力
を維持している６倍体変異体と、Ｗｘ−Ａ１タンパク質
とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発現能力を共に有しているが
Ｗｘ−Ｄ１タンパク質の発現のみを欠いた６倍体変異体
とを交配することによって全て（３種）のＷｘ遺伝子の
発現を欠いた、すなわち３種のＷｘタンパク質の産性の
ないモチ性の個体を得るものである。この作出方法の具
体的な内容を以下に説明する。Ｗｘ−Ａ１タンパク質と
Ｗｘ−Ｂ１タンパク質の発現を共に欠いているがＷｘ−
Ｄ１タンパク質の発現能力を維持している６倍体コムギ
（たとえば、パンコムギ関東１０７号）の遺伝子型をａ
ａｂｂＤＤと表記すれば、Ｗｘ−Ｄ１タンパク質の発現
のみを欠いたコムギはＡＡＢＢｄｄと表記することがで
きる。この両者を通常の方法によって交配することによ
り、一代雑種個体（Ｆ１種子）を得ることができる。コ
ムギの交配によるＦ１種子の生産方法に関しては一般的
な文献あるいは書物（たとえば植物遺伝学実験法、常脇
恒一郎編集、ｐ２７８〜２７９、１９８２年）を参照す
ることができるが、基本的な操作手順は次のようにす
る。片方のコムギが開花する２〜３日前におしべをピン
セットなどで取り去り（除雄）、パーチメント袋（硫酸
紙）をかぶせる。２〜３日後に袋をはずし、このコムギ
のめしべに他方のコムギの花粉を毛筆ふでなどでふりか
ける。他からの花粉の飛来を避けるため再び袋をかぶせ
る。交配が成功していれば３０〜４０日後に種子が得ら
れる。このようにして得られるＦ１種子は３種の遺伝子
に関してヘテロ（すなわち３性雑種）になるので、その
遺伝子型はＡａＢｂＤｄと表記される。次に、このＦ１
個体を自家受粉させて雑種第２代（Ｆ２個体）を得る。
コムギの自家受粉による種子生産方法については一般的
な文献あるいは書物（たとえば上記植物遺伝学実験法、
第２７７頁を参照することができるが、基本的な操作手
順は、他からの花粉の飛来を避けるため開花１〜３日前
にパーチメント（硫酸紙）袋をかぶせるようにする。上
記のようにして得られるＦ２種子の一粒づつについて、
電気泳動法によりＷｘタンパク質の存在の有無を分析す
る。電気泳動は、本発明によるＷｘ遺伝子の確認方法に
おける二次元電気泳動法を用いればよい。電気泳動分析
の結果Ｗｘタンパク質が検出されないモチ性のコムギ個
体を選抜する。Ｗｘ遺伝子は互いに異なる３つの染色体
上にあるので（Chaoら、Theor.Appl.Genet. 第７８巻、
４９５〜５０４頁、１９８９年、前記）、このＦ２世代
においてはメンデルの法則（分離および独立の法則）に
従って１／６４（＝１／４×１／４×１／４）の割合で
遺伝子型ａａｂｂｄｄのコムギ個体が得られる。すなわ
ち３性雑種のＦ２世代においてはメンデルの法則により
遺伝子型Ａ−Ｂ−Ｄ、Ａ−Ｂ−ｄｄ、Ａ−ｂｂＤ−、ａ
ａＢ−Ｄ−、Ａ−ｂｂｄｄ、ａａＢ−ｄｄ、ａａｂｂｄ
Ｄ、ａａｂｂＤ−、ａａｂｂｄｄの個体がそれぞれ２
７：９：９：９：３：３：３：１（計６４）の比で分離
し（「育種学」、松尾孝嶺著、養賢堂、９８頁、１９７
８年）（ここで、Ａ−はＡＡまたはＡａ、Ｂ−はＢＢま
たはＢｂ、Ｄ−はＤＤまたはＤｄを表す）、従って、Ｆ
２種子において１／６４の割合で遺伝子型ａａｂｂｄｄ
のコムギ個体が得られる。このコムギの表現型は３種の
Ｗｘタンパク質（Ａ１、Ｂ１、Ｄ１）発現が欠失したも
のであり、従って、このコムギ個体はＷｘタンパク質の
発現を欠いたモチコムギとなる。最終的に得られるＷｘ
タンパク質の発現を欠いたコムギ種子（粉）についてア
ミロース含量を測定し、そのモチ性（アミロース０％）
を確認する。アミロース量の測定方法に関しては、一般
的な文献あるいは書物（たとえば黒田ら、育種学雑誌、
第３９巻（別冊２）１４２〜１４３頁、１９８９年）を
参照することができ、通常ヨード・ヨードカリ呈色反応
が用いられる。交配の組合わせとして、Ｗｘ−Ｂ１タン
パク質とＷｘ−Ｄ１タンパク質の発現を欠いた６倍体変
異体とＷｘ−Ａ１タンパク質のみの発現を欠いた６倍体
変異体との組合わせ、およびＷｘ−Ａ１タンパク質とＷ
ｘ−Ｄ１タンパク質の発現を欠いた６倍体変異体とＷｘ
−Ｂ１タンパク質のみの発現を欠いた６倍体変異体との
組合わせの場合においても、上述した方法と同様にして
それぞれＦ２世代において１／６４の割合でＷｘタンパ
ク質発現を欠いたモチコムギを得ることができる。また
交配の一方の変異体である２種の遺伝子の発現を欠いた
６倍体変異体としては、上記の他に１種づつ遺伝子の発
現を欠いたものの交配によって得られたものを使用する
ことも可能である。このようにして得られるモチ性Ｆ２
個体およびその後代の個体（Ｆ３以後の種子または植物
体）はすべてモチコムギとなり、本発明はこれらもすべ
て包含するものである。
【００１１】（２）４倍体モチコムギの作出方法 本発明による４倍体モチコムギの作出方法は、コムギＷ
ｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を有
しそのうちの２種の遺伝子Ａ１およびＢ１の発現を欠い
た６倍体コムギ変異体と、二粒系コムギゲノム構成ＡＡ
ＢＢ個体とを交配し、その後代において上記２種の遺伝
子の発現を欠いた４倍体個体を得ることを特徴とするも
のである。必要となる上記６倍体コムギ変異体は、本発
明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法を用いることによっ
て所望のものを選択することができ、また４倍体コムギ
は従来知られているものの中から所望のものを選択する
ことができる。この４倍体モチコムギの作出方法は言い
換えれば、Ｗｘ−Ａ１タンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク
質の発現を共に欠いているがＷｘ−Ｄ１タンパク質の発
現能力を維持している６倍体変異体と、二粒系コムギゲ
ノム構成ＡＡＢＢ個体とを交配することによって全ての
遺伝子（２種）の発現を欠いた、すなわちＷｘタンパク
質の産生のないモチ性のコムギ個体を得るものである。
この作出方法の具体的な内容を以下に説明する。６倍体
コムギと４倍体コムギの交雑後代から４倍体コムギが出
現することは古くから知られており（「小麦の合成」、
木原均著、２７４〜２９３頁、講談社、１９７３年）、
いくつかの４倍体コムギが得られている。Ｗｘ−Ａ１タ
ンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発現を同時に欠いた
６倍体コムギ（染色体数２ｎ＝４２）（たとえばパンコ
ムギ関東１０７号）の遺伝子型をａａｂｂＤＤと表記す
れば、Ｗｘ−Ａ１タンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の
発現能力を持つ４倍体コムギ（染色体数２ｎ＝２８）
（マカロニ種など）はＷｘ−Ｄ１遺伝子を得たないので
ＡＡＢＢと表記することができる。この両者を通常の方
法によって交配することによりＦ１個体を得ることがで
きる。コムギの６倍体コムギと４倍体の交配によるＦ１
種子の生産方法に関しては一般的な文献あるいは書物
（たとえば前記植物遺伝学実験法、２７８〜２７９頁）
を参照することができるが、基本的な操作手順は（１）
の６倍体もチコムギの作出方法において前記した方法の
ようにする。このようにして得られるＦ１種子の遺伝子
型はＡａＢｂＤとなる。次に、このＦ１個体を自家受粉
させてＦ２個体を得る。コムギの自家受粉による種子生
産方法については(1) ６倍体コムギの作出方法の場合と
同様である。上記のようにして得られるＦ２種子の一粒
づつについて、電気泳動法によりＷｘタンパク質の存在
の有無を分析する。電気泳動は、本発明によるＷｘ遺伝
子の確認方法における二次元電気泳動法を用いればよ
い。また、アミロースの測定（ヨー素・ヨードカリ呈色
反応など）によればより簡単に確認することができる。
実際には、種子を分析用と次世代の植物体栽培のために
胚を含む部分を分けておく必要がある。電気泳動分析あ
るいはアミロース測定の結果Ｗｘタンパク質が検出され
ないモチ性のコムギ個体を選抜する。上記のＦ１個体の
遺伝子型において、Ａ・ａおよびＢ・ｂに関してのみ注
目すれば、これらは対をなしているので、メンデルの法
則により後代のＦ２において遺伝子型ａａｂｂの個体が
１／６４（＝１／４×１／４）の割合で得られ、Ｄに関
しては対をなしていないので、この遺伝子（Ｗｘ−Ｄ
１）が座乗している染色体（７Ｄ）はＦ２世代以降に脱
落するものがある（前記、「小麦の合成」２７４〜２９
３頁、１９７３年、１４頁６行）。従ってａａｂｂの個
体の中にＷｘ−Ｄ１も欠いた個体が出現する。Ｗｘ−Ｄ
１の欠失はこれが座乗する染色体（７Ｄ）の欠落の結果
であるので、６倍体コムギではＷｘ−Ｄ１はなくなら
ず、染色体数の減少した４倍体コムギにおいてすべての
Ｗｘタンパク質（この場合はＷｘ−Ａ１タンパク質とＷ
ｘ−Ｂ１タンパク質の２種）をなくすことが可能とな
る。このように染色体を欠落したものは正常な６倍体コ
ムギに復帰することはなく、減少の方向に進み４倍体と
なる（前記「小麦の合成」２７４〜２９３頁、１９７３
年、１４頁６行）。すなわち、染色体数の減少した４倍
体コムギでのみＷｘタンパクの削除された個体が得られ
る。このコムギ個体はＷｘタンパク質の発現を欠いたモ
チコムギとなる。最終的に得られるＷｘタンパク質の発
現を欠いたコムギ種子について、染色体数（２ｎ＝２
８）およびアミロース含量を測定し（通常ヨウ素・ヨウ
素カリ呈色反応）、そのモチ性（アミロース０％）を確
認する。アミロース量の測定方法に関しては、一般的な
文献あるいは書物（たとえば黒田ら、育種学雑誌、前
出）を参照することができる。また染色体数の測定に関
してはたとえば前記植物遺伝学実験法、２８４〜２８６
頁を参照することができ、その方法は基本的には、発芽
した種子の根を前処理（氷水（０℃）中２４時間程度浸
漬）し、固定液（たとえば、酢酸：エチルアルコール＝
１：３の比からなる液）で固定した後、それを酢酸カー
ミン（カーミンを１％になるように４５％酢酸に溶かし
たもの）に浸して、染色体を染め、顕微鏡でその数を数
えるものである。また交配の一方の変異体である２種の
遺伝子の発現を欠いた６倍変異体としては、上記の他に
１種づつ遺伝子の発現を欠いたものの交配によって得ら
れたものを使用することも可能である。このようにして
得られるモチ性Ｆ２個体およびその後代の個体（Ｆ３以
後の種子または植物体）はすべてモチコムギとなり、本
発明はこれらもすべて包含するものである。
ｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を有
しそのうちの２種の遺伝子Ａ１およびＢ１の発現を欠い
た６倍体コムギ変異体と、二粒系コムギゲノム構成ＡＡ
ＢＢ個体とを交配し、その後代において上記２種の遺伝
子の発現を欠いた４倍体個体を得ることを特徴とするも
のである。必要となる上記６倍体コムギ変異体は、本発
明によるＷｘ遺伝子発現の確認方法を用いることによっ
て所望のものを選択することができ、また４倍体コムギ
は従来知られているものの中から所望のものを選択する
ことができる。この４倍体モチコムギの作出方法は言い
換えれば、Ｗｘ−Ａ１タンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク
質の発現を共に欠いているがＷｘ−Ｄ１タンパク質の発
現能力を維持している６倍体変異体と、二粒系コムギゲ
ノム構成ＡＡＢＢ個体とを交配することによって全ての
遺伝子（２種）の発現を欠いた、すなわちＷｘタンパク
質の産生のないモチ性のコムギ個体を得るものである。
この作出方法の具体的な内容を以下に説明する。６倍体
コムギと４倍体コムギの交雑後代から４倍体コムギが出
現することは古くから知られており（「小麦の合成」、
木原均著、２７４〜２９３頁、講談社、１９７３年）、
いくつかの４倍体コムギが得られている。Ｗｘ−Ａ１タ
ンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の発現を同時に欠いた
６倍体コムギ（染色体数２ｎ＝４２）（たとえばパンコ
ムギ関東１０７号）の遺伝子型をａａｂｂＤＤと表記す
れば、Ｗｘ−Ａ１タンパク質とＷｘ−Ｂ１タンパク質の
発現能力を持つ４倍体コムギ（染色体数２ｎ＝２８）
（マカロニ種など）はＷｘ−Ｄ１遺伝子を得たないので
ＡＡＢＢと表記することができる。この両者を通常の方
法によって交配することによりＦ１個体を得ることがで
きる。コムギの６倍体コムギと４倍体の交配によるＦ１
種子の生産方法に関しては一般的な文献あるいは書物
（たとえば前記植物遺伝学実験法、２７８〜２７９頁）
を参照することができるが、基本的な操作手順は（１）
の６倍体もチコムギの作出方法において前記した方法の
ようにする。このようにして得られるＦ１種子の遺伝子
型はＡａＢｂＤとなる。次に、このＦ１個体を自家受粉
させてＦ２個体を得る。コムギの自家受粉による種子生
産方法については(1) ６倍体コムギの作出方法の場合と
同様である。上記のようにして得られるＦ２種子の一粒
づつについて、電気泳動法によりＷｘタンパク質の存在
の有無を分析する。電気泳動は、本発明によるＷｘ遺伝
子の確認方法における二次元電気泳動法を用いればよ
い。また、アミロースの測定（ヨー素・ヨードカリ呈色
反応など）によればより簡単に確認することができる。
実際には、種子を分析用と次世代の植物体栽培のために
胚を含む部分を分けておく必要がある。電気泳動分析あ
るいはアミロース測定の結果Ｗｘタンパク質が検出され
ないモチ性のコムギ個体を選抜する。上記のＦ１個体の
遺伝子型において、Ａ・ａおよびＢ・ｂに関してのみ注
目すれば、これらは対をなしているので、メンデルの法
則により後代のＦ２において遺伝子型ａａｂｂの個体が
１／６４（＝１／４×１／４）の割合で得られ、Ｄに関
しては対をなしていないので、この遺伝子（Ｗｘ−Ｄ
１）が座乗している染色体（７Ｄ）はＦ２世代以降に脱
落するものがある（前記、「小麦の合成」２７４〜２９
３頁、１９７３年、１４頁６行）。従ってａａｂｂの個
体の中にＷｘ−Ｄ１も欠いた個体が出現する。Ｗｘ−Ｄ
１の欠失はこれが座乗する染色体（７Ｄ）の欠落の結果
であるので、６倍体コムギではＷｘ−Ｄ１はなくなら
ず、染色体数の減少した４倍体コムギにおいてすべての
Ｗｘタンパク質（この場合はＷｘ−Ａ１タンパク質とＷ
ｘ−Ｂ１タンパク質の２種）をなくすことが可能とな
る。このように染色体を欠落したものは正常な６倍体コ
ムギに復帰することはなく、減少の方向に進み４倍体と
なる（前記「小麦の合成」２７４〜２９３頁、１９７３
年、１４頁６行）。すなわち、染色体数の減少した４倍
体コムギでのみＷｘタンパクの削除された個体が得られ
る。このコムギ個体はＷｘタンパク質の発現を欠いたモ
チコムギとなる。最終的に得られるＷｘタンパク質の発
現を欠いたコムギ種子について、染色体数（２ｎ＝２
８）およびアミロース含量を測定し（通常ヨウ素・ヨウ
素カリ呈色反応）、そのモチ性（アミロース０％）を確
認する。アミロース量の測定方法に関しては、一般的な
文献あるいは書物（たとえば黒田ら、育種学雑誌、前
出）を参照することができる。また染色体数の測定に関
してはたとえば前記植物遺伝学実験法、２８４〜２８６
頁を参照することができ、その方法は基本的には、発芽
した種子の根を前処理（氷水（０℃）中２４時間程度浸
漬）し、固定液（たとえば、酢酸：エチルアルコール＝
１：３の比からなる液）で固定した後、それを酢酸カー
ミン（カーミンを１％になるように４５％酢酸に溶かし
たもの）に浸して、染色体を染め、顕微鏡でその数を数
えるものである。また交配の一方の変異体である２種の
遺伝子の発現を欠いた６倍変異体としては、上記の他に
１種づつ遺伝子の発現を欠いたものの交配によって得ら
れたものを使用することも可能である。このようにして
得られるモチ性Ｆ２個体およびその後代の個体（Ｆ３以
後の種子または植物体）はすべてモチコムギとなり、本
発明はこれらもすべて包含するものである。
【００１２】
【実施例】以下は、実施例によって本発明を更に詳細に
説明するものであるが、本発明はこれによって限定され
るものではない。例１ ：コムギＷｘ遺伝子発現（Ｗｘタンパク質）の確認 （１）デンプンの精製 デンプン精製は、EchtとSchwartzの方法にもとづいて行
われた。まず、各品種系統の完熟種子から胚を取り除
き、粉砕した後に６０μｍのふるいを通して粉を準備し
た。粉２００mg当り１mlの割合で冷却したドデシル硫酸
ナトリウムを含むバッファー（SDS-buffer：0.1m Tris-
HCl,pH 6.8, 2.3%,SDS,5%β-mercapto ethanol,10% gly
cerol）を加え、２分間ホモジェンイザーをかけた後ミ
ラクロスを用いて濾過した。次に濾液を15000rpmで５分
間遠心して、上清を捨て、再びSDS-buhherを加えて懸濁
し、再び遠心をかけた。この操作を３回繰り返した後、
蒸留水を加えて同様な操作を２回、さらに蒸留水をアセ
トンに変えて３回行い、最後にロタリーエバポレーター
により真空乾燥を行った。乾燥以外の操作は全て４℃下
で行い、乾燥させたデンプンは、−２０℃で使用まで保
存された。上述の様に、精製されたテンプン１０mgに３
００mlのLysis-buffer(8M Urea,2% Nonidet-P40,2% Amp
holine pH 3.5 〜10, 5% β-mercaptoethanol,5% poly
vinylpyrrolidone) を加え、１００℃で２分間熱処理を
加えて氷中で１０分間冷却する（あるいは加熱を加え
ず、室温で１時間放置する）。１５０００rpm で１０分
間遠心し、上清２００μｌを１次元目であるＩＥＦ（等
電点電気泳動）に供試する。 （２）二次元電気泳動 二次元電気泳動を次の操作方法に従って実施した。一次
元目の等電点電気泳動用ガラス管を用意し、底部をバラ
フィルムでシールする。紙タオルを底に敷いたガラス管
立てに、垂直に立てる。１００mlビーカー中に試薬を以
下の順に混合し、一次元目のゲル溶液を調製する。 （１００数本分） 尿素 ４．８ｇ ３０％アクリルアミド溶液（高純度品） １．１６ml 純水 ２．８４ml １０％ＮＰ−４０ ２．０ml アイフォライン（pH３．５〜１０） ０．２５ml アイフォライン（pH５〜８） ０．２５ml １０％過硫酸アンモニウム １５μｌ ＴＥＭＥＤ １０μｌ １０mlの注射器を用いて、ガラス管の上部より１cmの高
さまで、ゲル溶液を注入する。このとき、ガラス管中に
気泡が入らないように注意し、気泡が入ってしまった
ら、ガラス管を軽く振って気泡を除く。ゲルの上部に純
水を重層する。２〜３時間放置して、ゲル化する。ゲル
に重層した水を注射器で除き、１０μｌのLysis 緩衝液
をゲルに重層する。陽極側電極層（下側）に０．０１Ｎ
リン酸を入れ、ガラス管のLysis 緩衝液の上に０．０２
Ｎ ＮａＯＨを静かに重層し、陰極側電極層（上側）も
０．０２ＮＮａＯＨで満たす。２００Ｖ（定電圧）で１
５分間、３００Ｖ（定電圧）で１５分間、４００Ｖ（定
電圧）で３０分間、予備通電する。予備通電終了後、一
旦、陰極側電極槽（上側）の溶液を除き、ガラス管中の
溶液を注射器で抜き取る。エッペンドルフ・チューブに
サンプルを準備する。調製した試料の２００μｌに重層
する。残存するＮａＯＨと試料が反応して沈澱が生じる
こともあるので注意する。その上に、３倍に希釈したLy
sis 緩衝液を１０μｌ重層し、更に、０．０２ＮＮａＯ
Ｈを重層する。４００Ｖ（定電圧）で１６〜１８時間、
泳動する。 ８００Ｖ（定電圧）で１時間、泳動する。
（全体で５０００〜１００００Ｖ・時間となるようにす
る。） 純水を満たした注射器で、ゲルとガラスの間に水を注入
しながら、静かにゲルを抜き出す。このとき、陽極側に
銅線等を入れると、後で酸性側／塩基性側の確認が容易
にできる。小型サンプル管に泳動後のゲルを入れ、ＳＤ
Ｓサンプル緩衝液を５mlを加えて３０分間、振とうして
ゲルを平衡化する。液を交換して、更に、３０分間振と
うして平衡化する。 二次元目分離ゲル（１５％）を下記の配合で調製する
（１枚分） 分離ゲル用緩衝液 ６．３ml 分離ゲル用アクリルアミド溶液 ８．５ml 純水２．０ml １０％過硫酸アンモニウム １２０μｌ ＴＥＭＥＤ ２０μｌ 分離ゲル用アクリルアミド溶液および分離ゲル用緩衝液
は次のように作成する。 分離ゲル用アクリルアミドストック液 （アクリルアミド：ビス＝３０：０．１３５） アクリルアミド（電気泳動用） ３０ｇ メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） ０．１３５ｇ 純水に溶かして１００mlとし、遮光して保存。 分離ゲル用緩衝液（１Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ８．８／０．２７％Ｓ ＤＳ） トリス（電気泳動用） １２．１１ｇ ＳＤＳ ０．２７ｇ 約８０mlの純水に溶かし、塩酸によりｐＨを８．８に調
整する。最終容量を１０mlとする。二次元目用のガラス
板の間に、上から約３cmの高さまで注入する。約１mlの
純水が静から重層して、３０分間放置する。 二次元目濃縮ゲルを下記の配合で調製する（１枚分） 濃縮ゲル用緩衝液 ３ml 濃縮ゲル用アクリルアミド溶液 １ml 純水 ２ml １０％過硫酸アンモニウム ３０μｌ ＴＥＭＥＤ ２０μｌ 濃縮ゲル用緩衝液および濃縮ゲル用アクリルアミド溶液
は次のように作成する。 濃縮ゲル用アクリルアミドストック液 （アクリルアミド：ビス＝３０：０．８） アクリルアミド（電気泳動用） ３０ｇ メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） ０．８ｇ 純水に溶かして１００mlとし、遮光して保存。 分離ゲル用緩衝液（０．２５Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ６．８／０．２ ％ＳＤＳ） トリス（電気泳動用） ３．０３ｇ ＳＤＳ ０．２ｇ 約８０mlの純水に溶かし、塩酸によりｐＨを６．８に調
整する。最終容量を１０mlとする。これを分離ゲルの上
に注入する。高純度の電気泳動用アガロースをＳＤＳサ
ンプル緩衝液に１％（Ｗ／Ｖ）になるように加えて、湯
浴中で加熱して溶解する。濃縮ゲルの上に、アガロース
溶液を加えて、そこに平衡化した一次元目のゲルを静か
に、気泡を入れないようにして乗せる。このとき、ゲル
を乗せるための適当なアクリル板を作成しておくと便利
である。泳動用緩衝液槽に泳動用緩衝液を加えて、ゲル
１枚辺り２０ｍＡ（定電流）で泳動する。電気泳動用緩
衝液は次のように作成する。 電気泳動用緩衝液 トリス ３．０ｇ グリシン １４．４ｇ ＳＤＳ １．０ｇ 純水に溶かして１０００mlとする。 上部緩衝液槽にＢＰＢを少量加えておく。ＢＰＢがゲル
の下部から５mmのところまで移動したら（約４時間
後）、泳動を停止する。分離ゲルを取り出し、クマシー
ブリリアントブルーＲ２５０あるいは銀染法で染色す
る。上述の二次元電気泳動の結果は図１〜２に示されて
いる。図１〜２は、コムギChinese Spring(CS)およびそ
のnullisomic-tetrasomic(NT) 系統を用いたＷｘタンパ
ク質の二次元電気泳動による解析結果を示すものであ
る。図１に示される通り、(i) コムギChinese-Spring(C
S)系統のタンパクは高分子量と低分子量の二つのサブユ
ニットグループ（ＳＧ）に分かれた。 (ii)高分子量のＳＧはＮ７ＡＴ７Ｂ、Ｎ７ＡＴ７Ｄでは
検出されなかった。 (iii) Ｎ４ＡＴ４Ｂ、Ｎ４ＡＴ４Ｄでは低分子量ＳＧの
酸性側のサブユニットが薄くなるか欠失していた。一方
(iv)Ｎ７ＤＴ７Ａ、Ｎ７ＤＴ７Ｂでは逆に塩基性側のサ
ブユニットが欠失していた。これらの結果より、明らか
に高分子量のＳＧは７Ａ染色体上のＷｘ−Ａ１遺伝子に
コードされていることが、また低分子量のＳＧは４Ａ染
色体上のＷｘ−Ｂ１遺伝子および７Ｄ染色体上のＷｘ−
Ｄ１遺伝子にコードされており、各々の遺伝子由来のＳ
Ｇの等電点は若干異なるため両者のサブユニットが部分
的に重なった形になっていることも明かになった。これ
らの結果を単純なダイアグラムにして図２に表した。国
内品種、系統のＷｘタンンパクをこのダイアグラムに当
てはめてみたところ、３遺伝子のうちＷｘ−Ａ１だけが
発現していない変異個体（ｗｘＡ ）、Ｗｘ−Ａ１および
Ｗｘ−Ｂ１の両方が発現していない変異個体（ｗ
ｘＡＢ ）が存在することが確認された（図３）。図３中
のＡ３−Ｂ３は、Ｗｘ−Ｄ１遺伝子のみが発現していな
い変異個体（ｗｘＤ ）における泳動図およびそのダイア
グラムを示す。
説明するものであるが、本発明はこれによって限定され
るものではない。例１ ：コムギＷｘ遺伝子発現（Ｗｘタンパク質）の確認 （１）デンプンの精製 デンプン精製は、EchtとSchwartzの方法にもとづいて行
われた。まず、各品種系統の完熟種子から胚を取り除
き、粉砕した後に６０μｍのふるいを通して粉を準備し
た。粉２００mg当り１mlの割合で冷却したドデシル硫酸
ナトリウムを含むバッファー（SDS-buffer：0.1m Tris-
HCl,pH 6.8, 2.3%,SDS,5%β-mercapto ethanol,10% gly
cerol）を加え、２分間ホモジェンイザーをかけた後ミ
ラクロスを用いて濾過した。次に濾液を15000rpmで５分
間遠心して、上清を捨て、再びSDS-buhherを加えて懸濁
し、再び遠心をかけた。この操作を３回繰り返した後、
蒸留水を加えて同様な操作を２回、さらに蒸留水をアセ
トンに変えて３回行い、最後にロタリーエバポレーター
により真空乾燥を行った。乾燥以外の操作は全て４℃下
で行い、乾燥させたデンプンは、−２０℃で使用まで保
存された。上述の様に、精製されたテンプン１０mgに３
００mlのLysis-buffer(8M Urea,2% Nonidet-P40,2% Amp
holine pH 3.5 〜10, 5% β-mercaptoethanol,5% poly
vinylpyrrolidone) を加え、１００℃で２分間熱処理を
加えて氷中で１０分間冷却する（あるいは加熱を加え
ず、室温で１時間放置する）。１５０００rpm で１０分
間遠心し、上清２００μｌを１次元目であるＩＥＦ（等
電点電気泳動）に供試する。 （２）二次元電気泳動 二次元電気泳動を次の操作方法に従って実施した。一次
元目の等電点電気泳動用ガラス管を用意し、底部をバラ
フィルムでシールする。紙タオルを底に敷いたガラス管
立てに、垂直に立てる。１００mlビーカー中に試薬を以
下の順に混合し、一次元目のゲル溶液を調製する。 （１００数本分） 尿素 ４．８ｇ ３０％アクリルアミド溶液（高純度品） １．１６ml 純水 ２．８４ml １０％ＮＰ−４０ ２．０ml アイフォライン（pH３．５〜１０） ０．２５ml アイフォライン（pH５〜８） ０．２５ml １０％過硫酸アンモニウム １５μｌ ＴＥＭＥＤ １０μｌ １０mlの注射器を用いて、ガラス管の上部より１cmの高
さまで、ゲル溶液を注入する。このとき、ガラス管中に
気泡が入らないように注意し、気泡が入ってしまった
ら、ガラス管を軽く振って気泡を除く。ゲルの上部に純
水を重層する。２〜３時間放置して、ゲル化する。ゲル
に重層した水を注射器で除き、１０μｌのLysis 緩衝液
をゲルに重層する。陽極側電極層（下側）に０．０１Ｎ
リン酸を入れ、ガラス管のLysis 緩衝液の上に０．０２
Ｎ ＮａＯＨを静かに重層し、陰極側電極層（上側）も
０．０２ＮＮａＯＨで満たす。２００Ｖ（定電圧）で１
５分間、３００Ｖ（定電圧）で１５分間、４００Ｖ（定
電圧）で３０分間、予備通電する。予備通電終了後、一
旦、陰極側電極槽（上側）の溶液を除き、ガラス管中の
溶液を注射器で抜き取る。エッペンドルフ・チューブに
サンプルを準備する。調製した試料の２００μｌに重層
する。残存するＮａＯＨと試料が反応して沈澱が生じる
こともあるので注意する。その上に、３倍に希釈したLy
sis 緩衝液を１０μｌ重層し、更に、０．０２ＮＮａＯ
Ｈを重層する。４００Ｖ（定電圧）で１６〜１８時間、
泳動する。 ８００Ｖ（定電圧）で１時間、泳動する。
（全体で５０００〜１００００Ｖ・時間となるようにす
る。） 純水を満たした注射器で、ゲルとガラスの間に水を注入
しながら、静かにゲルを抜き出す。このとき、陽極側に
銅線等を入れると、後で酸性側／塩基性側の確認が容易
にできる。小型サンプル管に泳動後のゲルを入れ、ＳＤ
Ｓサンプル緩衝液を５mlを加えて３０分間、振とうして
ゲルを平衡化する。液を交換して、更に、３０分間振と
うして平衡化する。 二次元目分離ゲル（１５％）を下記の配合で調製する
（１枚分） 分離ゲル用緩衝液 ６．３ml 分離ゲル用アクリルアミド溶液 ８．５ml 純水２．０ml １０％過硫酸アンモニウム １２０μｌ ＴＥＭＥＤ ２０μｌ 分離ゲル用アクリルアミド溶液および分離ゲル用緩衝液
は次のように作成する。 分離ゲル用アクリルアミドストック液 （アクリルアミド：ビス＝３０：０．１３５） アクリルアミド（電気泳動用） ３０ｇ メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） ０．１３５ｇ 純水に溶かして１００mlとし、遮光して保存。 分離ゲル用緩衝液（１Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ８．８／０．２７％Ｓ ＤＳ） トリス（電気泳動用） １２．１１ｇ ＳＤＳ ０．２７ｇ 約８０mlの純水に溶かし、塩酸によりｐＨを８．８に調
整する。最終容量を１０mlとする。二次元目用のガラス
板の間に、上から約３cmの高さまで注入する。約１mlの
純水が静から重層して、３０分間放置する。 二次元目濃縮ゲルを下記の配合で調製する（１枚分） 濃縮ゲル用緩衝液 ３ml 濃縮ゲル用アクリルアミド溶液 １ml 純水 ２ml １０％過硫酸アンモニウム ３０μｌ ＴＥＭＥＤ ２０μｌ 濃縮ゲル用緩衝液および濃縮ゲル用アクリルアミド溶液
は次のように作成する。 濃縮ゲル用アクリルアミドストック液 （アクリルアミド：ビス＝３０：０．８） アクリルアミド（電気泳動用） ３０ｇ メチレンビスアクリルアミド（電気泳動用） ０．８ｇ 純水に溶かして１００mlとし、遮光して保存。 分離ゲル用緩衝液（０．２５Ｍトリス・ＨＣｌ ｐＨ６．８／０．２ ％ＳＤＳ） トリス（電気泳動用） ３．０３ｇ ＳＤＳ ０．２ｇ 約８０mlの純水に溶かし、塩酸によりｐＨを６．８に調
整する。最終容量を１０mlとする。これを分離ゲルの上
に注入する。高純度の電気泳動用アガロースをＳＤＳサ
ンプル緩衝液に１％（Ｗ／Ｖ）になるように加えて、湯
浴中で加熱して溶解する。濃縮ゲルの上に、アガロース
溶液を加えて、そこに平衡化した一次元目のゲルを静か
に、気泡を入れないようにして乗せる。このとき、ゲル
を乗せるための適当なアクリル板を作成しておくと便利
である。泳動用緩衝液槽に泳動用緩衝液を加えて、ゲル
１枚辺り２０ｍＡ（定電流）で泳動する。電気泳動用緩
衝液は次のように作成する。 電気泳動用緩衝液 トリス ３．０ｇ グリシン １４．４ｇ ＳＤＳ １．０ｇ 純水に溶かして１０００mlとする。 上部緩衝液槽にＢＰＢを少量加えておく。ＢＰＢがゲル
の下部から５mmのところまで移動したら（約４時間
後）、泳動を停止する。分離ゲルを取り出し、クマシー
ブリリアントブルーＲ２５０あるいは銀染法で染色す
る。上述の二次元電気泳動の結果は図１〜２に示されて
いる。図１〜２は、コムギChinese Spring(CS)およびそ
のnullisomic-tetrasomic(NT) 系統を用いたＷｘタンパ
ク質の二次元電気泳動による解析結果を示すものであ
る。図１に示される通り、(i) コムギChinese-Spring(C
S)系統のタンパクは高分子量と低分子量の二つのサブユ
ニットグループ（ＳＧ）に分かれた。 (ii)高分子量のＳＧはＮ７ＡＴ７Ｂ、Ｎ７ＡＴ７Ｄでは
検出されなかった。 (iii) Ｎ４ＡＴ４Ｂ、Ｎ４ＡＴ４Ｄでは低分子量ＳＧの
酸性側のサブユニットが薄くなるか欠失していた。一方
(iv)Ｎ７ＤＴ７Ａ、Ｎ７ＤＴ７Ｂでは逆に塩基性側のサ
ブユニットが欠失していた。これらの結果より、明らか
に高分子量のＳＧは７Ａ染色体上のＷｘ−Ａ１遺伝子に
コードされていることが、また低分子量のＳＧは４Ａ染
色体上のＷｘ−Ｂ１遺伝子および７Ｄ染色体上のＷｘ−
Ｄ１遺伝子にコードされており、各々の遺伝子由来のＳ
Ｇの等電点は若干異なるため両者のサブユニットが部分
的に重なった形になっていることも明かになった。これ
らの結果を単純なダイアグラムにして図２に表した。国
内品種、系統のＷｘタンンパクをこのダイアグラムに当
てはめてみたところ、３遺伝子のうちＷｘ−Ａ１だけが
発現していない変異個体（ｗｘＡ ）、Ｗｘ−Ａ１および
Ｗｘ−Ｂ１の両方が発現していない変異個体（ｗ
ｘＡＢ ）が存在することが確認された（図３）。図３中
のＡ３−Ｂ３は、Ｗｘ−Ｄ１遺伝子のみが発現していな
い変異個体（ｗｘＤ ）における泳動図およびそのダイア
グラムを示す。
【００１３】例２：６倍体モチコムギの製造 例１の二次元電気泳動法によって確認された、Ｗｘ−Ａ
１タンパクとＷｘ−Ｂ１タンパクを同時に欠きＷｘ−Ｄ
１タンパクはある６倍体パン小麦（例えば関東１０７
号、遺伝子型：ａａｂｂＤＤ）と、Ｗｘ−Ｄ１のみを欠
いたコムギ（遺伝子型：ＡＡＢＢｄｄ）の両者を一般的
な方法に従い、次のようにして交配してＦ２個体を得
る。片方のコムギが開花する２〜３日前におしべをピン
セットで取り去り（除雄）、パーチメント袋（硫酸紙）
をかぶせる。２〜３日後に、袋をはずし、このコムギの
めしべに他方のコムギの花粉を毛筆ふででふりかける。
他からの花粉の飛来を避けるために再び袋をかぶせる。
３０〜４０日後に３性雑種個体（Ｆ1 ）（遺伝子型：Ａ
ａＢｂＤｄ）を得る。得られる３性雑種個体（Ｆ1 ）を
一般的な方法に従い他からの花粉の飛来を避けるための
開花２〜３日前にパーチメント（硫酸紙）袋をかぶせる
ようにして自家受粉させてＦ2 種子を得る。得られるＦ
2 種子についてＷｘタンパク質の存在の有無を一粒づつ
電気泳動法または後記アミロース測定法で分析する。電
気泳動法による分析は前記例１に記載の方法に従って行
う。最終的に得られるＷｘタンパク質が検出されないコ
ムギを選抜し、このＦ2 種子（粉）についてアミロース
含量を測定してそのモチ性（アミロース０％）を確認す
る。アミロース含量の測定は、一般的な方法に従い（黒
田ら、育種学雑誌、前出）ヨード・ヨードカリ呈色反応
を用いて行う。このような方法により、Ｆ1 種子に対し
て１／６４の割合でＷｘタンパクおよびアミロースを欠
いたモチコムギ（遺伝子型：ａａｂｂｄｄ）が得られ
る。
１タンパクとＷｘ−Ｂ１タンパクを同時に欠きＷｘ−Ｄ
１タンパクはある６倍体パン小麦（例えば関東１０７
号、遺伝子型：ａａｂｂＤＤ）と、Ｗｘ−Ｄ１のみを欠
いたコムギ（遺伝子型：ＡＡＢＢｄｄ）の両者を一般的
な方法に従い、次のようにして交配してＦ２個体を得
る。片方のコムギが開花する２〜３日前におしべをピン
セットで取り去り（除雄）、パーチメント袋（硫酸紙）
をかぶせる。２〜３日後に、袋をはずし、このコムギの
めしべに他方のコムギの花粉を毛筆ふででふりかける。
他からの花粉の飛来を避けるために再び袋をかぶせる。
３０〜４０日後に３性雑種個体（Ｆ1 ）（遺伝子型：Ａ
ａＢｂＤｄ）を得る。得られる３性雑種個体（Ｆ1 ）を
一般的な方法に従い他からの花粉の飛来を避けるための
開花２〜３日前にパーチメント（硫酸紙）袋をかぶせる
ようにして自家受粉させてＦ2 種子を得る。得られるＦ
2 種子についてＷｘタンパク質の存在の有無を一粒づつ
電気泳動法または後記アミロース測定法で分析する。電
気泳動法による分析は前記例１に記載の方法に従って行
う。最終的に得られるＷｘタンパク質が検出されないコ
ムギを選抜し、このＦ2 種子（粉）についてアミロース
含量を測定してそのモチ性（アミロース０％）を確認す
る。アミロース含量の測定は、一般的な方法に従い（黒
田ら、育種学雑誌、前出）ヨード・ヨードカリ呈色反応
を用いて行う。このような方法により、Ｆ1 種子に対し
て１／６４の割合でＷｘタンパクおよびアミロースを欠
いたモチコムギ（遺伝子型：ａａｂｂｄｄ）が得られ
る。
【００１４】例３：４倍体モチコムギの製造 例１の二次元電気泳動法によって確認された、６倍体パ
ンコムギ（染色体数２ｎ＝４２）のＷｘ−Ａ１とＷｘ−
Ｂ１を同時に欠いたコムギ（例えば関東１０７号）（遺
伝子型：ａａｂｂＤＤ）と４倍体マカロニコムギ（２ｎ
＝２８）（遺伝子型：ＡＡＢＢ）の両者を一般的な方法
に従い、次のようにして交配してＦ２の個体を得る。片
方のコムギが開花する２〜３日前におしべをピンセット
で取り去り（除雄）、パーチメント袋（硫酸紙）をかぶ
せる。２〜３日後に袋をはずし、このコムギのめしべに
他方のコムギの花粉を毛筆ふででふりかける。他からの
花粉の飛来を避けるため再び袋をかぶせる。３０〜４０
日後Ｆ1 雑種個体（遺伝子型：ＡａＢｂＤ）を得る。得
られるＦ1 雑種個体を一般的な方法に従い他からの花粉
の飛来を避けるために開花１〜３日前にパーチメント袋
をかぶせるようにして自家受粉させてＦ2 種子を得る。
得られるＦ2 種子についてＷｘタンパク質の存在の有無
を一粒づつ電気泳動法または後記アミロース測定法で分
析する。電気泳動法による分析は前記例１に記載の方法
に従って行う。最終的に得られるＷｘタンパク質が検出
されないコムギを選抜し、このＦ2 種子（粉）について
染色体数（２ｎ＝２８）およびアミロース含量を測定し
てそのモチ性（アミロース０％）を確認する。アミロー
ス含量の測定は例２と同様の方法で行い、染色体数の確
認は一般的な方法に従い次のようにして行う。発芽した
種子の根が２〜３ｃｍに伸びた時、先端から１〜２ｃｍ
を切ってこれを水を満たした管ビンへ入れる。管ビンご
と氷水（０℃）に２４時間つける。根を固定液（酢酸：
エチルアルコール＝１：３）の比からなる）を入れた管
ビンに浸す。３〜７日後に根を取り出し、酢酸カーミン
（カーミンを１％になるように４５％酢酸に煮沸して溶
かしたもの）に３０分〜１時間ひたす。この管ビンごと
あぶり、つづいて根をとり出し、先端１〜２ｍｍをスラ
イドガラスの上へ切り取り、４５％酢酸を一滴たらす。
カバーガラスをかけ、上からつまようじなどで軽くたた
き、根を散らばらせ、カバーガラスの上から指で押しつ
ぶす。これを顕微鏡で観察し染色体を数える。このよう
な方法により、Ｗｘタンパクおよびアミロースを欠く染
色体数の減少した４倍体モチコムギ（遺伝子型：ａａｂ
ｂｄｄ）が得られる。
ンコムギ（染色体数２ｎ＝４２）のＷｘ−Ａ１とＷｘ−
Ｂ１を同時に欠いたコムギ（例えば関東１０７号）（遺
伝子型：ａａｂｂＤＤ）と４倍体マカロニコムギ（２ｎ
＝２８）（遺伝子型：ＡＡＢＢ）の両者を一般的な方法
に従い、次のようにして交配してＦ２の個体を得る。片
方のコムギが開花する２〜３日前におしべをピンセット
で取り去り（除雄）、パーチメント袋（硫酸紙）をかぶ
せる。２〜３日後に袋をはずし、このコムギのめしべに
他方のコムギの花粉を毛筆ふででふりかける。他からの
花粉の飛来を避けるため再び袋をかぶせる。３０〜４０
日後Ｆ1 雑種個体（遺伝子型：ＡａＢｂＤ）を得る。得
られるＦ1 雑種個体を一般的な方法に従い他からの花粉
の飛来を避けるために開花１〜３日前にパーチメント袋
をかぶせるようにして自家受粉させてＦ2 種子を得る。
得られるＦ2 種子についてＷｘタンパク質の存在の有無
を一粒づつ電気泳動法または後記アミロース測定法で分
析する。電気泳動法による分析は前記例１に記載の方法
に従って行う。最終的に得られるＷｘタンパク質が検出
されないコムギを選抜し、このＦ2 種子（粉）について
染色体数（２ｎ＝２８）およびアミロース含量を測定し
てそのモチ性（アミロース０％）を確認する。アミロー
ス含量の測定は例２と同様の方法で行い、染色体数の確
認は一般的な方法に従い次のようにして行う。発芽した
種子の根が２〜３ｃｍに伸びた時、先端から１〜２ｃｍ
を切ってこれを水を満たした管ビンへ入れる。管ビンご
と氷水（０℃）に２４時間つける。根を固定液（酢酸：
エチルアルコール＝１：３）の比からなる）を入れた管
ビンに浸す。３〜７日後に根を取り出し、酢酸カーミン
（カーミンを１％になるように４５％酢酸に煮沸して溶
かしたもの）に３０分〜１時間ひたす。この管ビンごと
あぶり、つづいて根をとり出し、先端１〜２ｍｍをスラ
イドガラスの上へ切り取り、４５％酢酸を一滴たらす。
カバーガラスをかけ、上からつまようじなどで軽くたた
き、根を散らばらせ、カバーガラスの上から指で押しつ
ぶす。これを顕微鏡で観察し染色体を数える。このよう
な方法により、Ｗｘタンパクおよびアミロースを欠く染
色体数の減少した４倍体モチコムギ（遺伝子型：ａａｂ
ｂｄｄ）が得られる。
【００１５】
【発明の効果】本発明により、穀物、特にコムギにおけ
る３種のＷｘ遺伝子（Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１、Ｗｘ−
Ｄ１）の発現の有無を確認する二次元電気泳動法を用い
た方法が確立された。このＷｘ遺伝子発現の確認方法を
利用して、３種のＷｘ遺伝子のうちの特定のＷｘ遺伝子
の発現を欠いた適当な組合わせによる６倍体コムギ変異
体同士の交配によりすべてのＷｘ遺伝子の発現を欠く６
倍体個体を、また、特定のＷｘ遺伝子の発現を欠いた６
倍体コムギと特定のＷｘ遺伝子を有する４倍体コムギの
適当な組合わせによる交配によりＷｘ遺伝子の発現を欠
く４倍体個体を、すなわちＷｘタンパク質が産性されな
いモチコムギを製造することができる。
る３種のＷｘ遺伝子（Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１、Ｗｘ−
Ｄ１）の発現の有無を確認する二次元電気泳動法を用い
た方法が確立された。このＷｘ遺伝子発現の確認方法を
利用して、３種のＷｘ遺伝子のうちの特定のＷｘ遺伝子
の発現を欠いた適当な組合わせによる６倍体コムギ変異
体同士の交配によりすべてのＷｘ遺伝子の発現を欠く６
倍体個体を、また、特定のＷｘ遺伝子の発現を欠いた６
倍体コムギと特定のＷｘ遺伝子を有する４倍体コムギの
適当な組合わせによる交配によりＷｘ遺伝子の発現を欠
く４倍体個体を、すなわちＷｘタンパク質が産性されな
いモチコムギを製造することができる。
【図１】チャイニーズ・スプリング（Chinese Spring）
品種およびそのnullisomic-tetrasomic(NT) 系（６種）
におけるＷｘタンパク質の二次元泳動パターンを示す説
明図。矢印は同じ位置を示す。
品種およびそのnullisomic-tetrasomic(NT) 系（６種）
におけるＷｘタンパク質の二次元泳動パターンを示す説
明図。矢印は同じ位置を示す。
【図２】図１の泳動パターンを単純化したダイアグラム
を示す説明図。
を示す説明図。
【図３】Ｗｘ−Ａ１遺伝子の発現を欠く変異個体、Ｗｘ
−Ａ１およびＷｘ−Ｂ１遺伝子の両者の発現を欠く変異
個体、およびＷｘ−Ｄ１遺伝子の発現を欠く変異個体の
それぞれのＷｘタンパク質の電気泳動パターンおよびそ
れを単純化したダイアグラムを示す説明図。
−Ａ１およびＷｘ−Ｂ１遺伝子の両者の発現を欠く変異
個体、およびＷｘ−Ｄ１遺伝子の発現を欠く変異個体の
それぞれのＷｘタンパク質の電気泳動パターンおよびそ
れを単純化したダイアグラムを示す説明図。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｇ０１Ｎ 33/50 Ｐ 7055−2Ｊ // Ｃ０７Ｋ 3/14 8517−4Ｈ
Claims (8)
- 【請求項１】穀物Ｗｘ遺伝子の発現産物である複数のＷ
ｘタンパク質を、二次元電気泳動法を用いて分離するこ
とを特徴とする、穀物におけるＷｘ遺伝子発現の確認方
法。 - 【請求項２】コムギＷｘ遺伝子の発現産物であるＷｘタ
ンパク質Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１およびＷｘ−Ｄ１を、
二次元電気泳動法を用いて分離することを特徴とする、
請求項１記載のＷｘ遺伝子発現の確認方法。 - 【請求項３】二次元電気泳動法が、等電点電気泳動とＳ
ＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動との組合わせで
ある、請求項１または２記載のＷｘ遺伝子発現の確認方
法。 - 【請求項４】コムギＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１
およびＷｘ−Ｄ１を有しそのうちの２種の遺伝子の発現
を欠いた６倍体コムギ変異体と、残りの１種の遺伝子の
発現を欠いた６倍体コムギ変異体とを交配し、その後代
において上記３種の遺伝子の発現を欠いた個体を得るこ
とを特徴とする、モチコムギの作出方法。 - 【請求項５】交配が、Ｗｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１およびＷｘ
−Ｂ１の発現を欠いたコムギ変異体とＷｘ遺伝子Ｗｘ−
Ｄ１の発現を欠いたコムギ変異体との組合わせによるも
のである、請求項４記載の作出方法。 - 【請求項６】請求項４または５に記載の作出方法によっ
て得られるモチコムギ。 - 【請求項７】コムギＷｘ遺伝子Ｗｘ−Ａ１、Ｗｘ−Ｂ１
およびＷｘ−Ｄ１を有しそのうちの２種の遺伝子Ｗｘ−
Ａ１およびＷｘ−Ｂ１の発現を欠いた６倍体コムギ変異
体と、二粒系コムギゲノム構成ＡＡＢＢ個体とを交配
し、その後代において上記２種の遺伝子の発現を欠いた
４倍体個体を得ることを特徴とする、４倍体モチコムギ
の作出方法。 - 【請求項８】請求項７に記載の作出方法によって得られ
る、４倍体モチコムギ。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP27756292A JP3170595B2 (ja) | 1992-10-15 | 1992-10-15 | Ｗｘ遺伝子発現の確認方法およびモチコムギの作出方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP27756292A JP3170595B2 (ja) | 1992-10-15 | 1992-10-15 | Ｗｘ遺伝子発現の確認方法およびモチコムギの作出方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06125669A true JPH06125669A (ja) | 1994-05-10 |
| JP3170595B2 JP3170595B2 (ja) | 2001-05-28 |
Family
ID=17585248
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP27756292A Expired - Lifetime JP3170595B2 (ja) | 1992-10-15 | 1992-10-15 | Ｗｘ遺伝子発現の確認方法およびモチコムギの作出方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3170595B2 (ja) |
Cited By (15)
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| JP2023052627A (ja) * | 2018-02-01 | 2023-04-11 | 株式会社水稲生産技術研究所 | 所望のテクスチャーを有する米および小麦、並びにそれら生産方法 |
-
1992
- 1992-10-15 JP JP27756292A patent/JP3170595B2/ja not_active Expired - Lifetime
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