JPH04108395A - ガラクトサミノオリゴ糖の製造方法 - Google Patents
ガラクトサミノオリゴ糖の製造方法Info
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- JPH04108395A JPH04108395A JP22422290A JP22422290A JPH04108395A JP H04108395 A JPH04108395 A JP H04108395A JP 22422290 A JP22422290 A JP 22422290A JP 22422290 A JP22422290 A JP 22422290A JP H04108395 A JPH04108395 A JP H04108395A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、ガラクトサミノオリゴ糖の製造方法に関する
ものである。
ものである。
更に詳細には、本発明は、酵素を用いる生化学的な手法
によって、ガラクトサミンオリゴ5糖(GO55)、ガ
ラクトサミンオリゴ6糖(GO56)、またはそれ以上
の比較的高重合度のガラクトサミノオリゴ糖を非常に効
率的に製造する方法に関するものである。また1本発明
は限外濾過膜を用いた該オリゴ糖の連続的な製造方法に
も関するものである。
によって、ガラクトサミンオリゴ5糖(GO55)、ガ
ラクトサミンオリゴ6糖(GO56)、またはそれ以上
の比較的高重合度のガラクトサミノオリゴ糖を非常に効
率的に製造する方法に関するものである。また1本発明
は限外濾過膜を用いた該オリゴ糖の連続的な製造方法に
も関するものである。
(従来の技術)
ポリガラクトサミン(特公昭56−12639、特公平
1−41160)は、不完全菌の一種であるPaeci
lomycessp、 I−1株により生産されるガラ
クトサミンがα−1,4結合した30万以上の分子量を
もつ多糖である。
1−41160)は、不完全菌の一種であるPaeci
lomycessp、 I−1株により生産されるガラ
クトサミンがα−1,4結合した30万以上の分子量を
もつ多糖である。
近年、微生物、植物、あるいは動物の生産する多糖ある
いはそれらのオリゴ糖が種々の生理活性を有することが
知られているようになり、多糖またはそれらのオリゴ糖
に関心かたかまっている。
いはそれらのオリゴ糖が種々の生理活性を有することが
知られているようになり、多糖またはそれらのオリゴ糖
に関心かたかまっている。
また、ポリガラクトサミンの類似多糖として知られるキ
チン、キトサン及びそのオリゴ糖が抗腫瘍活性を有する
事も確認されている。さらにポリガラクトサミン自身に
おいても同様な生理活性のある事が見いだされ(Kou
ki l5HITANI et al、、 J。
チン、キトサン及びそのオリゴ糖が抗腫瘍活性を有する
事も確認されている。さらにポリガラクトサミン自身に
おいても同様な生理活性のある事が見いだされ(Kou
ki l5HITANI et al、、 J。
Pharmacobio−Dyn、 11.58〜65
(1988))、そのオリゴ糖の生理活性にも関心が高
まっている。生理活性以外の用途にもポリガラクトサミ
ン、ガラクトサミノオリゴ糖が有用になる可能性があり
、特に、オリゴマーは用途分野、作用面でポリマーにな
い特性を発揮するものと期待され、注目されている。
(1988))、そのオリゴ糖の生理活性にも関心が高
まっている。生理活性以外の用途にもポリガラクトサミ
ン、ガラクトサミノオリゴ糖が有用になる可能性があり
、特に、オリゴマーは用途分野、作用面でポリマーにな
い特性を発揮するものと期待され、注目されている。
ガラクトサミノオリゴ糖は、ポリガラクトサミンを加水
分解することにより得られる。分解の方法には、酸又は
アルカリによるものと加水分解酵素による方法が知られ
ているが、重合度の高いガラクトサミノオリゴ糖の収率
は非常に悪い、特に塩酸によってポリガラクトサミンを
加水分解する場合、ランダムな分解の結果、得られるオ
リゴ糖の菫は七ノーガラクトサミン、ジ−ガラクトサミ
ン、トリーガラクトサミン、テトラ−ガラクトサミン、
ペンタ−ガラクトサミンの順であり、重合度が高い程そ
の収量は激減し、ペンタマー以上の高重合度のオリゴ糖
の収率は極端に悪かった。さらに、高濃度塩酸を高温で
使用するために作業に危険が伴うという欠点もあった。
分解することにより得られる。分解の方法には、酸又は
アルカリによるものと加水分解酵素による方法が知られ
ているが、重合度の高いガラクトサミノオリゴ糖の収率
は非常に悪い、特に塩酸によってポリガラクトサミンを
加水分解する場合、ランダムな分解の結果、得られるオ
リゴ糖の菫は七ノーガラクトサミン、ジ−ガラクトサミ
ン、トリーガラクトサミン、テトラ−ガラクトサミン、
ペンタ−ガラクトサミンの順であり、重合度が高い程そ
の収量は激減し、ペンタマー以上の高重合度のオリゴ糖
の収率は極端に悪かった。さらに、高濃度塩酸を高温で
使用するために作業に危険が伴うという欠点もあった。
一方、ポリガラクトサミン分解酵素による方法では、常
温で反応が行えるという、酸、アルカリによる加水分解
法にはない大きなメリットがある。
温で反応が行えるという、酸、アルカリによる加水分解
法にはない大きなメリットがある。
しかし、従来知゛られている酵素による分解法では得ら
れるガラクトサミノオリゴ糖は酸、アルカリによる加水
分解と同様に重合度の低いものが大部分であり、比較的
高重合度のガラクトサミノオリゴ糖の収量は低いもので
あった。
れるガラクトサミノオリゴ糖は酸、アルカリによる加水
分解と同様に重合度の低いものが大部分であり、比較的
高重合度のガラクトサミノオリゴ糖の収量は低いもので
あった。
(発明が解決しようとする問題点)
比較的高重合度のガラクトサミノオリゴ糖に種々の生理
活性が期待されているが、従来の酸又はアルカリによる
ものや、加水分解酵素による方法では比較的高重合度の
ガラクトサミノオリゴ糖の収率が悪く、該オリゴ糖を効
率よく得る方法がなく、それに関する試験研究及び応用
範囲を狭くしていた。
活性が期待されているが、従来の酸又はアルカリによる
ものや、加水分解酵素による方法では比較的高重合度の
ガラクトサミノオリゴ糖の収率が悪く、該オリゴ糖を効
率よく得る方法がなく、それに関する試験研究及び応用
範囲を狭くしていた。
(問題点を解決するための手段)
本発明は上記した問題点を一挙に解決するためになされ
たものであって、比較的高重合度なガラクトサミノオリ
ゴ糖を効率よく製造する目的でなされたものである。
たものであって、比較的高重合度なガラクトサミノオリ
ゴ糖を効率よく製造する目的でなされたものである。
従来より、ガラクトサミノオリゴ糖を得る方法としては
酵素による加水分解法があり、ポリガラクトサミン分解
酵素としては、例えば、シュードモナスsp、H881
株(FERN P−8955)、バチルスsp。
酵素による加水分解法があり、ポリガラクトサミン分解
酵素としては、例えば、シュードモナスsp、H881
株(FERN P−8955)、バチルスsp。
A−4(FERN P−10473)、バチルスsp、
E−1(FERM P−10581)などにより生産
される酵素が知られている。
E−1(FERM P−10581)などにより生産
される酵素が知られている。
本発明者らは各々の酵素についてその基質特異性、反応
条件等鋭意検討した結果、酵素反応時のpHを各々の酵
素の至適pHより低いpHに設定することにより、低重
合度のオリゴ糖の生成が抑制され比較的高重合度のガラ
クトサミノオリゴ糖が効率良く得られることを見い出し
た。例えば、第1図は、反応pHを6.0と460に設
定したときのCトセファデックス力ラムクロマトパター
ンであるが、ガラクトサミノオリゴ糖の生成率を較べる
と、PH6,0では低重合度のガラクトサミノオリゴ糖
がほとんどであるのに対して、PH4,0では比較的高
重合度のガラクトサミノオリゴ糖が効率良く得られてい
る。
条件等鋭意検討した結果、酵素反応時のpHを各々の酵
素の至適pHより低いpHに設定することにより、低重
合度のオリゴ糖の生成が抑制され比較的高重合度のガラ
クトサミノオリゴ糖が効率良く得られることを見い出し
た。例えば、第1図は、反応pHを6.0と460に設
定したときのCトセファデックス力ラムクロマトパター
ンであるが、ガラクトサミノオリゴ糖の生成率を較べる
と、PH6,0では低重合度のガラクトサミノオリゴ糖
がほとんどであるのに対して、PH4,0では比較的高
重合度のガラクトサミノオリゴ糖が効率良く得られてい
る。
本発明は、この知見に基づき、酵素反応液のPI(をポ
リガラクトサミン分解酵素の至適PHをはずれた低いP
H3,0〜4.5に設定することにより比較的高重合度
のガラクトサミノオリゴ糖を効率良く得る方法を完成す
るにいたった。また、特に工業的見地から、反応液を限
外濾過膜を介して低分子の生成物を反応系外に取り出し
、未分解のポリガラクトサミンと酵素は反応系に戻し、
反応系にポリガラクトサミンを補充することにより連続
反応系を完成するに至った。
リガラクトサミン分解酵素の至適PHをはずれた低いP
H3,0〜4.5に設定することにより比較的高重合度
のガラクトサミノオリゴ糖を効率良く得る方法を完成す
るにいたった。また、特に工業的見地から、反応液を限
外濾過膜を介して低分子の生成物を反応系外に取り出し
、未分解のポリガラクトサミンと酵素は反応系に戻し、
反応系にポリガラクトサミンを補充することにより連続
反応系を完成するに至った。
本発明方法において原料として用いるポリガラクトサミ
ンは、常法により調製したもので良くその調製例を示す
と次の通りである。
ンは、常法により調製したもので良くその調製例を示す
と次の通りである。
ガラクトサミン生産菌Paecilomyces I−
1(FERMBP−1180)をショ糖5%、ペプトン
1%、塩化カルシウム0.6%、PH7,0の組成の培
地で、27℃好気的条件にて5日間培養し、培養液を遠
心分離し菌体を除いた上清を加温しながら限外濾過膜(
分画分子量100,000)で濃縮し、この濃縮物に塩
を加えPHを8.5に調整して沈澱させ、更にこの沈澱
物を集め酸に溶解し、再度pHを8.5にするという操
作を繰り返すことにより、高純度のポリガラクトサミン
を得ることができる。
1(FERMBP−1180)をショ糖5%、ペプトン
1%、塩化カルシウム0.6%、PH7,0の組成の培
地で、27℃好気的条件にて5日間培養し、培養液を遠
心分離し菌体を除いた上清を加温しながら限外濾過膜(
分画分子量100,000)で濃縮し、この濃縮物に塩
を加えPHを8.5に調整して沈澱させ、更にこの沈澱
物を集め酸に溶解し、再度pHを8.5にするという操
作を繰り返すことにより、高純度のポリガラクトサミン
を得ることができる。
また、本発明で用いるポリガラクトサミン分解酵素は、
シュードモナス属、またはバチルス属に属する微生物に
より生産される。ポリガラクトサミン分解酵素生産菌の
培養培地としては、炭素源、窒素源、無機物、その他の
栄養素を程よく含有する培地ならば、合成培地あるいは
天然培地のいずれでも使用可能である。例えばシュード
モナスsp。
シュードモナス属、またはバチルス属に属する微生物に
より生産される。ポリガラクトサミン分解酵素生産菌の
培養培地としては、炭素源、窒素源、無機物、その他の
栄養素を程よく含有する培地ならば、合成培地あるいは
天然培地のいずれでも使用可能である。例えばシュード
モナスsp。
H881菌(FERM P−8955)の酵素を使用す
る場合の培養培地の好適な例としては、ポリガラクトサ
ミン0.25%、グルコース0.25%、酵母エキス0
.05%、ポリペプトン0.05%、 pl(7,0の
例が挙げられる。
る場合の培養培地の好適な例としては、ポリガラクトサ
ミン0.25%、グルコース0.25%、酵母エキス0
.05%、ポリペプトン0.05%、 pl(7,0の
例が挙げられる。
培養温度は20〜40℃、好ましくは30〜38℃の範
囲、培養開始pHは6〜8、好ましくは7付近で35〜
72時間振どう又は深部攪拌培養すれば、培養液中にポ
リガラクトサミン分解酵素が得られる。
囲、培養開始pHは6〜8、好ましくは7付近で35〜
72時間振どう又は深部攪拌培養すれば、培養液中にポ
リガラクトサミン分解酵素が得られる。
そして、ポリガラクトサミン分解酵素は必要に応じて単
離精製される。例えば、培養濾液をエタノール沈澱法に
よって粗酵素を分離し、これを水性溶媒に溶解し、セフ
ァデックスG−50ゲル濾過、CM−セファデックスC
−25イオン交換クロマトグラフイー、フェニル−セフ
ァロースCL−4B疎水クロマトグラフィー等の処理に
より精製されたポリガラクトサミン分解酵素が得られる
。
離精製される。例えば、培養濾液をエタノール沈澱法に
よって粗酵素を分離し、これを水性溶媒に溶解し、セフ
ァデックスG−50ゲル濾過、CM−セファデックスC
−25イオン交換クロマトグラフイー、フェニル−セフ
ァロースCL−4B疎水クロマトグラフィー等の処理に
より精製されたポリガラクトサミン分解酵素が得られる
。
このようにして得られたポリガラクトサミン分解酵素を
ポリガラクトサミン溶液に酵素至適pHよりも低いpF
I、特にPH3,0〜4.5で作用させると、比較的高
重合度のオリゴガラクトサミンを効率的に得ることがで
きる1反応の例を示すと、まずポリガラクトサミンを低
濃度の酸↓こ溶解せしめる。酸としでは、例えば酢酸、
ギ酸等の有機酸のほが。
ポリガラクトサミン溶液に酵素至適pHよりも低いpF
I、特にPH3,0〜4.5で作用させると、比較的高
重合度のオリゴガラクトサミンを効率的に得ることがで
きる1反応の例を示すと、まずポリガラクトサミンを低
濃度の酸↓こ溶解せしめる。酸としでは、例えば酢酸、
ギ酸等の有機酸のほが。
硫酸を除く無機酸が広く使用できる。こうして得られた
ポリガラクトサミン溶液のpHを6.0未満、例えば3
.0〜4.5に調整した後、上記により調製したポリガ
ラクトサミン分解酵素を加えて、30℃前後の温度で酵
素分解を行う。
ポリガラクトサミン溶液のpHを6.0未満、例えば3
.0〜4.5に調整した後、上記により調製したポリガ
ラクトサミン分解酵素を加えて、30℃前後の温度で酵
素分解を行う。
また本発明によれば、上記反応液を限外濾過膜を介すこ
とにより低分子生成物を反応系外に取り出しく一方、未
分解のポリガラクトサミン及びそれが一部分解した高分
子物質は、酵素とともに再度酵素反応系に返してやり、
そして反応系には原料であるポリガラクトサミンを新た
に補充してやり)、これをイオン交換樹脂に吸着させた
後、適当な濃度勾配の溶剤で順次溶出して、比較的高重
合度な各ガラクトサミノオリゴ糖両分を連続的に得るこ
とができる。
とにより低分子生成物を反応系外に取り出しく一方、未
分解のポリガラクトサミン及びそれが一部分解した高分
子物質は、酵素とともに再度酵素反応系に返してやり、
そして反応系には原料であるポリガラクトサミンを新た
に補充してやり)、これをイオン交換樹脂に吸着させた
後、適当な濃度勾配の溶剤で順次溶出して、比較的高重
合度な各ガラクトサミノオリゴ糖両分を連続的に得るこ
とができる。
この連続法は、特に工業的製法としてすぐれている。な
お限外濾過膜としてはポリアクリルニトリル系、ポリエ
ーテルスルホン酸系等市販されているものが適宜自由に
使用され、モジュールタイプとしても、管状モジュール
、中空糸モジュール。
お限外濾過膜としてはポリアクリルニトリル系、ポリエ
ーテルスルホン酸系等市販されているものが適宜自由に
使用され、モジュールタイプとしても、管状モジュール
、中空糸モジュール。
プリーツモジュール、スパイラルモジュール等が適宜選
択使用される。
択使用される。
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明する。
実施例1
ポリガラクトサミンの調製
’j)Liコ−2600g、ポリペプトン60g、ca
cQz・2H,0125gを水道水17mに溶解し、濃
NaOH溶液でpH7,0に調整した後、3oΩ容ジャ
ーファーメンタ−に移した。
cQz・2H,0125gを水道水17mに溶解し、濃
NaOH溶液でpH7,0に調整した後、3oΩ容ジャ
ーファーメンタ−に移した。
この培地溶液に蒸気を注入することにより加圧、加熱滅
菌(121℃、20分間)を行った。冷却後の培地(最
終液量20ji1)に、500mm三角フラスコに15
01同組成の培地(グルコース3%、ポリペプトン0.
3%、CaCら0.5%、pH7,0)で26℃、4日
間振どう培養したベニシロマイセスl−1(FERN
BP−1180)を、容量比で約10%無菌的に接種し
た。接種後27℃。
菌(121℃、20分間)を行った。冷却後の培地(最
終液量20ji1)に、500mm三角フラスコに15
01同組成の培地(グルコース3%、ポリペプトン0.
3%、CaCら0.5%、pH7,0)で26℃、4日
間振どう培養したベニシロマイセスl−1(FERN
BP−1180)を、容量比で約10%無菌的に接種し
た。接種後27℃。
通気量0.5VVM、攪拌数20ORPMの条件で5日
間培養した。
間培養した。
培養終了後培養物を濾布濾過することにより培養濾液1
1Qを得た。この培養濾液を50℃〜60℃に加熱しな
がら分画分子量15万の限外濾過膜(三菱レイヨン・エ
ンジニアリング社製UF膜チューブラ−モジュールFタ
イプ)を通過させることにより、低分子画分を除き液量
が約3Qになる迄濃縮した。
1Qを得た。この培養濾液を50℃〜60℃に加熱しな
がら分画分子量15万の限外濾過膜(三菱レイヨン・エ
ンジニアリング社製UF膜チューブラ−モジュールFタ
イプ)を通過させることにより、低分子画分を除き液量
が約3Qになる迄濃縮した。
更に、約14000 X Gで遠心分離することにより
菌体残渣、熱変性蛋白を除去した。
菌体残渣、熱変性蛋白を除去した。
遠心分離後に上澄液画分3Qに食塩約750g(約25
%濃度)を加えて攪拌し、溶解後、濃Na0)1でp)
lを7.0〜8.5に調整した。−夜装置し塩析物を十
分析出させた後、サラン製の布(塩化ビニリデンと塩化
ビニールの共重合体、商品名)上に塩析物を回収した。
%濃度)を加えて攪拌し、溶解後、濃Na0)1でp)
lを7.0〜8.5に調整した。−夜装置し塩析物を十
分析出させた後、サラン製の布(塩化ビニリデンと塩化
ビニールの共重合体、商品名)上に塩析物を回収した。
更にこの塩析物の上から大量のアルカリ性の水(PH7
,0以上)を散布することにより余分の食塩及び培養物
に同時に混在している中性糖、その他の夾雑物を洗い流
した。
,0以上)を散布することにより余分の食塩及び培養物
に同時に混在している中性糖、その他の夾雑物を洗い流
した。
次に、水洗物の塩析物に0.1M塩酸溶液を容量比で約
3倍量加え溶解した。この溶解物に濃NaOH溶液を加
えポリガラクトサミンの等電点であるpH8,5に合せ
た。−夜装置し十分析出物を析出させた後、上記と同様
サラン製の布上に析出物を回収し、大意の水道水で洗っ
た。この水洗物をもう一度0.1M塩酸に溶解後、等電
点沈澱を行い水洗を繰り返すことにより精製した。
3倍量加え溶解した。この溶解物に濃NaOH溶液を加
えポリガラクトサミンの等電点であるpH8,5に合せ
た。−夜装置し十分析出物を析出させた後、上記と同様
サラン製の布上に析出物を回収し、大意の水道水で洗っ
た。この水洗物をもう一度0.1M塩酸に溶解後、等電
点沈澱を行い水洗を繰り返すことにより精製した。
この精製した析出物を121℃、15分間滅菌後、凍結
乾燥することにより、ポリガラクトサミンを主成分とす
るPF−102の精製粉末(ポリガラクトサミンとして
の純度約99%)を7g得た。
乾燥することにより、ポリガラクトサミンを主成分とす
るPF−102の精製粉末(ポリガラクトサミンとして
の純度約99%)を7g得た。
また、用途により上記精製粉末の一部を0.In塩酸に
溶解し分画分子量30万の限外濾過膜(アミコン社製分
子篩膜タイプXM300)で分画し、平均分子量16〜
30万のものと平均分子社30万以上のものに分画する
こともできる。
溶解し分画分子量30万の限外濾過膜(アミコン社製分
子篩膜タイプXM300)で分画し、平均分子量16〜
30万のものと平均分子社30万以上のものに分画する
こともできる。
実施例2
ポリガラクトサミン 解酵 の調製
シュードモナスsp、 H881,FERM P−89
55を500vhQ三角フラスコ中で、グルコース0.
5%、酵母エキス0.05%、ポリペプトン0.05%
の組成を有する種培地100mQに植菌し、 30℃で
20時間培養した。
55を500vhQ三角フラスコ中で、グルコース0.
5%、酵母エキス0.05%、ポリペプトン0.05%
の組成を有する種培地100mQに植菌し、 30℃で
20時間培養した。
得られた種培養物を30Qのジャーファーメンタ−中で
、実施例1で得たポリガラクトサミン(PF−102)
0.25%、グルコース0.25%、酵母エキス0.0
5%、ポリペプトン0.05%の酵素生産培地に植菌し
、30℃テ通気量IVVM、攪拌数20ORPMテ48
時間培養した。
、実施例1で得たポリガラクトサミン(PF−102)
0.25%、グルコース0.25%、酵母エキス0.0
5%、ポリペプトン0.05%の酵素生産培地に植菌し
、30℃テ通気量IVVM、攪拌数20ORPMテ48
時間培養した。
得られた培養物を遠心分離(14,OOORPM) し
て、菌体を除き、得られた培養濾液に冷却したエタノー
ルを60%濃度まで加えて、タンパク質を沈澱させ、こ
の沈澱タンパクを遠心して、溶液から分離した。得られ
たタンパク質を0.1モル酢酸緩衝液(PH5,0)で
平衡化したCトセファデックスC−25カラム(2,5
X60c+s)に吸着させ、0〜0.5モル食塩の濃度
勾配を有する同緩衝液を用いて溶出させた。
て、菌体を除き、得られた培養濾液に冷却したエタノー
ルを60%濃度まで加えて、タンパク質を沈澱させ、こ
の沈澱タンパクを遠心して、溶液から分離した。得られ
たタンパク質を0.1モル酢酸緩衝液(PH5,0)で
平衡化したCトセファデックスC−25カラム(2,5
X60c+s)に吸着させ、0〜0.5モル食塩の濃度
勾配を有する同緩衝液を用いて溶出させた。
溶出した酵素活性区分を集め、限外濾過装置(分画分子
量1万)を使って濃縮した1次に、2モル食塩を含む0
.1モル酢酸緩衝液(pH6,0)溶液とし、同緩衝液
で平衡化したセファデックスG−50カラム(5x 9
0cm)クロマトグラフィーにかけた6次いで、活性区
分の食塩濃度を4モルにまで高め、同様な溶液で平衡化
したフェニル−セファロースCL−4Bカラム(2,5
X 20cm)に吸着させ、食塩の逆濃度勾配を持つ0
.1モル酢酸緩衝液で溶出して精製ポリガラクトサミン
分解酵素50mg (収率23.1%、比活性52μg
Ga1N/win/+ig protien)を得た
。
量1万)を使って濃縮した1次に、2モル食塩を含む0
.1モル酢酸緩衝液(pH6,0)溶液とし、同緩衝液
で平衡化したセファデックスG−50カラム(5x 9
0cm)クロマトグラフィーにかけた6次いで、活性区
分の食塩濃度を4モルにまで高め、同様な溶液で平衡化
したフェニル−セファロースCL−4Bカラム(2,5
X 20cm)に吸着させ、食塩の逆濃度勾配を持つ0
.1モル酢酸緩衝液で溶出して精製ポリガラクトサミン
分解酵素50mg (収率23.1%、比活性52μg
Ga1N/win/+ig protien)を得た
。
実施例3
ガラクトサミノオリゴ糖の調製
ポリガラクトサミン20gを5Qの0.1モル酢酸に溶
解し、水酸化ナトリウムを用いてpH4,0に調整し、
ポリガラクトサミン分解酵素溶液を0.2ユニツト/1
Q(1ユニツトは1分間にガラクトサミン1μモルを生
成する酵素力価)になるように加え、30℃にて反応さ
せた。30分後、加熱して酵素を失活させ1反応を停止
させた後、反応液は直ちにCM−セファデックスカラム
(210+amID X 30cwa X 3 )に吸
着させNaCff1の濃度勾配をかけることにより順次
各ガラクトサミノオリゴ糖を溶出させ分画した。それぞ
れの画文を脱塩、濃縮後凍結乾燥してジ−ガラクトサミ
ン、トリーガラクトサミン、テトラ−ガラクトサミン、
ペンタ−ガラクトサミン、ヘキサ−ガラクトサミン、ヘ
プタ−ガラクトサミン、オクタ−ガラクトサミン、ノナ
−ガラクトサミンを得た。
解し、水酸化ナトリウムを用いてpH4,0に調整し、
ポリガラクトサミン分解酵素溶液を0.2ユニツト/1
Q(1ユニツトは1分間にガラクトサミン1μモルを生
成する酵素力価)になるように加え、30℃にて反応さ
せた。30分後、加熱して酵素を失活させ1反応を停止
させた後、反応液は直ちにCM−セファデックスカラム
(210+amID X 30cwa X 3 )に吸
着させNaCff1の濃度勾配をかけることにより順次
各ガラクトサミノオリゴ糖を溶出させ分画した。それぞ
れの画文を脱塩、濃縮後凍結乾燥してジ−ガラクトサミ
ン、トリーガラクトサミン、テトラ−ガラクトサミン、
ペンタ−ガラクトサミン、ヘキサ−ガラクトサミン、ヘ
プタ−ガラクトサミン、オクタ−ガラクトサミン、ノナ
−ガラクトサミンを得た。
本発明方法におけるガラクトサミノオリゴ糖の収量は従
来法(pH6,0,第1表)との比較をもって。
来法(pH6,0,第1表)との比較をもって。
第2表に示す。なお、分解に供したポリガラクトサミン
はともに20gであった。
はともに20gであった。
第1表
(ガラクトサミノオリゴ糖)
ジ −ガラクトサミン
トリ −ガラクトサミン
テトラ−ガラクトサミン
ペンタ−ガラクトサミン
ヘキサ−ガラクトサミン
ヘプタ−ガラクトサミン
オクタ−ガラクトサミン
ノナ −ガラクトサミン
第2表
ガラクトサミノオリゴ
ジ −ガラクトサミン
トリ −ガラクトサミン
テトラ−ガラクトサミン
ペンタ−ガラクトサミン
ヘキサ−ガラクトサミン
ヘプタ−ガラクトサミン
オクタ−ガラクトサミン
ノナ −ガラクトサミン
従来法
」(j区■[
0,29
1,44
0,32
0,96
0,67
0,48
0,38
0,31
本発明法
](jIlト
1.20
3.60
0.94
1.38
1.80
1.16
0.60
0.40
」刊I式叉[
1,45
7,20
1,60
4,80
3,35
2,40
1,90
1,55
第1.2表の結果から明らかなように1本発明方法によ
れば、比較的高重合度のガラクトサミノオリゴ糖の収電
が従来法に比して大幅に増加していることが判る。
れば、比較的高重合度のガラクトサミノオリゴ糖の収電
が従来法に比して大幅に増加していることが判る。
実施例4
ガラクトサミノオリゴ の
ポリガラクトサミン200gを50Mの0.1モル酢酸
に溶解し、水酸化ナトリウムを用いてpH4,0に調整
し、ポリガラクトサミン分解酵素溶液を0.2ユニット
/mQ(1ユニツトは1分間にガラクトサミン1μモル
を生成する酵素力価)になるように加え、30℃にて反
応させた6反応液は分画分子量30,000の限外濾過
膜(アミコン・ファー・イースト・リミテッド社製、D
C−2型ホローファイバー〇IP−30)を用いて、連
続的に分解生成したガラクトサミノオリゴ糖を反応系の
外に取り出した。反応系には0.1モル酢酸に溶解した
ポリガラクトサミン0.1%溶液PH4,0をlOmf
i/win、で添加した。
に溶解し、水酸化ナトリウムを用いてpH4,0に調整
し、ポリガラクトサミン分解酵素溶液を0.2ユニット
/mQ(1ユニツトは1分間にガラクトサミン1μモル
を生成する酵素力価)になるように加え、30℃にて反
応させた6反応液は分画分子量30,000の限外濾過
膜(アミコン・ファー・イースト・リミテッド社製、D
C−2型ホローファイバー〇IP−30)を用いて、連
続的に分解生成したガラクトサミノオリゴ糖を反応系の
外に取り出した。反応系には0.1モル酢酸に溶解した
ポリガラクトサミン0.1%溶液PH4,0をlOmf
i/win、で添加した。
反応系外に取り出したガラクトサミノオリゴ糖は直ちに
Cトセファデックスカラム(210mmID X 30
C履X3)に吸着させNaCρの濃度勾配をかけること
により順次各ガラクトサミノオリゴ糖を溶出させ分画し
た。それぞれの両分を脱塩、濃縮後凍結乾燥したガラク
トサミノオリゴ糖を得た。
Cトセファデックスカラム(210mmID X 30
C履X3)に吸着させNaCρの濃度勾配をかけること
により順次各ガラクトサミノオリゴ糖を溶出させ分画し
た。それぞれの両分を脱塩、濃縮後凍結乾燥したガラク
トサミノオリゴ糖を得た。
反応開始2時間後のそれぞれのガラクトサミノオリゴ糖
の生成量は、ジ−ガラクトサミン12g、トリーガラク
トサミン36g、テトラ−ガラクトサミン9.4g、ペ
ンタ−ガラクトサミン13.8g、ヘキサ−ガラクトサ
ミン18.0g、ヘプタ−ガラクトサミン11.6g、
オクタ−ガラクトサミン6.0g、ノナ−ガラクトサミ
ン4.0gであった。
の生成量は、ジ−ガラクトサミン12g、トリーガラク
トサミン36g、テトラ−ガラクトサミン9.4g、ペ
ンタ−ガラクトサミン13.8g、ヘキサ−ガラクトサ
ミン18.0g、ヘプタ−ガラクトサミン11.6g、
オクタ−ガラクトサミン6.0g、ノナ−ガラクトサミ
ン4.0gであった。
(発明の効果)
本発明によれば、酵素反応液のPHをコントロールする
という非常にシンプルな工程を新規に採用したことによ
り、比較的高重合度の各種ガラクトサミノオリゴ糖を非
常に高い収率で製造することができる。
という非常にシンプルな工程を新規に採用したことによ
り、比較的高重合度の各種ガラクトサミノオリゴ糖を非
常に高い収率で製造することができる。
更にまた、限外濾過膜処理を行えば、連続化が可能とな
るので、この方法は、工業的な製法として特に好適であ
る。
るので、この方法は、工業的な製法として特に好適であ
る。
第1図は、pH6及び4におけるCM−セファアツクス
力ラムクロマトパターンである。 図中、■〜■は、モノー〜ノナーガラクトサミンのピー
クをそれぞれ表わす。 代理人 弁理士 戸 1)親 男 fraction no。
力ラムクロマトパターンである。 図中、■〜■は、モノー〜ノナーガラクトサミンのピー
クをそれぞれ表わす。 代理人 弁理士 戸 1)親 男 fraction no。
Claims (3)
- (1)ポリガラクトサミン分解酵素をポリガラクトサミ
ンに作用させることによりガラクトサミノオリゴ糖を製
造する際、反応液のpHを酵素の至適pHよりも低いp
Hに設定することにより、特異的に高重合度のガラクト
サミノオリゴ糖を得ることを特徴とするガラクトサミノ
オリゴ糖の製造方法。 - (2)反応液のpHを3〜4.5に設定することを特徴
とする請求項1に記載のガラクトサミノオリゴ糖の製造
方法。 - (3)限外濾過膜を用い生成したガラクトサミノオリゴ
糖を反応系外に取り出し、未分解のポリガラクトサミン
と酵素を含む反応液を反応系にもどし、反応系にポリガ
ラクトサミンを補充することにより、連続的に高重合度
のガラクトサミノオリゴ糖を得ることを特徴とする請求
項1又は2に記載のガラクトサミノオリゴ糖の製造方法
。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP22422290A JPH04108395A (ja) | 1990-08-28 | 1990-08-28 | ガラクトサミノオリゴ糖の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP22422290A JPH04108395A (ja) | 1990-08-28 | 1990-08-28 | ガラクトサミノオリゴ糖の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04108395A true JPH04108395A (ja) | 1992-04-09 |
JPH0587238B2 JPH0587238B2 (ja) | 1993-12-15 |
Family
ID=16810423
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP22422290A Granted JPH04108395A (ja) | 1990-08-28 | 1990-08-28 | ガラクトサミノオリゴ糖の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH04108395A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0931097A4 (en) * | 1996-10-10 | 2000-01-12 | Cytel Corp | CARBOHYDRATE PURIFICATION BY ULTRAFILTRATION, REVERSE OSMOSIS AND NANOFILTRATION |
JPWO2014132468A1 (ja) * | 2013-03-01 | 2017-02-02 | 国立研究開発法人理化学研究所 | 糖鎖化合物および糖鎖化合物の製造方法 |
-
1990
- 1990-08-28 JP JP22422290A patent/JPH04108395A/ja active Granted
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0931097A4 (en) * | 1996-10-10 | 2000-01-12 | Cytel Corp | CARBOHYDRATE PURIFICATION BY ULTRAFILTRATION, REVERSE OSMOSIS AND NANOFILTRATION |
JPWO2014132468A1 (ja) * | 2013-03-01 | 2017-02-02 | 国立研究開発法人理化学研究所 | 糖鎖化合物および糖鎖化合物の製造方法 |
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Publication number | Publication date |
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JPH0587238B2 (ja) | 1993-12-15 |
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