JPH02273176A - グリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシドジスムターゼ及びその製造法 - Google Patents
グリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシドジスムターゼ及びその製造法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の目的]
(産業上の利用分野)
本発明は、修飾酵素及びその製造法に関し、更に詳しく
はグリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシド
ジスムターゼ及びその製造法に関するものである。
はグリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシド
ジスムターゼ及びその製造法に関するものである。
(従来の技術及び発明が解決しようとする課題)スーパ
ーオキシドジスムターゼ(以下rS ODJという、)
は、ラジカルで反応性に富む活性酵素であるスーパーオ
キシドの有害作用から生体を防禦する働きを有するとい
われている。薬効の面では、抗リウマチ剤、心筋梗塞又
は臓器移植の際の使用、抗血栓剤の使用後に生じるラジ
カルの除去等の種々の炎症への適用が期待されている。
ーオキシドジスムターゼ(以下rS ODJという、)
は、ラジカルで反応性に富む活性酵素であるスーパーオ
キシドの有害作用から生体を防禦する働きを有するとい
われている。薬効の面では、抗リウマチ剤、心筋梗塞又
は臓器移植の際の使用、抗血栓剤の使用後に生じるラジ
カルの除去等の種々の炎症への適用が期待されている。
SODの原料としては、ヒト赤血球(J、 Biol。
Chem、、 244.4565(19691)、ウシ
赤血球(JBiol、Chem、、 246.2875
(197511、ニワトリ肝臓(J、 Biol、Ch
em、、 248.3582(1973)) 、麦芽(
Biochim、 Biophys、 Acta、 3
17.50(1973))、エントウマメ(Bioch
im、 Biophys、 Acta、 268.30
5(19721) 、ホウレンソウ(Eur、 J、
Biochem、。
赤血球(JBiol、Chem、、 246.2875
(197511、ニワトリ肝臓(J、 Biol、Ch
em、、 248.3582(1973)) 、麦芽(
Biochim、 Biophys、 Acta、 3
17.50(1973))、エントウマメ(Bioch
im、 Biophys、 Acta、 268.30
5(19721) 、ホウレンソウ(Eur、 J、
Biochem、。
36、257(1973)l、酵母(Biochim、
Biophys。
Biophys。
’Acta、 289.276(1972)l 、パン
カビ(J、 Biol。
カビ(J、 Biol。
Chem、、 247.3410(19721)等があ
り、更に遺伝子組換えで大量調製も可能である。
り、更に遺伝子組換えで大量調製も可能である。
しかし、蛋白のもつ宿命である、ヒト由来以外のSOD
の゛抗原性の問題、ヒト又は哨乳動物由来のSODでの
血中における安定性及び効果の問題(ヒト由来のものは
活性が小さく、血中での安定性が悪いと報告されている
。)が報告されており、実用化には更に一工夫が必要で
ある。
の゛抗原性の問題、ヒト又は哨乳動物由来のSODでの
血中における安定性及び効果の問題(ヒト由来のものは
活性が小さく、血中での安定性が悪いと報告されている
。)が報告されており、実用化には更に一工夫が必要で
ある。
かかる問題点を解消すべくポリアルキレングリコールで
SODを修飾する試みがなされているが(特開昭61−
249388号公報及び特開昭62−115280号公
報)、多糖による修飾ではデキストランによる修飾が報
告されているのみである(特開昭62−115280号
公報)。
SODを修飾する試みがなされているが(特開昭61−
249388号公報及び特開昭62−115280号公
報)、多糖による修飾ではデキストランによる修飾が報
告されているのみである(特開昭62−115280号
公報)。
しかしながら、デキストランによる修飾では、SODの
抗炎症作用の増強が認められるが、免疫原性を抑制する
効果は認められていない(特開昭62−115280号
公報5頁左下欄参照)。
抗炎症作用の増強が認められるが、免疫原性を抑制する
効果は認められていない(特開昭62−115280号
公報5頁左下欄参照)。
本発明者らは、デキストランによるSODの修飾の欠点
を解消すべく鋭意研究を重ねた結果、デキストランの代
わりにグリコサミノグリカン(以下rGAGJという、
)を用いることにより抗炎症作用を維持し、かつ、免疫
原性を抑制できることを見出し本発明を完成するに至っ
た。
を解消すべく鋭意研究を重ねた結果、デキストランの代
わりにグリコサミノグリカン(以下rGAGJという、
)を用いることにより抗炎症作用を維持し、かつ、免疫
原性を抑制できることを見出し本発明を完成するに至っ
た。
[発明の構成]
(課題を解決するための手段及び作用)本発明は、SO
DとGAGとを化学的に結合させてなることを特徴とす
る修飾酵素及びその製造法に関するものである。
DとGAGとを化学的に結合させてなることを特徴とす
る修飾酵素及びその製造法に関するものである。
本発明に用いるSODとしては、特に制限はないが、特
にヒト又はその他の嗜乳類由来のSODが好ましい。
にヒト又はその他の嗜乳類由来のSODが好ましい。
また、GAGとしては、例えば、ヒアルロン酸(以下r
HAJという、)、コンドロイチン硫酸(以下rcsJ
という、)(A、B、C,D。
HAJという、)、コンドロイチン硫酸(以下rcsJ
という、)(A、B、C,D。
E、F、H)、ヘパリン(以下rHepJという、)、
ヘパラン硫酸(以下「H8」という、)、ケラタン硫酸
(以下rKs」という、)、ケラタンポリ硫酸(以下r
KPSJという、)及びこれらの塩、例えばナトリウム
塩、カリウム塩、カルシウム塩等が挙げられる。
ヘパラン硫酸(以下「H8」という、)、ケラタン硫酸
(以下rKs」という、)、ケラタンポリ硫酸(以下r
KPSJという、)及びこれらの塩、例えばナトリウム
塩、カリウム塩、カルシウム塩等が挙げられる。
本発明の修飾酵素は、前述のSODとGAGを化学的に
結合させてなるものであり、かかる結合の方法としては
、特に制限はないが、例えば、SODのアミノ基又はカ
ルボキシル基と、GAGのカルボキシル基もしくは水酸
基又は還元末端の官能基との反応によって結合させる方
法、SODやGAGの前記官能基を臭化シアン、エビへ
ロヒドリン、ジエポキシド、ω−アミノアルキルアミン
、N−ヒドロキシスクシンイミド等で活性化したりスペ
ーサーを付けて結合させる方法、GAGの還元末端を還
元して生じた一級水酸基のみを部分酸化しアルデヒド基
としてSODのアミノ基と反応させる方法が挙げられる
。
結合させてなるものであり、かかる結合の方法としては
、特に制限はないが、例えば、SODのアミノ基又はカ
ルボキシル基と、GAGのカルボキシル基もしくは水酸
基又は還元末端の官能基との反応によって結合させる方
法、SODやGAGの前記官能基を臭化シアン、エビへ
ロヒドリン、ジエポキシド、ω−アミノアルキルアミン
、N−ヒドロキシスクシンイミド等で活性化したりスペ
ーサーを付けて結合させる方法、GAGの還元末端を還
元して生じた一級水酸基のみを部分酸化しアルデヒド基
としてSODのアミノ基と反応させる方法が挙げられる
。
カルボジイミド縮合法により結合させる場合、カルボジ
イミド類としては、例えばジエチルカルボジイミド、ジ
イソプロピルカルボジイミド、メチルプロピルカルボジ
イミド、ジシクロへキシルカルボジイミド、ヘキサメチ
レンカルボジイミド、ヘプタメチレンカルボジイミド、
1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カル
ボジイミド、1−シクロへキシル−3−(2−モルホリ
ノエチル)カルボジイミドメソ−p−トルエンスルホネ
ート、1−t−ブチル−3−(3−ジメチルアミノプロ
ピル)カルボジイミド、ジフェニルカルボジイミド、4
.4′−ジニトロジフェニルカルボジイミド、ジーp−
)リルカルポジイミド、ビス(トリメチルシリル)カル
ボジイミド等が挙げられる。
イミド類としては、例えばジエチルカルボジイミド、ジ
イソプロピルカルボジイミド、メチルプロピルカルボジ
イミド、ジシクロへキシルカルボジイミド、ヘキサメチ
レンカルボジイミド、ヘプタメチレンカルボジイミド、
1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カル
ボジイミド、1−シクロへキシル−3−(2−モルホリ
ノエチル)カルボジイミドメソ−p−トルエンスルホネ
ート、1−t−ブチル−3−(3−ジメチルアミノプロ
ピル)カルボジイミド、ジフェニルカルボジイミド、4
.4′−ジニトロジフェニルカルボジイミド、ジーp−
)リルカルポジイミド、ビス(トリメチルシリル)カル
ボジイミド等が挙げられる。
本発明の修飾酵素は、水溶性であること好ましい。
本発明の修飾酵素中のGAG含量は、目的とする医薬用
途により異なるが、通常20〜99.99重量%、好ま
しくは45〜99.5重量%である。
途により異なるが、通常20〜99.99重量%、好ま
しくは45〜99.5重量%である。
水溶性カルボジイミドによる縮合法では、1〜10%の
GAG水溶液を塩酸でpH4〜6に調整し、水溶性カル
ボジイミドを加え、再度pHを4〜6に調整する。SO
Dを加え室温で1時間pHを4〜6に保持し、その後5
〜20時間放置する0反応液にエタノールを加え沈殿さ
せ、その後、沈殿物を精製し、目的物を得る。
GAG水溶液を塩酸でpH4〜6に調整し、水溶性カル
ボジイミドを加え、再度pHを4〜6に調整する。SO
Dを加え室温で1時間pHを4〜6に保持し、その後5
〜20時間放置する0反応液にエタノールを加え沈殿さ
せ、その後、沈殿物を精製し、目的物を得る。
臭化シアン活性化法では、GAGの2Mリン酸緩衝液(
pH11,5)の溶液に臭化シアンのアセトニトリル溶
液を加え、4℃で5分間反応させた後、アセトニトリル
を加えて沈殿させ、過剰の臭化シアンを除いた後、O,
1M炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解し、SODを加え
て4℃で200時間反応せ、精製して目的物を得る。
pH11,5)の溶液に臭化シアンのアセトニトリル溶
液を加え、4℃で5分間反応させた後、アセトニトリル
を加えて沈殿させ、過剰の臭化シアンを除いた後、O,
1M炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解し、SODを加え
て4℃で200時間反応せ、精製して目的物を得る。
還元末端酸化法では、0.05Mホウ酸緩衝液(pH8
,3)にGAGを溶解し、水素化ホウ素ナトリウムを加
えて室温で5時間反応させて還元末端還元GAGを得る
。これを40mMイミダゾール塩酸(pH6,5)水溶
液に溶解し、5〜7倍モルの過ヨウ素酸ナトリウムを0
℃で加えて反応させ、還元末端酸化GAGを得る。これ
にSODを加えて室温で1〜20時間反応させた後、水
素化シアノホウ素ナトリウムを加えて室温で2〜20時
間反応させ、精製して目的物を得る。
,3)にGAGを溶解し、水素化ホウ素ナトリウムを加
えて室温で5時間反応させて還元末端還元GAGを得る
。これを40mMイミダゾール塩酸(pH6,5)水溶
液に溶解し、5〜7倍モルの過ヨウ素酸ナトリウムを0
℃で加えて反応させ、還元末端酸化GAGを得る。これ
にSODを加えて室温で1〜20時間反応させた後、水
素化シアノホウ素ナトリウムを加えて室温で2〜20時
間反応させ、精製して目的物を得る。
以上の結合反応によって得られる修飾酵素は。
常法に従って、透析、アルコール沈殿、ゲルろ過、イオ
ン交換クロマトグラフィー等により精製することができ
る。
ン交換クロマトグラフィー等により精製することができ
る。
本発明の修飾酵素は、抗炎症剤、特に抗リウマチ剤とし
て有用である。
て有用である。
本発明の修飾酵素を医薬として適用するに際しては、有
効成分として本発明の修飾酵素又はその無毒性で薬学的
に許容される塩を、固体又は液体の医薬用担体又は希釈
剤、即ち、賦形剤、安定剤等の添加剤とともに含む製剤
とすることが好ましい。特に好ましい塩は、アルカリ金
属塩及びアルカリ土類金属塩のような薬学的に許容され
る無毒性の塩であり、例えばナトリウム塩、カリウム塩
、マグネシウム塩、カルシウム塩、アルミニウム塩が挙
げられる。これらの塩は水溶性であるため、注射剤とし
て用いる場合に最適である。該医薬製剤において、前記
有効成分の担体成分に対する割合は、1〜90重量%の
間で変動させつる。
効成分として本発明の修飾酵素又はその無毒性で薬学的
に許容される塩を、固体又は液体の医薬用担体又は希釈
剤、即ち、賦形剤、安定剤等の添加剤とともに含む製剤
とすることが好ましい。特に好ましい塩は、アルカリ金
属塩及びアルカリ土類金属塩のような薬学的に許容され
る無毒性の塩であり、例えばナトリウム塩、カリウム塩
、マグネシウム塩、カルシウム塩、アルミニウム塩が挙
げられる。これらの塩は水溶性であるため、注射剤とし
て用いる場合に最適である。該医薬製剤において、前記
有効成分の担体成分に対する割合は、1〜90重量%の
間で変動させつる。
剤形及び投与形態としては、顆粒剤、細粒剤、散剤、錠
剤、カプセル剤、丸剤もしくは液剤等の剤形にして、又
は原末のまま経口投与してもよいし、注射剤として静脈
内投与、筋肉的投与又は皮下投与してもよい、また、坐
剤、軟膏剤、バッグ剤、貼付剤、リニメント剤、ローシ
ョン剤等の剤形にして、外用剤として用いることもでき
る。また、注射用の粉末にして、用時調製して使用して
もよい。
剤、カプセル剤、丸剤もしくは液剤等の剤形にして、又
は原末のまま経口投与してもよいし、注射剤として静脈
内投与、筋肉的投与又は皮下投与してもよい、また、坐
剤、軟膏剤、バッグ剤、貼付剤、リニメント剤、ローシ
ョン剤等の剤形にして、外用剤として用いることもでき
る。また、注射用の粉末にして、用時調製して使用して
もよい。
経口、経腸、非経口もしくは局所投与に適した医薬用の
有機又は無機の、固体又は液体の担体もしくは希釈剤を
、本発明の修飾酵素を含む医薬製剤を調製するために用
いることができる。水、ゼラチン、乳糖、デンプン、ス
テアリン酸マグネシウム、タルク、動植物油脂、ベンジ
ルアルコール、ガム、ポリアルキレングリコール、石油
樹脂、やし油、ラノリン又は医薬に用いられる他のキャ
リアー(担体)は全て、本発明の修飾酵素の担体として
用いることができる。また、安定剤、湿潤剤、乳化剤や
、浸透圧を変えたり、配合剤の適切なpHを維持するた
めの塩類を補助薬剤として適宜用いることもできる。
有機又は無機の、固体又は液体の担体もしくは希釈剤を
、本発明の修飾酵素を含む医薬製剤を調製するために用
いることができる。水、ゼラチン、乳糖、デンプン、ス
テアリン酸マグネシウム、タルク、動植物油脂、ベンジ
ルアルコール、ガム、ポリアルキレングリコール、石油
樹脂、やし油、ラノリン又は医薬に用いられる他のキャ
リアー(担体)は全て、本発明の修飾酵素の担体として
用いることができる。また、安定剤、湿潤剤、乳化剤や
、浸透圧を変えたり、配合剤の適切なpHを維持するた
めの塩類を補助薬剤として適宜用いることもできる。
更に、該医薬製剤は、リウマチ等の炎症性の疾患又は症
状の治療において、本発明の修飾酵素とともに適切に投
与することができる他の医薬として有効な成分、例えば
他の適当な抗炎症剤又は抗炎症酵素剤を含有していても
よい。
状の治療において、本発明の修飾酵素とともに適切に投
与することができる他の医薬として有効な成分、例えば
他の適当な抗炎症剤又は抗炎症酵素剤を含有していても
よい。
顆粒剤、細粒剤、散剤、錠剤又はカプセル剤の場合には
、該医薬製剤は本発明の修飾酵素を5〜80重量%含有
しているのが好ましく、液剤の場合には、対応する量(
割合)は、1〜30重量%であるのが好ましい。また、
非経口投与のうち、注射剤の場合は1〜10重量%、坐
剤の場合は1〜50重量%が好ましい。局所投与用であ
る軟膏剤又はパップ剤等として用いる場合は、医薬製剤
1 oogに対し、本発明の修飾酵素を0.1〜10g
含有させることが好ましい。
、該医薬製剤は本発明の修飾酵素を5〜80重量%含有
しているのが好ましく、液剤の場合には、対応する量(
割合)は、1〜30重量%であるのが好ましい。また、
非経口投与のうち、注射剤の場合は1〜10重量%、坐
剤の場合は1〜50重量%が好ましい。局所投与用であ
る軟膏剤又はパップ剤等として用いる場合は、医薬製剤
1 oogに対し、本発明の修飾酵素を0.1〜10g
含有させることが好ましい。
臨床投与量は、経口投与の場合、成人に対し本発明の修
飾酵素として、1日量100〜2000mgを内服する
のが好ましいが、年令、症状により適宜増減することも
可能である。前記1日量の本発明の修飾酵素は、1日に
1回、又は適当な間隔をおいて1日2もしくは3回に分
けて投与することが好ましい。
飾酵素として、1日量100〜2000mgを内服する
のが好ましいが、年令、症状により適宜増減することも
可能である。前記1日量の本発明の修飾酵素は、1日に
1回、又は適当な間隔をおいて1日2もしくは3回に分
けて投与することが好ましい。
また、注射剤として用いる場合には、本発明の修飾酵素
として成人に対し1回量10〜1000mgを投与する
のが好ましく、軟膏剤又はパップ剤等として用いる場合
は、前記含有割合のものを適当量患部に塗布することが
好ましい。
として成人に対し1回量10〜1000mgを投与する
のが好ましく、軟膏剤又はパップ剤等として用いる場合
は、前記含有割合のものを適当量患部に塗布することが
好ましい。
(発明の実施例)
以下、実施例、試験例により本発明を更に詳細に説明す
るが、これらは本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。
るが、これらは本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。
なお、以下の実施例等において、酵素活性及び物性の測
定等は以下の条件で行った。
定等は以下の条件で行った。
1立見皿並辺[:
J、M、 McCord及び1. Fr1dvichの
方法(J。
方法(J。
Biol、Chem、、 244.6049(1969
1)に準じて行った。
1)に準じて行った。
11放lニ
アセチルセルロース膜(Separax JOOKOO
Co、。
Co、。
LTD、)を用い、O,1Mピリジン/ギ酸緩衝液(p
H3,0) 、0.5mA/cmで30分泳動し、クー
マシーブルー、又はアルシアンブルー及びトルイジンブ
ルーで染色した。
H3,0) 、0.5mA/cmで30分泳動し、クー
マシーブルー、又はアルシアンブルー及びトルイジンブ
ルーで染色した。
HPLCによる 1 :
東ソー製カラムG 6000 PWX 2を用い、0.
2M食塩水溶液で溶出し、HAのキャリブレーションカ
ーブからHA−SODの分子量を測定した。
2M食塩水溶液で溶出し、HAのキャリブレーションカ
ーブからHA−SODの分子量を測定した。
実施例I HA修飾SODの製造(水溶性カルボジイ
ミド縮合法) 鶏冠由来のHA(分子量100万)500mgを水50
m1に溶解し、0.0IN塩酸でpH640とした。こ
の水溶液にウシ赤血球由来のSOD5mgを溶解し、1
−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボ
ジイミド塩酸塩(以下rWSCJという、)30mgを
加えて4℃で200時間反応せた0反応液にエタノール
を加えて沈殿物を得た。この沈殿物を水に溶解し、再度
エタノールを加えて、沈殿物としてHA修飾SODを得
た。
ミド縮合法) 鶏冠由来のHA(分子量100万)500mgを水50
m1に溶解し、0.0IN塩酸でpH640とした。こ
の水溶液にウシ赤血球由来のSOD5mgを溶解し、1
−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボ
ジイミド塩酸塩(以下rWSCJという、)30mgを
加えて4℃で200時間反応せた0反応液にエタノール
を加えて沈殿物を得た。この沈殿物を水に溶解し、再度
エタノールを加えて、沈殿物としてHA修飾SODを得
た。
収量: 482mg
5OD含量:0.92%
HA含量:99.08%
分子量= 118万
電気泳動: 第1図参照
SOD活性: 未修飾SODの67.2%[CE] o
: −79,0(C=1. Hid)実施例2
HA修飾SODの製造(水溶性カルボジイミド縮合法
) 鶏冠由来(7)HA(分子量100万)200mg、ヒ
ト赤血球由来(7) S OD 5 m g及びWSC
19mgを用い、実施例1と同様に処理してHA修飾S
ODを得た。
: −79,0(C=1. Hid)実施例2
HA修飾SODの製造(水溶性カルボジイミド縮合法
) 鶏冠由来(7)HA(分子量100万)200mg、ヒ
ト赤血球由来(7) S OD 5 m g及びWSC
19mgを用い、実施例1と同様に処理してHA修飾S
ODを得た。
収量: 198mg
5OD含量:2.30%
HA含量:97.70%
分子量: 118万
電気泳動: 第1図参照
SOD活性: 未修飾SODの44,4%[al o
: −78,5(C=1. Hid)実施例3
HA修飾SODの製造(臭化シアン活性化法) 鶏冠由来のHA(分子量15万)400mgを2Mリン
酸緩衝液(pH11,5)に溶解し、臭化シアンのアセ
トニトリル溶液(100mg/ml)1mlを加えて4
℃で5分間反応させた。
: −78,5(C=1. Hid)実施例3
HA修飾SODの製造(臭化シアン活性化法) 鶏冠由来のHA(分子量15万)400mgを2Mリン
酸緩衝液(pH11,5)に溶解し、臭化シアンのアセ
トニトリル溶液(100mg/ml)1mlを加えて4
℃で5分間反応させた。
直ちに、アセトニトリル150m1を加えて沈殿物を得
、アセトニトリルで素早く洗浄した。この沈殿物を0.
1M炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解し、1%のイヌ赤
血球由来のSOD水溶液10m1を加えて4℃で200
時間反応せた0反応液にエタノールを加え、得た沈殿物
を水に溶解し、エタノールアミンO,1mlを加えて室
温で1時間反応させた0反応液にエタノールを加えて沈
殿させ、沈殿物を充分にエタノールで洗浄して乾燥させ
て、HA修飾SODを得た。
、アセトニトリルで素早く洗浄した。この沈殿物を0.
1M炭酸水素ナトリウム水溶液に溶解し、1%のイヌ赤
血球由来のSOD水溶液10m1を加えて4℃で200
時間反応せた0反応液にエタノールを加え、得た沈殿物
を水に溶解し、エタノールアミンO,1mlを加えて室
温で1時間反応させた0反応液にエタノールを加えて沈
殿させ、沈殿物を充分にエタノールで洗浄して乾燥させ
て、HA修飾SODを得た。
収量: 350mg
5OD含量:21.2%
HA含量: 7B、8%
分子量: 17.2万
電気泳動: 第1図参照
SOD活性: 未修飾SODの82.1%[α]。:
−68,0(C=、1. H,0)実施例4 H
A修飾SODの製造(還元末端酸化法) (1)HAの還元末端の還元 鶏冠由来fニア)HA (分子量100万)2000m
g (0,OOl 92mmol)を0.05Mホウ酸
緩衝液(pH8,3)200mlに溶解し、水素化ホウ
素ナトリウム1.82mgを加えて室温で5時間反応さ
せた6反応液に酢酸を加えてpHを4.5として、エタ
ノールを加えて沈殿させた。
−68,0(C=、1. H,0)実施例4 H
A修飾SODの製造(還元末端酸化法) (1)HAの還元末端の還元 鶏冠由来fニア)HA (分子量100万)2000m
g (0,OOl 92mmol)を0.05Mホウ酸
緩衝液(pH8,3)200mlに溶解し、水素化ホウ
素ナトリウム1.82mgを加えて室温で5時間反応さ
せた6反応液に酢酸を加えてpHを4.5として、エタ
ノールを加えて沈殿させた。
沈殿物を充分にエタノールで洗浄して乾燥させて、還元
末端還元HAを得た。
末端還元HAを得た。
収量: 1800mg
(2)還元末端酸化HA
還元末端還元HA 1700 m g (0,0016
35mmallを40mMイミダゾール塩酸(pH6,
5)水溶液250m1に溶解し、0℃に冷却して過ヨウ
素酸ナトリウム1.39956mgを加えて1時間反応
させた6反応液にエタノールを加えて沈殿させ、沈殿物
を充分にエタノールで洗浄して、還元末端酸化HAを得
た。
35mmallを40mMイミダゾール塩酸(pH6,
5)水溶液250m1に溶解し、0℃に冷却して過ヨウ
素酸ナトリウム1.39956mgを加えて1時間反応
させた6反応液にエタノールを加えて沈殿させ、沈殿物
を充分にエタノールで洗浄して、還元末端酸化HAを得
た。
収量二 1610mg
アルデヒド基:還元末端の70%
(3)HA修飾SOD
還元末端酸化HA100mgを0.05Mリン酸緩衝液
(pH8,0)10mlに溶解し、ウシ赤血球由来の5
OD2.3mgを加えて室温で200時間反応せた0次
いで、水素化シアノホウ素ナトリウム0.4mgを加え
て室温で2時間反応させた。反応液にエタノールを加え
て沈殿させ、沈殿物を充分にエタノールで洗浄して乾燥
させて、HA修飾SODを得た。
(pH8,0)10mlに溶解し、ウシ赤血球由来の5
OD2.3mgを加えて室温で200時間反応せた0次
いで、水素化シアノホウ素ナトリウム0.4mgを加え
て室温で2時間反応させた。反応液にエタノールを加え
て沈殿させ、沈殿物を充分にエタノールで洗浄して乾燥
させて、HA修飾SODを得た。
収量: 89.7mg
5OD含量: 2.0%
HA含量: 9B、0%
分子量: 100万
電気泳動: 第1図参照
SOD活性; 未修飾SODの89.8%[a] o
: 78. O(C:1. HzO)実施例5
C5修飾SODの製造(水溶性カルボジイミド縮合法
) ウシ気管軟骨由来のCS(分子量15000)100m
gを水10m1に溶解し、0.0IN塩酸でpH6、O
とした。これにウシ赤血球由来のSODを1.2.5.
10.20又は40mg加えた後、WSCを6mgずつ
加えて4℃で200時間反応せた1反応液にエタノール
を加えて沈殿させ、沈殿物を水に溶解し再度エタノール
を加えて沈殿させて、それぞれ以下の表1に示すC8−
5OD−1,2,3,4,5又は6を得た。
: 78. O(C:1. HzO)実施例5
C5修飾SODの製造(水溶性カルボジイミド縮合法
) ウシ気管軟骨由来のCS(分子量15000)100m
gを水10m1に溶解し、0.0IN塩酸でpH6、O
とした。これにウシ赤血球由来のSODを1.2.5.
10.20又は40mg加えた後、WSCを6mgずつ
加えて4℃で200時間反応せた1反応液にエタノール
を加えて沈殿させ、沈殿物を水に溶解し再度エタノール
を加えて沈殿させて、それぞれ以下の表1に示すC8−
5OD−1,2,3,4,5又は6を得た。
表 1
*未修飾SODの活性に対する比率
実施例6 Hep修飾SODの製造(還元末端酸化法
) (1)Hepの還元末端の還元 豚小腸由来のHep (分子量15000)5000
m g (0,3335mmol)及び水素化ホウ素ナ
トリウム315 、4 m g (18,34mmal
l を用い、実施例4(1)と同様に処理して還元末端
還元Hepを得た。
) (1)Hepの還元末端の還元 豚小腸由来のHep (分子量15000)5000
m g (0,3335mmol)及び水素化ホウ素ナ
トリウム315 、4 m g (18,34mmal
l を用い、実施例4(1)と同様に処理して還元末端
還元Hepを得た。
収量: 4835mg
5含量:12.57%
(2)還元末端酸化Hep
還元末端還元He p 4000 mg (0,266
7mmol)及び過ヨウ素酸ナトリウム228 mg
(1,067mmallを用い、実施例4(2)と同様
に処理して還元末端酸化Hepを得た。
7mmol)及び過ヨウ素酸ナトリウム228 mg
(1,067mmallを用い、実施例4(2)と同様
に処理して還元末端酸化Hepを得た。
収量: 3785mg
5含量:12.66%
アルデヒド基:還元末端の68%
(3)Hep修飾SOD
還元末端酸化Hep l 00mgを0.05Mリン酸
緩衝液(pH8,0)l Omlに溶解し、つシ赤血球
由来のSOD60mgを加えて室温で200時間反応せ
た。次いで、水素化シアノホウ素ナトリウム20 m
gを加えて室温で2時間反応させた1反応液にエタノー
ルを加えて沈殿させ、沈殿物を水に溶解し再度エタノー
ルで沈殿させてHep修飾SODを得た。
緩衝液(pH8,0)l Omlに溶解し、つシ赤血球
由来のSOD60mgを加えて室温で200時間反応せ
た。次いで、水素化シアノホウ素ナトリウム20 m
gを加えて室温で2時間反応させた1反応液にエタノー
ルを加えて沈殿させ、沈殿物を水に溶解し再度エタノー
ルで沈殿させてHep修飾SODを得た。
収量: 120mg
5OD含量: 55%
Hep含量= 45%
分子量: 43600
電気泳動; 第1図参照
SOD活性: 未修飾SODの82.4%[α]。:
12.0 (C=1. H,0)実施例7 H
A修飾SODの製造(水溶性カルボジイミド縮合法) 鶏冠由来のHA(分子量100万)を実施例1に準じて
大腸菌由来のSOD (3000U/mg蛋白)に結合
させた。
12.0 (C=1. H,0)実施例7 H
A修飾SODの製造(水溶性カルボジイミド縮合法) 鶏冠由来のHA(分子量100万)を実施例1に準じて
大腸菌由来のSOD (3000U/mg蛋白)に結合
させた。
SOD含量:1.00%
HA含量:99.00%
分子量: 110万
SOD活性: 未修飾5OD(7)44.096[α]
、 : −69,0(C=1. H,01試験例
1 免疫学的活性の測定 5w1ss−Webster系雌性マウス4匹を1群と
して、腹腔内に週に1回12週間、0.05Mリン酸緩
衝液pH7,0(以下rPBSJという、)に溶解した
大腸菌由来のSOD又は実施例7で得たHA修飾SOD
(以下rHA−SOD−7Jという、)を蛋白として
O,1mg分投与した。
、 : −69,0(C=1. H,01試験例
1 免疫学的活性の測定 5w1ss−Webster系雌性マウス4匹を1群と
して、腹腔内に週に1回12週間、0.05Mリン酸緩
衝液pH7,0(以下rPBSJという、)に溶解した
大腸菌由来のSOD又は実施例7で得たHA修飾SOD
(以下rHA−SOD−7Jという、)を蛋白として
O,1mg分投与した。
O13,6,9,12週目に眼窩後の血管(retro
orbital plexus)から採血して一20℃
に保存した。それぞれの血清はVollerらの方法(
In Manual of C11nical Imm
unology(N、R,Roseand H,Fri
edman、 eds、)、 pp、506−512.
AmericanSociety for Micr
obiology、 Washington、 DC(
19761)に従い、HPO(ホースラデイツシュペル
オキシダーゼ)ELISAで力価を測定した。
orbital plexus)から採血して一20℃
に保存した。それぞれの血清はVollerらの方法(
In Manual of C11nical Imm
unology(N、R,Roseand H,Fri
edman、 eds、)、 pp、506−512.
AmericanSociety for Micr
obiology、 Washington、 DC(
19761)に従い、HPO(ホースラデイツシュペル
オキシダーゼ)ELISAで力価を測定した。
即ち、抗原を炭酸塩緩衝液(0,5M、pH9,5)で
10ug/mlに希釈し、100u lを用いた。プレ
ート(Nunc Immuno Hm1crotit
erplates)を4℃で一晩インキユベートし、ツ
イーン(Tweenl入り生理食塩水(0,05%Tw
een20)で3回洗浄した。試験に用いられる血清を
ツイーン(Tweenl 入りPBS (0,05%T
ween20)で希釈し、100μlを加えた。3つの
コントロール、即ち、抗原コントロール、抗血清コント
ロール、正常マウスコントロールが作られたことになる
。室温で1時間インキュベートし、各々に100μmの
HOP−結合ヤギ抗マウス免疫グロブリン(I gG+
I gA+I gM)を加えて、室温で1時間30分イ
ンキュベートした。0−フ二二レンジアミン基質100
μlを加えて10分間インキュベートし、4N硫酸0.
01m1を加えて反応を中止した。力価は光学密度がコ
ントロールの血清を対照にして0.01となるところの
希釈倍率で表した。
10ug/mlに希釈し、100u lを用いた。プレ
ート(Nunc Immuno Hm1crotit
erplates)を4℃で一晩インキユベートし、ツ
イーン(Tweenl入り生理食塩水(0,05%Tw
een20)で3回洗浄した。試験に用いられる血清を
ツイーン(Tweenl 入りPBS (0,05%T
ween20)で希釈し、100μlを加えた。3つの
コントロール、即ち、抗原コントロール、抗血清コント
ロール、正常マウスコントロールが作られたことになる
。室温で1時間インキュベートし、各々に100μmの
HOP−結合ヤギ抗マウス免疫グロブリン(I gG+
I gA+I gM)を加えて、室温で1時間30分イ
ンキュベートした。0−フ二二レンジアミン基質100
μlを加えて10分間インキュベートし、4N硫酸0.
01m1を加えて反応を中止した。力価は光学密度がコ
ントロールの血清を対照にして0.01となるところの
希釈倍率で表した。
なお、デキストラン(分子量120000)を用いて実
施例 と同様に処理して得られる修飾SOD (以下r
Dex−3ODJという、)にっいても同様の試験を行
った。結果を表2に示す。
施例 と同様に処理して得られる修飾SOD (以下r
Dex−3ODJという、)にっいても同様の試験を行
った。結果を表2に示す。
表2
*抗体の希釈倍率で表現
表2から、本発明の修飾酵素は、未修飾SOD及びDe
x−SODに比し抗原性が顕著に低いことがわかる。
x−SODに比し抗原性が顕著に低いことがわかる。
試験例2 マウス虚血足浮腫に及ぼす影響Y、 Oya
naguiらの方法(Free Rad、 Res、
Comm5.。
naguiらの方法(Free Rad、 Res、
Comm5.。
4f6)、 385−3961に準じて行った。
8週令のddy系雄性マウスを保定器にて保定し、縫合
糸(プレイン2号)で右後肢を一周縛り、一方を固定し
、もう一方に500gのオモリを吊して一定時間虚血を
行った。虚血前及び60分後の足践厚をノギスで測定し
た。その後、足践を切断し足厳重量も測定した。−群5
匹を用い、投与群には、ウシ赤血球由来のSOD又は実
施例1で得た)IA−3ODを虚血開始前30分又は虚
血直前に、SODは10000単位/kg、HA−3O
Dは500.2000単位/kg投与した。なお、コン
トロール群には、生理食塩水を虚血直前に静注した。結
果を表3に示す。
糸(プレイン2号)で右後肢を一周縛り、一方を固定し
、もう一方に500gのオモリを吊して一定時間虚血を
行った。虚血前及び60分後の足践厚をノギスで測定し
た。その後、足践を切断し足厳重量も測定した。−群5
匹を用い、投与群には、ウシ赤血球由来のSOD又は実
施例1で得た)IA−3ODを虚血開始前30分又は虚
血直前に、SODは10000単位/kg、HA−3O
Dは500.2000単位/kg投与した。なお、コン
トロール群には、生理食塩水を虚血直前に静注した。結
果を表3に示す。
表3
* 虚血足浮腫抑制率A
(40以上が有効とされる。)
** 虚血足浮腫抑制率B
×100
(60以上が有効とされる。)
表3から明らかなように1本発明の修飾酵素は、未修飾
SODに比し、活性単位で1/20、蛋白量で1/13
.4の量で虚血直前投与でほぼ同等の効果を示した。虚
血30分前投与では未修飾SODが効果を示さないのに
対し、本発明の修飾酵素は明らかに効果を示した。この
ことは、本発明の修飾酵素が血中で安定であり、持続性
を有することを示すものといえる。
SODに比し、活性単位で1/20、蛋白量で1/13
.4の量で虚血直前投与でほぼ同等の効果を示した。虚
血30分前投与では未修飾SODが効果を示さないのに
対し、本発明の修飾酵素は明らかに効果を示した。この
ことは、本発明の修飾酵素が血中で安定であり、持続性
を有することを示すものといえる。
試験例3 急性毒性試験
実施例1〜4で得たHA修飾SODを生理食塩水に2%
溶解し、急性毒性試験を行った。被検動物としては4週
令の5lc−ddy系雌雄マウスを用い、投与は最も毒
性が発現しやすい腹腔内投与により行った。
溶解し、急性毒性試験を行った。被検動物としては4週
令の5lc−ddy系雌雄マウスを用い、投与は最も毒
性が発現しやすい腹腔内投与により行った。
何れのHA修飾SODのLD、。も2000m g /
k g以上であった。
k g以上であった。
[発明の効果]
本発明によれば、従来の多糖修飾SODの欠点である抗
原性を低下させたGAG修飾SODを提供することがで
きる。
原性を低下させたGAG修飾SODを提供することがで
きる。
第1図は、電気泳動の結果を示す図である。第1図にお
いて、Aはクーマシーブルーで、Bはアルシアンブルー
及びトルイジンブルーで、それぞれ染色した場合を示す
。 1・・・ウシ赤血球由来の5OD 2・・・実施例1で得たHA−5OD 3・・・ヒト赤血球由来の5OD 4・・・実施例2で得た)(A−SOD5・・・イヌ赤
血球由来の5OD 6・・・実施例3で得たHA−3OD 7・・・実施例4で得たHA−3OD 8 ・HA + CS + He p
いて、Aはクーマシーブルーで、Bはアルシアンブルー
及びトルイジンブルーで、それぞれ染色した場合を示す
。 1・・・ウシ赤血球由来の5OD 2・・・実施例1で得たHA−5OD 3・・・ヒト赤血球由来の5OD 4・・・実施例2で得た)(A−SOD5・・・イヌ赤
血球由来の5OD 6・・・実施例3で得たHA−3OD 7・・・実施例4で得たHA−3OD 8 ・HA + CS + He p
Claims (2)
- (1)スーパーオキシドジスムターゼとグリコサミノグ
リカンとを化学的に結合させてなることを特徴とする修
飾酵素。 - (2)スーパーオキシドジスムターゼとグリコサミノグ
リカンとを化学的に結合させることを特徴とする修飾酵
素の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1091798A JP2766303B2 (ja) | 1989-04-13 | 1989-04-13 | グリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシドジスムターゼ及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1091798A JP2766303B2 (ja) | 1989-04-13 | 1989-04-13 | グリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシドジスムターゼ及びその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02273176A true JPH02273176A (ja) | 1990-11-07 |
JP2766303B2 JP2766303B2 (ja) | 1998-06-18 |
Family
ID=14036635
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1091798A Expired - Fee Related JP2766303B2 (ja) | 1989-04-13 | 1989-04-13 | グリコサミノグリカンで修飾されたスーパーオキシドジスムターゼ及びその製造法 |
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---|---|
JP (1) | JP2766303B2 (ja) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5238837A (en) * | 1991-02-05 | 1993-08-24 | Kuraray Co., Ltd. | Superoxide dismutase derivatives |
WO2006116452A1 (en) * | 2005-04-22 | 2006-11-02 | Molecular Regenix, Llc | Nutritional composition comprising hyaluronic acid and superoxide dismutase and methods of making and using same |
JP2008543967A (ja) * | 2005-06-28 | 2008-12-04 | ライフ サイエンス インベンシヨンズ リミテッド | 炎症性皮膚病変を治療するためのスーパーオキシドジスムターゼとカタラーゼとの混合物の使用 |
WO2012118189A1 (ja) | 2011-03-03 | 2012-09-07 | 中外製薬株式会社 | アミノ-カルボン酸により修飾されたヒアルロン酸誘導体 |
WO2014038641A1 (ja) | 2012-09-05 | 2014-03-13 | 中外製薬株式会社 | アミノ酸およびステリル基が導入されたヒアルロン酸誘導体 |
WO2019098393A1 (ja) | 2017-11-15 | 2019-05-23 | 中外製薬株式会社 | ポリエチレングリコールにより修飾されたヒアルロン酸誘導体 |
Citations (2)
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JPS62255435A (ja) * | 1984-12-06 | 1987-11-07 | バイオリリース テクノロジース インコーポレイテッド | 安定性タンパク質及びタンパク質の安定化法 |
JPS6467186A (en) * | 1987-09-04 | 1989-03-13 | Kanebo Ltd | Modified superoxide dismutase |
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1989
- 1989-04-13 JP JP1091798A patent/JP2766303B2/ja not_active Expired - Fee Related
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JP2766303B2 (ja) | 1998-06-18 |
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