JPH02171194A - 発酵法によるd‐アラニンの製造法 - Google Patents
発酵法によるd‐アラニンの製造法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〈産業上の利用分野〉
本発明は、工業的に有利なり一アラニンの製造法に関す
る。
る。
D−アラニンは、非天然型アミノ酸であるが、それ自体
試薬としであるいはペプチドなどの合成原料として有用
な化合物であり近年その需要も増加している。
試薬としであるいはペプチドなどの合成原料として有用
な化合物であり近年その需要も増加している。
〈従来の技術〉
従来より、コリネバクテリウム属に属する微生物により
発酵法によってDL−アラニンを製造する方法は数多く
知られている〔アミノ酸発酵(下巻)第119頁、共立
出版(昭和47年出版)〕。また、コリネバクテリウム
・ファシアンスを用いた発酵法によるD−アラニン製造
法も知られている(特公昭51−21076号公報)。
発酵法によってDL−アラニンを製造する方法は数多く
知られている〔アミノ酸発酵(下巻)第119頁、共立
出版(昭和47年出版)〕。また、コリネバクテリウム
・ファシアンスを用いた発酵法によるD−アラニン製造
法も知られている(特公昭51−21076号公報)。
〈発明が解決しようとする課題〉
しかしながら、上記コリネバクテリウム・ファシアンス
は、現在ロドコッカス・ロドクロスに分類されており、
いわゆるアミノ酸生産菌として工業的に漬れたコリネバ
クテリウム属に属する微生物を用いたD−アラニン選択
発酵はまだ完成されておらず、D−アラニンのみを収得
するには副生じたし一アラニンを除くために何らかの光
学分割操作が不可避であった。
は、現在ロドコッカス・ロドクロスに分類されており、
いわゆるアミノ酸生産菌として工業的に漬れたコリネバ
クテリウム属に属する微生物を用いたD−アラニン選択
発酵はまだ完成されておらず、D−アラニンのみを収得
するには副生じたし一アラニンを除くために何らかの光
学分割操作が不可避であった。
そこで本発明者らは、発酵法により選択的にD−アラニ
ンのみを生成蓄積させることにより光学分割操作を必要
とせず、さらに安価で簡便なり一アラニンの製造法を提
供することを目的として鋭意研究した。
ンのみを生成蓄積させることにより光学分割操作を必要
とせず、さらに安価で簡便なり一アラニンの製造法を提
供することを目的として鋭意研究した。
く問題点を解決するための手段および作用〉その結果本
発明者らは、コリネバクテリウム属に属する微生物であ
って、特別な耐性を有する微生物がD−アラニンを選択
的に生成蓄積することを見出し本発明を完成した。
発明者らは、コリネバクテリウム属に属する微生物であ
って、特別な耐性を有する微生物がD−アラニンを選択
的に生成蓄積することを見出し本発明を完成した。
すなわち本発明は、D−アラニン生産能を有し、かつD
−シクロセリンに対して耐性を有するコリネバクテリウ
ム属に属する微生物を培養して培養液中にD−アラニン
を生成蓄積せしめ、前記培養液中よりD−アラニンを採
取することを特徴とする発酵法によるD−アラニンの製
造法である。
−シクロセリンに対して耐性を有するコリネバクテリウ
ム属に属する微生物を培養して培養液中にD−アラニン
を生成蓄積せしめ、前記培養液中よりD−アラニンを採
取することを特徴とする発酵法によるD−アラニンの製
造法である。
次に、本発明の詳細な説明する。
本発明で用いられる微生物はD−アラニン生産能を有し
、かつD−シクロセリンに対して耐性を有するコリネバ
クテリウム属に属する微生物である。かかる性質を有し
ていれば、他の要求性、薬剤抵抗性の性質を持つもので
も本発明の範囲に含まれる。
、かつD−シクロセリンに対して耐性を有するコリネバ
クテリウム属に属する微生物である。かかる性質を有し
ていれば、他の要求性、薬剤抵抗性の性質を持つもので
も本発明の範囲に含まれる。
本発明で用いられる変異株の代表的なものとしては、た
とえば、コリネバクテリウム・グルタミカムDC8R−
13(微工研菌寄第10グ肘号)コリネバクテリウム・
アセトアシドフイラムDcSRt−5(微工研条寄第a
o +b号)が挙げられる。前者は、コリネバクテリウ
ム・グルタミカムATCC13032より誘導された菌
株であり、後者はコリネバクテリウム・アセトアシドフ
ィラムATCC13870より誘導された菌株でともに
D−シクロセリンに対して耐性を有する変異株である。
とえば、コリネバクテリウム・グルタミカムDC8R−
13(微工研菌寄第10グ肘号)コリネバクテリウム・
アセトアシドフイラムDcSRt−5(微工研条寄第a
o +b号)が挙げられる。前者は、コリネバクテリウ
ム・グルタミカムATCC13032より誘導された菌
株であり、後者はコリネバクテリウム・アセトアシドフ
ィラムATCC13870より誘導された菌株でともに
D−シクロセリンに対して耐性を有する変異株である。
変異株の誘導は、通常の変異処理法によって比教的容易
にできる。すなわち、D−シクロセリンに耐性を有する
変異株を得るには、親株を紫外線照射するかあるいは変
異誘発剤(たとえば、N−メチル−N゛−ニトロ−N−
ニトロングアニジン、エチルメタンスルホン酸など)で
処理したのち、親株が十分に生育できないような量のD
−シクロセリンを含む培地で親株に比べて有意に生育可
能な菌株を取得すればよい。
にできる。すなわち、D−シクロセリンに耐性を有する
変異株を得るには、親株を紫外線照射するかあるいは変
異誘発剤(たとえば、N−メチル−N゛−ニトロ−N−
ニトロングアニジン、エチルメタンスルホン酸など)で
処理したのち、親株が十分に生育できないような量のD
−シクロセリンを含む培地で親株に比べて有意に生育可
能な菌株を取得すればよい。
本発明におけるD−シクロセリン耐性株とは、その親株
より強い耐性を有する菌株のことであり、好ましくは親
株の64時間後の相対生育度が60%以下になるような
り一シクロセリン濃度を含む培地で培養した場合の相対
生育度が70%以上を示すようなものをいう、ここで生
育度は、培養液の660 nmにおける吸光度を測定し
、各菌株のD−シクロセリンを添加していない培養液の
吸光度を100%として表わした場合の相対吸光度で示
すものとする。
より強い耐性を有する菌株のことであり、好ましくは親
株の64時間後の相対生育度が60%以下になるような
り一シクロセリン濃度を含む培地で培養した場合の相対
生育度が70%以上を示すようなものをいう、ここで生
育度は、培養液の660 nmにおける吸光度を測定し
、各菌株のD−シクロセリンを添加していない培養液の
吸光度を100%として表わした場合の相対吸光度で示
すものとする。
本発明方法で使用する培養液培地としては、通常微生物
の培養に汎用される各種栄養源を使用できる。たとえば
炭素源としてはグルコース、糖蜜、デンプン加水分解液
などの糖類、酢酸などの有りl酸、エタノールなどのア
ルコール類、安息香酸などの有機化合物、窒素源として
は、硫安、硝安、塩安、リン安、尿素、アンモニア、そ
の他を利用でき、無機アンモニウム塩の種類によっては
たとえばリン酸塩、炭酸カルシウムなどの無機塩を必要
とする場合もある。また、上記培地には微生物の生育を
よくし、D−アラニンを著量蓄積させるためにたとえば
有機窒素源、ビタミン、微量の金属イオンなどを添加す
るのが好ましいが通常安価な味液、コーンスチープリカ
ーなどの添加によって十分それらの目的を達成すること
ができる。
の培養に汎用される各種栄養源を使用できる。たとえば
炭素源としてはグルコース、糖蜜、デンプン加水分解液
などの糖類、酢酸などの有りl酸、エタノールなどのア
ルコール類、安息香酸などの有機化合物、窒素源として
は、硫安、硝安、塩安、リン安、尿素、アンモニア、そ
の他を利用でき、無機アンモニウム塩の種類によっては
たとえばリン酸塩、炭酸カルシウムなどの無機塩を必要
とする場合もある。また、上記培地には微生物の生育を
よくし、D−アラニンを著量蓄積させるためにたとえば
有機窒素源、ビタミン、微量の金属イオンなどを添加す
るのが好ましいが通常安価な味液、コーンスチープリカ
ーなどの添加によって十分それらの目的を達成すること
ができる。
本発明において、上記微生物の培養は、培地を振盪もし
くは通気撹拌するごとき好気的条件下に実施するのが好
ましい、培養温度は通常20〜40℃、とりわけ30℃
付近にあることが好ましい。また、培地のPHは通常5
〜9であり、好ましくは、中性付近に維持することが高
収率を得るために望ましい、かくして数日間培養すれば
培地中にitのD−アラニンが生成蓄積する。培養終了
後、生成したD−アラニンは、たとえばイオン交換法、
吸着法、沈澱法などの公知の単MWI製操作を組合せて
用いることにより容易に採取することができる。
くは通気撹拌するごとき好気的条件下に実施するのが好
ましい、培養温度は通常20〜40℃、とりわけ30℃
付近にあることが好ましい。また、培地のPHは通常5
〜9であり、好ましくは、中性付近に維持することが高
収率を得るために望ましい、かくして数日間培養すれば
培地中にitのD−アラニンが生成蓄積する。培養終了
後、生成したD−アラニンは、たとえばイオン交換法、
吸着法、沈澱法などの公知の単MWI製操作を組合せて
用いることにより容易に採取することができる。
〈実施例〉
以下、実施例により本発明を具体的に説明する。
実施例I
A、(D−シクロセリン耐性株コリネバクテリウム・グ
ルタミカムDC8R−13の分離)コリネバクゾリウム
・グルタミカムATCC13032(ビオチン要求性)
の菌体に常法によりN−メチル−N−一二トローN−二
トロングアニジン処理<300μg/山i、30℃で1
0分)したのち、この細胞をD−シクロセリン50■/
iを添加した寒天培地(グルコース2%、硫安1%、リ
ン酸第1カリウム0.1%、硫酸マグネシウム・7水和
物0.04%、塩化ナトリウム0.05%、尿素0゜2
5%、硫酸第1鉄・7水和物10#/1、硫酸マンガン
・4水和物10mt/i、ビオチン50μg / 1を
含む完全合成培地)に塗布した0次に30℃で5〜7日
培養し、生じた大きなコロニーを釣菌分離して、D−シ
クロセリン耐性株(コリネバクテリウム・グルタミカム
DC3R−13)を収得した。
ルタミカムDC8R−13の分離)コリネバクゾリウム
・グルタミカムATCC13032(ビオチン要求性)
の菌体に常法によりN−メチル−N−一二トローN−二
トロングアニジン処理<300μg/山i、30℃で1
0分)したのち、この細胞をD−シクロセリン50■/
iを添加した寒天培地(グルコース2%、硫安1%、リ
ン酸第1カリウム0.1%、硫酸マグネシウム・7水和
物0.04%、塩化ナトリウム0.05%、尿素0゜2
5%、硫酸第1鉄・7水和物10#/1、硫酸マンガン
・4水和物10mt/i、ビオチン50μg / 1を
含む完全合成培地)に塗布した0次に30℃で5〜7日
培養し、生じた大きなコロニーを釣菌分離して、D−シ
クロセリン耐性株(コリネバクテリウム・グルタミカム
DC3R−13)を収得した。
コリネバクテリウム・アセトアシドフイラムDC3RI
−5も同様な方法で、コリネバクテリウム・アセトアシ
ドフィラムATCC13870から分離した。
−5も同様な方法で、コリネバクテリウム・アセトアシ
ドフィラムATCC13870から分離した。
B−1(D−シクロセリン耐性株コリネバクテリウム・
グルタミカムDC3R−13の耐性度) 第1表に示す各菌株を液体ブイヨン培地を用いて30℃
で16時間振盪培養し、生育した菌体を集菌し生理食塩
水でよく洗浄した。
グルタミカムDC3R−13の耐性度) 第1表に示す各菌株を液体ブイヨン培地を用いて30℃
で16時間振盪培養し、生育した菌体を集菌し生理食塩
水でよく洗浄した。
この菌体懸濁液をD−シクロセリンを各々0.10.5
0■/iの濃度で含む敢少培地(培地組成ニゲルコース
2%、硫安1%、リン酸第1カリウム0.1%、硫酸マ
グネシウム・7水和物0.04 %、塩化ナトリウム0
.05%、尿素0.25%、硫酸第1鉄・7水和物1O
N/l硫酸マンガン・4水和物10#/1、ビオチン5
0μg / 1を含む完全合成培地)5mlに植菌して
30℃で64時間培養し、各菌株の生育度を調べた。そ
の結果は第1表に示すとおりである。
0■/iの濃度で含む敢少培地(培地組成ニゲルコース
2%、硫安1%、リン酸第1カリウム0.1%、硫酸マ
グネシウム・7水和物0.04 %、塩化ナトリウム0
.05%、尿素0.25%、硫酸第1鉄・7水和物1O
N/l硫酸マンガン・4水和物10#/1、ビオチン5
0μg / 1を含む完全合成培地)5mlに植菌して
30℃で64時間培養し、各菌株の生育度を調べた。そ
の結果は第1表に示すとおりである。
本発明方法で使用するD−シクロセリン耐性株(DC3
R−13)では、親株のコリネバクテリウム・グルタミ
カムATCC13032と比較して、D−シクロセリン
によって生成が阻害されず、D−シクロセリンに対する
耐性を獲得していることが明らかである。
R−13)では、親株のコリネバクテリウム・グルタミ
カムATCC13032と比較して、D−シクロセリン
によって生成が阻害されず、D−シクロセリンに対する
耐性を獲得していることが明らかである。
第 1 表
育成は各菌株のD−シクロセリンを添加していない培養
液の吸光度を100%として換算した。
液の吸光度を100%として換算した。
B−2(D−シクロセリン耐性株コリネバクテリウム・
アセトアシドフィラムDC3R−15の耐性度) B−1と同様の方法でコリネバクテリウム・アセトアシ
ドフィラムATCC13870とDCSRI−5につい
て、D−シクロセリン添加培地での生育度を調べたとこ
ろ、第2表に示すとおりになった。これにより本発明方
法で使用するD−シクロセリン耐性株(DCSRI−5
)では親株と比較してD−シクロセリンによって生育が
阻害されず、D−シクロセリンに対する耐性を獲得して
いることが明らかである。
アセトアシドフィラムDC3R−15の耐性度) B−1と同様の方法でコリネバクテリウム・アセトアシ
ドフィラムATCC13870とDCSRI−5につい
て、D−シクロセリン添加培地での生育度を調べたとこ
ろ、第2表に示すとおりになった。これにより本発明方
法で使用するD−シクロセリン耐性株(DCSRI−5
)では親株と比較してD−シクロセリンによって生育が
阻害されず、D−シクロセリンに対する耐性を獲得して
いることが明らかである。
(注)培養液の660 niにおける吸光度(富士デジ
タル濁度計)を()内に記した。相対生第 表 (注)培養液の660n16における吸光度(富士デジ
タル濁度計)を()内に記した。相対生育度は各菌株の
D−シクロセリンを添加していない培II液の吸光度を
100%として換算した。
タル濁度計)を()内に記した。相対生第 表 (注)培養液の660n16における吸光度(富士デジ
タル濁度計)を()内に記した。相対生育度は各菌株の
D−シクロセリンを添加していない培II液の吸光度を
100%として換算した。
実施例2
グルコース10%、硫安260%、リン酸第1カリウム
0.05%、リン酸第2カリウム0.05%、硫酸マグ
ネシウム・7水和物0.025%、ビオチン60μg
/ J 、塩化ナトリウム1.0%、[fi第1鉄・7
水和物10 #/ 1 、H酸マンガン■・4水和物2
0■/l大豆粕2%、炭酸カルシウム3%を含む培地(
pH6,5>40m1を11エルレンマイヤーフラスコ
に分注し、120°C110分間オートクレーブ滅菌し
て発酵培地とした。あらかじめコリネバクテリウム・グ
ルタミカムDC3R−13およびその親株であるコリネ
バクテリウム・グルタミカムATCC13032をそれ
ぞれ液体ブイヨン培地に植菌し、30℃で16時間振盪
培養せる前項!?液を前記発酵培地に対し1%接種した
。30℃で5日間振盪した結果、下記第3表あごとく培
養液中にD−アラニンが生成した。発酵液中の総アラニ
ン量はアミノ酸分析計により、またD−アラニンの分析
は市販のD−アミノ酸オキシダーゼを用いる酵素法によ
り、および住友化学0A−1000光学分割用カラムを
用いて高′S液体クロマトグラフィー(HPLC)で測
定した。
0.05%、リン酸第2カリウム0.05%、硫酸マグ
ネシウム・7水和物0.025%、ビオチン60μg
/ J 、塩化ナトリウム1.0%、[fi第1鉄・7
水和物10 #/ 1 、H酸マンガン■・4水和物2
0■/l大豆粕2%、炭酸カルシウム3%を含む培地(
pH6,5>40m1を11エルレンマイヤーフラスコ
に分注し、120°C110分間オートクレーブ滅菌し
て発酵培地とした。あらかじめコリネバクテリウム・グ
ルタミカムDC3R−13およびその親株であるコリネ
バクテリウム・グルタミカムATCC13032をそれ
ぞれ液体ブイヨン培地に植菌し、30℃で16時間振盪
培養せる前項!?液を前記発酵培地に対し1%接種した
。30℃で5日間振盪した結果、下記第3表あごとく培
養液中にD−アラニンが生成した。発酵液中の総アラニ
ン量はアミノ酸分析計により、またD−アラニンの分析
は市販のD−アミノ酸オキシダーゼを用いる酵素法によ
り、および住友化学0A−1000光学分割用カラムを
用いて高′S液体クロマトグラフィー(HPLC)で測
定した。
第 3 表
※※アラニンの出来高が少量のため正確な分析不可。
コリネバクテリウム・グルタミカムDC3R−13の培
養液1ぶから、国体を遠心分離して除去し得られる上澄
液を脱色炭処理した。この脱色炭処理液を強力チオン交
換樹脂ダイヤイオン5K−IB(H+型)を充填したカ
ラムに通塔してD−アラニンを吸着させ、水洗後2Nア
ンモニア水で溶出し、D−アラニンの分画を濃縮し、得
られた濃縮液にエタノールを加え析出する結晶を口取し
た。この結晶をエタノールにより再結晶することにより
D−アラニンの結晶1.8gを得た。
養液1ぶから、国体を遠心分離して除去し得られる上澄
液を脱色炭処理した。この脱色炭処理液を強力チオン交
換樹脂ダイヤイオン5K−IB(H+型)を充填したカ
ラムに通塔してD−アラニンを吸着させ、水洗後2Nア
ンモニア水で溶出し、D−アラニンの分画を濃縮し、得
られた濃縮液にエタノールを加え析出する結晶を口取し
た。この結晶をエタノールにより再結晶することにより
D−アラニンの結晶1.8gを得た。
比旋光度〔α〕甘せ −14,2°(C=6. IN−
HCI)実施例3 実施例2と同様の方法でコリネバクテリウム・アセトア
シドフィラムDC3RI−5およびその親株であるコリ
ネバクテリウム・アセトアシドフィラムATCC138
70を発酵したところ、下記第4表のごとく培養液中に
D−アラニンが生成した。
HCI)実施例3 実施例2と同様の方法でコリネバクテリウム・アセトア
シドフィラムDC3RI−5およびその親株であるコリ
ネバクテリウム・アセトアシドフィラムATCC138
70を発酵したところ、下記第4表のごとく培養液中に
D−アラニンが生成した。
第 4 表
〈発明の効果〉
本発明によれば、発酵法により選択的にD−アラニンの
みを生成蓄積させることが可能になった。そのため、培
養液の光学分割が不要となリ、安価かつ簡便にD−アラ
ニンを収得することができるようになりその工業的価値
は大きい。
みを生成蓄積させることが可能になった。そのため、培
養液の光学分割が不要となリ、安価かつ簡便にD−アラ
ニンを収得することができるようになりその工業的価値
は大きい。
Claims (1)
- D−アラニン生産能を有し、かつD−シクロセリンに対
して耐性を有するコリネバクテリウム(Coryneb
acterium)属に属する微生物を培養して、培養
液中にD−アラニンを生成蓄積せしめ、前記培養液より
D−アラニンを採取することを特徴とする発酵法による
D−アラニンの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP32449588A JPH02171194A (ja) | 1988-12-21 | 1988-12-21 | 発酵法によるd‐アラニンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP32449588A JPH02171194A (ja) | 1988-12-21 | 1988-12-21 | 発酵法によるd‐アラニンの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02171194A true JPH02171194A (ja) | 1990-07-02 |
Family
ID=18166443
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP32449588A Pending JPH02171194A (ja) | 1988-12-21 | 1988-12-21 | 発酵法によるd‐アラニンの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02171194A (ja) |
-
1988
- 1988-12-21 JP JP32449588A patent/JPH02171194A/ja active Pending
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