JPH02163093A - スコプラリオプシス属微生物およびそれを用いるケストースの製造法 - Google Patents
スコプラリオプシス属微生物およびそれを用いるケストースの製造法Info
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- JPH02163093A JPH02163093A JP31394388A JP31394388A JPH02163093A JP H02163093 A JPH02163093 A JP H02163093A JP 31394388 A JP31394388 A JP 31394388A JP 31394388 A JP31394388 A JP 31394388A JP H02163093 A JPH02163093 A JP H02163093A
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明スコブラリオブシス属微生物およびそれを用いる
ゲスドースの製造法に関し、詳しくはシュークロースの
存在下でゲスト−久を生産し、かつグルコースを資化す
る微生物および当該微生物をシュークロースを含む培地
に培養してケストースを生産せしめ、培養物からケスト
ースを採取することを特徴とするケストースの製造法に
関する。ケストースは人間が摂取したとき、胃で消化さ
れることなく腸に達し、ビフィズス菌の生育促進効果を
示す食品素材などとして有用である。
ゲスドースの製造法に関し、詳しくはシュークロースの
存在下でゲスト−久を生産し、かつグルコースを資化す
る微生物および当該微生物をシュークロースを含む培地
に培養してケストースを生産せしめ、培養物からケスト
ースを採取することを特徴とするケストースの製造法に
関する。ケストースは人間が摂取したとき、胃で消化さ
れることなく腸に達し、ビフィズス菌の生育促進効果を
示す食品素材などとして有用である。
なお、ケストースとはシュークロースのフラクトシル基
の1位の炭素原子にフラクトースが1個転位した分子構
造を有する3糖類、いわゆる1−ケストースを意味する
。このものはフラクトースが2個転位したニスドース、
3個転位したフラクトシルニスドースと共に低う触性、
難消化性、ビフィズス菌生育促進効果などの特性を有し
ていることが知られている。
の1位の炭素原子にフラクトースが1個転位した分子構
造を有する3糖類、いわゆる1−ケストースを意味する
。このものはフラクトースが2個転位したニスドース、
3個転位したフラクトシルニスドースと共に低う触性、
難消化性、ビフィズス菌生育促進効果などの特性を有し
ていることが知られている。
[従来の技術1発明が解決しようとする課題]ケストー
ス生産菌としては、従来よりアスペルギルス・ニガー(
FERM P−5886) 、オウレオバシジュウム・
プルランス(AI(U 9549)などやフザリウム属
、ペニシリウム属などに属する微生物が知られている。
ス生産菌としては、従来よりアスペルギルス・ニガー(
FERM P−5886) 、オウレオバシジュウム・
プルランス(AI(U 9549)などやフザリウム属
、ペニシリウム属などに属する微生物が知られている。
しかし、これら既知の糸状菌はケストース(以下、GF
2と略記することがある。)の他にニスドース (以下
、GF3と略記することがある。)。
2と略記することがある。)の他にニスドース (以下
、GF3と略記することがある。)。
フラクトシルニスドース(以下、GF4と略記すること
がある。)なども同程度に生産し、いわゆるフラクトオ
リゴ糖生産菌と称されるものであり、厳密にはケストー
ス生産菌とは云い難く、かつ現状でのGF2はフラクト
オリゴ糖の1成分として製造されているにすぎない。
がある。)なども同程度に生産し、いわゆるフラクトオ
リゴ糖生産菌と称されるものであり、厳密にはケストー
ス生産菌とは云い難く、かつ現状でのGF2はフラクト
オリゴ糖の1成分として製造されているにすぎない。
さらに、これら微生物を酵素(フラクトース転位酵素)
としてシュークロースを含む反応系に加えると、多量の
グルコースと少量のフラクトースが生じると共に、酵素
の性質上未反応のシュークロースが残存し、フラクトオ
リゴ糖のみを効率よく生産することが困難であった。純
粋品を得たい場合には、カーボンカラムにフラクトオリ
ゴ糖を吸着させてアルコールと水の混合溶媒で溶出する
方法を適用できるが、この方法は多量の溶媒を必要とす
る上に収率が低い等の問題があり、工業的方法としては
不利な点が多い。
としてシュークロースを含む反応系に加えると、多量の
グルコースと少量のフラクトースが生じると共に、酵素
の性質上未反応のシュークロースが残存し、フラクトオ
リゴ糖のみを効率よく生産することが困難であった。純
粋品を得たい場合には、カーボンカラムにフラクトオリ
ゴ糖を吸着させてアルコールと水の混合溶媒で溶出する
方法を適用できるが、この方法は多量の溶媒を必要とす
る上に収率が低い等の問題があり、工業的方法としては
不利な点が多い。
単糖とシュークロースを除去する方法(特開昭1i1−
9266号)、転位反応と同時あるいは後に単糖および
シュークロースを資化する微生物あるいは分・解する酵
素を添加する方法(特開昭62−14792号)などが
提案されている。
9266号)、転位反応と同時あるいは後に単糖および
シュークロースを資化する微生物あるいは分・解する酵
素を添加する方法(特開昭62−14792号)などが
提案されている。
しかしながら、これらの方法によってもGF2の含有率
は固形分あたり50%以下で、GF3゜GF4を含んだ
フラクトオリゴ糖混合物として90%以上の含有率を示
すにすぎない。GF2を高率で得るためには、さらに煩
雑な操作を必要とする。しかも、前者の方法によりオリ
ゴ糖の純度を上げようとすれば、収率が極端に悪くなり
、かつカラム通液中に液が希釈されるという欠点が生じ
る。また、後者の方法は、微生物の環境上、反応温度を
40℃以下としなければならず、閉鎖系の反応器を用い
ない限り雑菌汚染の問題があり、微生物管理が困難であ
る。
は固形分あたり50%以下で、GF3゜GF4を含んだ
フラクトオリゴ糖混合物として90%以上の含有率を示
すにすぎない。GF2を高率で得るためには、さらに煩
雑な操作を必要とする。しかも、前者の方法によりオリ
ゴ糖の純度を上げようとすれば、収率が極端に悪くなり
、かつカラム通液中に液が希釈されるという欠点が生じ
る。また、後者の方法は、微生物の環境上、反応温度を
40℃以下としなければならず、閉鎖系の反応器を用い
ない限り雑菌汚染の問題があり、微生物管理が困難であ
る。
そこで、本発明者らは前記方法と発想を異にし、これら
フラクトオリゴ糖の中でも最も基本的なものであるケス
トースを特異的に生産する微生物を自然界より探索し、
ケストースの効率的な製造法の確立を試みた。
フラクトオリゴ糖の中でも最も基本的なものであるケス
トースを特異的に生産する微生物を自然界より探索し、
ケストースの効率的な製造法の確立を試みた。
[課題を解決するための手段]
本発明は、スコブラリオブシス属に属し、シュークロー
スの存在下でケストースを生産し、かつグルコースを資
化する微生物および当該微生物をシュークロースを含む
培地に培養してケストースを生成せしめ、培養物からケ
ストースを採取することを特徴とするケストースの製造
法を提供するものである。
スの存在下でケストースを生産し、かつグルコースを資
化する微生物および当該微生物をシュークロースを含む
培地に培養してケストースを生成せしめ、培養物からケ
ストースを採取することを特徴とするケストースの製造
法を提供するものである。
本発明の特色は、フラクトオリゴ糖の中でもGF2のみ
を高率に生産し、かつ副生ずるグルコースを資化して目
的とするGF2の生産を1段の発酵で完結せしめる糸状
菌を検索したことにある。
を高率に生産し、かつ副生ずるグルコースを資化して目
的とするGF2の生産を1段の発酵で完結せしめる糸状
菌を検索したことにある。
本発明のスコブラリオブシス属に属する微生物は本発明
者らによって北海道斜里郡斜里町の土壌より単離された
もので、木菌の菌学的性質を以下に示す。
者らによって北海道斜里郡斜里町の土壌より単離された
もので、木菌の菌学的性質を以下に示す。
(1)ツアペック寒天培地で20℃、14日間培養した
コロニーは大きく広がり直径4−5 cmに達スる。
コロニーは大きく広がり直径4−5 cmに達スる。
菌叢は比較的薄く、はじめは白色で膜状、次第にビロー
ド状となる。コロニーの中心部は分生胞子の形成に伴い
淡黄色からうすい茶色あるいは黄褐色になる。裏面は明
るい黄褐色である。麦芽エキス寒天培地上のコロニーは
通常薄く、大きく拡がり、直径が4−5 cmに達する
。最初、灰白色であるが、その後黄褐色になる。また、
裏面は黄褐色である。
ド状となる。コロニーの中心部は分生胞子の形成に伴い
淡黄色からうすい茶色あるいは黄褐色になる。裏面は明
るい黄褐色である。麦芽エキス寒天培地上のコロニーは
通常薄く、大きく拡がり、直径が4−5 cmに達する
。最初、灰白色であるが、その後黄褐色になる。また、
裏面は黄褐色である。
(2)上記2f!類の培地上における菌体の検鏡下の特
徴は同一であり、分生胞子柄は短く、通常長さ10〜3
0μm、巾2.5〜3.0μmであり、基底菌糸から直
接生じ1段または2段に輪生状に分岐している。
徴は同一であり、分生胞子柄は短く、通常長さ10〜3
0μm、巾2.5〜3.0μmであり、基底菌糸から直
接生じ1段または2段に輪生状に分岐している。
(3)梗子はしばしば分生胞子柄と連続しており、長さ
20μmまで、巾3〜5μmである。ときどき分生胞子
の着生する先端部までの間が細い管状になっている。
20μmまで、巾3〜5μmである。ときどき分生胞子
の着生する先端部までの間が細い管状になっている。
(4)分生胞子はアレウロ型で、基端は明らかに切り株
のように平たくなっており、時に頂端はとがつぎみ。表
面はいぼ状である。長さ5〜9μm。
のように平たくなっており、時に頂端はとがつぎみ。表
面はいぼ状である。長さ5〜9μm。
巾5〜7.5μm。
(5)試験したいずれの培地でも子嚢殻や菌核は形成さ
れなかった。
れなかった。
(6)最適生育温度条件としては20〜30℃であり、
5℃以下、40℃以上では生育しない。また、最適pH
は6.5〜7.5であり、比較的高p)Iでも生育でき
る。
5℃以下、40℃以上では生育しない。また、最適pH
は6.5〜7.5であり、比較的高p)Iでも生育でき
る。
上記した菌学的性質を有することより、木菌はスコブラ
リオブシス・ブレビカウクス(Sco ulario
sls brevicaulls)と同定された。しか
しながら、既知の菌株にはシュークロース存在下でケス
トースを生産し、かつグルコースを資化するものは知ら
れていない。そこで、本菌はスコブラリオプシス・エス
ピーHS−0002と命名され、工業技術院微生物工業
技術研究所にFERM P−10438として寄託され
ている。本発明においては、本菌を自然にもしくは人工
的手段によって変異させて得られるものであっても、上
記能力を有する菌株はすべて包含される。
リオブシス・ブレビカウクス(Sco ulario
sls brevicaulls)と同定された。しか
しながら、既知の菌株にはシュークロース存在下でケス
トースを生産し、かつグルコースを資化するものは知ら
れていない。そこで、本菌はスコブラリオプシス・エス
ピーHS−0002と命名され、工業技術院微生物工業
技術研究所にFERM P−10438として寄託され
ている。本発明においては、本菌を自然にもしくは人工
的手段によって変異させて得られるものであっても、上
記能力を有する菌株はすべて包含される。
次にで本菌を用いてGF2を高率で製造するための培養
方法について説明する。培地としては炭素源、窒素源、
無機塩類などを含むものが用いられる。炭素源としてシ
ュークロースが用いられ、培地中の濃度は5〜50%、
好ましくは10〜20%が適当である。シュークロース
としては、製糖工程中のジュース、たとえば粗糖汁の脱
タンパク後のジュースまたはショ糖の結晶化工程で生じ
る糖密などを用いることもできる。窒素源としては酵母
エキス、肉エキス、コーンスチーブリカー、ペプトンな
どの有機または無機の窒素化合物が用いられ、その濃度
は1〜4%、好ましくは1.5〜2.5%が適当である
。さらに、リン酸塩類、マグネシウム塩、鉄塩なと、た
とえばリン酸カリウム、硫酸マグネシウムなどの無機塩
類を0.1〜1.0%、好ましくは0.2〜0,5%加
える。培地のpHは5.0〜8.0、好ましくは6.5
〜7.0に調節する。
方法について説明する。培地としては炭素源、窒素源、
無機塩類などを含むものが用いられる。炭素源としてシ
ュークロースが用いられ、培地中の濃度は5〜50%、
好ましくは10〜20%が適当である。シュークロース
としては、製糖工程中のジュース、たとえば粗糖汁の脱
タンパク後のジュースまたはショ糖の結晶化工程で生じ
る糖密などを用いることもできる。窒素源としては酵母
エキス、肉エキス、コーンスチーブリカー、ペプトンな
どの有機または無機の窒素化合物が用いられ、その濃度
は1〜4%、好ましくは1.5〜2.5%が適当である
。さらに、リン酸塩類、マグネシウム塩、鉄塩なと、た
とえばリン酸カリウム、硫酸マグネシウムなどの無機塩
類を0.1〜1.0%、好ましくは0.2〜0,5%加
える。培地のpHは5.0〜8.0、好ましくは6.5
〜7.0に調節する。
本菌の培養は、あらかじめ24〜48時間振どう培養し
た本菌を上記培地に接種し、24〜40℃、好ましくは
28〜30℃で24〜120時間、好ましくは72〜9
0時間通気攪拌培養することにより行う、なお、炭素源
のシュークロースは培養開始時にすべてを添加するほか
、培養開始時の添加量を抑え培養中に1乃至数回に分割
して加えてもよい。
た本菌を上記培地に接種し、24〜40℃、好ましくは
28〜30℃で24〜120時間、好ましくは72〜9
0時間通気攪拌培養することにより行う、なお、炭素源
のシュークロースは培養開始時にすべてを添加するほか
、培養開始時の添加量を抑え培養中に1乃至数回に分割
して加えてもよい。
本発明の方法【2より得られる培養液中の糖組成の1例
を示すと、初発シュークロース濃度15%のとき、全糖
質量は11.5%であり、全’IINあたりGF2は7
8.0%、GF3は3.0%、フラクトースハ12.3
%、マンニトールは3.0%、シュークロースは3.7
%であり、グルコースは認められなかった。
を示すと、初発シュークロース濃度15%のとき、全糖
質量は11.5%であり、全’IINあたりGF2は7
8.0%、GF3は3.0%、フラクトースハ12.3
%、マンニトールは3.0%、シュークロースは3.7
%であり、グルコースは認められなかった。
15%のシュークロース溶液から生成するGF2は理論
上11%であるから、上記の場合のGF2収率は約80
%となり、極めて高率でGF2が得られていることが判
る。なお、本件の主成分である1−ケストースを単離精
製し、諸性質を調べたところ、下表の様になり1−ケス
トースの理論値および文献値の性質に一致することが確
められた。
上11%であるから、上記の場合のGF2収率は約80
%となり、極めて高率でGF2が得られていることが判
る。なお、本件の主成分である1−ケストースを単離精
製し、諸性質を調べたところ、下表の様になり1−ケス
トースの理論値および文献値の性質に一致することが確
められた。
1−ケストース
精製試料 (理論値、 献値)
分 子 量 504
504フラクトース) a)水野卓、西沢−俊著;糖質化学便覧、共立出版、P
83〜84. (1971) b)中村道徳、貝沼圭二編 澱粉関連′mx実験法、学
会出版センター、11266、 (1986)c)
Gross D、 Methods in Car
bohydrateChemistry、Vol、I
(Whistler、 R,L、 & Wolfrom
。
504フラクトース) a)水野卓、西沢−俊著;糖質化学便覧、共立出版、P
83〜84. (1971) b)中村道徳、貝沼圭二編 澱粉関連′mx実験法、学
会出版センター、11266、 (1986)c)
Gross D、 Methods in Car
bohydrateChemistry、Vol、I
(Whistler、 R,L、 & Wolfrom
。
M、 L、、eds)、 Academic pres
s、 New York andLondon、 p3
60.(1962)なお、薄層クロマトグラフィーによ
る相対移動率、ガスクロマトグラフィー、液体クロマト
グラフィーによる保持降間も1−ケストースに一致する
ことを確めた。
s、 New York andLondon、 p3
60.(1962)なお、薄層クロマトグラフィーによ
る相対移動率、ガスクロマトグラフィー、液体クロマト
グラフィーによる保持降間も1−ケストースに一致する
ことを確めた。
したがフて、本菌によるGF2含有物質の製造法として
は、上記の培養液から当該物質を採取し、必要に応じて
適宜精製すればよい。以下に、その方法の1例を示す。
は、上記の培養液から当該物質を採取し、必要に応じて
適宜精製すればよい。以下に、その方法の1例を示す。
培養液から通常のろ過により菌体を分離し、培養液を6
0〜80℃に加温した後、0.1〜0.3%の酸化カル
シウムまたは酸化マグネシウムを加え5〜lO分間静か
に攪拌する。これにより本培養液中のコロイド物質はほ
とんど沈殿する。
0〜80℃に加温した後、0.1〜0.3%の酸化カル
シウムまたは酸化マグネシウムを加え5〜lO分間静か
に攪拌する。これにより本培養液中のコロイド物質はほ
とんど沈殿する。
その後、液温を75〜90℃に上げ酸化カルシウムまた
は酸化マグネシウムをさらに0.5〜2.0%添加する
。3〜8分間静かに攪拌し、この条件下で還元′m類を
分解する。この条件下ではpH12,0〜12.5トな
り、多量のカルシウムイオンまたはマグネシウムイオン
が溶けた状況であるので、炭酸ガスを導入することによ
りpHを下げると共に過剰のカルシウムイオンまたはマ
グネシウムイオンを炭酸カルシウムまたは炭酸マグネシ
ウムとして沈殿させる。
は酸化マグネシウムをさらに0.5〜2.0%添加する
。3〜8分間静かに攪拌し、この条件下で還元′m類を
分解する。この条件下ではpH12,0〜12.5トな
り、多量のカルシウムイオンまたはマグネシウムイオン
が溶けた状況であるので、炭酸ガスを導入することによ
りpHを下げると共に過剰のカルシウムイオンまたはマ
グネシウムイオンを炭酸カルシウムまたは炭酸マグネシ
ウムとして沈殿させる。
pHが8.0〜9.0になったところで炭酸ガスの導入
をやめ沈殿を成長させる。通常のろ過の後に、カチオン
およびアニオンイオン交換樹脂を用いる冷脱塩法により
脱塩を行い、その後活性炭処理を行う。これにより無色
透明かつ無臭のBXlo、5の液体を得ることが出来る
。これを濃縮することによってBX70で11組成がG
F2:80〜90%、GF3:2〜5%、マンニトール
:3〜8%、シュークロース:2〜12%の高GF2含
有シラツブを得ることができる。このシラツブ中のいわ
ゆるフラクトオリゴ糖含量は81〜95%であり、難消
化性粘質としてはマンニトールを加えて88〜98%の
組成を有する。
をやめ沈殿を成長させる。通常のろ過の後に、カチオン
およびアニオンイオン交換樹脂を用いる冷脱塩法により
脱塩を行い、その後活性炭処理を行う。これにより無色
透明かつ無臭のBXlo、5の液体を得ることが出来る
。これを濃縮することによってBX70で11組成がG
F2:80〜90%、GF3:2〜5%、マンニトール
:3〜8%、シュークロース:2〜12%の高GF2含
有シラツブを得ることができる。このシラツブ中のいわ
ゆるフラクトオリゴ糖含量は81〜95%であり、難消
化性粘質としてはマンニトールを加えて88〜98%の
組成を有する。
[実施例]
次に、本発明を実施例により詳しく説明する。
実施例1
1iジャーファーメンタ−にシュークロース15%、コ
ーンステーブリカー2%。リン酸カリウム0.5%、尿
素0.02%、硫酸マグネシウム0.03%を含む培地
51を入れpH7に調整後、炭酸カルシウム15gを入
れ、120℃で60分間殺菌したものに、スコプラリオ
プシス・エスピー1(S−0002、FEBM P−1
0438を坂ロフラスコ中でシュークロース15%、コ
ーンステーブリカー2%。リン酸カリウム0.2%を含
む培地に接種し24時間培養したものを種菌として無菌
的に接種し、30℃で90時間培養した。その後、菌体
をろ過により分離した。
ーンステーブリカー2%。リン酸カリウム0.5%、尿
素0.02%、硫酸マグネシウム0.03%を含む培地
51を入れpH7に調整後、炭酸カルシウム15gを入
れ、120℃で60分間殺菌したものに、スコプラリオ
プシス・エスピー1(S−0002、FEBM P−1
0438を坂ロフラスコ中でシュークロース15%、コ
ーンステーブリカー2%。リン酸カリウム0.2%を含
む培地に接種し24時間培養したものを種菌として無菌
的に接種し、30℃で90時間培養した。その後、菌体
をろ過により分離した。
得られた培養液中の糖組成は以下の通りであった。
G F 2 78%GF3
3% フラクトース 12% マンニトール 3% シュークロース 4% 実施例2 実施例1で用いたシュークロース溶液の代わりに製糖工
程中の脱タンパク工程後のジュースであるシンジュース
(シュークロース濃度16%)を用いて実施した。
3% フラクトース 12% マンニトール 3% シュークロース 4% 実施例2 実施例1で用いたシュークロース溶液の代わりに製糖工
程中の脱タンパク工程後のジュースであるシンジュース
(シュークロース濃度16%)を用いて実施した。
シンジュースを8×15に調整し、コーンスチーブリカ
ー2.0%、リン酸カリウム0.Z%、尿素0.02%
、硫酸マグネシウム0.03%を加えたものを培地とし
、実施例1で用いたものと同じ種菌を同量用い本培養を
30℃で90時間行った。得られた培養液の糖組成は以
下のとおりであった。
ー2.0%、リン酸カリウム0.Z%、尿素0.02%
、硫酸マグネシウム0.03%を加えたものを培地とし
、実施例1で用いたものと同じ種菌を同量用い本培養を
30℃で90時間行った。得られた培養液の糖組成は以
下のとおりであった。
G F 2 78%
GF3 5%
フラクトース 9%
マンニトール 5%
シュークロース 2%
ラフィノース 1%
ラフィノースはビートを原料とする製糖工場において、
ビートに由来する三糖類であり、フラクトオリゴ糖同様
ビフィズス菌ム繋促進効果を示すことが知られている。
ビートに由来する三糖類であり、フラクトオリゴ糖同様
ビフィズス菌ム繋促進効果を示すことが知られている。
[発明の効果]
本発明によって、シェークロースの存在下ケストースを
高率で生産し、かつ副生ずるグルコースを資化する糸状
菌が見出され、本菌を用いて培養することにより、他の
微生物や酵素を用いることなくケストース含量の極めて
高い糖液を得ることができる。このものはビフィズス菌
の生育促進効果を有し、かつ低う触性、難消化性という
特色を有しており、食品素材としての利用が期待される
。
高率で生産し、かつ副生ずるグルコースを資化する糸状
菌が見出され、本菌を用いて培養することにより、他の
微生物や酵素を用いることなくケストース含量の極めて
高い糖液を得ることができる。このものはビフィズス菌
の生育促進効果を有し、かつ低う触性、難消化性という
特色を有しており、食品素材としての利用が期待される
。
特許出願人 ホクレン農業共同組合連合会代 理 人
弁理士 久保1)藤 部手続ネ甫正四(自発) 平成1年3月24日
弁理士 久保1)藤 部手続ネ甫正四(自発) 平成1年3月24日
Claims (2)
- (1)スコプラリオプシス属に属し、シュークロースの
存在下でケストースを生産し、かつグルコースを資化す
る微生物をシュークロースを含む培地に培養してケスト
ースを生成せしめ、培養物からケストースを採取するこ
とを特徴とするケストースの製造法。 - (2)スコプラリオプシス属に属し、シュークロースの
存在下でケストースを生産し、かつグルコースを資化す
る微生物。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP31394388A JPH02163093A (ja) | 1988-12-14 | 1988-12-14 | スコプラリオプシス属微生物およびそれを用いるケストースの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP31394388A JPH02163093A (ja) | 1988-12-14 | 1988-12-14 | スコプラリオプシス属微生物およびそれを用いるケストースの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02163093A true JPH02163093A (ja) | 1990-06-22 |
JPH0441600B2 JPH0441600B2 (ja) | 1992-07-08 |
Family
ID=18047371
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP31394388A Granted JPH02163093A (ja) | 1988-12-14 | 1988-12-14 | スコプラリオプシス属微生物およびそれを用いるケストースの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02163093A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04235192A (ja) * | 1990-08-28 | 1992-08-24 | Hokuren Federation Of Agricult Coop:The | 1―ケストース結晶およびその製造方法 |
NL9401140A (nl) * | 1994-07-08 | 1996-02-01 | Stichting Scheikundig Onderzoe | Produktie van oligosacchariden in transgene planten. |
WO1997021718A1 (fr) * | 1995-12-11 | 1997-06-19 | Meiji Seika Kabushiki Kaisha | 1-kestose cristallin et procede de preparation |
US7314973B2 (en) | 1994-07-08 | 2008-01-01 | Stichting Scheikundig Onderzoek In Nederland | Production of oligosaccharides in transgenic plants |
-
1988
- 1988-12-14 JP JP31394388A patent/JPH02163093A/ja active Granted
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04235192A (ja) * | 1990-08-28 | 1992-08-24 | Hokuren Federation Of Agricult Coop:The | 1―ケストース結晶およびその製造方法 |
US5463038A (en) * | 1990-08-28 | 1995-10-31 | The Hokuren Federation Of Agricultural Cooperatives | Method of producing kestose crystals |
NL9401140A (nl) * | 1994-07-08 | 1996-02-01 | Stichting Scheikundig Onderzoe | Produktie van oligosacchariden in transgene planten. |
US7314973B2 (en) | 1994-07-08 | 2008-01-01 | Stichting Scheikundig Onderzoek In Nederland | Production of oligosaccharides in transgenic plants |
WO1997021718A1 (fr) * | 1995-12-11 | 1997-06-19 | Meiji Seika Kabushiki Kaisha | 1-kestose cristallin et procede de preparation |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0441600B2 (ja) | 1992-07-08 |
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