JPH0153035B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、ビフイドバクテリウム属に属する公
知の微生物(「以下ビフイズス菌」と記載する)
の生菌菌体、ラクトバチルス属に属する公知の微
生物(以下「ラクトバチルス菌」と記載する)及
び酸素吸収能の高い新規なストレプトコツカス・
サーモフイルス(以下S菌と記載する)の生菌を
含有し、好気的な保存によるビフイズス菌の死滅
が少ないビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有す
る培養物及びその製造法に関する。 ビフイズス菌は、乳児をはじめ人の腸管内にお
いて最優勢の細菌であり、その有用性及び健康と
の関連性については、広く研究され、従来からビ
フイズス菌は、整腸剤、食品、栄養剤などに利用
されている。 一方、動物の腸管内においては動物の種類によ
つて異なるが、ビフイズス菌が人と同様有用であ
り、従来から飼料として利用されている。 しかし、ビフイズス菌は、一般に酪農乳酸菌と
比較して、(ア)偏性嫌気性菌であるため、酸素
の存在する好気的条件下では、長期間生存できな
い、(イ)耐酸性に乏しく、低PH域では長期間生存で
きないなどの性質を有しており、従来の発酵乳に
ビフイズス菌を応用した場合、その生菌数を維持
させることは極めて困難とされている(馬田:
New Food Industry、第24巻、第1号、第63頁、
1982年)。すなわち、発酵乳中のビフイズス菌は、
製造及び保存の過程での空気との接触による酸素
の浸透及び低PHの相乗的な悪影響によつて、生残
率(培養終了直後培養物中のビフイズス菌の生菌
数に対する保存後の培養物中のビフイズス菌の生
菌数の百分率で表わす。以下同じ)が著しく低下
する。従来これらの問題を解決する方法として、
(a)製造及び保存の期間中全く空気に接触しない製
造法及び特殊な製品形態を採用する方法、(b)ビフ
イズス菌の耐酸性かつ耐酸素性の変異株を取得
し、応用する方法などが試みられている。しか
し、(a)の方法は、技術上の繁雑さと製造費の増大
を招来し、望ましくない。(b)の方法の変異株とし
ては、ビフイドバクテリウム・ブリーベ(特公昭
56−42250号公報、特開昭57−99190号公報)、ビ
フイドバクテリウム・ビフイダム(特公昭56−
42250号公報)及び本発明者らが先に特許出願し
たビフイドバクテリウム・ロンガム(特願昭57−
106182)が知られているが、ビフイズス菌の菌種
が限定されるため、ビフイズス菌のその他の種で
は応用できない。 以上のように培養物中で種々のビフイズス菌を
簡単な方法で保存することは従来極めて困難であ
つた。 一方、乳酸菌の酸素吸収能については、既にラ
クトバチルス属に属するラクトバチルス・アシド
フイルス、ラクトバチルス・アラビノーサス、ラ
クトバチルス・バタタス、ラクトバチルス・カゼ
イ、ラクトバチルス・デルブルユツキ、ラクトバ
チルス・フエルメンチイ、ラクトバチルス・プラ
ンタルム、ラクトバチルス・サケ(北原、福井:
日本農芸化学会誌、第26巻、第555頁、1952年。
C.F.Strittmatter:Journal of Biological
Chemistry、第234巻、第2789頁、1959年。M.I.
Dolin:The Barteria、Ed.I.C.Gunsalus、R.Y.
Stainer、Acad.Press Inc、第425頁、1961年。
岩本ら:薬学雑誌、第99巻、第354頁、1979年。)、
ロイコノストツク属に属するロイコノストツク・
メセンテロイデス(岩本ら:薬学雑誌、第99巻、
第354頁、1979年)、ストレプトコツカス属に属す
るストレプトコツカス・アガラクテイエ、ストレ
プトコツカス・クレモリス、ストレプトコツカ
ス・フエカリス、ストレプトコツカス・フエシウ
ム、ストレプトコツカス・ラクチス、ストレプト
コツカス・リケフアシエンス、ストレプトコツカ
ス・マスチチデイス(O.J.O Kane、I.C.
Gunsalus:Journal of Bacteriology、第56巻、
第499頁、1948年。大林ら:日本農芸化学会誌、
第34巻、第272頁、1960年。M.I.Dolin:The
Bacteria、Ed.I.C.Gunsalus、R.Y.Stainer、
Acad.Press Inc.、第425頁、1961年。M.N.
Mickelson:Journal of Bacteriology、第94巻、
第184頁、1967年。R.F.Andersら:Applied
Microbiology、第19巻、第608頁、1970年。M.J.
Coventry:The Australian Journal of Dairy
Technology、第33巻、第148頁、1978年。岩本
ら:薬学雑誌、第99巻、第354頁、1979年。)に関
する報告があるが、ストレプトコツカス・サーモ
フイルス(以下この種の総称としてサーモフイル
ス菌と記載する)に関する報告は、Tinsonら
(The Australian Journal of Dairy
Technology、第37巻、第14頁、1982年)がある
だけである。Tinsonらによれば、サーモフイル
ス菌の酸素吸収能は、0.1%酵母エキスを含む脱
脂乳を基質とした場合、33.5℃において12mgの乾
燥菌体重量当り、90分間で7.3マイクロモル酸素
分子(μ mole 0)であつたと報告している
が、この値を換算すると、6.76ナノモル酸素分
子/(mg乾燥菌体重量・分)(以下この単位を
「ナノモル」と略記する)であり、従来サーモフ
イルス菌の酸素吸収能は極めて低いことが知られ
ており、酸素吸収能の高いサーモフイルス菌の存
在は知られていない。更に従来から発酵乳中のラ
クトバチルス菌とサーモフイルス菌との割合につ
いては、ほぼ1:4〜4:1の範囲内(R.K.
Robinson、A.Y.Tamime:Journal of the
Society of Dainy Technology、第28巻、第149
頁、1975年。森地:乳技協資料、第25巻、第2
頁、1975年。菊池:発酵と工業、第37巻、第133
頁、1979年)であることが知られているが、ビフ
イズス菌を含有する発酵乳中の両菌の比率に関す
る知見は少ない。Schulerら
(Milchwissenschaft、第23巻、第9号、第554頁
及び第10号、第614頁、1968年。)によれば、スト
レプトコツカス属の菌:アシドフイラス菌:ビフ
イズス菌の比が約5:1:1のスターターを用
い、発酵終了後の上記比率が約15:1:2の発酵
乳を製造したが、PH4.6〜4.9で7日間保持した場
合、ビフイズス菌の生残率は、約1%であつたと
報告している。 以上のようにビフイズス菌の生残率は保存中に
著しく低下するが、この生残率の低下を簡便かつ
効果的に防止する方法は知られていない。 本発明者らは、これらの問題点を解決すべく、
公知のビフイズス菌を用いて、その生残性と酪農
乳酸菌との相互関係を研究していたが、ビフイズ
ス菌の発酵乳中での生残性に極めて好影響を与え
るS菌の存在を発見した。そしてこのS菌は酸素
吸収能が高く、ビフイズス菌と共存させることに
より、酸素がビフイズス菌に及ぼす悪影響を緩和
し、低いPHの発酵乳中でビフイズス菌を保存した
ときもビフイズス菌の生残性を飛躍的に向上させ
ることを見い出し、本発明を完成した。 本発明の目的は、ビフイズス菌を好気的条件下
で保存したときビフイズス菌の生残率の高い培養
物及びその製造法を提供することにある。本発明
の他の目的は、好気的な保存によるビフイズス菌
の生残率の高い食品、栄養剤、整腸剤及び飼料と
して利用し得る培養物を提供することにある。 次に本発明について詳細に説明する。 本発明の培養物は、少なくとも公知のビフイズ
ス菌、公知のラクトバチルス菌及び新規なS菌を
含有し、製造直後の培養物中のS菌の生菌数がラ
クトバチルス菌のそれの少なくとも10倍を含有す
る。そして製造直後の培養物1g中のビフイズス
菌の生菌数は少なくとも2×107であり、5℃で
7日間保存したとき又はこの保存条件と実質的に
同一の条件で保存したときのビフイズス菌の生残
率は、少なくとも5%である。又、製造直後の培
養物1g中の合計の生菌数は少なくとも1.3×108
である。 本発明の培養物においては、含有されているS
菌の高い酸素吸収能により保存中のビフイズス菌
の死滅が防止され、従来にないすぐれたビフイズ
ス菌の生残効果を有している。従つて本発明の培
養物は、そのまま又は通常の加工を行ない食品、
栄養剤又は飼料として利用することも可能であ
り、更に培養物を常法により凍結乾燥して整腸剤
として利用することも可能である。 本発明の培養物の製造法は、次のとおりであ
る。 牛乳・脱脂乳・還元脱脂乳又はこれらの濃縮物
等通常用いられる乳を主成分とする培地、又はこ
れらの培地に各菌の生育を促進することが知られ
ている物質を添加した培地を常法により滅菌して
使用する。滅菌、冷却した培地に、常法により調
製したビフイズス菌、ラクトバチルス菌及びS菌
のスターターを接種し、培養する。これらの3種
のスターターは、それぞれ別個に調製され、目的
によりビフイズス菌(基準地100とする):ラクト
バチルス菌:S菌=100:0.5〜50:3〜600の比
率(重量)の範囲内で混合して培地に接種しても
よく、この場合、培地に対して1.4〜16%(V/
V)の割合で混合スターターを接種する。そして
常法により37〜42℃で3〜24時間培養を行ない、
培養物を得る。このようにして得られた製造直後
の培養物1g中には、通常ビフイズス菌の生菌が
2〜500×107、S菌の生菌が1〜20×108そして
ラクトバチルス菌の生菌が5〜100×106含まれて
いる。 又ビフイズス菌、ラクトバチルス菌及びS菌の
スターターをそれぞれ別個の培地に3〜10%
(V/V)、1〜5%(V/V)及び1〜5%
(V/V)接種し、それぞれ37〜42℃で3〜24時
間培養して培養生産物を得る。通常ビフイズス菌
の培養生産物1g中には5〜50×108、ラクトバ
チルス菌の培養生産物1g中には2〜20×108、
S菌の培養生産物1g中には1〜10×108の生菌
が含まれている。そしてビフイズス菌の培養生産
物(基準値100とする)、ラクトバチルス菌の培養
生産物及びS菌の培養生産物を目的により100:
0.28〜625:11〜24800の比率(重量)の範囲内で
混合し、培養物を得ることもできる。 このように本発明の培養物の製造法は極めて簡
便であり、従来の製造法を何ら変更することはな
いが、新規なS菌を使用していることにより、保
存後のビフイズス菌の生残率を著しく向上する効
果を有している。 (1) ストレプトコツカス・サーモフイルスに属す
る菌株の分離 ストレプトコツカス・サーモフイルスに属す
る菌株は、下記の小沢らの方法(農業技術研究
所報告G(畜産)、第5号、第41頁、1953年。)
に従つて、分離した。即ち生牛乳を45〜50℃に
4〜5日放置した凝固物又は自然酸敗乳を多数
検鏡し、その中で連鎖状球菌の存在を認めた試
料を、115℃15分間滅菌した10%(W/W)還
元脱脂乳培地に5%(V/V)の割合で接種
し、45〜50℃で凝固するまで培養した。さら
に、同様の方法で2〜3回凝固を繰り返した
後、その一白金耳量を採取し、M−17寒天培地
(Applied Microbiology、第29巻、第6号、第
807頁、1975年。)に塗抹し、40℃で2〜3日培
養し、生成した多数のコロニーから、菌株を分
離した。分離菌株の菌学的性質を、前記
Bergey′s mannual of determinative
bacteriology記載のサーモフイルス菌のそれと
比較し、ストレプトコツカス・サーモフイルス
と同定した40菌株を得た。 (2) サーモフイルス菌の酸素吸収能 生牛乳の凝固物及び自然酸敗乳から分離した
前記のストレプトコツカス・サーモフイルスに
属する40菌株、標準菌株として農林水産省畜産
試験場の森地氏から分譲を受けたストレプトコ
ツカス・サーモフイルス9Y株(IDF株)(日本
畜産学会報、第53巻、第161頁、1982年)及び
American Type Culture Collection(以下
ATCCと略記する)に寄託されているストレプ
トコツカス・サーモフイルス19258株の計42の
菌株について、酸素吸収能を次の方法により測
定した。まず、これらの菌株を液体培地(日本
農芸化学会誌、第45巻、第423頁、1971年)に
5%(V/V)接種し、37℃で16時間静置培養
し、得られた培養液から遠心分離機を用いて菌
体を分離し、菌体を滅菌生理食塩水で無菌的に
洗浄し、滅菌生理食塩水1ml中に乾燥重量にし
て3〜5mgの菌体量の割合で菌体を分散した菌
液を調製した。各菌株の酸素吸収能をワールブ
ルグ検圧法(吉川ら編:化学の領域増刊第13
号、「ワールブルグ検圧計」、南江堂、1954年2
月)によつて測定した。その概略は次のとおり
である。 2側室容器を使用し、反応容器の主室に、前
記菌液1.0mlとPH6.0の0.1モル滅菌リン酸緩衝液
0.5mlを入れ、側室2個所に気質溶液として20
%(W/W)滅菌還元脱脂乳0.75mlずつ計1.5
mlを入れ、副室に二酸化炭素吸収剤として20%
(W/V)水酸化カリウム溶液0.2mlを浸み込ま
せた濾紙片を入れた。なお、基質溶液は、発酵
乳中の酸素吸収能を推定するため、最終濃度10
%(W/W)になるように滅菌還元脱脂乳を用
いた。測定は37℃で行い、あらかじめ容器を5
分間振とうして温度平衡に達した後、側室の基
質溶液を加え、酸素吸収量を3分おきに測定
し、最大吸収速度を求めて酸素吸収能とした。 供試菌株の酸素吸収能の結果を第1表に示
す。 第1表 菌 株 酸素吸収能(ナノモル) 9Y 19.8 ATCC 19258 10.1 STH−01 30.0 STH−17 37.3 STH−23 42.3 STH−50 78.5 STH−15 14.7 STH−32 12.1 他の34菌株 18.5以下 第1表から明らかなように、分離した40菌株
のうち36菌株の酸素吸収能は18.5ナノモル以下
であつたのに対し、他の4菌株の酸素吸収能
は、30.0〜78.5ナノモルであつた。標準菌株の
酸素吸収能は9Y株が19.8ナノモル、
ATCC19258株が10.1ナノモルであつた。 なお、本発明者らは酸素吸収能の値が高かつ
た4菌株について前記Tinsonらと同一の方法
による酸素吸収能の測定を試みた。しかしなが
らこれらの4菌株の酸素吸収能が顕著に高いの
で、Tinsonらと同様に90分間の測定は不能で
あつた。従つてこれらの4菌株の酸素吸収能に
ついてTinsonらが報告している7.3マイクロモ
ル酸素分子の値に到達するまでの所要時間を
Tinsonと同一の方法により測定した。その結
果Tinsonらの値が90分であるのに対してSTH
−01株及びSTH−23株は26分、STH−17株は
28分、そしてSTH−50株は21分(参考までに
9Y株は46分、ATCC19258株は140分であつた)
であり、いずれの菌株の酸素吸収能も他の菌株
のそれよりも顕著に高いことを認めた。 (3) S菌の菌学的性質 更に本発明者らはこれらの4菌株について菌
学的性質を試験したが、酸素吸収能が高いこと
を除きその他の菌学的性質は各菌株とも前記
Bergey′s mannual of determinative
bacteriologyに記載されたサーモフイルス菌と
同一の次のとおりであつた。 (A) M−17寒天平板培地を用い、37℃で48時間
好気培養したときの菌の形態: 大きさ(直径):0.7〜0.9μm 形状:球状または楕円状で連鎖 (B) M−17寒天平板培地を用い、37℃で48時間
好気培養したときのコロニーの形態 形状:円形 隆起:凸円状 周縁:円滑 大きさ(直径):0.5〜1.5mm 色調:白色で不透明 表面:円滑で光沢あり (C) ガス:産生せず (D) 20℃以下で生育せず (E) 45℃で生育 (F) 運動性なし (G) 胞子形成せず (H) グラム陽性 (I) ベンジジン陰性 (J) カタラーゼ陰性 (K) 65℃30分間の加熱で生存 (L) 2%(W/V)塩化ナトリウム存在下で
生育せず (M) 0.1%(W/V)メチレンブルー添加乳で
生育せず (N) PH9.6で生育せず (O) 糖からの酸生成 グルコース、フラクトース、シユークロー
ス及びラクトースは陽性。アラビノース、キ
シロース、ラフイノース、マルトース、トレ
ハロース、イヌリン、マニトール、ソルビト
ール、サリシン及びグリセロールは陰性。 (P) アルギニンからアンモニアを生成せず そしてこれらの4菌株を20代以上継代培養し
ても高い酸素吸収能を保持していた。従つて本
発明者らは、これらの微生物を新規な微生物と
認定し、STH−01株、STH−17株、STH−23
株及びSTH−50株をそれぞれストレプトコツ
カス・サーモフイルスM−8202、ストレプトコ
ツカス・サーモフイルスM−8203、ストレプト
コツカス・サーモフイルスM−8204及びストレ
プトコツカス・サーモフイルスM−8205と命名
し、昭和57年10月22日に工業技術院微生物工業
技術研究所に寄託し、それぞれ微工研条寄第
351号、微工研条寄第352号、微工研条寄第353
号及び微工研条寄第354号なる受託番号を得た。 (4) サーモフイルス菌とラクトバチルス菌の菌数
比率について S菌及び酸素吸収能の低いサーモフイルス菌
から、それぞれ代表的な1株M−8205(STH−
50)株及びSTH−32株を選び、公知のラクト
バチルス菌の1種であるラクトバチルス・ブル
ガリクス、及び公知のビフイズス菌であるビフ
イドバクテリウム・ロンガム(ATCC15708)
株を用いて、サーモフイルス菌とラクトバチル
ス菌の生菌数の比率が異なる発酵乳を調製し、
発酵乳中のビフイズス菌の生残性を試験した。
サーモフイルス菌及びラクトバチルス菌のスタ
ーターは、115℃で15分間滅菌した10%(W/
W)還元脱脂乳培地に3%(V/V)接種し、
37℃で16時間培養したものを用い、ビフイズス
菌のスターターは、115℃で15分間滅菌した
0.25%(W/W)の酵母エキスを含む15%
(W/W)還元脱脂紛乳培地に10%(V/V)
接種し、37℃で5時間培養したものを用いた。
均質後90℃で10分間殺菌した牛乳にサーモフイ
ルス菌スターター対ラクトバチルス菌スタータ
ーの割合が容量パーセントで1.0:2.0、
1.5:1.5、2.5:0.5、2.8:0.2及び5.9:
0.1の比率で添加し、さらにビフイズス菌のス
ターターを、それぞれに5.0%(V/V)添加
し、40℃で3.5〜4.5時間発酵し、直ちに冷却
し、約PH4.5の発酵乳を調製した。これらの発
酵乳中のサーモフイルス菌とラクトバチルス菌
の生菌数及び両菌数の比率、更に5℃で7日間
保存した場合のビフイズス菌の生菌数の変化と
生残率をPHと共に第2表に示す。サーモフイル
ス菌及びラクトバチルス菌の生菌数は、常法に
よりBCP加プレートカウント寒天培地を用い
た混釈平均培養法でコロニーの形態による違い
から両菌を判別し測定した。また両菌の菌数比
は、ラクトバチルス菌の生菌数に対するサーモ
フイルス菌の生菌数の割合で示した。ビフイズ
ス菌の生菌数は発酵乳を光岡の嫌気性菌用希釈
液(光岡:臨床検査、第18巻、第1163頁、1974
年。)で段階的に希釈した後、ビフイズス菌の
選択培地であるMGLP寒天培地(食品衛生学
雑誌、第23巻、第39頁、1982年)を用いた高層
寒天培養法で測定した。ビフイズス菌の生残率
は、製造直後の生菌数に対する7日間保存後の
生菌数の百分率(%)で示した。なお、7日間
保存後の発酵乳中のサーモフイルス菌とラクト
バチルス菌の生菌数は、製造直後と変化がなか
つたので省略した。
知の微生物(「以下ビフイズス菌」と記載する)
の生菌菌体、ラクトバチルス属に属する公知の微
生物(以下「ラクトバチルス菌」と記載する)及
び酸素吸収能の高い新規なストレプトコツカス・
サーモフイルス(以下S菌と記載する)の生菌を
含有し、好気的な保存によるビフイズス菌の死滅
が少ないビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有す
る培養物及びその製造法に関する。 ビフイズス菌は、乳児をはじめ人の腸管内にお
いて最優勢の細菌であり、その有用性及び健康と
の関連性については、広く研究され、従来からビ
フイズス菌は、整腸剤、食品、栄養剤などに利用
されている。 一方、動物の腸管内においては動物の種類によ
つて異なるが、ビフイズス菌が人と同様有用であ
り、従来から飼料として利用されている。 しかし、ビフイズス菌は、一般に酪農乳酸菌と
比較して、(ア)偏性嫌気性菌であるため、酸素
の存在する好気的条件下では、長期間生存できな
い、(イ)耐酸性に乏しく、低PH域では長期間生存で
きないなどの性質を有しており、従来の発酵乳に
ビフイズス菌を応用した場合、その生菌数を維持
させることは極めて困難とされている(馬田:
New Food Industry、第24巻、第1号、第63頁、
1982年)。すなわち、発酵乳中のビフイズス菌は、
製造及び保存の過程での空気との接触による酸素
の浸透及び低PHの相乗的な悪影響によつて、生残
率(培養終了直後培養物中のビフイズス菌の生菌
数に対する保存後の培養物中のビフイズス菌の生
菌数の百分率で表わす。以下同じ)が著しく低下
する。従来これらの問題を解決する方法として、
(a)製造及び保存の期間中全く空気に接触しない製
造法及び特殊な製品形態を採用する方法、(b)ビフ
イズス菌の耐酸性かつ耐酸素性の変異株を取得
し、応用する方法などが試みられている。しか
し、(a)の方法は、技術上の繁雑さと製造費の増大
を招来し、望ましくない。(b)の方法の変異株とし
ては、ビフイドバクテリウム・ブリーベ(特公昭
56−42250号公報、特開昭57−99190号公報)、ビ
フイドバクテリウム・ビフイダム(特公昭56−
42250号公報)及び本発明者らが先に特許出願し
たビフイドバクテリウム・ロンガム(特願昭57−
106182)が知られているが、ビフイズス菌の菌種
が限定されるため、ビフイズス菌のその他の種で
は応用できない。 以上のように培養物中で種々のビフイズス菌を
簡単な方法で保存することは従来極めて困難であ
つた。 一方、乳酸菌の酸素吸収能については、既にラ
クトバチルス属に属するラクトバチルス・アシド
フイルス、ラクトバチルス・アラビノーサス、ラ
クトバチルス・バタタス、ラクトバチルス・カゼ
イ、ラクトバチルス・デルブルユツキ、ラクトバ
チルス・フエルメンチイ、ラクトバチルス・プラ
ンタルム、ラクトバチルス・サケ(北原、福井:
日本農芸化学会誌、第26巻、第555頁、1952年。
C.F.Strittmatter:Journal of Biological
Chemistry、第234巻、第2789頁、1959年。M.I.
Dolin:The Barteria、Ed.I.C.Gunsalus、R.Y.
Stainer、Acad.Press Inc、第425頁、1961年。
岩本ら:薬学雑誌、第99巻、第354頁、1979年。)、
ロイコノストツク属に属するロイコノストツク・
メセンテロイデス(岩本ら:薬学雑誌、第99巻、
第354頁、1979年)、ストレプトコツカス属に属す
るストレプトコツカス・アガラクテイエ、ストレ
プトコツカス・クレモリス、ストレプトコツカ
ス・フエカリス、ストレプトコツカス・フエシウ
ム、ストレプトコツカス・ラクチス、ストレプト
コツカス・リケフアシエンス、ストレプトコツカ
ス・マスチチデイス(O.J.O Kane、I.C.
Gunsalus:Journal of Bacteriology、第56巻、
第499頁、1948年。大林ら:日本農芸化学会誌、
第34巻、第272頁、1960年。M.I.Dolin:The
Bacteria、Ed.I.C.Gunsalus、R.Y.Stainer、
Acad.Press Inc.、第425頁、1961年。M.N.
Mickelson:Journal of Bacteriology、第94巻、
第184頁、1967年。R.F.Andersら:Applied
Microbiology、第19巻、第608頁、1970年。M.J.
Coventry:The Australian Journal of Dairy
Technology、第33巻、第148頁、1978年。岩本
ら:薬学雑誌、第99巻、第354頁、1979年。)に関
する報告があるが、ストレプトコツカス・サーモ
フイルス(以下この種の総称としてサーモフイル
ス菌と記載する)に関する報告は、Tinsonら
(The Australian Journal of Dairy
Technology、第37巻、第14頁、1982年)がある
だけである。Tinsonらによれば、サーモフイル
ス菌の酸素吸収能は、0.1%酵母エキスを含む脱
脂乳を基質とした場合、33.5℃において12mgの乾
燥菌体重量当り、90分間で7.3マイクロモル酸素
分子(μ mole 0)であつたと報告している
が、この値を換算すると、6.76ナノモル酸素分
子/(mg乾燥菌体重量・分)(以下この単位を
「ナノモル」と略記する)であり、従来サーモフ
イルス菌の酸素吸収能は極めて低いことが知られ
ており、酸素吸収能の高いサーモフイルス菌の存
在は知られていない。更に従来から発酵乳中のラ
クトバチルス菌とサーモフイルス菌との割合につ
いては、ほぼ1:4〜4:1の範囲内(R.K.
Robinson、A.Y.Tamime:Journal of the
Society of Dainy Technology、第28巻、第149
頁、1975年。森地:乳技協資料、第25巻、第2
頁、1975年。菊池:発酵と工業、第37巻、第133
頁、1979年)であることが知られているが、ビフ
イズス菌を含有する発酵乳中の両菌の比率に関す
る知見は少ない。Schulerら
(Milchwissenschaft、第23巻、第9号、第554頁
及び第10号、第614頁、1968年。)によれば、スト
レプトコツカス属の菌:アシドフイラス菌:ビフ
イズス菌の比が約5:1:1のスターターを用
い、発酵終了後の上記比率が約15:1:2の発酵
乳を製造したが、PH4.6〜4.9で7日間保持した場
合、ビフイズス菌の生残率は、約1%であつたと
報告している。 以上のようにビフイズス菌の生残率は保存中に
著しく低下するが、この生残率の低下を簡便かつ
効果的に防止する方法は知られていない。 本発明者らは、これらの問題点を解決すべく、
公知のビフイズス菌を用いて、その生残性と酪農
乳酸菌との相互関係を研究していたが、ビフイズ
ス菌の発酵乳中での生残性に極めて好影響を与え
るS菌の存在を発見した。そしてこのS菌は酸素
吸収能が高く、ビフイズス菌と共存させることに
より、酸素がビフイズス菌に及ぼす悪影響を緩和
し、低いPHの発酵乳中でビフイズス菌を保存した
ときもビフイズス菌の生残性を飛躍的に向上させ
ることを見い出し、本発明を完成した。 本発明の目的は、ビフイズス菌を好気的条件下
で保存したときビフイズス菌の生残率の高い培養
物及びその製造法を提供することにある。本発明
の他の目的は、好気的な保存によるビフイズス菌
の生残率の高い食品、栄養剤、整腸剤及び飼料と
して利用し得る培養物を提供することにある。 次に本発明について詳細に説明する。 本発明の培養物は、少なくとも公知のビフイズ
ス菌、公知のラクトバチルス菌及び新規なS菌を
含有し、製造直後の培養物中のS菌の生菌数がラ
クトバチルス菌のそれの少なくとも10倍を含有す
る。そして製造直後の培養物1g中のビフイズス
菌の生菌数は少なくとも2×107であり、5℃で
7日間保存したとき又はこの保存条件と実質的に
同一の条件で保存したときのビフイズス菌の生残
率は、少なくとも5%である。又、製造直後の培
養物1g中の合計の生菌数は少なくとも1.3×108
である。 本発明の培養物においては、含有されているS
菌の高い酸素吸収能により保存中のビフイズス菌
の死滅が防止され、従来にないすぐれたビフイズ
ス菌の生残効果を有している。従つて本発明の培
養物は、そのまま又は通常の加工を行ない食品、
栄養剤又は飼料として利用することも可能であ
り、更に培養物を常法により凍結乾燥して整腸剤
として利用することも可能である。 本発明の培養物の製造法は、次のとおりであ
る。 牛乳・脱脂乳・還元脱脂乳又はこれらの濃縮物
等通常用いられる乳を主成分とする培地、又はこ
れらの培地に各菌の生育を促進することが知られ
ている物質を添加した培地を常法により滅菌して
使用する。滅菌、冷却した培地に、常法により調
製したビフイズス菌、ラクトバチルス菌及びS菌
のスターターを接種し、培養する。これらの3種
のスターターは、それぞれ別個に調製され、目的
によりビフイズス菌(基準地100とする):ラクト
バチルス菌:S菌=100:0.5〜50:3〜600の比
率(重量)の範囲内で混合して培地に接種しても
よく、この場合、培地に対して1.4〜16%(V/
V)の割合で混合スターターを接種する。そして
常法により37〜42℃で3〜24時間培養を行ない、
培養物を得る。このようにして得られた製造直後
の培養物1g中には、通常ビフイズス菌の生菌が
2〜500×107、S菌の生菌が1〜20×108そして
ラクトバチルス菌の生菌が5〜100×106含まれて
いる。 又ビフイズス菌、ラクトバチルス菌及びS菌の
スターターをそれぞれ別個の培地に3〜10%
(V/V)、1〜5%(V/V)及び1〜5%
(V/V)接種し、それぞれ37〜42℃で3〜24時
間培養して培養生産物を得る。通常ビフイズス菌
の培養生産物1g中には5〜50×108、ラクトバ
チルス菌の培養生産物1g中には2〜20×108、
S菌の培養生産物1g中には1〜10×108の生菌
が含まれている。そしてビフイズス菌の培養生産
物(基準値100とする)、ラクトバチルス菌の培養
生産物及びS菌の培養生産物を目的により100:
0.28〜625:11〜24800の比率(重量)の範囲内で
混合し、培養物を得ることもできる。 このように本発明の培養物の製造法は極めて簡
便であり、従来の製造法を何ら変更することはな
いが、新規なS菌を使用していることにより、保
存後のビフイズス菌の生残率を著しく向上する効
果を有している。 (1) ストレプトコツカス・サーモフイルスに属す
る菌株の分離 ストレプトコツカス・サーモフイルスに属す
る菌株は、下記の小沢らの方法(農業技術研究
所報告G(畜産)、第5号、第41頁、1953年。)
に従つて、分離した。即ち生牛乳を45〜50℃に
4〜5日放置した凝固物又は自然酸敗乳を多数
検鏡し、その中で連鎖状球菌の存在を認めた試
料を、115℃15分間滅菌した10%(W/W)還
元脱脂乳培地に5%(V/V)の割合で接種
し、45〜50℃で凝固するまで培養した。さら
に、同様の方法で2〜3回凝固を繰り返した
後、その一白金耳量を採取し、M−17寒天培地
(Applied Microbiology、第29巻、第6号、第
807頁、1975年。)に塗抹し、40℃で2〜3日培
養し、生成した多数のコロニーから、菌株を分
離した。分離菌株の菌学的性質を、前記
Bergey′s mannual of determinative
bacteriology記載のサーモフイルス菌のそれと
比較し、ストレプトコツカス・サーモフイルス
と同定した40菌株を得た。 (2) サーモフイルス菌の酸素吸収能 生牛乳の凝固物及び自然酸敗乳から分離した
前記のストレプトコツカス・サーモフイルスに
属する40菌株、標準菌株として農林水産省畜産
試験場の森地氏から分譲を受けたストレプトコ
ツカス・サーモフイルス9Y株(IDF株)(日本
畜産学会報、第53巻、第161頁、1982年)及び
American Type Culture Collection(以下
ATCCと略記する)に寄託されているストレプ
トコツカス・サーモフイルス19258株の計42の
菌株について、酸素吸収能を次の方法により測
定した。まず、これらの菌株を液体培地(日本
農芸化学会誌、第45巻、第423頁、1971年)に
5%(V/V)接種し、37℃で16時間静置培養
し、得られた培養液から遠心分離機を用いて菌
体を分離し、菌体を滅菌生理食塩水で無菌的に
洗浄し、滅菌生理食塩水1ml中に乾燥重量にし
て3〜5mgの菌体量の割合で菌体を分散した菌
液を調製した。各菌株の酸素吸収能をワールブ
ルグ検圧法(吉川ら編:化学の領域増刊第13
号、「ワールブルグ検圧計」、南江堂、1954年2
月)によつて測定した。その概略は次のとおり
である。 2側室容器を使用し、反応容器の主室に、前
記菌液1.0mlとPH6.0の0.1モル滅菌リン酸緩衝液
0.5mlを入れ、側室2個所に気質溶液として20
%(W/W)滅菌還元脱脂乳0.75mlずつ計1.5
mlを入れ、副室に二酸化炭素吸収剤として20%
(W/V)水酸化カリウム溶液0.2mlを浸み込ま
せた濾紙片を入れた。なお、基質溶液は、発酵
乳中の酸素吸収能を推定するため、最終濃度10
%(W/W)になるように滅菌還元脱脂乳を用
いた。測定は37℃で行い、あらかじめ容器を5
分間振とうして温度平衡に達した後、側室の基
質溶液を加え、酸素吸収量を3分おきに測定
し、最大吸収速度を求めて酸素吸収能とした。 供試菌株の酸素吸収能の結果を第1表に示
す。 第1表 菌 株 酸素吸収能(ナノモル) 9Y 19.8 ATCC 19258 10.1 STH−01 30.0 STH−17 37.3 STH−23 42.3 STH−50 78.5 STH−15 14.7 STH−32 12.1 他の34菌株 18.5以下 第1表から明らかなように、分離した40菌株
のうち36菌株の酸素吸収能は18.5ナノモル以下
であつたのに対し、他の4菌株の酸素吸収能
は、30.0〜78.5ナノモルであつた。標準菌株の
酸素吸収能は9Y株が19.8ナノモル、
ATCC19258株が10.1ナノモルであつた。 なお、本発明者らは酸素吸収能の値が高かつ
た4菌株について前記Tinsonらと同一の方法
による酸素吸収能の測定を試みた。しかしなが
らこれらの4菌株の酸素吸収能が顕著に高いの
で、Tinsonらと同様に90分間の測定は不能で
あつた。従つてこれらの4菌株の酸素吸収能に
ついてTinsonらが報告している7.3マイクロモ
ル酸素分子の値に到達するまでの所要時間を
Tinsonと同一の方法により測定した。その結
果Tinsonらの値が90分であるのに対してSTH
−01株及びSTH−23株は26分、STH−17株は
28分、そしてSTH−50株は21分(参考までに
9Y株は46分、ATCC19258株は140分であつた)
であり、いずれの菌株の酸素吸収能も他の菌株
のそれよりも顕著に高いことを認めた。 (3) S菌の菌学的性質 更に本発明者らはこれらの4菌株について菌
学的性質を試験したが、酸素吸収能が高いこと
を除きその他の菌学的性質は各菌株とも前記
Bergey′s mannual of determinative
bacteriologyに記載されたサーモフイルス菌と
同一の次のとおりであつた。 (A) M−17寒天平板培地を用い、37℃で48時間
好気培養したときの菌の形態: 大きさ(直径):0.7〜0.9μm 形状:球状または楕円状で連鎖 (B) M−17寒天平板培地を用い、37℃で48時間
好気培養したときのコロニーの形態 形状:円形 隆起:凸円状 周縁:円滑 大きさ(直径):0.5〜1.5mm 色調:白色で不透明 表面:円滑で光沢あり (C) ガス:産生せず (D) 20℃以下で生育せず (E) 45℃で生育 (F) 運動性なし (G) 胞子形成せず (H) グラム陽性 (I) ベンジジン陰性 (J) カタラーゼ陰性 (K) 65℃30分間の加熱で生存 (L) 2%(W/V)塩化ナトリウム存在下で
生育せず (M) 0.1%(W/V)メチレンブルー添加乳で
生育せず (N) PH9.6で生育せず (O) 糖からの酸生成 グルコース、フラクトース、シユークロー
ス及びラクトースは陽性。アラビノース、キ
シロース、ラフイノース、マルトース、トレ
ハロース、イヌリン、マニトール、ソルビト
ール、サリシン及びグリセロールは陰性。 (P) アルギニンからアンモニアを生成せず そしてこれらの4菌株を20代以上継代培養し
ても高い酸素吸収能を保持していた。従つて本
発明者らは、これらの微生物を新規な微生物と
認定し、STH−01株、STH−17株、STH−23
株及びSTH−50株をそれぞれストレプトコツ
カス・サーモフイルスM−8202、ストレプトコ
ツカス・サーモフイルスM−8203、ストレプト
コツカス・サーモフイルスM−8204及びストレ
プトコツカス・サーモフイルスM−8205と命名
し、昭和57年10月22日に工業技術院微生物工業
技術研究所に寄託し、それぞれ微工研条寄第
351号、微工研条寄第352号、微工研条寄第353
号及び微工研条寄第354号なる受託番号を得た。 (4) サーモフイルス菌とラクトバチルス菌の菌数
比率について S菌及び酸素吸収能の低いサーモフイルス菌
から、それぞれ代表的な1株M−8205(STH−
50)株及びSTH−32株を選び、公知のラクト
バチルス菌の1種であるラクトバチルス・ブル
ガリクス、及び公知のビフイズス菌であるビフ
イドバクテリウム・ロンガム(ATCC15708)
株を用いて、サーモフイルス菌とラクトバチル
ス菌の生菌数の比率が異なる発酵乳を調製し、
発酵乳中のビフイズス菌の生残性を試験した。
サーモフイルス菌及びラクトバチルス菌のスタ
ーターは、115℃で15分間滅菌した10%(W/
W)還元脱脂乳培地に3%(V/V)接種し、
37℃で16時間培養したものを用い、ビフイズス
菌のスターターは、115℃で15分間滅菌した
0.25%(W/W)の酵母エキスを含む15%
(W/W)還元脱脂紛乳培地に10%(V/V)
接種し、37℃で5時間培養したものを用いた。
均質後90℃で10分間殺菌した牛乳にサーモフイ
ルス菌スターター対ラクトバチルス菌スタータ
ーの割合が容量パーセントで1.0:2.0、
1.5:1.5、2.5:0.5、2.8:0.2及び5.9:
0.1の比率で添加し、さらにビフイズス菌のス
ターターを、それぞれに5.0%(V/V)添加
し、40℃で3.5〜4.5時間発酵し、直ちに冷却
し、約PH4.5の発酵乳を調製した。これらの発
酵乳中のサーモフイルス菌とラクトバチルス菌
の生菌数及び両菌数の比率、更に5℃で7日間
保存した場合のビフイズス菌の生菌数の変化と
生残率をPHと共に第2表に示す。サーモフイル
ス菌及びラクトバチルス菌の生菌数は、常法に
よりBCP加プレートカウント寒天培地を用い
た混釈平均培養法でコロニーの形態による違い
から両菌を判別し測定した。また両菌の菌数比
は、ラクトバチルス菌の生菌数に対するサーモ
フイルス菌の生菌数の割合で示した。ビフイズ
ス菌の生菌数は発酵乳を光岡の嫌気性菌用希釈
液(光岡:臨床検査、第18巻、第1163頁、1974
年。)で段階的に希釈した後、ビフイズス菌の
選択培地であるMGLP寒天培地(食品衛生学
雑誌、第23巻、第39頁、1982年)を用いた高層
寒天培養法で測定した。ビフイズス菌の生残率
は、製造直後の生菌数に対する7日間保存後の
生菌数の百分率(%)で示した。なお、7日間
保存後の発酵乳中のサーモフイルス菌とラクト
バチルス菌の生菌数は、製造直後と変化がなか
つたので省略した。
【表】
第2表から明らかなように培養終了直後のラ
クトバチルス菌の生菌数に対するS菌の生菌数
の比率が高くなるほど保存後のビフイズス菌の
生残率は向上し、上記の菌数比を10倍以上にし
た場合、他のサーモフイルス菌を使用したとき
の30〜100倍も高く、その効果は顕著であるこ
とが判明した。一方、酸素吸収能の低いSTH
−32株ではS菌と同一の条件であつても保存後
のビフイズス菌の生残率は低く、酸素吸収能の
低いサーモフイルス菌には保存後のビフイズス
菌の生残率を向上させる効果は全く存在しな
い。 (5) S菌がビフイズス菌の生残率に及ぼす効果に
ついて 更に本発明者らは、M−8205株以外のS菌
と、STH−32株以外の酸素吸収能の低いサー
モフイルス菌、標準株の9Y株及びATCC19258
株とを用いて調製した発酵乳を保存したときの
ビフイズス菌の生残率を前記(4)に記載と同一の
方法によつて試験した。その結果、サーモフイ
ルス菌の生菌数をラクトバチルス菌の生菌数の
約40倍とし、5℃で7日間保存した後のビフイ
ズス菌の生残率は、S菌を使用した場合、いず
れも10%以上であつたのに対して、同条件下で
酸素吸収能の低いサーモフイルス菌及び標準株
の9Y株、ATCC19258株を使用した場合、いず
れも1%以下であり、S菌が格段に高いビフイ
ズス菌の生残効果を示した。 (6) 各種ビフイズス菌の生残性に対するサーモフ
イルス菌の効果について 次に公知の各種ビフイズス菌の発酵乳中での
生残性に及ぼすサーモフイルス菌の影響につい
て次の試験を行なつた。使用したビフイズス菌
は、ビフイドバクテリウム・ビフイダム
ATCC15696、ビフイドバクテリウム・インフ
アンチスATCC15697、ビフイドバクテリウ
ム・ブレーベATCC15700及びビフイドバクテ
リウム・アドレツセンチスATCC15706の計4
株であり、使用したサーモフイルス菌は、
ATCCB19258株及びM−8205株である。均質
後90℃で10分間殺菌した牛乳に前記(4)記載と同
様の方法で調製したサーモフイルス菌、ラクト
バチルス菌及びビフイズス菌のスターターをそ
れぞれ、2.8%(V/V)0.2%(V/V)及び
1.5%(V/V)添加し、40℃で約4時間発酵
し、のち直ちに冷却し、PH4.6の発酵乳を調製
した。発酵乳を5℃で7日間保存した場合のビ
フイズス菌の生菌数の変化と生残率をPHと共に
第3表に示す。 発酵乳中のラクトバチルス菌に対するサーモ
フイルス菌の生菌数の比率は、ATCC19258株
を用いた場合、約30倍、M−8205株を用いた場
合、約20倍であつた。
クトバチルス菌の生菌数に対するS菌の生菌数
の比率が高くなるほど保存後のビフイズス菌の
生残率は向上し、上記の菌数比を10倍以上にし
た場合、他のサーモフイルス菌を使用したとき
の30〜100倍も高く、その効果は顕著であるこ
とが判明した。一方、酸素吸収能の低いSTH
−32株ではS菌と同一の条件であつても保存後
のビフイズス菌の生残率は低く、酸素吸収能の
低いサーモフイルス菌には保存後のビフイズス
菌の生残率を向上させる効果は全く存在しな
い。 (5) S菌がビフイズス菌の生残率に及ぼす効果に
ついて 更に本発明者らは、M−8205株以外のS菌
と、STH−32株以外の酸素吸収能の低いサー
モフイルス菌、標準株の9Y株及びATCC19258
株とを用いて調製した発酵乳を保存したときの
ビフイズス菌の生残率を前記(4)に記載と同一の
方法によつて試験した。その結果、サーモフイ
ルス菌の生菌数をラクトバチルス菌の生菌数の
約40倍とし、5℃で7日間保存した後のビフイ
ズス菌の生残率は、S菌を使用した場合、いず
れも10%以上であつたのに対して、同条件下で
酸素吸収能の低いサーモフイルス菌及び標準株
の9Y株、ATCC19258株を使用した場合、いず
れも1%以下であり、S菌が格段に高いビフイ
ズス菌の生残効果を示した。 (6) 各種ビフイズス菌の生残性に対するサーモフ
イルス菌の効果について 次に公知の各種ビフイズス菌の発酵乳中での
生残性に及ぼすサーモフイルス菌の影響につい
て次の試験を行なつた。使用したビフイズス菌
は、ビフイドバクテリウム・ビフイダム
ATCC15696、ビフイドバクテリウム・インフ
アンチスATCC15697、ビフイドバクテリウ
ム・ブレーベATCC15700及びビフイドバクテ
リウム・アドレツセンチスATCC15706の計4
株であり、使用したサーモフイルス菌は、
ATCCB19258株及びM−8205株である。均質
後90℃で10分間殺菌した牛乳に前記(4)記載と同
様の方法で調製したサーモフイルス菌、ラクト
バチルス菌及びビフイズス菌のスターターをそ
れぞれ、2.8%(V/V)0.2%(V/V)及び
1.5%(V/V)添加し、40℃で約4時間発酵
し、のち直ちに冷却し、PH4.6の発酵乳を調製
した。発酵乳を5℃で7日間保存した場合のビ
フイズス菌の生菌数の変化と生残率をPHと共に
第3表に示す。 発酵乳中のラクトバチルス菌に対するサーモ
フイルス菌の生菌数の比率は、ATCC19258株
を用いた場合、約30倍、M−8205株を用いた場
合、約20倍であつた。
【表】
第3表から明らかなように発酵乳中のビフイ
ズス菌の生残率は、菌種によつて相違が認めら
れるが、M−8205株を使用した場合は、
ATCC19258株を使用した場合と比例して、約
800倍から10万倍の高いビフイズス菌の生残率
を示した。このように公知の各種ビフイズス菌
の生残性に対しても、S菌は、格段の効果を有
し、、S菌は、極めて良好なビフイズス菌の保
護作用を有することが判明した。 また、従来、発酵乳に使用されているラクト
バチルス・ブルガリクス以外のラクトバチルス
菌であるラクトバチルス・アシドフイルス、ラ
クトバチルス・ヘルベチカス、ラクトバチル
ス・ジユガーチ、ラクトバチルス・カゼイを用
いて、S菌と共にビフイズス菌を含有する発酵
乳を調製したところ、上記S菌の生菌数がいず
れのラクトバチルス菌の生菌数の10倍以上であ
る場合に、ビフイズス菌の生残率は、極めて高
いことが認められた。 実施例 1 90℃で30分間殺菌し、冷却した10%(W/W)
還元脱脂乳培地2500mlにストレプトコツカス・サ
ーモフイルスM−8202(STH−01)の前培養物を
3%(V/V)の割合で接種し、37℃で16時間培
養した。また、115℃15分間滅菌し、冷却した同
一組成の培地100mlにラクトバチルス・ブルガリ
クスATCC11842の前培養物を3%(V/V)の
割合で接種し、37℃で16時間培養した。一方、90
℃で30分間殺菌し、冷却した酵母エキス0.2%
(W/W)及び還元脱脂粉乳10%(W/W)から
なる培地1500mlに、ビフイドバクテリウム・ロン
ガムATCC15708の前培養物を10%(V/V)の
割合で接種し、37℃で6時間培養した。これとは
別に、乳脂肪3.1%(W/W)、無脂乳固形分9.0
%(W/W)からなる調乳液100を60℃に加温
し、150Kg/cm2の圧力で均質し、90℃で10分間殺
菌し、40℃に冷却した。この殺菌した牛乳に前記
の3菌株のスターターを全量接種し、500ml容の
容器に充填し、密封し、40℃で4時間発酵し、直
ちに冷却した。得られた発酵乳は乳酸酸度0.78
%、PH4.60であり、ストレプトコツカス・サーモ
フイルス110×107ml、ラクトバチルス・ブルガリ
クス75×106/ml、ビフイドバクテリウム・ロン
ガム90×106/mlを含有していた。この発酵乳を
5℃で7日間保存した後のビフイドバクテリウ
ム・ロンガムの生菌数は12×106/mlであり生残
率は13.3%であつた。 実施例 2 90℃で30分間殺菌し、39℃に冷却した0.1%
(W/W)カザミノ酸を含む18%(W/W)還元
脱脂乳30にストレプトコツカス・サーモフイル
スM−8204(STH−23)を3%(V/V)の割合
で接種し、37〜38℃で18時間発酵した。115℃15
分間滅菌後冷却した酵母エキス0.1%(W/W)
及び還元脱脂粉乳10%(W/W)からなる培地2
にラクトバチルス・アシドフイルスATCC4356
を3%(V/V)の割合で接種し、37℃で18時間
発酵した。また、90℃で30分間殺菌し、冷却した
カザミノ酸0.1%(W/W)、酵母エキス0.1%
(W/W)及び脱脂粉乳12%(W/W)からなる
培地10に、ビフイドバクテリウム・インフアン
チスATCC15697を5%(V/V)の割合で接種
し、37℃で8時間発酵した。これとは別に、砂糖
13Kg、耐酸性CMC0.6Kg及び香料0.2Kgを含んだシ
ロツプ65Kgを120℃で2秒間殺菌し、約20℃に冷
却し、その58Kgに上記のストレプトコツカス・サ
ーモフイルスの発酵乳30Kg、ラクトバチルス・ア
シドフイルスの発酵乳2Kg及びビフイドバクテリ
ウム・インフアンチスの発酵乳10Kgを混合した調
乳液100Kgを調製した。これを50Kg/cm2及び100
Kg/cm2の条件で2度均質し、200ml容ガラスビン
に充填し、乳製品乳酸菌飲料約400本を製造した。
得られた乳製品乳酸菌飲料は、ストレプトコツカ
ス・サーモフイルス32×107/ml、ラクトバチル
ス・アシドフイルス22×106/ml、ビフイドバク
テリウム・インフアンチス27×107/mlを含有し、
PH4.8、乳酸酸度0.63%であつた。この飲料を5
℃で7日間保存した後のビフイドバクテリウム・
インフアンチスの生菌数は、29×106/mlであり、
生残率は10.7%であつた。
ズス菌の生残率は、菌種によつて相違が認めら
れるが、M−8205株を使用した場合は、
ATCC19258株を使用した場合と比例して、約
800倍から10万倍の高いビフイズス菌の生残率
を示した。このように公知の各種ビフイズス菌
の生残性に対しても、S菌は、格段の効果を有
し、、S菌は、極めて良好なビフイズス菌の保
護作用を有することが判明した。 また、従来、発酵乳に使用されているラクト
バチルス・ブルガリクス以外のラクトバチルス
菌であるラクトバチルス・アシドフイルス、ラ
クトバチルス・ヘルベチカス、ラクトバチル
ス・ジユガーチ、ラクトバチルス・カゼイを用
いて、S菌と共にビフイズス菌を含有する発酵
乳を調製したところ、上記S菌の生菌数がいず
れのラクトバチルス菌の生菌数の10倍以上であ
る場合に、ビフイズス菌の生残率は、極めて高
いことが認められた。 実施例 1 90℃で30分間殺菌し、冷却した10%(W/W)
還元脱脂乳培地2500mlにストレプトコツカス・サ
ーモフイルスM−8202(STH−01)の前培養物を
3%(V/V)の割合で接種し、37℃で16時間培
養した。また、115℃15分間滅菌し、冷却した同
一組成の培地100mlにラクトバチルス・ブルガリ
クスATCC11842の前培養物を3%(V/V)の
割合で接種し、37℃で16時間培養した。一方、90
℃で30分間殺菌し、冷却した酵母エキス0.2%
(W/W)及び還元脱脂粉乳10%(W/W)から
なる培地1500mlに、ビフイドバクテリウム・ロン
ガムATCC15708の前培養物を10%(V/V)の
割合で接種し、37℃で6時間培養した。これとは
別に、乳脂肪3.1%(W/W)、無脂乳固形分9.0
%(W/W)からなる調乳液100を60℃に加温
し、150Kg/cm2の圧力で均質し、90℃で10分間殺
菌し、40℃に冷却した。この殺菌した牛乳に前記
の3菌株のスターターを全量接種し、500ml容の
容器に充填し、密封し、40℃で4時間発酵し、直
ちに冷却した。得られた発酵乳は乳酸酸度0.78
%、PH4.60であり、ストレプトコツカス・サーモ
フイルス110×107ml、ラクトバチルス・ブルガリ
クス75×106/ml、ビフイドバクテリウム・ロン
ガム90×106/mlを含有していた。この発酵乳を
5℃で7日間保存した後のビフイドバクテリウ
ム・ロンガムの生菌数は12×106/mlであり生残
率は13.3%であつた。 実施例 2 90℃で30分間殺菌し、39℃に冷却した0.1%
(W/W)カザミノ酸を含む18%(W/W)還元
脱脂乳30にストレプトコツカス・サーモフイル
スM−8204(STH−23)を3%(V/V)の割合
で接種し、37〜38℃で18時間発酵した。115℃15
分間滅菌後冷却した酵母エキス0.1%(W/W)
及び還元脱脂粉乳10%(W/W)からなる培地2
にラクトバチルス・アシドフイルスATCC4356
を3%(V/V)の割合で接種し、37℃で18時間
発酵した。また、90℃で30分間殺菌し、冷却した
カザミノ酸0.1%(W/W)、酵母エキス0.1%
(W/W)及び脱脂粉乳12%(W/W)からなる
培地10に、ビフイドバクテリウム・インフアン
チスATCC15697を5%(V/V)の割合で接種
し、37℃で8時間発酵した。これとは別に、砂糖
13Kg、耐酸性CMC0.6Kg及び香料0.2Kgを含んだシ
ロツプ65Kgを120℃で2秒間殺菌し、約20℃に冷
却し、その58Kgに上記のストレプトコツカス・サ
ーモフイルスの発酵乳30Kg、ラクトバチルス・ア
シドフイルスの発酵乳2Kg及びビフイドバクテリ
ウム・インフアンチスの発酵乳10Kgを混合した調
乳液100Kgを調製した。これを50Kg/cm2及び100
Kg/cm2の条件で2度均質し、200ml容ガラスビン
に充填し、乳製品乳酸菌飲料約400本を製造した。
得られた乳製品乳酸菌飲料は、ストレプトコツカ
ス・サーモフイルス32×107/ml、ラクトバチル
ス・アシドフイルス22×106/ml、ビフイドバク
テリウム・インフアンチス27×107/mlを含有し、
PH4.8、乳酸酸度0.63%であつた。この飲料を5
℃で7日間保存した後のビフイドバクテリウム・
インフアンチスの生菌数は、29×106/mlであり、
生残率は10.7%であつた。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 乳を主成分とする培地でビフイドバクテリウ
ム属に属する微生物、ラクトバチルス属に属する
微生物及びストレプトコツカス・サーモフイルス
を培養して得られ、これらの菌の生菌を含有する
培養物において、 (a) ワールブルグ検圧法で測定したとき、少なく
とも30ナノモル(n mole)酸素分子/(mg
乾燥菌体重量・分)の酸素吸収能を示すストレ
プトコツカス・サーモフイルスを使用するこ
と。 (b) 該培養物を7日間5℃で好気的に保存したと
き、培養終了直後の該培養物中のビフイドバク
テリウム属に属する微生物の生菌数に対する保
存後の該培養物中のビフイドバクテリウム属に
属する微生物の生菌数の百分率で表わされる生
残率が少なくとも5%であること。 (c) 培養直後の該培養物中に存在するストレプト
コツカス・サーモフイルスの生菌数が、ラクト
バチルス属に属する微生物のそれの少なくとも
10倍であること。 を特徴とするビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含
有する培養物。 2 培養直後の該培養物1ml当り少なくとも1×
108のストレプトコツカス・サーモフイルスの生
菌菌体、少なくとも2×107のビフイドバクテリ
ウム属に属する微生物の生菌菌体及び少なくとも
5×106のラクトバチルス属に属する微生物の生
菌菌体を含有することを特徴とする特許請求の範
囲第1項に記載のビフイズス菌及び乳酸菌の生菌
を含有する培養物。 3 ストレプトコツカス・サーモフイルスがスト
レプトコツカス・サーモフイルスM−8202(微工
研条寄第351号)、ストレプトコツカス・サーモフ
イルスM−8203(微工研条寄第352号)ストレプト
コツカス・サーモフイルスM−8204(微工研条寄
第353号)及びストレプトコツカス・サーモフイ
ルスM−8205(微工研条寄第354号)からなる群よ
り選ばれる1種又は2種以上であることを特徴と
する特許請求の範囲第1項又は第2項に記載のビ
フイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有する培養物。 4 乳を主成分とする滅菌した培地に、それぞれ
別個に調製したビフイドバクテリウム属に属する
微生物のスターター、ラクトバチルス属に属する
微生物のスターター及び少なくとも30ナノモル
(n mole)酸素分子/(mg乾燥菌体重量・分)
の酸素吸収能を有するストレプトコツカス・サー
モフイルスのスターターからなる混合スターター
を接種し、好気的条件下で培養するか、又は上記
3種のスターター)をそれぞれ別個に上記培地に
接種し、好気的条件下でそれぞれ別個に培養し、
のち得られた培養生産物を混合することを特徴と
するビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有する培
養物の製造法。 5 混合スターターが、ビフイドバクテリウム属
に属する微生物のスターター(基準値100とす
る):ラクトバチルス属に属する微生物のスター
ター:該ストレプトコツカス・サーモフイルスの
スターター=100:0.5〜50:3.0〜600の比(重
量)であることを特徴とする特許請求の範囲第4
項に記載のビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有
する培養物の製造法。 6 混合スターターを接種した培地が37〜42℃で
3〜24時間培養されることを特徴とする特許請求
の範囲第4項又は第5項に記載のビフイズス菌及
び乳酸菌の生菌を含有する培養物の製造法。 7 得られた培養生産物が、ビフイドバクテリウ
ム属に属する微生物の培養生産物(基準値100と
する):ラクトバチルス属に属する微生物の培養
生産物:該ストレプトコツカス・サーモフイルス
の培養生産物=100:0.28〜625:11〜24800の比
率(重量)で混合されることを特徴とする特許請
求の範囲第4項に記載のビフイズス菌及び乳酸菌
の生菌を含有する培養物の製造法。
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57195376A JPS5988085A (ja) | 1982-11-09 | 1982-11-09 | ビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有する培養物及び製造法 |
US06/547,827 US4588595A (en) | 1982-11-09 | 1983-11-02 | Culture containing a viable cell mass of Bifidobacteria and lactic acid bacteria |
DE8383306779T DE3376222D1 (en) | 1982-11-09 | 1983-11-08 | A culture containing viable cell mass of bifidobacteria and lactic acid bacteria, and a process for preparing said culture |
EP83306779A EP0111392B1 (en) | 1982-11-09 | 1983-11-08 | A culture containing viable cell mass of bifidobacteria and lactic acid bacteria, and a process for preparing said culture |
DE198383306779T DE111392T1 (de) | 1982-11-09 | 1983-11-08 | Kultur enthaltende lebendige zellmassa von bifidobakterien und milchsaeurebakterien und verfahren zur herstellung dieser kultur. |
FI834116A FI76373C (fi) | 1982-11-09 | 1983-11-09 | Foerfarande foer framstaellning av en odling som innehaoller levande cellmassa av bifidobakterier och mjoelksyrabakterier. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57195376A JPS5988085A (ja) | 1982-11-09 | 1982-11-09 | ビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有する培養物及び製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5988085A JPS5988085A (ja) | 1984-05-21 |
JPH0153035B2 true JPH0153035B2 (ja) | 1989-11-10 |
Family
ID=16340133
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57195376A Granted JPS5988085A (ja) | 1982-11-09 | 1982-11-09 | ビフイズス菌及び乳酸菌の生菌を含有する培養物及び製造法 |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4588595A (ja) |
EP (1) | EP0111392B1 (ja) |
JP (1) | JPS5988085A (ja) |
DE (2) | DE3376222D1 (ja) |
FI (1) | FI76373C (ja) |
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