JP7439019B2 - 修飾型rna(mod-rna)を使用する効率的なインビボタンパク質発現 - Google Patents
修飾型rna(mod-rna)を使用する効率的なインビボタンパク質発現 Download PDFInfo
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本願は、米国特許法第119条(e)に基づき、2011年4月3日に提出された米国特許仮出願番号第61/471,166号、および2011年4月4日に提出された同第61/471,584号の利益を主張する。これらのそれぞれの内容は、それらの全体の参照により本明細書に組み込まれる。
本願はEFS-Webを介してASCII形式で提出された配列表を含み、その配列表はその全体の参照によりここに組み込まれる。前記のASCIIコピーは、2012年3月12日に作成され、32587153.txtという名称であり、サイズが2,105,668バイトである。
本発明は、概して、合成修飾型RNAを使用するインビボでの筋細胞および心筋細胞における遺伝子発現ならびにその使用法に関する。本発明は、概して、合成修飾型RNAを使用する腫瘍における遺伝子発現の調節およびその使用法にさらに関する。
便宜上、本願全体(明細書、実施例および別記の特許請求の範囲を含む)において使用されるある特定の用語がここにまとめられる。別途定義されない限り、本願において使用される全ての技術用語および科学用語は本発明が属する分野の当業者が一般に理解するものと同じ意味を有する。
本明細書に記載される合成修飾型RNAは、合成修飾型RNA組成物の個体への投与により、または別の実施形態では、細胞を合成修飾型RNAとエクスビボで接触させ、次にそのような細胞を対象に投与することにより、治療上の目的のタンパク質を標的の組織または器官で発現させるために使用されることもできる。1つの態様では、細胞を患者から取り出し、例えば、電気穿孔法またはリポフェクションにより形質移入し、そして、その患者に再導入するエクスビボアプローチを用いて、修飾型RNAにより細胞を形質移入して治療用タンパク質を発現させることができる。この方法での連続投与または持続型投与は、患者に再注入する血液細胞の電気穿孔法により達成することができる。
本発明の1つの実施形態は、対象の心血管系の疾患または障害を治療する方法であって、本明細書において開示される少なくとも1つの合成修飾型RNA(MOD-RNA)を含む組成物の有効量を心血管系の疾患または障害を有する対象に投与する工程を含む方法に関する。
いくつかの実施形態では、合成修飾型RNAを使用するインビボタンパク質発現のための本明細書において開示される方法、組成物およびキットは、機能欠損型疾患の治療の方法において使用することができる。機能欠損型疾患は、タンパク質機能の低減または消失の原因となる遺伝子内の変異と関連がある疾患である。
多くの腫瘍、特に腺癌は、化学療法剤の送達に対して抵抗性を示す間質細胞からなる外層(線維形成性組織)を特徴とする。線維形成性組織の量を減少させること、線維形成性組織の増殖速度を低下させること、および/または線維形成性組織が化学療法剤では効果が無い程度にまで程度を減少させることにより、化学療法剤がより効果的に腫瘍に浸透することが可能となり、効力を増強し、必要な用量を減少させることができる。本明細書は、化学療法剤の効力を増大する2つの方法で線維形成性組織を変化させる方法を記載する。いくつかの実施形態では、線維形成性組織の血管形成の程度が上昇し、化学療法剤が腫瘍の全体に届く機会が多くなる。いくつかの実施形態では、線維形成性組織の量または線維形成性組織の増殖速度はヘッジホッグシグナル伝達を阻害することにより低下し、ヘッジホッグシグナル伝達は線維形成性組織の増殖に関連があるとされている。本明細書に記載される合成修飾型RNAは(i)対象の腫瘍の線維形成性組織において血管新生を増強するポリペプチドを発現するために、および/または(ii)標的の腫瘍においてヘッジホッグシグナル伝達を増強するポリペプチドの発現阻害剤として、合成修飾型RNA組成物の個体への投与により、または別の実施形態では、腫瘍をその合成修飾型RNAと接触させることにより使用することができる。いくつかの実施形態では、細胞を合成修飾型RNAとエクスビボで接触させ、次にそのような細胞を対象に投与する。1つの態様では、細胞を患者から取り出し、例えば、電気穿孔法またはリポフェクションにより形質移入し、そして、その患者に再導入するエクスビボアプローチを用いて、修飾型RNAにより細胞を形質移入して治療用タンパク質を発現させることができる。この方法での連続投与または持続型投与は、患者に再注入する血液細胞の電気穿孔法により達成することができる。
いくつかの実施形態では、目的のタンパク質または作用物質をコードするMOD-RNAを含む組成物の有効量をインビボで所望の組織に送達することができる。いくつかの実施形態では、本発明のMOD-RNAの様々な用量範囲が包含される。いくつかの実施形態では、MOD-RNAは100ng/μlよりも高い(例えば、多い)濃度で送達される。いくつかの実施形態では、インビボで組織に送達される組成物中のMOD-RNAの濃度は少なくとも約0.5μg/μl、または少なくとも約1μg/μl、または少なくとも約2μg/μl、または少なくとも約3μg/μl、または少なくとも約4μg/μl、または少なくとも約5μg/μl、または少なくとも約6μg/μl、または少なくとも約7μg/μl、または少なくとも約8μg/μl、または少なくとも約9μg/μl、または少なくとも約10μg/μl、または少なくとも約12μg/μl、または少なくとも約14μg/μl、または少なくとも約16μg/μl、または少なくとも約18μg/μl、または少なくとも約20μg/μl、または少なくとも約25μg/μl、または少なくとも約30μg/μl、または少なくとも約40μg/μl、または少なくとも約50μg/μl、または約0.5μg/μlと25μg/μlの間の任意の整数の濃度である。いくつかの実施形態では、インビボで組織に送達される組成物中のMOD-RNAの濃度は50μg/μlよりも高く、そして、少なくとも約60μg/μl、または少なくとも約70μg/μl、または少なくとも約80μg/μl、または少なくとも約90μg/μl、または少なくとも約100μg/μl(0.1mg/ml)であり得る、または100μg/μlよりも高くてよい。
本明細書は、心臓細胞、例えば、心筋細胞の集団をポリペプチドをコードする少なくとも1つの合成修飾型RNA(MOD-RNA)を含む組成物と接触させることによる組織、例えば、心臓組織、または心筋細胞におけるインビボタンパク質発現のための方法を記載する。
いくつかの態様では、本明細書は、ポリペプチドをコードする、またはそれ自体がアンチセンス阻害剤である合成修飾型RNA分子(MOD-RNA)であって、1つ以上の修飾を含む合成修飾型RNA分子であり、その合成修飾型RNA分子の細胞または組織へのインビボでの導入によって、前記ポリペプチドをコードする、該1つ以上の修飾を含まない合成RNA分子と接触している細胞と比較して、その組織の自然免疫応答が低下することになる合成修飾型RNA分子を提供する。
本明細書に記載される合成修飾型RNAは、ここで全体の参照により本明細書に組み込まれる"Current Protocols in Nucleic Acid Chemistry", Beaucage, S.L. et al. (Edrs.), John Wiley & Sons, Inc., New York, NY, USAに記載される方法のような当技術分野においてよく確立されている方法によって合成および/または修飾することができる。転写方法は本明細書の実施例においてさらに説明される。
本明細書に記載される態様のいくつかの実施形態では、複数の異なる合成修飾型RNAがインビボで標的組織、例えば、筋肉組織または心臓組織と接触し、または、それに導入され、そして、所望の標的組織における少なくとも2つのポリペプチド産物の発現が可能となる。いくつかの実施形態では、本明細書において開示される合成修飾型RNA組成物は2つ以上の合成修飾型RNA、例えば、2、3、4、5、6、7、8、9、10またはそれ以上の合成修飾型RNAを含むことができる。いくつかの実施形態では、2つ以上の合成修飾型RNAは所望のポリペプチド産物(例えば、転写因子、細胞表面マーカー、細胞死受容体など)の発現を上昇させることができる。いくつかの実施形態では、組成物が心血管系の疾患または障害の治療のために使用される場合、その組成物はVEGFをコードするMOD-RNAと異なる心臓増強タンパク質をコードする少なくとも1つの他のMOD-RNAを含む。
合成修飾型RNAは、インビボで標的組織、例えば、筋肉組織または心臓組織へ、例えば、筋原細胞、または心筋細胞への送達のために、合成修飾型RNAがコードするポリペプチドのインビボ発現が起こるように合成修飾型RNAの細胞内送達を達成するあらゆる方法で導入することができる。本明細書において使用される場合、「細胞を形質移入すること」という用語は、当業者が理解するように、組織への取込または吸収を促進または達成する手段を用いる、その組織の細胞への核酸の導入の過程を指す。その用語が本明細書において使用される場合、「形質移入」はベクターが介在する遺伝子送達、例えば、ウイルス性またはウイルス粒子に基づく送達方法は包含しない。合成修飾型RNAのインビボでの組織への吸収または取込は、自発的な拡散過程もしくは能動的細胞過程を介して、または補助剤もしくは補助装置によって起こり得る。さらなるアプローチは本明細書の以下に記載される、または当技術分野において公知である。
本明細書に記載される態様のある特定の実施形態では、合成修飾型RNAは形質移入またはリポフェクションにより標的組織へインビボで導入され得る。形質移入またはリポフェクションに適切な作用物質には、例えば、リン酸カルシウム、DEAEデキストラン、リポフェクチン、リポフェクタミン、DIMRIE C(商標)、スーパーフェクト(Superfect)(商標)およびエフェクチン(Effectin)(商標)(Qiagen(商標))、ユニフェクチン(unifectin)(商標)、マキシフェクチン(maxifectin)(商標)、DOTMA、DOGS(商標)(トランスフェクタム(Transfectam);ジオクタデシルアミドグリシルスペルミン)、DOPE(1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン)、DOTAP(1,2-ジオレオイル-3-トリメチルアンモニウムプロパン)、DDAB(ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド)、DHDEAB(N,N-ジ-n-ヘキサデシル-N,N-ジヒドロキシエチルアンモニウムブロミド)、HDEAB(N-n-ヘキサデシル-N,N-ジヒドロキシエチルアンモニウムブロミド)、ポリブレン、ポリ(エチレンイミン)(PEI)などが含まれるが、これらに限定されない(例えば、Banerjee et al., Med. Chem. 42:4292~99 (1999); Godbey et al., Gene Ther. 6:1380~88 (1999)、Kichler et al., Gene Ther. 5:855~60 (1998); Birchaa et al., J. Pharm. 183:195~207 (1999)を参照のこと)。本明細書において開示される実施例では、発明者らはMega Tran1.0形質移入試薬(OriGene Technologies Inc.)を使用してMOD-RNAを組織、例えば、心臓および筋肉組織にインビボで導入した。あるいは、いくつかの実施形態では、MOD-RNAは、リポフェクタミン(RNAi MAX)を使用して組織、例えば、心臓および筋肉組織にインビボで導入された。送達するMOD-RNAの濃度を最適にすることができるが、1つの実施形態では、発明者らは約100μgのMOD-RNAの組織へのインビボでの送達のために25μg/μlの濃度を用いた。
いくつかの実施形態では、標的組織にインビボで送達するための、本明細書において開示される合成修飾型RNA分子はナノ粒子にカプセル化されている。ナノ粒子包装の方法は当技術分野において周知であり、例えば、Bose Sら(Role of Nucleolin in Human Parainfluenza Virus Type 3 Infection of Human Lung Epithelial Cells. J. Virol. 78:8146. 2004)、Dong Yら(Poly(d,l-lactide-co-glycolide)/montmorillonite nanoparticles for oral delivery of anticancer drugs. Biomaterials 26:6068. 2005)、Lobenberg R.ら(Improved body distribution of 14C-labelled AZT bound to nanoparticles in rats determined by radioluminography. J Drug Target 5:171.1998)、Sakuma S Rら(Mucoadhesion of polystyrene nanoparticles having surface hydrophilic polymeric chains in the gastrointestinal tract. Int J Pharm 177:161. 1999)、Virovic Lら(Novel delivery methods for treatment of viral hepatitis: an update. Expert Opin Drug Deliv 2:707.2005)、およびZimmermann Eら(Electrolyte- and pH-stabilities of aqueous solid lipid nanoparticle (SLN) dispersions in artificial gastrointestinal media. Eur J Pharm Biopharm 52:203. 2001)に記載されている。いくつかの実施形態では、組成物が1つより多くのMOD-RNA分子を含む場合、その特有のナノ粒子製剤および医薬組成物として製剤される各MOD-RNAは複数のMOD-RNAナノ粒子製剤を含む。別の実施形態では、ナノ粒子は、異なるタンパク質をコードする複数の異なる合成修飾型RNAを含むことができる。各方法は本発明の別個の実施形態を表す。
いくつかの実施形態では、本明細書において開示される、少なくとも1つのMOD-RNAを含む組成物はまた自然免疫介在性応答を低下させるための作用物質を含む。1つの実施形態では、その組成物は、組織の自然免疫応答をさらに低下させるために、インターフェロン除去剤(例えば、可溶性インターフェロン受容体)をコードする修飾型RNAをさらに含む。
いくつかの実施形態では、合成修飾型RNAを使用するインビボタンパク質発現のための本明細書において開示される方法および組成物およびキットは、研究者が単一の遺伝子産物または遺伝子産物群についてのタンパク質発現の器官全体および全身性の効果を調査することができるような、そのための基盤を提供する。特定の指向性タンパク質発現を容易に実行する能力が、(遺伝子導入マウス技術および他の動物全体での遺伝的修飾技術と比較して)器官生理および全身性生理の研究における新境地を開く。そのような強力な基盤は生物学者および臨床科学者の間に広範な関心を喚起しうる。いくつかの実施形態では、本発明は、遺伝子発現を活性化および/または不活化する動物モデル、例えば、誘導性タンパク質発現系の動物モデルに合成修飾型RNAをインビボ送達するための方法を提供する。いくつかの実施形態では、前記方法は、特定の組織や細胞種における遺伝子のノックアウトの効果を見るために、Creリコンビナーゼタンパク質をコードする合成修飾型RNAを動物モデルに送達する。いくつかの実施形態では、動物モデルは大動物モデル、例えば、豚モデルである。
1. 組織においてタンパク質をインビボ発現させるための方法であって、ポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子を含む組成物と該組織を接触させる工程を含み、該組織中の細胞への該合成修飾型RNA分子の導入によって、1つ以上の修飾を含まない該ポリペプチドをコードする合成RNA分子と接触した該組織中の細胞と比較して自然免疫応答が低下するように、該合成修飾型RNA分子が該1つ以上の修飾を含む、前記方法。
2. 前記組織が心臓組織または心臓性組織である、段落1に記載の方法。
3. 前記組織が筋肉組織である、段落1に記載の方法。
4. 前記筋肉組織が骨格筋である、段落3に記載の方法。
5. 前記筋肉組織が心筋である、段落3に記載の方法。
6. 前記筋肉組織が平滑筋である、段落3に記載の方法。
7. 前記組織が膵臓組織である、段落1に記載の方法。
8. 前記合成修飾型RNA分子がベクターにおいて発現しない、段落1に記載の方法。
9. 前記合成修飾型RNA分子を含む前記組成物が裸の合成修飾型RNA分子を含む、段落1に記載の方法。
10. 前記合成修飾型RNA分子を含む前記組成物が、脂質複合体中に存在する少なくとも1つの合成修飾型RNA分子を含む、段落1に記載の方法。
11. 前記組織が哺乳類の組織である、段落1に記載の方法。
12. 前記哺乳類の組織がヒトの組織である、段落11に記載の方法。
13. 前記合成修飾型RNA分子が少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、段落1に記載の方法。
14. 前記少なくとも2つの修飾ヌクレオシドが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2,7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される、段落13に記載の方法。
15. 前記合成修飾型RNA分子、その中で前記少なくとも2つの修飾ヌクレオシドが5-メチルシチジン(5mC)およびシュードウリジンである、段落13に記載の方法。
16. 前記合成修飾型RNA分子が5'キャップをさらに含む、段落1に記載の方法。
17. 前記合成修飾型RNA分子、その中で前記5'キャップが5'キャップ類似体である、段落16に記載の方法。
18. 前記5'キャップ類似体が5'グアノシンキャップである、段落17に記載の方法。
19. 前記合成修飾型RNA分子が5'三リン酸を含まない、段落1に記載の方法。
20. 前記合成修飾型RNA分子が、ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せをさらに含む、段落1に記載の方法。
21. 前記ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せが1つ以上の修飾ヌクレオシドを含む、段落20に記載の方法。
22. 前記1つ以上の修飾ヌクレオシドが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2,7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される、段落21に記載の方法。
23. 前記合成修飾型RNA分子がアルカリホスファターゼで処理される、段落1に記載の方法。
24. 前記合成修飾型RNA分子がVEGFポリペプチドをコードする、段落1に記載の方法。
25. 前記VEGFポリペプチドがヒトVEGF(hVEGF)である、段落23に記載の方法。
26. 前記合成修飾型RNA分子がジストロフィンポリペプチドをコードする、段落1に記載の方法。
27. 前記合成修飾型RNA分子がα1アンチトリプシンポリペプチドをコードする、段落1に記載の方法。
28. 前記合成修飾型RNA分子が機能欠損型疾患のためのポリペプチドをコードする、段落1に記載の方法。
29. 前記機能欠損型疾患が嚢胞性線維症である、段落27に記載の方法。
30. 前記合成修飾型RNA分子が嚢胞性線維症膜コンダクタンス調節因子(CFTR)ポリペプチドをコードする、段落29に記載の方法。
31. 前記合成修飾型RNA分子が、表1、2、3、4、5、6または7のいずれかに開示されるポリペプチドをコードする、段落1に記載の方法。
32. 前記合成修飾型RNA分子と前記組織を接触させる工程が筋肉への直接注入を含む、段落1に記載の方法。
33. 前記合成修飾型RNA分子と前記組織を接触させる工程が、該合成修飾型RNA分子を含むかまたはそれで被覆されている埋め込み型装置と該組織を接触させることを含む、段落1に記載の方法。
34. 前記埋め込み型装置がステントである、段落33に記載の方法。
35. 前記埋め込み型装置が埋め込み型送達ポンプである、段落33に記載の方法。
36. 前記合成修飾型RNA分子と前記組織を接触させる工程が、カテーテルによって該合成修飾型RNA分子を送達することを含む、段落1に記載の方法。
37. 前記合成修飾型RNA分子と前記組織を接触させる工程が、内視鏡を介して該合成修飾型RNA分子を送達することを含む、段落1に記載の方法。
38. 前記組成物が、100ng/μlよりも高い濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落1に記載の方法。
39. 前記組成物が、1~25μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落1に記載の方法。
40. 前記組成物が、25μg/μlと50μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落1に記載の方法。
41. 対象において心機能を増強するための方法であって、該対象において心機能を増強するポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子を含む組成物を該対象に投与する工程を含み、該合成修飾型RNA分子の該対象への投与によって、1つ以上の修飾を含まない該ポリペプチドをコードする合成RNA分子の投与と比較して自然免疫応答が低下するように、該合成修飾型RNA分子が前記1つ以上の修飾を含み、かつ、該合成修飾型RNA分子からの該ポリペプチドの発現が該対象において心機能を増強する、前記方法。
42. 前記合成修飾型RNA分子が段落8~22のいずれか一項に記載のものである、段落41に記載の方法。
43. 前記対象が、不十分な心機能を特徴とする疾患または障害を患っている、段落41に記載の方法。
44. 前記対象が構造的心疾患を患っている、段落41に記載の方法。
45. 前記疾患または障害が、うっ血性心不全、心筋症、心筋梗塞、組織虚血、心臓虚血、血管病、後天性心臓疾患、先天性心臓疾患、アテローム性硬化症、心筋症、刺激伝達系機能不全、冠動脈機能不全、肺性心高血圧症である、段落41に記載の方法。
46. 前記疾患が、うっ血性心不全、冠動脈疾患、心筋梗塞、心筋虚血、アテローム性硬化症、心筋症、特発性心筋症、心不整脈、筋ジストロフィー、筋量異常、筋変性、感染性心筋炎、薬物または毒素誘導性の筋異常、過敏性心筋炎、自己免疫性心内膜炎および先天性心臓疾患からなる群より選択される、段落41に記載の方法。
47. 前記合成修飾型RNA分子がVEGFポリペプチドをコードする、段落41に記載の方法。
48. 前記VEGFポリペプチドがヒトVEGF(hVEGF)である、段落41に記載の方法。
49. 前記合成修飾型RNA分子がジストロフィンポリペプチドをコードする、段落41に記載の方法。
50. 前記合成修飾型RNA分子がα1アンチトリプシンポリペプチドをコードする、段落41に記載の方法。
51. 前記合成修飾型RNA分子が機能欠損型疾患のためのポリペプチドをコードする、段落41に記載の方法。
52. 前記合成修飾型RNA分子が、心臓で発現しないポリペプチド、または心臓での正常な発現と比較して低レベルで発現するポリペプチド、または天然の野生型のポリペプチドと比較して機能獲得型タンパク質もしくは変異型タンパク質として発現するポリペプチドを、前記対象において発現する、段落41に記載の方法。
53. 前記合成修飾型RNA分子が、表1、2、3、4、5、6または7のいずれかに開示されるポリペプチドをコードする、段落41に記載の方法。
54. 前記対象が哺乳類である、段落41に記載の方法。
55. 前記哺乳類がヒトである、段落54に記載の方法。
56. 前記対象が心筋梗塞を患ったことがある、段落41に記載の方法。
57. 前記対象が心不全を有するかまたは心不全のリスクを有する、段落41に記載の方法。
58. 前記心不全が後天性心不全である、段落57に記載の方法。
59. 前記心不全が、アテローム性硬化症、心筋症、うっ血性心不全、心筋梗塞、虚血性心疾患、心房性不整脈および心室性不整脈、高血圧性血管疾患、末梢血管疾患と関係がある、段落57に記載の方法。
60. 前記対象が先天性心臓疾患を有する、段落41に記載の方法。
61. 前記対象が、高血圧、血流障害、症候性不整脈、肺性高血圧、関節硬化症、刺激伝達系機能不全、冠動脈機能不全、冠動脈樹機能不全および冠動脈側副血行路形成からなる群より選択される健康状態を有する、段落41に記載の方法。
62. 心機能の増強が、心不全を治療または予防するための方法である、段落41に記載の方法。
63. 前記組成物が、心内膜心筋投与経路、心筋外投与経路、心室内投与経路、冠内投与経路、後洞投与経路、動脈内投与経路、心膜内投与経路、または静脈内投与経路を経て投与される、段落41に記載の方法。
64. 前記組成物が前記対象の血管系に投与される、段落41に記載の方法。
65. 前記組成物が心臓への直接注入により前記対象に投与される、段落41に記載の方法。
66. 前記組成物が、前記合成修飾型RNA分子を含むかまたはそれで被覆されている埋め込み型装置を使用して前記対象に投与される、段落41に記載の方法。
67. 前記埋め込み型装置がステントである、段落66に記載の方法。
68. 前記埋め込み型装置が埋め込み型送達ポンプである、段落66に記載の方法。
69. 前記組成物がカテーテルによって前記対象に投与される、段落41に記載の方法。
70. 前記組成物が内視鏡を介して前記対象に投与される、段落41に記載の方法。
71. 前記組成物が、100ng/μlよりも高い濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落41に記載の方法。
72. 前記組成物が、1~25μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落41に記載の方法。
73. 前記組成物が、25μg/μlと50μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落41に記載の方法。
74. 前記合成修飾型RNA分子が、心臓で発現しないポリペプチド、または心臓での正常な発現と比較して低レベルで発現するポリペプチド、または天然の野生型のポリペプチドと比較して機能獲得型タンパク質もしくは変異型タンパク質として発現するポリペプチドを、前記対象において発現する、段落41に記載の方法。
75. インビボCre動物モデルにおける遺伝子をノックアウトするための、Creリコンビナーゼポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子の使用。
76. 心臓始原細胞の動員、増殖、および/または分化を増大させる方法であって、対象における心臓始原細胞の動員、増殖、および/または分化を増大させるポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子を含む組成物を該対象に投与する工程を含み、該合成修飾型RNA分子の該対象への投与によって、1つ以上の修飾を含まない該ポリペプチドをコードする合成RNA分子の投与と比較して自然免疫応答が低下するように、該合成修飾型RNA分子が該1つ以上の修飾を含み、かつ、該合成修飾型RNA分子からの該ポリペプチドの発現が、該対象における心臓始原細胞の動員、増殖、および/または分化を増大させる、前記方法。
77. 前記対象における心臓始原細胞の動員、増殖、および/または分化を増大させる前記ポリペプチドがVEGFポリペプチドを含む、段落76に記載の方法。
78. 前記VEGFポリペプチドがVEGF-Aを含む、段落77に記載の方法。
79. 前記対象が、高血圧、血流障害、症候性不整脈、肺性高血圧、関節硬化症、刺激伝達系機能不全、冠動脈機能不全、冠動脈樹機能不全および冠動脈側副血行路形成からなる群より選択される健康状態を有する、段落76に記載の方法。
80. 前記対象がヒトである、段落76に記載の方法。
81. 前記対象が心筋梗塞を患ったことがある、段落79に記載の方法。
82. 前記心臓始原細胞がWT-1始原細胞を含む、段落76に記載の方法。
83. 以下の工程を含む、対象において腫瘍を治療するための方法:
該対象において血管新生を増強するポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子を含む組成物を投与する工程であって、該合成修飾型RNA分子の該対象への投与によって、1つ以上の修飾を含まない該ポリペプチドをコードする合成RNA分子の投与と比較して自然免疫応答が低下するように、該合成修飾型RNA分子が前記1つ以上の修飾を含み、かつ、該合成修飾型RNA分子からの該ポリペプチドの発現が該腫瘍における血管新生を増強する、工程;および、
化学療法剤を該対象に投与する工程であって、該血管新生が該対象に投与される化学療法剤の効果を増大させ、それによって該腫瘍が治療される、工程。
84. 前記合成修飾型RNA分子がベクターにおいて発現しない、段落83に記載の方法。
85. 前記合成修飾型RNA分子を含む前記組成物が裸の合成修飾型RNA分子を含む、段落83に記載の方法。
86. 前記合成修飾型RNA分子を含む前記組成物が、脂質複合体中に存在する少なくとも1つの合成修飾型RNA分子を含む、段落83に記載の方法。
87. 前記合成修飾型RNA分子が少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、段落83に記載の方法。
88. 前記少なくとも2つの修飾ヌクレオシドが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2,7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される、段落87に記載の方法。
89. 前記合成修飾型RNA分子、その中で前記少なくとも2つの修飾ヌクレオシドが5-メチルシチジン(5mC)およびシュードウリジンである、段落87に記載の方法。
90. 前記合成修飾型RNA分子が5'キャップをさらに含む、段落83に記載の方法。
91. 前記合成修飾型RNA分子、その中で前記5'キャップが5'キャップ類似体である、段落90に記載の方法。
92. 前記5'キャップ類似体が5'グアノシンキャップである、段落91に記載の方法。
93. 前記合成修飾型RNA分子が5'三リン酸を含まない、段落83に記載の方法。
94. 前記合成修飾型RNA分子が、ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せをさらに含む、段落83に記載の方法。
95. 前記ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せが1つ以上の修飾ヌクレオシドを含む、段落94に記載の方法。
96. 前記1つ以上の修飾ヌクレオシドが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2,7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される、段落95に記載の方法。
97. 前記合成修飾型RNA分子がアルカリホスファターゼで処理される、段落83に記載の方法。
98. 前記対象が腺癌を患っている、段落83に記載の方法。
99. 前記対象が、線維形成性組織の層を有する腫瘍を含む癌を患っている、段落83に記載の方法。
100. 前記癌が膵管腺癌(PDAC)である、段落98に記載の方法。
101. 前記合成修飾型RNA分子がVEGFポリペプチドをコードする、段落83に記載の方法。
102. 前記VEGFポリペプチドがヒトVEGF(hVEGF)である、段落83に記載の方法。
103. 前記合成修飾型RNA分子が、表3に開示されるポリペプチドをコードする、段落83に記載の方法。
104. 前記対象が哺乳類である、段落83に記載の方法。
105. 前記哺乳類がヒトである、段落104に記載の方法。
106. 前記組成物が静脈内投与経路または経腫瘍投与経路を介して投与される、段落83に記載の方法。
107. 前記組成物が前記対象の血管系に投与される、段落83に記載の方法。
108. 前記組成物が前記腫瘍への直接注入によって前記対象に投与される、段落83に記載の方法。
109. 前記組成物が、前記合成修飾型RNA分子を含むかまたはそれで被覆されている埋め込み型装置を使用して前記対象に投与される、段落83に記載の方法。
110. 前記組成物がカテーテルによって前記対象に投与される、段落83に記載の方法。
111. 前記組成物が内視鏡を介して前記対象に投与される、段落83に記載の方法。
112. 前記組成物が、100ng/μlよりも高い濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落83に記載の方法。
113. 前記組成物が、1~25μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落83に記載の方法。
114. 前記組成物が、25μg/μlと50μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落83に記載の方法。
115. 前記化学療法剤が、ゲムシタビン、フルオロウラシル、カペシタビン、シプラスチン(ciplastin)、イリノテカン、オキサリプラチン、5-フルオロウラシル、フォリン酸、およびエルロチニブからなる群より選択される、段落83に記載の方法。
116. 以下の工程を含む、対象において腫瘍を治療するための方法:
該腫瘍においてヘッジホッグ(Hedgehog)シグナル伝達を増強するポリペプチドの発現を阻害する合成修飾型RNA分子を含む組成物を投与する工程であって、該合成修飾型RNA分子の該対象への投与によって、1つ以上の修飾を含まない該ポリペプチドをコードする合成RNA分子の投与と比較して自然免疫応答が低下するように、該合成修飾型RNA分子が該1つ以上の修飾を含み、かつ、ヘッジホッグシグナル伝達を増強する該ポリペプチドの発現の該合成修飾型RNA分子による阻害が該腫瘍と関連する線維形成性組織の量または増殖を低下させる、工程;および、
化学療法剤を該対象に投与する工程であって、該線維形成性組織の量または増殖の低下が該対象に投与される化学療法剤の効果を増大させ、それによって該腫瘍が治療される、工程。
117. 前記合成修飾型RNA分子がベクターにおいて発現しない、段落116に記載の方法。
118. 前記合成修飾型RNA分子を含む前記組成物が裸の合成修飾型RNA分子を含む、段落116に記載の方法。
119. 前記合成修飾型RNA分子を含む前記組成物が、脂質複合体中に存在する少なくとも1つの合成修飾型RNA分子を含む、段落116に記載の方法。
120. 前記合成修飾型RNA分子が少なくとも2つの修飾ヌクレオシドを含む、段落116に記載の方法。
121. 前記少なくとも2つの修飾ヌクレオシドが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2,7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される、段落120に記載の方法。
122. 前記合成修飾型RNA分子、その中で前記少なくとも2つの修飾ヌクレオシドが5-メチルシチジン(5mC)およびシュードウリジンである、段落120に記載の方法。
123. 前記合成修飾型RNA分子が5'キャップをさらに含む、段落116に記載の方法。
124. 前記合成修飾型RNA分子、その中で前記5'キャップが5'キャップ類似体である、段落123に記載の方法。
125. 前記5'キャップ類似体が5'グアノシンキャップである、段落123に記載の方法。
126. 前記合成修飾型RNA分子が5'三リン酸を含まない、段落116に記載の方法。
127. 前記合成修飾型RNA分子が、ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せをさらに含む、段落116に記載の方法。
128. 前記ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せが1つ以上の修飾ヌクレオシドを含む、段落127に記載の方法。
129. 前記1つ以上の修飾ヌクレオシドが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2,7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される、段落128に記載の方法。
130. 前記合成修飾型RNA分子がアルカリホスファターゼで処理される、段落116に記載の方法。
131. 前記対象が腺癌を患っている、段落116に記載の方法。
132. 前記対象が、線維形成性組織の層を有する腫瘍を含む癌を患っている、段落116に記載の方法。
133. 前記癌が膵管腺癌(PDAC)である、段落131に記載の方法。
134. 前記合成修飾型RNA分子が、ヘッジホッグ(Hh)、スムーズンド(Smoothened;Smo)、パッチド1(Patched 1;Ptc1)、およびGliからなる群より選択されるタンパク質をコードするmRNAのアンチセンス阻害剤である、段落116に記載の方法。
135. ヘッジホッグシグナル伝達を増強する前記ポリペプチドがヒトポリペプチドである、段落116に記載の方法。
136. 前記対象が哺乳類である、段落116に記載の方法。
137. 前記哺乳類がヒトである、段落136に記載の方法。
138. 前記組成物が静脈内投与経路または経腫瘍投与経路を介して投与される、段落116に記載の方法。
139. 前記組成物が前記対象の血管系に投与される、段落116に記載の方法。
140. 前記組成物が、前記腫瘍への直接注入によって前記対象に投与される、段落116に記載の方法。
141. 前記組成物が、前記合成修飾型RNA分子を含むかまたはそれで被覆されている埋め込み型装置を使用して前記対象に投与される、段落116に記載の方法。
142. 前記組成物がカテーテルによって前記対象に投与される、段落116に記載の方法。
143. 前記組成物が内視鏡を介して前記対象に投与される、段落116に記載の方法。
144. 前記組成物が、100ng/μlよりも高い濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落116に記載の方法。
145. 前記組成物が、1~25μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落116に記載の方法。
146. 前記組成物が、25μg/μlと50μg/μlの間の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、段落116に記載の方法。
147. 前記化学療法剤が、ゲムシタビン、フルオロウラシル、カペシタビン、シプラスチン(ciplastin)、イリノテカン、オキサリプラチン、5-フルオロウラシル、フォリン酸、およびエルロチニブからなる群より選択される、段落116に記載の方法。
ヒト胎児心筋細胞の単離
心臓を、300U/mlのコラゲナーゼII型および0.65mg/mlの細菌XXIV型プロテイナーゼを用いて5~10分間のみ37℃で(150rpmで振盪しながら)消化した。次いで、心臓を300U/mlのコラゲナーゼII型を用いて90分間37℃で(150rpmで振盪しながら)さらに消化し、15分の消化ごとに上清を回収してウシ新生児血清と混合し、その後4℃で2分間、30×gで遠心分離した。遠心分離後、上清を回収したが、これが「心臓線維芽細胞(Fb)」画分であり、ペレットが「心筋細胞(CM)」画分であった。
MOD-RNAを用いてインビボで標的組織中にタンパク質を発現させるため、発明者らはMOD-RNAを少なくとも25μg/μlまで濃縮した。MOD-RNAを濃縮するため、MOD-RNAを以下のとおり沈殿させた。
心臓への注射のため開心術を行い、筋肉と心臓の両方の注射のために、約100μlのMOD-RNAを各マウスの骨格筋内および/または心臓に注射した。MOD-RNAは送達ベヒクルとしてのリポフェクタミン(商標)と共に使用され、心臓内および骨格筋内に直接注入された。
筋肉細胞で発現するタンパク質をコードするMOD-RNA
図1A~3Bに示すように、発明者らは、マウス胎仔心筋細胞とヒト胎児心筋細胞におけるインビトロでの合成修飾型RNA(MOD-RNA)からのeGFPタンパク質の効率的な発現を実証する。発明者らは、心筋細胞が、形質移入された同一細胞内で、形質移入MOD-RNAから2つ以上のタンパク質を発現し得ることを実証する(データ不掲載)。
心臓および筋肉組織におけるインビボのMOD-RNAからのタンパク質発現
ルシフェラーゼタンパク質を発現するMOD-RNAをマウスの脚筋または心臓内に直接注入した少なくとも3時間後、マウスの筋肉と心臓で高レベルのインビボタンパク質発現が生物発光画像法により検出さた(データ不掲載)。インビボのタンパク質発現は約4~5日続いた(図5A)。
化学修飾型mRNAを介するインビボでの心臓始原細胞の細胞運命と再生の推進
背景
万能性心臓始原細胞のファミリーは、心発生の間、明白な心筋系列、血管平滑筋系列および内皮細胞系列の多様化および増殖を担う。細胞ベースの再生治療のためにこれら始原細胞の潜在能力を解明することは、規模の拡張可能性、移植、生存、拒絶反応および電気的結合に関わる難しさにより妨げられてきた。最近の研究により、ごく少数の出生後心臓始原細胞が、それらの再生、細胞運命および機能を制御する発生上の合図と共に、多能性幹細胞におけるインビトロ心発生およびクローン検定の間に特定されている。本物のインビボパラクリン因子が特定され、効率的、局所的かつ一過的な態様で送達され得るならば、パラクリン因子のインビボの心臓送達は、特定の血液細胞系列を選択的に増大させるエリスロポエチンとGM-CSFの既知の臨床用途に類似の、実行可能である代替的な治療ストラテジーとなり得る。
万能心臓始原細胞の細胞運命スイッチとして働き得るパラクリンシグナル候補を特定するため、発明者らは、ヒト胎児心臓においてパラクリン因子の一団を特定し、その後、それをWT-1+始原細胞プールを含む始原ISL1+始原細胞から血管系列への追跡を可能にする遺伝子操作されたヒトES細胞ベースのアッセイ系で試験した。VEGF-Aは、ヒト胎児心臓における最も豊富なアンジクリン(angicrine)因子であり(図9A)、独立した研究により、WT-1始原細胞の数を顕著に増加させ、次いでそれらを血管内皮系列に変換させるその能力が記述された。VEGF-A165を心臓にインビボ送達しての心血管形成誘発は当分野では既知であるが、裸のDNAプラスミド、組み換えタンパク質またはウイルスなどの異なる送達系を使用する多くの研究が、定常的なタンパク質発現および心筋細胞への低効率な形質移入、タンパク質の短い半減期、タンパク質に対する中和性抗体または抗ウイルス免疫応答の発生によってそれぞれ妨害されている。化学修飾型mRNA(modRNA)は、自然免疫シグナルおよびその結果としての顕著なインターフェロンとサイトカインの放出を回避することにより、体細胞における再プログラム化因子の発現に有効に使用され得る。現在まで、マウス新生児心筋細胞の最も効果的な非ウイルス性形質移入では約8%の形質移入効率が得られている。
インビトロ転写の鋳型の構築およびMODRNAの合成は先述されており、当業者には既知である。簡単に説明すると、ORF PCRはeGFP、mCherry、ルシフェラーゼ、CreおよびhVEGFAを有するプラスミドを鋳型とした。インビボの実験では、Xgalまたはβガラクトシダーゼの免疫染色後、CreをR26lacZマウスのhVEGF注射部位の標識に用いた。MODRNAを、3'-O-Me-m7G(5')ppp(5')G ARCAキャップ類似体、アデノシントリプトファンおよびグアノシトリホスフェート、5-メチルシチジントリホスフェートおよびプソイドウリジントリホスフェートの特注混合物とMEGAscript T7キット(Ambion(商標))を用いて合成し、Antarcticホスファターゼで処理して残基の5'三リン酸を除去した。MLC2v-YFPマウスおよびヒト胎児の心臓から単離した心筋細胞を単離してeGFP、mCherry、ルシフェラーゼまたはhVEGFA MODRNAをインビトロで形質移入した。RNAiMAX(Invitrogen(商標))とOpti-MEM(商標)培地を含有するベヒクルを用いてMODRNAの形質移入を行った。
IVT鋳型の構築とmodRNAの合成
インビトロ転写(IVT)鋳型構築物の生産およびその後のRNA合成が先述されている。オリゴヌクレオチド配列をIntegrated DNA Technologies(商標)(コーラルヴィル)により合成した。オープンリーディングフレーム(ORF)PCRはAddgene(商標)のeGFP、mCherry(商標)、ルシフェラーゼ、CreおよびヒトVEGF-Aを有するプラスミドを鋳型とした。PCR反応を、HiFi Hotstart(商標)(KAPA Biosystems(商標))を製造者の指示に従い用いて行った。スプリント介在性ライゲーションをAmpligase(商標)耐熱性DNAリガーゼ(Epicenter Biotechnologies(商標))を用いて実施した。UTR連結は200nMのUTRオリゴと100nMのスプリントオリゴの存在下で行った。全中間PCR産物および連結産物をQIAquick(商標)スピンカラム(Qiagen(商標))で精製してからさらに処理した。鋳型PCR単位複製配列をpcDNA 3.3-TOPO TAクローニングキット(商標)(Invitrogen(商標))を用いてサブクローニングした。プラスミド挿入断片は制限切断により切り出され、SizeSelect(商標)ゲル(Invitrogen(商標))を用いて回収された後にtail PCRの鋳型として使用された。RNAを、MEGAscript(商標)T7キット(Ambion(商標))と40mLの反応ごとに1.6mgの精製tail PCR産物を鋳型として用いて合成した。30-O-Me-m7G(50)ppp(50)G ARCAキャップ類似体(New England Biolabs(商標))、アデノシントリホスフェートおよびグアノシントリホスフェート(USB)、5-メチルシチジントリホスフェートおよびプソイドウリジントリホスフェート(TriLink Biotechnologies(商標))を含む特注のリボヌクレオシド混合物が使用された。ヌクレオチド反応の最終濃度は、キャップ類似体は6mM、グアノシントリホスフェートは1.5mM、他のヌクレオチドは7.5mMであった。RNAはAmbion(商標)MEGAclear(商標)スピンカラムを用いて精製し、次いでAntarcticホスファターゼ(New England Biolabs(商標))を用いて30分間37℃で処理して残基の50トリホスフェートを除去した。処理したRNAを再度精製し、Nanodrop(商標)(Thermo Scientific(商標))で定量化した。
modRNA形質移入をRNAiMAX(商標)(Invitrogen(商標))を用いて行った。初めに、modRNAと試薬をOpti-MEM(商標)基本培地(Invitrogen(商標))で希釈した。100ng/mLのmodRNAを希釈し、MODRNA 1マイクログラム当たり5mLのRNAiMAX(商標)を希釈し、これらの構成要素をプールしてから室温で15分インキュベートし、培地に分配した。MODRNA形質移入は、全てのインビトロの実験でOpti-MEM(商標)に2%FBSを加えた中で行い、全てのインビボの実験でOpti-MEM(商標)のみの中で行った。
MLC2v-YFPマウスが先述されている。マウス新生児およびヒト胎児の心臓を先述したようにコラゲナーゼII(Sigma(商標))により個々の細胞に分解した。心臓細胞は5%FBS、10%ウマ血清および1μg/mlのインスリンを含有するDMEM中で培養した。マウス成体の心臓はコラゲナーゼIV(Sigma(商標))を用いて消化し、心臓細胞を、10%FBSを含有する間葉系幹細胞成長培地(Lonza(商標))で培養した。これらの心臓細胞へのeGFP、mCherry(商標)、lucまたはhVEGF-A MODRNAの形質移入は、RNAiMAX(商標)(Invitrogen(商標))とOpti-MEM(商標)基本培地の混合物を含有するベヒクルを用いて実施した。翻訳されたhVEGF-Aタンパク質の分泌は、ELISA(R&D systems(商標))を用いて定量化した。hVEGF-A modRNA(1μg)を形質移入した全ての心臓細胞は内皮細胞と類似していたが、ベヒクル処置の心臓は内皮の運命を適用できなかった(データ不掲載)。心臓内皮遺伝子プロファイリングの対照として使用される心臓内皮増殖活性の高いヒト内皮細胞(OEC)(図9a)を先述のように生成した。
ベヒクル(RNAiMAX(商標)とopti-MEM(商標)基本培地の混合物)またはluc MODRNA(100μg/心臓)を野生型Balb/cマウス心臓の左心室に投与した。異なる時点(3~240時間)において注射マウスの生物発光画像を撮影した。Luc+細胞を可視化するため、ルシフェリン(150lg/g体重;Sigma(商標))を腹腔内注射(i.p.)した。10~20分後、マウスをキシラジン(20mg/ml)とケタミン(100mg/ml)で麻酔し、IVIS100(商標)電荷結合素子画像システムを用いて2分間撮像した。画像データを分析し、Living Image Software(商標)で定量化した。シグナル強度(細胞数を表す)が異なる色のスペクトルにより示された。予想どおり、Luc+細胞は、濃度および時間依存性の態様でluc MODRNAを注射した心臓で観察されたが(データ不掲載)、ベヒクルのみを注射した心臓ではシグナルは一切認められなかった(データ不掲載)。
Wt1eGFPCre/+マウスが先述されている。誘導型Wt1CreERT2/+::R26mTmGマウスは、先に示したように、Wt1CreERT2/+系とRosa26mTmGリポーターマウスとの交配およびジェノタイピングにより作製した。成体マウスを、2~3週間の間、週2回タモキシフェン(Tam)4mgを腹腔内注射(i.p.)する処置をしてCreを誘導した。Tam投与完了の1週間後、以下に記述のように左下行前動脈(LAD)冠動脈の結紮により心筋梗塞(MI)を誘導した。その後心臓は、FACS、免疫蛍光およびリアルタイムqPCR分析を組み合わせて7日後にeGFP発現と心筋マーカーを評価した。心外膜始原細胞の細胞運命切り替えの監視については、誘導型Wt1CreERT2/+::R26mTmGモデルに焦点を当て、Wt1-eGFP+誘導体の特異的時間的標識化を確認した。MIの存在または非存在下タモキシフェンでベヒクル処置されたマウスを対照として用いたが、重大なことに、eGFP+心筋細胞様細胞はこれらの心臓では一度も観察されなかった。
マウスを用いた外科的実験的手法は全てマサチューセッツ総合病院動物管理使用委員会が承認したプロトコルに従い実施した。イソフルランで麻酔した野生型C57Bl/6、Rosa26-LacZ、Wt1eGFPCre/+またはWt1CreERT2/+::R26mTmGマウス(6~8週齢)において恒久的LAD結紮によりMIを誘導した。心血管再生におけるhVEGF-A MODRNAの効果を決定するため、ベヒクルまたはhVEGF-A MODRNA(100μg/心臓)をLAD結紮直後の梗塞部に注射した。各実験には偽処置対照(心外膜は開いたが、LADは結紮しなかった)も含めた。心臓は結紮後7日目に回収した。心尖部付近の梗塞部は、新鮮凍結してRNAを単離してからリアルタイムqPCR試験に供したか、または4%PFA中に固定して凍結切片化し免疫染色分析に供した。
MI後ベヒクルまたはhVEGF-A MODRNAで処置したWt1eGFPCre/+またはWt1CreERT2/+::R26mTmGマウスから回収した心臓の尖部が前述したようにLAD結紮の7日後に回収され、コラゲナーゼII(Sigma(商標))を用いての酵素消化により処理され、単細胞浮遊液を得た。生存eGFP+細胞を、FACSAria II(商標)セルソーターを用いて488nmのレーザー光でeGFP(520/30nmチャネルで回収)を励起し、536nmのレーザー光でPI(610/620nmチャネルで回収)を励起して全心臓細胞集団から単離した。対照として、ベヒクルまたはhVEGF-A MODRNAで処置した無損傷のWt1eGFPCre/+またはWt1CreERT2/+::R26mTmGマウス由来の心臓も7日後に分析した。細胞をAPCが結合されたFlk-1抗体(BD Biosciences(商標))と共に4℃で30分インキュベートした後、PBS/2%FBSで3度洗ってハンクス液中に再懸濁した。細胞分別とフローサイトメトリー分析をFACSAria II(商標)セルソーターとFlowJo(商標)ソフトウェアを用いて行った。後述するように、eGFP+線維芽細胞、心筋細胞、平滑筋および内皮細胞を免疫染色および細胞数により評価した。
回収した心臓の尖部から、製造者の指示に従い、RNeasy(商標)ミニキット(Qiagen(商標))を使用して全RNAを単離し、Superscript III(商標)RT(Invitrogen(商標))を使用して逆転写した。リアルタイムqPCR分析をSYBR Green(商標)(Quantitect(商標) SYBR Green PCR Kit(商標)、Qiagen(商標))を用いてMastercycler realplex 4 Sequence Detector(商標)(Eppendorff(商標))で行った。データはGapdhとβアクチン発現に対し適宜正規化した(内在性対照)。遺伝子発現の倍率変化は22DDCT法により決定し、ベヒクル処置の心臓に対して提示した。相補的DNAのPCRプライマー配列を本明細書の表2に示す。eGFP+始原細胞を特徴づけるため、LAD結紮7日後にWt1eGFPCre/+またはWt1CreERT2/+::R26mTmGマウス由来のhVEGF-A MODRNA処置またはベヒクル処置の心臓をコラゲナーゼ消化した後FACSAria II(商標)セルソーターを用いてFACSで分別したeGFP+細胞から、全RNAを得た。
免疫染色を、マウス新生児および成体の心臓細胞培養物、ヒト胎児心臓細胞培養物、ならびに偽処置心臓、MI後ベヒクルまたはhVEGF MODRNAで処置された心臓の凍結切片に対し、以下の抗体を用いての標準プロトコルを使用して行った:心筋cTnT(NeoMarkers(商標))、心筋MHC、ビメンチン(R&D systems(商標))、βガラクトシダーゼ、コラーゲンI、心筋cTNI、CD31、CD144、vWF、SMMHC、Wt1およびKi67(Abcam(商標))ならびにFlk1(BD biosciences(商標))。抗eGFP抗体の特異性は、存在するとしてもほんの少数のeGFP+細胞を心外膜領域に有する偽処置心臓の免疫染色により確認された(これは系の「漏れやすさ」であり得る)。凍結切片は、毛細血管密度を決定するためイソレクチンB4(Vector Lab(商標))で免疫染色し、アポトーシスを検出するためTUNEL染色(Roche(商標))を、それぞれ製造者の指示に従い行った。線維症の度合いを調査するため、コラーゲン原繊維に特異結合するピクロシリウスレッド(picrosirius red)を用いて凍結切片を染色した。免疫染色画像の定量化をImageJ(商標)ソフトウェアで実施した。
野生型C57Bl/6、Rosa26-LacZ、Wt1eGFPCre/+またはWt1CreERT2/+::R26mTmGマウス(6~8週齢)をベヒクルまたはhVEGF-A MODRNAで処置し、LAD結紮後1日目と21日目にMRI評価に供した。梗塞巣のサイズは15~40%の範囲内であり、フォローアップMRI分析を同一マウスに対しMIの21日後に行い梗塞巣のサイズと心機能の経時的変化を決定した。マウスは1~2%のイソフルラン/空気の混合物で麻酔した。心電図(EKG)プローブ、呼吸プローブおよび体温プローブを加温パッド上で保温されているマウスに載置した。画像は4.7T Bruker Biospec(商標)で得た。心臓尖部から底部までに及ぶ短軸断層のスタックおよび直交長軸断層を心電図(ECG)トリガー呼吸同期Flash-CINEシーケンスで、以下のパラメータを用いて得た:繰り返し時間(TR)25ミリ秒、エコー時間(TE)2.8ミリ秒、積算回数4、スライス厚1mm、マトリックスサイズ192×192(2.56×2.56cm)、5~7フレーム/シーケンス(RRインターバルによる)。その結果、1スライス当たりの収集時間は約5分であった。左心室心尖部から心底部にわたり5枚の短軸スライスが得られた。左心室(LV)駆出率は、拡張期LV体積で除算した、心臓拡張期LV体積と心臓収縮期LV体積の差として求めた。CINE-MRIの獲得と分析は処置群を盲検化して行った。
特に断らない限り、統計学的有意差はスチューデントt検定でp<0.05を有意とし決定した。数値は平均値±平均値の標準誤差として報告された。箱ひげ図においては、箱とバーは25、50および75パーセンタイルを、ひげは極値をそれぞれ表す。
ウサギにおけるhVEGF-A modRNAに基づいた心臓再生治療ストラテジーの臨床前試験
ウサギを用いる実験によって、臨床前試験を容易にするためのModRNAの中間動物モデル(ウサギ)を構築し得る。ModRNA導入の安全性を最適化し、心外膜表面にModRNAを送達する代替法(心筋への注射を必要としないヒドロゲルまたは他の生体高分子であり、それ故、ModRNAの全身的導入のリスクを軽減する)を評価するための実験も実施され得る。実験では、hVEGF-A ModRNAが急性MI同様、慢性MIの治療にも使用可能かどうか評価することができる。
MIは、前室間動脈の中間部の結紮により実施され得る。hVEGF-AとLacZの同時形質移入を、MIが計画されたときに実行され得る。持続性のLacZ発現により標識される細胞は、こうしてVEGF ModRNAが注射された細胞(注射またはゲルの表面添加の両方が使用可能)を標識することができる。MI後、処置した(modRNAの注射およびゲルによる導入の両方についての)心臓組織の以下の遺伝子のRT-PCRを行った(MIなしの開胸術/心膜切除対照と比較):Wt1、Tbxl8、Nkx2.5、Isl1、TnT、PECAM、ビメンチン、smMHCおよびFlk1。心筋断面染色により、分化して心外膜表面から心筋へと移動する心外膜Wt1細胞の間接的な運命マッピングとしてWt1/LacZ/Ki67の同時局在を評価できる。心筋断面染色により、毛細血管密度(PECAM)、線維芽細胞密度(ビメンチン)、心筋細胞、および細胞死(TUNEL)を評価することができる。トリクローム染色した処置心臓および未処置心臓の短軸断面画像により、処置心臓(2つの処置法)対未処置心臓の瘢痕量を評価することができる。心臓MR画像法は、MI後の心臓の収縮機能に対するModRNA処置の効果を評価するために処置および未処置の動物において実施することもできる。
プログラムされた心筋梗塞は、Wt1遺伝子座の対立遺伝子の1つにGFPが存在する遺伝子改変マウスにおいて引き起こすことができる。梗塞を起こさせた動物は、Wt1細胞活性化の経時変化を決定するために(FACS)、8週間まで毎週安楽死させることができる。同じマウス系列の第2組に梗塞を引き起こし、(先述のとおり、MIと同時の処置に対し)MI後に一連のインターバルでhVEGF-A ModRNA処置を行うことができる。VEGF ModRNA処置は、MI後1週間の間隔で8週間まで、または本明細書において先述したように瘢痕量の免疫組織化学的評価で評価した場合に影響が認められなくなるまで、異なる動物において実施することができる。左心室駆出率も、心臓の核磁気共鳴画像法により評価することができる。mod-RNAを投与されていない負の対照は、現在未知のパラメータであるが、Wt1発現細胞のMI後の増殖持続期間の評価を提供することができる。これらの分析により、MIの1週間後に観察された結果がどの程度持続性があるか、何らかの退行が生じるか否かを評価できる。理論により制限されることを望むものではないが、複数の処置が必要であり得る。亜急性梗塞巣または慢性の梗塞巣がhVEGF-A mod-RNAで有効に治療されるかどうかを決定するために、hVEGF-A mod-RNAをMIの後に(1~8週間まで、1週間ごとの増分)投与することができる。Wt1+細胞刺激とその後の瘢痕サイズに及ぼす効果の大きさは本明細書において上述したように評価することができる。マウスで治療機会域が定義されると、同じ実験をウサギで繰り返すことができる。
hVEGF-Aの化学修飾型mRNAの局所的送達による膵臓腺癌薬治療の強化および腫瘍増殖にかかわる他の要因
膵管腺癌(PDAC)関連の致死率は初診から5年以内で95%である。ゲムシタビンなどの細胞傷害性化学療法剤はインビトロでは腺癌に非常に有効であるが、臨床現場ではその効果は限定的である。この最適以下の応答は、多くの腫瘍において腺癌細胞を取り囲む間質細胞からなる線維形成層をこのような作用物質が通過不能であることに付随して起こる疑いがある1,2。この間質細胞塊は腫瘍により増殖し個体の腫瘍塊の80%を構成し得るのだが、その存在は化学療法に対する臨床反応不良と相関がある3。進行型PDACの代替的な治療ストラテジー、特に腫瘍への血液供給量を減らすVEGF阻害剤の使用も臨床現場では成功しなかった4~7。したがって、細胞傷害性化学療法剤の効果を増強するこの線維形成層の透過性上昇および/または縮小が膵臓腺癌治療の新規補助となり得る1,2。VEGF阻害に成功していないので、VEGFの局所的送達が、単独または既存の細胞傷害性化学療法剤との併用で、PDACの増殖阻害の新規パラダイムになることがあり得る。他のいくつかの分子標的、特にヘッジホッグ(Hh)をPDAC線維形成の低下のために活用することができるが、そのヘッジホッグは、PDAC腫瘍と関連のある線維形成組織の増殖の中心であることが示されている8。Hhリガンド依存性シグナル伝達の阻害は、膵管癌の増殖を阻害する有望なストラテジーである1,9。いくつかのHhリガンドが標的とされており、これにはHgの結合パートナーであるスムーズンド(Smo)とパッチド1(Ptc1)が含まれる8,10。下流エフェクター、特にGliも標的とされている11,12。機序としては有望であるが、全身送達薬剤を用いるVEGFおよびHh関連因子の標的化は、有害な副作用が懸念され困難である。
化学修飾型RNAを用いてLacZおよびルシフェラーゼをマウス膵臓においてインビボで発現させることができる。この手法は外転および修飾型RNAの組織への直接注入と共に膵臓の外科的露出を含み得る。発現を達成する最適用量が評価され得る。
実行可能性は、VEGF-A修飾型RNAのインビボ注射により決定され得る。用量は、この実施例で上述した実験結果により決定され得る。タンパク質発現は、注射から48時間以内に免疫組織化学法を使用して測定され得る。
膵臓腫瘍および周辺組織へのVEGF-Aインビボ注射の影響は、注射後の複数時点(1、2および3週間)で組織学的分析による腫瘍組織診断(血管新生、腫瘍サイズ、線維形成性被膜)により決定され得る。
参照文献は、ここに、それらの全体の参照によりそれぞれ本明細書に組み込まれる。
Claims (12)
- 心臓虚血の状態を有する対象における、心臓性組織における心臓線維症の軽減における使用のための、VEGFポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子であって、VEGFポリペプチドがヒトVEGF-Aポリペプチド(hVEGF-A)であり、少なくとも5-メチルシチジン(5mC)およびシュードウリジンを含む、前記合成修飾型RNA分子。
- VEGFポリペプチドをコードする合成修飾型RNA分子の対象への投与によって、VEGFポリペプチドをコードする非修飾型合成RNA分子の投与と比較して自然免疫応答が低下する、請求項1記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 虚血の状態が、うっ血性心不全、心筋症、心筋梗塞、組織虚血、アテローム性硬化症、構造的心疾患、冠動脈疾患、心筋虚血、感染性心筋炎、薬物または毒素誘導性の筋異常、先天性心臓疾患、冠動脈機能不全、冠動脈樹機能不全および冠動脈側副血行路形成から選択される疾患または障害によって引き起こされる、請求項1又は2記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- i) 合成修飾型RNA分子が、ベクターにおいて発現しない、および/または、
ii) 合成修飾型RNA分子が、裸の合成修飾型RNA分子を含む、および/または、
iii) 合成修飾型RNA分子が、脂質複合体中に存在する、
請求項1~3のいずれか一項記載の使用のための合成修飾型RNA分子。 - 合成修飾型RNA分子が5'キャップをさらに含み、好ましくは該5'キャップは5'キャップ類似体であり、好ましくは該5'キャップ類似体は5'ジグアノシンキャップである、請求項1~4のいずれか一項記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 合成修飾型RNA分子が5'三リン酸を含まない、請求項1~5のいずれか一項記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 合成修飾型RNA分子が、ポリ(A)テール、コザック配列、3'非翻訳領域、5'非翻訳領域、またはそれらの任意の組合せをさらに含み、好ましくは該ポリ(A)テール、該コザック配列、該3'非翻訳領域、該5'非翻訳領域、または該それらの任意の組合せが、5-メチルシチジン(5mC)、N6-メチルアデノシン(m6A)、3,2'-O-ジメチルウリジン(m4U)、2-チオウリジン(s2U)、2'フルオロウリジン、シュードウリジン、2'-O-メチルウリジン(Um)、2'デオキシウリジン(2'dU)、4-チオウリジン(s4U)、5-メチルウリジン(m5U)、2'-O-メチルアデノシン(m6A)、N6,2'-O-ジメチルアデノシン(m6Am)、N6,N6,2'-O-トリメチルアデノシン(m62Am)、2'-O-メチルシチジン(Cm)、7-メチルグアノシン(m7G)、2'-O-メチルグアノシン(Gm)、N2,7-ジメチルグアノシン(m2、7G)、N2,N2,7-トリメチルグアノシン(m2,2,7G)、およびイノシン(I)からなる群より選択される1つまたは複数の修飾ヌクレオシドを含む、請求項1~6のいずれか一項記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 合成修飾型RNA分子が標的化タンパク質にVEGFが融合されている融合タンパク質をコードし、好ましくは合成修飾型RNA分子はVEGF-vWF融合タンパク質をコードする、請求項1~7のいずれか一項記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 合成修飾型RNA分子が、被験体に、合成修飾型RNA分子を含むまたは合成修飾型RNA分子で被覆される埋め込み型装置、カテーテルまたは内視鏡を介して心臓への直接注入によって投与される、請求項1~8のいずれか一項記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 埋め込み型装置がステントまたは移植可能薬物送達ポンプである、請求項9記載の使用のための合成修飾型RNA分子。
- 請求項1~10のいずれか一項記載の合成修飾型RNA分子を含む、心臓虚血の状態を有する対象における、心臓性組織における心臓線維症の軽減における使用のための組成物。
- 組成物が、
i)100ng/μlよりも高い、又は
ii) 1~25μg/μlの間、又は
iii) 25μg/μlと50μg/μlの間
の濃度の合成修飾型RNA分子を含む、請求項11記載の使用のための組成物。
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