JP6921750B2 - ペプチドミニ遺伝子発現系を含むリステリアベースの組成物およびその使用方法 - Google Patents
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Description
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドは、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列される。
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドは、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列され、それによって前記被験者での抗腫瘍応答が強化される。
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列され、それによって前記被験者での抗腫瘍応答が強化される。
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドは、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列される。
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列され、これによって前記被験者の中の抗腫瘍応答を強化する。
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列され、これによって前記被験者の中の抗腫瘍応答を強化する。
一実施形態では、キメラタンパク質をコードする核酸構築体を含む組み換え型弱毒化リステリア株が本明細書に開示される。別の実施形態では、核酸構築体は組み換え型核酸構築体である。別の実施形態では、細菌分泌シグナル配列(SS)、ユビキチン(Ub)タンパク質、およびペプチド配列をコードするオープンリーディングフレームを含む組み換え型核酸構築体を含む組み換え型弱毒化リステリア株が本明細書に開示される。別の実施形態では、核酸構築体は、細菌分泌シグナル配列、ユビキチンタンパク質、およびペプチド配列を含むキメラタンパク質をコードする。一実施形態では、キメラタンパク質は以下の様式(SS−Ub−ペプチド)で配列される。
MGLNRFMRAMMVVFITANCITINPDIIFAATDSEDSSLNTDEWEEEKTEEQPSEVNTGPRYETAREVSSRDIKELEKSNKVRNTNKADLIAMLKEKAEKGPNINNNNSEQTENAAINEEASGADRPAIQVERRHPGLPSDSAAEIKKRRKAIASSDSELESLTYPDKPTKVNKKKVAKESVADASESDLDSSMQSADESSPQPLKANQQPFFPKVFKKIKDAGKWVRDKIDENPEVKKAIVDKSAGLIDQLLTKKKSEEVNASDFPPPPTDEELRLALPETPMLLGFNAPATSEPSSFEFPPPPTDEELRLALPETPMLLGFNAPATSEPSSFEFPPPPTEDELEIIRETASSLDSSFTRGDLASLRNAINRHSQNFSDFPPIPTEEELNGRGGRPTSEEFSSLNSGDFTDDENSETTEEEIDRLADLRDRGTGKHSRNAGFLPLNPFASSPVPSLSPKVSKISDRALISDITKKTPFKNPSQPLNVFNKKTTTKTVTKKPTPVKTAPKLAELPATKPQETVLRENKTPFIEKQAETNKQSINMPSLPVIQKEATESDKEEMKPQTEEKMVEESESANNANGKNRSAGIEEGKLIAKSAEDEKAKEEPGNHTTLILAMLAIGVFSLGAFIKIIQLRKNN(配列番号:5)。別の実施形態では、ActAタンパク質は配列番号:5から成る。この配列に対応するプロタンパク質の最初の29個のAAはシグナル配列であり、細菌によって分泌されるときにActAタンパク質から分割される。一実施形態では、ActAポリペプチドまたはペプチドは、シグナル配列、上記の配列番号:5のAA1〜29を含む。別の実施形態では、ActAポリペプチドまたはペプチドは、シグナル配列、上記の配列番号:5のAA1〜29を含まない。
Atgcgtgcgatgatggtggttttcattactgccaattgcattacgattaaccccgacataatatttgcagcgacagatagcgaagattctagtctaaacacagatgaatgggaagaagaaaaaacagaagagcaaccaagcgaggtaaatacgggaccaagatacgaaactgcacgtgaagtaagttcacgtgatattaaagaactagaaaaatcgaataaagtgagaaatacgaacaaagcagacctaatagcaatgttgaaagaaaaagcagaaaaaggtccaaatatcaataataacaacagtgaacaaactgagaatgcggctataaatgaagaggcttcaggagccgaccgaccagctatacaagtggagcgtcgtcatccaggattgccatcggatagcgcagcggaaattaaaaaaagaaggaaagccatagcatcatcggatagtgagcttgaaagccttacttatccggataaaccaacaaaagtaaataagaaaaaagtggcgaaagagtcagttgcggatgcttctgaaagtgacttagattctagcatgcagtcagcagatgagtcttcaccacaacctttaaaagcaaaccaacaaccatttttccctaaagtatttaaaaaaataaaagatgcggggaaatgggtacgtgataaaatcgacgaaaatcctgaagtaaagaaagcgattgttgataaaagtgcagggttaattgaccaattattaaccaaaaagaaaagtgaagaggtaaatgcttcggacttcccgccaccacctacggatgaagagttaagacttgctttgccagagacaccaatgcttcttggttttaatgctcctgctacatcagaaccgagctcattcgaatttccaccaccacctacggatgaagagttaagacttgctttgccagagacgccaatgcttcttggttttaatgctcctgctacatcggaaccgagctcgttcgaatttccaccgcctccaacagaagatgaactagaaatcatccgggaaacagcatcctcgctagattctagttttacaagaggggatttagctagtttgagaaatgctattaatcgccatagtcaaaatttctctgatttcccaccaatcccaacagaagaagagttgaacgggagaggcggtagacca(配列番号:6)。別の実施形態では、組み換え型ヌクレオチドは配列番号:6に示される配列を有する。別の実施形態では、組み換え型ヌクレオチドは、ActAタンパク質の断片をコードする任意の他の配列を含む。
MRAMMVVFITANCITINPDIIFAATDSEDSSLNTDEWEEEKTEEQPSEVNTGPRYETAREVSSRDIKELEKSNKVRNTNKADLIAMLKEKAEKGPNINNNNSEQTENAAINEEASGADRPAIQVERRHPGLPSDSAAEIKKRRKAIASSDSELESLTYPDKPTKVNKKKVAKESVADASESDLDSSMQSADESSPQPLKANQQPFFPKVFKKIKDAGKWVRDKIDENPEVKKAIVDKSAGLIDQLLTKKKSEEVNASDFPPPPTDEELRLALPETPMLLGFNAPATSEPSSFEFPPPPTDEELRLALPETPMLLGFNAPATSEPSSFEFPPPPTEDELEIIRETASSLDSSFTRGDLASLRNAINRHSQNFSDFPPIPTEEELNGRGGRP(配列番号:8)。別の実施形態では、ActA断片は配列番号:8に示される配列を含む。
MRAMMVVFITANCITINPDIIFAATDSEDSSLNTDEWEEEKTEEQPSEVNTGPRYETAREVSSRDIKELEKSNKVRNTNKADLIAMLKEKAEKGPNINNNNSEQTENAAINEEASGADRPAIQVERRHPGLPSDSAAEIKKRRKAIASSDSELESLTYPDKPTKVNKKKVAKESVADASESDLDSSMQSADESSPQPLKANQQPFFPKVFKKIKDAGKWVRDKIDENPEVKKAIVDKSAGLIDQLLTKKKSEEVNASDFPPPPTDEELRLALPETPMLLGFNAPATSEPSSFEFPPPPTDEELRLALPETPMLLGFNAPATSEPSSFEFPPPPTEDELEIIRETASSLDSSFTRGDLASLRNAINRHSQNFSDFPPIPTEEELNGRGGRP (配列番号:10)。
MGLNRFMRAMMVVFITANCITINPDIIFAATDSEDSSLNTDEWEEEKTEEQPSE
VNTGPRYETAREVSSRDIKELEKSNKVRNTNKADLIAMLKEKAEKG(配列番号:11)。
A T D S E D S S L N T D E W E E E K T E E Q P S E V N T G P R Y E T A R E V S S R D I E E L E K S N K V K N T N K A D L I A M L K A K A E K G P N N N N N N G E Q T G N V A I N E E A S G (配列番号:12)。別の実施形態では、配列番号:12に示される切断ActAはActA/PEST1と呼ばれる。別の実施形態では、切断ActAは、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸122までを含む。別の実施形態では、配列番号:12は、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸122までを含む。別の実施形態では、切断ActAは、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸122までを含む。別の実施形態では、配列番号:12は、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸122までを含む。
M R A M M V V F I T A N C I T I N P D I I F A A T D S E D S S L N T D E W E E E K T E E Q P S E V N T G P R Y E T A R E V S S R D I E E L E K S N K V K N T N K A D L I A M L K A K A E K G P N N N N N N G E Q T G N V A I N E E A S G V D R P T L Q V (配列番号:13)。別の実施形態では、配列番号:12に示される切断ActAはActA/PEST1と呼ばれる。別の実施形態では、切断ActAは、最初の1個から完全長のActA配列のアミノ酸130までを含む。別の実施形態では、配列番号:13は、最初の1個から完全長のActA配列のアミノ酸130までを含む。別の実施形態では、切断ActAは、最初の1個から配列番号:7のアミノ酸130までを含む。別の実施形態では、配列番号:13は、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸122までを含む。
A T D S E D S S L N T D E W E E E K T E E Q P S E V N T G P R Y E T A R E V S S R D I E E L E K S N K V K N T N K A D L I A M L K A K A E K G P N N N N N N G E Q T G N V A I N E E A S G V D R P T L Q V (配列番号:14)。別の実施形態では、配列番号:14に示される切断ActAはActA/PEST1と呼ばれる。別の実施形態では、切断ActAは、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸122までを含む。別の実施形態では、配列番号:14は、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸122までを含む。別の実施形態では、切断ActAは、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸122までを含む。別の実施形態では、配列番号:14は、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸122までを含む。
A T D S E D S S L N T D E W E E E K T E E Q P S E V N T G P R Y E T A R E V S S R D I E E L E K S N K V K N T N K A D L I A M L K A K A E K G P N N N N N N G E Q T G N V A I N E E A S G V D R P T L Q V E R R H P G L S S D S A A E I K K R R K A I A S S D S E L E S L T Y P D K P T K A N K R K V A K E S V V D A S E S D L D S S M Q S A D E S T P Q P L K A N Q K P F F P K V F K K I K D A G K W V R D K (配列番号:15)。別の実施形態では、配列番号:15に示される切断ActAはActA/PEST2と呼ばれる。別の実施形態では、切断ActAは、完全長のActA配列のアミノ酸30からアミノ酸229までを含む。別の実施形態では、配列番号:15は、完全長のActA配列のおよそアミノ酸30からおよそアミノ酸229までを含む。別の実施形態では、切断ActAは、配列番号:7のおよそアミノ酸30からおよそアミノ酸229までを含む。別の実施形態では、配列番号:15は、配列番号:7のアミノ酸30からアミノ酸229までを含む。
A T D S E D S S L N T D E W E E E K T E E Q P S E V N T G P R Y E T A R E V S S R D I E E L E K S N K V K N T N K A D L I A M L K A K A E K G P N N N N N N G E Q T G N V A I N E E A S G V D R P T L Q V E R R H P G L S S D S A A E I K K R R K A I A S S D S E L E S L T Y P D K P T K A N K R K V A K E S V V D A S E S D L D S S M Q S A D E S T P Q P L K A N Q K P F F P K V F K K I K D A G K W V R D K I D E N P E V K K A I V D K S A G L I D Q L L T K K K S E E V N A S D F P P P P T D E E L R L A L P E T P M L L G F N A P T P S E P S S F E F P P P P T D E E L R L A L P E T P M L L G F N A P A T S E P S S (配列番号:16)。別の実施形態では、配列番号:16に示される切断ActAはActA/PEST3と呼ばれる。別の実施形態では、この切断ActAは、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸332までを含む。別の実施形態では、配列番号:16は、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸332までを含む。別の実施形態では、切断ActAは、およそ最初の30個から配列番号:7のアミノ酸332までを含む。別の実施形態では、配列番号:16は、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸332までを含む。
A T D S E D S S L N T D E W E E E K T E E Q P S E V N T G P R Y E T A R E V S S R D I E E L E K S N K V K N T N K A D L I A M L K A K A E K G P N N N N N N G E Q T G N V A I N E E A S G V D R P T L Q V E R R H P G L S S D S A A E I K K R R K A I A S S D S E L E S L T Y P D K P T K A N K R K V A K E S V V D A S E S D L D S S M Q S A D E S T P Q P L K A N Q K P F F P K V F K K I K D A G K W V R D K I D E N P E V K K A I V D K S A G L I D Q L L T K K K S E E V N A S D F P P P P T D E E L R L A L P E T P M L L G F N A P T P S E P S S F E F P P P P T D E E L R L A L P E T P M L L G F N A P A T S E P S S F E F P P P P T E D E L E I M R E T A P S L D S S F T S G D L A S L R S A I N R H S E N F S D F P L I P T E E E L N G R G G R P T S E (配列番号:17)。別の実施形態では、配列番号:17に示される切断ActAはActA/PEST4と呼ばれる。別の実施形態では、この切断ActAは、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸399までを含む。別の実施形態では、配列番号:25は、最初の30個から完全長のActA配列のアミノ酸399までを含む。別の実施形態では、切断ActAは、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸399までを含む。別の実施形態では、配列番号:17は、最初の30個から配列番号:7のアミノ酸399までを含む。
atgcgtgcgatgatggtggttttcattactgccaattgcattacgattaaccccgacataatatttgcagcgacagatagcgaagattctagtctaaacacagatgaatgggaagaagaaaaaacagaagagcaaccaagcgaggtaaatacgggaccaagatacgaaactgcacgtgaagtaagttcacgtgatattaaagaactagaaaaatcgaataaagtgagaaatacgaacaaagcagacctaatagcaatgttgaaagaaaaagcagaaaaaggtccaaatatcaataataacaacagtgaacaaactgagaatgcggctataaatgaagaggcttcaggagccgaccgaccagctatacaagtggagcgtcgtcatccaggattgccatcggatagcgcagcggaaattaaaaaaagaaggaaagccatagcatcatcggatagtgagcttgaaagccttacttatccggataaaccaacaaaagtaaataagaaaaaagtggcgaaagagtcagttgcggatgcttctgaaagtgacttagattctagcatgcagtcagcagatgagtcttcaccacaacctttaaaagcaaaccaacaaccatttttccctaaagtatttaaaaaaataaaagatgcggggaaatgggtacgtgataaaatcgacgaaaatcctgaagtaaagaaagcgattgttgataaaagtgcagggttaattgaccaattattaaccaaaaagaaaagtgaagaggtaaatgcttcggacttcccgccaccacctacggatgaagagttaagacttgctttgccagagacaccaatgcttcttggttttaatgctcctgctacatcagaaccgagctcattcgaatttccaccaccacctacggatgaagagttaagacttgctttgccagagacgccaatgcttcttggttttaatgctcctgctacatcggaaccgagctcgttcgaatttccaccgcctccaacagaagatgaactagaaatcatccgggaaacagcatcctcgctagattctagttttacaagaggggatttagctagtttgagaaatgctattaatcgccatagtcaaaatttctctgatttcccaccaatcccaacagaagaagagttgaacgggagaggcggtagacca(配列番号:20)。
別の実施形態では、本明細書に開示されるキメラタンパク質をコードするミニ遺伝子核酸構築体を含む組み換え型リステリアを含む医薬組成物が本明細書に開示され、ガンを含む疾患を有する被験者に医薬組成物を投与することは、前記疾患または前記ガンを処置、軽快する。別の実施形態では、本明細書は、本明細書に開示されるキメラタンパク質をコードするミニ遺伝子核酸構築体を含む医薬組成物を開示する。別の実施形態では、医薬組成物はアジュバントとともに投与される。
「抗原」、「抗原性ポリペプチド」、「抗原断片」という用語は本明細書で交換可能に使用され、また宿主の細胞の表面上でMHCクラスIおよび/またはクラスII分子上に負荷および提示され、かつ宿主の免疫細胞によって識別または検出することができるポリペプチドまたはペプチド(組み換え型ペプチドを含む)を包含する場合があり、これによってポリペプチド、ペプチドまたはこれを提示する細胞に対する免疫応答の搭載をもたらすことを当業者は理解するであろう。同様に、免疫応答は、宿主の中の同一のポリペプチドまたはペプチドを発現する腫瘍またはガン細胞などの病的な細胞を含む他の細胞にも延長される場合がある。
別の実施形態では、本開示は上述のように、腫瘍またはガンを含む疾患または症状を処置するために免疫原性組成物を提供する。例えば、本開示の方法で使用される免疫原性組成物は、本明細書に記載するようにミニ遺伝子核酸構築体を発現するリステリア株を含む。
別の実施形態では、非経口的に、ガン近傍に、経粘膜的に、経皮的に、筋肉内に、静脈内に、皮内に、皮下に、経口で、腹腔内に、脳室内に、頭蓋内に、腟内に、または腫瘍内になどの当業者に既知の任意の方法によって、本開示のワクチン、免疫原性組成物、または組み換え型リステリアを含有する医薬組成物を被験者に投与する。
(実施例1) LLO−抗原融合が抗腫瘍免疫性を誘発
C57BL/6同系TC−1腫瘍をHPV−16 E6およびE7で不死化し、c−Ha−rasガン遺伝子で形質転換した。T.C.Wu(Johns Hopkins University School of Medicine、米国メリーランド州Baltimore)によって提供されたTC−1は、HPV−16 E6 および E7で低いレベルを発現する腫瘍形成性の高い肺上皮細胞であり、またc−Ha−rasガン遺伝子で形質転換される。TC−1を、RPMI 1640、10%のFCS、2mMのL−グルタミン、100U/mLのペニシリン、100μg/mLのストレプトマイシン、100μMの非必須アミノ酸、1mMのピルビン酸ナトリウム、50マイクロモル(mcM)の2−ME、400マイクログラム(mcg)/mLのG418、および10%のナショナルコレクションタイプ培養液−109培地中、37°で、10%のCO2を用いて成長させた。C3は、HPV 16の完全ゲノムで不死化し、pEJ−rasで形質転換されたC57BL/6マウスからのマウスの胎芽細胞である。EL−4/E7は、E7を用いてレトロウイルスによって形質導入した胸腺腫EL−4である。
使用されたリステリア株は、Lm−LLO−E7(エピソームの発現系内のhly−E7融合遺伝子、図1A)、Lm−E7(リステリアゲノムへと組込まれる単一コピーE7遺伝子カセット)、Lm−LLO−NP(「DP−L2028」、エピソーム発現系内のhly−NP融合遺伝子)、およびLm−Gag(「ZY−18」、染色体へと組込まれる単一コピーHIV−1Gag遺伝子カセット)である。E7を、プライマー5’−GGCTCGAGCATGGAGATACACC−3’(配列番号:21、XhoI部位は下線付き)および5’−GGGGACTAGTTTATGGTTTCTGAGAACA−3’(配列番号:21、SpeI部位は下線付き)を使用してPCRによって増幅し、pCR2.1(Invitrogen米国カリフォルニア州San Diego)へと連結させた。pCR2.1をXhoI/SpeIによって消化してE7を切り離してpGG−55へと連結した。このhly−E7融合遺伝子および多能性の転写因子prfAをマルチコピーシャトルプラスミド(Wirth R et al、J Bacteriol、165:831,1986)であるpAM401へとクローニングし、pGG−55を生成した。hlyプロモーターはhly遺伝子産物(以下に「ΔLLO」と称される溶血性のC末端を欠いている)の最初の441 AAの発現を駆動し、これはXhoI部位によってE7遺伝子に連結され、hly−E7融合遺伝子を生じ、これは転写されてLLO−E7として分泌される。リステリアのprfA陰性株、XFL−7(ペンシルバニア大学のDr.Hao Shenによって提供された)のpGG−55を用いた形質転換が、インビボでのプラスミドの保持に対して選択された(図1A〜図1B)。hlyプロモーターおよび遺伝子断片は、プライマー5’−GGGGGCTAGCCCTCCTTTGATTAGTATATTC−3’(配列番号:23、NheI部位は下線付き)、および5’−CTCCCTCGAGATCATAATTTACTTCATC−3’(配列番号:24、XhoI部位は下線付き)を用いて作成した。prfA遺伝子は、プライマー5’−GACTACAAGGACGATGACCGACAAGTGATAACCCGGGATCTAAATAAATCCGTTT−3’(配列番号:25、XbaI部位は下線付き)、および5’−CCCGTCGACCAGCTCTTCTTGGTGAAG−3’(配列番号:26、SalI部位は下線付き)を用いてPCR増幅した。Lm−E7は、hlyプロモーターと、E7の発現および分泌を駆動するシグナル配列とを含有する発現カセットを、LMゲノムのorfZドメインへと導入することによって生成した。E7をプライマー5’−GCGGATCCCATGGAGATACACCTAC−3’(配列番号:27、BamHI部位は下線付き)および5’−GCTCTAGATTATGGTTTCTGAG−3’(配列番号:28、XbaI部位は下線付き)を使用してPCR増幅した。次いでE7をpZY−21シャトルベクターへと連結させた。LM株10403Sを、結果として得られるプラスミドpZY−21−E7を用いて形質転換したが、このプラスミドはLMゲノムのorfX、Y、Zドメインに対応する1.6kb配列の中央に挿入された発現カセットを含む。相同性ドメインは、相同的組み換えによるE7遺伝子カセットのorfZドメインへの挿入を可能にする。クローンを、E7遺伝子カセットのorfZドメインへの組込みについてスクリーニングした。細菌をブレインハートインフュージョン培地中で、クロラムフェニコール(20μg/mL)を用いて(Lm−LLO−E7およびLm−LLO−NP)、または用いないで(Lm−E7およびZY−18)、成長させた。細菌は、アリコートで−80℃にて凍結させた。ウエスタンブロット法によって発現を検証した(図2)。
リステリア株をルリア−ベルターニ培地内で37℃にて増殖させ、600nmで測定された同一の光学濃度にて採取した。上清をTCA沈殿させ、0.1NのNaOHを補充した1×サンプルバッファー中で再懸濁した。同一量の各々の細胞ペレットまたは各々のTCA沈殿させた上清を、4〜20%のトリスグリシンSDS−PAGEゲル(NOVEX、米国カリフォルニア州San Diego)上に負荷した。ゲルを二フッ化ポリビニリデンに移し、抗E7モノクローナル抗体(mAb)(Zymed Laboratories、米国カリフォルニア州South San Francisco)でプローブし、次いでHRP−結合抗マウス二次Ab(Amersham Pharmacia Biotech、英国Little Chalfont)でインキュベートし、Amersham ECL検出試薬で顕色し、Hyperfilm(Amersham Pharmacia Biotech)に露光させた。
1日おきに表面の最短径及び最長径にキャリパーをわたして腫瘍を測定した。これら2つの測定値の平均を平均腫瘍径としてミリメートルの単位で様々な時点に対してプロットした。腫瘍径が20mmに達したとき、マウスを犠牲にした。各々の時点に対する腫瘍の測定値は、生きているマウスに対してのみ示されている。
生後6〜8週目のC57BL/6マウス(Charles River)が2×105TC−1細胞を左脇腹の皮下に投与された。腫瘍接種の一週間後、腫瘍は直径4〜5mmの触知可能なサイズに達した。次いで8匹のマウスの群が、7日目および14日目に、0.1LD50腹腔内で、Lm−LLO−E7(107CFU)、Lm−E7(106CFU)、Lm−LLO−NP(107CFU)、またはLm−Gag(5×105CFU)で処置された。
生後6〜8週間のC57BL/6マウスが、0.1LD50Lm−LLO−E7、Lm−E7、Lm−LLO−NP、またはLm−Gagで腹腔内免疫化された。免疫化の10日後、脾臓を採取した。フィーダー細胞として照射されたTC−1細胞(100:1、脾細胞:TC−1)を用いて、脾細胞を培養液内に定着させ、インビトロで5日間刺激し、次いで以下の標的を使用して標準的51Crリリースアッセイに使用した。EL−4、EL−4/E7、またはEL−4でパルスしたE7 H−2bペプチド(RAHYNIVTF)(配列番号:29)。各3回実施したE:T細胞比は、80:1、40:1、20:1、10:1、5:1、および2.5:1であった。37℃で4時間のインキュベーション後、細胞をペレット化し、50μlの上清を各々のウェルから取り出した。Wallac 1450シンチレーションカウンター(米国メリーランド州Gaithersburg)を用いてサンプルをアッセイした。パーセント特異的溶解は、[(一分当たりの実験計数(cpm)−自然発生cpm)/(合計cpm−自然発生cpm)]×100として決定された。
C57BL/6マウスを0.1LD50を用いて免疫化し、20日後に1LD50のLm−LLO−E7、Lm−E7、Lm−LLO−NP、またはLm−Gagを用いて腹腔内注射によってブーストした。ブースティングの6日後、免疫化マウスおよび無処置マウスから脾臓を採取した。脾細胞を5×105/ウェルで、平底96−ウェルプレート内に、2.5×104、1.25×104、6×103、または3×103の照射TC−1細胞/ウェルをE7 Ag源として用いて、またはTC−1細胞なし、もしくは10μg/mLのCon Aありで、培養液内に定着させた。45時間後に0.5μCi[3H]チミジン/ウェルを用いて細胞をパルスした。プレートはTomtecハーベスター96(米国コネチカット州Orange)を使用して18時間後に採取され、Wallac 1450シンチレーションカウンターを用いて増殖が評価された。cpmの変化は、実験的cpm−Agを含まないcpmとして計算された。
C57BL/6マウスを、0.1 LD50 Lm−LLO−E7またはLm−E7を用いて静脈内(i.v.)免疫化し、30日後にブーストした。CD8(53−6.7、PE結合)、CD62リガンド(CD62L、MEL−14、APC結合)、およびE7 H−2Db四量体に対する3色フローサイトメトリーを、FACSCalibur(登録商標)フローサイトメーターとCellQuest(登録商標)ソフトウェア(Becton Dickinson、米国カリフォルニア州Mountain View、)を使用して実施した。ブーストの5日後に採取した脾細胞を、E7ペプチド(RAHYNIVTF)(配列番号:29)または対照(HIV−Gag)ペプチドを負荷したH−2Db四量体を用いて、室温(rt)にて染色した。四量体は1/200に希釈して使用され、これらの四量体は、Dr.Larry R.Pease(Mayo Clinic、米国ミネソタ州Rochester)およびNIAID Tetramer Core FacilityおよびNIH AIDS Researchならびに標準試薬プログラムによって提供された。Tetramer+、CD8+、CD62Llow細胞が解析された。
24匹のC57BL/6マウスに5×105のB16F0−Ova細胞を接種した。3日目、10日目、および17日目に、0.1LD50Lm−OVA(106cfu)、Lm−LLO−OVA(108cfu)を用いて8匹のマウスの群を免疫化し、8匹のマウスは処置しないままにした。
腫瘍径の比較のために、各々の群に対する腫瘍サイズの平均およびSDが決定され、スチューデントのt−検定によって統計的有意性が決定された。p≦0.05が有意と見なされた。
Lm−E7およびLm−LLO−E7がTC−1増殖に影響を与える能力に関して比較された。皮下腫瘍がC57BL/6マウスの左の脇腹に定着した。7日後、腫瘍は触診可能なサイズ(4〜5mm)に達した。7日目および14日目に、0.1LD50m−E7、Lm−LLO−E7、または対照としてのLm−GagおよびLm−LLO−NPをマウスにワクチン接種した。Lm−LLO−E7は、定着したTC−1腫瘍の75%の完全な退行を誘発し、一方でこの群の中の他の2匹のマウスでは腫瘍増殖が制御された(図3)。対照的に、Lm−E7およびLm−Gagを用いた免疫化は、腫瘍退行を誘発しなかった。この実験は複数回繰返され、常に非常に類似した結果であった。加えて、Lm−LLO−E7に対しては異なる免疫化プロトコル下でも類似の結果が達成された。別の実験では、単一の免疫化で、マウスの定着した5mmのTC−1腫瘍を治癒することができた。
(実施例2) LM−LLO−E7治療がTC−1特異的脾細胞増殖を引き出す
(実施例3)ActA−E7およびPEST−E7融合が抗腫瘍免疫性を与える
Lm−ActA−E7は、actAタンパク質の切断版に融合されるE7タンパク質を発現するプラスミドを含むLMの組み換え型株である。Lm−ActA−E7は、pDP−2028を修飾することにより構成されるプラスミドベクターpDD−1をリステリアに導入することにより生成された。pDD−1は、ActA−E7の発現および分泌を駆動する310bpのhlyプロモーターおよびhlyシグナル配列(ss)のコピーを発現する発現カセットと、4つのPEST配列を含む1170bpのActA遺伝子(切断ActAポリペプチドは分子の最初の390のAAから成る)と、300bpのHPV E7遺伝子と、1019bpのprfA遺伝子(病毒性遺伝子の発現を制御)と、形質転換細菌クローンの選択のためのCAT遺伝子(クロラムフェニコール耐性遺伝子)とを含む(Sewell et al.(2004)、Arch.Otolaryngol.Head Neck Surg.、130:92−97)。
Lm−ActA−E7がActA−E7を分泌する(約64kD)ことを検証するために、リステリア株をルリア−ベルターニ(LB)培地中で37℃にて増殖させた。トリクロロ酢酸(TCA)を用いて培養上清からタンパク質を沈殿させ、0.1Nの水酸化ナトリウムを用いて1×サンプルバッファー中に再懸濁した。同一の量の各々のTCA沈殿した上清を4%〜20%のトリスグリシンドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル(NOVEX、米国カリフォルニア州San Diego)に負荷した。ゲルを二フッ化ポリビニリデン膜に導入し、1:2500抗E7モノクローナル抗体(Zymed Laboratories、米国カリフォルニア州South San Francisco)でプローブし、次いで1:5000西洋ワサビペルオキシダーゼ共役抗マウスIgG(Amersham Pharmacia Biotech、英国、Little Chalfont)でプローブした。ブロットはAmersham強化化学発光検出試薬を用いて発色させ、オートラジオグラフィーフィルム(Amersham)に曝露した(図5A)。
Lm−PEST−E7は、それがプロモーターおよびhly遺伝子のPEST配列のみ、特にLLOの最初の50個のAAを含有すること以外はLm−LLO−E7と同一である。Lm−PEST−E7を構築するために、SOE(重複延長による遺伝子スプライシング)PCR技法を使用して、hlyプロモーターおよびPEST領域を全長のE7遺伝子に融合した。E7遺伝子およびhly−PEST遺伝子断片をLLOの最初の441個のAAを含有するプラスミドpGG−55から増幅し、従来のPCR技法によって一緒にスプライシングした。最終的なプラスミドpVS16.5を作り出すために、hly−PEST−E7断片およびprfA遺伝子を、インビトロでの選択のためのクロラムフェニコール耐性遺伝子を含むプラスミドpAM401へとサブクローンし、得られたプラスミドを使用してXFL−7を形質転換した。
Lm−ActA−E7対Lm−LLO−E7によって誘発した抗腫瘍免疫性を比較するために、2×105TC−1腫瘍細胞をマウス内に皮下移植し、触知可能サイズ(おおよそ5ミリメートル[mm])まで増殖させた。7日目および14日目に、マウスをLm−ActA−E7(5×108CFU)(十字)、Lm−LLO−E7(108CFU)(四角)、またはLm−E7(106CFU)(丸)いずれかの1つのLD50でマウスを腹腔内で免疫化した。26日目までに、Lm−LLO−E7およびLm−ActA−E7でのすべての動物は腫瘍がなく、そのままであったが、一方ですべての無処置の動物(三角)およびLm−E7で免疫化した動物は大きい腫瘍を成長させた(図5B)。したがって、ActA−E7融合でのワクチン接種は腫瘍退行を生じさせる。
(実施例4)LLO、ActA、またはPEST様配列へのE7の融合はE7特異的な免疫性を強化し、腫瘍浸潤E7特異的CD8 + 細胞を発生させる
リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中の100mcl(マイクロリットル)の2×105TC−1腫瘍細胞に加えて400mclのMATRIGEL(登録商標)(BD Biosciences、米国ニュージャージー州Franklin Lakes)を含む500mclのMATRIGEL(登録商標)を12匹のC57BL/6マウスの左脇腹に皮下移植した(n=3)。マウスを7日目、14日目、および21日目に腹腔内免疫し、脾臓および腫瘍を28日目に採取した。腫瘍MATRIGELをマウスから取り出し、氷上で、2ミリリットル(mL)のRP 10培地を含有する試験管内で4℃にて一晩インキュベートした。腫瘍を鉗子を用いて細かく切り刻み、2mmのブロックに切断し、3mLの酵素混合物(PBS中の0.2mg/mLコラゲナーゼP、1mg/mLのDNAse−1)とともに37℃で1時間インキュベートした。組織懸濁液を、ナイロンメッシュを通して濾過し、四量体およびIFN−γ染色のために、PBS中の5%胎児ウシ血清+0.05%のNaN3で洗浄した。
抗原特異的免疫性を強化するLm−ActA−E7の能力を解析するために、マウスにTC−1腫瘍細胞を移植し、Lm−LLO−E7(1×107CFU)、Lm−E7(1×106CFU)、またはLm−ActA−E7(2×108CFU)のいずれかで免疫化するか、あるいは未処置とした(無処置)。Lm−LLO−E7およびLm−ActA−E7群からのマウスの腫瘍は、Lm−E7または無処置マウスにおけるよりも、より高いパーセンテージのIFN−γ分泌CD8+T細胞(図7A)および四量体特異的なCD8+細胞(図7B)を含有した。
材料および実験方法(実施例5〜10)
大腸菌株MB2159が、標準的なプロトコルを使用して、形質転換のために使用された。細菌細胞は、H2Oを用いた洗浄によって電気穿孔法のために準備された。
公開されているplcA遺伝子の配列(Mengaud et al.,Infect.1989 57、3695−3701)を使用して、染色体DNAから遺伝子を増幅するためにPCRが使用された。次いで、増幅された製品はSalIを生成したおよびXbaIを生成したDNA端部を使用してpAM401へと連結され、pDP1462を生成する。
L.モノサイトゲネス株DP−L1387は、構造化されたSLCC 5764のTn917−LTV3バンクから、減少したレシチナーゼ(PC−PLC)を用いて突然変異体として分離された(前述されているように(Camilli et al.,J.Bacteriol.1990,172,3738−3744)。Tn917−LTV3挿入の部位はトランスポゾン染色体DNA結合をシークエンシングすることによって決定される(前述されているように(Sun et al.,Infect.Immun.1990 58,3770−3778)。L.モノサイトゲネスはプラスミドDNAを用いて形質転換される(前述されているように(Camilli et al.、同上))。L.モノサイトゲネス内のpAM401、pKSV7、およびこれらの誘導体の維持のための選択的な圧力が、培地1mL当たり10μgのクロラムフェニコールの存在下でかけられた。加えて、pKSV7誘導体の維持は、30℃(グラム陽性細菌内でのプラスミド複製のために許容できる温度)における増殖を必要とした。
dal遺伝子は、本来の850−bpdal遺伝子PCR産物の5’端部からの450−bp断片とdal遺伝子PCR産物の3’端部からの450−bp断片との間に、染色体遺伝子とエリスロマイシン耐性遺伝子を担持する温度感受性シャトルプラスミドpKSV7(Smith K et al、Biochimie.1992 Jul−Aug;74(7−8):705−11)との間の二重の対立遺伝子交換によって、当初不活性化されていた。これに続いて、遺伝子の82%をカバーするdal欠失突然変異体は、相同性領域を望ましい欠失を包囲する無傷の遺伝子(遺伝子の上流および下流の配列を含む)の5’および3’端部から搬送するpKSV7を用いた類似の交換反応によって構造化された。PCR解析は、この染色体の欠失の構造を確認するために使用される。
大腸菌は以下の標準的な方法で培養された。リステリアをLB培地(Difco、米国ミシガン州Detroit)+50μg/mLのストレプトマイシンの中で250rpmのシェーキングで37℃にて増殖させ、対数増殖フェーズの間に採取した。Lm−LLOE7については、37μg/mLのクロラムフェニコールが培地に追加された。増殖速度論の決定のために、細菌を10mLのLB+抗生剤中で16時間の間増殖させた。OD600nmが測定され、培養液密度が株の間で標準化された。培養液はLB+の好適な抗生物質および適用可能な場合はD−アラニン中へ1:50に希釈された。
1×108CFUをC57BL/6マウスの中に腹腔内(i.p.)注射した。3日目に脾臓を分離し、PBS中で均質化した。脾臓懸濁液のアリコートをLBプレート上に適用可能な抗生物質と共にプレーティングした。いくつかのコロニーが拡張し、混合して注射ストックを定着した。
p60−dalカセットの構築。抗生物質抵抗性遺伝子を有しないベクターの構築での第1の工程は、切断p60プロモーターの融合のdal遺伝子への構築である。LMアラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子(フォワードプライマー:5’−CCA TGG TGA CAG GCT GGC ATC−3’;配列番号:38)(リバースプライマー:5’−GCT AGC CTA ATG GAT GTA TTT TCT AGG−3’;配列番号:39)および最小限のp60プロモーター配列(フォワードプライマー:5’−TTA ATT AAC AAAタグTTG GTAタグTCC−3’;配列番号:40)(リバースプライマー:5’−GAC GAT GCC AGC CTG TCA CCA TGG AAA ACT CCT CTC−3’;配列番号:41)は、PCR増幅によってLM株10403Sのゲノムから分離される。プライマーは、重なった延長部の接合(SOE)−PCRによるp60およびdalのこれに続く融合のために、p60配列の上流PacI部位と、dal配列の下流のNheI部位(制限部位を太字で示す)と、p60プロモーターの下流の重なっているdal配列(最初の18bp)とを導入した。切断p60プロモーターの配列は以下のとおりである。 CAAATAGTTGGTATAGTCCTCTTTAGCCTTTGGAGTATTATCTCATCATTTGTTTTTTAGGTGAAAACTGGGTAAACTTAGTATTATCAATATAAAATTAATTCTCAAATACTTAATTACGTACTGGGATTTTCTGAAAAAAGAGAGGAGTTTTCC(配列番号:42)(Kohler et al、J Bacteriol 173:4668−74、1991)。SOE−PCRを使用して、p60およびdal PCR産物はクローニングベクターpCR2.1(Invitrogen、米国カリフォルニア州La Jolla)へと融合およびクローニングされる。
総リステリアDNAはMasterpure(登録商標)Total DNA kit(Epicentre、米国ウィスコンシン州Madison)を使用して準備された。リステリアは24時間の間37℃にて培養されてから、25mLのルリア−ベルターニ培地(LB)中で250rpmで振盪された。細菌細胞は遠心分離によってペレット化され、5mg/mLのリゾチームで補足されたPBS中で再懸濁されてから、37℃にて20分の間インキュベートされ、その後DNAが分離された。
Taqmanプライマープローブセット(Applied Biosystems、米国カリフォルニア州Foster City)は、プラスミド標的としてE7を用いてABI PrimerExpressソフトウェア(Applied Biosystems)を使用するように設計され、以下のプライマー、5’−GCAAGTGTGACTCTACGCTTCG−3’(配列番号:49);5’−TGCCCATTAACAGGTCTTCCA−3’(配列番号:50);5’−FAM−TGCGTA CAAAGCACACACGTAGACATTCGTAC−TAMRA−3’(配列番号:51)、およびワンコピー遺伝子plcA(TGACATCGTTTGTGTTTGAGCTAG−3’(配列番号:52)、5’−GCAGCGCTCTCTATACCAGGTAC−3’(配列番号:53);5’−TET−TTAATGTCCATGTTA TGTCTCCGTTATAGCTCATCGTA−TAMRA−3’;配列番号:54)をリステリアゲノム標的として使用する。
細菌を37℃にて、250rpmのシェーキングで、ルリア−ベルターニ(LB)培地+/−100マイクログラム(μg)/mLのD−アラニンおよび/または37μg/mLのクロラムフェニコール中で増殖させた。開始種材料はOD600nmの測定値に基づいて、すべての株に対して同じとなるように調節された。
4×109CFUのリステリアが解凍され、遠心分離(1分間、14000rpm)によってペレット化され、1Mのシステインを有する100μLのPBS(pH5.5)中で再懸濁された。細菌は、1:2で段階希釈され、分泌されたLLOを活性化するために37℃にて45分間インキュベートされた。線維素を取り除いたヒツジ全血(Cedarlane、Hornby、Ontario、Canada)を5倍量のPBSで2回洗浄し、上清が透明のままになるまで6倍量のPBS−システインで3〜4回洗浄し、洗浄工程の間に3000×gで8分間細胞をペレット化し、次いで10%(v/v)の最終濃度になるようにPBS−システイン中で再懸濁した。100μlの10%洗浄血液細胞を100μlのリステリア懸濁液と混合し、さらに37℃にて45分間インキュベートした。次いで溶解していない血液細胞を遠心分離(10分間、1000×g)によってペレット化した。100μlの上清を新しいプレートの中へと移し、OD530nmが決定され、サンプル希釈に対してプロットされた。
105TC−1(ATCC、米国バージニア州Manassas)をC57BL/6マウス(n=8)の皮下に移植し、約7日間増殖させ、その後腫瘍は触知可能になった。TC−1は、HPV E6およびE7で不死化したC57BL/6上皮細胞株であり、また皮下移植すると腫瘍を形成する活性化したrasを用いて形質転換されている。マウスは、腫瘍細胞の移植後7日目および14日目に0.1LD50の適切なリステリア株で免疫化されている。非免疫化対照群(無処置)も含まれた。腫瘍増殖は電子カリパスを用いて測定された。
Lmdal dat(Lmdd)株は、病毒性因子、ActAの不可逆的な欠失によって弱毒化された。actAのLmdaldat(Lmdd)バックグラウンド内でのインフレーム欠失は、下流遺伝子発現上のあらゆる極性効果を避けるように構造化された。Lmdal datΔactAは、ActAの591アミノ酸の欠失によるN末端における最初の19アミノ酸およびC末端の28アミノ酸残基を含有する。染色体スポットの中への遺伝子の欠失が、actA欠失領域の外部をアニーリングするプライマーを使用して検証された。これらは、図12に示すように、プライマー3(Adv305−tgggatggccaagaaattc)(配列番号:55)および4(Adv304−ctaccatgtcttccgttgcttg)(配列番号:56)である。PCR解析をLmddおよびLm−ddΔActAから分離された染色体DNA上で実施した。Lm−dd染色体のDNA内のプライマー対1、2および3、4の2つの異なるセットで増幅した後のDNA断片のサイズは、3.0Kbおよび3.4Kbとなると予想された。しかしながら、Lm−ddΔactAについては、プライマーの対1、2および3、4を使用するPCRの予想されるサイズは、1.2Kbおよび1.6Kbである。したがって、図12のPCR解析はactAの1.8kb領域は株、Lm−ddΔactA内では除去されていることを確認する。DNA配列決定を、株、Lm−ddΔactA(図13、配列番号:57)内の領域を含有するactAの欠失を確認するためにPCR産物上でも実施した。
RAW 264.7などのマクロファージは、LmprfA−(pGG55)、Lmdal dat、Lmdal dat actA、Lmdal dat actAΔinlC、およびLmdal datΔinlCなどの異なるリステリアバックボーンに感染し、様々なサイトカインのレベルを定量するために異なるELISAベースのキットを使用して上清を異なる時点で採取した。定量化されたサイトカインとしてはIFN−γ、TNF−α、およびIL−6が挙げられる。
インビボでのサイトカイン生産および好中球の採用を測定するために、異なる108CFUのLmprfA−(pGG55)、Lmdal dat、Lmdal dat actA、Lmdal dat actAΔinlC、およびLmdal dat ΔinlC、リステリア対照、または等価な体積の生理食塩水をC57BL/6マウスに腹腔内に注射した。12時間後、マウスを屠殺し、2mLのPBSで腹膜腔を洗浄した。プレーティングした後増殖培地上で腹膜洗浄を細菌の負荷について調べ、MIP−1α、KC、MCP等々などの炎症誘発性のサイトカインの解析を行った。フローサイトメトリーを使用して、Gr−1、CD11b、およびF4/80などのマーカーを用いて染色した後に好中球およびマクロファージの数を決定し、さらにCellQuestソフトウェアを使用してこれらの集団を定量化した。
inlC欠失株を用いたマクロファージまたは樹状細胞に由来する骨髄の感染に続く好中球の遊走の増加があるかどうかを決定するためにこのアッセイを行った。骨髄に由来するマクロファージまたは樹状細胞は、C57BL/6などのマウスから分離され、これらはinlC欠失突然変異体または対照リステリアに感染した。Corning Costarトランスウェルプレートを使用して、感染した細胞を使用してトランスウェルアッセイを設定した。アッセイは、当初3、5、または8マイクロメートルポアトランスウェルプレートを使用して標準化された。好中球の遊走を試験するためには、プレートの底部に感染したAPCをプレーティングし、チャンバー内のウェルの上部に好中球をプレーティングした。異なる時点で、底部に遊走した好中球の数を決定するために細胞を計数した。
概念の証拠として、inlC突然変異体の治療的な有効性を決定するために、ヒトの前立腺特異的な抗原(PSA)を腫瘍抗原として使用した。バックボーンLmdal dat actA inlCは、プラスミド、pAdv142を用いて形質転換され、これはヒトPSAに対する発現カセットを含有し、結果としてLmddAinlC142が得られる。株LmddAinlC142は、融合タンパク質、tLLO−PSAの発現および分泌のために特徴付けられる。さらに、株LmddAinlC142はマウスの中でインビボで2回継代されたが、インビボで2回の継代の後に得られたコロニーを融合タンパク質、tLLO−PSAの発現および分泌について調べた。ワクチンの通常在庫は第2のインビボ継代の後で得られたコロニーから準備され、これは治療的な効果および免疫原性の評価のために使用された。
LmddA、LmddAΔactA、LmddAΔPlcA、LmddAΔPlcB、LmddAΔprfA、LmddAinlC142、LmddA142、および他の対照株が腫瘍微小環境内で免疫細胞の浸潤を生じる能力が決定された。この研究では、マウスに1×106TPSA23腫瘍細胞を0日目に接種し、7日目、14日目、および21日目に108CFUのLmddAinlC142、LmddA142、および他の対照株をワクチン接種した。28日目に腫瘍を採取して、Gr−1、CD11b、CD3、CD4、CD8、CD25、Foxp3、NK1.1、およびCD62Lなどの異なる細胞表面マーカーを用いてさらに染色のために処理した。これらのマーカーを使用して、調べられる異なる細胞集団としては、マクロファージ(CD11b+)、NK細胞(NK1.1+)、好中球(Gr−1+CD11b+)、骨髄由来抑制細胞(MDSC)(Gr−1+CD11b+)、調節性T細胞(CD4+ CD25+ Foxp3+)およびエフェクターT細胞(CD8+ CD3+ CD62Llow)が挙げられる。さらにエフェクターT細胞は、IFN−γ、TNF−α、およびIL−2などのエフェクターサイトカインを生産するそれらの機能的な能力のために特徴付けられる。腫瘍内の調節性T細胞およびMDSCは、T細胞増殖の抑制を生じるそれらの能力を試験された。
(実施例5) アミノ酸代謝酵素を含有するプラスミドは、抗生物質耐性遺伝子の代わりに、大腸菌およびLM内に、インビトロおよびインビボの両方で保持される
(実施例6) 代謝酵素を含有するプラスミドは細菌の病毒性を増加しない
(実施例7)代謝酵素を含有するプラスミドによる抗腫瘍免疫性の誘導
(実施例8)inlC欠失突然変異体はケモカインおよびサイトカインの著しく高いレベルを生成する。
(実施例9)inlC欠失突然変異体は好中球の遊走を誘発する
(実施例10)inlC欠失突然変異体は治療的な抗腫瘍応答に影響を与える
オリゴヌクレオチドはInvitrogen(米国カリフォルニア州Carlsbad)によって合成され、またDNA配列決定はGenewiz Inc(米国ニュージャージー州South Plainfield)によって行われた。フローサイトメトリー試薬はBecton Dickinson Biosciences(BD、米国カリフォルニア州San Diego)から購入した。細胞培養培地、補助剤および他のすべての試薬は、示されない限りSigma(米国ミズーリ州St. Louise)から入手した。Her2/neu HLA−A2ペプチドはEZbiolabs(米国インディアナ州Westfield)によって合成された。完全なRPMI 1640(C−RPMI)培地は、2mMグルタミン、0.1mM非必須アミノ酸、および1mMのピルビン酸ナトリウム、10%ウシ胎児血清、ペニシリン/ストレプトマイシン、Hepes(25mM)を含有した。多クローン性の抗LLO抗体が前述されており、抗Her2/neu抗体はSigmaから購入した。
すべての動物実験は、University of PennsylvaniaまたはRutgers UniversityにおいてIACUCによって認可されたプロトコルに従って実施した。FVB/NマウスはJackson laboratories(米国メーン州Bar Harbor)から購入した。ラットHer2/neu腫瘍性タンパク質を過剰発現するFVB/N Her2/neuトランスジェニックマウスは、University of Pennsylvaniaの実験動物コア施設で収容および飼育された。NT−2腫瘍細胞株は高いレベルのラットHer2/neuタンパク質を発現し、これはこれらのマウスの自然発生的な乳腺腫瘍に由来し、前述したように増殖した。DHFR−G8(3T3/neu)細胞はATCCから得られ、ATCCの推奨に従って増殖した。EMT6−Luc細胞株は、John Ohlfest博士(University of Minnesota、米国ミネソタ州)からの寛大な供与物であり、また完全なC−RPMI培地中で増殖した。生物発光の作業は、University of Pennsylvania(米国ペンシルバニア州Philadelphia)のSmall Animal Imaging Facility(SAIF)によるガイダンスに従って実行された。
Her2/neu−pGEM7Zは、親切にもUniversity of PennsylvaniaのMark Greene博士によって供与され、これはpGEM7Zプラスミド(Promega、米国ウィスコンシン州Madison)へとクローニングされた全長のヒトHer2/neu(hHer2)遺伝子を含んでいた。このプラスミドは、PCRによってpfx DNAポリメラーゼ(Invitrogen)および表1に示されるオリゴを使用して、hHer−2/neuの3つの区分、すなわちEC1、EC2、およびIC1を増幅するためのテンプレートとして使用された。
3〜5匹のFVB/Nマウスの群が、1×108コロニー形成単位(CFU)のLm−LLO−ChHer2、ADXS31−164、Lm−hHer2 ICI、またはLm対照(無関連抗原を発現する)を用いて一週間間隔で3回免疫化されるか、または無処置のままとされた。NT−2細胞をインビトロで増殖させ、トリプシンで取り出し、マイトマイシンC(血清を含まないC−RPMI媒体中250μg/mL)で37℃にて45分間処置した。5回洗浄した後、これらを免疫化した動物または無処置の動物から採取した脾細胞を用いて1:5の比(刺激薬:レスポンダー)で5日間、37℃および5%CO2で共インキュベートした。標的として3T3/neu(DHFR−G8)細胞のラベルが付いているユーロピウムを使用して、前述した方法により、標準的な細胞毒性アッセイを実施した。4時間のインキュベーションの後、分光光度計(Perkin Elmer、Victor2)を590nmにて使用して、死滅した標的細胞から放出されたユーロピウムを測定した。特異的な溶解のパーセントが(実験群での溶解−自然発生的溶解)/(最大溶解−自然発生的溶解)として定義された。
3〜5匹のFVB/NまたはHLA−A2トランスジェニックマウスの群が、1×108CFUのADXS31−164、陰性リステリア対照(無関連抗原を発現する)を用いて一週間間隔で3回免疫化されるか、または無処置のままとされた。最後の免疫化の一週間後、FVB/Nマウスからの脾細胞が分離され、5×106細胞/ウェルにて24ウェルプレートでマイトマイシンCで処置したNT−2細胞の存在下でC−RPMI培地中で共培養された。HLA−A2トランスジェニックマウスからの脾細胞は、1μMのHLA−A2特異的なペプチドまたは1μg/mLの組み換え型Hisタグ付きChHer2タンパク質(大腸菌内で生産され、ニッケルベースのアフィニティークロマトグラフィーシステムによって精製された)の存在下でインキュベートされた。上清からのサンプルが24時間または72時間後に得られ、インターフェロン−γ(IFN−γ)の存在について、製造業者の推奨に従ってマウスIFN−γ酵素にリンクした免疫吸着剤アッセイ(ELISA)キットを使用して試験した。
生後6週間のFVB/NラットHer2/neuトランスジェニックマウス(9〜14/群)に5×108CFUのLm−LLO−ChHer2、ADXS31−164、またはLm対照を6回免疫化した。これらを、自然発生的な乳腺腫瘍の出現について週に2回観察し、これらは最高52週間まで電子カリパスを使用して測定された。平均直径が1cm2のサイズに達したとき、エスケープした腫瘍を切り離し、RNAlater内で−20℃にて保存した。これらの腫瘍のエスケープ上のHer2/neuタンパク質内の突然変異の効果を決定するために、ゲノムDNA分離キットを使用してゲノムDNAを抽出し、配列決定した。
マウスに1×106NT−2細胞を皮下(s.c.)で移植した。7日目、14日目、および21日目に、これらに1×108CFUのADXS31−164、LmddA対照で免疫化、または無処置のままにした。28日目に腫瘍および脾臓を抽出し、FACS解析によってCD3+/CD4+/FoxP3+Tregの存在について試験した。簡潔に述べると、C−RPMI培地中で2枚のガラススライドの間で脾臓を均質化することによって脾細胞を分離した。滅菌したカミソリの刃を使用して腫瘍を細かく刻み、PBS中にDNase(12U/mL)およびコラゲナーゼ(2mg/mL)を含有するバッファーを用いて消化した。室温にて撹拌しながら60分間インキュベーションした後で、細胞を激しいピペッティングによって分離した。赤血球をRBC溶解バッファーによって溶解し、続いて10%FBSを含有する完全なRPMI−1640培地を用いて数回洗浄した。ナイロンメッシュを通した濾過の後、腫瘍細胞および脾細胞をFACSバッファー(2%FBS/PBS)中で再懸濁し、抗CD3−PerCP−Cy5.5、CD4−FITC、CD25−APC抗体を用いて染色し、続いて抗Foxp3−PEを用いて透過処理および染色した。4色FACSキャリバー(BD)を使用してフローサイトメトリー解析を実施し、cell questソフトウェア(BD)を使用してデータを解析した。
生存データに対して対数順位χ二乗検定を使用し、CTLおよびELISAアッセイに対してスチューデントのt検定を使用し、これらを3回行った。これらの解析では、0.05未満(*印をつけた)のp値は統計的に有意であると考えられる。Prismソフトウェア、V.4.0a(2006)またはSPSSソフトウェア、V.15.0(2006)のいずれかを用いてすべての統計的な解析が行われた。別段の記載がない限り、すべてのFVB/NラットHer2/neuトランスジェニック研究のために、群あたり8〜14匹のマウスを使用し、すべての野生型FVB/N研究のために、群あたり少なくとも8匹のマウスを使用した。Her2/neuトランスジェニックマウスモデルの長期腫瘍研究を除いて、すべての研究を少なくとも1回は繰り返した。
(実施例11) Her−2断片に融合されたLLO断片を分泌するL.モノサイトゲネス株の発生:ADXS31−164の構築。
cggagtgtatactggcttactatgttggcactgatgagggtgtcagtgaagtgcttcatgtggcaggagaaaaaaggctgcaccggtgcgtcagcagaatatgtgatacaggatatattccgcttcctcgctcactgactcgctacgctcggtcgttcgactgcggcgagcggaaatggcttacgaacggggcggagatttcctggaagatgccaggaagatacttaacagggaagtgagagggccgcggcaaagccgtttttccataggctccgcccccctgacaagcatcacgaaatctgacgctcaaatcagtggtggcgaaacccgacaggactataaagataccaggcgtttccccctggcggctccctcgtgcgctctcctgttcctgcctttcggtttaccggtgtcattccgctgttatggccgcgtttgtctcattccacgcctgacactcagttccgggtaggcagttcgctccaagctggactgtatgcacgaaccccccgttcagtccgaccgctgcgccttatccggtaactatcgtcttgagtccaacccggaaagacatgcaaaagcaccactggcagcagccactggtaattgatttagaggagttagtcttgaagtcatgcgccggttaaggctaaactgaaaggacaagttttggtgactgcgctcctccaagccagttacctcggttcaaagagttggtagctcagagaaccttcgaaaaaccgccctgcaaggcggttttttcgttttcagagcaagagattacgcgcagaccaaaacgatctcaagaagatcatcttattaatcagataaaatatttctagccctcctttgattagtatattcctatcttaaagttacttttatgtggaggcattaacatttgttaatgacgtcaaaaggatagcaagactagaataaagctataaagcaagcatataatattgcgtttcatctttagaagcgaatttcgccaatattataattatcaaaagagaggggtggcaaacggtatttggcattattaggttaaaaaatgtagaaggagagtgaaacccatgaaaaaaataatgctagtttttattacacttatattagttagtctaccaattgcgcaacaaactgaagcaaaggatgcatctgcattcaataaagaaaattcaatttcatccatggcaccaccagcatctccgcctgcaagtcctaagacgccaatcgaaaagaaacacgcggatgaaatcgataagtatatacaaggattggattacaataaaaacaatgtattagtataccacggagatgcagtgacaaatgtgccgccaagaaaaggttacaaagatggaaatgaatatattgttgtggagaaaaagaagaaatccatcaatcaaaataatgcagacattcaagttgtgaatgcaatttcgagcctaacctatccaggtgctctcgtaaaagcgaattcggaattagtagaaaatcaaccagatgttctccctgtaaaacgtgattcattaacactcagcattgatttgccaggtatgactaatcaagacaataaaatagttgtaaaaaatgccactaaatcaaacgttaacaacgcagtaaatacattagtggaaagatggaatgaaaaatatgctcaagcttatccaaatgtaagtgcaaaaattgattatgatgacgaaatggcttacagtgaatcacaattaattgcgaaatttggtacagcatttaaagctgtaaataatagcttgaatgtaaacttcggcgcaatcagtgaagggaaaatgcaagaagaagtcattagttttaaacaaatttactataacgtgaatgttaatgaacctacaagaccttccagatttttcggcaaagctgttactaaagagcagttgcaagcgcttggagtgaatgcagaaaatcctcctgcatatatctcaagtgtggcgtatggccgtcaagtttatttgaaattatcaactaattcccatagtactaaagtaaaagctgcttttgatgctgccgtaagcggaaaatctgtctcaggtgatgtagaactaacaaatatcatcaaaaattcttccttcaaagccgtaatttacggaggttccgcaaaagatgaagttcaaatcatcgacggcaacctcggagacttacgcgatattttgaaaaaaggcgctacttttaatcgagaaacaccaggagttcccattgcttatacaacaaacttcctaaaagacaatgaattagctgttattaaaaacaactcagaatatattgaaacaacttcaaaagcttatacagatggaaaaattaacatcgatcactctggaggatacgttgctcaattcaacatttcttgggatgaagtaaattatgatctcgagacccacctggacatgctccgccacctctaccagggctgccaggtggtgcagggaaacctggaactcacctacctgcccaccaatgccagcctgtccttcctgcaggatatccaggaggtgcagggctacgtgctcatcgctcacaaccaagtgaggcaggtcccactgcagaggctgcggattgtgcgaggcacccagctctttgaggacaactatgccctggccgtgctagacaatggagacccgctgaacaataccacccctgtcacaggggcctccccaggaggcctgcgggagctgcagcttcgaagcctcacagagatcttgaaaggaggggtcttgatccagcggaacccccagctctgctaccaggacacgattttgtggaagaatatccaggagtttgctggctgcaagaagatctttgggagcctggcatttctgccggagagctttgatggggacccagcctccaacactgccccgctccagccagagcagctccaagtgtttgagactctggaagagatcacaggttacctatacatctcagcatggccggacagcctgcctgacctcagcgtcttccagaacctgcaagtaatccggggacgaattctgcacaatggcgcctactcgctgaccctgcaagggctgggcatcagctggctggggctgcgctcactgagggaactgggcagtggactggccctcatccaccataacacccacctctgcttcgtgcacacggtgccctgggaccagctctttcggaacccgcaccaagctctgctccacactgccaaccggccagaggacgagtgtgtgggcgagggcctggcctgccaccagctgtgcgcccgagggcagcagaagatccggaagtacacgatgcggagactgctgcaggaaacggagctggtggagccgctgacacctagcggagcgatgcccaaccaggcgcagatgcggatcctgaaagagacggagctgaggaaggtgaaggtgcttggatctggcgcttttggcacagtctacaagggcatctggatccctgatggggagaatgtgaaaattccagtggccatcaaagtgttgagggaaaacacatcccccaaagccaacaaagaaatcttagacgaagcatacgtgatggctggtgtgggctccccatatgtctcccgccttctgggcatctgcctgacatccacggtgcagctggtgacacagcttatgccctatggctgcctcttagactaatctagacccgggccactaactcaacgctagtagtggatttaatcccaaatgagccaacagaaccagaaccagaaacagaacaagtaacattggagttagaaatggaagaagaaaaaagcaatgatttcgtgtgaataatgcacgaaatcattgcttatttttttaaaaagcgatatactagatataacgaaacaacgaactgaataaagaatacaaaaaaagagccacgaccagttaaagcctgagaaactttaactgcgagccttaattgattaccaccaatcaattaaagaagtcgagacccaaaatttggtaaagtatttaattactttattaatcagatacttaaatatctgtaaacccattatatcgggtttttgaggggatttcaagtctttaagaagataccaggcaatcaattaagaaaaacttagttgattgccttttttgttgtgattcaactttgatcgtagcttctaactaattaattttcgtaagaaaggagaacagctgaatgaatatcccttttgttgtagaaactgtgcttcatgacggcttgttaaagtacaaatttaaaaatagtaaaattcgctcaatcactaccaagccaggtaaaagtaaaggggctatttttgcgtatcgctcaaaaaaaagcatgattggcggacgtggcgttgttctgacttccgaagaagcgattcacgaaaatcaagatacatttacgcattggacaccaaacgtttatcgttatggtacgtatgcagacgaaaaccgttcatacactaaaggacattctgaaaacaatttaagacaaatcaataccttctttattgattttgatattcacacggaaaaagaaactatttcagcaagcgatattttaacaacagctattgatttaggttttatgcctacgttaattatcaaatctgataaaggttatcaagcatattttgttttagaaacgccagtctatgtgacttcaaaatcagaatttaaatctgtcaaagcagccaaaataatctcgcaaaatatccgagaatattttggaaagtctttgccagttgatctaacgtgcaatcattttgggattgctcgtataccaagaacggacaatgtagaattttttgatcccaattaccgttattctttcaaagaatggcaagattggtctttcaaacaaacagataataagggctttactcgttcaagtctaacggttttaagcggtacagaaggcaaaaaacaagtagatgaaccctggtttaatctcttattgcacgaaacgaaattttcaggagaaaagggtttagtagggcgcaatagcgttatgtt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(実施例12) ADXS31−164は、LM−LLO−ChHER2と同じく免疫原性である。
(実施例13) ADXS31−164は、自然発生的な乳腺腫瘍の発症の防止には、LM−LLO−ChHER2より有効である。
(実施例14) ADXS31−164を用いた免疫化の際のHER2/NEU遺伝子での突然変異。
(実施例15)ADXS31−164は、腫瘍内の調節性T細胞の著しい減少を生じる。
(実施例16)ペプチド「ミニ遺伝子」発現系
この発現系は、カルボキシ末端において独特のペプチド部分を含有する組み換え型タンパク質のパネルのクローニングを促進するように設計される。これは、テンプレートとしてSS−Ub−ペプチド構築体のうちの1つをコードする配列を利用する単純なPCR反応によって達成される。Ub配列のカルボキシ末端領域の中へと延在するプライマーを使用し、また所望のペプチド配列に対してプライマーの3’端においてコドンを導入することによって、単一のPCR反応で新しいSS−Ub−ペプチド配列を生成することができる。細菌プロモーターおよびActAシグナル配列の最初のいくつかのヌクレオチドをコードする5’プライマーは、すべての構築体に対して同一である。この戦略を使用して生成された構築体を図1に概略的に表す。この実施例では、2つの構築体が記述される。一方は、マウスMHCクラスI上に提示されるモデルペプチド抗原を含有し、第2の構築体は、ヒト膠芽腫(GBM)TAAに由来するものなどの治療的に関連のあるペプチドが置換されることになる場所を示す。明確のため、図1で図表化した構築体をActA1〜100分泌シグナルを含有するものとして指定した。しかしながら、LLOベースの分泌シグナルは均等な効果を置換される可能性がある。
特定の実施形態では、例えば以下の項目が提供される。
(項目1)
ミニ遺伝子核酸構築体を含む組み換え型リステリア株であって、前記構築体はキメラタンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含み、前記キメラタンパク質は、
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列される、組み換え型リステリア。
(項目2)
前記リステリアが、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした2つ以上のオープンリーディングフレームをさらに含む、項目1に記載の組み換え型リステリア。
(項目3)
前記リステリアが、各々のオープンリーディングフレームの間に、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした1つ〜4つのオープンリーディングフレームをさらに含む、項目1〜2のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目4)
前記ペプチドが1つ以上のネオエピトープを含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目5)
各々のオープンリーディングフレームが異なるペプチドを含む、項目1〜4のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目6)
前記ミニ遺伝子構築体が、前記核酸構築体の5’細菌プロモーター駆動発現をさらに含む、項目1〜5のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目7)
前記プロモーターが、ActAプロモーター、hlyプロモーター、またはp60プロモーターである、項目6に記載の組み換え型リステリア。
(項目8)
前記細菌分泌シグナル配列が、前記ActAタンパク質シグナル配列の最初の100アミノ酸を含むActA 100 シグナル配列をコードする、項目1〜7のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目9)
前記細菌分泌シグナル配列が、配列番号:4を含むリステリオリシンO(LLO)タンパク質からの分泌シグナル配列である、項目1〜8のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目10)
前記組み換え型リステリアが、D−アラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子およびD−アミノ酸トランスフェラーゼ(dat)遺伝子内にゲノム突然変異、または欠失を含む、項目1〜9のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目11)
リステリアが、代謝酵素をコードする第一のオープンリーディングフレームを含む核酸分子をさらに含み、前記代謝酵素が前記dal/datゲノム突然変異または欠失を相補する、項目10に記載の組み換え型リステリア。
(項目12)
前記核酸分子が前記リステリアゲノムに組み込まれる、項目11に記載の組み換え型リステリア。
(項目13)
前記核酸分子が前記組み換え型リステリア株の中のプラスミドの中にあり、かつ抗生物質選択が無いときに、前記プラスミドが前記組み換え型リステリア株の中に安定して維持される、項目11に記載の組み換え型リステリア。
(項目14)
前記代謝酵素が、アラニン・ラセマーゼ酵素、またはD−アミノ酸トランスフェラーゼ酵素である、項目11〜13のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目15)
前記ミニ遺伝子構築体が、前記リステリアゲノムに組み込まれる、または前記リステリア内の染色体外プラスミド内にある、項目11〜14のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目16)
前記組み換え型リステリアが、actA遺伝子内のゲノム突然変異、または欠失を含む、項目1〜15のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目17)
前記組み換え型リステリアが、inlB遺伝子内に、ゲノム突然変異、または欠失を含む、項目1〜16のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目18)
前記組み換え型リステリアが、prfA遺伝子内に、ゲノム突然変異、または欠失を含む、項目1〜17のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目19)
前記組み換え型弱毒化リステリアがリステリア・モノサイトゲネスである、項目1〜18のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
(項目20)
項目1〜19のいずれか一項に記載の組み換え型リステリアと、医薬的に許容される担体と、を含む医薬組成物。
(項目21)
腫瘍またはガンを有する被験者の中に抗腫瘍または抗ガン応答を引き出す方法であって、前記方法が前記被験者にミニ遺伝子核酸構築体を含む組み換え型リステリアを投与する工程を含み、前記構築体がキメラタンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含み、前記キメラタンパク質が、
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列され、これによって前記被験者の中の抗腫瘍応答を強化する、方法。
(項目22)
前記リステリアが、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした2つ以上のオープンリーディングフレームをさらに含む、項目21に記載の方法。
(項目23)
前記リステリアが、各々のオープンリーディングフレームの間をシャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした1つ〜4つのオープンリーディングフレームをさらに含む、項目21に記載の方法。
(項目24)
前記ペプチドが、1つ以上のネオエピトープを含む、項目21〜23のいずれか一項に記載の方法。
(項目25)
各々のオープンリーディングフレームが異なるペプチドを含む、項目21〜24のいずれか一項に記載の方法。
(項目26)
前記ミニ遺伝子構築体が、前記核酸構築体の5’細菌プロモーター駆動発現をさらに含む、項目20〜25のいずれか一項に記載の方法。
(項目27)
前記プロモーターが、actAプロモーター、hlyプロモーター、またはp60プロモーターである、項目26に記載の方法。
(項目28)
前記細菌分泌シグナル配列が、前記ActAタンパク質シグナル配列の最初の100アミノ酸を含むActA 100 シグナル配列をコードする、項目21〜27のいずれか一項に記載の方法。
(項目29)
前記細菌分泌シグナル配列が、リステリオリシンO(LLO)タンパク質からの分泌シグナル配列である、項目21〜28のいずれか一項に記載の方法。
(項目30)
前記組み換え型リステリアが、D−アラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子およびD−アミノ酸トランスフェラーゼ(dat)遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目21〜29のいずれか一項に記載の方法。
(項目31)
前記リステリアが代謝酵素をコードする第1のオープンリーディングフレームを含む核酸分子をさらに含み、前記代謝酵素が前記組み換え型リステリア株の染色体内の突然変異または欠失している内因性遺伝子を相補する、項目30に記載の方法。
(項目32)
前記核酸分子が前記リステリアゲノムに組み込まれる、項目33に記載の方法。
(項目33)
前記核酸分子が前記組み換え型リステリア株の中のプラスミドの中にあり、かつ抗生物質選択が無いとき、前記プラスミドは前記組み換え型リステリア株の中に安定して維持される、項目33に記載の方法。
(項目34)
前記代謝酵素がアラニン・ラセマーゼ酵素またはD−アミノ酸トランスフェラーゼ酵素である、項目31〜33のいずれか一項に記載の方法。
(項目35)
前記ミニ遺伝子構築体が、前記リステリアゲノムに組み込まれる、または前記リステリア内の染色体外プラスミド内にある、項目21〜34のいずれか一項に記載の方法。
(項目36)
前記組み換え型リステリアが前記actA遺伝子内にゲノム突然変異または欠失を含む、項目21〜35のいずれか一項に記載の方法。
(項目37)
前記組み換え型リステリアが、inlB遺伝子内にゲノム突然変異または欠失を含む、項目21〜36のいずれか一項に記載の方法。
(項目38)
前記組み換え型リステリアが、prfA遺伝子内にゲノム突然変異または欠失を含む、項目21〜37のいずれか一項に記載の方法。
(項目39)
前記組み換え型弱毒化リステリアがリステリア・モノサイトゲネスである、項目21〜38のいずれか一項に記載の方法。
(項目40)
独立したアジュバントを投与することをさらに含む、項目21〜39のいずれか1項に記載の方法。
(項目41)
前記アジュバントが、顆粒球性/マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)タンパク質、GM−CSFタンパク質をコードするヌクレオチド分子、サポニンQS21、モノホスホリルリピドA、またはメチル化されていないCpG含有オリゴヌクレオチドを含む、項目40に記載の方法。
(項目42)
前記ガンが、リンパ腫、白血病、乳ガン、大腸ガン、頭頸部扁平上皮ガン腫、腎臓の細胞ガン腫、膵管腺ガン、骨肉腫、胃ガン、非小細胞肺ガン、または骨ガンを含む、項目21〜41のいずれか一項に記載の方法。
(項目43)
前記ガンが難治性ガンである、項目21〜42のいずれか一項に記載の方法。
(項目44)
前記リンパ腫がホジキンリンパ腫または非ホジキンリンパ腫である、項目42に記載の方法。
(項目45)
前記リンパ腫が多発性骨髄腫である、項目42に記載の方法。
(項目46)
被験者の中の腫瘍またはガンを処置する方法であって、前記方法が前記被験者にミニ遺伝子核酸構築体を含む組み換え型リステリアを投与する工程を含み、前記構築体がキメラタンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含み、前記キメラタンパク質が、
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列され、これによって前記被験者の中の抗腫瘍応答を強化する、方法。
(項目47)
前記リステリアが、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした2つ以上のオープンリーディングフレームをさらに含む、項目46に記載の方法。
(項目48)
前記リステリアが、各々のオープンリーディングフレームの間をシャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした1つ〜4つのオープンリーディングフレームをさらに含む、項目46に記載の方法。
(項目49)
前記ペプチドが、1つ以上のネオエピトープを含む、項目46〜48のいずれか一項に記載の方法。
(項目50)
各々のオープンリーディングフレームが異なるペプチドを含む、項目46〜49のいずれか一項に記載の方法。
(項目51)
前記ミニ遺伝子発現核酸構築体が、前記核酸構築体の5’細菌プロモーター駆動発現をさらに含む、項目46〜50のいずれか一項に記載の方法。
(項目52)
前記プロモーターが、actAプロモーター、hlyプロモーター、またはp60プロモーターである、項目51に記載の方法。
(項目53)
前記細菌分泌シグナル配列が、前記ActAタンパク質シグナル配列の最初の100アミノ酸を含むActA 100 シグナル配列をコードする、項目46〜52のいずれか一項に記載の方法。
(項目54)
前記細菌分泌シグナル配列が、リステリオリシンO(LLO)タンパク質からの分泌シグナル配列である、項目46〜53のいずれか一項に記載の方法。
(項目55)
前記組み換え型リステリアが、D−アラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子およびD−アミノ酸トランスフェラーゼ(dat)遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目46〜54のいずれか一項に記載の方法。
(項目56)
リステリアが代謝酵素をコードする第1のオープンリーディングフレームを含む核酸分子をさらに含み、前記代謝酵素が前記組み換え型リステリア株の染色体内の突然変異または欠失している内因性遺伝子を相補する、項目46〜55のいずれか一項に記載の方法。
(項目57)
前記核酸分子が前記リステリアゲノムに組み込まれる、項目56に記載の方法。
(項目58)
前記核酸分子が前記組み換え型リステリア株の中のプラスミドの中にあり、かつ抗生物質選択が無いとき、前記プラスミドは前記組み換え型リステリア株の中に安定して維持される、項目56に記載の方法。
(項目59)
前記代謝酵素がアラニン・ラセマーゼ酵素またはD−アミノ酸トランスフェラーゼ酵素である、項目56〜58のいずれか一項に記載の方法。
(項目60)
前記ミニ遺伝子発現構築体が、前記リステリアゲノムに組み込まれる、または前記リステリア内の染色体外プラスミド内にある、項目46〜59のいずれか一項に記載の方法。
(項目61)
前記組み換え型リステリアが前記actA遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目46〜60のいずれか一項に記載の方法。
(項目62)
前記組み換え型リステリアが前記inlB遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目46〜61のいずれか一項に記載の方法。
(項目63)
前記組み換え型リステリアが前記prfA遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目46〜62のいずれか一項に記載の方法。
(項目64)
前記組み換え型弱毒化リステリアがリステリア・モノサイトゲネスである、項目46〜63のいずれか一項に記載の方法。
(項目65)
独立したアジュバントを投与することをさらに含む、項目46〜64のいずれか1項に記載の方法。
(項目66)
前記アジュバントが、顆粒球性/マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)タンパク質、GM−CSFタンパク質をコードするヌクレオチド分子、サポニンQS21、モノホスホリルリピドA、またはメチル化されていないCpG含有オリゴヌクレオチドを含む、項目65に記載の方法。
(項目67)
前記ガンが、リンパ腫、白血病、乳ガン、大腸ガン、頭頸部扁平上皮ガン腫、腎臓の細胞ガン腫、膵管腺ガン、骨肉腫、胃ガン、非小細胞肺ガン、または骨ガンを含む、項目46〜66のいずれか一項に記載の方法。
(項目68)
前記ガンが難治性ガンである、項目46〜67のいずれか一項に記載の方法。
(項目69)
前記リンパ腫がホジキンリンパ腫または非ホジキンリンパ腫である、項目67に記載の方法。
(項目70)
前記リンパ腫が多発性骨髄腫である、項目67に記載の方法。
(項目71)
前記投与が前記組み換え型弱毒化リステリアの少なくとも2つの投与を含む、項目21〜70のいずれか一項に記載の方法。
(項目72)
前記ガンの前記被験者内での再発または転移に続いて前記組み換え型弱毒化リステリアを投与する工程をさらに含む、項目21〜71のいずれか一項に記載の方法。
(項目73)
ブースター注射を投与することをさらに含む、項目21〜72のいずれか一項に記載の方法。
(項目74)
前記免疫応答がCD8 + T細胞免疫応答である、項目21〜73のいずれか一項に記載の方法。
(項目75)
前記処置が転移性疾患を遅延させる、項目46〜74のいずれか一項に記載の方法。
(項目76)
前記処置がリンパ節サイズを減少する、項目46〜75のいずれか一項に記載の方法。
(項目77)
前記処置が結果として無進行生存率をもたらす、項目46〜76のいずれか一項に記載の方法。
(項目78)
前記処置が、結果的に疾患が進行する時間の増加をもたらす、項目46〜76のいずれか一項に記載の方法。
(項目79)
被験者内の腫瘍またはガンの形成を抑制または遅延する方法であって、前記方法が項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物を投与する前記工程を含む、方法。
(項目80)
自己抗原に対する耐性を破壊する方法であって、前記方法が項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物を投与する前記工程を含む、方法。
(項目81)
被験者内のガンの退行を誘発する方法であって、前記方法が項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物を投与する前記工程を含む、方法。
(項目82)
被験者の生存を延長する方法であって、前記方法が項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物を投与する前記工程を含む、方法。
(項目83)
腫瘍またはガンを有する被験者内の抗腫瘍または抗ガン応答を引き出すための組み換え型リステリアの使用であって、前記使用が、前記腫瘍またはガンを有する前記被験者に前記リステリアを投与する前記工程を含み、前記組み換え型リステリアがミニ遺伝子核酸構築体を含み、前記核酸構築体がキメラタンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含み、前記キメラタンパク質が、
a.細菌分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、アミノ末端からカルボキシ末端へとそれぞれ直列に配列される、使用。
(項目84)
前記リステリアが、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした2つ以上のオープンリーディングフレームをさらに含む、項目83に記載の使用。
(項目85)
前記リステリアが、各々のオープンリーディングフレームの間をシャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によってリンクした1つ〜4つのオープンリーディングフレームをさらに含む、項目83に記載の使用。
(項目86)
前記ペプチドが、1つ以上のネオエピトープを含む、項目83〜85のいずれか一項に記載の使用。
(項目87)
各々のオープンリーディングフレームが異なるペプチドを含む、項目83〜86のいずれか一項に記載の使用。
(項目88)
前記ミニ遺伝子構築体が、前記核酸構築体の5’細菌プロモーター駆動発現をさらに含む、項目83〜87のいずれか一項に記載の使用。
(項目89)
前記プロモーターが、actAプロモーター、hlyプロモーター、またはp60プロモーターである、項目88に記載の使用。
(項目90)
前記細菌分泌シグナル配列が、前記ActAタンパク質シグナル配列の最初の100アミノ酸を含むActA 100 シグナル配列をコードする、項目83〜89のいずれか一項に記載の使用。
(項目91)
前記細菌分泌シグナル配列が、リステリオリシンO(LLO)タンパク質からの分泌シグナル配列である、項目83〜90のいずれか一項に記載の使用。
(項目92)
前記組み換え型リステリアが、D−アラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子およびD−アミノ酸トランスフェラーゼ(dat)遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目83〜91のいずれか一項に記載の使用。
(項目93)
リステリアが代謝酵素をコードする第1のオープンリーディングフレームを含む核酸分子をさらに含み、前記代謝酵素が前記組み換え型リステリア株の染色体内の欠失または突然変異している内因性遺伝子を相補する、項目88に記載の使用。
(項目94)
前記核酸分子が前記リステリアゲノムに組み込まれる、項目93に記載の使用。
(項目95)
前記核酸分子が前記組み換え型リステリア株の中のプラスミドの中にあり、かつ抗生物質選択が無いとき、前記プラスミドは前記組み換え型リステリア株の中に安定して維持される、項目93のいずれか一項に記載の使用。
(項目96)
前記代謝酵素がアラニン・ラセマーゼ酵素またはD−アミノ酸トランスフェラーゼ酵素である、項目93〜95のいずれか一項に記載の使用。
(項目97)
前記ミニ遺伝子構築体が、前記リステリアゲノムに組み込まれる、または前記リステリア内の染色体外プラスミド内にある、項目83〜96のいずれか一項に記載の使用。
(項目98)
前記組み換え型リステリアが前記actA遺伝子内にゲノム突然変異を含む、項目83〜97のいずれか一項に記載の方法。
(項目99)
前記組み換え型リステリアが、前記内因性inlB遺伝子でのゲノム突然変異を含む、項目83〜98に記載の使用。
(項目100)
前記組み換え型リステリアが、前記内因性prfA遺伝子でのゲノム突然変異を含む、項目83〜99に記載の使用。
(項目101)
前記組み換え型弱毒化リステリアがリステリア・モノサイトゲネスである、項目83〜100のいずれか一項に記載の方法。
(項目102)
独立したアジュバントを投与することをさらに含む、項目83〜101に記載の使用。
(項目103)
前記アジュバントが、顆粒球性/マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)タンパク質、GM−CSFタンパク質をコードするヌクレオチド分子、サポニンQS21、モノホスホリルリピドA、またはメチル化されていないCpG含有オリゴヌクレオチドを含む、項目102に記載の使用。
(項目104)
前記免疫応答がCD8 + T細胞免疫応答である、項目83〜103のいずれか一項に記載の使用。
(項目105)
被験者内の腫瘍またはガンを処置するための、項目83〜104のいずれか一項に記載の使用。
(項目106)
前記ガンが、リンパ腫、白血病、乳ガン、大腸ガン、頭頸部扁平上皮ガン腫、腎臓の細胞ガン腫、膵管腺ガン、骨肉腫、胃ガン、非小細胞肺ガン、または骨ガンを含む、項目83〜105のいずれか一項に記載の使用。
(項目107)
前記ガンが難治性ガンである、項目83〜106のいずれか一項に記載の使用。
(項目108)
前記リンパ腫がホジキンリンパ腫または非ホジキンリンパ腫である、項目106に記載の使用。
(項目109)
前記ガンの前記被験者内での再発または転移に続いて前記組み換え型弱毒化リステリアを投与する工程をさらに含む、項目105〜108のいずれか一項に記載の使用。
(項目110)
ブースター注射を投与することをさらに含む、項目104〜109のいずれか一項に記載の使用。
(項目111)
前記処置が転移性疾患を遅延させる、項目104〜110のいずれか一項に記載の使用。
(項目112)
前記処置がリンパ節サイズを減少する、項目104〜111のいずれか一項に記載の使用。
(項目113)
前記処置が結果として無進行生存率をもたらす、項目104〜112のいずれか一項に記載の使用。
(項目114)
前記処置が、結果的に疾患が進行する時間の増加をもたらす、項目104〜113のいずれか一項に記載の使用。
(項目115)
被験者内の腫瘍またはガンの形成を抑制または遅延するための、項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物の使用であって、前記使用が、前記組み換え型リステリアまたは前記医薬組成物を前記被験者に投与する前記工程を含む、使用。
(項目116)
自己抗原に対する耐性を破壊するための項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物の使用であって、前記使用が、前記組み換え型リステリアまたは前記医薬組成物を前記被験者に投与する前記工程を含む、使用。
(項目117)
被験者内のガンの退行を誘発するための、項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物の使用であって、前記使用が、前記組み換え型リステリアまたは前記医薬組成物を前記被験者に投与する前記工程を含む、使用。
(項目118)
被験者の生存を延長するための、項目1〜19の前記組み換え型リステリアまたは項目20の前記医薬組成物の使用であって、前記使用が、前記組み換え型リステリアまたは前記医薬組成物を前記被験者に投与する前記工程を含む、使用。
Claims (26)
- ミニ遺伝子核酸構築体を含むエピソーム性ベクターを含む組み換え型リステリア株であって、前記構築体はキメラタンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含み、前記キメラタンパク質は、
a.リステリオリシンO(LLO)タンパク質からの分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、前記キメラタンパク質のアミノ末端からカルボキシ末端へと配列され、前記組み換え型リステリアが、D−アラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子、D−アミノ酸トランスフェラーゼ(dat)遺伝子、およびactA遺伝子内にゲノム突然変異、または欠失を含む、組み換え型リステリア。 - 前記キメラタンパク質をコードする前記オープンリーディングフレームが、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によって第2のオープンリーディングフレームにリンクし、前記第2のオープンリーディングフレームが、(a)第2の細菌分泌シグナルシグナル配列と、(b)第2のユビキチン(Ub)タンパク質と、(c)第2のペプチドとを含む第2のキメラタンパク質をコードし、(a)〜(c)の前記第2のシグナル配列、前記第2のユビキチン、および前記第2のペプチドが、前記第2のキメラタンパク質のアミノ末端からカルボキシ末端へと配列される、請求項1に記載の組み換え型リステリア。
- 前記ペプチドが1つ以上のネオエピトープを含む、請求項1に記載の組み換え型リステリア。
- 各々のオープンリーディングフレームが異なるペプチドを含む、請求項2に記載の組み換え型リステリア。
- 前記ミニ遺伝子構築体が、前記核酸構築体の5’細菌プロモーター駆動発現をさらに含み、前記プロモーターが、actAプロモーター、hlyプロモーター、またはp60プロモーターである、請求項1に記載の組み換え型リステリア。
- リステリアが、代謝酵素をコードするオープンリーディングフレームを含む核酸分子をさらに含み、前記代謝酵素が前記dal/datゲノム突然変異または欠失を相補する、請求項1に記載の組み換え型リステリア。
- 前記核酸分子が前記組み換え型リステリア株の中のプラスミドの中にあり、かつ抗生物質選択が無いときに、前記プラスミドが前記組み換え型リステリア株の中に安定して維持される、請求項6に記載の組み換え型リステリア。
- 前記代謝酵素が、アラニン・ラセマーゼ酵素、またはD−アミノ酸トランスフェラーゼ酵素である、請求項6に記載の組み換え型リステリア。
- 前記組み換え型リステリアが、prfA遺伝子内に、ゲノム突然変異、または欠失を含む、請求項1〜5のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
- 前記組み換え型弱毒化リステリアがリステリア・モノサイトゲネスである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の組み換え型リステリア。
- 請求項1〜5のいずれか一項に記載の組み換え型リステリアと、医薬的に許容される担体と、を含む医薬組成物。
- 腫瘍またはガンを有する被験者内の抗腫瘍または抗ガン応答を引き出すための組み換え型リステリアを含む組成物であって、前記組み換え型リステリアがミニ遺伝子核酸構築体を含むエピソーム性ベクターを含み、前記核酸構築体がキメラタンパク質をコードするオープンリーディングフレームを含み、前記キメラタンパク質が、
a.リステリオリシンO(LLO)タンパク質からの分泌シグナル配列と、
b.ユビキチン(Ub)タンパク質と、
c.ペプチドとを含み、
a〜cの前記シグナル配列、前記ユビキチン、および前記ペプチドが、前記キメラタンパク質のアミノ末端からカルボキシ末端へと配列され、前記組み換え型リステリアが、D−アラニン・ラセマーゼ(dal)遺伝子、D−アミノ酸トランスフェラーゼ(dat)遺伝子、およびactA遺伝子内にゲノム突然変異、または欠失を含む、組成物。 - 前記キメラタンパク質をコードする前記オープンリーディングフレームが、シャイン・ダルガノリボソーム結合部位核酸配列によって第2のオープンリーディングフレームにリンクし、前記第2のオープンリーディングフレームが、(a)第2の細菌分泌シグナルシグナル配列と、(b)第2のユビキチン(Ub)タンパク質と、(c)第2のペプチドとを含む第2のキメラタンパク質をコードし、(a)〜(c)の前記第2のシグナル配列、前記第2のユビキチン、および前記第2のペプチドが、前記第2のキメラタンパク質のアミノ末端からカルボキシ末端へと配列される、請求項12に記載の組成物。
- 前記ペプチドが、1つ以上のネオエピトープを含む、請求項12に記載の組成物。
- 各々のオープンリーディングフレームが異なるペプチドを含む、請求項13に記載の組成物。
- 前記ミニ遺伝子構築体が、前記核酸構築体の5’細菌プロモーター駆動発現をさらに含み、前記プロモーターが、actAプロモーター、hlyプロモーター、またはp60プロモーターである、請求項12に記載の組成物。
- 前記リステリアが代謝酵素をコードする第1のオープンリーディングフレームを含む核酸分子をさらに含み、前記代謝酵素が前記組み換え型リステリア株の染色体内の欠失または突然変異している内因性遺伝子を相補する、請求項12に記載の組成物。
- 前記核酸分子が前記組み換え型リステリア株の中のプラスミドの中にあり、かつ抗生物質選択が無いとき、前記プラスミドは前記組み換え型リステリア株の中に安定して維持される、請求項17のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記代謝酵素がアラニン・ラセマーゼ酵素またはD−アミノ酸トランスフェラーゼ酵素である、請求項17に記載の組成物。
- 前記組み換え型リステリアが、前記prfA遺伝子でのゲノム突然変異を含む、請求項12〜16に記載の組成物。
- 前記組み換え型弱毒化リステリアがリステリア・モノサイトゲネスである、請求項12〜16のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が独立したアジュバントとともに投与されることを特徴とし、前記アジュバントが、顆粒球性/マクロファージコロニー刺激因子(GM−CSF)タンパク質、GM−CSFタンパク質をコードするヌクレオチド分子、サポニンQS21、モノホスホリルリピドA、またはメチル化されていないCpG含有オリゴヌクレオチドを含む、請求項12〜16に記載の組成物。
- 前記抗腫瘍または抗ガン応答がCD8+T細胞免疫応答である、請求項12〜16のいずれか一項に記載の組成物。
- 被験者内の腫瘍またはガンを処置するための、請求項12〜16のいずれか一項に記載の組成物であって、前記ガンが、リンパ腫、ホジキンリンパ腫または非ホジキンリンパ腫、白血病、乳ガン、大腸ガン、頭頸部扁平上皮ガン腫、腎臓の細胞ガン腫、膵管腺ガン、骨肉腫、胃ガン、非小細胞肺ガン、または骨ガンを含み、難治性ガンである、組成物。
- 前記ガンの前記被験者内での再発または転移に続いて前記組成物が投与され、またはブースター注射が投与されることを特徴とする、請求項12〜16のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記組成物が転移性疾患を遅延させる、リンパ節サイズを減少する、結果として無進行生存率をもたらす、結果的に疾患が進行する時間の増加をもたらす、腫瘍もしくはガンの形成を抑制もしくは遅延させる、自己抗原に対する耐性を破壊する、ガンの退行を誘発する、または生存を延長する、請求項12〜16のいずれか一項に記載の組成物。
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