JP6914534B2 - β−グルカン高産生菌株、β−グルカンの製造方法、及びβ−グルカン高産生菌株のスクリーニング方法 - Google Patents
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本発明に用いられるβ−グルカン高産生菌株は、例えば、以下に示すスクリーニングを行うことにより、当業者にとって特別の困難性なく、作出することが可能である。ただし、以下に示す記載は、本発明の範囲を、特定の手法により作出される菌株にかかるものに限定する趣旨の記載ではない。
培地:スクロースを最終濃度が2.0質量%であり、米ぬかを最終濃度が0.3質量%であるように、それぞれを水に溶解してなる液体培地であって、pH5.8〜6.0であり、これをオートクレーブ滅菌した該液体培地
温度条件:31.5℃
培養容器:500mL容の三角フラスコ
通気条件:溶存酸素濃度が1ppm以上(例えば、10%飽和体積濃度を下回らないよう、振とう培養装置の振とう条件として100〜300rpm)
本発明に用いられるβ−グルカン高産生菌株としては、例えば、Aureobasidium pullulans M-3株等が挙げられる。この菌株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターに寄託されており、分譲可能とされている(受託番号NITE BP−02744)。菌株以外にも、上述した方法に準じて作出された菌株や、上記所定の培養条件におけるβ−グルカン産生能の条件を満たす菌株を、適宜使用可能である。
本発明のβ−グルカンの製造方法では、上記に説明したβ−グルカン高産生菌株を液体培地で培養し、β−グルカンを得る。液体培地としては、上述したように、当業者に周知の培地組成のものを適宜選択して用いることができるが、より詳細には、以下のような組成が挙げられる。
液体培養物から遠心分離機を用いて菌体を除いた培養液を蒸留水で20倍希釈し、これをA液とした。次いでこのA液をさらに蒸留水で10倍希釈したものをB液とした。このB液0.5mLとフェノール試薬0.5mLとの混合液に対して、濃硫酸2.5mLを勢いよく添加し、10分放置後、激しく攪拌して、更に40分放置し、分光光度計(SHIMADZU 紫外可視分光光度計 UVmini-1240)を用いて490nmの波長での吸光度を測定した。グルコースの水溶液を標準液として定量し、そのグルコース換算量(単位:g/dl)を全糖値(TS)とした。一方、B液の0.2mLをマイクロピペットを用いてマイクロチューブに採取し、エタノールを0.8mL加え、ボルテックスミキサーで5分間攪拌した後、14500rpmで5分間遠心分離した。遠心上澄みを0.5mL採取し、全糖と同様の方法でグルコース換算量(単位:g/dl)を求めこれを残糖値(RS)とした。この全糖値(TS)と残糖値(RS)から、多糖値(PS)とβ−グルカン値(BG)を以下の計算式で求めた。
・β−グルカン値(BG)=0.75×多糖値(PS)
液体培養物から遠心分離機を用いて菌体を除いた培養液の約50mLをバイアル瓶(40mm×750mm)に入れ、粘度計(TVB-10M SPINDLE No. M2、東機産業)のスピンドルをセットし、スピンドル回転速度0.3rpmの設定において、その30分後の値を測定した。その後、5分ごとに3回測定し、最大値と最小値を切り捨てて、中間値の平均を求めた。
液体培養物から遠心分離機を用いて菌体を除いた培養液を蒸留水で10〜20倍に希釈し、ボルテックスミキサーを用いて十分攪拌した後、分光光度(SHIMADZU 紫外可視分光光度計 UVmini-1240)を用いて波長660nmで吸光度を測定した。吸光度に希釈率を乗じた値をUOD(unit of optical density)として表示した。
アウレオバシジウム プルランス M−2株(独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター 受託番号FERM BP−10014)は、メラニン色素の生成蓄積が少ない、良質なβ−グルカンが含まれた、白黄色のジェル状物質を安定的に培養液中の菌体外に生成する、β−グルカンの大量生産に適した菌株である(以下、「M−2株」という。)。ただし、β−グルカン生産に対する至適温度が20〜25℃と、工業的生産の目的からすると温調のエネルギーコスト等の観点からは、若干低く、またそのβ−グルカンの蓄積濃度も0.3〜0.6g/dlと、十分とはいい難かった。そこでM−2株を親株として、β−グルカン生産に対する至適温度が改善した菌株の取得を試みた。
Aureobasidium pullulans M-3株(以下、「M−3株」という。)の菌学的性質を、親株であるM−2株と比較するために、寒天平板培地上でM−2株は24.5℃、M−3株は31.5℃で1週間培養したコロニーについて、その直径・色調、表面性状、可溶性色素生産の有無になどを巨視的に観察し、また、その栄養菌糸の形状や分生子形成様式などの微視的形態を顕微鏡下に観察した。その結果、寒天平板培地上のM−3株のコロニーの形状は、直径、色調、表面形状、色素生産などに関して、親株であるM−2株の諸形状と何らの相違も認められなかった。更に、M−3株が、親株であるM−2株同様、所定の液体培地による培養後の培養液にβ−グルカンを分泌するβ−グルカン産生菌であることは、別途、M−2株の産物を指標にしたHPLC分析等により確認された。
M−3株の培養最適化の一環として、培地の炭素源がβ−グルカン産生能に与える影響について調べた。具体的には次のようにフラスコ振とう培養試験を行った。
M−3株の培養最適化の一環として、培地の窒素源がβ−グルカン産生能に与える影響について調べた。具体的には次のようにフラスコ振とう培養試験を行った。
M−3株の培養最適化の一環として、培地の炭素源あるいは窒素源の濃厚化がβ−グルカン産生能に与える影響について調べた。具体的には、炭素源をスクロース、窒素源を魚粉とし、下記表3に示す通り、それぞれに最終濃度を変化させ、培養日数を6日にした以外は、試験例3、4と同様にして、フラスコ振とう培養試験を行った。培養終了後、培養液を遠心分離して菌体を除去した培養液上澄み中の糖質量及び粘度の諸物性を分析した。培養試験は、窒素源の各濃度について2回行った。その結果を表3に示す。
試験例1のスクリーニングで得られたM−3株について、親株であるM−2株と比較して、その培養特性の優位性を確認するために、3L−ジャーファーメンター(3MDL、丸菱バイオエンジ)での培養試験を行った。なお、両株の比較にあたっては、それぞれの菌株での最適培養条件、すなわち親株であるM−2株については培養温度24.5℃で6日培養(現行培養法)、M−3株については培養温度31.5℃で3日培養、で行った。
M−3株の工業的実用性を実証するため、200L通気攪拌槽による実証試験を行った。具体的には次のように試験を行った。
M−3株の工業的実用性を更に実証するため、200L通気攪拌槽による実証試験を行った。具体的には、培養3日目にスクロースをフィードする以外、試験例7に準じて、200L通気攪拌槽による実証試験を行った。表6に、培養液物性の経時変化示した。
調製例7で製造されたβ−グルカン培養液について、アスコルビン酸、リンゴ酸、又はクエン酸を用いて、その培養液のpHを調整した。すなわち、培養終了後、菌体を遠心分離機で除去した後の培養液に、上記有機酸の10%水溶液を用いて、攪拌下でそれぞれpHを4.0に合わせ、オートクレーブ装置で85℃、30分間滅菌を行った。冷蔵庫で1夜放置した後、試食を行い、香味の比較を行った。その結果、酸味としては、アスコルビン酸>クエン酸>リンゴ酸の順番で強く、リンゴ酸については特に爽快感があり、さわやかな酸味が感じられた。
試験例1と同様のスクリーニングにより、M−2株を親株として、その変異株のなかか31.5℃の培養で、培養後の培養液の粘度が高く、β−グルカンの蓄積量が向上した菌株を、更に3株単離した。それらをアウレオバシジウム プルランス NY3(C483)株、NY3(C151)株、又はNY3(C246)株と命名した。
Claims (7)
- アウレオバシジウム プルランスM−3株(受託番号NITE BP−02744)である、β−グルカン高産生菌株。
- 請求項1に記載のβ−グルカン高産生菌株を液体培地で培養し、β−グルカンを得ることを特徴とするβ−グルカンの製造方法。
- 前記培養を20.0〜35.0℃の温度条件で行う、請求項2記載のβ−グルカンの製造方法。
- β−グルカン産生能を有するアウレオバシジウム プルランスに属する菌株を、魚粉を窒素源とする液体培地で培養し、β−グルカンを得ることを特徴とするβ−グルカンの製造方法。
- 前記培養を20.0〜35.0℃の温度条件で行う、請求項4記載のβ−グルカンの製造方法。
- β−グルカン産生能を有するアウレオバシジウム プルランスに属する菌株を親株とし、変異処理を行ない、30.0〜35.0℃の温度条件の寒天培地上で培養して、前記温度条件で生育可能な菌株を選別し、前記選別した菌株のなかから、更に、30.0〜35.0℃の温度条件の液体培地中で前記親株に比べてβ−グルカンの産生能が高められている菌株を選別することを特徴とするβ−グルカン高産生菌株のスクリーニング方法。
- 前記親株に比べてβ−グルカンの産生能が高められている菌株の選別を、液体培地で培養したときの該培養液中のβ−グルカン含有量を、前記親株のそれと比較することにより行う、請求項6記載のβ−グルカン高産生菌株のスクリーニング方法。
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