JP6310033B2 - 操作されたポリペプチドコンジュゲートおよびトランスグルタミナーゼを用いてそれを作製する方法 - Google Patents
操作されたポリペプチドコンジュゲートおよびトランスグルタミナーゼを用いてそれを作製する方法 Download PDFInfo
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Description
本願は、参照することによって本明細書にその全体が組み込まれる、2010年11月5日に出願された米国仮出願第61/410,840号および2011年10月31日に出願された米国仮出願第61/553,917号の利益を主張する。
本明細書において別段の定義がない限り、本発明に関連して用いられる科学用語および技術用語は、当業者によって一般に理解されている意味を有する。さらに、文脈により別段の要求がない限り、単数形の用語は複数形を含み、複数形の用語は単数形を含む。全体として、本明細書において記載される細胞培養および組織培養、分子生物学、免疫学、微生物学、遺伝学、ならびにタンパク質化学および核酸化学、ならびにハイブリダイゼーションに関連して用いられる命名、およびその技術は、当技術分野において周知であり、一般的に用いられる。
本明細書における操作されたポリペプチドコンジュゲートは、アシルドナーグルタミン含有タグまたはポリペプチドの操作によって反応性にされた内因性グルタミンに対して操作されたポリペプチド(例えば、Fc含有ポリペプチド、Fab含有ポリペプチド、または毒素ポリペプチド)を含み、ポリペプチドは、アシルドナーグルタミン含有タグまたはアクセス可能な/曝露された/反応性の内因性グルタミンを介してアミンドナー物質(例えば、低分子または生体適合性ポリマー)に部位特異的にコンジュゲートしている。アシルドナーグルタミン含有タグは、挿入され得るか、またはポリペプチド上の1つもしくは複数の野生型アミノ酸を置き換え/置換し得る。内因性グルタミンは、Fc含有ポリペプチド、Fab含有ポリペプチド、または毒素ポリペプチド上の1つまたは複数のアミノ酸を修飾すること(例えば、アミノ酸の欠失、挿入、置換、または突然変異)によって反応性(すなわち、アミンおよびトランスグルタミナーゼの存在下でアシルドナーとして共有結合を形成する能力)にされ得る。操作されたポリペプチドコンジュゲートはまた、アシルドナーグルタミン含有タグを含有するように操作された生体適合性ポリマーに部位特異的にコンジュゲートしているポリペプチド(例えば、毒素ポリペプチド)を含み得る。
本明細書において記載される操作されたポリペプチドコンジュゲートを作製する方法もまた、本発明において提供される。1つの態様において、本発明は、式:(Fc含有ポリペプチド)−T−Aを含む操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲートを調製する方法を提供し、式中、Tは、特異的部位で操作されたアシルドナーグルタミン含有タグであるか、またはFc含有ポリペプチドの操作によって反応性にされた内因性グルタミンを含み、Aはアミンドナー物質であり、アミンドナー物質は、Fc含有ポリペプチド内のカルボキシル末端、アミノ末端、または別の部位のどこかにあるアシルドナーグルタミン含有タグまたは内因性グルタミンに部位特異的にコンジュゲートしており、前記方法は、a)アシルドナーグルタミン含有タグまたは内因性グルタミンに位置するFc含有ポリペプチドを含む操作された(Fc含有ポリペプチド)−T分子を提供するステップ、b)アミンドナー物質を操作された(Fc含有ポリペプチド)−T分子とトランスグルタミナーゼの存在下で接触させるステップ、およびc)操作された(Fc含有ポリペプチド)−Tをアミンドナー物質に共有結合によって連結させて、操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲートを形成するステップを含む。
本発明はまた、本明細書において記載される操作されたポリペプチドコンジュゲート(例えば、操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート、操作されたFab含有ポリペプチドコンジュゲート、または操作された毒素ポリペプチドコンジュゲート)を薬学的に許容できる賦形剤または担体内に含む医薬組成物を提供する。操作されたポリペプチドコンジュゲートは、単独で、または本発明の1つもしくは複数の他の操作されたポリペプチドコンジュゲートと組み合わせて、または1つもしくは複数の他の薬剤と組み合わせて(またはその任意の組み合わせとして)投与することができる。本発明の医薬組成物、方法、および使用は、したがってまた、以下に詳述されるように、他の活性物質との組み合わせ(同時投与)の実施形態を包含する。
本発明はまた、上記の障害の治療において用いるためのキット(または製品)を提供する。本発明のキットは、精製された操作されたポリペプチドコンジュゲート(例えば、操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート、操作されたFab含有ポリペプチドコンジュゲート、または操作された毒素ポリペプチドコンジュゲート)および疾患の治療にコンジュゲートを用いるための指示を含む、1つまたは複数の容器を含む。例えば、指示は、癌(例えば、膵臓癌、卵巣癌、結腸癌、乳癌、前立腺癌、または肺癌)などの疾患を治療するための操作されたポリペプチドコンジュゲートの投与についての記載を含む。キットはさらに、個体が疾患および疾患の段階を有しているかの同定に基づく、治療に適切な個体の選択についての記載を含み得る。
トランスグルタミナーゼを用いる部位特異的な抗体−薬剤コンジュゲーション
所望のペイロード(薬剤または作用物質部分)への抗体のコンジュゲーションを、重鎖および/または軽鎖のカルボキシル末端でグルタミンタグ(Qタグ)を有する抗体と、選択したペイロード(イメージング剤または細胞毒)のアミン含有誘導体との間の、微生物トランスグルタミナーゼによって触媒されるアミド転移反応を介して行った。
このアミド転移反応において、抗体上のグルタミンはアシルドナーとして作用し、アミン含有化合物はアシルアクセプター(アミンドナー)として作用した。1.67〜4.04μMの濃度の精製抗体を、pH範囲6.2〜8.8の、150〜900mMのNaCl、および25mMのMES、HEPES[4−(2−ヒドロキシエチル)−1−ピペラジンエタンスルホン酸]またはTris HCl緩衝液内で、0.225〜0.545%(w/v)のストレプトベルティシリウム・モバラエンス(Streptoverticillium mobaraense)トランスグルタミナーゼ(ACTIVA(商標)、味の素、日本)の存在下で、167〜404μMの範囲の20〜100M過剰なアシルアクセプターとインキュベートした。反応条件を、個別のアシルアクセプター誘導体のために調整し、最適な効率および特異性は、典型的には、150mMのNaCl、25mMのTris HCl、pH8.8で、2.87μMの抗体、287μMの誘導体、および0.378%(w/v)のトランスグルタミナーゼで観察された。室温で2.5時間のインキュベーションの後、抗体を、当業者に知られている標準的なアフィニティークロマトグラフィー方法、例えば、GE Healthcareからの市販のアフィニティークロマトグラフィーを用いて、MabSelect樹脂(GE Healthcare、Waukesha、WI)で精製した。コンジュゲーション効率を、そのそれぞれの波長でのフルオロフォアおよび抗体による相対的UV−vis吸光度を用いて抗体−フルオロフォアコンジュゲートについて決定し、疎水性相互作用クロマトグラフィー分析を用いて抗体−薬剤コンジュゲートについて決定した。
異なる薬剤:抗体化学量論でのコンジュゲーション生成物の相対的な分布を、疎水性相互作用クロマトグラフィー(HIC)を用いて決定した。抗体当たり0、1つ、または2つの薬剤を有する抗体−薬剤コンジュゲートは、細胞毒部分の疎水性が高いことに起因するHICカラム上でのそれらの差次的な保持に基づいて、容易に分解した。コンジュゲーション生成物を、緩衝液A(1.5Mの硫酸アンモニウム、50mMのリン酸ナトリウム、pH7)内でTSKgel Butyl−NPRカラム、2.5μmの粒子サイズ、4.6mm×10cm(トーソーバイオサイエンス、日本)上に注射し、0から100%の線形勾配の緩衝液B(50mMのリン酸ナトリウム、pH7)で0.8mL/分で85分間にわたり溶出した。Agilent1100シリーズクロマトグラフィーシステムおよびChemstationソフトウェア(Agilent Technologies、Santa Clara、CA)を用いて、コンジュゲートを分離、定量、および分画した。
重鎖のカルボキシル末端でQ含有タグを有するmAb1−HCQ01(IgG1サブタイプ)(HCQ01はLLQGG(配列番号2)である)と様々なアミン含有フルオロフォア誘導体との間の、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率を試験した。図1。mAb1−HCQ01とフルオロフォア誘導体Alexa488カダベリンとの間のコンジュゲーションは、79%の最も高いコンジュゲーション効率を有していた。トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率を、2つの異なるコンジュゲーション条件(150mMのNaCl、25mMのHEPES、およびpH8.0;または150mMのNaCl、25mMのHEPES、およびpH8.8)で、重鎖のカルボキシル末端もしくはアミノ末端(それぞれ、HCQ01(LLQGG(配列番号2)))およびHNQ01(QVQLKE(配列番号39))または軽鎖のカルボキシル末端もしくはアミノ末端(それぞれ、LCQ01(GGGLLQGG(配列番号5))およびLNQ01(GLLQG(配列番号6))でQ含有タグを有する2つのフルオロフォアカダベリン(Alexa488カダベリンおよびSR101カダベリン)を用いてさらに試験した。フルオロフォアカダベリンおよびmAb1のコンジュゲーションは、重鎖カルボキシル末端および軽鎖カルボキシル末端でQタグを有するmAb1において観察された。図2Aおよび2B。重鎖または軽鎖の末端で組み込まれた様々なQタグを有するIgG1 mAb1、およびいかなるタグも有さない野生型mAb1への、Alexa488カダベリンの、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率もまた試験した。図3。図2Aおよび2Bと同様に、IgG1 mAb1へのAlexa488カダベリンのコンジュゲーションは、重鎖および軽鎖のカルボキシル末端において観察された。最後に、重鎖のカルボキシル末端でHCQ01タグを有するIgG1 mAb1−HCQ01、軽鎖のカルボキシル末端でLCQ01タグを有するmAb1−LCQ01、ならびにHCQ01タグおよびLCQ01タグの両方を有する二重突然変異体への、Alexa488カダベリンの、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率を試験した。この実施例において、最も高いコンジュゲーション効率は、IgG1 mAb−HCQ01−Alexa488カダベリンで観察された。図4。
重鎖のカルボキシル末端でHCQ01タグを有するIgG1 mAb1−HCQ01で得られた疎水性相互作用クロマトグラムを、コンジュゲーションの前(A)、アミノカプロイル−MMAEへのコンジュゲーションの後(B)、アミノ−PEG2−プロピオニル−MMAEへのコンジュゲーションの後(C)、アミノ−PEG3−プロピオニル−MMAEへのコンジュゲーションの後(D)、Ac−Lys−VC−PABC−MMADへのコンジュゲーションの後(E)、アミノカプロイル−MMADへのコンジュゲーションの後(F)、Ac−Lys−Gly−MMADへのコンジュゲーションの後(G)、Ac−Lys−β−Ala−MMADへのコンジュゲーションの後(H)、アミノカプロイル−VC−PABC−MMAFへのコンジュゲーションの後(I)、アミノカプロイル−MMAFへのコンジュゲーションの後(J)、プトレシニル−ゲルダナマイシンへのコンジュゲーションの後(K)、およびAc−Lys−プトレシニル−ゲルダナマイシンへのコンジュゲーションの後(L)の薬剤について決定した。コンジュゲーションは、(B)〜(L)で観察された。重鎖のアミノ末端でHNQ01タグを有するmAb1−HNQ01で得られた疎水性相互作用クロマトグラムはまた、コンジュゲーションの前(A)、AcLys−プトレシニル−ゲルダナマイシンへのコンジュゲーションの後(B)、AcLys−プトレシニル−ゲルダナマイシンにコンジュゲートしていない、軽鎖のカルボキシル末端でLCQ01タグを有するmAb1−LCQ01(C)、およびAcLys−プトレシニル−ゲルダナマイシンにコンジュゲートした、軽鎖のカルボキシル末端でLCQ01タグを有するmAb1−LCQ01(D)、ならびにAcLys−プトレシニル−ゲルダナマイシンへのコンジュゲーションの前の、軽鎖のN末端でLNQ01(配列番号9)タグを有するmAb1−LNQ01(E)、およびAcLys−プトレシニル−ゲルダナマイシンへのコンジュゲーションの後の、軽鎖のN末端でLNQ01(配列番号9)タグを有するmAb1−LNQ01(F)の薬剤についても試験した。さらに、いかなるQタグも有さない野生型IgG1 mAb1で得られた疎水性相互作用クロマトグラムを用いる対照実験もまた、コンジュゲーションの前(A)、アミノカプロイル−VC−PABC−MMAFとのコンジュゲーションの後(B)、アミノカプロイル−MMAFとのコンジュゲーションの後(C)、プトレシニル−ゲルダナマイシンとのコンジュゲーションの後(D)、およびAcLys−プトレシニル−ゲルダナマイシンとのコンジュゲーションの後(E)の薬剤について行った。対照実験において、抗体にコンジュゲートする薬剤は観察されなかった。
異なる化学量論を有する抗体−薬剤コンジュゲートの相対的分布を、疎水性相互作用クロマトグラムを積分することによって得た。ロード量は、薬剤/抗体比率に等しい。
IgG1アイソタイプ、IgG2アイソタイプ、およびIgG4アイソタイプのQタグQ01(GSPLAQSHGG(配列番号7))を有する抗体を、トランスグルタミナーゼおよびカダベリンAlexa−488とコンジュゲートさせた。対照として、導入されたタグ内にグルタミンを有さない抗体および関連のない野生型IgG2抗体をまた、他の3つの抗体で行ったものと同一の条件下でコンジュゲートさせた。全ての抗体をペプチドに消化し、逆相クロマトグラフィーによって分離し、その後、質量分析した。消化されたペプチドを、490nmでの吸光度(Alexa488染料の最大吸光度)によってモニタリングした。2つの二重ピークをQタグ含有試料において同定したが、対照抗体において標識は同定されず、このことは、所与の条件下での部位特異的なコンジュゲーションを強く示す。IgG1、2、4のQ01試料からの2つの二重ピークを質量分析によってさらに分析して、付着の部位を確認した。Alexa488がコンジュゲートした全てのペプチドを、導入されたQ01タグとして同定した。(Alexa488を用いて観察された2つのピークは、実験において用いられたAlexa488が、5位または6位でカダベリンリンカーが付着した2つの種の混合物であることに起因するものであった。タグペプチドの二重ピークの特徴は、発現の間に起こるC末端での少量のタンパク質分解の結果である。)図8Aおよび8B。
異なるKタグおよびQタグを用いる、二重特異的抗体の、トランスグルタミナーゼによって触媒される架橋。
材料および方法
IgGヘテロ二量体(すなわち、二重特異的抗体)を、1〜2mMのGSH(グルタチオン)を有するPBS(リン酸緩衝溶液)内で、37℃で24時間、2つの抗体(野生型IgG4またはIgG1およびIgG2の二重特異的突然変異体)をインキュベートすることによって調製した。ヘテロ二量体を、形成された二重特異的抗体と微生物トランスグルタミナーゼとのインキュベーションによって架橋した。アミド転移反応において、抗体上の導入されたグルタミンはアシルドナーとして作用し、抗体上のリジン、リジン含有タグ、またはジアミン化合物は、アシルアクセプターとして作用する。典型的には、1.67〜4.04μMの精製抗体を、pH範囲6.2〜8.8の、150〜900mMのNaCl、および25mMのMES(2−[N−モルホリン]エタミンスルホン酸)、HEPESまたはTris HCl緩衝液内で、0.1〜1.0%(w/v)のストレプトベルチシリウム・モバラエンス(Streptoverticillium mobaraense)トランスグルタミナーゼ(ACTIVA、味の素、日本)とインキュベートする。ジアミン化合物による2つのグルタミンタグの架橋のケースでは、167〜404μMの間の範囲の20モル濃度過剰なアシルアクセプターを用いた。室温でおよそ2時間のインキュベーションの後、抗体を、当業者によって知られている標準的なアフィニティークロマトグラフィー方法を用いて、MabSelect樹脂(GE Healthcare、Waukesha、WI)上で精製する。架橋効率を、還元性SDSゲル上で抗体をランさせ、重鎖−重鎖架橋のバンドに対して重鎖バンドの強度を比較することによって決定する。
グルタミン(Q00タグ:GSPLAQSHGG(配列番号7))が導入されたC末端(カルボキシル末端)タグを有する対照抗体を、増大量のトランスグルタミナーゼとインキュベートし、次に、還元条件下でSDS PAGEによって分離した。単量体重鎖および架橋した重鎖−重鎖に対応するバンドを定量し、これは、IgG4抗体のおよそ60%が架橋することを示した。二重特異的なWT(野生型)IgG4および突然変異IgG2抗体(2分の1はQタグを有し、残りの半分はKタグを有する)を、方法の節において記載されているように調製し、トランスグルタミナーゼによって架橋し、上記の対照抗体として分析した。データは、WT−IgG4では抗体のおよそ30%が架橋したが、突然変異IgG2は67%を示したことを示す。図5。
Q01タグを有する突然変異IgG2抗体を、K02−K08タグを有する突然変異IgG2抗体とインキュベートし、二重特異的抗体を上記のように形成させた。架橋の程度を、SDS PAGEを用いて測定した。K08タグを有する突然変異IgG2抗体を、Q01−Q08タグを有する突然変異IgG2抗体とインキュベートし、二重特異的抗体を上記のように形成させた。架橋の程度を、SDS PAGEを用いて測定した。図6。
インビトロでの細胞傷害アッセイ
インビトロでの細胞傷害アッセイを、様々な抗体、ペイロード(すなわち、作用物質部分)、およびアミンドナー単位を用いて行った。mAb2(キメラIgG1抗体)では、標的を発現する細胞(A431、OVCAR3、BxPC3、およびHT−29)または発現しない細胞(SW620)を、処理の前に24時間、壁が白く底が澄明なプレートに2000個細胞/ウェルで播種した。細胞を、4倍連続希釈された抗体−薬剤コンジュゲートまたは遊離化合物(すなわち、薬剤に抗体がコンジュゲートしていない)で処理し、これを3組行った。細胞の生存率を、Cell Titer−Glo(登録商標)Luminescent Cell Viability Assay 96(Promega、Madison WI)によって処理の96時間後に決定した。相対的な細胞生存率を、未処理対照に対するパーセンテージとして決定した。IC50を、Prismソフトウェアによって計算した。表6は、様々な抗体−薬剤コンジュゲートおよびコンジュゲートしていない薬剤を用いる、異なる細胞におけるコンジュゲーション比率および抗体のIC50を示す。
インビボでのMDA−361 DYT2腫瘍異種移植モデル
抗体−薬剤コンジュゲートのインビボでの有効性研究を、MDA−361 DYT2細胞系を用いて、標的を発現する異種移植モデルを用いて行った。DYT2の有効性研究では、50%マトリゲル内の1000万個の腫瘍細胞を、腫瘍サイズが250〜350mm3に達するまで、6〜8週齢の放射線照射したヌードマウスに皮下移植した。平均腫瘍容積がおよそ400mm3に達したら処理を開始した。投与は、ボーラス尾静脈注射を介して行った。処理に対する腫瘍の応答に応じて、動物に1〜10mg/kgの抗体薬剤コンジュゲート(mAb3)を注射し、4日ごとに4回処理した。抗体薬剤コンジュゲートには、mAb3−TG1−アミノカプロイル−VC−PABC−MMAD、mAb3−H10−TG6−アミノ−PEG6−C2−MMAD、mAb3−N297A−アミノ−PEG6−C2−MMAD、およびmAb3−N297Q−アミノ−PEG6−C2−MMADが含まれる。TG1(またはHCQ01)、H10、およびTG6は、配列番号2、3、および48の配列をそれぞれ有するQタグである。Qタグ(すなわち、TG1、H10、およびTG6)で置き換えられたmAb上の具体的なアミノ酸位置を表9に示す。N297Aは、297位での非グリコシル化および295位でのアクセス可能な/反応性の内因性グルタミンを生じさせる、297位でのNからAへのアミノ酸置換を示す。N297Qは、297位での非グリコシル化ならびに295位および297位でのアクセス可能な/反応性の内因性グルタミンを生じさせる、297位でのNからQへのアミノ酸置換を示す。全ての実験動物は、週に1回、体重の変化をモニタリングした。腫瘍容積を、最初の50日間は週に2回、およびその後は週に1回、キャリパー装置によって測定し、式:腫瘍容積=(長さ×幅2)/2で計算した。動物の腫瘍容積が2500mm3に達する前に、動物を安楽死させた。抗体薬剤コンジュゲートで処理した全ての動物において、全てのコンジュゲートで、投与後1週間以内に腫瘍の退行が観察され、少なくとも5週間継続した。図9を参照されたい。逆に、腫瘍容積は、媒体のみを投与された動物において増大した。図9を参照されたい。これらの結果は、本明細書において記載される方法によって調製された抗体薬剤コンジュゲートがマウス異種移植モデルにおける腫瘍サイズの低減において効果的であることを示す。
インビボでのN87腫瘍異種移植モデル
抗体−薬剤コンジュゲートのインビボでの有効性研究を、N87細胞系を用いて、標的を発現する異種移植モデルを用いて行った。有効性研究では、50%マトリゲル内の7500万個の腫瘍細胞を、腫瘍サイズが250と350mm3との間に達するまで、6〜8週齢のヌードマウスに皮下移植した。平均腫瘍容積がおよそ400mm3に達したら処理を開始した。投与は、ボーラス尾静脈注射を介して行った。処理に対する腫瘍の応答に応じて、動物に1〜10mg/kg(1、3、および10mg/kg、群当たりn=8)の抗体薬剤コンジュゲート(mAb3)を注射し、4日ごとに4回処理した。抗体薬剤コンジュゲートには、mAb3−TG1−アミノカプロイル−VC−PABC−MMAD、mAb3−TG1−アミノ−PEG6−C2−MMAD、およびmAb3−N297Q−アミノ−PEG6−C2−MMADが含まれる。QタグTG1(またはHCQ01)は、配列番号1に対応する。QタグTG1で置き換えられたmAb上の具体的なアミノ酸位置を表9に示す。N297Qは、297位での非グリコシル化ならびに295位および297位でのアクセス可能な/反応性の内因性グルタミンを生じさせる、297位でのNからQへのアミノ酸置換を示す。全ての実験動物は、週に1回、体重の変化をモニタリングした。腫瘍容積を、最初の50日間は週に2回、およびその後は週に1回、キャリパー装置によって測定し、式:腫瘍容積=(長さ×幅2)/2で計算した。動物の腫瘍容積が2500mm3に達する前に、動物を安楽死させた。10mg/kgでの全てのコンジュゲートで、および3mg/kgのmAb3−TG1−アミノカプロイル−VC−PABC−MMAD群で、1週間後に腫瘍の退行が観察された。腫瘍の阻害は、3mg/kgおよび1mg/kg用量での残りのコンジュゲートで観察された。図10。これらの結果はまた、本明細書において記載される方法によって調製された抗体薬剤コンジュゲートがマウス異種移植モデルにおける腫瘍サイズの低減において効果的であることを示す。
インビボでのBxPC3腫瘍異種移植モデル
抗体−薬剤コンジュゲートのインビボでの有効性研究を、標的を発現するBxPC3異種移植片を用いて行った。腫瘍細胞を、腫瘍サイズが少なくとも200mm3に達するまで、5〜8週齢のSCID(重症複合免疫不全)マウスに皮下移植した。平均腫瘍容積が200〜400mm3に達したら処理を開始した。投与は、ボーラス尾静脈注射を介して行った。処理に対する腫瘍の応答に応じて、動物に1〜10mg/kgの抗体薬剤コンジュゲート(mAb2)を注射し、1回の単回用量で処理した。抗体薬剤コンジュゲートには、mAb2−TG1−アミノカプロイル−VC−PABC−MMADおよびmAb2−N297Q−アミノ−PEG6−C2−MMADが含まれる。QタグTG1(またはHCQ01)は、配列番号1に対応する。QタグTG1で置き換えられたmAb上の具体的なアミノ酸位置を表9に示す。N297Qは、297位での非グリコシル化ならびに295位および297位でのアクセス可能な/反応性の内因性グルタミンを生じさせる、297位でのNからQへのアミノ酸置換を示す。全ての実験動物は、週に1回、体重の変化をモニタリングした。腫瘍容積を、週に1回、キャリパー装置によって測定し、式:腫瘍容積=(長さ×幅2)/2で計算した。動物の腫瘍容積が2000mm3に達する前に、動物を安楽死させた。腫瘍が退行したら、動物を、処理が中断した後の腫瘍の再成長について連続的にモニタリングした。腫瘍の退行は、投与の1週間後に観察され、mAb2−N297Q−PEG6MMAD(左パネル、図11)では3週間、mAb2−TG1−vcMMAD(右パネル、図11)では6週間超継続した。TG1(またはHCQ01)は、配列番号2に対応する。これらの結果はまた、本明細書において記載される方法によって調製された抗体薬剤コンジュゲートがマウス異種移植モデルにおける腫瘍サイズの低減において効果的であることを示す。
コンジュゲーション部位のスキャン
IgG1抗体(mAb2またはmAb4)上の様々な部位での、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率を調べた。抗体の曝露されたループ(例えば、1〜5アミノ酸長)の部分を様々な長さのQタグで置き換えるか、またはQタグをこれらのループ内に挿入した。mAb2突然変異体およびmAb4突然変異体を、トランスグルタミナーゼを用いて様々なリンカー−ペイロード(アミンドナー物質)にコンジュゲートし、コンジュゲーション収量を、実施例1において記載されているように決定した。試験したアミノ酸位置、Qタグの配列、およびコンジュゲーション収量のリストを、表8および9に示す。
インビボでの抗体コンジュゲートの安定性の決定
C末端(アミノ酸位置447)でQタグ(配列番号2)で操作された抗体(mAb2)を、アミノカプロイル−VC−PABC−MMAEまたはアミノカプロイル−VC−PABC−MMADにコンジュゲートし、10mg/kgでSCIDマウスに注射した。マウスをその後、3日後に屠殺した。抗体コンジュゲートを、タンパク質Aを用いてマウス血漿から精製し、HICカラムでランして、実施例1において記載されたように残っているコンジュゲートの量を定量した。Ab−TG1でC末端でコンジュゲートされたアミノカプロイル−VC−PABC−MMAEは、3日後にインビボでほぼ完全に切断されていることが分かった。Ab−TG1でC末端でコンジュゲートされたアミノカプロイル−VC−PABC−MMADは、無傷のコンジュゲートのおよそ60%が3日後にインビボで残っていることが分かった。図12を参照されたい。
トランスグルタミナーゼを用いる、部位特異的なFabコンジュゲーション
生体適合性ポリマーへのFabのコンジュゲーションを、重鎖および/または軽鎖上にグルタミンタグ(Qタグ)を有するFab断片とアミン含有生体適合性ポリマーとの間の、微生物トランスグルタミナーゼによって触媒されるアミド転移反応を介して行う。このアミド転移反応において、Fab断片上のグルタミンはアシルドナーとして作用し、アミン含有ポリマーはアシルアクセプター(アミンドナー)として作用する。精製Fabを、ストレプトベルティシリウム・モバラエンス(Streptoverticillium mobaraense)トランスグルタミナーゼ(ACTIVA(商標)、味の素、日本)の存在下で、過剰なアシルアクセプターとインキュベートする。反応条件を、個別のアシルアクセプター誘導体のために調整する。室温または37℃でのインキュベーションの後、Fabコンジュゲートを、実施例1において記載されているように、当業者に知られている標準的なアフィニティークロマトグラフィー方法を用いて精製する。コンジュゲーション効率を、質量分析、疎水性クロマトグラフィー、または分光光度法(相対的吸光度)、またはイオン交換クロマトグラフィーによって決定する。Fab断片と生体適合性ポリマーとの間の、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率は、50%よりも高く、均質な部位特異的なコンジュゲーションをもたらす。
トランスグルタミナーゼを用いる、部位特異的な毒素ポリペプチドコンジュゲーション
生体適合性ポリマーへの毒素ポリペプチドのコンジュゲーションを、グルタミンタグ(Qタグ)を有する毒素ポリペプチドとアミン含有ポリマーとの間、または第一級アミンを有する毒素ポリペプチドとグルタミンタグを有する生体適合性ポリマーとの間の、微生物トランスグルタミナーゼによって触媒されるアミド転移反応を介して行う。毒素ポリペプチドは、阻害的なシステインノット(セラトトキシンなど)、コノトキシン(KIIIAまたはSmIIIaなど)、または任意の他の小さな毒素タンパク質足場であり得る。このアミド転移反応において、グルタミンはアシルドナーとして作用し、アミンはアシルアクセプターとして作用する。精製毒素ポリペプチドを、ストレプトベルティシリウム・モバラエンス(Streptoverticillium mobaraense)トランスグルタミナーゼ(ACTIVA(商標)、味の素、日本)の存在下で、アシルアクセプターとインキュベートする。反応条件を、個別のアシルアクセプター誘導体のために調整する。室温でのインキュベーションの後、毒素ポリペプチドコンジュゲートを、当業者に知られている標準的なアフィニティークロマトグラフィー方法を用いて精製する。コンジュゲーション効率を、質量分析、疎水性クロマトグラフィー、またはイオン交換クロマトグラフィーによって決定する。毒素ポリペプチドと生体適合性ポリマーとの間の、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率は、50%よりも高く、均質な部位特異的なコンジュゲーションをもたらす。
トランスグルタミナーゼを用いる、抗体ループへの部位特異的な薬剤コンジュゲーション
抗体へのそのループ上での異なる薬剤(例えば、MMAE、MMAD、MMAF、またはゲルダナマイシン)のコンジュゲーションを、重鎖および/または軽鎖上のループ内にグルタミンタグ(Qタグ)を有する抗体とアミンドナー単位を含有する薬剤(例えば、アミノカプロイル−Val−Cit−PABC、AcLys−プトレシン、AcLys−β−Ala、またはAcLys−Val−Cit−PABC)との間の、微生物トランスグルタミナーゼによって触媒されるアミド転移反応を介して行う。このアミド転移反応において、抗体ループにおけるグルタミンはアシルドナーとして作用し、薬剤に連結したアミンドナー単位はアシルアクセプター(アミンドナー)として作用する。精製抗体を、ストレプトベルティシリウム・モバラエンス(Streptoverticillium mobaraense)トランスグルタミナーゼ(ACTIVA(商標)、味の素、日本)の存在下で、過剰なアシルアクセプターとインキュベートする。反応条件を、個別のアシルアクセプター誘導体のために調整する。室温でのインキュベーションの後、抗体−薬剤コンジュゲートを、実施例1において記載されているように、当業者に知られている標準的なアフィニティークロマトグラフィー方法を用いて精製する。コンジュゲーション効率を、質量分析、疎水性クロマトグラフィー、またはイオン交換クロマトグラフィーによって決定する。抗体と薬剤との間の、トランスグルタミナーゼによって触媒されるコンジュゲーションの効率は、50%よりも高く、抗体ループの部位での均質な部位特異的なコンジュゲーションをもたらす。
Claims (6)
- 式:(Fc含有ポリペプチド)−T−Aを含む操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲートであって、
式中、Tが、特異的部位で操作されたアシルドナーグルタミン含有タグであり、Aがアミンドナー物質であり、
アミンドナー物質が、Fc含有ポリペプチド内のE294−N297またはE293−N297部位にあるアシルドナーグルタミン含有タグに部位特異的にコンジュゲートしており、
アシルドナーグルタミン含有タグが、LLQG(配列番号3)、LLQLLQG(配列番号52)、LLQLQ(配列番号54)またはLLQLLQ(配列番号55)である、
操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート。 - 操作されたFc含有ポリペプチドがIgGである、請求項1に記載の操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート。
- アミンドナー物質が、式:
X−Y−Z
を含み、
式中、Xがアミンドナー単位であり、Yがリンカーであり、Zが作用物質部分である、
請求項1に記載の操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート。 - アミンドナー単位−リンカー(X−Y)が、Ac−Lys−Gly、アミノカプロン酸、Ac−Lys−β−Ala、アミノ−PEG2−C2、アミノ−PEG3−C2、アミノ−PEG6−C2、Ac−Lys−Val−Cit−PABC、アミノカプロイル−Val−Cit−PABC、プトレシン、およびAc−Lys−プトレシンからなる群から選択される、請求項3に記載の操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート。
- 作用物質部分が細胞傷害物質である、請求項3に記載の操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート。
- 細胞傷害物質が、アントラサイクリン、オーリスタチン、ドラスタチン、デュオカルマイシン、エンジイン、ゲルダナマイシン、メイタンシン、ピューロマイシン、タキサン、ビンカアルカロイド、SN−38、ツブリシン、ヘミアステリン、およびその立体異性体からなる群から選択される、請求項5に記載の操作されたFc含有ポリペプチドコンジュゲート。
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