JP6290145B2 - 非誘導体化非代謝化ビタミンｄの質量分析法による決定 - Google Patents
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Description
本発明は、非代謝化ビタミンＤの定量的測定に関する。特定の態様では、本発明は、非
代謝化ビタミンＤのタンデム質量分析法により定量的に測定するための方法に関する。
代謝化ビタミンＤのタンデム質量分析法により定量的に測定するための方法に関する。
ビタミンＤは、カルシウム（Ｃａ２＋）ホメオスタシスの正の調節において重要な生理
学的役割を備える必須栄養素である。ビタミンＤは、太陽光を浴びることによって皮内で
新しく（de novo）生成でき、又は飲食物から吸収することができる。ビタミンＤには２
つの形態：ビタミンＤ２（エルゴカルシフェロール）及びビタミンＤ３（コレカルシフェ
ロール）がある。ビタミンＤ３は、動物によって新しく合成される形態である。ビタミン
Ｄ３は、さらに米合衆国内で製造される乳製品及び特定の食品に添加される一般的補助食
品である。食事性及び内因性で合成されるビタミンＤ３はどちらも、生物活性代謝産物を
生成するためには代謝活性化を受けなければならない。ヒトにおいては、ビタミンＤ３活
性化の初期工程は、主として肝臓内で発生し、中間代謝産物である２５−ヒドロキシコレ
カルシフェロール（カルシフェジオール；２５ＯＨＤ３）を形成するためのヒドロキシル
化を含んでいる。カルシフェジオールは、循環中のビタミンＤ３の主要な形態である。循
環中２５ＯＨＤ３は、次に腎臓によって変換されて１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３
（カルシトリオール；１，２５（ＯＨ）２Ｄ３）を形成するが、これは一般にはビタミン
Ｄ３の最高生物活性を備える代謝産物であると考えられている。
学的役割を備える必須栄養素である。ビタミンＤは、太陽光を浴びることによって皮内で
新しく（de novo）生成でき、又は飲食物から吸収することができる。ビタミンＤには２
つの形態：ビタミンＤ２（エルゴカルシフェロール）及びビタミンＤ３（コレカルシフェ
ロール）がある。ビタミンＤ３は、動物によって新しく合成される形態である。ビタミン
Ｄ３は、さらに米合衆国内で製造される乳製品及び特定の食品に添加される一般的補助食
品である。食事性及び内因性で合成されるビタミンＤ３はどちらも、生物活性代謝産物を
生成するためには代謝活性化を受けなければならない。ヒトにおいては、ビタミンＤ３活
性化の初期工程は、主として肝臓内で発生し、中間代謝産物である２５−ヒドロキシコレ
カルシフェロール（カルシフェジオール；２５ＯＨＤ３）を形成するためのヒドロキシル
化を含んでいる。カルシフェジオールは、循環中のビタミンＤ３の主要な形態である。循
環中２５ＯＨＤ３は、次に腎臓によって変換されて１，２５−ジヒドロキシビタミンＤ３
（カルシトリオール；１，２５（ＯＨ）２Ｄ３）を形成するが、これは一般にはビタミン
Ｄ３の最高生物活性を備える代謝産物であると考えられている。
ビタミンＤ２は、真菌及び植物起源に由来する。多数の店頭販売栄養補助食品は、コレ
カルシフェロール（ビタミンＤ３）ではなくエルゴカルシフェロール（ビタミンＤ２）を
含有している。Ｄｒｉｓｄｏｌは、米合衆国内で入手できるビタミンＤの唯一の高力価処
方薬であり、エルゴカルシフェロールを用いて製造される。ビタミンＤ２は、ヒトにおい
てはビタミンＤ３と類似の代謝活性化経路を経て、代謝産物である２５ＯＨＤ２及び１，
２５（ＯＨ）２Ｄ２を形成する。ビタミンＤ２及びビタミンＤ３は、長年に渡りヒトにお
いて生物学的に等価であると考えられてきた。しかし近年の報告は、これら２種の形態の
ビタミンＤの生物活性及びバイオアベイラビリティには差がある可能性を示唆している（
Armas et. al., (2004) J. Clin. Endocrinol. Metab. 89: 5387-5391）。
カルシフェロール（ビタミンＤ３）ではなくエルゴカルシフェロール（ビタミンＤ２）を
含有している。Ｄｒｉｓｄｏｌは、米合衆国内で入手できるビタミンＤの唯一の高力価処
方薬であり、エルゴカルシフェロールを用いて製造される。ビタミンＤ２は、ヒトにおい
てはビタミンＤ３と類似の代謝活性化経路を経て、代謝産物である２５ＯＨＤ２及び１，
２５（ＯＨ）２Ｄ２を形成する。ビタミンＤ２及びビタミンＤ３は、長年に渡りヒトにお
いて生物学的に等価であると考えられてきた。しかし近年の報告は、これら２種の形態の
ビタミンＤの生物活性及びバイオアベイラビリティには差がある可能性を示唆している（
Armas et. al., (2004) J. Clin. Endocrinol. Metab. 89: 5387-5391）。
不活性ビタミンＤ前駆体であるビタミンＤの測定が臨床状況で行われることは希である
。むしろ、２５−ヒドロキシビタミンＤ３、２５−ヒドロキシビタミンＤ２、及び全２５
−ヒドロキシビタミンＤ（「２５ＯＨＤ」）の血清中濃度が、ビタミンＤの栄養状態及び
特定のビタミンＤアナログの有効性の有用な指標である。２５ＯＨＤの測定は、カルシウ
ムの代謝障害の診断及び管理において一般に使用される。この点において、低濃度の２５
ＯＨＤは、疾患、例えば低カルシウム血症、低リン血症、続発性甲状腺機能亢進症、アル
カリホスファターゼ値上昇、成人における骨軟化症及び小児におけるくる病と関連するビ
タミンＤ欠乏症の徴候である。ビタミンＤ中毒が疑われる患者においては、２５ＯＨＤの
濃度上昇は、この障害を高カルシウム血症を誘発する他の障害から識別する。
。むしろ、２５−ヒドロキシビタミンＤ３、２５−ヒドロキシビタミンＤ２、及び全２５
−ヒドロキシビタミンＤ（「２５ＯＨＤ」）の血清中濃度が、ビタミンＤの栄養状態及び
特定のビタミンＤアナログの有効性の有用な指標である。２５ＯＨＤの測定は、カルシウ
ムの代謝障害の診断及び管理において一般に使用される。この点において、低濃度の２５
ＯＨＤは、疾患、例えば低カルシウム血症、低リン血症、続発性甲状腺機能亢進症、アル
カリホスファターゼ値上昇、成人における骨軟化症及び小児におけるくる病と関連するビ
タミンＤ欠乏症の徴候である。ビタミンＤ中毒が疑われる患者においては、２５ＯＨＤの
濃度上昇は、この障害を高カルシウム血症を誘発する他の障害から識別する。
１，２５（ＯＨ）２Ｄの測定も臨床状況において使用される。特定の疾患状態は、１，
２５（ＯＨ）２Ｄの循環中濃度によって反映される可能性があり、例えば腎疾患及び腎不
全は結果として低濃度の１，２５（ＯＨ）２Ｄを生じさせることが多い。１，２５（ＯＨ
）２Ｄの上昇した濃度は、過剰な副甲状腺ホルモンの徴候となることがあり、又は特定の
疾患、例えばサルコイドーシス又は特定タイプのリンパ腫の徴候となることがある。
２５（ＯＨ）２Ｄの循環中濃度によって反映される可能性があり、例えば腎疾患及び腎不
全は結果として低濃度の１，２５（ＯＨ）２Ｄを生じさせることが多い。１，２５（ＯＨ
）２Ｄの上昇した濃度は、過剰な副甲状腺ホルモンの徴候となることがあり、又は特定の
疾患、例えばサルコイドーシス又は特定タイプのリンパ腫の徴候となることがある。
ビタミンＤ代謝産物の検出は、ラジオイムノアッセイによって２５ＯＨＤ２及び２５Ｏ
ＨＤ３に対して共特異的な抗体を用いて実施されてきた。現行の免疫学に基づくアッセイ
では２５ＯＨＤ２及び２５ＯＨＤ３を別個に分解（resolve）できないために、ビタミン
Ｄのあらゆる栄養欠乏症の起源を他の試験に頼らずに決定することはできない。特異的ビ
タミンＤ代謝産物を検出するために質量分析法を使用する方法を開示する報告書が公開さ
れている。一部の報告書では、ビタミンＤ代謝産物が質量分析法を受ける前に誘導体化さ
れるが、他の報告書では誘導化されない。例えば、２００７年１２月２８日に出願された
Holmquist, et al.、米国特許出願第１１／９４６７６５号明細書、Yeung B, et al., J
Chromatogr. 1993, 645 (1): 115-23、Higashi T, et al., Steroids. 2000, 65 (5): 28
1-94、Higashi T, et al., Biol Pharm Bull. 2001, 24 (7): 738-43、Higashi T, et al
., J Pharm Biomed Anal. 2002, 29 (5): 947-55、Higashi T, et al., Anal. Biochanal
Chem, 2008, 391: 229-38及びAronov, et al., Anal Bioanal Chem, 2008, 391: 1917-3
0は、質量分析法の前に代謝産物を誘導体化することにより、様々なビタミンＤ代謝産物
を検出する方法を開示している。非誘導体化ビタミンＤ代謝産物を検出するための方法は
、Clarke, et al.により２００５年４月６日に出願された米国特許出願第１１／１０１，
１６６号明細書及び２００６年３月２１日に出願された同第１１／３８６，２１５号明細
書、並びにSingh, et al.により２００４年１０月２４日に出願された米国特許出願第１
０／９７７，１２１号明細書の中に報告されている。クックソン型試薬、特に４−フェニ
ル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）及び４−［２−（６，７−
ジメトキシ−４−メチル−３−オキソ−３，４−ジヒドロキノキサリル）エチル］−１，
２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＤＭＥＱ−ＴＡＤ）を用いたビタミンＤ３の誘
導体化を開示している報告書も公表されている。Aberhart, J, et al., J. Org. Chem. 1
976, 41 (12): 2098-2102及びKamao, M, et al., J Chromatogr. B 2007, 859: 192-200
を参照されたい。
ＨＤ３に対して共特異的な抗体を用いて実施されてきた。現行の免疫学に基づくアッセイ
では２５ＯＨＤ２及び２５ＯＨＤ３を別個に分解（resolve）できないために、ビタミン
Ｄのあらゆる栄養欠乏症の起源を他の試験に頼らずに決定することはできない。特異的ビ
タミンＤ代謝産物を検出するために質量分析法を使用する方法を開示する報告書が公開さ
れている。一部の報告書では、ビタミンＤ代謝産物が質量分析法を受ける前に誘導体化さ
れるが、他の報告書では誘導化されない。例えば、２００７年１２月２８日に出願された
Holmquist, et al.、米国特許出願第１１／９４６７６５号明細書、Yeung B, et al., J
Chromatogr. 1993, 645 (1): 115-23、Higashi T, et al., Steroids. 2000, 65 (5): 28
1-94、Higashi T, et al., Biol Pharm Bull. 2001, 24 (7): 738-43、Higashi T, et al
., J Pharm Biomed Anal. 2002, 29 (5): 947-55、Higashi T, et al., Anal. Biochanal
Chem, 2008, 391: 229-38及びAronov, et al., Anal Bioanal Chem, 2008, 391: 1917-3
0は、質量分析法の前に代謝産物を誘導体化することにより、様々なビタミンＤ代謝産物
を検出する方法を開示している。非誘導体化ビタミンＤ代謝産物を検出するための方法は
、Clarke, et al.により２００５年４月６日に出願された米国特許出願第１１／１０１，
１６６号明細書及び２００６年３月２１日に出願された同第１１／３８６，２１５号明細
書、並びにSingh, et al.により２００４年１０月２４日に出願された米国特許出願第１
０／９７７，１２１号明細書の中に報告されている。クックソン型試薬、特に４−フェニ
ル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）及び４−［２−（６，７−
ジメトキシ−４−メチル−３−オキソ−３，４−ジヒドロキノキサリル）エチル］−１，
２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＤＭＥＱ−ＴＡＤ）を用いたビタミンＤ３の誘
導体化を開示している報告書も公表されている。Aberhart, J, et al., J. Org. Chem. 1
976, 41 (12): 2098-2102及びKamao, M, et al., J Chromatogr. B 2007, 859: 192-200
を参照されたい。
Armas et. al., (2004) J. Clin. Endocrinol. Metab. 89: 5387-5391
Yeung B, et al., J Chromatogr. 1993, 645 (1): 115-23
Higashi T, et al., Steroids. 2000, 65 (5): 281-94
Higashi T, et al., Biol Pharm Bull. 2001, 24 (7): 738-43
Higashi T, et al., J Pharm Biomed Anal. 2002, 29 (5): 947-55
Higashi T, et al., Anal. Biochanal Chem, 2008, 391: 229-38
Aronov, et al., Anal Bioanal Chem, 2008, 391: 1917-30
Aberhart, J, et al., J. Org. Chem. 1976, 41 (12): 2098-2102
Kamao, M, et al., J Chromatogr. B 2007, 859: 192-200
本発明は、サンプル中のビタミンＤの１つ又はそれ以上の（非代謝化）形態の量をタン
デム質量分析法を含む質量分析法によって検出するための方法を提供する。１つの態様で
は、サンプル由来のビタミンＤは、質量分析法による分析の前に誘導体化される。第２態
様では、サンプル由来のビタミンＤは、質量分析法による分析の前に誘導体化されない。
デム質量分析法を含む質量分析法によって検出するための方法を提供する。１つの態様で
は、サンプル由来のビタミンＤは、質量分析法による分析の前に誘導体化される。第２態
様では、サンプル由来のビタミンＤは、質量分析法による分析の前に誘導体化されない。
第１態様の一部の実施形態では、本方法は：（ｉ）サンプル中のクックソン型誘導体化
ビタミンＤを質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成する
ために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの該前駆
体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生
成するためにフラグメント化する工程、（ｉｉｉ）該前駆体及びフラグメントイオンの１
つ又はそれ以上の量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）に
おいて決定されたイオンの量を該サンプル中のビタミンＤの量と関連付ける工程を含んで
いる。これらの方法では、サンプルは、工程（ｉ）の前にクックソン型誘導体化ビタミン
Ｄを生成するために十分な条件下でクックソン型誘導体化試薬に曝露される。一部の実施
形態では、クックソン型誘導体化ビタミンＤは、イオン化の前に抽出カラム及び分析カラ
ムにかけられる。関連する実施形態では、分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー
（ＨＰＬＣ）カラムであってよい。
ビタミンＤを質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成する
ために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの該前駆
体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生
成するためにフラグメント化する工程、（ｉｉｉ）該前駆体及びフラグメントイオンの１
つ又はそれ以上の量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）に
おいて決定されたイオンの量を該サンプル中のビタミンＤの量と関連付ける工程を含んで
いる。これらの方法では、サンプルは、工程（ｉ）の前にクックソン型誘導体化ビタミン
Ｄを生成するために十分な条件下でクックソン型誘導体化試薬に曝露される。一部の実施
形態では、クックソン型誘導体化ビタミンＤは、イオン化の前に抽出カラム及び分析カラ
ムにかけられる。関連する実施形態では、分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー
（ＨＰＬＣ）カラムであってよい。
第１態様の一部の実施形態では、本方法は：（ｉ）サンプルを乱流液体クロマトグラフ
ィー（ＴＦＬＣ）にかける工程、（ｉｉ）該サンプル由来のクックソン型誘導体化ビタミ
ンＤを質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のイオンを生成するために適合す
る条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉｉ）１つ又はそれ以上の該クックソン型
誘導体化ビタミンＤイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（
ｉｉｉ）において決定されたクックソン型誘導体化ビタミンＤイオンの量を該サンプル中
のビタミンＤの量と関連付ける工程を含んでいる。これらの実施形態では、サンプルは、
クックソン型誘導体化試薬に、工程（ｉ）の前に該サンプル中でクックソン型誘導体化ビ
タミンＤを生成するために十分な条件下で曝露される。一部の実施形態では、サンプルは
、工程（ｉ）の後であるが工程（ｉｉ）の前に高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ
）にかけられる。
ィー（ＴＦＬＣ）にかける工程、（ｉｉ）該サンプル由来のクックソン型誘導体化ビタミ
ンＤを質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のイオンを生成するために適合す
る条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉｉ）１つ又はそれ以上の該クックソン型
誘導体化ビタミンＤイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（
ｉｉｉ）において決定されたクックソン型誘導体化ビタミンＤイオンの量を該サンプル中
のビタミンＤの量と関連付ける工程を含んでいる。これらの実施形態では、サンプルは、
クックソン型誘導体化試薬に、工程（ｉ）の前に該サンプル中でクックソン型誘導体化ビ
タミンＤを生成するために十分な条件下で曝露される。一部の実施形態では、サンプルは
、工程（ｉ）の後であるが工程（ｉｉ）の前に高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ
）にかけられる。
一部の実施形態では、クックソン型誘導体化試薬は、４−フェニル−１，２，４−トリ
アゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）である。これらの実施形態の一部では、１つ又は
それ以上の前駆体イオンは、５７２．４±０．５及び５６０．４±０．５の質量／電荷比
（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオン
を含んでいる。これらの実施形態の一部では、１つ又はそれ以上のフラグメントイオンは
、２９８．１±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオンを含んでいる。
アゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）である。これらの実施形態の一部では、１つ又は
それ以上の前駆体イオンは、５７２．４±０．５及び５６０．４±０．５の質量／電荷比
（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオン
を含んでいる。これらの実施形態の一部では、１つ又はそれ以上のフラグメントイオンは
、２９８．１±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオンを含んでいる。
ビタミンＤがビタミンＤ２を含む実施形態では、１つ又はそれ以上のクックソン型誘導
体化ビタミンＤイオンは、５７２．３±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備える前駆体
イオン及び２９８．１±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備えるフラグメントイオンを
含むことができる。ビタミンＤがビタミンＤ３を含む実施形態では、１つ又はそれ以上の
クックソン型誘導体化ビタミンＤイオンは、５６０．３±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ
）を備える前駆体イオン及び２９８．１±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備えるフラ
グメントイオンを含むことができる。ビタミンＤがビタミンＤ２及びビタミンＤ３を含む
実施形態では、１つ又はそれ以上の前駆体イオンは５７２．４±０．５の質量／電荷比（
ｍ／ｚ）を備えるビタミンＤ２前駆体イオン及び５６０．４±０．５のｍ／ｚを備えるビ
タミンＤ３前駆体イオンを含むことができ、及び１つ又はそれ以上のフラグメントイオン
は、２９８．１±０．５のｍ／ｚを備えるビタミンＤ２フラグメントイオン及び２９８．
１±０．５のｍ／ｚを備えるビタミンＤ３フラグメントイオンを含むことができる。
体化ビタミンＤイオンは、５７２．３±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備える前駆体
イオン及び２９８．１±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備えるフラグメントイオンを
含むことができる。ビタミンＤがビタミンＤ３を含む実施形態では、１つ又はそれ以上の
クックソン型誘導体化ビタミンＤイオンは、５６０．３±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ
）を備える前駆体イオン及び２９８．１±０．５の質量／電荷比（ｍ／ｚ）を備えるフラ
グメントイオンを含むことができる。ビタミンＤがビタミンＤ２及びビタミンＤ３を含む
実施形態では、１つ又はそれ以上の前駆体イオンは５７２．４±０．５の質量／電荷比（
ｍ／ｚ）を備えるビタミンＤ２前駆体イオン及び５６０．４±０．５のｍ／ｚを備えるビ
タミンＤ３前駆体イオンを含むことができ、及び１つ又はそれ以上のフラグメントイオン
は、２９８．１±０．５のｍ／ｚを備えるビタミンＤ２フラグメントイオン及び２９８．
１±０．５のｍ／ｚを備えるビタミンＤ３フラグメントイオンを含むことができる。
第２態様の一部の実施形態では、本発明は、サンプル中のビタミンＤの量をタンデム質
量分析法によって誘導体化ビタミンＤのイオン化及び検出を行わずに決定する方法を提供
する。一部の実施形態では、ビタミンＤは、ビタミンＤ２を含んでいる。これらの方法は
：サンプル由来のビタミンＤ２を３９７．２±０．５又は３７９．２±０．５の質量対電
荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法によって検
出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源
に曝露させる工程、少なくとも１つの該前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な
１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程、（ｉ
ｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のイオンの量を質量
分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において決定されたビタミン
Ｄ２イオンの存在を該サンプル中のビタミンＤ２の存在と関連付ける工程を含んでいる。
これらの方法では、フラグメント化前駆体イオンが３９７．２±０．５のｍ／ｚを備える
イオンを含む場合は、該フラグメントイオンは、１５９．０±０．５、１４６．９±０．
５、１３３．１±０．５及び１２１．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からな
る群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含んでいる。これらの方法では、フラグ
メント化前駆体イオンが３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、該フ
ラグメントイオンは、２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、１７５．２±０．５及
び１５９．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又
はそれ以上のイオンを含んでいる。一部の実施形態では、サンプル由来のビタミンＤ２は
、イオン化の前に抽出カラム、例えば固相抽出（ＳＰＥ）カラム又は乱流液体クロマトグ
ラフィー（ＴＨＬＣ）カラムにかけることができる。一部の実施形態では、サンプル由来
のビタミンＤ２は、イオン化の前に分析カラム、例えば高性能液体クロマトグラフィー（
ＨＰＬＣ）カラムにさらにかけられる。
量分析法によって誘導体化ビタミンＤのイオン化及び検出を行わずに決定する方法を提供
する。一部の実施形態では、ビタミンＤは、ビタミンＤ２を含んでいる。これらの方法は
：サンプル由来のビタミンＤ２を３９７．２±０．５又は３７９．２±０．５の質量対電
荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法によって検
出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源
に曝露させる工程、少なくとも１つの該前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な
１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程、（ｉ
ｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のイオンの量を質量
分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において決定されたビタミン
Ｄ２イオンの存在を該サンプル中のビタミンＤ２の存在と関連付ける工程を含んでいる。
これらの方法では、フラグメント化前駆体イオンが３９７．２±０．５のｍ／ｚを備える
イオンを含む場合は、該フラグメントイオンは、１５９．０±０．５、１４６．９±０．
５、１３３．１±０．５及び１２１．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からな
る群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含んでいる。これらの方法では、フラグ
メント化前駆体イオンが３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、該フ
ラグメントイオンは、２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、１７５．２±０．５及
び１５９．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又
はそれ以上のイオンを含んでいる。一部の実施形態では、サンプル由来のビタミンＤ２は
、イオン化の前に抽出カラム、例えば固相抽出（ＳＰＥ）カラム又は乱流液体クロマトグ
ラフィー（ＴＨＬＣ）カラムにかけることができる。一部の実施形態では、サンプル由来
のビタミンＤ２は、イオン化の前に分析カラム、例えば高性能液体クロマトグラフィー（
ＨＰＬＣ）カラムにさらにかけられる。
第２態様の他の実施形態では、ビタミンＤは、ビタミンＤ３を含んでいる。これらの方
法は：（ｉ）サンプル由来のビタミンＤ３を３８５．２±０．５又は３６７．２±０．５
の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法
によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下で
イオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの該前駆体イオンを、質量分析法
によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメン
ト化する工程、（ｉｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上
のイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において
決定されたビタミンＤ３イオンの存在を該サンプル中のビタミンＤ３の存在と関連付ける
工程を含んでいる。これらの方法では、フラグメント化前駆体イオンが３８５．２±０．
５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、該フラグメントイオンは、１５９．０±０．５
、１４７．０±０．５、１３３．１±０．５及び１０７．１±０．５のｍ／ｚを備えるイ
オン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含んでいる。フラグ
メント化前駆体イオンが３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、該フ
ラグメントイオンは、１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５
のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを
含んでいる。一部の実施形態では、サンプル由来のビタミンＤ３は、イオン化の前に抽出
カラム、例えば固相抽出（ＳＰＥ）カラム又は乱流液体クロマトグラフィー（ＴＨＬＣ）
カラムへかけることができる。一部の実施形態では、サンプル由来のビタミンＤ３は、イ
オン化の前に分析カラム、例えば高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムへさ
らにかけられる。
法は：（ｉ）サンプル由来のビタミンＤ３を３８５．２±０．５又は３６７．２±０．５
の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法
によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下で
イオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの該前駆体イオンを、質量分析法
によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメン
ト化する工程、（ｉｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上
のイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において
決定されたビタミンＤ３イオンの存在を該サンプル中のビタミンＤ３の存在と関連付ける
工程を含んでいる。これらの方法では、フラグメント化前駆体イオンが３８５．２±０．
５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、該フラグメントイオンは、１５９．０±０．５
、１４７．０±０．５、１３３．１±０．５及び１０７．１±０．５のｍ／ｚを備えるイ
オン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含んでいる。フラグ
メント化前駆体イオンが３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、該フ
ラグメントイオンは、１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５
のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを
含んでいる。一部の実施形態では、サンプル由来のビタミンＤ３は、イオン化の前に抽出
カラム、例えば固相抽出（ＳＰＥ）カラム又は乱流液体クロマトグラフィー（ＴＨＬＣ）
カラムへかけることができる。一部の実施形態では、サンプル由来のビタミンＤ３は、イ
オン化の前に分析カラム、例えば高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムへさ
らにかけられる。
本明細書に記載した方法では、質量分析法は、タンデム質量分析法であってよい。タン
デム質量分析法を利用する実施形態では、タンデム質量分析法は、例えば、多重反応モニ
タリング、前駆体イオンスキャニング、又はプロダクトイオンスキャニングを含む当分野
において公知の任意の方法によって実施することができる。
デム質量分析法を利用する実施形態では、タンデム質量分析法は、例えば、多重反応モニ
タリング、前駆体イオンスキャニング、又はプロダクトイオンスキャニングを含む当分野
において公知の任意の方法によって実施することができる。
抽出カラムを利用する実施形態では、抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラム、例え
ば乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってよい。抽出カラム、分析カラ
ム及びイオン化源の２つ又はそれ以上を利用する一部の実施形態では、利用される構成要
素は、自動サンプル処理及び分析を可能にするオンライン方式で結合することができる。
ば乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってよい。抽出カラム、分析カラ
ム及びイオン化源の２つ又はそれ以上を利用する一部の実施形態では、利用される構成要
素は、自動サンプル処理及び分析を可能にするオンライン方式で結合することができる。
特定の実施形態のために有用なクックソン型誘導体化試薬は、４−フェニル−１，２，
４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）、４−メチル−１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン（ＭＴＡＤ）、４−［２−（６，７−ジメトキシ−４−メチル−３−
オキソ−３，４−ジヒドロキノキサリル）エチル］−１，２，４−トリアゾリン−３，５
−ジオン（ＤＭＥＱＴＡＤ）、４−（４−ニトロフェニル）−１，２，４−トリアゾリン
−３，５−ジオン（ＮＰＴＡＤ）及び４−フェロセニルメチル−１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン（ＦＭＴＡＤ）、並びに同位体で標識されたそれらの変種からなる群
から選択することができる。好ましい実施形態では、クックソン型誘導体化試薬は、４−
フェニル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）又は同位体で標識さ
れたそれらの変種である。特定の好ましい実施形態では、クックソン型誘導体化試薬は、
４−フェニル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）又は同位体で標
識されたそれらの変種である。
４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）、４−メチル−１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン（ＭＴＡＤ）、４−［２−（６，７−ジメトキシ−４−メチル−３−
オキソ−３，４−ジヒドロキノキサリル）エチル］−１，２，４−トリアゾリン−３，５
−ジオン（ＤＭＥＱＴＡＤ）、４−（４−ニトロフェニル）−１，２，４−トリアゾリン
−３，５−ジオン（ＮＰＴＡＤ）及び４−フェロセニルメチル−１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン（ＦＭＴＡＤ）、並びに同位体で標識されたそれらの変種からなる群
から選択することができる。好ましい実施形態では、クックソン型誘導体化試薬は、４−
フェニル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）又は同位体で標識さ
れたそれらの変種である。特定の好ましい実施形態では、クックソン型誘導体化試薬は、
４−フェニル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）又は同位体で標
識されたそれらの変種である。
本明細書で使用する用語「ビタミンＤ」は、代謝化されていない任意の１つ又はそれ以
上の天然型又は合成アナログのビタミンＤを意味する。これは、代謝中に発生する特異的
化学修飾（例えば、２５−ヒドロキシビタミンＤ及び１α，２５−ジヒドロキシビタミン
Ｄ）によって同定されるビタミンＤ代謝産物とは対照的である。非代謝化ビタミンＤは、
さらに代謝化形態から識別するために「栄養的」ビタミンＤと言及することもできる。代
謝化形を特定しないビタミンＤへの言及は、非代謝化形への言及である。
上の天然型又は合成アナログのビタミンＤを意味する。これは、代謝中に発生する特異的
化学修飾（例えば、２５−ヒドロキシビタミンＤ及び１α，２５−ジヒドロキシビタミン
Ｄ）によって同定されるビタミンＤ代謝産物とは対照的である。非代謝化ビタミンＤは、
さらに代謝化形態から識別するために「栄養的」ビタミンＤと言及することもできる。代
謝化形を特定しないビタミンＤへの言及は、非代謝化形への言及である。
本明細書で使用する「誘導体化する工程」は、２つの分子を反応させて新規分子を形成
する工程を意味する。従って、誘導体化剤は、他の物質と反応すると物質を誘導体化する
ことのできる物質である。例えば、４−フェニル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−
ジオン（ＰＴＡＤ）は、ビタミンＤと反応するとＰＴＡＤ−誘導体化ビタミンＤを形成す
ることのできる誘導体化試薬である。
する工程を意味する。従って、誘導体化剤は、他の物質と反応すると物質を誘導体化する
ことのできる物質である。例えば、４−フェニル−１，２，４−トリアゾリン−３，５−
ジオン（ＰＴＡＤ）は、ビタミンＤと反応するとＰＴＡＤ−誘導体化ビタミンＤを形成す
ることのできる誘導体化試薬である。
本明細書で使用するビタミンＤの誘導体化形の名称は、誘導体化の性質に関する表示を
含んでいる。例えば、ビタミンＤ２のＰＴＡＤ誘導体は、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２（又は
ＰＴＡＤ−誘導体化ビタミンＤ２）と表示される。
含んでいる。例えば、ビタミンＤ２のＰＴＡＤ誘導体は、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２（又は
ＰＴＡＤ−誘導体化ビタミンＤ２）と表示される。
本明細書で使用する「クックソン型誘導体化剤」は、４−置換１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン化合物である。典型的なクックソン型誘導体化剤には、４−フェニル
−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）、４−メチル−１，２，４−
トリアゾリン−３，５−ジオン（ＭＴＡＤ）、４−［２−（６，７−ジメトキシ−４−メ
チル−３−オキソ−３，４−ジヒドロキノキサリル）エチル］−１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン（ＤＭＥＱＴＡＤ）、４−（４−ニトロフェニル）−１，２，４−ト
リアゾリン−３，５−ジオン（ＮＰＴＡＤ）及び４−フェロセニルメチル−１，２，４−
トリアゾリン−３，５−ジオン（ＦＭＴＡＤ）が含まれる。さらに、一部の実施形態にお
いてはクックソン型誘導体化剤の同位体で標識された変種を使用できる。例えば、１３Ｃ
６−ＰＴＡＤ同位体変種は、標準ＰＴＡＤより６質量単位重く、一部の実施形態において
使用することができる。クックソン型試薬によるビタミンＤ代謝産物の誘導体化は、任意
の適切な方法によって実施できる。例えば、２００７年１２月２８日に出願されたHolmqu
ist, et al.による米国特許出願第１１／９４６７６５号明細書、Yeung B, et al., J Ch
romatogr. 1993, 645 (1): 115-23、Higashi T, et al., Steroids. 2000, 65 (5): 281-
94、Higashi T, et al., Biol Pharm Bull. 2001, 24 (7): 738-43、Higashi T, et al.,
J Pharm Biomed Anal. 2002, 29 (5): 947-55、Higashi T, et al., Anal. Biochanal C
hem, 2008, 391: 229-38及びAronov, et al., Anal Bioanal Chem, 2008, 391: 1917-30
を参照されたい。
ン−３，５−ジオン化合物である。典型的なクックソン型誘導体化剤には、４−フェニル
−１，２，４−トリアゾリン−３，５−ジオン（ＰＴＡＤ）、４−メチル−１，２，４−
トリアゾリン−３，５−ジオン（ＭＴＡＤ）、４−［２−（６，７−ジメトキシ−４−メ
チル−３−オキソ−３，４−ジヒドロキノキサリル）エチル］−１，２，４−トリアゾリ
ン−３，５−ジオン（ＤＭＥＱＴＡＤ）、４−（４−ニトロフェニル）−１，２，４−ト
リアゾリン−３，５−ジオン（ＮＰＴＡＤ）及び４−フェロセニルメチル−１，２，４−
トリアゾリン−３，５−ジオン（ＦＭＴＡＤ）が含まれる。さらに、一部の実施形態にお
いてはクックソン型誘導体化剤の同位体で標識された変種を使用できる。例えば、１３Ｃ
６−ＰＴＡＤ同位体変種は、標準ＰＴＡＤより６質量単位重く、一部の実施形態において
使用することができる。クックソン型試薬によるビタミンＤ代謝産物の誘導体化は、任意
の適切な方法によって実施できる。例えば、２００７年１２月２８日に出願されたHolmqu
ist, et al.による米国特許出願第１１／９４６７６５号明細書、Yeung B, et al., J Ch
romatogr. 1993, 645 (1): 115-23、Higashi T, et al., Steroids. 2000, 65 (5): 281-
94、Higashi T, et al., Biol Pharm Bull. 2001, 24 (7): 738-43、Higashi T, et al.,
J Pharm Biomed Anal. 2002, 29 (5): 947-55、Higashi T, et al., Anal. Biochanal C
hem, 2008, 391: 229-38及びAronov, et al., Anal Bioanal Chem, 2008, 391: 1917-30
を参照されたい。
ビタミンＤは、ビタミンＤの１つ又はそれ以上の形態、例えばビタミンＤ２及び／又は
ビタミンＤ３を意味することができる。サンプルがビタミンＤの複数の形態を含む実施形
態では、ビタミンＤの複数の形態を同時にイオン化することができる。例えば、一部の実
施形態では、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３の量は、同一サンプル内で決定される。これ
らの実施形態では、（誘導体化又は非誘導体化）ビタミンＤ２及びビタミンＤ３は、同時
にイオン化することができる。
ビタミンＤ３を意味することができる。サンプルがビタミンＤの複数の形態を含む実施形
態では、ビタミンＤの複数の形態を同時にイオン化することができる。例えば、一部の実
施形態では、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３の量は、同一サンプル内で決定される。これ
らの実施形態では、（誘導体化又は非誘導体化）ビタミンＤ２及びビタミンＤ３は、同時
にイオン化することができる。
サンプル由来の２つ又はそれ以上の分析物の量を同時に検出するために適用される用語
「同時の」は、同一サンプル注入から該サンプル中の２つ又はそれ以上の分析物の量を反
映するデータを獲得することを意味する。各分析物についてのデータは、使用される器械
技術に依存して、連続的又は並行して獲得できる。例えば、２つの分析物を含有する単一
サンプルをＨＰＬＣカラム内に注入することができ、次にこれは各分析物を順々に溶出さ
せ、結果として質量分析計内への分析物の連続的な導入を生じさせることができる。これ
ら２つの分析物各々の量を決定する工程は、本明細書の目的のためには、両方の分析物が
ＨＰＬＣ内への同一サンプル注入の結果として生じるので、同時に行われる。
「同時の」は、同一サンプル注入から該サンプル中の２つ又はそれ以上の分析物の量を反
映するデータを獲得することを意味する。各分析物についてのデータは、使用される器械
技術に依存して、連続的又は並行して獲得できる。例えば、２つの分析物を含有する単一
サンプルをＨＰＬＣカラム内に注入することができ、次にこれは各分析物を順々に溶出さ
せ、結果として質量分析計内への分析物の連続的な導入を生じさせることができる。これ
ら２つの分析物各々の量を決定する工程は、本明細書の目的のためには、両方の分析物が
ＨＰＬＣ内への同一サンプル注入の結果として生じるので、同時に行われる。
ビタミンＤは、動物の循環中に見いだすことができ、及び／又は生物有機体、例えば動
物が生成することができる。従って、サンプルは、例えば患者、つまり生きている、男性
又は女性の疾患又は状態の診断、予後診断、若しくは治療を受けるために医療環境にやっ
てきたヒトから入手できる。好ましいサンプルは、生物学的サンプル、特に生物学的流体
サンプル、例えば血清又は血漿であってよい。本明細書に提示した方法は、ヒトから採取
された場合にサンプル中に存在するビタミンＤの量を決定するために使用できる。
物が生成することができる。従って、サンプルは、例えば患者、つまり生きている、男性
又は女性の疾患又は状態の診断、予後診断、若しくは治療を受けるために医療環境にやっ
てきたヒトから入手できる。好ましいサンプルは、生物学的サンプル、特に生物学的流体
サンプル、例えば血清又は血漿であってよい。本明細書に提示した方法は、ヒトから採取
された場合にサンプル中に存在するビタミンＤの量を決定するために使用できる。
本明細書に開示した方法の特定の好ましい実施形態では、質量分析法は正イオンモード
で実施される。又は、質量分析法は、負イオンモードで実施される。例えば大気圧化学イ
オン化法（ＡＰＣＩ）、レーザーダイオード熱脱離法（ＬＤＴＤ）又はエレクトロスプレ
ーイオン化法（ＥＳＩ）を含む様々なイオン化源は、本発明の実施形態において使用でき
る。特定の好ましい実施形態では、ビタミンＤ代謝産物は、正イオンモードでＡＰＣＩ又
はＬＤＴＤを用いて測定される。
で実施される。又は、質量分析法は、負イオンモードで実施される。例えば大気圧化学イ
オン化法（ＡＰＣＩ）、レーザーダイオード熱脱離法（ＬＤＴＤ）又はエレクトロスプレ
ーイオン化法（ＥＳＩ）を含む様々なイオン化源は、本発明の実施形態において使用でき
る。特定の好ましい実施形態では、ビタミンＤ代謝産物は、正イオンモードでＡＰＣＩ又
はＬＤＴＤを用いて測定される。
好ましい実施形態では、１つ又はそれ以上の別個に検出可能な内部標準がサンプル中に
提供され、これらの量もサンプル中で決定される。これらの実施形態では、サンプル中に
存在する対象の分析物及び内部標準の両方の全部又は一部分が、質量分析計において検出
可能な複数のイオンを生成するためにイオン化され、各々から生成された１つ又はそれ以
上のイオンが質量分析法によって検出される。好ましくは、内部標準は、ビタミンＤ２−
［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］
−２Ｈ６、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［２６，２６
，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の内の１つ又はそれ以上である。
提供され、これらの量もサンプル中で決定される。これらの実施形態では、サンプル中に
存在する対象の分析物及び内部標準の両方の全部又は一部分が、質量分析計において検出
可能な複数のイオンを生成するためにイオン化され、各々から生成された１つ又はそれ以
上のイオンが質量分析法によって検出される。好ましくは、内部標準は、ビタミンＤ２−
［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］
−２Ｈ６、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［２６，２６
，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の内の１つ又はそれ以上である。
１つ又はそれ以上の別個に検出可能な内部標準は、クックソン型誘導体化剤を用いた処
理（適合する場合）又は該サンプルからの分析物の任意の精製前にサンプル内に提供する
ことができる。これらの実施形態では、１つ又はそれ以上の内部標準は、内因性ビタミン
Ｄと共に誘導体化及び／又は精製を受けることができ、その場合には該誘導体化及び／又
は精製された内部標準のイオンが質量分析法によって検出される。これらの実施形態では
、対象の分析物から生成されたイオンの存在又は量を該サンプル中の対象の分析物の存在
又は量と関連付けることができる。一部の実施形態では、内部標準はビタミンＤの同位体
標識形、例えばビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，２
６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及
びビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６であってよい。
理（適合する場合）又は該サンプルからの分析物の任意の精製前にサンプル内に提供する
ことができる。これらの実施形態では、１つ又はそれ以上の内部標準は、内因性ビタミン
Ｄと共に誘導体化及び／又は精製を受けることができ、その場合には該誘導体化及び／又
は精製された内部標準のイオンが質量分析法によって検出される。これらの実施形態では
、対象の分析物から生成されたイオンの存在又は量を該サンプル中の対象の分析物の存在
又は量と関連付けることができる。一部の実施形態では、内部標準はビタミンＤの同位体
標識形、例えばビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，２
６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及
びビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６であってよい。
質量分析計において検出可能なイオンは、上記に列挙した典型的な内部標準の各々につ
いて生成することができる。数種の典型的な内部標準について生成された典型的スペクト
ルについては、実施例８及び９において考察し、図６から７、９から１０、１２から１３
及び１５から１６に示す。
いて生成することができる。数種の典型的な内部標準について生成された典型的スペクト
ルについては、実施例８及び９において考察し、図６から７、９から１０、１２から１３
及び１５から１６に示す。
本明細書で使用する「同位体標識」は、質量分析法技術によって分析した場合に未標識
分子と比較して標識分子内では質量シフトを生成する。適切な標識の例には、ジュウテリ
ウム（２Ｈ）、１３Ｃ及び１５Ｎが含まれる。例えば、ビタミンＤ２−［６，１９，１９
］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３は、各々ビタミンＤ２及びビ
タミンＤ３より約３質量単位高い質量を有する。同位体標識は、該分子の１つ又はそれ以
上の位置で組み込むことができ、及び１つ又はそれ以上の種類の同位体標識を同一の同位
体で標識された分子上で使用できる。
分子と比較して標識分子内では質量シフトを生成する。適切な標識の例には、ジュウテリ
ウム（２Ｈ）、１３Ｃ及び１５Ｎが含まれる。例えば、ビタミンＤ２−［６，１９，１９
］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３は、各々ビタミンＤ２及びビ
タミンＤ３より約３質量単位高い質量を有する。同位体標識は、該分子の１つ又はそれ以
上の位置で組み込むことができ、及び１つ又はそれ以上の種類の同位体標識を同一の同位
体で標識された分子上で使用できる。
他の実施形態では、ビタミンＤイオンの量は、１つ又はそれ以上の外部参照標準と比較
することによって決定することができる。典型的な外部参照標準には、１つ又はそれ以上
のビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２
７，２７，２７］−２Ｈ６、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ
３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６でスパイクされたブランク血漿又
は血清が含まれる。外部標準は、通常は誘導体化ビタミンＤが検出される実施形態におい
て質量分析法の前に１つ又はそれ以上のクックソン型試薬を用いた処理を含む、分析対象
の任意の他のサンプルと同一の処理及び分析を受けることになる。
することによって決定することができる。典型的な外部参照標準には、１つ又はそれ以上
のビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２
７，２７，２７］−２Ｈ６、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ
３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６でスパイクされたブランク血漿又
は血清が含まれる。外部標準は、通常は誘導体化ビタミンＤが検出される実施形態におい
て質量分析法の前に１つ又はそれ以上のクックソン型試薬を用いた処理を含む、分析対象
の任意の他のサンプルと同一の処理及び分析を受けることになる。
特定の実施形態では、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３の定量下限（ＬＬＯＱ）は、１０ｎｇ／ｍＬ未満、好ましくは５ｎｇ／ｍＬ未満、好ましくは２ｎｇ／ｍＬ未満である。
他の実施形態では、本方法は、サンプル中のビタミンＤ ２ の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、（ｉ）サンプル由来のビタミンＤ ２ を３９７．２±０．５又は３７９．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程、（ｉｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において決定されたビタミンＤ ２ イオンの存在をサンプル中のビタミンＤ ２ の存在と関連付ける工程を含み、ここで、フラグメント化前駆体イオンが３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが１５９．０±０．５、１４６．９±０．５、１３３．１±０．５及び１２１．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化前駆体イオンが３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、１７５．２±０．５及び１５９．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む方法であってもよい。フラグメント化前駆体イオンは、３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。また、サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられてもよい。抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムであってもよく、抽出カラムは、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってもよい。サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられてもよい。そして、分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムであってもよい。抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）のイオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい。イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源であってもよい。タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施されてもよい。本方法は、サンプル中でビタミンＤ ３ を検出する工程をさらに含んでもよい。ビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ は、同時にイオン化されてもよい。サンプルは、生物学的サンプルを含んでもよい。生物学的サンプルはヒト由来であり、サンプル中で決定されたビタミンＤ ２ の量はヒトから採取された場合はサンプル中に存在する量であってもよい。サンプルは、血清又は血漿を含んでもよい。
他の実施形態では、本方法は、サンプル中のビタミンＤ ３ の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、（ｉ）サンプル由来のビタミンＤ ３ を３８５．２±０．５又は３６７．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程、（ｉｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において決定されたビタミンＤ ３ イオンの存在をサンプル中のビタミンＤ ３ の存在と関連付ける工程を含み、ここで、フラグメント化前駆体イオンが３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが１５９．０±０．５、１４７．０±０．５、１３３．１±０．５及び１０７．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化前駆体イオンが３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む方法であってもよい。フラグメント化前駆体イオンは、３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられてもよい。抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムであってもよく、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってもよい。サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられてもよい。分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムであってもよい。抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）のイオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい。イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源であってもよい。タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施されてもよい。本方法は、サンプル中でビタミンＤ ２ を検出する工程をさらに含んでもよい。ビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ は、同時にイオン化されてもよい。サンプルは、生物学的サンプルを含んでもよい。生物学的サンプルはヒト由来であり、サンプル中で決定されたビタミンＤ ３ の量はヒトから採取された場合にサンプル中に存在する量であってもよい。サンプルは、血清又は血漿を含んでもよい。
他の実施形態では、本方法は、サンプル中のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、（ｉ）サンプル中のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ を３９７．２±０．５及び３７９．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオンの群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ２ 前駆体イオン、並びに３８５．２±０．５及び３６７．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオンの群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ３ 前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つのビタミンＤ ２ 前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ２ フラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、ここで、フラグメント化ビタミンＤ ２ 前駆体イオンが３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ２ フラグメントイオンが１５９．０±０．５、１４６．９±０．５、１３３．１±０．５及び１２１．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化ビタミンＤ ２ 前駆体イオンが３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ２ フラグメントイオンが２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、１７５．２±０．５及び１５９．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む工程、（ｉｉｉ）少なくとも１つのビタミンＤ ３ 前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ３ フラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、ここで、フラグメント化ビタミンＤ ３ 前駆体イオンが３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ３ フラグメントイオンは、１５９．０±０．５、１４７．０±０．５、１３３．１±０．５及び１０７．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化ビタミンＤ ３ 前駆体イオンが３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ３ フラグメントイオンは、１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む工程、（ｉｖ）工程（ｉ）、（ｉｉ）及び（ｉｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ イオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び （ｖ）工程（ｖｉ）で決定されたビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ イオンの量をサンプル中のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ の量と関連付ける工程を含む方法であってもよい。フラグメント化ビタミンＤ ２ 前駆体イオンは、３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。フラグメント化ビタミンＤ ３ 前駆体イオンは、３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられてもよい。抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムであってもよく、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってもよい。サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられてもよい。分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムであってもよい。抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）のイオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい。イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源であってもよい。タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施されてもよい。サンプルは、生物学的サンプルを含んでもよい。生物学的サンプルはヒト由来であり、サンプル中で決定されたビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ の量はヒトから採取された場合にサンプル中に存在する量であってもよい。サンプルは、血清又は血漿を含んでもよい。
他の実施形態では、本方法は、サンプル中のビタミンＤ ２ の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、（ｉ）サンプル由来のビタミンＤ ２ を３９７．２±０．５又は３７９．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程、（ｉｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において決定されたビタミンＤ ２ イオンの存在をサンプル中のビタミンＤ ２ の存在と関連付ける工程を含み、ここで、フラグメント化前駆体イオンが３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが１５９．０±０．５、１４６．９±０．５、１３３．１±０．５及び１２１．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化前駆体イオンが３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、１７５．２±０．５及び１５９．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む方法であってもよい。フラグメント化前駆体イオンは、３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。また、サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられてもよい。抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムであってもよく、抽出カラムは、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってもよい。サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられてもよい。そして、分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムであってもよい。抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）のイオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい。イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源であってもよい。タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施されてもよい。本方法は、サンプル中でビタミンＤ ３ を検出する工程をさらに含んでもよい。ビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ は、同時にイオン化されてもよい。サンプルは、生物学的サンプルを含んでもよい。生物学的サンプルはヒト由来であり、サンプル中で決定されたビタミンＤ ２ の量はヒトから採取された場合はサンプル中に存在する量であってもよい。サンプルは、血清又は血漿を含んでもよい。
他の実施形態では、本方法は、サンプル中のビタミンＤ ３ の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、（ｉ）サンプル由来のビタミンＤ ３ を３８５．２±０．５又は３６７．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオン（複数）からなる群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つの前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程、（ｉｉｉ）工程（ｉ）及び（ｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において決定されたビタミンＤ ３ イオンの存在をサンプル中のビタミンＤ ３ の存在と関連付ける工程を含み、ここで、フラグメント化前駆体イオンが３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが１５９．０±０．５、１４７．０±０．５、１３３．１±０．５及び１０７．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化前駆体イオンが３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、フラグメントイオンが１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む方法であってもよい。フラグメント化前駆体イオンは、３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられてもよい。抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムであってもよく、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってもよい。サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられてもよい。分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムであってもよい。抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）のイオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい。イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源であってもよい。タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施されてもよい。本方法は、サンプル中でビタミンＤ ２ を検出する工程をさらに含んでもよい。ビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ は、同時にイオン化されてもよい。サンプルは、生物学的サンプルを含んでもよい。生物学的サンプルはヒト由来であり、サンプル中で決定されたビタミンＤ ３ の量はヒトから採取された場合にサンプル中に存在する量であってもよい。サンプルは、血清又は血漿を含んでもよい。
他の実施形態では、本方法は、サンプル中のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、（ｉ）サンプル中のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ を３９７．２±０．５及び３７９．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオンの群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ２ 前駆体イオン、並びに３８５．２±０．５及び３６７．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備えるイオンの群から選択される質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ３ 前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、（ｉｉ）少なくとも１つのビタミンＤ ２ 前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ２ フラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、ここで、フラグメント化ビタミンＤ ２ 前駆体イオンが３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ２ フラグメントイオンが１５９．０±０．５、１４６．９±０．５、１３３．１±０．５及び１２１．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化ビタミンＤ ２ 前駆体イオンが３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ２ フラグメントイオンが２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、１７５．２±０．５及び１５９．０±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む工程、（ｉｉｉ）少なくとも１つのビタミンＤ ３ 前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のビタミンＤ ３ フラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、ここで、フラグメント化ビタミンＤ ３ 前駆体イオンが３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ３ フラグメントイオンは、１５９．０±０．５、１４７．０±０．５、１３３．１±０．５及び１０７．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、及びフラグメント化ビタミンＤ ３ 前駆体イオンが３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンを含む場合は、ビタミンＤ ３ フラグメントイオンは、１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む工程、（ｉｖ）工程（ｉ）、（ｉｉ）及び（ｉｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ イオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び （ｖ）工程（ｖｉ）で決定されたビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ イオンの量をサンプル中のビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ の量と関連付ける工程を含む方法であってもよい。フラグメント化ビタミンＤ ２ 前駆体イオンは、３９７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３７９．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。フラグメント化ビタミンＤ ３ 前駆体イオンは、３８５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよく、３６７．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオンであってもよい。サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられてもよい。抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムであってもよく、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムであってもよい。サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられてもよい。分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムであってもよい。抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）のイオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい。イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源であってもよい。タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施されてもよい。サンプルは、生物学的サンプルを含んでもよい。生物学的サンプルはヒト由来であり、サンプル中で決定されたビタミンＤ ２ 及びビタミンＤ ３ の量はヒトから採取された場合にサンプル中に存在する量であってもよい。サンプルは、血清又は血漿を含んでもよい。
本明細書で使用するように、他に規定しない限り、単数形「１つの（a、an）」及び「
その（the）」には複数形の言及が含まれる。従って、例えば「１つのタンパク質」とい
う言及には複数のタンパク質分子が含まれる。
その（the）」には複数形の言及が含まれる。従って、例えば「１つのタンパク質」とい
う言及には複数のタンパク質分子が含まれる。
本明細書で使用する用語「精製」又は「精製する工程」は、対象の分析物以外のサンプ
ルから全物質を除去することを意味していない。その代りに、「精製」は、対象の分析物
の検出を妨害する可能性があるサンプル中の他の成分と比較した１つ又はそれ以上の対象
の分析物の量を濃縮する方法を意味する。様々な手段によるサンプルの精製は、１つ又は
それ以上の干渉物質、例えば質量分析法による選択された親又は娘イオンの検出を妨害す
る可能性がある、又は妨害しない可能性がある１つ又はそれ以上の物質の相対的減少を可
能にする。この用語のような相対的減少は、精製すべき材料中の対象の分析物とともに存
在する任意の物質が精製によって完全に除去されることを必要としない。
ルから全物質を除去することを意味していない。その代りに、「精製」は、対象の分析物
の検出を妨害する可能性があるサンプル中の他の成分と比較した１つ又はそれ以上の対象
の分析物の量を濃縮する方法を意味する。様々な手段によるサンプルの精製は、１つ又は
それ以上の干渉物質、例えば質量分析法による選択された親又は娘イオンの検出を妨害す
る可能性がある、又は妨害しない可能性がある１つ又はそれ以上の物質の相対的減少を可
能にする。この用語のような相対的減少は、精製すべき材料中の対象の分析物とともに存
在する任意の物質が精製によって完全に除去されることを必要としない。
本明細書で使用する用語「固相抽出」若しくは「ＳＰＥ」は、その中若しくは周囲を溶
液が通過させられる固体（即ち、固相）に対する化学的混合物が、溶液（即ち、移動相）
中で溶解若しくは懸濁された成分の親和性の結果として成分に分離される方法を意味する
。一部の例では、移動相が固相の中若しくは周囲を通過するにつれて、該移動相の望まし
くない成分は、該固相によって保持され、該移動相内の分析物の精製を生じさせることが
できる。他の例では、分析物は固相によって保持することができ、移動相の望ましくない
成分が該固相の中若しくは周囲を通過することを可能にする。これらの例では、次に第２
移動相はそれ以上の加工処理又は分析のために保持された分析物を該固相から溶出させる
ために使用される。ＴＦＬＣを含むＳＰＥは、単一又は混合モード機序によって作動する
ことができる。混合モード機序は、同一カラム内でのイオン交換及び疎水性滞留を利用す
る。例えば、混合モードＳＰＥカラムの固相は強アニオン交換及び疎水性滞留を示す可能
性があり、又は強カチオン交換及び疎水性滞留を示す可能性がある。
液が通過させられる固体（即ち、固相）に対する化学的混合物が、溶液（即ち、移動相）
中で溶解若しくは懸濁された成分の親和性の結果として成分に分離される方法を意味する
。一部の例では、移動相が固相の中若しくは周囲を通過するにつれて、該移動相の望まし
くない成分は、該固相によって保持され、該移動相内の分析物の精製を生じさせることが
できる。他の例では、分析物は固相によって保持することができ、移動相の望ましくない
成分が該固相の中若しくは周囲を通過することを可能にする。これらの例では、次に第２
移動相はそれ以上の加工処理又は分析のために保持された分析物を該固相から溶出させる
ために使用される。ＴＦＬＣを含むＳＰＥは、単一又は混合モード機序によって作動する
ことができる。混合モード機序は、同一カラム内でのイオン交換及び疎水性滞留を利用す
る。例えば、混合モードＳＰＥカラムの固相は強アニオン交換及び疎水性滞留を示す可能
性があり、又は強カチオン交換及び疎水性滞留を示す可能性がある。
本明細書で使用する用語「クロマトグラフィー」は、液体若しくは気体によって運ばれ
る化学的混合物が、それらが固定相液体若しくは固相の周囲若しくは上方を流れるにつれ
て化学実体の示差的分布の結果として複数の成分に分離される方法を意味する。
る化学的混合物が、それらが固定相液体若しくは固相の周囲若しくは上方を流れるにつれ
て化学実体の示差的分布の結果として複数の成分に分離される方法を意味する。
本明細書で使用する用語「液体クロマトグラフィー」若しくは「ＬＣ」は、流体が一様
に微細物質のカラムを通して、又はキャピラリー路を通って浸透するに従う流体溶液の１
つ又はそれ以上の成分の選択的遅滞の方法を意味する。遅滞は、１つ又はそれ以上の固定
相とバルク液（即ち、移動相）との間の混合物の、この流体が固定相に対して移動するに
従う成分の分布の結果として生じる。「液体クロマトグラフィー」の例には、逆相液体ク
ロマトグラフィー（ＲＰＬＣ）、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）及び乱流液
体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）（高乱流液体クロマトグラフィー（ＨＴＬＣ）又は高
スループット液体クロマトグラフィーとして公知であることもある）が含まれる。
に微細物質のカラムを通して、又はキャピラリー路を通って浸透するに従う流体溶液の１
つ又はそれ以上の成分の選択的遅滞の方法を意味する。遅滞は、１つ又はそれ以上の固定
相とバルク液（即ち、移動相）との間の混合物の、この流体が固定相に対して移動するに
従う成分の分布の結果として生じる。「液体クロマトグラフィー」の例には、逆相液体ク
ロマトグラフィー（ＲＰＬＣ）、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）及び乱流液
体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）（高乱流液体クロマトグラフィー（ＨＴＬＣ）又は高
スループット液体クロマトグラフィーとして公知であることもある）が含まれる。
本明細書で使用する用語「高性能液体クロマトグラフィー」若しくは「ＨＰＬＣ」（「
高圧液体クロマトグラフィー」として公知であることもある）は、移動相を圧力下で固定
相、通常は高密度に充填されたカラムに通して推し進めることによって分離度が増加する
液体クロマトグラフィーを意味する。
高圧液体クロマトグラフィー」として公知であることもある）は、移動相を圧力下で固定
相、通常は高密度に充填されたカラムに通して推し進めることによって分離度が増加する
液体クロマトグラフィーを意味する。
本明細書で使用する用語「乱流液体クロマトグラフィー」若しくは「ＴＦＬＣ」（高乱
流液体クロマトグラフィー若しくは高スループット液体クロマトグラフィーとして公知で
あることもある）は、分離を実施するための基礎としてカラム充填を通して分析される物
質の乱流を利用するクロマトグラフィーの形態を意味する。ＴＦＬＣは、質量分析法によ
る分析に先行して２つの不特定の薬物を含有するサンプルの調製において適用されてきた
。例えば、Zimmer et al., J Chromatogr A 854: 23-35 (1999)を参照されたい。さらに
、ＴＦＬＣについて詳細に説明している米国特許第５，９６８，３６７号明細書、同第５
，９１９，３６８号明細書、同第５，７９５，４６９号明細書及び同第５，７７２，８７
４号明細書も参照されたい。当業者であれば、「乱流」を理解している。流体が緩徐及び
平滑に流動する場合は、その流れは「層流」と呼ばれる。例えば、ＨＰＬＣカラムを通し
て低流速で移動する流体は層流である。層流では、流体の粒子の運動は、概して直線で移
動する粒子に従順である。より高速では、水の慣性が流体の摩擦力に勝り、結果として乱
流が生じる。不規則な境界と接触していない流体は、摩擦によって緩徐化される、又は不
均一な表面によって偏向させられる流れを「追い越す」。流体が乱流として流動する場合
は、流れが層流の場合よりも「抗力」を伴って、流体は渦巻きながら流動する。流体の流
れが層流又は乱流であるかを決定する際に役立つ多数の参考文献を利用できる（例えば、
Turbulent Flow Analysis: Measurement and Prediction, P.S. Bernard & J.M. Wallace
, John Wiley & Sons, Inc.,(2000)、An Introduction to Turbulent Flow, Jean Mathie
u & Julian Scott, Cambridge University Press (2001)）。
流液体クロマトグラフィー若しくは高スループット液体クロマトグラフィーとして公知で
あることもある）は、分離を実施するための基礎としてカラム充填を通して分析される物
質の乱流を利用するクロマトグラフィーの形態を意味する。ＴＦＬＣは、質量分析法によ
る分析に先行して２つの不特定の薬物を含有するサンプルの調製において適用されてきた
。例えば、Zimmer et al., J Chromatogr A 854: 23-35 (1999)を参照されたい。さらに
、ＴＦＬＣについて詳細に説明している米国特許第５，９６８，３６７号明細書、同第５
，９１９，３６８号明細書、同第５，７９５，４６９号明細書及び同第５，７７２，８７
４号明細書も参照されたい。当業者であれば、「乱流」を理解している。流体が緩徐及び
平滑に流動する場合は、その流れは「層流」と呼ばれる。例えば、ＨＰＬＣカラムを通し
て低流速で移動する流体は層流である。層流では、流体の粒子の運動は、概して直線で移
動する粒子に従順である。より高速では、水の慣性が流体の摩擦力に勝り、結果として乱
流が生じる。不規則な境界と接触していない流体は、摩擦によって緩徐化される、又は不
均一な表面によって偏向させられる流れを「追い越す」。流体が乱流として流動する場合
は、流れが層流の場合よりも「抗力」を伴って、流体は渦巻きながら流動する。流体の流
れが層流又は乱流であるかを決定する際に役立つ多数の参考文献を利用できる（例えば、
Turbulent Flow Analysis: Measurement and Prediction, P.S. Bernard & J.M. Wallace
, John Wiley & Sons, Inc.,(2000)、An Introduction to Turbulent Flow, Jean Mathie
u & Julian Scott, Cambridge University Press (2001)）。
本明細書で使用する用語「ガスクロマトグラフィー」若しくは「ＧＣ」は、サンプル混
合物が気化させられ、液体若しくは粒子状固体から構成される固定層を含有するカラムを
通って移動するキャリヤガス流（窒素又はヘリウムとして）内に注入され、固定相のため
の化合物の親和性に従ってその成分化合物に分離されるクロマトグラフィーを意味する。
合物が気化させられ、液体若しくは粒子状固体から構成される固定層を含有するカラムを
通って移動するキャリヤガス流（窒素又はヘリウムとして）内に注入され、固定相のため
の化合物の親和性に従ってその成分化合物に分離されるクロマトグラフィーを意味する。
本明細書で使用する用語「大粒子カラム」若しくは「抽出カラム」は、約５０μｍより
大きい平均粒径を含有するクロマトグラフィーカラムを意味する。
大きい平均粒径を含有するクロマトグラフィーカラムを意味する。
本明細書で使用する用語「分析カラム」は、サンプル中で分析物の存在又は量の決定を
可能にするために十分なカラムから溶出する材料の分離を実行するために十分なクロマト
グラフィープレートを有するクロマトグラフィーカラムを意味する。好ましい実施形態で
は、分析カラムは、直径が約５μｍの粒子を含有する。そのようなカラムは、その後の分
析のために精製されたサンプルを得るために保持されていない物質から保持された物質を
分離又は抽出するという一般的目的を有する「抽出カラム」とは識別されることが多い。
可能にするために十分なカラムから溶出する材料の分離を実行するために十分なクロマト
グラフィープレートを有するクロマトグラフィーカラムを意味する。好ましい実施形態で
は、分析カラムは、直径が約５μｍの粒子を含有する。そのようなカラムは、その後の分
析のために精製されたサンプルを得るために保持されていない物質から保持された物質を
分離又は抽出するという一般的目的を有する「抽出カラム」とは識別されることが多い。
本明細書で使用する用語「オンライン」及び「インライン」、例えば「オンライン自動
法」又は「オンライン抽出」で使用される用語は、オペレータが介入する必要を伴わずに
実施される手順を意味する。これとは対照的に、本明細書で使用する用語「オフライン」
は、オペレータの手作業による介入を必要とする手順を意味する。従って、サンプルが沈
殿させられ、次に上清がオートサンプラー内に手作業で充填される場合は、沈殿及び充填
工程はその後の工程からオフラインである。本方法の様々な実施形態では、１つ又はそれ
以上の工程は、オンライン自動法で実施することができる。
法」又は「オンライン抽出」で使用される用語は、オペレータが介入する必要を伴わずに
実施される手順を意味する。これとは対照的に、本明細書で使用する用語「オフライン」
は、オペレータの手作業による介入を必要とする手順を意味する。従って、サンプルが沈
殿させられ、次に上清がオートサンプラー内に手作業で充填される場合は、沈殿及び充填
工程はその後の工程からオフラインである。本方法の様々な実施形態では、１つ又はそれ
以上の工程は、オンライン自動法で実施することができる。
本明細書で使用する用語「質量分析法」若しくは「ＭＳ」は、それらの質量によって化
合物を同定するための分析技術を意味する。ＭＳは、濾過し、検出し、及びそれらの質量
対電荷比若しくは「ｍ／ｚ」に基づいてイオンを測定する方法を意味する。ＭＳテクノロ
ジーは、一般には（１）荷電化合物を形成するために化合物をイオン化する工程、及び（
２）該荷電化合物の分子量を検出して質量対電荷比を計算する工程を含んでいる。化合物
は、任意の適切な手段によってイオン化及び検出することができる。「質量分析計」は、
一般にはイオン化装置及びイオン検出器を含んでいる。一般に、対象の１つ又はそれ以上
の分子がイオン化され、該イオンは引き続いて質量分析器械内に導入され、そこで磁場と
電場の組み合わせのために、該イオンは質量（「ｍ」）及び電荷（「ｚ」）に依存する空
間内の経路を辿る。例えば、「Mass Spectrometry From Surfaces」と題する米国特許第
６，２０４，５００号明細書、「Methods and Apparatus for Tandem Mass Spectrometry
」と題する同第６，１０７，６２３号明細書、「DNA Diagnostics Based On Mass Spectr
ometry」と題する同第６，２６８，１４４号明細書、「Surface-Enhanced Photolabile A
ttachment And Release For Desorption And Detection Of Analytes」と題する同第６，
１２４，１３７号明細書、Wright et al., Prostate Cancer and Prostatic Diseases 19
99, 2: 264-76及びMerchant and Weinberger, Electrophoresis 2000, 21: 1164-67を参
照されたい。
合物を同定するための分析技術を意味する。ＭＳは、濾過し、検出し、及びそれらの質量
対電荷比若しくは「ｍ／ｚ」に基づいてイオンを測定する方法を意味する。ＭＳテクノロ
ジーは、一般には（１）荷電化合物を形成するために化合物をイオン化する工程、及び（
２）該荷電化合物の分子量を検出して質量対電荷比を計算する工程を含んでいる。化合物
は、任意の適切な手段によってイオン化及び検出することができる。「質量分析計」は、
一般にはイオン化装置及びイオン検出器を含んでいる。一般に、対象の１つ又はそれ以上
の分子がイオン化され、該イオンは引き続いて質量分析器械内に導入され、そこで磁場と
電場の組み合わせのために、該イオンは質量（「ｍ」）及び電荷（「ｚ」）に依存する空
間内の経路を辿る。例えば、「Mass Spectrometry From Surfaces」と題する米国特許第
６，２０４，５００号明細書、「Methods and Apparatus for Tandem Mass Spectrometry
」と題する同第６，１０７，６２３号明細書、「DNA Diagnostics Based On Mass Spectr
ometry」と題する同第６，２６８，１４４号明細書、「Surface-Enhanced Photolabile A
ttachment And Release For Desorption And Detection Of Analytes」と題する同第６，
１２４，１３７号明細書、Wright et al., Prostate Cancer and Prostatic Diseases 19
99, 2: 264-76及びMerchant and Weinberger, Electrophoresis 2000, 21: 1164-67を参
照されたい。
本明細書で使用する用語「負のイオンモードで操作する」は、負のイオンが生成されて
検出される質量分析法を意味する。本明細書で使用する用語「正のイオンモードで操作す
る」は、正のイオンが生成されて検出される質量分析法を意味する。
検出される質量分析法を意味する。本明細書で使用する用語「正のイオンモードで操作す
る」は、正のイオンが生成されて検出される質量分析法を意味する。
本明細書で使用する用語「イオン化」若しくは「イオン化する工程」は、１つ又はそれ
以上の電子単位と同等の正味電荷を有する分析物イオンを生成する方法を意味する。負の
イオンは、１つ又はそれ以上の電子単位の正味負電荷を有するイオンであり、一方、正の
イオンは１つ又はそれ以上の電子単位の正味正電荷を有するイオンである。
以上の電子単位と同等の正味電荷を有する分析物イオンを生成する方法を意味する。負の
イオンは、１つ又はそれ以上の電子単位の正味負電荷を有するイオンであり、一方、正の
イオンは１つ又はそれ以上の電子単位の正味正電荷を有するイオンである。
本明細書で使用する用語「電子イオン化」若しくは「ＥＩ」は、気相若しくは蒸気相内
の対象の分析物が電子の流れと相互作用する方法を意味する。電子と分析物との衝撃は、
次に質量分析技術を受けさせることができる分析物イオンを生成する。
の対象の分析物が電子の流れと相互作用する方法を意味する。電子と分析物との衝撃は、
次に質量分析技術を受けさせることができる分析物イオンを生成する。
本明細書で使用する用語「化学イオン化」若しくは「ＣＩ」は、試薬ガス（例えば、ア
ンモニア）が電子衝撃に曝露され、分析物イオンが試薬ガスイオンと分析物分子との相互
作用によって形成される方法を意味する。
ンモニア）が電子衝撃に曝露され、分析物イオンが試薬ガスイオンと分析物分子との相互
作用によって形成される方法を意味する。
本明細書で使用する用語「高速原子衝撃法」若しくは「ＦＡＢ」は、高エネルギー原子
ビーム（Ｘｅ又はＡｒであることが多い）が、非揮発性サンプルに衝撃を与え、該サンプ
ル中に含有される分子を脱離してイオン化する方法を意味する。試験サンプルは、様々な
液体マトリックス、例えば、グリセロール、チオグリセロール、ｍ−ニトロベンジルアル
コール、１８−クラウン−６クラウンエーテル、２−ニトロフェニルオクチルエーテル、
スルホラン、ジエタノールアミン及びトリエタノールアミン中に溶解される。化合物又は
サンプルにとって適切なマトリックスの選択は、経験に基づく方法である。
ビーム（Ｘｅ又はＡｒであることが多い）が、非揮発性サンプルに衝撃を与え、該サンプ
ル中に含有される分子を脱離してイオン化する方法を意味する。試験サンプルは、様々な
液体マトリックス、例えば、グリセロール、チオグリセロール、ｍ−ニトロベンジルアル
コール、１８−クラウン−６クラウンエーテル、２−ニトロフェニルオクチルエーテル、
スルホラン、ジエタノールアミン及びトリエタノールアミン中に溶解される。化合物又は
サンプルにとって適切なマトリックスの選択は、経験に基づく方法である。
本明細書で使用する用語「マトリックス支援レーザー脱離イオン化法」若しくは「ＭＡ
ＬＤＩ」は、非揮発性サンプルが、光イオン化、プロトン化、脱プロトン化及びクラスタ
崩壊を含む様々なイオン化経路によって該サンプル中の分析物を脱離及びイオン化するレ
ーザー照射に曝露される方法を意味する。ＭＡＬＤＩのためには、サンプルは、分析物分
子の脱離を促進するエネルギー吸収マトリックスと混合される。
ＬＤＩ」は、非揮発性サンプルが、光イオン化、プロトン化、脱プロトン化及びクラスタ
崩壊を含む様々なイオン化経路によって該サンプル中の分析物を脱離及びイオン化するレ
ーザー照射に曝露される方法を意味する。ＭＡＬＤＩのためには、サンプルは、分析物分
子の脱離を促進するエネルギー吸収マトリックスと混合される。
本明細書で使用する用語「表面増強レーザー脱離イオン化法」若しくは「ＳＥＬＤＩ」
は、非揮発性サンプルが、光イオン化、プロトン化、脱プロトン化及びクラスタ崩壊を含
む様々なイオン化経路によって該サンプル中の分析物を脱離及びイオン化するレーザー照
射に曝露される又別の方法を意味する。ＳＥＬＤＩのためには、サンプルは、通常は１つ
又はそれ以上の対象の分析物を優先的に保持する表面に結合される。ＭＡＬＤＩにおける
ものと同様に、この方法もイオン化を促進するためにエネルギー吸収材料を使用すること
ができる。
は、非揮発性サンプルが、光イオン化、プロトン化、脱プロトン化及びクラスタ崩壊を含
む様々なイオン化経路によって該サンプル中の分析物を脱離及びイオン化するレーザー照
射に曝露される又別の方法を意味する。ＳＥＬＤＩのためには、サンプルは、通常は１つ
又はそれ以上の対象の分析物を優先的に保持する表面に結合される。ＭＡＬＤＩにおける
ものと同様に、この方法もイオン化を促進するためにエネルギー吸収材料を使用すること
ができる。
本明細書で使用する用語「エレクトロスプレーイオン化」若しくは「ＥＳＩ」は、溶液
が長さの短いキャピラリーチューブに沿って通過させられ、その端部では正又は負の高電
位が印加される方法を意味する。キャピラリーチューブの端部に達した溶液は、溶媒蒸気
中の溶液の極めて小さな液滴のジェット又はスプレーに蒸気化（噴霧化）される。この液
滴のミストは、凝縮を防止して溶媒を蒸発させるために僅かに加熱される蒸発チャンバを
通って流動する。液滴がより小さくなるにつれて電気面電荷密度は、同電荷間の自然反発
力がイオン並びに中性分子を遊離させるようになる時点まで増加する。
が長さの短いキャピラリーチューブに沿って通過させられ、その端部では正又は負の高電
位が印加される方法を意味する。キャピラリーチューブの端部に達した溶液は、溶媒蒸気
中の溶液の極めて小さな液滴のジェット又はスプレーに蒸気化（噴霧化）される。この液
滴のミストは、凝縮を防止して溶媒を蒸発させるために僅かに加熱される蒸発チャンバを
通って流動する。液滴がより小さくなるにつれて電気面電荷密度は、同電荷間の自然反発
力がイオン並びに中性分子を遊離させるようになる時点まで増加する。
本明細書で使用する用語「大気圧化学イオン化」若しくは「ＡＰＣＩ」は、ＥＳＩに類
似する質量分析法を意味するが、ＡＰＣＩは、大気圧下のプラズマ内で発生するイオン−
分子反応によってイオンを生成する。プラズマは、スプレーキャピラリーと対電極との間
の放電によって維持される。次にイオンは、通常は、１組の差動揚水スキマー段階の使用
によって質量分析装置内へ抽出される。向流の乾性及び予熱Ｎ２ガスを使用すると、溶媒
の除去を改善することができる。ＡＰＣＩにおける気相イオン化は、低極性種を分析する
ためにはＥＳＩより有効な可能性がある。
似する質量分析法を意味するが、ＡＰＣＩは、大気圧下のプラズマ内で発生するイオン−
分子反応によってイオンを生成する。プラズマは、スプレーキャピラリーと対電極との間
の放電によって維持される。次にイオンは、通常は、１組の差動揚水スキマー段階の使用
によって質量分析装置内へ抽出される。向流の乾性及び予熱Ｎ２ガスを使用すると、溶媒
の除去を改善することができる。ＡＰＣＩにおける気相イオン化は、低極性種を分析する
ためにはＥＳＩより有効な可能性がある。
本明細書で使用する用語「大気圧光イオン化」若しくは「ＡＰＰＩ」は、分子Ｍのイオ
ン化のための機序が分子イオンＭ＋を形成するための光子吸収及び電子放出であるイオン
化の形態を意味する。吸収された光子のエネルギーは、通常はイオン化電位より僅かに高
いために、分子イオンは解離されにくい。多くの場合に、クロマトグラフィーを必要とせ
ずにサンプルを分析することが可能であるので、時間及び費用を大きく節約することがで
きる。水蒸気又はプロトン性溶媒の存在下では、分子イオンはＨを抽出してＭＨ＋を形成
することができる。これは、Ｍが高プロトン親和性を有する場合に発生する傾向がある。
これは、Ｍ＋及びＭＨ＋の合計が一定であるために、定量正確性に影響を及ぼさない。プ
ロトン性溶媒中の薬物化合物は通常はＭＨ＋であると観察されるが、非極性化合物、例え
ばナフタレン又はテストステロンは、通常はＭ＋を形成する。例えば、Robb et al., Ana
l. Chem. 2000, 72 (15): 3653-3659を参照されたい。
ン化のための機序が分子イオンＭ＋を形成するための光子吸収及び電子放出であるイオン
化の形態を意味する。吸収された光子のエネルギーは、通常はイオン化電位より僅かに高
いために、分子イオンは解離されにくい。多くの場合に、クロマトグラフィーを必要とせ
ずにサンプルを分析することが可能であるので、時間及び費用を大きく節約することがで
きる。水蒸気又はプロトン性溶媒の存在下では、分子イオンはＨを抽出してＭＨ＋を形成
することができる。これは、Ｍが高プロトン親和性を有する場合に発生する傾向がある。
これは、Ｍ＋及びＭＨ＋の合計が一定であるために、定量正確性に影響を及ぼさない。プ
ロトン性溶媒中の薬物化合物は通常はＭＨ＋であると観察されるが、非極性化合物、例え
ばナフタレン又はテストステロンは、通常はＭ＋を形成する。例えば、Robb et al., Ana
l. Chem. 2000, 72 (15): 3653-3659を参照されたい。
本明細書で使用する用語「誘導結合プラズマ」若しくは「ＩＣＰ」は、サンプルが、ほ
とんどの元素が霧化及びイオン化されるような十分に高温で不完全イオン化ガスと相互作
用する方法を意味する。
とんどの元素が霧化及びイオン化されるような十分に高温で不完全イオン化ガスと相互作
用する方法を意味する。
本明細書で使用する用語「脱離」は、表面からの分析物の除去及び／又は分析物の気相
内への進入を意味する。レーザーダイオード熱脱離（ＬＤＴＤ）は、分析物を含有するサ
ンプルがレーザーパルスによって気相内へ熱により脱離される技術である。レーザーは、
金属基板を備える特別製作された９６ウエルプレートの背部に衝突する。レーザーバルス
は該基板を加熱し、この熱はサンプルが気相内へ移動するのを誘発する。次に気相サンプ
ルは、イオン化源内へ引き入れられ、そこで気相サンプルは質量分析計内での分析の準備
においてイオン化される。ＬＤＴＤを使用する場合は、気相サンプルのイオン化は、当分
野において公知の任意の適切な技術、例えばコロナ放電を用いる（例えば、ＡＰＣＩによ
る）イオン化によって実施することができる。
内への進入を意味する。レーザーダイオード熱脱離（ＬＤＴＤ）は、分析物を含有するサ
ンプルがレーザーパルスによって気相内へ熱により脱離される技術である。レーザーは、
金属基板を備える特別製作された９６ウエルプレートの背部に衝突する。レーザーバルス
は該基板を加熱し、この熱はサンプルが気相内へ移動するのを誘発する。次に気相サンプ
ルは、イオン化源内へ引き入れられ、そこで気相サンプルは質量分析計内での分析の準備
においてイオン化される。ＬＤＴＤを使用する場合は、気相サンプルのイオン化は、当分
野において公知の任意の適切な技術、例えばコロナ放電を用いる（例えば、ＡＰＣＩによ
る）イオン化によって実施することができる。
本明細書で使用する用語「電場脱離」は、非揮発性試験サンプルがイオン化面に配置さ
れ、強電場が分析物イオンを生成させるために使用される方法を意味する。
れ、強電場が分析物イオンを生成させるために使用される方法を意味する。
本明細書で使用する用語「選択的イオンモニタリング法」は、比較的に狭い質量範囲内
、通常は約１質量単位のイオンだけが検出される質量分析器械のための検出モードである
。
、通常は約１質量単位のイオンだけが検出される質量分析器械のための検出モードである
。
本明細書で使用する用語「多重反応モード」は、「選択された反応モニタリング」とし
て公知でありこともあり、前駆体イオン及び１つ又はそれ以上のフラグメントイオンが選
択的に検出される質量分析器械のための検出モードである。
て公知でありこともあり、前駆体イオン及び１つ又はそれ以上のフラグメントイオンが選
択的に検出される質量分析器械のための検出モードである。
本明細書で使用する用語「定量下限（lower limit of quantification、lower limit o
f quantitation）」若しくは「ＬＬＯＱ」は、測定値が定量的に有意となるポイントを意
味する。このＬＯＱでの分析物反応は、２０％未満の相対標準偏差（ＲＳＤ（％））及び
８０％から１２０％の正確性で同定可能であり、個別的及び再現性である。
f quantitation）」若しくは「ＬＬＯＱ」は、測定値が定量的に有意となるポイントを意
味する。このＬＯＱでの分析物反応は、２０％未満の相対標準偏差（ＲＳＤ（％））及び
８０％から１２０％の正確性で同定可能であり、個別的及び再現性である。
本明細書で使用する用語「検出限界」若しくは「ＬＯＤ」は、測定値がそれと関連する
不確実性より大きいポイントである。ＬＯＤは数値がその測定値と関連する不確実性を超
えているポイントであり、ゼロ濃度での平均値のＲＳＤの３倍であると規定されている。
不確実性より大きいポイントである。ＬＯＤは数値がその測定値と関連する不確実性を超
えているポイントであり、ゼロ濃度での平均値のＲＳＤの３倍であると規定されている。
本明細書で使用する、体液サンプル中の分析物の「量」は、一般にサンプルの容積中で
検出可能な分析物の質量を反映している絶対値を意味する。しかし、量は、さらに別の分
析物の量と比較した相対量も企図している。例えば、サンプル中の分析物の量は、該サン
プル中に通常存在する該分析物のコントロール若しくは正常レベルより大きい量であって
よい。
検出可能な分析物の質量を反映している絶対値を意味する。しかし、量は、さらに別の分
析物の量と比較した相対量も企図している。例えば、サンプル中の分析物の量は、該サン
プル中に通常存在する該分析物のコントロール若しくは正常レベルより大きい量であって
よい。
本明細書でイオンの質量の測定値を含まない量的測定値と関連して使用する用語「約」
は、指示された数値±１０％を意味する。質量分析器械は、特定の分析物の質量を決定す
る際に僅かに変動することがある。イオンの質量又はイオンの質量／電荷比の状況におけ
る用語「約」は、±０．５０原子質量単位を意味する。
は、指示された数値±１０％を意味する。質量分析器械は、特定の分析物の質量を決定す
る際に僅かに変動することがある。イオンの質量又はイオンの質量／電荷比の状況におけ
る用語「約」は、±０．５０原子質量単位を意味する。
上記で記載した本発明の概要は非限定的であり、本発明の他の特徴及び利点は、以下の
本発明の詳細な説明及び特許請求の範囲から明白になる。
本発明の詳細な説明及び特許請求の範囲から明白になる。
サンプル中のビタミンＤを測定するための方法について記載する。より詳細には、サン
プル中のビタミンＤを検出及び定量するための質量分析法について記載する。本方法は、
クックソン型試薬、例えばＰＴＡＤを使用して誘導体化ビタミンＤを生成することができ
る。しかし一部の方法では誘導体化剤が使用されず、非誘導体化ビタミンＤ２及び／又は
ビタミンＤ３が質量分析法によって検出される。
プル中のビタミンＤを検出及び定量するための質量分析法について記載する。本方法は、
クックソン型試薬、例えばＰＴＡＤを使用して誘導体化ビタミンＤを生成することができ
る。しかし一部の方法では誘導体化剤が使用されず、非誘導体化ビタミンＤ２及び／又は
ビタミンＤ３が質量分析法によって検出される。
本方法は、非誘導体化若しくは誘導体化ビタミンＤ２及び／又はビタミンＤ３の精製を
実施するために抽出クロマトグラフィー技術、例えば、乱流液体クロマトグラフィー（Ｔ
ＦＬＣ）を質量分析（ＭＳ）の方法と組み合わせて使用することができ、それによってサ
ンプル中のビタミンＤ２及び／又はビタミンＤ３を検出及び定量するための高スループッ
トアッセイシステムを提供する。又は、一部の方法では、抽出クロマトグラフィーを含む
クロマトグラフィーがサンプル分析のために必要とされない。これらの方法では、非誘導
体化又は誘導体化ビタミンＤ２及び／又はビタミンＤ３は、ＬＤＴＤを用いてイオン化さ
れる。好ましい実施形態は、自動ビタミンＤ定量のための大規模臨床研究室において適用
するために特に良好に適合する。
実施するために抽出クロマトグラフィー技術、例えば、乱流液体クロマトグラフィー（Ｔ
ＦＬＣ）を質量分析（ＭＳ）の方法と組み合わせて使用することができ、それによってサ
ンプル中のビタミンＤ２及び／又はビタミンＤ３を検出及び定量するための高スループッ
トアッセイシステムを提供する。又は、一部の方法では、抽出クロマトグラフィーを含む
クロマトグラフィーがサンプル分析のために必要とされない。これらの方法では、非誘導
体化又は誘導体化ビタミンＤ２及び／又はビタミンＤ３は、ＬＤＴＤを用いてイオン化さ
れる。好ましい実施形態は、自動ビタミンＤ定量のための大規模臨床研究室において適用
するために特に良好に適合する。
本発明の方法において使用するための適切な試験サンプルには、対象の分析物を含有す
る可能性がある任意の試験サンプルが含まれる。一部の好ましい実施形態では、サンプル
は、生物学的サンプル、即ち、任意の生物学的起源、例えば動物、細胞培養、臓器培養な
どから得られるサンプルである。特定の好ましい実施形態では、サンプルは、哺乳動物、
例えばイヌ、ネコ、ウマなどから入手される。特に好ましい哺乳動物は、霊長類、最も好
ましくはヒトの男性又は女性である。好ましいサンプルは、体液、例えば血液、血漿、血
清、唾液、脳脊髄液若しくは組織サンプル、好ましくは血漿（ＥＤＴＡ及びヘパリン血漿
を含む）及び血清、最も好ましくは血清を含んでいる。そのようなサンプルは、例えば、
患者、つまり生きている、男性又は女性の、疾患又は状態の診断、予後診断、若しくは治
療を受けるために医療環境に現れたヒトから入手できる。
る可能性がある任意の試験サンプルが含まれる。一部の好ましい実施形態では、サンプル
は、生物学的サンプル、即ち、任意の生物学的起源、例えば動物、細胞培養、臓器培養な
どから得られるサンプルである。特定の好ましい実施形態では、サンプルは、哺乳動物、
例えばイヌ、ネコ、ウマなどから入手される。特に好ましい哺乳動物は、霊長類、最も好
ましくはヒトの男性又は女性である。好ましいサンプルは、体液、例えば血液、血漿、血
清、唾液、脳脊髄液若しくは組織サンプル、好ましくは血漿（ＥＤＴＡ及びヘパリン血漿
を含む）及び血清、最も好ましくは血清を含んでいる。そのようなサンプルは、例えば、
患者、つまり生きている、男性又は女性の、疾患又は状態の診断、予後診断、若しくは治
療を受けるために医療環境に現れたヒトから入手できる。
本発明は、ビタミンＤ定量アッセイのためのキットも企図している。ビタミンＤ定量ア
ッセイのためのキットは、本明細書に提供した組成物を含むキットを含むことができる。
例えば、キットは、充填材料及び測定量のクックソン型試薬及び同位体標識された内部標
準を少なくとも１回のアッセイのために十分量で含むことができる。通常は、本キットは
、さらにビタミンＤ定量アッセイにおいて使用するための包装された試薬を使用するため
の（例えば、紙又は電子媒体に含有される）有形で記録された取扱説明書も含むことにな
る。
ッセイのためのキットは、本明細書に提供した組成物を含むキットを含むことができる。
例えば、キットは、充填材料及び測定量のクックソン型試薬及び同位体標識された内部標
準を少なくとも１回のアッセイのために十分量で含むことができる。通常は、本キットは
、さらにビタミンＤ定量アッセイにおいて使用するための包装された試薬を使用するため
の（例えば、紙又は電子媒体に含有される）有形で記録された取扱説明書も含むことにな
る。
本発明の実施形態において使用するための較正及びＱＣプールは、好ましくは予定され
るサンプルマトリックスに類似するマトリックスを使用して調製される。
るサンプルマトリックスに類似するマトリックスを使用して調製される。
質量分析法による分析のためのサンプル調製
質量分析法による分析のための調製において、ビタミンＤは、サンプル（例えば、タン
パク質）中の１つ又はそれ以上の他の成分と比較して、例えば、液体クロマトグラフィー
、濾過、遠心分離、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）、キャピラリー電気泳動法を含む
電気泳動法、免疫親和性分離を含む親和性分離法、酢酸エチル若しくはメタノール抽出を
含む抽出法及びカオトロピック剤の使用又は上記のいずれかの組み合わせなどを含む当分
野において公知の様々な方法によって濃縮することができる。
質量分析法による分析のための調製において、ビタミンＤは、サンプル（例えば、タン
パク質）中の１つ又はそれ以上の他の成分と比較して、例えば、液体クロマトグラフィー
、濾過、遠心分離、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）、キャピラリー電気泳動法を含む
電気泳動法、免疫親和性分離を含む親和性分離法、酢酸エチル若しくはメタノール抽出を
含む抽出法及びカオトロピック剤の使用又は上記のいずれかの組み合わせなどを含む当分
野において公知の様々な方法によって濃縮することができる。
タンパク質沈殿法は、試験サンプル、特に生物学的試験サンプル、例えば血清又は血漿
を調製する１つの方法である。タンパク質精製法は、当分野において周知であり、例えば
、Polson et al., Journal of Chromatography B 2003, 785: 263-275は、本発明の方法
において使用するために適切なタンパク質沈殿法について記載している。タンパク質沈殿
法は、サンプルから大部分のタンパク質を除去して上清中にビタミンＤを残すために使用
できる。サンプルは、遠心して液体上清を沈殿したタンパク質から分離することができる
。又は、サンプルは、濾過して沈殿したタンパク質を除去することができる。次に、残っ
ている上清若しくは濾液は、質量分析法による分析に直接に、又は、液体クロマトグラフ
ィー及びその後の質量分析法による分析にかけることができる。特定の実施形態では、サ
ンプル、例えば血漿若しくは血清は、ハイブリッドタンパク質沈殿／液−液抽出法によっ
て精製することができる。これらの実施形態では、サンプルは、メタノール、酢酸エチル
及び水と混合し、生じた混合液はボルテックスミキサーにかけて遠心させる。生じた上清
は取り出し、完全に乾燥させ、アセトニトリル中で再構成される。次に、精製されたビタ
ミンＤは、任意のクックソン型試薬、好ましくはＰＴＡＤ又はその同位体標識された変種
を用いて誘導体化することができる。
を調製する１つの方法である。タンパク質精製法は、当分野において周知であり、例えば
、Polson et al., Journal of Chromatography B 2003, 785: 263-275は、本発明の方法
において使用するために適切なタンパク質沈殿法について記載している。タンパク質沈殿
法は、サンプルから大部分のタンパク質を除去して上清中にビタミンＤを残すために使用
できる。サンプルは、遠心して液体上清を沈殿したタンパク質から分離することができる
。又は、サンプルは、濾過して沈殿したタンパク質を除去することができる。次に、残っ
ている上清若しくは濾液は、質量分析法による分析に直接に、又は、液体クロマトグラフ
ィー及びその後の質量分析法による分析にかけることができる。特定の実施形態では、サ
ンプル、例えば血漿若しくは血清は、ハイブリッドタンパク質沈殿／液−液抽出法によっ
て精製することができる。これらの実施形態では、サンプルは、メタノール、酢酸エチル
及び水と混合し、生じた混合液はボルテックスミキサーにかけて遠心させる。生じた上清
は取り出し、完全に乾燥させ、アセトニトリル中で再構成される。次に、精製されたビタ
ミンＤは、任意のクックソン型試薬、好ましくはＰＴＡＤ又はその同位体標識された変種
を用いて誘導体化することができる。
質量分析法の前に使用できるサンプル精製の又別の方法は、液体クロマトグラフィー（
ＬＣ）である。ＨＰＬＣを含む液体クロマトグラフィーの特定の方法は、比較的緩徐な層
流技術に依存している。伝統的なＨＰＬＣ分析は、カラム充填に依存しており、このとき
該カラムを通るサンプルの層流が該サンプルから対象の分析物を分離するための基礎であ
る。当業者であれば、そのようなカラム内での分離が拡散方法であることを理解し、ＨＰ
ＬＣを含むＬＣ、誘導体化ビタミンＤと共に使用するために適する器械及びカラムを選択
することができる。クロマトグラフィーカラムは、通常は、化学成分の分離（即ち、分別
）を促進するための媒質（即ち、充填材料）を含んでいる。媒質は微細粒子を含むことが
でき、又は多孔性チャネルを備えるモノリシック材料を含むことができる。媒質の表面は
、通常は、化学成分の分離を促進するために様々な化学成分と相互作用する接合面を含ん
でいる。１つの適切な接合面は、疎水性接合面、例えばアルキル接合面、シアノ接合面、
又は高純度シリカ表面である。アルキル接合面は、Ｃ−４、Ｃ−８、Ｃ−１２、又はＣ−
１８接合アルキル基を含むことができる。好ましい実施形態では、カラムは高純度シリカ
カラム（例えば、Ｔｈｅｒｍｏ Ｈｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ Ａｑカラム）である。ク
ロマトグラフィーカラムは、サンプルを受け入れるための入口ポート及び分別されたサン
プルを含む流出物を放出するための出口ポートを含んでいる。サンプルは、入口ポートへ
直接に、又は抽出カラム、例えばオンラインＳＰＥカートリッジ若しくはＴＦＬＣ抽出カ
ラムから供給することができる。
ＬＣ）である。ＨＰＬＣを含む液体クロマトグラフィーの特定の方法は、比較的緩徐な層
流技術に依存している。伝統的なＨＰＬＣ分析は、カラム充填に依存しており、このとき
該カラムを通るサンプルの層流が該サンプルから対象の分析物を分離するための基礎であ
る。当業者であれば、そのようなカラム内での分離が拡散方法であることを理解し、ＨＰ
ＬＣを含むＬＣ、誘導体化ビタミンＤと共に使用するために適する器械及びカラムを選択
することができる。クロマトグラフィーカラムは、通常は、化学成分の分離（即ち、分別
）を促進するための媒質（即ち、充填材料）を含んでいる。媒質は微細粒子を含むことが
でき、又は多孔性チャネルを備えるモノリシック材料を含むことができる。媒質の表面は
、通常は、化学成分の分離を促進するために様々な化学成分と相互作用する接合面を含ん
でいる。１つの適切な接合面は、疎水性接合面、例えばアルキル接合面、シアノ接合面、
又は高純度シリカ表面である。アルキル接合面は、Ｃ−４、Ｃ−８、Ｃ−１２、又はＣ−
１８接合アルキル基を含むことができる。好ましい実施形態では、カラムは高純度シリカ
カラム（例えば、Ｔｈｅｒｍｏ Ｈｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ Ａｑカラム）である。ク
ロマトグラフィーカラムは、サンプルを受け入れるための入口ポート及び分別されたサン
プルを含む流出物を放出するための出口ポートを含んでいる。サンプルは、入口ポートへ
直接に、又は抽出カラム、例えばオンラインＳＰＥカートリッジ若しくはＴＦＬＣ抽出カ
ラムから供給することができる。
１つの実施形態では、サンプルは入口ポートでＬＣカラムへ提供し、溶媒若しくは溶媒
混合液と共に溶出させ、出口ポートで放出することができる。対象の分析物を溶出するた
めに様々な溶媒モードを選択することができる。例えば、液体クロマトグラフィーは、勾
配モード、アイソクラチックモード又は多型的（即ち、混合型）モードを用いて実施する
ことができる。クロマトグラフィー中、材料の分離は変量、例えば溶離液（「移動相」と
しても公知である）、溶出モード、勾配条件、温度などの選択によって実施できる。
混合液と共に溶出させ、出口ポートで放出することができる。対象の分析物を溶出するた
めに様々な溶媒モードを選択することができる。例えば、液体クロマトグラフィーは、勾
配モード、アイソクラチックモード又は多型的（即ち、混合型）モードを用いて実施する
ことができる。クロマトグラフィー中、材料の分離は変量、例えば溶離液（「移動相」と
しても公知である）、溶出モード、勾配条件、温度などの選択によって実施できる。
特定の実施形態では、分析物は、サンプルをカラムへ、対象の分析物がカラム充填材料
によって可逆的に保持されるが１つ又はそれ以上の材料が保持されない条件下で適用する
ことによって精製できる。これらの実施形態では、対象の分析物がカラムによって保持さ
れる第１移動相条件を使用することができ、引き続いて、保持されなかった材料が洗い流
されると保持された材料をカラムから除去するために第２移動層条件を使用することがで
きる。又は、分析物は、サンプルをカラムへ、対象の分析物が１つ又はそれ以上の他の材
料と比較して示差的速度で溶出する移動相条件下で適用することによって精製できる。そ
のような手順は、対象の１つ又はそれ以上の分析物の量を該サンプルの１つ又はそれ以上
の他の成分と比較して濃縮することができる。
によって可逆的に保持されるが１つ又はそれ以上の材料が保持されない条件下で適用する
ことによって精製できる。これらの実施形態では、対象の分析物がカラムによって保持さ
れる第１移動相条件を使用することができ、引き続いて、保持されなかった材料が洗い流
されると保持された材料をカラムから除去するために第２移動層条件を使用することがで
きる。又は、分析物は、サンプルをカラムへ、対象の分析物が１つ又はそれ以上の他の材
料と比較して示差的速度で溶出する移動相条件下で適用することによって精製できる。そ
のような手順は、対象の１つ又はそれ以上の分析物の量を該サンプルの１つ又はそれ以上
の他の成分と比較して濃縮することができる。
１つの好ましい実施形態では、ＨＰＬＣは、アルキル接合分析カラムクロマトグラフィ
ーシステムを用いて実施される。特定の好ましい実施形態では、高純度シリカカラム（例
えば、Ｔｈｅｒｍｏ Ｈｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ Ａｑカラム）が使用される。特定の
好ましい実施形態では、ＨＰＬＣ及び／又はＴＦＬＣは、移動相ＡとしてＨＰＬＣグレー
ドの水及び移動相ＢとしてＨＰＬＣグレードのエタノールを使用して実施される。
ーシステムを用いて実施される。特定の好ましい実施形態では、高純度シリカカラム（例
えば、Ｔｈｅｒｍｏ Ｈｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ Ａｑカラム）が使用される。特定の
好ましい実施形態では、ＨＰＬＣ及び／又はＴＦＬＣは、移動相ＡとしてＨＰＬＣグレー
ドの水及び移動相ＢとしてＨＰＬＣグレードのエタノールを使用して実施される。
バルブ及び連結配管を注意深く選択することによって、２つ又はそれ以上のクロマトグ
ラフィーカラムを材料がいかなる手作業の工程も全く必要とせずに１つのカラムから次の
カラムへ通過するように必要に応じて接続することができる。好ましい実施形態では、バ
ルブ及び配管の選択は、必要な工程を実施するために前もってプログラムされたコンピュ
ータによって制御される。最も好ましくは、クロマトグラフィーシステムは、さらにオン
ライン方式で検出システム、例えばＭＳシステムへ接続される。従って、オペレータは、
サンプルのトレイをオートサンプラーへ配置することができ、残りの作業はコンピュータ
制御下で実施され、結果として選択された全サンプルの精製及び分析が行われる。
ラフィーカラムを材料がいかなる手作業の工程も全く必要とせずに１つのカラムから次の
カラムへ通過するように必要に応じて接続することができる。好ましい実施形態では、バ
ルブ及び配管の選択は、必要な工程を実施するために前もってプログラムされたコンピュ
ータによって制御される。最も好ましくは、クロマトグラフィーシステムは、さらにオン
ライン方式で検出システム、例えばＭＳシステムへ接続される。従って、オペレータは、
サンプルのトレイをオートサンプラーへ配置することができ、残りの作業はコンピュータ
制御下で実施され、結果として選択された全サンプルの精製及び分析が行われる。
一部の実施形態では、抽出カラムは、質量分析法の前にビタミンＤ代謝産物を精製する
ために使用できる。そのような実施形態では、サンプルは、分析物を捕捉する抽出カラム
を用いて抽出し、次にイオン化の前に第２抽出カラム上又は分析用ＨＰＬＣカラム上で溶
出させてクロマトグラフィーにかけることができる。例えば、ＴＦＬＣ抽出カラムを用い
たサンプル抽出は、粒径の大きな（５０μｍ）充填カラムを用いて実施することができる
。このカラムから溶出されたサンプルは、次に質量分析法の前にさらに精製するためにＨ
ＰＬＣ分析カラムへ移すことができる。これらのクロマトグラフィー法に含まれる工程は
自動方式で連結することができるので、分析物の精製中にオペレータが関与する要件は最
小限に抑えることができる。この特徴は、時間及び費用の節約を生じさせ、オペレータが
操作を間違える可能性を排除することができる。
ために使用できる。そのような実施形態では、サンプルは、分析物を捕捉する抽出カラム
を用いて抽出し、次にイオン化の前に第２抽出カラム上又は分析用ＨＰＬＣカラム上で溶
出させてクロマトグラフィーにかけることができる。例えば、ＴＦＬＣ抽出カラムを用い
たサンプル抽出は、粒径の大きな（５０μｍ）充填カラムを用いて実施することができる
。このカラムから溶出されたサンプルは、次に質量分析法の前にさらに精製するためにＨ
ＰＬＣ分析カラムへ移すことができる。これらのクロマトグラフィー法に含まれる工程は
自動方式で連結することができるので、分析物の精製中にオペレータが関与する要件は最
小限に抑えることができる。この特徴は、時間及び費用の節約を生じさせ、オペレータが
操作を間違える可能性を排除することができる。
一部の実施形態では、タンパク質沈殿法は、メタノールタンパク質沈殿法及び血清から
の酢酸エチル／水による抽出を含む複合型タンパク質沈降法／液−液抽出法を用いて実施
される。結果として生じるビタミンＤ代謝産物は、抽出カラムにかける前に誘導体化する
ことができる。好ましくは、複合型タンパク質沈殿法／液−液抽出法及び抽出カラムはオ
ンライン方式で接続される。好ましい実施形態では、抽出カラムは、Ｃ−８抽出カラム、
例えばＣｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃ８ＸＬオンライン抽出カラム（
粒径：５０μｍ、０．５×５０ｍｍ）又は同等物である。次に抽出カラムからの溶離液は
、質量分析法による分析の前に、分析用ＬＣカラム、例えばＨＰＬＣカラムへオンライン
方式で適用することができる。これらのクロマトグラフィー法に含まれる工程は自動方式
で連結することができるので、分析物の精製中にオペレータが関与する要件は最小限に抑
えることができる。この特徴は、時間及び費用の節約を生じさせ、オペレータが操作を間
違える可能性を排除することができる。
の酢酸エチル／水による抽出を含む複合型タンパク質沈降法／液−液抽出法を用いて実施
される。結果として生じるビタミンＤ代謝産物は、抽出カラムにかける前に誘導体化する
ことができる。好ましくは、複合型タンパク質沈殿法／液−液抽出法及び抽出カラムはオ
ンライン方式で接続される。好ましい実施形態では、抽出カラムは、Ｃ−８抽出カラム、
例えばＣｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃ８ＸＬオンライン抽出カラム（
粒径：５０μｍ、０．５×５０ｍｍ）又は同等物である。次に抽出カラムからの溶離液は
、質量分析法による分析の前に、分析用ＬＣカラム、例えばＨＰＬＣカラムへオンライン
方式で適用することができる。これらのクロマトグラフィー法に含まれる工程は自動方式
で連結することができるので、分析物の精製中にオペレータが関与する要件は最小限に抑
えることができる。この特徴は、時間及び費用の節約を生じさせ、オペレータが操作を間
違える可能性を排除することができる。
質量分析法による検出及び定量
様々な実施形態では、誘導体化ビタミンＤは、当業者には公知の任意の方法によってイ
オン化することができる。質量分析法は、分別されたサンプルをイオン化し、その後の分
析のために荷電分子を作り出すためのイオン源を含む質量分析計を用いて実施される。例
えば、サンプルのイオン化は、電子イオン化、化学イオン化、エレクトロスプレーイオン
化（ＥＳＩ）、光子イオン化、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）、光イオン化、大気圧光
イオン化（ＡＰＰＩ）、レーザーダイオード熱脱離（ＬＤＴＤ）、高速原子衝撃法（ＦＡ
Ｂ）、液体二次イオン化（ＬＳＩ）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤ
Ｉ）、電場イオン化、電場脱離、サーモスプレー／プラズマスプレーイオン化、表面増強
レーザー脱離イオン化（ＳＥＬＤＩ）、誘導結合プラズマ（ＩＣＰ）及び粒子ビームイオ
ン化によって実施することができる。当業者であれば、イオン化法の選択は、測定対象の
分析物、サンプルのタイプ、検出器のタイプ、正対負のモードの選択などに基づいて決定
することができることを理解する。
様々な実施形態では、誘導体化ビタミンＤは、当業者には公知の任意の方法によってイ
オン化することができる。質量分析法は、分別されたサンプルをイオン化し、その後の分
析のために荷電分子を作り出すためのイオン源を含む質量分析計を用いて実施される。例
えば、サンプルのイオン化は、電子イオン化、化学イオン化、エレクトロスプレーイオン
化（ＥＳＩ）、光子イオン化、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）、光イオン化、大気圧光
イオン化（ＡＰＰＩ）、レーザーダイオード熱脱離（ＬＤＴＤ）、高速原子衝撃法（ＦＡ
Ｂ）、液体二次イオン化（ＬＳＩ）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤ
Ｉ）、電場イオン化、電場脱離、サーモスプレー／プラズマスプレーイオン化、表面増強
レーザー脱離イオン化（ＳＥＬＤＩ）、誘導結合プラズマ（ＩＣＰ）及び粒子ビームイオ
ン化によって実施することができる。当業者であれば、イオン化法の選択は、測定対象の
分析物、サンプルのタイプ、検出器のタイプ、正対負のモードの選択などに基づいて決定
することができることを理解する。
誘導体化ビタミンＤは、正又は負のモードでイオン化できる。好ましい実施形態では、
誘導体化ビタミンＤは、正イオンモードでＡＰＣＩ又はＬＤＴＤを用いてイオン化される
。
誘導体化ビタミンＤは、正イオンモードでＡＰＣＩ又はＬＤＴＤを用いてイオン化される
。
質量分析法の技術では、一般に、サンプルがイオン化された後、それにより作り出され
た正又は負の荷電イオンを分析して質量対電荷比を決定することができる。質量対電荷比
を決定するために適するアナライザーには、四重極アナライザー、イオントラップアナラ
イザー及び飛行時間アナライザーが含まれる。典型的なイオントラップ法は、Bartolucci
, et al., Rapid Commun. Mass Spectrom. 2000, 14: 967-73に記載されている。
た正又は負の荷電イオンを分析して質量対電荷比を決定することができる。質量対電荷比
を決定するために適するアナライザーには、四重極アナライザー、イオントラップアナラ
イザー及び飛行時間アナライザーが含まれる。典型的なイオントラップ法は、Bartolucci
, et al., Rapid Commun. Mass Spectrom. 2000, 14: 967-73に記載されている。
イオンは、幾つかの検出モードを使用して検出することができる。例えば、選択された
イオンは、即ち選択的イオンモニタリングモード（ＳＩＭ）を使用して検出でき、又は衝
突誘起解離若しくは自然損失の結果として生じた質量変化は、例えば多重反応モニタリン
グ（ＭＲＭ）又は選択された反応モニタリング（ＳＲＭ）によって監視することができる
。好ましくは、質量対電荷比は、四重極アナライザーを使用して決定される。例えば、「
四重極」若しくは「四重極イオントラップ」機器では、振動無線周波数電磁場内のイオン
は電極間に印加されたＤＣ電位に比例する力、ＲＦ信号の振幅及び質量／電荷比を経験す
る。電圧及び振幅は、特定質量／電荷比を有するイオンだけが四重極の全長を移動し、他
の全てのイオンは偏向させられるように選択することができる。従って、四重極機器は、
該機器内に注入されたイオンにとっての「質量フィルター」及び「質量検出器」の両方と
して機能できる。
イオンは、即ち選択的イオンモニタリングモード（ＳＩＭ）を使用して検出でき、又は衝
突誘起解離若しくは自然損失の結果として生じた質量変化は、例えば多重反応モニタリン
グ（ＭＲＭ）又は選択された反応モニタリング（ＳＲＭ）によって監視することができる
。好ましくは、質量対電荷比は、四重極アナライザーを使用して決定される。例えば、「
四重極」若しくは「四重極イオントラップ」機器では、振動無線周波数電磁場内のイオン
は電極間に印加されたＤＣ電位に比例する力、ＲＦ信号の振幅及び質量／電荷比を経験す
る。電圧及び振幅は、特定質量／電荷比を有するイオンだけが四重極の全長を移動し、他
の全てのイオンは偏向させられるように選択することができる。従って、四重極機器は、
該機器内に注入されたイオンにとっての「質量フィルター」及び「質量検出器」の両方と
して機能できる。
ＭＳ技術の解像度は、「タンデム質量分析法」若しくは「ＭＳ／ＭＳ」を使用すること
によって強化することができる。この技術では、対象の分子から生成された前駆体イオン
（親イオンとも呼ばれる）はＭＳ機器内で濾過することができ、該前駆体イオンは引き続
いて第２ＭＳ法において分析される１つ又はそれ以上のフラグメントイオン（娘イオン又
は生成物イオンとも呼ばれる）を産生するためにフラグメント化される。前駆体イオンの
注意深い選択によって、特定の分析物によって生成されたイオンだけがフラグメント化チ
ャンバへ通過させられ、そこでの不活性ガスの原子との衝突がフラグメントイオンを生成
する。前駆体イオン及びフラグメントイオンはどちらも所定セットのイオン化／フラグメ
ント化条件下で反復方法により生成されるので、ＭＳ／ＭＳ技術は極めて強力な分析用ツ
ールを提供することができる。例えば、濾過／フラグメント化の組み合わせは、干渉物質
を排除するために使用することができ、複雑なサンプル中、例えば生物学的サンプル中で
特に有用な可能性がある。
によって強化することができる。この技術では、対象の分子から生成された前駆体イオン
（親イオンとも呼ばれる）はＭＳ機器内で濾過することができ、該前駆体イオンは引き続
いて第２ＭＳ法において分析される１つ又はそれ以上のフラグメントイオン（娘イオン又
は生成物イオンとも呼ばれる）を産生するためにフラグメント化される。前駆体イオンの
注意深い選択によって、特定の分析物によって生成されたイオンだけがフラグメント化チ
ャンバへ通過させられ、そこでの不活性ガスの原子との衝突がフラグメントイオンを生成
する。前駆体イオン及びフラグメントイオンはどちらも所定セットのイオン化／フラグメ
ント化条件下で反復方法により生成されるので、ＭＳ／ＭＳ技術は極めて強力な分析用ツ
ールを提供することができる。例えば、濾過／フラグメント化の組み合わせは、干渉物質
を排除するために使用することができ、複雑なサンプル中、例えば生物学的サンプル中で
特に有用な可能性がある。
タンデム質量分析器械を操作する又別のモードには、生成物イオンスキャニング及び前
駆体イオンスキャニングが含まれる。これらの操作モードの説明については、例えば、E.
Michael Thurman, et al., Chromatographic-Mass Spectrometric Food Analysis for T
race Determination of Pesticide Residues, Chapter 8 (Amadeo R. Fernandez-Alba, e
d., Elsevier 2005) (387)を参照されたい。
駆体イオンスキャニングが含まれる。これらの操作モードの説明については、例えば、E.
Michael Thurman, et al., Chromatographic-Mass Spectrometric Food Analysis for T
race Determination of Pesticide Residues, Chapter 8 (Amadeo R. Fernandez-Alba, e
d., Elsevier 2005) (387)を参照されたい。
分析物アッセイの結果は、当分野において公知の数多くの方法によって、原サンプル中
の該分析物の量と関連付けることができる。例えば、サンプリング及び分析パラメータが
注意深く制御されていることを前提にすると、所定のイオンの相対存在量は、相対存在量
を原分子の絶対量へ変換する表と比較することができる。又は、サンプルと共に外部標準
をランし、それらの標準から生成されたイオンに基づいて標準曲線を構築することができ
る。そのような標準曲線を使用すると、所定のイオンの相対存在量を原分子の絶対量へ変
換することができる。特定の好ましい実施形態では、内部標準を使用して、ビタミンＤの
量を計算するための標準曲線を作成する。そのような標準曲線を作成及び使用する方法は
当分野において周知であり、当業者であれば適切な内部標準を選択することができる。例
えば、好ましい実施形態では、１つ又はそれ以上の同位体標識されたビタミンＤ（例えば
、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［６，１９，１９］−
２Ｈ３）を内部標準として使用できる。イオンの量を原分子の量へ関連付けるための他の
数多くの方法は、当業者には周知である。
の該分析物の量と関連付けることができる。例えば、サンプリング及び分析パラメータが
注意深く制御されていることを前提にすると、所定のイオンの相対存在量は、相対存在量
を原分子の絶対量へ変換する表と比較することができる。又は、サンプルと共に外部標準
をランし、それらの標準から生成されたイオンに基づいて標準曲線を構築することができ
る。そのような標準曲線を使用すると、所定のイオンの相対存在量を原分子の絶対量へ変
換することができる。特定の好ましい実施形態では、内部標準を使用して、ビタミンＤの
量を計算するための標準曲線を作成する。そのような標準曲線を作成及び使用する方法は
当分野において周知であり、当業者であれば適切な内部標準を選択することができる。例
えば、好ましい実施形態では、１つ又はそれ以上の同位体標識されたビタミンＤ（例えば
、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［６，１９，１９］−
２Ｈ３）を内部標準として使用できる。イオンの量を原分子の量へ関連付けるための他の
数多くの方法は、当業者には周知である。
本方法の１つ又はそれ以上の工程は、自動機械を使用して実施することができる。特定
の実施形態では、１つ又はそれ以上の精製工程はオンラインで実施され、より好ましくは
精製及び質量分析法工程の全部をオンライン方式で実施することができる。
の実施形態では、１つ又はそれ以上の精製工程はオンラインで実施され、より好ましくは
精製及び質量分析法工程の全部をオンライン方式で実施することができる。
特定の実施形態、例えばＭＳ／ＭＳでは、前駆体イオンがその後のフラグメント化のた
めに単離され、衝突活性化解離（ＣＡＤ）がその後の検出のためのフラグメントイオンを
生成するために使用されることが多い。ＣＡＤでは、前駆体イオンは不活性ガスとの衝突
を通してエネルギーを獲得し、引き続いて「単分子分解」と呼ばれる方法によってフラグ
メント化する。前駆体イオン内には、該イオン内の特定の結合を増加した振動エネルギー
に起因して崩壊できるように十分なエネルギーが堆積させられなければならない。
めに単離され、衝突活性化解離（ＣＡＤ）がその後の検出のためのフラグメントイオンを
生成するために使用されることが多い。ＣＡＤでは、前駆体イオンは不活性ガスとの衝突
を通してエネルギーを獲得し、引き続いて「単分子分解」と呼ばれる方法によってフラグ
メント化する。前駆体イオン内には、該イオン内の特定の結合を増加した振動エネルギー
に起因して崩壊できるように十分なエネルギーが堆積させられなければならない。
一部の好ましい実施形態では、サンプル中のビタミンＤは、以下のようにＭＳ／ＭＳを
用いて検出及び／又は定量される。サンプルは、最初にタンパク質沈殿法又は複合型タン
パク質沈殿／液−液抽出法によって精製される。次に、精製されたサンプル中のビタミン
Ｄは、場合によりクックソン型試薬、例えばＰＴＡＤを用いて誘導体化される。次に、精
製されたサンプルは、液体クロマトグラフィーに、好ましくは抽出カラム（例えば、ＴＦ
ＬＣカラム）、次の分析カラム（例えば、ＨＰＬＣカラム）上でかけられる。クロマトグ
ラフィーカラムからの液体溶媒の流れは、ＭＳ／ＭＳアナライザーのネブライザー界面に
進入し、及び溶媒／分析物混合液は、界面の加熱荷電チュービング内で蒸気に変換られる
。溶媒中に含有される分析物（例えば、誘導体化又は非誘導体化ビタミンＤ）は、溶媒／
分析物混合液へ大きな電圧を印加することによってイオン化される。分析物が界面の荷電
チュービングから出て行くにつれて、溶媒／分析物混合液は霧状になり、溶媒は蒸発し、
分析物イオンが残る。分析物イオン、例えば前駆体イオンは、器械の開口部を通過して第
１四重極に進入する。四重極１及び３（Ｑ１及びＱ３）は、質量フィルターであり、それ
らの質量対電荷比（ｍ／ｚ）に基づいてイオンの選択（即ち、Ｑ１及びＱ３における「前
駆体」イオン及び「フラグメント」イオン各々の選択）を可能にする。四重極２（Ｑ２）
は、イオンがフラグメント化される衝突セルである。質量分析計の第１四重極（Ｑ１）は
、対象の質量対電荷比を備えるイオンを選択する。正しい質量／電荷比を備える前駆体イ
オンは衝突チャンバ（Ｑ２）を通過させられるが、一方、任意の他の質量／電荷比を備え
る望ましくないイオンは該四重極の側面に衝突し、排除される。Ｑ２に進入する前駆体イ
オンは中性アルゴンガス分子及びフラグメントと衝突する。生成されたフラグメントイオ
ンは四重極３（Ｑ３）内に通過させられ、そこで誘導体化又は非誘導体化ビタミンＤフラ
グメントイオンが選択され、その他のイオンが排除される。
用いて検出及び／又は定量される。サンプルは、最初にタンパク質沈殿法又は複合型タン
パク質沈殿／液−液抽出法によって精製される。次に、精製されたサンプル中のビタミン
Ｄは、場合によりクックソン型試薬、例えばＰＴＡＤを用いて誘導体化される。次に、精
製されたサンプルは、液体クロマトグラフィーに、好ましくは抽出カラム（例えば、ＴＦ
ＬＣカラム）、次の分析カラム（例えば、ＨＰＬＣカラム）上でかけられる。クロマトグ
ラフィーカラムからの液体溶媒の流れは、ＭＳ／ＭＳアナライザーのネブライザー界面に
進入し、及び溶媒／分析物混合液は、界面の加熱荷電チュービング内で蒸気に変換られる
。溶媒中に含有される分析物（例えば、誘導体化又は非誘導体化ビタミンＤ）は、溶媒／
分析物混合液へ大きな電圧を印加することによってイオン化される。分析物が界面の荷電
チュービングから出て行くにつれて、溶媒／分析物混合液は霧状になり、溶媒は蒸発し、
分析物イオンが残る。分析物イオン、例えば前駆体イオンは、器械の開口部を通過して第
１四重極に進入する。四重極１及び３（Ｑ１及びＱ３）は、質量フィルターであり、それ
らの質量対電荷比（ｍ／ｚ）に基づいてイオンの選択（即ち、Ｑ１及びＱ３における「前
駆体」イオン及び「フラグメント」イオン各々の選択）を可能にする。四重極２（Ｑ２）
は、イオンがフラグメント化される衝突セルである。質量分析計の第１四重極（Ｑ１）は
、対象の質量対電荷比を備えるイオンを選択する。正しい質量／電荷比を備える前駆体イ
オンは衝突チャンバ（Ｑ２）を通過させられるが、一方、任意の他の質量／電荷比を備え
る望ましくないイオンは該四重極の側面に衝突し、排除される。Ｑ２に進入する前駆体イ
オンは中性アルゴンガス分子及びフラグメントと衝突する。生成されたフラグメントイオ
ンは四重極３（Ｑ３）内に通過させられ、そこで誘導体化又は非誘導体化ビタミンＤフラ
グメントイオンが選択され、その他のイオンが排除される。
本方法は、正又は負いずれかのイオンモード、好ましくは正のイオンモードで実施され
るＭＳ／ＭＳを含むことができる。当分野において周知の標準方法を用いると、当業者で
あれば、四重極３（Ｑ３）において選択するために使用できる誘導体化ビタミンＤの特定
前駆体イオンの１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを同定することができる。
るＭＳ／ＭＳを含むことができる。当分野において周知の標準方法を用いると、当業者で
あれば、四重極３（Ｑ３）において選択するために使用できる誘導体化ビタミンＤの特定
前駆体イオンの１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを同定することができる。
イオンが検出器と衝突するにつれて、イオンはデジタル信号に変換される電子パルスを
生成する。獲得されたデータは、コンピュータへ中継され、コンピュータは収集されたイ
オン対時間の計数をプロットする。結果として生じる質量クロマトグラムは、伝統的ＨＰ
ＬＣ−ＭＳ法において生成されたクロマトグラムに類似する。特定イオンに対応するピー
ク下の面積、又はそのようなピークの振幅を測定し、対象の分析物の量に関連付けること
ができる。特定の実施形態では、フラグメントイオン及び／又は前駆体イオンについての
曲線下面積、又はピークの振幅は、ビタミンＤの量を決定するために測定される。上述し
たように、所定のイオンの相対存在量は、内部分子標準の１つ又はそれ以上のイオンのピ
ークに基づいて標準検量線を使用して原分析物の絶対量に変換することができる。
[実施例］
生成する。獲得されたデータは、コンピュータへ中継され、コンピュータは収集されたイ
オン対時間の計数をプロットする。結果として生じる質量クロマトグラムは、伝統的ＨＰ
ＬＣ−ＭＳ法において生成されたクロマトグラムに類似する。特定イオンに対応するピー
ク下の面積、又はそのようなピークの振幅を測定し、対象の分析物の量に関連付けること
ができる。特定の実施形態では、フラグメントイオン及び／又は前駆体イオンについての
曲線下面積、又はピークの振幅は、ビタミンＤの量を決定するために測定される。上述し
たように、所定のイオンの相対存在量は、内部分子標準の１つ又はそれ以上のイオンのピ
ークに基づいて標準検量線を使用して原分析物の絶対量に変換することができる。
[実施例］
複合型タンパク質沈殿法／液−液抽出法及びクックソン型誘導体化
以下の自動複合型タンパク質沈殿法／液−液抽出法は、患者血清サンプルを対象に実施
した。ゲル−バリヤ血清（即ち、血清分離剤チューブ内に収集された血清）並びにＥＤＴ
Ａ血漿及びヘパリン血漿も、このアッセイのために許容されることが確定されている。
以下の自動複合型タンパク質沈殿法／液−液抽出法は、患者血清サンプルを対象に実施
した。ゲル−バリヤ血清（即ち、血清分離剤チューブ内に収集された血清）並びにＥＤＴ
Ａ血漿及びヘパリン血漿も、このアッセイのために許容されることが確定されている。
Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ社製Ｊａｎｕｓ ロボット及びＴｏｍＴｅｃ社製Ｑｕａｄｒ
ａ Ｔｏｗｅｒ ロボットを使用して以下の手順を自動化した。各サンプルについて、５
０μＬの血清を９６ウエルプレートのウエルに加えた。次に２５μＬの内部標準カクテル
（同位体標識されたビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を含有する）を各ウエル
に加え、プレートをボルテックスミキサーにかけた。次に７５μＬのメタノールを加え、
さらに追加してボルテックスミキサーにかけた。次に３００μＬの酢酸エチル及び７５μ
Ｌの水を加え、追加してボルテックスミキサーにかけ、遠心し、生じた上清を新しい９６
ウエルプレートに移した。
ａ Ｔｏｗｅｒ ロボットを使用して以下の手順を自動化した。各サンプルについて、５
０μＬの血清を９６ウエルプレートのウエルに加えた。次に２５μＬの内部標準カクテル
（同位体標識されたビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を含有する）を各ウエル
に加え、プレートをボルテックスミキサーにかけた。次に７５μＬのメタノールを加え、
さらに追加してボルテックスミキサーにかけた。次に３００μＬの酢酸エチル及び７５μ
Ｌの水を加え、追加してボルテックスミキサーにかけ、遠心し、生じた上清を新しい９６
ウエルプレートに移した。
第２の９６ウエルプレート内に移した液体は、流動する窒素ガスマニホールド下で完全
に乾燥させた。誘導体化は、各ウエルにアセトニトリル中のクックソン型誘導体化剤ＰＴ
ＡＤの０．１ｍｇ／ｍＬ溶液１００μＬを加えることによって実施した。誘導体化反応を
およそ１時間に渡り進行させ、反応混合液に水１００μＬを加えることによってクエンチ
させた。
に乾燥させた。誘導体化は、各ウエルにアセトニトリル中のクックソン型誘導体化剤ＰＴ
ＡＤの０．１ｍｇ／ｍＬ溶液１００μＬを加えることによって実施した。誘導体化反応を
およそ１時間に渡り進行させ、反応混合液に水１００μＬを加えることによってクエンチ
させた。
液体クロマトグラフィーを用いたビタミンＤの抽出
サンプル注入は、Ａｒｉａ ＯＳ Ｖ１．５．１若しくはそれ以降のソフトウエアを使
用してＣｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ａｒｉａ ＴＸ−４ ＴＦＬＣシ
ステムを用いて実施した。
サンプル注入は、Ａｒｉａ ＯＳ Ｖ１．５．１若しくはそれ以降のソフトウエアを使
用してＣｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ａｒｉａ ＴＸ−４ ＴＦＬＣシ
ステムを用いて実施した。
ＴＦＬＣシステムは、上記で調製したサンプルのアリコートを大粒子が充填されたＣｏ
ｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃ８ＸＬオンライン抽出カラム（粒径：５０
μｍ、００５×５０ｍｍ、Ｃｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）内へ自動的
に注入した。サンプルは、抽出カラム内で乱流を作り出すために高流速で装填した。この
乱流は、カラム内での誘導体化ビタミンＤの大粒子への最適な結合並びに廃棄するための
過剰な誘導体化試薬及び破片の通過を保証した。
ｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｃ８ＸＬオンライン抽出カラム（粒径：５０
μｍ、００５×５０ｍｍ、Ｃｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）内へ自動的
に注入した。サンプルは、抽出カラム内で乱流を作り出すために高流速で装填した。この
乱流は、カラム内での誘導体化ビタミンＤの大粒子への最適な結合並びに廃棄するための
過剰な誘導体化試薬及び破片の通過を保証した。
装填後、サンプルは、水／エタノール溶出勾配を用いて、分析カラムＴｈｅｒｍｏ Ｈ
ｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ Ａｑ分析カラム（粒径：５μｍ、５０×２．１ｍｍ）へ溶出
させた。ビタミンＤをサンプル中に含有される他の分析物から分離するために、ＨＰＬＣ
勾配を分析カラムへ適用した。移動相Ａは水であり、移動相Ｂはエタノールであった。Ｈ
ＰＬＣ勾配は、３５％有機勾配で開始し、およそ６５秒間で９９％へ増加させた。
ｙｐｅｒｓｉｌ Ｇｏｌｄ Ａｑ分析カラム（粒径：５μｍ、５０×２．１ｍｍ）へ溶出
させた。ビタミンＤをサンプル中に含有される他の分析物から分離するために、ＨＰＬＣ
勾配を分析カラムへ適用した。移動相Ａは水であり、移動相Ｂはエタノールであった。Ｈ
ＰＬＣ勾配は、３５％有機勾配で開始し、およそ６５秒間で９９％へ増加させた。
誘導体化ビタミンＤのＭＳ／ＭＳによる検出及び定量
ＭＳ／ＭＳは、上記で生成されたサンプルを対象にＦｉｎｎｉｇａｎ ＴＳＱ Ｑｕａ
ｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒ
ｐｏｒａｔｉｏｎ社）を使用して実施した。全部がＴｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ社製
である以下のソフトウエアプログラムを本明細書に記載した実施例において使用した：Ｑ
ｕａｎｔｕｍ Ｔｕｎｅ Ｍａｓｔｅｒ Ｖ１．５又はそれ以降、Ｘｃａｌｉｂｕｒ Ｖ
２．０７又はそれ以降、ＬＣＱｕａｎ Ｖ２．５６（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｎｎｉｇａｎ社
）又はそれ以降及びＡＲＩＡ ＯＳ ｖ１．５．１（Ｃｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌ
ｏｇｉｅｓ社）又はそれ以降。分析カラムから出た液体溶媒／分析物はＭＳ／ＭＳアナラ
イザーのネブライザー界面へ流動した。溶媒／分析物混合液は、界面のチュービング内で
蒸気に変換された。噴霧化された溶媒の分析物は、ＡＰＣＩによってイオン化された。
ＭＳ／ＭＳは、上記で生成されたサンプルを対象にＦｉｎｎｉｇａｎ ＴＳＱ Ｑｕａ
ｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒ
ｐｏｒａｔｉｏｎ社）を使用して実施した。全部がＴｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ社製
である以下のソフトウエアプログラムを本明細書に記載した実施例において使用した：Ｑ
ｕａｎｔｕｍ Ｔｕｎｅ Ｍａｓｔｅｒ Ｖ１．５又はそれ以降、Ｘｃａｌｉｂｕｒ Ｖ
２．０７又はそれ以降、ＬＣＱｕａｎ Ｖ２．５６（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｎｎｉｇａｎ社
）又はそれ以降及びＡＲＩＡ ＯＳ ｖ１．５．１（Ｃｏｈｅｓｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌ
ｏｇｉｅｓ社）又はそれ以降。分析カラムから出た液体溶媒／分析物はＭＳ／ＭＳアナラ
イザーのネブライザー界面へ流動した。溶媒／分析物混合液は、界面のチュービング内で
蒸気に変換された。噴霧化された溶媒の分析物は、ＡＰＣＩによってイオン化された。
イオンは、質量対電荷比５７２．３±０．５のｍ／ｚ及び５６０．３±０．５のｍ／ｚ
を各々備えるビタミンＤ２及びビタミンＤ３前駆体イオンを選択する第１四重極（Ｑ１）
を通過した。四重極２（Ｑ２）に進入したイオンはアルゴンガスと衝突してイオンフラグ
メントを生成し、これらのイオンフラグメントはその後の選択のために四重極３（Ｑ３）
へ通過させられた。質量分析計の設定は表１に示す。同時に、同位体希釈質量分析法を用
いる同一方法を内部標準であるビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を用いて実施
した。正極性及び指示された衝突エネルギーでのバリデーション中の検出及び定量のため
に使用した質量変化は表２に示す。
を各々備えるビタミンＤ２及びビタミンＤ３前駆体イオンを選択する第１四重極（Ｑ１）
を通過した。四重極２（Ｑ２）に進入したイオンはアルゴンガスと衝突してイオンフラグ
メントを生成し、これらのイオンフラグメントはその後の選択のために四重極３（Ｑ３）
へ通過させられた。質量分析計の設定は表１に示す。同時に、同位体希釈質量分析法を用
いる同一方法を内部標準であるビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を用いて実施
した。正極性及び指示された衝突エネルギーでのバリデーション中の検出及び定量のため
に使用した質量変化は表２に示す。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［６，
１９，１９］−２Ｈ３（内部標準）の典型的なクロマトグラムは、各々図１Ａ、１Ｂ及び
１Ｃに示す。
１９，１９］−２Ｈ３（内部標準）の典型的なクロマトグラムは、各々図１Ａ、１Ｂ及び
１Ｃに示す。
血清試料中のビタミンＤ２及びビタミンＤ３の決定についての典型的な検量線は、各々
図２Ａ及び２Ｂに示す。
図２Ａ及び２Ｂに示す。
ＭＳ／ＭＳによる誘導体化ビタミンＤ検出についての反応の直線性
直線性は、実施例１から３の方法によって、ビタミンＤ２又はビタミンＤ３いずれかの
高内因性濃度を備える血清の４つのプールを希釈し、７５％、５０％及び２５％の希釈液
を２回ずつ分析することによって決定した。試料を平均回収率１０２％で１：４で希釈す
ると、８５％から１１５％ＣＶの精度限界内で２から２４０ｎｇ／ｍＬの臨床報告可能範
囲（ＣＲＲ）が可能になる。これらの試験からの測定値及び回収率は表３に示す。
直線性は、実施例１から３の方法によって、ビタミンＤ２又はビタミンＤ３いずれかの
高内因性濃度を備える血清の４つのプールを希釈し、７５％、５０％及び２５％の希釈液
を２回ずつ分析することによって決定した。試料を平均回収率１０２％で１：４で希釈す
ると、８５％から１１５％ＣＶの精度限界内で２から２４０ｎｇ／ｍＬの臨床報告可能範
囲（ＣＲＲ）が可能になる。これらの試験からの測定値及び回収率は表３に示す。
分析感度：定量下限（ＬＬＯＱ）及び検出限界（ＬＯＤ）
定量下限（ＬＬＯＱ）は、測定値が定量的に有意となるポイントである。このＬＬＯＱ
での分析物の反応は、２０％より大きい精度（即ち、変動係数（ＣＶ）)及び８０％から
１２０％の正確性を備えて同定可能、個別的及び再現性である。ＬＬＯＱは、公知の分析
物濃度（２ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍ
Ｌ、４０ｎｇ／ｍＬ及び６０ｎｇ／ｍＬ）を備えるサンプルを実施例１から３の方法によ
って４例ずつ５回アッセイし、再現性を評価することによって決定した。収集されたデー
タの分析は、２ｎｇ／ｍＬ未満の濃度を備えるサンプルが両方の分析物について２０％未
満のＣＶを産生することを示している。従って、各分析物のＬＬＯＱは、＜２ｎｇ／ｍＬ
であると決定された。ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２及びＰＴＡＤ−ビタミンＤ３のＬＬＯＱを
決定するために生成されたデータは、各々表４及び５に示す。両方の分析物に対するＣＶ
対濃度のグラフ表示は図３に示す。
定量下限（ＬＬＯＱ）は、測定値が定量的に有意となるポイントである。このＬＬＯＱ
での分析物の反応は、２０％より大きい精度（即ち、変動係数（ＣＶ）)及び８０％から
１２０％の正確性を備えて同定可能、個別的及び再現性である。ＬＬＯＱは、公知の分析
物濃度（２ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍ
Ｌ、４０ｎｇ／ｍＬ及び６０ｎｇ／ｍＬ）を備えるサンプルを実施例１から３の方法によ
って４例ずつ５回アッセイし、再現性を評価することによって決定した。収集されたデー
タの分析は、２ｎｇ／ｍＬ未満の濃度を備えるサンプルが両方の分析物について２０％未
満のＣＶを産生することを示している。従って、各分析物のＬＬＯＱは、＜２ｎｇ／ｍＬ
であると決定された。ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２及びＰＴＡＤ−ビタミンＤ３のＬＬＯＱを
決定するために生成されたデータは、各々表４及び５に示す。両方の分析物に対するＣＶ
対濃度のグラフ表示は図３に示す。
検出限界（ＬＯＤ）は、測定値がそれに関連する不確定性より大きく、ゼロ濃度から４
標準偏差（ＳＤ）として適宜に規定されているポイントである。選択性は、分析法がサン
プル中の他の成分の存在下で分析物を識別して定量する能力である。ブランクは、実施例
１から３の方法に従って２０回ずつ分析され、結果として生じた面積比を統計学的に分析
してビタミンＤ２及びビタミンＤ３の両方についてのＬＯＤが０．４ｎｇ／ｍＬであると
決定された。各分析物についてのＬＯＤを決定するために収集したデータは表６に示す。
標準偏差（ＳＤ）として適宜に規定されているポイントである。選択性は、分析法がサン
プル中の他の成分の存在下で分析物を識別して定量する能力である。ブランクは、実施例
１から３の方法に従って２０回ずつ分析され、結果として生じた面積比を統計学的に分析
してビタミンＤ２及びビタミンＤ３の両方についてのＬＯＤが０．４ｎｇ／ｍＬであると
決定された。各分析物についてのＬＯＤを決定するために収集したデータは表６に示す。
検出の特異性
数例のサンプルはビタミンＤ２、ビタミンＤ３及びスパイク量の潜在的干渉種（ビタミ
ンＤ代謝産物及び関連化合物を含む）を用いて調製し、実施例１から３の方法に従って分
析した。干渉可能性について試験された化合物は表７に列挙する。試験された化合物はい
ずれも、実施例１から３の方法に従うと、ビタミンＤ２又はビタミンＤ３の検出との交差
反応性を示さなかった。
数例のサンプルはビタミンＤ２、ビタミンＤ３及びスパイク量の潜在的干渉種（ビタミ
ンＤ代謝産物及び関連化合物を含む）を用いて調製し、実施例１から３の方法に従って分
析した。干渉可能性について試験された化合物は表７に列挙する。試験された化合物はい
ずれも、実施例１から３の方法に従うと、ビタミンＤ２又はビタミンＤ３の検出との交差
反応性を示さなかった。
ビタミンＤ２及びビタミンＤ３の定量の再現性
アッセイ間変動はアッセイ内のサンプルの再現性であると規定されており、実施例１か
ら３の方法に従って３つのＱＣプール各々からのサンプルを２０回ずつアッセイすること
によって決定した。これらの分析から収集したデータは、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３
各々について表８及び９に示す。ＱＣプール内の分析物の濃度は、ビタミンＤ２について
は６．６ｎｇ／ｍＬ、２０．６ｎｇ／ｍＬ及び５２．６ｎｇ／ｍＬ、ビタミンＤ３につい
ては４．９ｎｇ／ｍＬ、２０．５ｎｇ／ｍＬ及び４８．６ｎｇ／ｍＬであると決定された
。結果について実施した統計学的検定は、３つのＱＣプールに関してビタミンＤ２につい
ては５．１％、４．６％及び３．９％、並びにビタミンＤ３については６．４％、４．０
％及び４．５％の再現性を生じた。
アッセイ間変動はアッセイ内のサンプルの再現性であると規定されており、実施例１か
ら３の方法に従って３つのＱＣプール各々からのサンプルを２０回ずつアッセイすること
によって決定した。これらの分析から収集したデータは、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３
各々について表８及び９に示す。ＱＣプール内の分析物の濃度は、ビタミンＤ２について
は６．６ｎｇ／ｍＬ、２０．６ｎｇ／ｍＬ及び５２．６ｎｇ／ｍＬ、ビタミンＤ３につい
ては４．９ｎｇ／ｍＬ、２０．５ｎｇ／ｍＬ及び４８．６ｎｇ／ｍＬであると決定された
。結果について実施した統計学的検定は、３つのＱＣプールに関してビタミンＤ２につい
ては５．１％、４．６％及び３．９％、並びにビタミンＤ３については６．４％、４．０
％及び４．５％の再現性を生じた。
アッセイ間変動は、アッセイ間のサンプルの再現性（ＣＶ）であると規定されている。
実施例１から３の方法に従って５回のアッセイに渡って評価したアッセイの報告可能範囲
に及ぶ３つのＱＣプールを使用して、これらのプールについてのアッセイ間変動（ＣＶ）
をビタミンＤ２及びビタミンＤ３について決定した。ビタミンＤ２については、ＣＶは各
々６．５ｎｇ／ｍＬ、２１．１ｎｇ／ｍＬ及び５０．５ｎｇ／ｍＬの平均濃度を用いて６
．７％、５．６％及び４．０％であると決定された。ビタミンＤ３については、ＣＶは各
々４．７ｎｇ／ｍＬ、２０．８ｎｇ／ｍＬ及び４６．８ｎｇ／ｍＬの平均濃度を用いて６
．５％、５．９％及び４．２％であると決定された。これらの分析から収集したデータは
、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３について各々表１０及び１１に示す。全プールは、≦１
５％ ＣＶの許容される再現性要件を満たした。
実施例１から３の方法に従って５回のアッセイに渡って評価したアッセイの報告可能範囲
に及ぶ３つのＱＣプールを使用して、これらのプールについてのアッセイ間変動（ＣＶ）
をビタミンＤ２及びビタミンＤ３について決定した。ビタミンＤ２については、ＣＶは各
々６．５ｎｇ／ｍＬ、２１．１ｎｇ／ｍＬ及び５０．５ｎｇ／ｍＬの平均濃度を用いて６
．７％、５．６％及び４．０％であると決定された。ビタミンＤ３については、ＣＶは各
々４．７ｎｇ／ｍＬ、２０．８ｎｇ／ｍＬ及び４６．８ｎｇ／ｍＬの平均濃度を用いて６
．５％、５．９％及び４．２％であると決定された。これらの分析から収集したデータは
、ビタミンＤ２及びビタミンＤ３について各々表１０及び１１に示す。全プールは、≦１
５％ ＣＶの許容される再現性要件を満たした。
ビタミンＤ２を定量するための方法相関試験
実施例１から３の方法に従ってビタミンＤ２を定量するための方法相関試験は、本明細
書に記載した広範囲に及ぶオフライン抽出を用いるタンデム質量分析法に従って分析した
２０例の分割サンプルを比較し、その後に紫外線検出を用いるＨＰＬＣを行うことによっ
て実施した。試料は、各方法について１回ずつ分析した。データは、線形及びデミング回
帰によって分析した。相関分析は表１２に要約する。
実施例１から３の方法に従ってビタミンＤ２を定量するための方法相関試験は、本明細
書に記載した広範囲に及ぶオフライン抽出を用いるタンデム質量分析法に従って分析した
２０例の分割サンプルを比較し、その後に紫外線検出を用いるＨＰＬＣを行うことによっ
て実施した。試料は、各方法について１回ずつ分析した。データは、線形及びデミング回
帰によって分析した。相関分析は表１２に要約する。
干渉試験
溶血干渉：実施例１から３に記載したアッセイにおける溶血の作用は、上昇したビタミ
ンＤ２及びビタミンＤ３を含有する血清プール中にヘモグロビンをスパイクすることによ
って評価した。新鮮血液サンプルを遠心して濃縮赤血球を産生した。血球を脱イオン水中
で再構成し、細胞溶解を達成するために冷凍した。次にこの粗ヘモグロビン溶液をプール
内へスパイクすると、軽度（１００ｍｇ／ｄＬ）及び中等度（５００ｍｇ／ｄＬ）に溶血
したサンプルが生成された。試料は、実施例１から３の方法に従って２回ずつ分析し、コ
ントロールプールの結果と比較し、相違率（％）を計算した。データは、ヘモグロビンス
パイクがいずれも、いずれの分析物に対してもコントロールと１５％を超えて相違しなか
ったことを証明している。このため、軽度から中等度の溶血試料は許容される。生データ
については表１３を参照されたい（相違率（％）＝（スパイク−非スパイク）／非スパイ
ク×１００％）。
溶血干渉：実施例１から３に記載したアッセイにおける溶血の作用は、上昇したビタミ
ンＤ２及びビタミンＤ３を含有する血清プール中にヘモグロビンをスパイクすることによ
って評価した。新鮮血液サンプルを遠心して濃縮赤血球を産生した。血球を脱イオン水中
で再構成し、細胞溶解を達成するために冷凍した。次にこの粗ヘモグロビン溶液をプール
内へスパイクすると、軽度（１００ｍｇ／ｄＬ）及び中等度（５００ｍｇ／ｄＬ）に溶血
したサンプルが生成された。試料は、実施例１から３の方法に従って２回ずつ分析し、コ
ントロールプールの結果と比較し、相違率（％）を計算した。データは、ヘモグロビンス
パイクがいずれも、いずれの分析物に対してもコントロールと１５％を超えて相違しなか
ったことを証明している。このため、軽度から中等度の溶血試料は許容される。生データ
については表１３を参照されたい（相違率（％）＝（スパイク−非スパイク）／非スパイ
ク×１００％）。
黄疸干渉：実施例１から３に記載したアッセイにおける黄疸の作用は、上昇したビタミ
ンＤ２及びビタミンＤ３を含有する血清プール中にビリルビンをスパイクすることによっ
て評価した。次にビリルビンの濃縮溶液をプール内へスパイクして、軽度（１０ｍｇ／ｄ
Ｌ）及び中等度（５０ｍｇ／ｄＬ）の黄疸性サンプルを生成した。試料は、実施例１から
３の方法に従って２回ずつ分析し、結果を非黄疸性プールの結果と比較し、正確性を計算
した。データは、どちらの分析物も黄疸による影響を受けないことを証明している（全数
値が８５から１１５％の許容される正確性範囲内にある）。このため、黄疸性試料は許容
される。生データについては表１４を参照されたい（相違率（％）＝（スパイク−非スパ
イク）／非スパイク×１００％）。
ンＤ２及びビタミンＤ３を含有する血清プール中にビリルビンをスパイクすることによっ
て評価した。次にビリルビンの濃縮溶液をプール内へスパイクして、軽度（１０ｍｇ／ｄ
Ｌ）及び中等度（５０ｍｇ／ｄＬ）の黄疸性サンプルを生成した。試料は、実施例１から
３の方法に従って２回ずつ分析し、結果を非黄疸性プールの結果と比較し、正確性を計算
した。データは、どちらの分析物も黄疸による影響を受けないことを証明している（全数
値が８５から１１５％の許容される正確性範囲内にある）。このため、黄疸性試料は許容
される。生データについては表１４を参照されたい（相違率（％）＝（スパイク−非スパ
イク）／非スパイク×１００％）。
脂血症干渉：実施例１から３に記載したアッセイにおける脂血症の作用は、上昇したビ
タミンＤ２及びビタミンＤ３を含有する血清プール中にブタ脳抽出物をスパイクすること
によって評価した。粉末状脂質サンプル（Ａｖａｎｔｉ社製極性脂質）を各プール内に溶
解させ、軽度（４００ｍｇ／ｄＬ）及び中等度（２０００ｍｇ／ｄＬ）の脂血症試料を生
成した。試料は、実施例１から３の方法に従って２回ずつ分析し、結果をコントロールプ
ールの結果と比較し、正確性を計算した。データは、どちらの分析物も脂血症による影響
を受けないことを証明している（全数値が８５から１１５％の許容される正確性範囲内に
ある）。生データについては表１５を参照されたい（相違率（％）＝（スパイク−非スパ
イク）／非スパイク×１００％）。
タミンＤ２及びビタミンＤ３を含有する血清プール中にブタ脳抽出物をスパイクすること
によって評価した。粉末状脂質サンプル（Ａｖａｎｔｉ社製極性脂質）を各プール内に溶
解させ、軽度（４００ｍｇ／ｄＬ）及び中等度（２０００ｍｇ／ｄＬ）の脂血症試料を生
成した。試料は、実施例１から３の方法に従って２回ずつ分析し、結果をコントロールプ
ールの結果と比較し、正確性を計算した。データは、どちらの分析物も脂血症による影響
を受けないことを証明している（全数値が８５から１１５％の許容される正確性範囲内に
ある）。生データについては表１５を参照されたい（相違率（％）＝（スパイク−非スパ
イク）／非スパイク×１００％）。
実施例１から３に記載したアッセイにおける脂血症の作用は、上昇したビタミンＤ２及
びビタミンＤ３を含有する血清プール中にＩｎｔｒａｌｉｐｉｄエマルジョンをスパイク
することによって評価した。血清プールに、Ｉｎｔｒａｌｉｐｉｄ（２０％エマルジョン
）を加えて、軽度（４００ｍｇ／ｄＬ）及び中等度（２０００ｍｇ／ｄＬ）脂血症試料を
生成した。試料は、実施例１から３の方法に従って２回ずつ分析し、結果をコントロール
プールの結果と比較し、正確性を計算した。データは、どちらの分析物も脂血症による影
響を受けないことを証明している（全数値が８５から１１５％の許容される正確性範囲内
にある）。生データについては表１６を参照されたい。
びビタミンＤ３を含有する血清プール中にＩｎｔｒａｌｉｐｉｄエマルジョンをスパイク
することによって評価した。血清プールに、Ｉｎｔｒａｌｉｐｉｄ（２０％エマルジョン
）を加えて、軽度（４００ｍｇ／ｄＬ）及び中等度（２０００ｍｇ／ｄＬ）脂血症試料を
生成した。試料は、実施例１から３の方法に従って２回ずつ分析し、結果をコントロール
プールの結果と比較し、正確性を計算した。データは、どちらの分析物も脂血症による影
響を受けないことを証明している（全数値が８５から１１５％の許容される正確性範囲内
にある）。生データについては表１６を参照されたい。
ブタ脳抽出物及びＩｎｔｒａｌｉｐｉｄを使用した２つの脂血症実験に基づいて、脂血
症試料は許容される。
症試料は許容される。
試料タイプの試験
試料は、１０種の起源から４つの異なるＶａｃｕｔａｉｎｅｒ（登録商標）容器内に収
集した。使用したＶａｃｕｔａｉｎｅｒは、Ｒｅｄ−Ｔｏｐ（シリコンコーティング血清
用チューブ）、ＳＳＴ（ゲル−バリヤ血清を生じさせる血清分離剤チューブ）、ＥＤＴＡ
チューブ及びヘパリンナトリウムチューブであった。
試料は、１０種の起源から４つの異なるＶａｃｕｔａｉｎｅｒ（登録商標）容器内に収
集した。使用したＶａｃｕｔａｉｎｅｒは、Ｒｅｄ−Ｔｏｐ（シリコンコーティング血清
用チューブ）、ＳＳＴ（ゲル−バリヤ血清を生じさせる血清分離剤チューブ）、ＥＤＴＡ
チューブ及びヘパリンナトリウムチューブであった。
これらの４０例のサンプルは、実施例１から３の方法に従って栄養的ビタミンＤ３につ
いて分析した。比較結果は、図４に提示する。データは、全４種のサンプルタイプが分析
のために適合することを証明している。
いて分析した。比較結果は、図４に提示する。データは、全４種のサンプルタイプが分析
のために適合することを証明している。
ビタミンＤ３についてのルーチン範囲の証明
患者１４０例由来の血清試料は、ビタミンＤ３を定量するために実施例１から３に記載
した方法に従って分析した。結果の範囲は＜２ｎｇ／ｍＬから約６３ｎｇ／ｍＬのビタミ
ンＤ３に及び、結果の９５％は＜２ｎｇ／ｍＬから約２０ｎｇ／ｍＬの範囲内に含まれた
。これらの分析の結果は表１７に提示する。
患者１４０例由来の血清試料は、ビタミンＤ３を定量するために実施例１から３に記載
した方法に従って分析した。結果の範囲は＜２ｎｇ／ｍＬから約６３ｎｇ／ｍＬのビタミ
ンＤ３に及び、結果の９５％は＜２ｎｇ／ｍＬから約２０ｎｇ／ｍＬの範囲内に含まれた
。これらの分析の結果は表１７に提示する。
回収試験
混合回収率試験は、自然に上昇したレベルの２５−ヒドロキシビタミンＤ２若しくは２
５−ヒドロキシビタミンＤ３を備える試料の分析によって実施したので、一部の内因性循
環中ビタミンＤ２又はビタミンＤ３も有していた。本試験のためには、６対の試料を選択
した。各対の試料（一般的には試料Ａ及び試料Ｂと呼ぶ）から、５例のサンプルを調製し
、実施例１から３の方法に従って４回ずつ分析した。これらのサンプルは、１００％ Ａ
、８０％ Ａ−２０％ Ｂ、５０％ Ａ−５０％ Ｂ、２０％ Ａ−８０％ Ｂ、及び１００％
Ｂに対応した。回収率試験の結果は表１８及び１９に提示する。
混合回収率試験は、自然に上昇したレベルの２５−ヒドロキシビタミンＤ２若しくは２
５−ヒドロキシビタミンＤ３を備える試料の分析によって実施したので、一部の内因性循
環中ビタミンＤ２又はビタミンＤ３も有していた。本試験のためには、６対の試料を選択
した。各対の試料（一般的には試料Ａ及び試料Ｂと呼ぶ）から、５例のサンプルを調製し
、実施例１から３の方法に従って４回ずつ分析した。これらのサンプルは、１００％ Ａ
、８０％ Ａ−２０％ Ｂ、５０％ Ａ−５０％ Ｂ、２０％ Ａ−８０％ Ｂ、及び１００％
Ｂに対応した。回収率試験の結果は表１８及び１９に提示する。
ビタミンＤ２及びビタミンＤ３のＭＳ／ＭＳ分析からの典型的なスペクトル
ビタミンＤ２、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ２−［２６
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６のタンデム質量分析法による分析からの典型
的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図５Ａ、６Ａ及び７Ａに示す。これらの分析は、対
象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ ＴＳＱ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒ
ａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社
）内に直接的に注入することによって実施した。液体クロマトグラフィー移動相は、８０
０μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ酸を含む２０％の水を分析物導入の上流
でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミュレーションした。分析物は、上述した
ようにＡＰＣＩによってイオン化した。スペクトルは、約３００から４５０のｍ／ｚ範囲
に渡ってＱ１をスキャンすることによって収集した。
ビタミンＤ２、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ２−［２６
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６のタンデム質量分析法による分析からの典型
的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図５Ａ、６Ａ及び７Ａに示す。これらの分析は、対
象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ ＴＳＱ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒ
ａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社
）内に直接的に注入することによって実施した。液体クロマトグラフィー移動相は、８０
０μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ酸を含む２０％の水を分析物導入の上流
でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミュレーションした。分析物は、上述した
ようにＡＰＣＩによってイオン化した。スペクトルは、約３００から４５０のｍ／ｚ範囲
に渡ってＱ１をスキャンすることによって収集した。
ビタミンＤ２、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ２−［２６
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々についての２つの異なる前駆体イオン
から生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図５ＢからＣ、６ＢからＣ及び７Ｂ
からＣに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンスペクト
ルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２０に示す。
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々についての２つの異なる前駆体イオン
から生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図５ＢからＣ、６ＢからＣ及び７Ｂ
からＣに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンスペクト
ルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２０に示す。
ビタミンＤ２を定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約３９７．２のｍ／ｚを備え
る前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及
び約３７９．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５８．９のｍ／ｚを備える生成物
イオンへのフラグメント化が含まれる。ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定
量するための典型的なＭＲＭ変化には、約４００．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから
約１４７．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３８２．２のｍ
／ｚを備える前駆体イオンから約３１２．２のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を
定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約４０３．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンか
ら約１５９．１のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３８５．２の
ｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグ
メント化が含まれる。しかし図５ＢからＣ、６ＢからＣ及び７ＢからＣにおける生成物イ
オンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化されると他の数種の生
成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメントイオンを置換又
は増強するために、図５ＢからＣ、６ＢからＣ及び７ＢからＣに示されたイオンから選択
することができる。例えば、約３９７．２のｍ／ｚを備えるビタミンＤ２前駆体イオンの
フラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約１４６．９、１３３．１
及び１２１．０のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。約３７９．２のｍ／ｚを備えるビタ
ミンＤ２前駆体イオンのフラグメント化によって生成された典型的な追加の生成物イオン
には、約２８３．２、１８７．３及び１７５．２のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。
る前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及
び約３７９．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５８．９のｍ／ｚを備える生成物
イオンへのフラグメント化が含まれる。ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定
量するための典型的なＭＲＭ変化には、約４００．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから
約１４７．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３８２．２のｍ
／ｚを備える前駆体イオンから約３１２．２のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を
定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約４０３．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンか
ら約１５９．１のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３８５．２の
ｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグ
メント化が含まれる。しかし図５ＢからＣ、６ＢからＣ及び７ＢからＣにおける生成物イ
オンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化されると他の数種の生
成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメントイオンを置換又
は増強するために、図５ＢからＣ、６ＢからＣ及び７ＢからＣに示されたイオンから選択
することができる。例えば、約３９７．２のｍ／ｚを備えるビタミンＤ２前駆体イオンの
フラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約１４６．９、１３３．１
及び１２１．０のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。約３７９．２のｍ／ｚを備えるビタ
ミンＤ２前駆体イオンのフラグメント化によって生成された典型的な追加の生成物イオン
には、約２８３．２、１８７．３及び１７５．２のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。
ビタミンＤ３、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［２６
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６のタンデム質量分析法による分析からの典型
的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図８Ａ、９Ａ及び１０Ａに示す。これらの分析は、
対象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ ＴＳＱ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔ
ｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ
社）内に直接的に注入することによって実施した。液体クロマトグラフィー移動相は、８
００μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ酸を含む２０％の水を分析物の導入の
上流でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミュレーションした。スペクトルは、
約３００から４５０のｍ／ｚ範囲に渡ってＱ１をスキャンすることによって収集した。
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６のタンデム質量分析法による分析からの典型
的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図８Ａ、９Ａ及び１０Ａに示す。これらの分析は、
対象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ ＴＳＱ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔ
ｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ
社）内に直接的に注入することによって実施した。液体クロマトグラフィー移動相は、８
００μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ酸を含む２０％の水を分析物の導入の
上流でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミュレーションした。スペクトルは、
約３００から４５０のｍ／ｚ範囲に渡ってＱ１をスキャンすることによって収集した。
ビタミンＤ３、ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［２６
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々についての２つの異なる前駆体イオン
から生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図８ＢからＣ、９ＢからＣ及び１０
ＢからＣに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンスペク
トルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２１に示す。
，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々についての２つの異なる前駆体イオン
から生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図８ＢからＣ、９ＢからＣ及び１０
ＢからＣに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンスペク
トルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２１に示す。
ビタミンＤ３を定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約３８５．２のｍ／ｚを備え
る前駆体イオンから約１４７．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及
び約３６７．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物
イオンへのフラグメント化が含まれる。ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定
量するための典型的なＭＲＭ変化には、約３８８．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから
約１４７．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３７０．２のｍ
／ｚを備える前駆体イオンから約１６２．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を
定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約３９１．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンか
ら約１５９．１のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３７３．２の
ｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグ
メント化が含まれる。しかし図８ＢからＣ、９ＢからＣ及び１０ＢからＣにおける生成物
イオンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化されると他の数種の
生成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメントイオンを置換
又は増強するために、図８ＢからＣ、９ＢからＣ及び１０ＢからＣに示されたイオンから
選択することができる。例えば、約３８５．２のｍ／ｚを備えるビタミンＤ３前駆体イオ
ンのフラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約１５９．０、１３３
．１及び１０７．１のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。約３６７．２のｍ／ｚを備える
ビタミンＤ３前駆体イオンのフラグメント化によって生成された典型的な追加の生成物イ
オンには、約１７２．９、１４５．０及び１１９．１のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる
。
る前駆体イオンから約１４７．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及
び約３６７．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物
イオンへのフラグメント化が含まれる。ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定
量するための典型的なＭＲＭ変化には、約３８８．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから
約１４７．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３７０．２のｍ
／ｚを備える前駆体イオンから約１６２．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を
定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約３９１．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンか
ら約１５９．１のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化、及び約３７３．２の
ｍ／ｚを備える前駆体イオンから約１５９．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグ
メント化が含まれる。しかし図８ＢからＣ、９ＢからＣ及び１０ＢからＣにおける生成物
イオンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化されると他の数種の
生成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメントイオンを置換
又は増強するために、図８ＢからＣ、９ＢからＣ及び１０ＢからＣに示されたイオンから
選択することができる。例えば、約３８５．２のｍ／ｚを備えるビタミンＤ３前駆体イオ
ンのフラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約１５９．０、１３３
．１及び１０７．１のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。約３６７．２のｍ／ｚを備える
ビタミンＤ３前駆体イオンのフラグメント化によって生成された典型的な追加の生成物イ
オンには、約１７２．９、１４５．０及び１１９．１のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる
。
ＰＴＡＤ誘導体化ビタミンＤ２及びビタミンＤ３のＭＳ／ＭＳ分析からの典型的なスペク
トル
ビタミンＤ２、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，
２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６、ビタミンＤ３、ビタミンＤ３−［６，１９，
１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の
ＰＴＡＤ誘導体は、各分析物のストック溶液のアリコートをアセトニトリル中のＰＴＡＤ
で処理することによって調製した。誘導体化反応はおよそ１時間に渡り進行させ、反応混
合液に水を加えることによってクエンチさせた。次に誘導体化分析物は、上記の実施例２
から３で説明した手順に従って分析した。
トル
ビタミンＤ２、ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３、ビタミンＤ２−［２６，
２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６、ビタミンＤ３、ビタミンＤ３−［６，１９，
１９］−２Ｈ３及びビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の
ＰＴＡＤ誘導体は、各分析物のストック溶液のアリコートをアセトニトリル中のＰＴＡＤ
で処理することによって調製した。誘導体化反応はおよそ１時間に渡り進行させ、反応混
合液に水を加えることによってクエンチさせた。次に誘導体化分析物は、上記の実施例２
から３で説明した手順に従って分析した。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及び
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を含有する
サンプルの分析からの典型的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図１１Ａ、１２Ａ及び１
３Ａに示す。これらの分析は、対象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ Ｔ
ＳＱ（商標）Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅ
ｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）内に直接的に注入することによって実施した。
液体クロマトグラフィー移動相は、８００μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ
酸を含む２０％の水を分析物導入の上流でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミ
ュレーションした。分析物は、上述したようにＡＰＣＩによってイオン化した。スペクト
ルは、約５００から６２０のｍ／ｚ範囲に渡ってＱ１をスキャンすることによって収集し
た。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を含有する
サンプルの分析からの典型的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図１１Ａ、１２Ａ及び１
３Ａに示す。これらの分析は、対象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ Ｔ
ＳＱ（商標）Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅ
ｃｔｒｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）内に直接的に注入することによって実施した。
液体クロマトグラフィー移動相は、８００μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ
酸を含む２０％の水を分析物導入の上流でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミ
ュレーションした。分析物は、上述したようにＡＰＣＩによってイオン化した。スペクト
ルは、約５００から６２０のｍ／ｚ範囲に渡ってＱ１をスキャンすることによって収集し
た。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３及び
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々につ
いて前駆体イオンから生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図１１Ｂ、１２Ｂ
及び１３Ｂに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンスペ
クトルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２２に示す。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々につ
いて前駆体イオンから生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図１１Ｂ、１２Ｂ
及び１３Ｂに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンスペ
クトルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２２に示す。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２を定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約５７２．２のｍ
／ｚを備える前駆体イオンから約２９７．９のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定量するた
めの典型的なＭＲＭ変化には、約５７５．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約３０１
．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミン
Ｄ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を定量するための典型的なＭＲ
Ｍ変化には、約５７８．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約２９７．９のｍ／ｚを備
える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。しかし図１１Ｂ、１２Ｂ及び１３Ｂに
おける生成物イオンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化される
と他の数種の生成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメント
イオンを置換又は増強するために、図１１Ｂ、１２Ｂ及び１３Ｂに示されたイオンから選
択することができる。例えば、約５７２．２のｍ／ｚを備えるＰＴＡＤ−ビタミンＤ２前
駆体イオンのフラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約２８０．１
のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。
／ｚを備える前駆体イオンから約２９７．９のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミンＤ２−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定量するた
めの典型的なＭＲＭ変化には、約５７５．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約３０１
．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミン
Ｄ２−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を定量するための典型的なＭＲ
Ｍ変化には、約５７８．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約２９７．９のｍ／ｚを備
える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。しかし図１１Ｂ、１２Ｂ及び１３Ｂに
おける生成物イオンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化される
と他の数種の生成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメント
イオンを置換又は増強するために、図１１Ｂ、１２Ｂ及び１３Ｂに示されたイオンから選
択することができる。例えば、約５７２．２のｍ／ｚを備えるＰＴＡＤ−ビタミンＤ２前
駆体イオンのフラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約２８０．１
のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及び
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を含有する
サンプルの分析からの典型的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図１４Ａ、１５Ａ及び１
６Ａに示す。これらの分析は、対象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ Ｔ
ＳＱ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒ
ｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）内に直接的に注入することによって実施した。液体ク
ロマトグラフィー移動相は、８００μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ酸を含
む２０％の水を分析物導入の上流でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミュレー
ションした。スペクトルは、約５００から６２０のｍ／ｚ範囲に渡ってＱ１をスキャンす
ることによって収集した。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を含有する
サンプルの分析からの典型的なＱ１スキャンスペクトルは、各々図１４Ａ、１５Ａ及び１
６Ａに示す。これらの分析は、対象の分析物を含有する標準溶液をＦｉｎｎｉｇａｎ Ｔ
ＳＱ Ｑｕａｎｔｕｍ Ｕｌｔｒａ ＭＳ／ＭＳシステム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｅｌｅｃｔｒ
ｏｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社）内に直接的に注入することによって実施した。液体ク
ロマトグラフィー移動相は、８００μＬ／分の８０％アセトニトリル、０．１％ギ酸を含
む２０％の水を分析物導入の上流でＨＰＬＣカラムに通過させることによってシミュレー
ションした。スペクトルは、約５００から６２０のｍ／ｚ範囲に渡ってＱ１をスキャンす
ることによって収集した。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３、ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３及び
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々につ
いての前駆体イオンから生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図１４Ｂ、１５
Ｂ及び１６Ｂに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンス
ペクトルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２３に示す。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６の各々につ
いての前駆体イオンから生成した典型的な生成物イオンスキャンは、各々図１４Ｂ、１５
Ｂ及び１６Ｂに示す。Ｑ１において選択された前駆体イオン及びこれらの生成物イオンス
ペクトルを生成するために使用された衝突エネルギーは表２３に示す。
ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３を定量するための典型的なＭＲＭ変化には、約５６０．２のｍ
／ｚを備える前駆体イオンから約２９８．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定量するた
めの典型的なＭＲＭ変化には、約５６３．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約３０１
．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミン
Ｄ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を定量するための典型的なＭＲ
Ｍ変化には、約５６６．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約２９８．０のｍ／ｚを備
える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。しかし図１４Ｂ、１５Ｂ及び１６Ｂに
おける生成物イオンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化される
と他の数種の生成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメント
イオンを置換又は増強するために、図１４Ｂ、１５Ｂ及び１６Ｂに示されたイオンから選
択することができる。例えば、約５６０．２のｍ／ｚを備えるＰＴＡＤ−ビタミンＤ３前
駆体イオンのフラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約２８０．０
のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。
／ｚを備える前駆体イオンから約２９８．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメ
ント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミンＤ３−［６，１９，１９］−２Ｈ３を定量するた
めの典型的なＭＲＭ変化には、約５６３．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約３０１
．０のｍ／ｚを備える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。ＰＴＡＤ−ビタミン
Ｄ３−［２６，２６，２６，２７，２７，２７］−２Ｈ６を定量するための典型的なＭＲ
Ｍ変化には、約５６６．２のｍ／ｚを備える前駆体イオンから約２９８．０のｍ／ｚを備
える生成物イオンへのフラグメント化が含まれる。しかし図１４Ｂ、１５Ｂ及び１６Ｂに
おける生成物イオンスキャンから明らかなように、前駆体イオンがフラグメント化される
と他の数種の生成物イオンが生成される。追加の生成物イオンは、典型的なフラグメント
イオンを置換又は増強するために、図１４Ｂ、１５Ｂ及び１６Ｂに示されたイオンから選
択することができる。例えば、約５６０．２のｍ／ｚを備えるＰＴＡＤ−ビタミンＤ３前
駆体イオンのフラグメント化によって生成された追加の生成物イオンには、約２８０．０
のｍ／ｚを備えるイオンが含まれる。
本明細書で言及又は引用した論文、特許及び特許出願、並びに他の全ての文献及び電子
的に入手できる情報の内容は、各個別刊行物が参照により組み入れられると特別及び個別
に指示された場合と同程度まで全体として参照により組み入れられる。出願人らは、いず
れかのそのような論文、特許、特許出願、又は他の物理的及び電子的文献からのありとあ
らゆる材料及び情報を本出願に物理的に組み入れる権利を留保する。
的に入手できる情報の内容は、各個別刊行物が参照により組み入れられると特別及び個別
に指示された場合と同程度まで全体として参照により組み入れられる。出願人らは、いず
れかのそのような論文、特許、特許出願、又は他の物理的及び電子的文献からのありとあ
らゆる材料及び情報を本出願に物理的に組み入れる権利を留保する。
本明細書に具体的に記載した方法は、本明細書に特別にではなく開示したいずれかの要
素、限度の非存在下で適切に実施することができる。従って例えば、用語「含む（compri
sing）」、「含む（including）」、「含有する（containing）」などは、拡張的に、及
び制限なく読まれるべきである。さらに、本明細書で使用した用語及び表現は、制限する
ためではなく説明の用語として使用されていて、そのような用語及び表現の使用において
は図示及び記載した特徴又はそれらの部分のあらゆる同等物を排除することは意図されて
いない。様々な修飾が本明細書で要求した本発明の範囲内において可能であることが認識
されている。従って、本発明を好ましい実施形態及び任意の特徴によって詳細に開示して
きたが、本明細書で開示したその中で実施される本発明の修飾及び変形は当業者であれば
用いることができること、及びそのような修飾及び変形は本発明の範囲内に含まれると見
なされることを理解されたい。
素、限度の非存在下で適切に実施することができる。従って例えば、用語「含む（compri
sing）」、「含む（including）」、「含有する（containing）」などは、拡張的に、及
び制限なく読まれるべきである。さらに、本明細書で使用した用語及び表現は、制限する
ためではなく説明の用語として使用されていて、そのような用語及び表現の使用において
は図示及び記載した特徴又はそれらの部分のあらゆる同等物を排除することは意図されて
いない。様々な修飾が本明細書で要求した本発明の範囲内において可能であることが認識
されている。従って、本発明を好ましい実施形態及び任意の特徴によって詳細に開示して
きたが、本明細書で開示したその中で実施される本発明の修飾及び変形は当業者であれば
用いることができること、及びそのような修飾及び変形は本発明の範囲内に含まれると見
なされることを理解されたい。
本発明を本明細書において幅広く一般的に記載してきた。一般的開示に含まれるより狭
い種及び亜属分類の各々も本方法の一部を形成する。これには、切除材料が本明細書に特
異的に列挙されているか否かとは無関係に、属からいずれかの主題を取り除く条件又は消
極的限定を備える本方法の一般的説明が含まれる。
い種及び亜属分類の各々も本方法の一部を形成する。これには、切除材料が本明細書に特
異的に列挙されているか否かとは無関係に、属からいずれかの主題を取り除く条件又は消
極的限定を備える本方法の一般的説明が含まれる。
他の実施形態は、以下の特許請求の範囲に含まれる。さらに、本方法の特徴又は態様が
マーカッシュ群によって記載されている場合は、当業者であれば、本発明がマーカッシュ
群の任意の個別構成員又は構成員の部分群によっても記載されることを理解する。
マーカッシュ群によって記載されている場合は、当業者であれば、本発明がマーカッシュ
群の任意の個別構成員又は構成員の部分群によっても記載されることを理解する。
Claims (24)
- サンプル中の非誘導体化ビタミンＤ ２ をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、
（Ｉ）
（ｉ）生物学的サンプルを乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムにかける工程、
（ｉｉ）サンプル由来の非誘導体化ビタミンＤ２を３７９．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を含む１つ又はそれ以上の前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、
（ｉｉｉ）少なくとも１つの前記前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上のフラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、前記フラグメントイオンが２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、及び１７５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含み、
（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上の前記フラグメントイオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び、
（ｖ）工程（ｉｖ）において決定された非誘導体化ビタミンＤ２イオンの存在を前記サンプル中の非誘導体化ビタミンＤ２の存在と関連付ける工程、
を含む、前記方法。 - 前記サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられる、請求項１に記載の方法。
- 前記抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムである、請求項２に記載の方法。
- 前記抽出カラムは、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムである、請求項２に記載の方法。
- 前記サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられる、請求項１に記載の方法。
- 前記分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムである、請求項５に記載の方法。
- 前記抽出及び分析カラム並びに工程（ｉｉ）の前記イオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい、請求項５に記載の方法。
- 前記イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源である、請求項１から７のいずれか一項に記載の方法。
- 前記タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施される、請求項１から８のいずれか一項に記載の方法。
- 前記サンプル中で非誘導体化ビタミンＤ３を検出する工程をさらに含み、ここで前記非誘導体化ビタミンＤ２及び非誘導体化ビタミンＤ３は同時にイオン化する、請求項１に記載の方法。
- 前記非誘導体化ビタミンＤ３を検出する工程は、１７２．２±０．５、１４５．０±０．５、及び１１９．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のフラグメントイオンの量を決定する工程を含む、請求項１０に記載の方法。
- 前記サンプルが、生物学的サンプルを含み、ここで
前記生物学的サンプルはヒト由来であり、前記サンプル中で決定された非誘導体化ビタミンＤ２の量は、前記ヒトから採取されたときに前記サンプル中に存在した量である、請求項１から１１のいずれか一項に記載の方法。 - 前記サンプルは、血清又は血漿を含んでいる、請求項１から１２のいずれか一項に記載の方法。
- サンプル中の非誘導体化ビタミンＤ２及び非誘導体化ビタミンＤ３の量をタンデム質量分析法によって決定するための方法であって、
（ｉ）前記サンプル中の非誘導体化ビタミンＤ２及び非誘導体化ビタミンＤ３を３７９．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備える１つ又はそれ以上の非誘導体化ビタミンＤ２前駆体イオン、並びに３６７．２±０．５の質量対電荷比（ｍ／ｚ）を備える１つ又はそれ以上の非誘導体化ビタミンＤ３前駆体イオンを生成するために適合する条件下でイオン化源に曝露させる工程、
（ｉｉ）少なくとも１つの前記非誘導体化ビタミンＤ２前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の非誘導体化ビタミンＤ２フラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、
ここで、前記非誘導体化ビタミンＤ２フラグメントイオンが２８３．２±０．５、１８７．３±０．５、及び１７５．２±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む工程、
（ｉｉｉ）少なくとも１つの前記非誘導体化ビタミンＤ３前駆体イオンを、質量分析法によって検出可能な１つ又はそれ以上の非誘導体化ビタミンＤ３フラグメントイオンを生成するためにフラグメント化する工程であって、
ここで、前記非誘導体化ビタミンＤ３フラグメントイオンは、１７２．２±０．５、１４５．０±０．５及び１１９．１±０．５のｍ／ｚを備えるイオン（複数）からなる群から選択される１つ又はそれ以上のイオンを含む工程、
（ｉｖ）工程（ｉ）、（ｉｉ）及び（ｉｉｉ）において生成された１つ又はそれ以上の前記非誘導体化ビタミンＤ２及び非誘導体化ビタミンＤ３イオンの量を質量分析法によって決定する工程、及び
（ｖ）工程（ｖｉ）で決定された非誘導体化ビタミンＤ２及び非誘導体化ビタミンＤ３イオンの量を前記サンプル中の非誘導体化ビタミンＤ２及び非誘導体化ビタミンＤ３の量と関連付ける工程、
を含む前記方法。 - 前記サンプルは、イオン化の前に抽出カラムにかけられる、請求項１４に記載の方法。
- 前記抽出カラムは、固相抽出（ＳＰＥ）カラムである、請求項１５に記載の方法。
- 前記抽出カラムは、乱流液体クロマトグラフィー（ＴＦＬＣ）カラムである、請求項１５に記載の方法。
- 前記サンプルは、イオン化の前にさらに分析カラムにかけられる、請求項１５に記載の方法。
- 前記分析カラムは、高性能液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムである、請求項１８に記載の方法。
- 前記抽出及び分析カラム並びに工程（ｉ）の前記イオン化源は、オンライン方式で接続されてもよい、請求項１８に記載の方法。
- 前記イオン化源は、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）源である、請求項１４から２０のいずれか一項に記載の方法。
- 前記タンデム質量分析法は、多重反応モニタリング、前駆体イオンスキャニング又は生成物イオンスキャニングとして実施される、請求項１４から２１のいずれか一項に記載の方法。
- 前記サンプルが、生物学的サンプルを含み、ここで
前記生物学的サンプルはヒト由来であり、前記サンプル中で決定された非誘導体化ビタミンＤ２の量は、前記ヒトから採取されたときに前記サンプル中に存在した量である、請求項１４から２２のいずれか一項に記載の方法。 - 前記サンプルは、血清又は血漿を含んでいる、請求項１４から２３のいずれか一項に記載の方法。
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| WO2019145929A1 (en) * | 2018-01-29 | 2019-08-01 | Dh Technologies Development Pte. Ltd. | Methods and systems for detection of vitamin d metabolites |
| CN111999372A (zh) * | 2020-07-09 | 2020-11-27 | 山东师范大学 | 可高通量筛选喹喔啉衍生物合成条件的微液滴电喷雾装置及方法 |
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