JP6008505B2 - Gaba高含有酵母の製造方法 - Google Patents
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また、特許文献2では、グルタミン酸及びその塩類の少なくとも一つを含有する食品素材に、グルタミン酸デカルボキシラーゼ生産能を有する乳酸菌とともに、GABA生成能を有しない酵母を作用させることにより、GABAを生成する方法が開示されている。
前記培養工程後、培養した酵母を回収し、水性溶媒を添加して酵母懸濁液を調製する懸濁液調製工程と、
前記酵母懸濁液を40〜55℃、pH3.0以上6.0未満に保持し、GABAの生成反応を行うGABA生成工程と、
を有し、
前記水性溶媒が、水又はバッファーであることを特徴とする、GABA高含有酵母の製造方法。
(2) 前記GABA生成工程において、GABAの生成反応の反応時間が1〜7時間である、前記(1)のGABA高含有酵母の製造方法。
(3) 前記培養工程後、培養した酵母を1回以上洗浄した後、酵母懸濁液を調製する、前記(1)又は(2)のGABA高含有酵母の製造方法。
(4) 前記懸濁液調製工程後、前記GABA生成工程前に、調製された酵母懸濁液が0〜15℃で保存されている、前記(1)〜(3)の何れかのGABA高含有酵母の製造方法。
(5) 前記懸濁液調製工程において、酵母の濃度が、10〜20重量%となるように酵母懸濁液を調製する、前記(1)〜(4)の何れかのGABA高含有酵母の製造方法。
(6) 前記培養工程が、
酵母の増殖が定常期に入った後に液体培地のpHを7.5以上11未満に調整する工程;及び、
当該酵母を当該pHの範囲内において更に培養する工程
を含む、前記(1)〜(5)の何れかのGABA高含有酵母の製造方法。
(7) 前記酵母がサッカロマイセス(Saccharomyces)属菌又はキャンディダ(Candida)属菌である、前記(1)〜(6)の何れかのGABA高含有酵母の製造方法。
(8) 前記酵母が天然型の酵母である、前記(1)〜(7)の何れかのGABA高含有酵母の製造方法。
(9) 前記GABA生成工程後の酵母のGABA含有量が、乾燥酵母菌体当たり2.5重量%以上である、前記(1)〜(8)の何れかのGABA高含有酵母の製造方法。
また、本発明のGABA高含有酵母から抽出作業を行なうことにより、GABAを高濃度で含むGABA高含有酵母エキスを製造することができる。
まず、培養工程として、増殖の定常期にある酵母を、液体培地のpHが7.5以上11未満である条件下で液体培養する。具体的には、酵母を炭素源、窒素源及び無機塩等を含む液体培地で定常期まで培養した後、得られた酵母(増殖の定常期にある酵母)をさらに、液体培地のpHが7.5以上11未満、好ましくはpHが8.0以上11未満、より好ましくはpHが8.0以上10以下である条件下で、液体培養する。
また、通気・攪拌を行いながら培養することが好ましい。通気の量と攪拌の条件は、培養の容量と時間、菌の初発濃度を考慮して、適宜決定することができる。例えば、通気は0.2〜2V.V.M.(Volume per volume per minuts)程度、攪拌は50〜800rpm程度で行なうことができる。
pH調整は、定常期であればいつ行なってもよいが、定常期に入った直後に行なうことが好ましい。酵母内の遊離グルタミン酸濃度を十分に高めることが可能である上に、全工程終了時までに要する時間を短縮することができるためである。対数増殖期にある酵母の液体培地のpHを7.5以上11未満にすると、酵母の増殖が抑制され、酵母の遊離グルタミン酸含有量が増加しないため好ましくない。
また、培養中の酵母が対数増殖期から定常期に移行する際、対数増殖の状態から徐々に定常状態に移行し、その後、完全に定常状態に入るが、対数増殖期から完全に定常状態に至る間の徐々に完全な定常状態に向かう時期も本発明の定常期に含まれる。
これらの中でも、サッカロマイセス属菌又はキャンディダ属菌であることが好ましく、可食性であることから、キャンディダ・トロピカリス(Candidatropicalis)、キャンディダ・リポリティカ(Candida lypolitica)、キャンディダ・ユティリス(Candida utilis)、キャンディダ・サケ(Candida sake)、サッカロマイセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)などがより好ましく、さらに好ましくは汎用されているサッカロマイセス・セレビシエ、キャンディダ・ユティリスである。
以下の<1>〜<8>に示す方法により、酵母(Saccharomyces cerevisiae AB9846株)を培養し、回収した酵母内でGABAの生成反応を行ってGABA含有量の高い酵母を製造し、当該酵母から酵母エキスを製造した。
以下の組成からなる培地を、容量350mL(2Lバッフル付き三角フラスコ)で10本作製した。
(培地組成)
糖蜜 8%
尿素 0.6%
(NH4)2SO4 0.16%(硫酸アンモニウム)
(NH4)2HPO4 0.08%(リン酸水素2アンモニウム)
(1)糖蜜(糖度36%)167mLをミリQ水にて750mLにメスアップ後、2Lバッフル付き三角フラスコに350mLずつ分注した。
(2)オートクレーブ処理(121℃、15min)を行なった。
(3)使用時に糖蜜のみの培地に無菌的に窒素成分混液(×100)を1/50量添加(各7mL)した。
培養温度 30℃
振とう 160rpm(ロータリー)
培養時間 24h
(植菌量 300mL)
以下の組成からなる培地を、容量2000mL(流加終了時3Lの設定)を5本作製した。
(培地組成)
塩化アンモニウム 0.18%(流加終了時3L換算)5.3g
(NH4)2HPO4 0.04%(リン酸水素2アンモニウム、流加終了換算)1.2g
(培養条件)
培養温度 30℃
通気 3L/min
撹拌 600rpm
pH制御 下限制御pH5.0(10%アンモニア水にて)、上限制御なし
消泡剤 アデカネート原液
流加培地 糖蜜(糖度36%)、容量800mL(1Lメジウム瓶にて、最終8%)
次に、培養した酵母が定常期に入った直後に、NH4OH水(10%)にて培養液のpHをアルカリ性域(pH9.0)にシフト(以下、pHシフトという。)させて、さらに酵母を培養した。本培養開始後24時間で終了した。なお、酵母が定常期に入ったかどうかは、菌数データ及び培養液の濁度(0D600)から判断した。
(1)酵母を本培養した培養液を750mLずつ、12本の1Lプラスチック遠心チューブへ移し、遠心分離(3,500g、4℃、5min)を行なった。
(2)上清を捨て、ペレットに、残っていた前記本培養の培養液を各遠心チューブに600mLずつ加え、遠心分離(3,500g、4℃、5min)を行なった。これを2回繰り返した。
(3)上清を捨て、各遠心チューブに滅菌水を150mLずつ加え、ペレットを懸濁した後、全12本のチューブ内の菌体懸濁液を6本にまとめた後、遠心分離(4,000g、4℃、10min)を行なった。
(4)上清を捨て、酵母濃度が15重量%となるように各チューブに滅菌水を加えて、酵母懸濁液を調製した。6本全てのチューブ内の酵母懸濁液は全て氷冷した。
(1)予め10℃に冷やしておいた2台の5Lジャーに、酵母懸濁液全量を分注した(1本当たり約2.5L)。各5Lジャー内の酵母懸濁液の一部をGABA濃度等の測定用試料として取り分けておいた。
(2)各5Lジャー内の酵母懸濁液に、23.5%硫酸を添加し、pH4.5になるように調整し、さらに2mLのアデカネート原液を添加した。
(3)続いて、10℃から40℃まで2時間かけて昇温させた後、40℃で5時間保持し、インキュベートした。インキュベート時のその他の条件は下記の通りである。
(インキュベート条件)
通気 なし
撹拌 60rpm
pH制御 pH4.5(23.5%硫酸にて)
(4)インキュベート終了後、各5Lジャー内の酵母懸濁液は、10℃で保持した。10℃まで冷却後、各5Lジャー内の酵母懸濁液の一部をGABA濃度等の測定用試料として取り分けておいた。
あらかじめ秤量しておいたアルミ皿(直径5cm)に、酵母懸濁液を1mLとり、105℃にて5時間乾燥させた。
乾燥後の重量(酵母乾燥後重量)を測定し、以下の式(1)により固形分の重量(乾燥酵母菌体重量、単位g/L)を算出した。
酵母乾燥後重量 ― アルミ皿重量 = 乾燥酵母菌体重量 ・・・(1)
(1)GABA生成工程後の酵母懸濁液を、5Lジャーごとに、沸騰水温水浴にて100℃で20分間、加熱した。途中、5分おきに軽く撹拌した(エキス化)。
(2)その後、遠心分離(5,000g、4℃、15min)にて上清液(エキス溶液)を分離した。
酵母菌体及び酵母エキス中のGABA及びグルタミン酸の含有量を、Acquity UPLC装置(ウォーターズ社製、米国)を用いて定量した。
実施例1の<1>〜<4>と同様にして、液体培養を行った後、酵母懸濁液を調製した。次いで、<5>GABA生成工程を、pH無調整又はpH4.5調整(23.5%硫酸にて)の条件で40℃、0.1〜24時間保持し、インキュベートした(通気:なし、撹拌:60rpm)。その後、実施例1と同様にして、得られたGABA生成後の酵母懸濁液から酵母エキスを調製し、乾燥酵母エキス重量当たりのGABA含有量及びグルタミン酸含有量を測定した。
実施例1の<1>〜<5>と同様にして、液体培養を行った後、酵母懸濁液を調製し、GABA生成反応を行った(pHシフト有り)。比較対象として、 実施例1の<1>〜<2>と同様にして液体培養を行い、培養した酵母が定常期に入った直後に実施例1の<4>と同様にして酵母懸濁液を調製し、その後実施例1の<5>と同様にしてGABA生成反応を行った(pHシフト無し)。その後、両サンプルに対し、実施例1と同様にして、得られたGABA生成後の酵母懸濁液から酵母エキスを調製し、アミノ酸組成(乾燥酵母エキス重量当たりの各アミノ酸の含有量比(重量%))を測定した。また、ゲルろ過高速液体クロマトグラフィーを行い、得られたクロマトグラムのピーク面積に基づいて各酵母エキスの分子量分布を測定した。さらに、各酵母エキスの旨み、厚み、あと味について、味覚専門パネリスト5名による官能評価を行った。アミノ酸組成の測定結果を表2に、分子量分布の測定結果を表3に、官能評価の結果を表4に、それぞれ示す。
従来の培養方法により培養した酵母(生菌)に、外部からグルタミン酸ナトリウム(MSG)を添加してインキュベートした後、酵母エキスを調製した。
具体的には、実施例1の<1>〜<2>と同様にして液体培養を行い、培養した酵母が定常期に入った直後に実施例1の<4>と同様にして酵母懸濁液を調製した。当該酵母懸濁液を10mLずつ3本の容器に分注し、MSGを1又は2重量%となるようにそれぞれ添加した後、MSGを添加しなかったものと同時に、40℃で18時間インキュベートした。実施例1と同様にして、インキュベート後の酵母懸濁液から酵母エキスを調製し、乾燥酵母エキス重量当たりのGABA含有量(g/L)及びグルタミン酸含有量(g/L)を測定した。
測定結果を表5に示す。この結果、生菌にMSGを外添してインキュベートした場合には、ほとんどGABAの生成は行われないことが確認された。
特許文献1に記載されているように、アセトン処理後の酵母にグルタミン酸ナトリウム(MSG)を外添してインキュベートした後、酵母エキスを調製した。
具体的には、実施例1の<1>〜<2>と同様にして液体培養を行い、培養した酵母が定常期に入った直後に遠心分離処理により酵母を回収した。回収された酵母を滅菌水で洗浄した後、滅菌水を加えて酵母縣濁液を調製した。この酵母縣濁液に、6倍量の冷アセトン(約−20℃)を撹拌しながらゆっくりと加えた後、撹拌をさらに3分間継続した。次に、この冷アセトン含有酵母縣濁液を冷凍室(約−20℃)で20分間静置して浮遊物を除去した後、当該冷アセトン含有酵母縣濁液を濾過して濾紙上の固形物を回収した。回収された固形物を冷アセトンで洗浄した後に乾燥させ、得られた乾燥物を、アセトン処理済み酵母粉末として用いた。
Claims (9)
- 増殖の定常期にある酵母を、液体培地のpHが7.5以上11未満である条件下で液体培養する培養工程と、
前記培養工程後、培養した酵母を回収し、水性溶媒を添加して酵母懸濁液を調製する懸濁液調製工程と、
前記酵母懸濁液を40〜55℃、pH3.0以上6.0未満に保持し、GABAの生成反応を行うGABA生成工程と、
を有し、
前記水性溶媒が、水又はバッファーであることを特徴とする、GABA高含有酵母の製造方法。 - 前記GABA生成工程において、GABAの生成反応の反応時間が1〜7時間である、請求項1に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
- 前記培養工程後、培養した酵母を1回以上洗浄した後、酵母懸濁液を調製する、請求項1又は2に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
- 前記懸濁液調製工程後、前記GABA生成工程前に、調製された酵母懸濁液が0〜15℃で保存されている、請求項1〜3の何れか一項に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
- 前記懸濁液調製工程において、酵母の濃度が、10〜20重量%となるように酵母懸濁液を調製する、請求項1〜4の何れか一項に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
- 前記培養工程が、
酵母の増殖が定常期に入った後に液体培地のpHを7.5以上11未満に調整する工程;及び、
当該酵母を当該pHの範囲内において更に培養する工程
を含む、請求項1〜5の何れか一項に記載のGABA高含有酵母の製造方法。 - 前記酵母がサッカロマイセス(Saccharomyces)属菌又はキャンディダ(Candida)属菌である、請求項1〜6の何れか一項に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
- 前記酵母が天然型の酵母である、請求項1〜7の何れか一項に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
- 前記GABA生成工程後の酵母のGABA含有量が、乾燥酵母菌体当たり2.5重量%以上である、請求項1〜8の何れか一項に記載のGABA高含有酵母の製造方法。
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