JP5881755B2 - 細胞培養における低温および低ｐＨの使用 - Google Patents

Description

本願は、２００７年４月２３日に出願された米国仮特許出願第６０／９１３，３８２号
の利益を主張する。米国仮特許出願第６０／９１３，３８２号は、その全体が本明細書中
に参考として援用される。

本発明は、培養された細胞、特に哺乳動物細胞によるタンパク質産生を改善する方法を
提供する。特に、本発明は、タンパク質産物（単数または複数）、例えば糖タンパク質産
物（単数または複数）、の製造方法であって、細胞培養環境を操作することによって当該
タンパク質産物の特性を制御する方法に関する。本発明はさらに、例えば細胞培養物の温
度および／またはｐＨを下げることによりタンパク質のグリコシル化を操作してタンパク
質の凝集およびミスフォールディングを低減することによって、哺乳動物細胞で産生され
るタンパク質産物（単数または複数）、例えば糖タンパク質産物（単数または複数）、の
治療効果および／または免疫原性を改善する方法に関する。

市販または開発中に関わらず、バイオテクノロジー製品の大部分は、タンパク質治療薬
である。動物細胞培養物におけるタンパク質の産生、並びにそのような産生に関する改善
された方法に対する需要は大きく、また増加している。多くの形態のタンパク質治療薬、
例えば、翻訳後修飾タンパク質、特にグリコシル化タンパク質など、を製造するためには
、一般的に、動物細胞の細胞機構が必要とされるため、上記のような改善された方法が必
要とされている。

大規模な治療用タンパク質の製造において生じる共通の問題は、タンパク質産物の大部
分が、ミスフォールドした形態または凝集した形態、すなわち、高分子量凝集体（「ＨＭ
ＷＡ：ｈｉｇｈ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｗｅｉｇｈｔ ａｇｇｒｅｇａｔｅ」）の形態に
おいて産生されるということである。例えば、細胞におけるポリペプチドの組み換え型過
剰発現は、小胞体（ＥＲ：ｅｎｄｏｐｌａｓｍｉｃ ｒｅｔｉｃｕｌｕｍ）機構に過負荷
をかける場合があり、それによって、分解経路を逃れＥＲを出て行くミスフォールドした
タンパク質および／または凝集したタンパク質の数が増加し得る。したがって、現在のタ
ンパク質製造方法では、産物の大部分が凝集して機能せず、そのため、製造物として使用
できない。ミスフォールドしたタンパク質および／または凝集したタンパク質は、投与に
おける有害事象、例えば、これに限定されるものではないが、投与における免疫原性の可
能性（例えば補体活性化または過敏症）など、の原因となり得るため、そのようなタンパ
ク質の存在は望ましくない。したがって、過剰な治療用タンパク質のミスフォールディン
グおよび／または凝集は、例えば臨床試験における失敗の原因となり得る。そのため、タ
ンパク質のミスフォールディングおよび／または凝集を抑制または低減する新規の方法が
当技術分野において必要とされている。

タンパク質のグリコシル化は、一般的な翻訳後修飾法であり、これにより、ＥＲにおい
て専用の酵素−グリコトランスフェラーゼおよびグリコシダーゼ−の一連の作用を通じて
複合糖部分がタンパク質に追加される。この方法は、正しくフォールドされたポリペプチ
ドだけがＥＲを出て、ミスフォールドしたタンパク質は分解されるように、新たに合成さ
れたポリペプチドの正しいフォールディングを制御することができる。タンパク質グリコ
シル化のパターンは、タンパク質の標的化、構造、熱力学的安定性、および酵素活性に影
響を及ぼす（例えば、非特許文献１；非特許文献２を参照のこと）。例えば、Ｎ−グリカ
ンシアリル化は、糖タンパク質の寿命の延長に関連している。というのは、そのような糖
タンパク質は、シアリル化されていないタンパク質を分解の標的とするアシアロ糖蛋白受
容体によって認識されないためである（例えば、非特許文献３を参照のこと）。したがっ
て、タンパク質グリコシル化を変えることは、産物の品質と有効性に影響を及ぼし得る。

その上、異常なタンパク質グリコシル化は、最終的な治療用タンパク質製品の免疫原性
の原因となり得る。非天然型の非最適条件下で産生されたタンパク質は、天然ではヒトタ
ンパク質には見られない糖および糖パターンを獲得し得て、その結果、対象者において免
疫原性反応を生じさせ得る（非特許文献４）。このような非天然型グリコシル化は、タン
パク質治療薬、例えば、抗体治療薬または可溶性受容体Ｆｃ融合タンパク質治療などのＦ
ｃ融合タンパク質治療薬、において特に一般的である。

これらの理由から、ＦＤＡは、治療用タンパク質のグリコ型プロフィールが厳しい制限
内に維持されることを要求する。したがって、タンパク質グリコシル化のレベルの制御を
可能にする、細胞培養物において治療用タンパク質を製造する方法が、製薬業において必
要とされている。

Ｓｏｌａ ｅｔ ａｌ．（２００７） Ｃｅｌｌ．Ｍｏｌ．Ｌｉｆ ｅ Ｓｃｉ．６４：２１３３−５２ Ｓｏｌａ ａｎｄ Ｇｒｉｅｂｅｎｏｗ（２００６） ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．５８０：１６８５−９０ Ｂｏｒｋ ｅｔ ａｌ．（２００７） ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ ５８１：４１９５−９８ Ｊｅｆｆｅｒｉｓ（２００６） Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｐｒｏｇ ．２１：１１−１６

したがって、本発明は、ミスフォールドしたタンパク質および／または凝集したタンパ
ク質の産生が減少するように、（ａ）細胞培養物において低温で細胞を増殖させること、
並びに（ｂ）細胞培養物において低ｐＨで細胞を増殖させること、の少なくとも１つを含
む、細胞培養物においてタンパク質を製造する方法である。実施形態では、細胞を、細胞
培養物において低温および低ｐＨで増殖させる。

好ましい実施形態において、本発明は、哺乳動物細胞培養物、特にチャイニーズハムス
ター卵巣（「ＣＨＯ（Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｈａｍｓｔｅｒ Ｏｖａｒｙ）」）細胞培養物に
おける、ミスフォールドしたタンパク質および／または凝集したタンパク質の産生を低減
するために、ｐＨパラメータおよび温度パラメータを変更することを対象としている。好
ましい実施形態において、当該細胞培養物は、可溶性レセプターであるタンパク質、例え
ば、これに限定されるものではないが、ＴＮＦＲ−Ｆｃタンパク質またはｓＩＬ−１３Ｒ
タンパク質など、を産生する（「産生されたタンパク質」）。これらの好ましい実施形態
において、低温は、２７．０℃〜３０．０℃未満の範囲であり得る。さらに他の好ましい
実施形態において、低ｐＨは、６．８０〜７．００未満あり得る。前述の範囲におけるｐ
Ｈおよび温度の組み合わせも使用することができる。

別の態様において、本発明は、細胞培養物においてタンパク質を製造する方法であって
、細胞培養物の温度および／またはｐＨを変更することによって産生されたタンパク質の
タンパク質グリコシル化のレベルを制御する方法である。したがって、グリコシル化、例
えば、これに限定されるものではないが、Ｎ−グリカンシアリル化など、のレベルは、温
度および／またはｐＨを上げるより増加し得、あるいは温度および／またはｐＨを下げる
ことによって減少し得る。

別の態様において、本発明は、上記のパラメータを制御して、治療用タンパク質を製造
する方法である。さらに別の態様において、本発明は、そのような方法によって製造され
た治療用タンパク質と薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物である。

ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトしたＣＨＯ細胞をそれぞれ２７．０℃ ［◆］、２８．０℃［▲］、２９．０℃［■］、または３０．０℃［○］で増殖させた時の、時間（Ｘ軸；培養日数［日］）に対する、平均収穫日ＩＶＣに正規化した統合生存細胞数（Ｙ軸；ＩＶＣ［正規化ｅ^９細胞^＊日／Ｌ］）を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］に対する細胞生存率（Ｙ軸）を示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトしたＣＨＯ細胞をそれぞれ２７．０℃［◆］、２８．０℃［▲］、２９．０℃［■］、または３０．０℃［○］で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する残存グルコースプロフィール（Ｙ軸；グルコース［ｇ／Ｌ］）を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するグルタミンプロフィール（Ｙ軸；グルタミン［ｍＭ］）を示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトしたＣＨＯ細胞をそれぞれ２７．０℃［◆］、２８．０℃［▲］、２９．０℃［■］、または３０．０℃［○］で培養させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する培地のラクテート濃度（Ｙ軸；ラクテート［ｇ／Ｌ］）を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するアンモニウムプロフィール（Ｙ軸；ＮＨ_４ ^＋［ｍＭ］）を示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトしたＣＨＯ細胞をそれぞれ２７．０℃［◆］、２８．０℃［▲］、２９．０℃［■］、または３０．０℃［○］で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、平均収穫日累加平均Ｑｐに正規化した累加平均Ｑｐ（Ｘ軸；累加平均Ｑｐ［正規化ｍｇ／ｅ^９細胞／日］）によって表された細胞特異的生産性を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、平均収穫日力価に正規化したＴＮＦＲ−Ｆｃ力価（Ｘ軸；産物力価［正規化ｍｇ／Ｌ］）を示す。 ミスフォールドおよび／または凝集したＴＮＦＲ−Ｆｃの産生（Ｙ軸；％ミスフォールド／凝集した産物）に対する、ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトしたＣＨＯ細胞の細胞培養物中における産生温度（Ｘ軸；［℃］）を変える効果を示す。 ＨＭＷＡの産生に対する温度の効果（Ｙ軸；％高分子量種）を示す。 ＴＮＦＲ−Ｆｃの全シアリル化（Ｎ−およびＯ−結合シアリル化）の割合（Ｙ軸；参照試料の総シアリル化の割合）に対する、ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞の細胞培養物における産生温度（Ｘ軸；温度［℃］）を変更する効果を示す。使用した参照試料は、アッセイの結果を比較するための好ましいクリコシル化パターンを有する公知のＴＮＦＲ−Ｆｃにおける特定のアリコートであった。 同じ細胞の、シアリル化（□）または非シアリル化（●）の総Ｎ−結合グリカンの割合（Ｙ軸；総Ｎ−結合グリカンの割合）に対する、細胞培養物における産生温度（Ｘ軸；温度［℃］）を変更する効果を示す。 異なる温度（２７．０℃［◆］、２８．０℃［▲］、２９．０℃［■］、３０．０℃［○］）で細胞を増殖させた時の、ＣＨＯ細胞培養物中のｐＨ（Ｙ軸）に対する効果を、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対して示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞をそれぞれ７．２０［◇］、７．１０［■］、７．００［◆］、６．９０［●］、または６．８０［▲］のｐＨ設定値で増殖させた時の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、平均収穫日ＩＶＣに正規化した統合生存細胞数（Ｙ軸；ＩＶＣ［正規化ｅ^９細胞^＊日／Ｌ］）を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する細胞生存率（Ｙ軸）を示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞をそれぞれ７．２０［◇］、７．１０［■］、７．００［◆］、６．９０［●］、または６．８０［▲］のｐＨ設定値で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するグルコースプロフィール（Ｙ軸；グルコース［ｇ／Ｌ］）を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するグルタミンプロフィール（Ｙ軸；グルタミン［ｍＭ］）を示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトしたＣＨＯ細胞をそれぞれ７．２０［◇］、７．１０［■］、７．００［◆］、６．９０［●］、または６．８０［▲］のｐＨ設定値で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、培地中のラクテート濃度（Ｙ軸；ラクテート［ｇ／Ｌ］）を示す。 同じ細胞の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するアンモニアプロフィール（Ｙ軸；ＮＨ_４ ^＋［ｍＭ］）を示す。 時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞をそれぞれ７．２０［◇］、７．１０［■］、７．００［◆］、６．９０［●］、または６．８０［▲］のｐＨ設定値で増殖させた細胞培養物のｐＨの、ｐＨ設定値からのずれ（Ｘ軸；培養物ｐＨ）を示す。 同じ細胞をそれぞれ７．２０［◇］、７．１０［■］、７．００［◆］、６．９０［●］、または６．８０［▲］のｐＨ設定値で増殖させた時の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するオスモル濃度（Ｘ軸；オスモル濃度［ｍＯｓｍ／ｋｇ］）を示す。 ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞をそれぞれ７．２０［◇］、７．１０［■］、７．００［◆］、６．９０［●］、または６．８０［▲］のｐＨ設定値で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、平均収穫日累加平均Ｑｐに正規化した累加平均Ｑｐ（Ｘ軸；累加平均Ｑｐ［正規化ｍｇ／ｅ^９細胞／日］）で表される、細胞特異的産生能を示す。 時間（培養時間［日］）に対する、同じ細胞の平均収穫日の力価に正規化したＴＮＦＲ−Ｆｃ力価（Ｘ軸；産生物の力価［正規化ｍｇ／Ｌ］）を示す。 ミスフォールド／凝集したＴＮＦＲ−Ｆｃの産生（Ｙ軸；％ミスフォールド／凝集した産生）に対する、ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞の培養のｐＨ設定値（Ｘ軸；ｐＨ）を変える効果を示す。 ＨＭＷＡの産生（Ｙ軸；％高分子量種）に対する、細胞培養物のｐＨ設定値（Ｘ軸；ｐＨ）を変える効果を示す。 ＴＮＦＲ−Ｆｃの総シアリル化の割合（Ｙ軸；参照試料の総シアリル化の割合）に対する、ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞の培養におけるｐＨ設定値（Ｘ軸；ｐＨ）を変える効果を示す。 シアリル化（□）又は非シアリル化（●）総Ｎ−結合グリカンの割合（Ｙ軸；総Ｎ−結合グリカンの割合）に対する、同じ細胞の細胞培養物の細胞培養物ｐＨ設定値（Ｘ軸；ｐＨ）を変える効果を示す。 ヒドラジン放出２−アミノベンズアミド−（２−ＡＢ）−標識タンパク質グリコ型を順相クロマトグラフィにかけた場合に観察される、Ｎ−結合グリカンシアリル化を表す典型的な蛍光（Ｙ軸；蛍光、ｍＶで測定）対滞留時間（Ｘ軸；分）プロフィールを表す。 ヒドラジン放出２−アミノベンズアミド−（２−ＡＢ）−標識タンパク質グリコ型を順相クロマトグラフィにかけた場合に観察される、培養のｐＨ設定値を変えた場合の、ＴＮＦＲ−ＦｃでトランスフェクトされたＣＨＯ細胞の細胞培養物におけるＮ−結合グリカンシアリル化を表す蛍光（Ｙ軸；ｍＶ）の、滞留時間（Ｘ軸；分）に対するプロフィールを表す。 ｓＩＬ−１３Ｒ過剰発現細胞を３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する生存細胞密度（Ｙ軸；細胞／ｍＬ）を示す。 ｓＩＬ−１３Ｒ過剰発現細胞を３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、生存細胞と非生存細胞の両方を含む全細胞密度（Ｙ軸；細胞／ｍＬ）を示す。 ｓＩＬ−１３Ｒ過剰発現細胞を３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する細胞生存率（Ｙ軸）を示す。 ｓＩＬ−１３Ｒ過剰発現細胞を３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する統合生存細胞数（ＩＶＣ）（Ｙ軸；ｅ９細胞^＊日／Ｌ）を示す。 ３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する二量体およびＨＭＷＡの両方のｓＩＬ−１３Ｒ力価（Ｙ軸；ｓＩＬ−１３Ｒ［ｍｇ／Ｌ］）を示す。 ３７．０℃、３３．０℃、３２．０℃、３１．０℃、２９．０℃、または室温で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞培養物における、様々な時間間隔（Ｘ軸）での１日の特異的ｓＩＬ−１３Ｒ産生率（Ｙ軸；Ｑｐ［ｕｇ／ｅ９細胞／日］）を示す。 ３７．０℃、３３．０℃、３２．０℃、３１．０℃、２９．０℃、または室温で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞培養物における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する累加平均細胞特異的産生能（Ｙ軸；累加平均Ｑｐ［ｍｇ／ｅ９細胞／日］）を示す。 ３７．０℃、３３．０℃、３２．０℃、３１．０℃、２９．０℃、または室温で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞培養物における、様々な時間間隔（Ｘ軸）での１日の特異的グルコース消費率（Ｙ軸；Ｑｇｌｃ［ｇ／ｅ^９細胞／日］）を示す。 ３７．０℃、３３．０℃、３２．０℃、３１．０℃、２９．０℃、または室温で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞培養物における、様々な時間間隔（Ｘ軸）での１日の特異的グルタミン消費率（Ｙ軸；Ｑｇｌｎ［ｍｍｏｌ／ｅ９細胞／日］）を示す。 ３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞の細胞培養培地における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するラクテート濃度（Ｙ軸；ラクテート［ｇ／Ｌ］）を示す。 ３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた時の、ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞の細胞培養培地における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対するアンモニウム濃度（Ｙ軸；アンモニア［ｍＭ］）を示す。 ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞の培養９日目における、ＨＭＷＡの産生（Ｙ軸；％高分子量種）に対する細胞培養物温度（Ｘ軸；産生時の温度［℃］）の効果を表す。 ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する細胞の培養１８日目における、ＨＭＷＡの産生（Ｙ軸；％高分子量種）に対する細胞培養物温度（Ｘ軸；産生時の温度［℃］）の効果を示す。 それぞれ３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた時の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する、ｓＩＬ−１３Ｒ過剰発現細胞の馴化培地で産生された総ｓＩＬ−１３Ｒタンパク質から回収されるｓＩＬ−１３Ｒ二量体の割合（Ｙ軸；％ｓＩＬ−１３Ｒ二量体）を示す。 ｓＩＬ−１３Ｒ過剰発現細胞の馴化培地における、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する全ｓＩＬ−１３ＲにおけるＨＭＷＡの割合（Ｙ軸；％高分子量種）を示す。 細胞をそれぞれ３７．０℃［◆］、３３．０℃［■］、３２．０℃［●］、３１．０℃［◇］、２９．０℃［△］、または室温［□］で増殖させた時の、時間（Ｘ軸；培養時間［日］）に対する馴化培地中のｓＩＬ−１３Ｒ二量体力価（Ｙ軸；ｓＩＬ−１３Ｒ二量体のみ［ｍｇ／Ｌ］）を示す。

哺乳類の細胞培養物において治療用タンパク質を製造するためには、一般的に、産生期
中の温度は少なくとも３０．０℃、かつｐＨは少なくとも７．００でなければならないと
考えられている。しかしながら、産生期中に３０．０℃を超える温度および７．００より
高いｐＨで細胞培養物中において細胞を増殖させた場合、タンパク質の凝集（本明細書に
おいては、高分子量凝集体形成またはＨＭＷＡ形成とも呼ぶ）及びタンパク質のミスフォ
ールディングの増加を引き起こす場合があり、したがって、より低い量の機能性で使用可
能なタンパク質が産生され得る。

本発明は、細胞培養物においてタンパク質を製造の新規の方法であってタンパク質のミ
スフォールディングおよび／またはタンパク質の凝集を低減する方法を提供する。他の態
様においては、本発明は、タンパク質のグリコシル化のレベルを制御する方法を提供する
。

本発明の方法によって製造されたタンパク質
本明細書で使用される場合、「ポリペプチド」または「ポリペプチド産物」なる語句は
、それぞれ、「タンパク質」および「タンパク質産生」なる用語と同義であり、一般的に
、当技術分野において、連続したペプチド結合を介して結合したアミノ酸の少なくとも１
つの鎖を意味する。ある特定の実施形態において、「対象となるタンパク質」または「対
象となるポリペプチド」などは、宿主細胞にトランスフェクトまたはトランスフォームさ
れた、例えば宿主細胞に一過性的にまたは安定的にトランスフェクトまたはトランスフォ
ームされた、外因性核酸分子によってコード化されるタンパク質である。ある特定の実施
形態において、宿主細胞にトランスフェクトまたはトランスフォームされた外因性ＤＮＡ
が「対象となるタンパク質」をコードする場合、当該外因性ＤＮＡの核酸配列がアミノ酸
の配列を決定する。この配列は、自然に生じる配列であっても、あるいは人為的に設計さ
れた配列であってもよい。ある特定の実施形態において、「対象となるタンパク質」は、
宿主細胞の内因性核酸分子によってコード化されるタンパク質である。そのような対象と
なる内因性タンパク質の発現は、例えば、１つ以上の調節配列を含み得る外因性核酸分子
および／または対象となるタンパク質の発現を高めるタンパク質をコード化し得る外因性
核酸分子を、宿主細胞にトランスフェクトすることによって変えることができる。本発明
の実施形態において、対象となるポリペプチドは、細胞培養物において産生され、例えば
、その後に精製される。

「糖タンパク質」および「グリコシル化タンパク質」などの用語は、タンパク質のアス
パラギン側鎖（Ｎ−グリコシル化）あるいはセリン側鎖および／またはトレオニン側鎖（
Ｏ−グリコシル化）のいずれかに結合した糖残基、例えばオリゴ糖部分、を有するタンパ
ク質を意味する。例えば、一般的な種類のタンパク質Ｎ−グリコシル化としては、タンパ
ク質シアリル化（Ｎ−グリカンシアリル化としても知られている）が挙げられる。分泌タ
ンパク質および膜タンパク質（例えば、膜レセプター）の大部分は、ＥＲおよび／または
ゴルジ体においてグリコシル化される。グリコシル化が、ＥＲにおけるタンパク質のフォ
ールディングと放出を制御することは、当技術分野において公知である。その上、グリコ
シル化／脱グリコシル化のいくつもの段階がゴルジ体において生じる。ＥＲおよびゴルジ
体の両方におけるタンパク質のグリコシル化過程について現在わかっていることは、Ｈｅ
ｌｅｎｉｕｓ ｅｔ ａｌ．（２００１） Ｓｃｉｅｎｃｅ ２９１：２３６４−６９、
Ｐａｒｏｄｉ（２０００） Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．３４８：１−１３、およびＰａｒｏｄ
ｉ（２０００） Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．６９：６９−９３に概説されてい
る。したがって、本発明のある特定の実施形態において、対象となるポリペプチドは、対
象となる糖タンパク質であり、当該対象となる糖タンパク質は、細胞培養物において産生
され、例えば、その後精製される。本発明のある実施形態において、対象となる糖タンパ
ク質は、レセプターであり、可溶性レセプターであってもよい。

本発明の方法および組成物は、これに限定されるものではないが、医薬用特性、診断用
特性、農業用特性、並びに／あるいは商業用途、実験用途、および／または他の用途にお
いて有用な様々な他の特性のいずれかを有するタンパク質などの、任意の対象となるタン
パク質を製造するために使用することができる。加えて、対象となるタンパク質は、タン
パク質治療薬であってもよい。すなわち、タンパク質治療薬（または治療用タンパク質）
は、体のある領域に対して生物学的効果を有するタンパク質であり、その領域において機
能するか、あるいはその領域から離れて中間体を介して機能する。ある特定の実施形態に
おいて、本発明の方法および／または組成物を用いて製造されたタンパク質は、治療用タ
ンパク質として対象者に投与される前に、処理および／または修飾してもよい。

本発明は、例えば、製薬的又は商業的に関連する酵素、レセプター、レセプター融合物
、可溶性レセプター、可溶性レセプター融合物、抗体（例えば、モノクローナル抗体およ
び／またはポリクローナル抗体）、抗体の抗原結合性断片、Ｆｃ融合タンパク質、ＳＭＩ
Ｐ、サイトカイン、ホルモン、調節因子、成長因子、凝固因子／凝固因子、または抗原結
合性薬剤など、任意の治療用タンパク質の有利な製造のための細胞を培養するために使用
することができる。上に列挙したタンパク質は、単なる例示であり、限定するためのもの
ではない。当業者であれば、本発明に従って製造することができる他のタンパク質を知っ
ているであろうし、そのようなタンパク質を製造するために本明細書に開示された方法を
用いることができるであろう。

「抗体」なる用語は、少なくとも１つの、通常は２つのＶＨドメインもしくはその一部
、および／または、少なくとも１つの、通常は２つのＶＬドメインもしくはその一部、を
有する蛋白を含む。ある特定の実施形態において、抗体は、２本の免疫グロブリン重鎖お
よび２本の免疫グロブリン軽鎖からなる四量体であり、この場合、免疫グロブリンの重鎖
と軽鎖とが、例えばジスルフィド結合によって、相互接続している。抗体またはその一部
は、これに限定されるものではないが、げっ歯類、霊長類（例えば、ヒトおよび非ヒトの
霊長類）、ラクダ科、サメをはじめとするいずれかの由来から得ることができ、同様に、
組み換えによる例えばキメラ化した製造、ヒト化、および／またはインビトロにおいて、
例えば当業者に周知の方法によって発生させることもできる。

さらに、本発明は、「抗体の抗原結合断片」を包含し、その例としては、（ｉ）Ｆａｂ
断片、すなわち、ＶＬドメイン、ＶＨドメイン、ＣＬドメイン、およびＣＨ１ドメインか
らなる一価の断片；（ｉｉ）Ｆ（ａｂ’）２断片、すなわち、ヒンジ領域においてジスル
フィド結合によって連結されている２つのＦａｂ断片を含む二価の断片；（ｉｉｉ）ＶＨ
ドメインおよびＣＨ１ドメインからなるＦｄ断片；（ｉｖ）抗体の単一アームのＶＬドメ
インおよびＶＨドメインからなるＦｖ断片；（ｖ）ｄＡｂ断片、これは、ＶＨドメインか
らなる；（ｖｉ）ラクダまたはラクダ化の可変ドメイン、例えば、ＶＨＨドメイン；（ｖ
ｉｉ）単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）；（ｖｉｉｉ）二重特異性抗体；ならびに（ｉｘ）Ｆｃ領域
に融合した、免疫グロブリンの１つ以上の抗原結合性断片、が挙げられる。さらに、Ｆｖ
断片の２つのドメインであるＶＬおよびＶＨは、別々の遺伝子によってコードされるが、
それらは、組換えの方法を用いて、それらをＶＬ領域およびＶＨ領域の対が一価の分子（
単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）として知られている；例えば、Ｂｉｒｄ ｅｔ ａｌ．（１９８８
） Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：４２３−２６；Ｈｕｓｔｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）
Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．８５：５８７９−８３を参照
のこと）を形成している単一のタンパク質鎖として作製することができる合成リンカーに
よってつなぎ合わせることができる。そのような単鎖の抗体も、抗体の「抗原結合断片」
なる用語の範囲内に包含されることが意図される。これらの抗体断片は、当業者に公知の
従来の技術を用いて得ることができ、当該断片は、完全な状態の抗体の場合と同様にして
機能を評価される。

さらに、本発明は、単一ドメイン抗体を包含する。単一ドメイン抗体は、単一ドメイン
ポリペプチドの一部である相補性決定領域を有する抗体を含み得る。例としては、重鎖抗
体、天然に軽鎖が欠けている抗体、従来型四本鎖抗体に由来する単一ドメイン抗体、改変
抗体、および抗体に由来するもの以外の単一ドメインスカフォールドなどが挙げられるが
、これに限定されるものではない。単一ドメイン抗体は、当分野のいずれかの単一ドメイ
ン抗体、又は任意の将来の単一ドメイン抗体であってもよい。単一ドメイン抗体は、マウ
ス、ヒト、ラクダ、ラマ、ヤギ、ウサギ、ウシ、およびサメを含む任意の種に由来し得る
が、これらに限定されるものではない。本発明の１つの態様によると、本明細書において
使用される場合、単一ドメイン抗体は、軽鎖が欠けている重鎖抗体として公知の、自然発
生的な単一ドメイン抗体である。そのような単一ドメイン抗体は、例えば、国際公開第９
４０４６７８号において開示されている。明確にするために、本明細書では、四本鎖免疫
グロブリンの従来型ＶＨと区別して、この天然に軽鎖が欠けている重鎖抗体由来の可変ド
メインをＶＨＨまたはナノボディと呼ぶ。そのようなＶＨＨ分子は、ラクダ科種、例えば
、ラクダ、ラマ、ヒトコブラクダ、アルカパ、およびグアナコにおいて産生された抗体に
由来してもよい。ラクダ科以外の他の種が、天然で軽鎖が欠けている重鎖抗体を生成する
場合もあり、そのようなＶＨＨは、本発明の範囲内に含まれる。さらに、単一ドメイン抗
体は、サメＩｇＮＡＲを含む（例えば、Ｄｏｏｌｅｙ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ
ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ．，１０３：１８４６−１８５１（２００６）を参
照のこと）。

「二重特異性」抗体または「二機能性」抗体を除き、抗体は、その各結合部位が全く同
一であると理解される。「二重特異性」または「二機能性抗体」は、２つの異なる重鎖／
軽鎖の対および２つの異なる結合部位を有する人為的なハイブリッド抗体である。二重特
異性抗体は、ハイブリドーマの融合またはＦａｂ’断片の連結をはじめとする、様々な方
法によって生成することができる。例えば、Ｓｏｎｇｓｉｖｉｌａｉ ＆ Ｌａｃｈｍａ
ｎｎ， Ｃｌｉｎ．Ｅｘｐ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．７９：３１５−３２１（１９９０）；Ｋｏ
ｓｔｅｌｎｙ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８，１５４７−１５５３（１９
９２）を参照のこと。

実施形態において、タンパク質が抗体またはそれらの断片の場合、それらは、少なくと
も１つ、もしくは２つの全長重鎖、および少なくとも１つ、もしくは２つの軽鎖を含み得
る。あるいは、抗体またはそれらの断片は、抗原結合性断片（例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ
’）２、Ｆｖ、又は一本鎖Ｆｖ断片など）のみを含み得る。当該抗体またはそれらの断片
は、モノクローナル抗体または単一特異性抗体であってもよい。抗体またはそれらの断片
は、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、ＣＤＲグラフト化抗体、又はインビトロ発生抗
体であってもよい。さらに他の実施形態において、当該抗体は、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ
２、ＩｇＧ３、またはＩｇＧ４から選択される重鎖定常領域を有する。別の実施形態にお
いて、当該抗体は、例えばκ又はλから選択される軽鎖を有する。一実施形態において、
抗体の特性を改変するために（例えば、Ｆｃ受容体結合、抗体グリコシル化、システイン
残基の数、エフェクター細胞機能、または補体機能の１つ以上を増加又は減少させるため
に）、当該定常領域を変化、例えば変異させる。通常は、抗体またはそれらの断片は、同
定済みの抗原、例えば神経変性疾患、代謝性疾患、炎症性疾患、自己免疫性疾患、および
／または悪性疾患などの疾患に関連する抗原、に特異的に結合する。

本明細書に記載のタンパク質はさらに、必要に応じて、例えば、安定性、エフェクター
細胞機能、または補体結合の１種以上を増強する部分を含んでいてもよい。例えば、抗体
または抗原結合タンパク質はさらに、ペグ化部分、アルブミン、あるいは重鎖および／ま
たは軽鎖の定常領域を含んでいてもよい。

抗体は、一般的に、例えば、従来のハイブリドーマ技術（Ｋｏｈｌｅｒ ｅｔ ａｌ．
，Ｎａｔｕｒｅ ２５６：４９５ ４９９（１９７５））、組換えＤＮＡ法（米国特許第
４，８１６，５６７号）、または抗体ライブラリーを使用するファージディスプレー技術
（Ｃｌａｃｋｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３５２：６２４ ６２８（１９９１
）；Ｍａｒｋｓ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２２：５８１ ５９７（１９
９１））によって作製される。他の様々な抗体生成技術については、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅ
ｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，ｅｄｓ．Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．，
Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８を参照のこと
。

さらに、検出可能な標識または機能性標識によって抗体をタグ付けすることもできる。
これらの標識としては、放射性標識（例えば、１３１Ｉまたは９９Ｔｃ）、酵素標識（例
えば、ワサビペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ）、および他の化学的部分
（例えば、ビオチン）が挙げられる。

「低分子免疫薬学的」または（ＳＭＩＰ（商標））薬物（Ｔｒｕｂｉｏｎ Ｐｈａｒｍ
ａｃｅｕｔｉｃａｌｓ社、Ｓｅａｔｔｌｅ、ＷＡ）は、抗原またはカウンターレセプター
などの同族構造に対する結合ドメイン、１つのシステイン残基を有するかもしくは有さな
いヒンジ領域ポリペプチド、並びに免疫グロブリンＣＨ２およびＣＨ３ドメインから構成
される一本鎖ポリペプチドである（ｗｗｗ．ｔｒｕｂｉｏｎ．ｃｏｍも参照のこと）。Ｓ
ＭＩＰならびにそれらの使用および用途については、例えば、米国特許出願第２００７／
００２１５９号、同第２００３／０１１８５９２号、同第２００３／０１３３９３９号、
同第２００４／００５８４４５号、同第２００５／０１３６０４９号、同第２００５／０
１７５６１４号、同第２００５／０１８０９７０号、同第２００５／０１８６２１６号、
同第２００５／０２０２０１２号、同第２００５／０２０２０２３号、同第２００５／０
２０２０２８号、同第２００５／０２０２５３４号、および同第２００５／０２３８６４
６号、ならびにそれらの関連特許ファミリーパテントにおいて開示されている。なお、こ
れらすべては、参照によりその全体が本明細書に援用されるものとする。

本発明の一実施形態において、対象となるタンパク質は、可溶性レセプター、例えば可
溶性レセプター融合タンパク質である。膜タンパク質、例えばレセプター、は、通常、グ
リコシル化タンパク質である。したがって、本発明の方法は、凝集しておらず適正にフォ
ールドされたグリコシル化可溶性レセプター融合タンパク質の製造において特に有益であ
る。

可溶性タンパク質、例えば可溶性レセプター、は、当技術分野において周知の方法によ
って製造することができる。本発明の一実施形態において、可溶性レセプターは、レセプ
ターの細胞外領域、またはレセプターの細胞外領域の断片を含む。本発明の別の実施形態
において、可溶性レセプターは、２つのポリペプチドを含む。第一のポリペプチドは、全
長レセプターを含むか、あるいは、第一のポリペプチドは、レセプターの全長より短い部
分、例えばレセプターの細胞外部分、を含む。本発明の一実施形態において、第一のポリ
ペプチドは、全長サイトカインレセプターを含むか、あるいは、第一のポリペプチドは、
サイトカインレセプターの全長より短い部分、例えばサイトカインレセプターの細胞外部
分、を含む。さらに、そのような可溶性レセプターは、さらなるポリペプチド、例えば、
ＧＳＴ、Ｌｅｘ−Ａ、ＭＢＰポリペプチド配列、あるいは、Ｆｃ断片や、ＩｇＧ１、Ｉｇ
Ｇ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＭ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２、ＩｇＤ、およびＩｇＥなどの
様々なイソタイプの重鎖定常領域などをはじめとする免疫グロブリン鎖、なども含んでい
てもよい。

本発明の一実施形態において、第二のポリペプチドは、好ましくは可溶性である。いく
つかの実施形態において、第二のポリペプチドは、結合しているポリペプチドの半減期、
（例えば、血漿半減期または循環半減期）を延長する。好ましい実施形態において、第二
のポリペプチドは、少なくとも免疫グロブリンポリペプチドの領域を含む。免疫グロブリ
ン融合ポリペプチドは、当技術分野において公知であり、例えば、米国特許第５，５１６
，９６４号；同第５，２２５，５３８号；同第５，４２８，１３０号；同第５，５１４，
５８２号；同第５，７１４，１４７号；および同第５，４５５，１６５号に記載されてい
る。可溶性融合タンパク質は、産生中に凝集の影響を受けやすいことが知られており、し
たがって、本発明による方法は、この種のタンパク質を産生する細胞培養物に関して、特
に有益である。

いくつかの実施形態において、第二のポリペプチドは全長免疫グロブリンポリペプチド
を含む。あるいは、第二のポリペプチドは、全長より短い免疫グロブリンポリペプチド、
例えば、重鎖、軽鎖、Ｆａｂ、Ｆａｂ_２、Ｆｖ、またはＦｃなど、を含む。第二のポリペ
プチドは、免疫グロブリンポリペプチドの重鎖を含み得る。第二のポリペプチドは、免疫
グロブリンポリペプチドのＦｃ領域を含み得る。

本発明の一実施形態において、可溶性レセプター融合タンパク質は、腫瘍壊死因子イン
ヒビターを含む。ある特定の実施形態において、腫瘍壊死因子インヒビターは、腫瘍壊死
因子αおよびβレセプター（ＴＮＦＲ−１：１９９１年３月２０日に公開された欧州特許
第４１７，５６３号；およびＴＮＦＲ−２：１９９１年３月２０日に公開された欧州特許
第４１７，０１４号、これらはいずれも、参照によりその全体が本明細書に援用されるも
のとする）の形態において、本発明の系および方法により発現する（概説に関しては、Ｎ
ａｉｓｍｉｔｈ ａｎｄ Ｓｐｒａｎｇ，Ｊ．Ｉｎｆｌａｍｍ．４７（１−２）：１−７
，１９９５−９６を参照のこと。なお、この文献は、参照によりその全体が本明細書に援
用されるものとする）。いくつかの実施形態により、腫瘍壊死因子インヒビターは、可溶
性ＴＮＦ（ｔｕｍｏｒ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ）レセプターを含む。ある特定
の実施形態において、本発明のＴＮＦインヒビターは、ＴＮＦＲＩおよびＴＮＦＲＩＩの
可溶性形態である。ある特定の実施形態において、本発明のＴＮＦインヒビターは、可溶
性ＴＮＦ結合タンパク質である。ある特定の実施形態において、本発明のＴＮＦインヒビ
ターは、ＴＮＦＲ融合タンパク質、例えば、ＴＮＦＲ−ＩｇまたはＴＮＦＲ−Ｆｃなど、
である。本明細書で使用する場合、「エタネルセプト」は、ＴＮＦＲ−Ｆｃを意味し、こ
れは、ｐ７５ＴＮＦ−αレセプターの細胞外部分の２つの分子の二量体であり、この各分
子は、ヒトＩｇＧ１の２３５アミノ酸Ｆｃ部分から成る。本発明により、ＴＮＦＲ−Ｆｃ
を発現する細胞は、ＴＮＦＲ−Ｆｃの産生中におけるミスフォールドされたタンパク質お
よび／または高分子量凝集体の量を減らすため、低温および／または低ｐＨで細胞培養物
において培養される。ある特定の実施形態において、ＴＮＦＲ−Ｆｃを発現する細胞は、
ＴＮＦＲ−Ｆｃの産生中のグリコシル化を調整するため、低温および／または低ｐＨで細
胞培養物において培養される。

本発明の他の実施形態において、当該可溶性レセプター融合タンパク質は、ｓＩＬ−１
３Ｒである。本明細書で使用される場合、可溶性ＩＬ−１３レセプター（ｓＩＬ−１３Ｒ
：ｓｏｌｕｂｌｅ ＩＬ−１３ ｒｅｃｅｐｔｏｒ）は、ヒトインターロイキン（ＩＬ：
ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ）−１３−α２レセプターの細胞外ドメイン（ＥＣＤ：ｅｘｔｒ
ａｃｅｌｌｕｌａｒ ｄｏｍａｉｎ）とヒトＩｇＧ１重鎖のＦｃ領域を含む組み換え融合
タンパク質を意味する。ｓＩＬ−１３Ｒは、２つの同一のポリペプチド鎖で構成され（す
なわち、２つのポリペプチド鎖の二量体）、これは、分子間ジスルフィド結合によって結
合しているようである。ｓＩＬ−１３Ｒ可溶性レセプター融合タンパク質およびその使用
については、米国特許第５，７１０，０２３号において開示されている。なお、ここの文
献は、参照によりその全体が本明細書に援用されるものとする。

いくつかの実施形態において、第二のポリペプチドは、野生型免疫グロブリン重鎖のＦ
ｃ領域のエフェクター機能より少ないエフェクター機能を有する。Ｆｃエフェクター機能
としては、例えば、Ｆｃレセプター結合性、補体結合、およびＴ細胞枯渇活性などが挙げ
られる（例えば、米国特許第６，１３６，３１０号を参照のこと）。Ｔ細胞枯渇活性、Ｆ
ｃエフェクター機能、および抗体安定性を分析評価する方法は、当技術分野において公知
である。一実施形態において、第二のポリペプチドは、Ｆｃレセプターに対して親和性が
低いかもしくは親和性を有しない。別の実施形態において、第二のポリペプチドは、補体
タンパク質Ｃ１ｑに対して親和性が低いかもしくは親和性を有しない。

融合タンパク質、例えば可溶性レセプター融合タンパク質、は、可溶性レセプターまた
はその断片を第二の部分に接続するリンカー配列をさらに含んでいてもよい。例えば、融
合たんぱく質は、ペプチドリンカー、例えば、約２〜２０、より好ましくは約５〜１０、
の長さのアミノ酸のペプチドリンカー、を含んでいてもよい。

他の実施形態において、発現、検出、および／または単離もしくは精製を容易にするた
めに、さらなるアミノ酸配列を融合タンパク質のＮ−末端またはＣ−末端に付加させるこ
とができる。例えば、可溶性レセプター融合タンパク質を、１つ以上のさらなる部分、例
えば、ＧＳＴ、Ｈｉｓ６タグ、ＦＬＡＧタグなど、に結合させてもよい。例えば、融合タ
ンパク質を、さらに、融合タンパク質配列がＧＳＴ（すなわち、グルタチオンＳ−トラン
スフェラーゼ）配列のＣ−末端に融合しているＧＳＴ融合タンパク質に結合させてもよい
。そのような融合タンパク質は、可溶性を促進することができ、すなわち、正確なフォー
ルディングを増加させ、したがって、融合タンパク質の精製を向上させ得る。

細胞培養物におけるタンパク質製造方法
「培養物」および「細胞培養物」なる用語は、本明細書で使用される場合、細胞集団の
生存および／または増殖に好適な条件下において細胞培養培地に接触している細胞集団を
意味する。本明細書で使用される場合、これらの用語は、細胞集団（例えば、動物細胞培
養物）および当該細胞集団が接触している培地を含む組み合わせを意味する。

本発明において使用される細胞は、組換え型宿主細胞、例えば、真核生物宿主細胞、す
なわち、対象となるポリペプチドをコード化する核酸を含む発現コンストラクトでトラン
スフェクトされた細胞、であってもよく、例えば、動物細胞が挙げられる。「動物細胞」
なる語句は、無脊椎動物、非哺乳類脊椎動物（例えば、鳥類、爬虫類、および両生類）、
並びに哺乳動物の細胞を包含する。無脊椎動物細胞の非限定的な例としては、以下の昆虫
：Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ（毛虫）、Ａｅｄｅｓ ａｅｇｙｐｔｉ
（蚊）、Ａｅｄｅｓ ａｌｂｏｐｉｃｔｕｓ（蚊）、Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎ
ｏｇａｓｔｅｒ（みばえ）、およびＢｏｍｂｙｘ ｍｏｒｉ（カイコ／絹ガ）の細胞を含
む。好ましい実施形態において、細胞培養物は、哺乳動物細胞培養物である。

多くの哺乳動物細胞株が、対象となるポリペプチドの組み換え発現に好適な宿主細胞で
ある。哺乳動物宿主細胞株としては、例えば、ＣＯＳ、ＰＥＲ．Ｃ６、ＴＭ４、ＶＥＲＯ
０７６、ＭＤＣＫ、ＢＲＬ−３Ａ、Ｗ１３８、Ｈｅｐ Ｇ２、ＭＭＴ、ＭＲＣ５、ＦＳ４
、ＣＨＯ、２９３Ｔ、Ａ４３１、３Ｔ３、ＣＶ−１、Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２、Ｃｏｌｏ２０
５、２９３、ＨｅＬａ、Ｌ細胞、ＢＨＫ、ＨＬ−６０、ＦＲｈＬ２、Ｕ９３７、ＨａＫ、
Ｊｕｒｋａｔ細胞、Ｒａｔ２、ＢａＦ３、３２Ｄ、ＦＤＣＰ−１、ＰＣ１２、Ｍ１ｘ、マ
ウスミエローマ（例えば、ＳＰ２／０およびＮＳ０）、並びにＣ２Ｃ１２細胞、同様に、
トランスフェクトされた霊長類細胞株、ハイブリドーマ、正常二倍体細胞、並びに第１次
組織および初代移植体のインビトロ培養物に由来する細胞株が挙げられる。対象となるポ
リペプチドを発現することのできる任意の真核細胞が、開示された方法において使用する
ことができる。多くの細胞株が商業的な供給元、例えば、アメリカン・タイプ・カルチャ
ー・コレクション（ＡＴＣＣ：Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌ
ｅｃｔｉｏｎ）など、から入手可能である。本発明の一実施形態において、細胞培養物、
例えば大規模細胞培養物など、にＣＨＯ細胞を用いる。

ある特定の実施形態において、当該細胞培養物は、哺乳動物細胞を含むが、当業者であ
れば、酵母などの下等真核生物において、あるいはバクテリアなどの原始核細胞において
、対象となるポリペプチドを、組み換えにより製造することが可能であることを理解する
であろう。当業者であれば、酵母およびバクテリアの細胞培養物のための培養条件は、動
物細胞の培養条件と異なっているであろうことを知っているであろうし、これらの条件を
、細胞増殖および／またはタンパク質産生を最適化するために、どのように調整しなけれ
ばならないかを理解するであろう。

好適な菌株には、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉ
ｌｉｓ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ、または対象となるポリペプチ
ドを発現することのできる任意の菌株が含まれる。バクテリアにおける発現は、その結果
として当該組み換えタンパク質を組み込む封入体の形成を生じ得る。したがって、組み換
えタンパク質のリフォールディングは、活性物質もしくはより活性な物質を産生するため
に必要であり得る。正しくにフォールドされた異種タンパク質をバクテリアの封入体から
得るためのいくつかの方法が、当技術分野において公知である。これらの方法は、一般的
に、封入体から当該タンパク質を可溶化する工程、次いでカオトロピック試薬を使用して
当該タンパク質を完全に変性させる工程を含む。システイン残基が当該タンパク質の一次
アミノ酸配列中に存在する場合、ジスルフィド結合の正しい形成を可能にする環境（レド
ックス系）において当該リフォールディングを達成することが、しばしば必要である。リ
フォールディングの一般的な方法は、当技術分野において公知であり、例えば、Ｋｏｈｎ
ｏ（１９９０） Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１８５：１８７−９５、欧州特許第０４３
３２２５号、及び米国特許第５，３９９，６７７号において開示されている。

ポリペプチド産生のために好適な酵母株には、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅ
ｖｉｓｉａｅ、Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ、Ｐｉｃｈｉａ
ｐａｓｔｏｒｉｓ、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ属株、Ｃａｎｄｉｄａ、または対象とな
るポリペプチドを発現することのできる任意の酵母株が含まれる。

「バイオリアクター」なる用語は、本明細書で使用される場合、真核性細胞培養物、例
えば、動物細胞培養物（例えば、哺乳動物細胞培養物）の増殖に使用される任意の容器を
意味する。バイオリアクターは、細胞、例えば哺乳動物細胞、の培養に有用である限り、
任意のサイズであってよい。通常、バイオリアクターは、少なくとも３０ｍｌであるが、
少なくとも１、１０、１００、２５０、５００、１０００、２５００、５０００、８００
０、１０，０００、１２，０００リットル以上、あるいは任意の中間的容量であってもよ
い。バイオリアクターの内部条件、例えば、これに限定されるものではないが、ｐＨおよ
び温度などは、通常、培養期間中において制御される。「製造用バイオリアクター」なる
用語は、本明細書で使用される場合、対象となるポリペプチドおよびタンパク質の製造に
おいて使用される最終的なバイオリアクターを意味する。大規模な細胞培養物の製造用バ
イオリアクターの容量は、一般的に約１００ｍｌより大きく、通常は、少なくとも約１０
リットルであり、５００、１０００、２５００、５０００、８０００、１０，０００、１
２，０００リットル以上、あるいは任意の中間的容量であってもよい。好適なバイオリア
クターまたは製造用バイオリアクターは、本発明の培養条件下において培地中に懸濁して
いる細胞培養物を保持するのに好適であり、かつ細胞の増殖および生存の助けとなる任意
の材料、例えば、ガラス、プラスチック、または金属など、から構成され（すなわち、構
築され）ていてもよく、すなわち、当該材料（単数または複数）は、製造された産物、例
えば治療用タンパク質産物、の発現または安定性を妨げてはならない。当業者であれば、
本発明の実施における使用に好適なバイオリアクターについて知っているであろうし、選
択することができるであろう。

「培地」、「細胞培養培地」、および「培養培地」なる用語は、本明細書で使用される
場合、増殖する動物細胞、例えば哺乳動物細胞、に栄養分を与える栄養物を含有する溶液
を意味し、さらに細胞との組み合わせにおける培地も意味し得る。「接種培地」なる用語
は、細胞培養物を形成するために使用される培地を意味する。接種培地は、細胞増殖期の
他の期間に使用される培地と組成が異なっていても、または異なっていなくてもよい。通
常、培地溶液は、これに限定されるものではないが、少なくとも最小限の増殖および／ま
たは生存のために細胞によって必要とされる、必須および非必須アミノ酸、ビタミン、エ
ネルギー源、脂質、および微量元素を提供する。さらに、当該溶液は、ホルモンおよび成
長因子などの、最小限の速度を超えて成長および／または生存を高める成分を含有してい
てもよい。当該溶液は、好ましくは、細胞の生存および増殖のために最適なｐＨおよび塩
濃度に処方される。少なくとも一実施形態において、当該培地は、規定培地である。規定
培地は、その中の全ての成分が既知の化学構造を有する培地である。本発明の他の実施形
態において、当該培地は、任意の供給源もしくは当技術分野において公知の方法に由来す
るアミノ酸（単数または複数）を含有していてもよく、その例としては、これに限定され
るものではないが、単一アミノ酸付加物（単数または複数）またはペプトンもしくはタン
パク質加水分解付加物（単数または複数）（動物性供給源または植物性供給源を含む）の
いずれかに由来するアミノ酸（単数または複数）が挙げられる。本発明のさらに別の実施
形態において、細胞増殖期に使用される培地は、濃縮培地、すなわち、培養に通常必要と
され、かつ通常供給される濃度より高い濃度の栄養物を含有する培地、を含有してもよい
。当業者であれば、どのような細胞媒質、接種媒質等が、特定の細胞、例えば動物細胞（
例えば、ＣＨＯ細胞）を培養するために適切であるか、並びにグルコースおよび他の栄養
物（例えば、グルタミン、鉄分、微量Ｄ元素）の量、あるいは培地が含有すべき、他の培
養変数（例えば、発泡量、オスモル濃度）を制御するように設計された薬剤の量について
認識するであろう（例えば、Ｍａｔｈｅｒ，Ｊ．Ｐ．，ｅｔ ａｌ．（１９９９） ”Ｃ
ｕｌｔｕｒｅ ｍｅｄｉａ，ａｎｉｍａｌ ｃｅｌｌｓ，ｌａｒｇｅ ｓｃａｌｅ ｐｒ
ｏｄｕｃｔｉｏｎ，” Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ｂｉｏｐｒｏｃｅｓｓ Ｔｅ
ｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎ，Ｂｉｏｃａｔａｌｙｓｉｓ，ａｎｄ Ｂ
ｉｏｓｅｐａｒａｔｉｏｎ，Ｖｏｌ．２：７７７−８５、米国特許出願公開第２００６／
０１２１５６８号を参照のこと。なお、これにより、この両文献は、参照によりその全体
が本明細書に援用されるものとする）。さらに、本発明は、そのような既知の媒質の変形
、例えば、そのような媒質の栄養物リッチな変形なども想到する。本明細書で使用される
場合、「細胞密度」なる用語は、培地の所定量中に存在する細胞の数を意味する。本明細
書で使用される場合、「生存細胞密度」なる用語は、所定の一連の実験条件下において、
培地の所定量中に存在する生きた細胞の数を意味する。

本明細書で使用される場合、「細胞生存率」なる用語は、所定の一連の培養条件下また
は実験変量下において生存するための培養物における細胞の能力を意味する。さらに、本
明細書で使用される場合、当該用語は、特定の時期に培養物中において生存している細胞
及び死んでいる細胞の総数に対する、その時期に生存している細胞の割合も意味する。

本明細書で使用される場合、「統合生存細胞密度」、「統合生存細胞数」、または「Ｉ
ＶＣ（ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ｖｉａｂｌｅ ｃｅｌｌ）」なる用語は、培養期間中の生
存細胞の平均密度に、培養を行った期間を乗じたものを意味する。産生されるタンパク質
の量が、培養期間中に存在する生存細胞の数に比例する場合、統合生存細胞密度は、培養
期間中に産生されるタンパク質の量を見積もるための有用なツールである。

本発明の方法は、バッチ培養、流加培養、潅流培養、修正流加培養（米国特許仮出願第
６０／９５４，９２２号を参照のこと）、バッチ再供給培養、またはそれらの任意の組み
合わせにおいて増殖される細胞に適切である。

本明細書で使用される場合、「バッチ培養」なる用語は、細胞の培養において最終的に
使用されるであろう、培地および細胞自体も含む全ての成分を培養工程の最初に供給する
、細胞の培養方法を意味する。バッチ培養は、通常は、ある時点で停止して、培地中の細
胞および／または成分を収穫し、必要に応じて精製する。

本明細書で使用される場合、「流加培養」なる用語は、追加的な成分を、培養工程開始
後のある時点で培養物に供給する、細胞の培養方法を意味する。供給される成分は、通常
、培養工程中に消費されてしまった細胞のための栄養補給剤を含む。流加培養は、通常は
、ある時点で停止して、培地中の細胞および／または成分を収穫し、必要に応じて精製す
る。

本明細書で使用される場合、「潅流培養」なる用語は、培養物に対して（培養工程開始
後に）、ある期間にわたって連続的に、又はある期間に断続的に、追加的な新鮮な培地を
供給し、同時に消費された培地を除去する、細胞の培養方法を意味する。当該新鮮な培地
は、通常、培養工程中に消費されてしまった細胞のための栄養補給剤を提供する。消費さ
れた培地中に存在し得るポリペプチド産物は、必要に応じて精製してもよい。さらに、潅
流によって、バイオリアクター中で増殖する細胞培養物からの細胞の老廃物の除去（フラ
ッシング）も可能になる。

本明細書で使用される場合、「修正流加培養」なる用語は、流加培養法と潅流培養法の
両方を組み合わせた、細胞の培養方法を意味する。修正流加培養法は、米国特許仮出願第
６０／９５４，９２２号に記載されている。なお、当該文献は、参照によりその全体が本
明細書に援用されるものとする。

さらに、本発明は、バッチ再供給法で実施することもできる。低ｐＨは、この種の細胞
培養物において、タンパク質のミスフォールディングおよび／または凝集、並びにグリコ
シル化の修正に対して良好な制御方法を提供すると考えられる。

本発明の一実施形態において、当該方法は、最初に細胞培養物の増殖期中に接種培地に
よって細胞培養物を接種する工程、それに続いて細胞を産生期に切り替える工程を含み、
この場合、細胞培養物の温度及び／又はｐＨは、低温及び／又は低ｐＨに調節される。本
明細書で使用される場合、増殖期は、細胞が増殖してタンパク質産生に最適な細胞密度を
達成する、細胞培養物における段階を意味する。

別の実施形態では、増殖期に続いて、細胞を産生期へと切り替えてもよく、これは、増
殖期とは異なる温度および／または異なるｐＨ、例えば、低温及び／又は低ｐＨで生じ得
る。実施形態において、細胞培養物は、接種後１日で増殖期から産生期へと切り替えるこ
とができる。他の実施形態では、細胞培養物は、接種後５日で増殖期から産生期へと切り
替えることができる。細胞培養物を増殖期から産生期へと切り替える場合、その移行は比
較的ゆるやかであってもよい。あるいは、急激に移行してもよい。緩やかにシフトする場
合、温度および／またはｐＨを着実に調節することができる、例えば低下させることがで
きる。あるいは、温度及び／又はｐＨを不連続な間隔で調整することもできる。

細胞培養物の産生期は、細胞が、対象となるポリペプチド、例えば治療用タンパク質、
を産生するのに最適な条件下で当該細胞を増殖させる、細胞培養物における段階である。
産生期において、細胞培養物の低温及び／又は低ｐＨは、細胞培養物が生存し続ける温度
および／またはｐＨ、高濃度のタンパク質が産生される温度および／またはｐＨ、代謝老
廃物、例えば乳酸およびアンモニア、の産生及び蓄積が最小となる温度および／またはｐ
Ｈ、タンパク質の産生品質が適切に制御される温度および／またはｐＨ、および／または
これらの要因もしくは実施者が重要であると考える他の要因の任意の組み合わせに基づい
て選択することができる。

本発明の別の実施形態において、本発明の方法は、産生期の初期において温度またはｐ
Ｈのシフトが必要ないような、低温および／または低ｐＨで細胞培養物を接種する工程を
含む。熟練者であれば、温度およびｐＨが、設定された温度およびｐＨの設定値から逸脱
することのないように、細胞培養物の温度およびｐＨを監視するであろう。例えば、熟練
者であれば、塩基、例えば炭酸ナトリウム塩基、を使用して、培養物が下記の設定ｐＨか
ら逸脱するのを防ぐであろう。

本明細書の下記の実施例において、細胞培養培地は、目標のｐＨ設定値より高いｐＨで
開始しており、ｐＨ設定値への細かな調節は行っていない。ただし、当業者によって理解
されるように、細胞培養の経過中のｐＨ調節の使用を含んでもよい。同様に、調節を行わ
ずに培養を低温で開始することも可能である。例えば、本方法は、産生期のみを含んでも
よい。

本明細書で使用される場合、「低温」は、その種類の細胞の細胞増殖のための従来の温
度（細胞が典型的に増殖する温度）より低い温度を意味する。例えば、本発明の実施形態
において、細胞が哺乳動物細胞の場合、産生期の細胞培養物は、好ましくは２４．０℃〜
３０．０℃未満の範囲であり、より好ましくは２７．０℃〜３０．０℃未満の範囲である
。例えば、細胞培養物の低温は、２４．０℃、２４．５℃、２５．０℃、２５．５℃、２
６．０℃、２６．５℃．２７．０℃、２７．５℃、２８．０℃、２８．５℃、２９．０℃
、２９．５℃、２９．６℃、２９．７℃、２９．８℃、および２９．９℃である。本明細
書に記載されている本発明の最も好ましい実施形態において、細胞培養物の低温は、約２
９．５℃である。哺乳動物以外の細胞に対する低温は、当業者により個別に決定され得る
。

本明細書で使用される場合、「低ｐＨ」は、特定の細胞種の細胞増殖のための従来のｐ
Ｈ（細胞が典型的に増殖するｐＨ）より低いｐＨ設定値を意味する。本発明の実施形態に
おいて、細胞が哺乳動物細胞の場合、産生期の細胞培養物の低ｐＨは、７．００未満であ
る。本発明の実施形態において、細胞培養物の低ｐＨは、６．５０〜７．００未満の範囲
、好ましくは６．８０〜７．００未満の範囲である。例えば、細胞培養物の低ｐＨは、６
．８０、６．８５、６．９０、６．９５、６．９６、６．９７、６．９８、および６．９
９である。本発明の最も好ましい実施形態において、細胞培養物の低ｐＨは、約６．９５
である。哺乳動物以外の細胞に対する低ｐＨは、当業者により、個別に決定され得る。

当業者であれば、細胞培養物の細胞の種類に応じて、従来温度および従来ｐＨ（低温お
よび低ｐＨと区別して）が異なることは理解するであろう。例えば、ほとんどの哺乳動物
細胞、例えばＣＨＯ細胞、のための従来温度および従来ｐＨは、それぞれ、３０．０℃よ
り上（例えば、３７．０℃）、および７．００より上（例えば、７．２０）である。さら
に、当業者であれば、他の細胞種、例えば昆虫の細胞、のための従来温度および従来ｐＨ
は、哺乳動物細胞の従来の温度と異なっているため、本発明の方法は、そのような細胞に
対しては、異なる低温および異なる低ｐＨが用いられることは理解されるであろう。

本発明のある特定の実施形態において、実施者は、増殖する細胞培養物の特定の状態を
定期的に監視することが有益または必要であることを見出し得る。非限定的な実施例の場
合、例えば、温度、ｐＨ、溶存酸素、細胞密度、細胞生存率、統合生存細胞密度、ラクテ
ート濃度、アンモニア濃度、グルコース濃度、グルタミン濃度、オスモル濃度、発現した
ポリペプチドの力価などを監視することは有益であり得、または必要であり得る。そのよ
うな状態／基準を測定するための多くの技術が、当業者に公知である。例えば、細胞密度
は、血球計、自動化された細胞計数装置（例えば、Ｃｏｕｌｔｅｒカウンター、Ｂｅｃｋ
ｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ Ｉｎｃ．社、Ｆｕｌｌｅｒｔｏｎ， ＣＡ）、または細胞密度
検査（例えば、ＣＥＤＥＸ（登録商標）、Ｉｎｎｏｖａｔｉｓ社， Ｍａｌｖｅｒｎ，Ｐ
Ａ）を用いて測定することができる。生存細胞密度は、培養物試料をトリパンブルーで染
色することによって決定することができる。ラクテート濃度、アンモニア濃度、グルコー
ス濃度、およびグルタミン濃度、並びに溶存酸素およびｐＨは、例えば、細胞培養培地中
の重要な栄養素、代謝物質、および気体の測定値を計測するＢｉｏＰｒｏｆｉｌｅ ４０
０ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ａｎａｌｙｚｅｒ（Ｎｏｖａ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ社、Ｗａ
ｌｔｈａｍ、ＭＡ）によって測定することができる。さらに、溶存酸素およびｐＨは、例
えば、血液ガス分析装置（例えば、Ｂａｙｅｒ Ｒａｐｉｄｌａｂ ２４８ ｐＨ／血液
ガス分析装置（Ｂａｙｅｒ ＨｅａｌｔｈＣａｒｅ ＬＬＣ社、Ｅａｓｔ Ｗａｌｐｏｌ
ｅ、ＭＡ））を用いて測定することができる。さらに、温度、ｐＨ、および溶存酸素は、
例えば、様々な種類のインサイチュプローブによっても測定することができる。細胞培養
物のオスモル濃度は、例えば、凝固点オスモメーターによって測定することができる。Ｈ
ＰＬＣを使用して、例えば、ラクテート、アンモニア、又は発現したポリペプチドもしく
はタンパク質のレベルを決定することができる。本発明の一実施形態において、発現した
ポリペプチドのレベルは、例えば、タンパク質Ａ ＨＰＬＣを使用して決定することがで
きる。あるいは、発現したポリペプチドもしくはタンパク質のレベルは、標準的な技術、
例えば、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルのクマシー染色、ウエスタンブロット法、ブラッドフォー
ドアッセイ、ローリーアッセイ、ビウレットアッセイ、及びＵＶ吸光度など、によって決
定することができる。発現したポリペプチドもしくはタンパク質の翻訳後修飾、例えばグ
リコシル化、を監視することは必要であり得る。さらに、タンパク質の他の翻訳後修飾、
例えばリン酸化等、を監視することも有益であり得る。ある特定の細胞培養条件を監視す
るために、分析用に培養物から少量のアリコートを採取することが必要であり得る。当業
者であれば、そのような採取は、汚染物を細胞培養物に導入する可能性のあることを理解
するであろうし、そのような汚染物のリスクを最小にするための適切な配慮を行うことが
できるであろう。

本発明の一実施形態において、実施者は、低細胞培養物温度および／または低細胞培養
物ｐＨでの統合生存細胞数を監視するであろう。好ましくは、低温および／または低ｐＨ
での細胞の増殖は、統合生存細胞密度を２０％まで、より好ましくは２０％未満（例えば
、１５％）まで減少させる。本発明の別の実施形態において、実施者は、低細胞培養物温
度および／または低細胞培養物ｐＨでの細胞生存率を監視するであろう。好ましくは、低
温および／または低ｐＨでの細胞の増殖は、細胞生存率を１５％未満まで、より好ましく
は５％未満まで減少させる。

グルコースは、細胞培養物にとって主要なエネルギー源である。細胞培養物におけるグ
ルコース消費量の著しい逸脱は、細胞培養物の健康に対する細胞培養条件の負の効果を示
している場合がある。したがって、本発明の好ましい実施形態において、低温および／ま
たは低ｐＨで細胞を増殖させることにより、結果として細胞培養物のグルコース消費にお
ける変化、例えば減少、が最小となる。

グルタミンは、細胞培養物のための代替エネルギー源であり、かつ細胞培養物における
様々な分子、例えばアミン酸、の重要な窒素源である。したがって、本発明の好ましい実
施形態において、低温および／または低ｐＨで細胞を増殖させることにより、結果として
細胞培養物のグルタミン消費における変化、例えば減少、が最小となる。

本発明の別の実施形態において、実施者は、細胞培養物における老廃物の産生、例えば
、ラクテートおよびアンモニアの産生、を監視するであろう。したがって、本発明の好ま
しい実施形態において、低温および／または低ｐＨで細胞を増殖させることにより、結果
としてラクテートおよびアンモニアの産生における変化、例えば増加、が最小となる。本
発明のいくつかの実施形態において、低温および／または低ｐＨで細胞を増殖させること
により、ラクテートおよびアンモニアの産生を最小にすることができる。

さらに、本発明の好ましい実施形態において、低温および／または低ｐＨで細胞を増殖
させることにより、結果として累加平均産生能及び産物力価における減少が最小となる。
本明細書で使用される場合、「力価」なる用語は、細胞培養物（例えば、動物細胞培養物
）によって産生される、対象となるポリペプチド、例えば対象となる糖タンパク質、の総
量を、所定の量の培地容積で除したものを意味する。すなわち、「力価」は濃度を意味す
る。力価は、通常、培地１リットル当たりのポリペプチドのミリグラム単位で表現される
。好ましくは、細胞培養物において生じる細胞産生能および産物力価の減少は、凝集タン
パク質産物またはミスフォールドタンパク質産物の産生の減少、例えばＨＭＷＡの産生の
減少、によって相殺される。

本明細書で使用される場合、「凝集したタンパク質」なる用語は、非機能性の、又は最
適でない、あるいは望ましくないタンパク質産物を産生するタンパク質集団、すなわち、
高分子量凝集体を意味する。「ミスフォールドしたタンパク質」なる用語は、不適切に折
り重ねられたタンパク質を意味し、しばしば、もはや正常な生物活性、例えば、正常な酵
素活性、を示し得ないタンパク質を意味する。当業者であれば、タンパク質凝集体が、正
しくフォールドされたタンパク質および／またはミスフォールドされたタンパク質のいず
れか、またはその両方を含み得ることを知っているだろう。凝集またはミスフォールドし
たタンパク質は、一般的に、過剰発現細胞培養物、例えば、糖タンパク質などの対象とな
るタンパク質を過剰発現する細胞培養物、において形成される。例えば、凝集体は、フォ
ールドされていないポリペプチド鎖の非特異的な疎水性相互作用によって、あるいはフォ
ールドしている中間体の相互作用によって生じ得る。本発明の一実施形態において、低温
および／または低ｐＨで細胞を増殖させることにより、結果としてタンパク質のミスフォ
ールディング／凝集が少なくとも５０％、好ましくは約６０％減少する。当業者であれば
、タンパク質の凝集／ミスフォールディングを監視するために必要な技術、例えば、疎水
性相互作用ＨＰＬＣ（ＨＩＣ−ＨＰＬＣ）など、を知っているであろう。

「高分子量凝集体」（ＨＭＷＡ）なる用語は、少なくとも２つのタンパク質間の会合か
ら生じる、タンパク質産物の望ましくない副産物を意味する。「高分子量凝集体」は、少
なくとも２つの同一のタンパク質間の会合および／または対象となるタンパク質と細胞培
養物中に存在する他のタンパク質、例えば宿主細胞タンパク質、との間の会合であり得る
。当該会合は、例えば、これに限定されるものではないが、共有結合性架橋、非共有結合
性架橋、二硫化架橋、および／または、非還元性架橋などの任意の方法によって生じ得る
。当業者であれば、タンパク質が多量体の形態（例えば、二量体の形態）において活性で
ある場合、すなわち、２つ以上のポリペプチド鎖がタンパク質活性に必要な場合、「高分
子量凝集体」なる用語は、２つ以上のそのような多量体形態の間の会合を意味する。本発
明の一実施形態において、多量体形態で活性なタンパク質は、レセプター、例えばサイト
カインレセプター（例えば、ｓＩＬ−１３Ｒ））、である。一実施形態において、低温お
よび／または低ｐＨで細胞を増殖させることにより、結果として高分子凝集体が、少なく
とも約１０％の減少し、好ましくは約４０％の減少し、より好ましくは約５０％の減少し
、さらにより好ましくは約８０％以上減少し、あるいは任意の中間値となる。当業者であ
れば、高分子量凝集体の産生を監視するために必要な技術、例えば立体排除高速液体クロ
マトグラフィ（ＳＥＣ−ＨＰＬＣ）、を知っているであろう。

本発明の別の態様において、細胞培養物の温度及び／又はｐＨは、タンパク質グリコシ
ル化、例えばタンパク質シアリル化、を所定のレベルに変えるために使用される。例えば
、細胞培養物のｐＨおよび／または温度を低下させることにより、Ｎ−結合グリコシル化
およびＯ−結合グリコシル化の両方が減少し得、例えばＮ−グリカンシアリル化が減少し
得る。タンパク質グリコシル化（例えば、シアリル化）における変化は、治療用タンパク
質の安定性、酵素活性、循環寿命、および免疫原性に影響を及ぼし得る。当業者であれば
、温度および／またはｐＨを変化させることで、タンパク質グリコシル化の所望の種類お
よびレベルが達成されることを確認するため、グリコシル化（例えば、シアリル化）の程
度を監視し得る。タンパク質産物のタンパク質グリコシル化を監視するために、クロマト
グラフィ技術、例えば、順相クロマトグラフィ（ＮＰＣ：Ｎｏｒｍａｌ Ｐｈａｓｅ Ｃ
ｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）、を使用することができる。

産生期の終了時に、細胞を収穫し、対象となるポリペプチドを収集して精製する。好ま
しくは、産生期の終了時に、対象となるポリペプチドは、ミスフォールディングおよび／
または凝集の減少を示すと同時に、許容可能なグリコシル化パターンを維持している。本
発明の一実施形態において、対象となるポリペプチドは、産生期の終了時において、可溶
性の形態である（例えば、対象となるポリペプチドは、可溶性レセプター、例えば、可溶
性サイトカインレセプターである）。ポリペプチドのそのような可溶性の形態は、馴化培
地から精製することができる。

ポリペプチドの膜結合性形態は、発現細胞から総膜分画を調製し、ＴＲＩＴＯＮ（登録
商標）Ｘ−１００（ＥＭＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）な
どの非イオン性洗浄剤で膜を抽出することにより精製することができる。サイトゾルタン
パク質または核タンパク質は、（機械的力、パールボンブ、超音波処理、洗浄剤により）
宿主細胞を溶解させ、遠心分離で細胞膜分画を除去し、上澄みを残すことによって調製す
ることができる。

当該ポリペプチドは、当業者に既知の他の方法を用いて精製することもできる。例えば
、開示された方法によって製造されたポリペプチドは、市販のタンパク質濃縮フィルター
、例えばＡＭＩＣＯＮ（登録商標）またはＰＥＬＬＩＣＯＮ（登録商標）限外濾過ユニッ
ト（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）、を用いて濃縮することができ
る。濃縮工程後、当該濃縮物を、ゲル濾過媒体などの精製マトリックスに適用することが
できる。あるいは、アニオン交換樹脂（例えば、ＭｏｎｏＱカラム、Ａｍｅｒｓｈａｍ
Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）を用いてもよく、そのような
樹脂は、ペンダント型ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ：ｄｉｅｔｈｙｌａｍｉｎｏｅｔ
ｈｙｌ）基またはポリエチレンイミン（ＰＥＩ：ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｉｍｉｎｅ）基
を有するマトリックスまたは基質を含有している。精製に用いられるマトリックスは、ア
クリルアミド、アガロース、デキストラン、セルロース、またはタンパク質精製において
通常用いられる他の種類のものであってもよい。あるいは、タンパク質の精製に、カチオ
ン交換工程を用いてもよい。好適なカチオン交換体としては、スルホプロピル基またはカ
ルボキシメチル基を含む様々な不溶性マトリックス（例えば、Ｓ−ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ（
登録商標）カラム、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）が挙げら
れる。

さらに、培養上清からのポリペプチドの精製は、親和性樹脂による１つ以上のカラム工
程、例えば、コンカナバリンＡ−アガロース、ＡＦ−ＨＥＰＡＲＩＮ６５０、ヘパリン−
ＴＯＹＯＰＥＡＲＬ（登録商標）、またはシバクロンブルー３ＧＡ ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ
（登録商標）（Ｔｏｓｏｈ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社、Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ、
ＣＡ）；フェニルエーテル、ブチルエーテル、もしくはプロピルエーテルなどの樹脂を使
用する疎水相互作用クロマトグラフィカラム；または標識タンパク質に対する抗体を使用
するイムノアフィニティーカラムなどを含み得る。最終的に、タンパク質をさらに精製す
るために、疎水性ＨＰＬＣ媒体、例えばペンダント型メチル基又は他の脂肪族基を有する
シリカゲル（例えば、Ｎｉ−ＮＴＡカラム）など、を用いた１つ以上のＨＰＬＣ工程を用
いてもよい。あるいは、ポリペプチドを、組み換えにより、精製を容易にする形態におい
て発現させてもよい。例えば、当該ポリペプチドは、タンパク質との融合体、例えば、マ
ルトース結合タンパク質（ＭＢＰ：ｍａｌｔｏｓｅ−ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）
、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）、またはチオレドキシン（ＴＲＸ：
ｔｈｉｏｒｅｄｏｘｉｎ）など、として発現させてもよく、このような融合タンパク質の
発現および精製のためのキットは、それぞれＮｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂｓ社
（Ｂｅｖｅｒｌｙ、ＭＡ）、Ｐｈａｒｍａｃｉａ社（Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）、お
よびＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社（Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）から市販されている。さらに、
小さいエピトープ（例えば、Ｈｉｓ、ｍｙｃ、もしくはＦｌａｇタグ）でタンパク質にタ
グ付けし、続いて選択したエピトープに対する特異的な抗体を用いて同定および精製する
こともできる。共通エピトープに対する抗体は、様々な商業的供給元から入手可能である
。本発明の方法によって製造された対象となるポリペプチド、例えば治療用タンパク質、
を精製するために、上記のいつくかの精製工程、または全ての精製工程の様々な組み合わ
せ、または他の公知の方法との組み合わせを用いることができる。

薬学的組成物
本発明のある特定の実施形態において、本発明の１つ以上の方法に従って製造されたタ
ンパク質は、製薬剤の製造において有用であり得る。本発明の１つ以上の方法に従って製
造されたタンパク質は、対象者に投与してもよいし、あるいは、これに限定されるもので
はないが、非経口（例えば、静脈内）、皮内、皮下、経口、経鼻、気管支、眼、経皮（局
所）、経壁、直腸、および経膣などの経路を含む任意の利用可能な経路による送達のため
に最初に製剤化してもよい。発明の医薬組成物は、通常、薬学的に許容される担体との組
み合わせにおいて、哺乳動物細胞株から発現した精製タンパク質、送達用薬剤（例えば、
上記で記載したようなカチオン性ポリマー、ペプチド分子トランスポーター、界面活性物
質など）を含む。本明細書で使用される場合、「薬学的に許容される担体」なる言葉は、
有効成分（単数または複数）、例えば、医薬品の投与に適合し得る溶媒、分散媒体、コー
ティング剤、抗菌剤および抗真菌剤、等張化剤および吸収遅延化剤など、の生物学的活性
の有効性を妨げない無毒性物質を含む。当該担体の特徴は、投与経路に応じて変わる。さ
らに補足的活性化合物を、当該組成物に組み込むこともできる。

医薬組成物は、その意図された投与経路に適合するように製剤化される。本発明の１つ
以上の方法に従って製造された治療用タンパク質が経口形態で投与される場合、当該医薬
組成物は、錠剤、カプセル剤、粉末、溶液、またはエリキシル剤の形態であろう。錠剤形
態で投与される場合、本発明の医薬組成物は、ゼラチンまたは補助剤などの固体担体を追
加的に含んでいてもよい。当該錠剤、カプセル剤、および粉末は、約５〜９５％の結着剤
、好ましくは約２５〜９０％の結着剤を含む。液体形態で投与される場合、水、石油、動
物性油又は植物性油、例えば、ゴマ油、ピーナッツ油（人口におけるアレルギー反応の発
生頻度を考慮して）、鉱油、または大豆油、またはゴマ油など、あるいは合成油、などの
液体の担体を添加してもよい。液体形態の医薬組成物は、さらに、生理食塩水、デキスト
ロースもしくは他の糖類の溶液、またはグリコール、例えばエチレングリコール、プロピ
レングリコール、もしくはポリエチレングリコールなど、を含んでいてもよい。液体形態
で投与される場合、医薬組成物は、約０．５〜９０重量％の結着剤、好ましくは約１〜５
０重量％の結着剤を含む。

本発明の１つ以上の方法に従って製造された治療用タンパク質が、静脈内注射、皮膚注
射、又は皮下注射によって投与される場合、当該治療用タンパク質は、発熱物質を含まな
い非経口的に許容される水溶液の形態であろう。ｐＨ、等張性、安定性などに対する相応
の注意を要する、そのような非経口的に許容されるタンパク質溶液の調製は、当業者の技
術範囲内である。静脈内注射、皮膚注射、もしくは皮下注射のための好ましい医薬組成物
は、治療用タンパク質に加えて、等張ビヒクル、例えば、塩化ナトリウム注射液、リンガ
ー注射液、デキストロース注射液、デキストロースおよび塩化ナトリウム注射液、乳酸リ
ンガー注射液、あるいは当該技術分野において既知の他のビヒクルなど、を含有すべきで
ある。さらに、本発明の医薬組成物は、安定化剤、保存剤、緩衝液、酸化防止剤、または
当業者に既知の他の添加剤を含んでいてもよい。

本発明の１つ以上の方法で製造された治療用タンパク質を含む医薬組成物を追加的に処
方することは、当業者に既知であろう。当業者であれば、本発明に従って製造されたタン
パク質に適した単位投与配合組成についても分かるであろう。

これにより、本明細書中において引用した全ての参照、特許、および特許出願の全内容
は、参照により本明細書に援用されるものとする。

本発明の理解を助けるために、下記実施例を詳細に説明するが、いかなる意味において
も、本発明の範囲を限定することを意図するものでなくかつ限定するものとして解釈すべ
きではない。実施例は、慣用法、例えばクローニング、トランスフェクション、および細
胞株においてタンパク質を過剰発現させるための方法の基本的側面に関する詳細な記述を
含んでいない。そのような方法は、当業者に周知である。

（実施例１）
ＴＮＦＲ−Ｆｃタンパク質の製造
実施例１．１：組み換え型ＣＨＯ細胞の細胞培養物性能およびＴＮＦＲ−Ｆｃ融合タン
パク質の産生品質に対する低温の効果
実施例１．１．１：材料および方法
組み換え型糖タンパク質ＴＮＦＲ−Ｆｃを過剰発現するチャイニーズハムスター卵巣（
ＣＨＯ）細胞は、同一の濃度および条件で、４つの別々のベンチスケールのバイオリアク
ターに３７．０℃で接種した。細胞は、流加培養において１日増殖させ、その後、３０．
０℃、２９．０℃、２８．０℃、または２７．０℃に温度シフトさせた。培養物の初期ｐ
Ｈ設定値下限は、７．００であった。培養物から細胞試料を毎日採取し、細胞培養物の様
々な状態、例えば、統合生存細胞数、細胞生存率、残存グルコースプロフィール、残存グ
ルタミンプロフィール、ラクテートおよびアンモニアの濃度、累加平均細胞産生能（Ｑｐ
：Ｃｕｍｕｌａｔｉｖｅ ａｖｅｒａｇｅ ｃｅｌｌ ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ）、産
物力価、ミスフォールド／凝集した産物のレベル、高分子量凝集体のレベル、シアリル化
のレベル、およびｐＨなど、を測定した。

統合生存細胞数（ＩＶＣ：Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ｖｉａｂｌｅ ｃｅｌｌ）は、細胞
密度検査（例えば、ＣＥＤＥＸ（登録商標）、Ｉｎｎｏｖａｔｉｓ社、Ｍａｌｖｅｒｎ、
ＰＡ）を使用して細胞密度を測定することよって計算し、平均収穫日ＩＶＣに正規化した
。平均収穫日ＩＶＣは、試験した全ての実験条件に対して収穫日（例えば、１０日）統合
生存細胞密度の算術平均を計算することによって決定した。次いで、全ての個々のＩＶＣ
値を、平均収穫ＩＶＣに合わせて調整し、正規化した値を得た。

細胞生存率は、トリパンブルーで染色し細胞密度試験（例えば、ＣＥＤＥＸ（登録商標
）、Ｉｎｎｏｖａｔｉｓ社、Ｍａｌｖｅｒｎ、ＰＡ）を用いて測定した。さらに、細胞培
養物における残存グルコースプロフィールおよび残存グルタミンプロフィールは、Ｂｉｏ
Ｐｒｏｆｉｌｅ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ａｎａｌｙｚｅｒ（Ｎｏｖａ Ｂｉｏｍｅｄｉｃ
ａｌ社、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を使用して測定した。老廃物、ラクテート、およびアン
モニアの濃度は、ＢｉｏＰｒｏｆｉｌｅ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ａｎａｌｙｚｅｒ（Ｎｏ
ｖａ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ社、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を使用して測定した。

累加平均細胞産生能（Ｑｐ）および産物力価は、タンパク質Ａ ＨＰＬＣを使用して測
定し、平均収穫日累加平均Ｑｐおよび平均収穫日力価に正規化した。平均収穫日力価は、
試験した全ての実験条件に対して収穫日（例えば、１０日）力価の算術平均を計算するこ
とによって決定した。次いで、全ての個々の力価値を平均収穫日力価に合わせて調整し、
正規化した値を得た。平均収穫日累加平均Ｑｐは、試験した全ての実験条件に対して収穫
日累加平均Ｑｐの算術平均を計算することによって決定した。次いで、全ての個々の値を
平均収穫日力価に合わせて調整し、正規化した値を得た。

ミスフォールドした産物／凝集した産物のレベルは、ＨＩＣ−ＨＰＬＣを使用して測定
し、高分子量凝集体のレベルはＳＥＣ−ＨＰＬＣを使用して測定した。総グリカンシアリ
ル化およびＮ−結合グリカンシアリル化のレベルは、２−アミノベンズアミド−（２−Ａ
Ｂ）−標識タンパク質グリコ型を順相クロマトグラフィ（ＮＰＣ：Ｎｏｒｍａｌ Ｐｈａ
ｓｅ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）にかけることよって測定した。総シアリル化（Ｎ
−結合およびＯ−結合）の量は、参照試料、すなわち、既知の好ましいシアリル化パター
ンを有するＴＮＦＲ−Ｆｃアリコート、の総シアリル化の量に対する割合として定義した
。細胞培養物のｐＨは、血液ガス分析装置（Ｂａｙｅｒ Ｒａｐｉｄｌａｂ ２４８ ｐ
Ｈ／血液ガス分析装置（Ｂａｙｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ ＬＬＣ社、Ｅａｓｔ Ｗａ
ｌｐｏｌｅ、ＭＡ））によるオフライン計測により決定した。

実施例１．１．２：結果
低温での細胞の増殖は、ＩＶＣ数に対して最小の効果を有していた。特に、作業温度が
低いほどで、最終的なＩＶＣ数も少なかった。しかしながら、細胞培養温度を２７℃まで
下げても影響は小さく、すなわち、ＩＶＣ数において約２０％の減少が観察されただけで
あった（図１Ａ）。細胞生存率は、温度の低下にはあまり影響を受けず、すなわち、最も
低い温度条件（すなわち、２７℃）で、収穫日生存率は５％の低下であった（図１Ｂ）。

その上、低作業温度では、残存グルコースプロフィールが高く、このことは、細胞培養
物のグルコース消費がより低いことを示している（図２Ａ）。しかしながら、グルタミン
プロフィールは、低温でもあまり変わらなかった（図２Ｂ）。

場合によっては、細胞培養の晩期において、乳酸およびアンモニアも細胞培養によって
消費される場合がある。乳酸およびアンモニアの産生の中断あるいは乳酸およびアンモニ
アの消費は、細胞生存率、細胞産生能を高め、並びにポリペプチド産物力価を高める効果
を有する。低温での細胞の増殖は、流加培養の後半においてラクテートの純消費を変える
効果を有していた（図３Ａ）。低温では、アンモニアの産生も高くなった（図３Ｂ）。低
温では、細胞特異的産生能が低く（下側のＱｐ）（図４Ａ）、並びに産物力価も低かった
（図４Ｂ）。産物力価が低いのは、細胞特異的産生能及び統合生存細胞数が低いためであ
る。しかしながら、産物力価及び細胞産生能が低いことは、ミスフォールドした産物およ
び凝集した産物の割合が著しく低いことで相殺された（図５Ａ）。その上、細胞培養の温
度を下げることで、細胞培養物中の高分子量凝集体の割合が著しく減少した（図５Ｂ）。
したがって、温度を下げることによって、結果としてＴＮＦＲ−Ｆｃタンパク質産生が改
善された。

この温度における低下は、総産物シアリル化（Ｎ−結合シアリル化およびＯ−結合シア
リル化の両方）と相関していた（図６Ａ）。実際のところ、細胞培養物温度を下げること
とシアリル化されたＮ−結合グリカンの割合の減少との間には直接の因果関係が存在し（
図６Ｂ）、産生温度を選択して、ＨＭＷＡおよびタンパク質ミスフォールディングが減少
する有益効果と、グリコシル化が減少するという不利益効果とのバランスを取らなければ
ならないことを示している。例えば、２９．５℃の低温で細胞を増殖させることにより、
ミスフォールドしたＴＮＦＲ−Ｆｃおよび凝集したＴＮＦＲ−Ｆｃの濃度が著しく減少す
るが、一方でＴＮＦＲ−Ｆｃグリコシル化に対しては最小の効果を有していた。

異なる温度で増殖させた細胞培養の間におけるラクテートの純消費の違いは、収穫の時
点での細胞培養のｐＨに違いを生じさせた（図７）。これは、ラクテート（乳酸）の純消
費が大きいほど、酸が環境から除去されるために、培養物ｐＨも上昇するという事実によ
るものである。

実施例１．２：組み換え型ＣＨＯ細胞の細胞培養性能およびＴＮＦＲ−Ｆｃ融合タンパ
ク質の産物品質に関する低ｐＨの効果
実施例１．２．１：材料および方法
組み換え型糖タンパク質ＴＮＦＲ−Ｆｃを過剰発現するＣＨＯ細胞を、同じ濃度で３７
．０℃にて、それぞれ７．２０、７．１０、７．００、６．９０、または６．８０のｐＨ
設定値で接種した。炭酸ナトリウム塩基を加えることにより、培養物が設定値ｐＨより下
に逸脱するのを防いだ。設定値ｐＨより上に対しては、ｐＨ制御は行わなかった。バイオ
リアクターは、１日（接種後１日、すなわち、実験開始後１日）で３０．０℃に温度シフ
トした。細胞培養の様々な条件は、実施例１．１．１で記載されているのと同様に測定し
た。

実施例１．２．２：結果
７．００から０．２ｐＨずつ下げたｐＨ設定値で細胞を増殖させることにより、ＩＶＣ
がわずかに減少し、特にｐＨ６．８０での細胞増殖は、ｐＨ７．００での細胞増殖と比較
してＩＶＣにおいて約１５％減少していた（図８Ａ）。さらに、ｐＨ７．２０での細胞増
殖では、細胞生存率が低下した（図８Ｂ）。

さらに、作業ｐＨ設定値が低いほど、グルコースの消費も低かった（図９Ａ）。グルタ
ミンプロフィールは、６．８０〜７．１０のｐＨ設定値で細胞を増殖させてもあまり変化
はなかった。

当然のことながら、作業ｐＨ設定値が高いほど、ラクテートの産生も高かった（図１０
Ａ）。ｐＨ６．８０の設定値では、流加培養の後半においてラクテートの純消費が生じな
かった。作業ｐＨ設定値が低いほど、アンモニアの産生も高かった（図１０Ｂ）。

ｐＨを維持するために酸を用いず塩基だけを添加したので、実験の後半におけるラクテ
ートの純消費の違いから、作業ｐＨ設定値からの培養物ｐＨのずれが生じた（図１１Ａ）
。ｐＨ設定値、ラクテートプロフィール、および滴定剤添加における違いの結果として、
ｐＨ条件間でオスモル濃度も異なっていた（図１１Ｂ）。

７．００から０．２ｐＨずつ下げたｐＨ設定値で培養物を増殖させることにより、細胞
特異的産生能（すなわち、Ｑｐ）はわずかに低下した（図１２Ａ）。６．８０または７．
２０のｐＨ設定値を用いた場合では、細胞特異的産生能と統合生存細胞数の両方が低下し
たために、産物力価が低下した（図１２Ｂ）。

しかしながら、低い作業ｐＨ設定値では、産物のミスフォールディングおよび凝集が減
少した（図１３Ａ）。さらに、低いｐＨ設定値において、高分子量凝集体の割合における
著しい減少が観察された（図１３Ｂ）。

作業ｐＨ設定値を低くすることで、総シアリル化（Ｎ−およびＯ−結合グリカンの両方
）が低下し（図１４Ａ）、同様にＮ−結合グリカンシアリル化も低下した（図１４Ｂ）。
総シアリル化（Ｎ−およびＯ−結合）の量は、参照試料の総シアリル化の量に対する割合
として定義されるため、１００％を下回る値は、総シアリル化の減少を表し、１００％を
超える値は、総シアリル化の増加を表している。グリコシル化のパターンは、糖タンパク
質のグリカンのプロフィールとして表すことができる（図１５）。低ｐＨで細胞を増殖さ
せることにより、グリコシル化プロフィール全体が著しく変わった（図１６）。低ｐＨで
は、新しいグリコ型は検出されないが、存在するグリコ型の比は著しく変わった。すなわ
ち、低ｐＨで細胞を増殖させることにより、ジ−シアリル化グリコ型とモノ−シアリル化
グリコ型の複合物が減少した。タンパク質のグリコシル化に対する低ｐＨの潜在的な好ま
しくない効果のために、タンパク質グリコシル化に対する有害な効果と、ミスフォールド
タンパク質および／または凝集タンパク質の減少に対する有益な効果とのバランスが取れ
るように、細胞培養のｐＨを選択しなければならない。例えば、低ｐＨ６．９５で細胞を
増殖させることにより、ミスフォールドおよび凝集したＴＮＦＲ−Ｆｃタンパク質の割合
を著しく減少させると同時に、ＴＮＦＲ−Ｆｃのグリコシル化に対する影響が最小になる
。

実施例１．３：議論
これらの研究は、２７．０〜３０．０℃の温度範囲内、または６．８０〜７．２０のｐ
Ｈ設定値範囲内において、細胞培養物の細胞増殖および特異的産生能はかなり影響される
ことを示している。ただし、温度をわずか１〜２℃およびｐＨ設定値をわずか０．１〜０
．２変えても細胞増殖および特異的産生能にはあまり影響しなかったが、一方でタンパク
質のフォールディングおよびタンパク質の凝集においては著しい（好ましい）違いが観察
された。したがって、細胞の増殖、生存率、または産生能にはあまり影響を及ぼさない細
胞培養条件における小さな違いは、例えば、タンパク質のフォールディング及びタンパク
質の凝集を減少させたり、又はグリコシル化に影響を及ぼしたりするなど、産生品質を著
しく変化させ得る。

（実施例２）
ｓＩＬ−１３Ｒ産生に対する温度の効果および新規のｓＩＬ−１３Ｒ産生細胞株の評価
実施例２．１：材料および方法
組み換え型糖タンパク質ｓＩＬ−１３Ｒを過剰発現する安定にトランスフェクトされた
チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞を、Ａｐｐｌｉｋｏｎバイオリアクターにお
いて、消泡剤（Ｄｏｗ Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ社、Ｍｉｄｌａｎｄ、
ＭＩ）を用いて、３×１０^５細胞／ｍＬで接種培地に播種した。必要に応じて、さらなる
消泡剤を加えた。濃縮した栄養培地を、供給培地として使用した。ｐＨ設定値下限は６．
８０であった。ｄＯ_２設定値は、７％ＣＯ_２／９３％空気のスパージガスを用いて２３％
であった。一方、アジテーションは２００ｒｐｍであった。バイオリアクターは、５日目
で３７．０℃に温度シフトした。産生期の温度は、３７．０℃、３３．０℃、３２．０℃
、２８．０℃、又は室温（ＲＴ（ｒｏｏｍ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ）：約２４．０℃）
のいずれかとした。実験条件のための供給計画をまとめて表１に示す。供給液量は、バイ
オリアクター中の培養液量の割合として一覧してある。細胞培養に対する温度シフトは、
約６×１０^６細胞／ｍＬで行った。

実施例２．２：結果
温度シフト後に達成された生存細胞密度は、室温（約６×１０^６細胞／ｍＬ）および２
９．０℃（約７×１０^６細胞／ｍＬ）の方が、より高い温度での生存細胞密度（約８×１
０^６細胞／ｍＬ）よりもわずかに低くかった（図１７Ａ）。同様に、温度シフト後に達成
された総細胞密度は、室温（約６．５×１０^６細胞／ｍＬ）および２９．０℃（約７．５
×１０^６細胞／ｍＬ）の方が、より高い温度での総細胞密度（約８〜９×１０^６細胞／ｍ
Ｌ）よりもわずかに低かった（図１７Ｂ）。生存率は、温度が低いほど、流加培養全体を
通じてより良好に維持された（図１７Ｃ）。生存率における衰退速度は、温度で変わった
。すなわち、室温及び２９．０℃の生存率プロフィールは、培養物を３１．０℃、３２．
０℃、３３．０℃、および３７．０℃に維持した場合より著しく高かった（図１７Ｃ）。

１８日間の流加培養の終了時に、最も高い力価（ｓＩＬ−１３Ｒ二量体およびＨＭＷＡ
の力価の組み合わせ）は、３１．０℃での培養によって達成され、以下、３２．０℃での
培養（１８８ｍｇ／Ｌ）、２９．０℃での培養（１７８ｍｇ／Ｌ）、および３３．０℃で
の培養（１５１ｍｇ／Ｌ）と続いた（図１８）。室温での培養および３７．０℃での培養
は、非常に低い力価であった。ｓＩＬ−１３Ｒ産生細胞株の細胞特異的産生能、または１
日の特異的ｓＩＬ−１３Ｒ産生率（Ｑｐ）は、室温および３７．０℃において著しく減少
した（図１９Ａ）。さらに、累加平均特異的産生能、または累加平均Ｑｐも、３７．０℃
および室温において低かった（図１９Ｂ）。興味深いことに、特異的産生能では、培養生
存率の著しい減少（データはしめしていない）に一致して、３７．０℃、３３．０℃、３
２．０℃、および３１．０℃での培養において、終了に向かって著しい増加が見られた。

特異的グルコース消費（Ｑｇｌｃ）は、温度の低下により減少した（図２０）。特異的
グルタミン消費（Ｑｇｌｎ）も、温度の低下により減少しているように見える（図２１）
。しかしながら、特異的グルタミン消費に関するデータでは、温度を上げることでより大
きく生じるであろう培地におけるグルタミン分解を説明できないということは注目すべき
である。したがって、特異的グルタミン消費に対する温度の影響は歪められ得る。室温、
２９．０℃、３１．０℃、および３２．０℃での培養に対するラクテート濃度プロフィー
ルは、ラクテート濃度が温度シフト日またはその付近でピークに達するまでは同じであり
、その後、１８日までに０．７〜２．０ｇ／Ｌ減少した（図２２）。３３．０℃および３
７．０℃の培養に対しては、ラクテートプロフィールは、増殖期では他の培養と同じであ
るが、産生期では著しく異なっている。３３．０℃での培養に対しては、ラクテート濃度
は、温度シフトの後でも減少せず、基本的に一定のままであった。３７．０℃での培養で
は、ラクテートが流加培養の期間全体を通して増加した。

アンモニア濃度は、産生期中において、温度に従って変化した（図２３）。２９．０℃
の培養では、アンモニア濃度は、温度シフト日またはその付近でピークに達し、流加培養
の中期において減少し、流加培養の後期において増加した。２９．０℃より上の温度では
、流加培養の後期におけるアンモニア濃度の増加が、より早く、より大きく生じた。３７
．０℃の培養では、アンモニア濃度は流加培養中一貫して増加した。室温の培養では、ア
ンモニア濃度は、温度シフト後、ほぼ一定のままであった。

これら実行中のバイオリアクターからの培養上清の試料は、バッチ結合性タンパク質Ａ
の溶離液のサイズ排除クロマトグラフィ（ＳＥＣ：ｓｉｚｅ−ｅｘｃｌｕｓｉｏｎ ｃｈ
ｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）によって、高分子量凝集体（ＨＭＷＡ）を分析した。細胞株
の結果から明らかな傾向は、温度を上げると、培養上清中に存在するＨＭＷＡの割合が相
対的に増加するということであった（図２４および図２５）。したがって、低温で細胞を
増殖させることにより、結果としてｓＩＬ−１３Ｒ産生凝集体が減少した。

ｓＩＬ−１３Ｒ二量体の割合における減少は、ＨＭＷＡの割合の増加に相関していた（
図２６Ａおよび２６Ｂ）。室温での培養では、他の培養より％ＨＭＷＡが低く（図２６Ｂ
）、同様に二量体形成の割合も高かった（図２６Ａ）。室温での培養および３１．０℃で
の培養では、同様の二量体のみの力価が得られ、一方で、２９．０℃での培養では、最も
高い二量体だけの力価が得られた（図２７）。

ＳＥＣ分析からの結論を実証するために、ウエスタンブロットを使用して馴化培地試料
を分析した。二量体に対して、ＨＭＷＡ種として存在するｓＩＬ−１３Ｒの量における質
的な違いを調べた。ウエスタンブロットは、馴化培地中に存在するＨＭＷＡ凝集体の量が
、存在する二量体の量と比較して、温度上昇により増加することを実証している（データ
は示していない）。

これらの実験は、ｓＩＬ−１３Ｒ二量体の容量産生能に関して、生存率および生存細胞
密度、特異的産生能、並びにＨＭＷＡ形成の温度依存性変数間の相互作用の重要性を示す
。３１．０℃での培養において、最も高い力価（ＨＭＷＡおよび二量体を含む測定）を達
成したが、二量体だけに関して測定した場合、低温（例えば、２９．０℃）での培養では
、それに匹敵するか、もしくはより向上した体積産生能が得られ得る。

Claims (10)

1. 細胞培養物における改善されたタンパク質製造方法であって、
   （ａ）２７．０℃〜３０．０℃未満の範囲の温度で細胞を増殖させ、ここで該製造されるタンパク質のタンパク質グリコシル化のレベルを温度を２７．０℃〜３０．０℃未満の範囲で上昇させることにより所定のレベルに増大させることまたは温度を２７．０℃〜３０．０℃未満の範囲で低下させることにより所定のレベルに低下させること、
   および、
   （ｂ）６．８０〜７．００未満の範囲のｐＨで細胞を増殖させ、ここで該製造されるタンパク質のタンパク質グリコシル化のレベルをｐＨを６．８０〜７．００未満の範囲で上昇させることにより所定のレベルに増大させることまたはｐＨを６．８０〜７．００未満の範囲で低下させることにより所定のレベルに低下させること、
   を含み、ここで該製造されるタンパク質がＴＮＦＲ−Ｆｃ又はｓＩＬ−１３Ｒである、方法。
2. 前記タンパク質グリコシル化がＮ−グリカンシアリル化である、請求項１に記載の方法。
3. 前記細胞培養物が大規模細胞培養物である、請求項１に記載の方法。
4. 前記細胞培養物が流加培養細胞培養物である、請求項１に記載の方法。
5. 前記細胞培養物が哺乳動物細胞培養物である、請求項１に記載の方法。
6. 前記細胞培養物がＣＨＯ細胞培養物である、請求項５に記載の方法。
7. 前記製造されるタンパク質が治療用タンパク質である、請求項１に記載の方法。
8. 請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法であって、前記細胞培養物から前記タンパク質を単離する工程をさらに含む、方法。
9. 前記タンパク質がさらに、処方のために精製または処理される、請求項８に記載の方法。
10. 前記タンパク質が医薬組成物中に処方される、請求項９に記載の方法。