JP7213180B2 - 免疫コンジュゲートを製造するための方法 - Google Patents
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Description
癌は、世界で最も多い死亡原因のうちの1つである。2012年には、820万件の死亡が記録され、大部分は肺癌、肝臓癌、胃癌、結腸直腸癌、および乳癌に起因した。保存的癌療法は、次の治療、すなわち外科手術、放射線療法、および化学療法のうちの1つまたは組み合わせからなる(WHO 2014)。癌治療の別の実行可能な手段は、癌に対する身体自体の免疫応答を促進する免疫療法である。サイトカインは、免疫系の調節に関与するシグナル伝達分子である。癌療法で使用される場合、サイトカインは、抗腫瘍作用を有しており、かついくつかのタイプの腫瘍の免疫原性を高めることができる免疫調節剤として作用することができる。この治療領域において、インターロイキン-2(IL-2)は、ヒト癌に対して有効である最初の薬物であった。
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
細胞培養培地の第1の温度を第2の温度に下げ、かつ細胞培養培地の第1のpHを第2のpHに高める段階、
細胞または細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって免疫コンジュゲートを製造する段階。
[本発明1001]
関心対象の免疫コンジュゲートをコードする1つまたは複数の核酸を含む哺乳動物細胞を細胞培養培地中で培養することによって、製品に関係する不純物および工程に関係する不純物を減少させた免疫コンジュゲートを製造するための方法であって、
ここで該1つまたは複数の核酸が細胞培養条件下で発現され、
該方法が、
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
該細胞培養培地の該第1の温度を第2の温度に下げ、かつ該細胞培養培地の該第1のpHを第2のpHに高める段階、
該細胞または該細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって該免疫コンジュゲートを製造する段階
を含む、方法。
[本発明1002]
1つまたは複数の精製段階により免疫コンジュゲートを精製する段階をさらに含む、本発明1001の方法。
[本発明1003]
第2の温度への低下および第2のpHへの上昇が、13~14日の合計培養期間の2~9日目である、本発明1001または1002の方法。
[本発明1004]
第2の温度への低下および第2のpHへの上昇が、ほぼ同じ時点である、本発明1001~1003のいずれかの方法。
[本発明1005]
第1の温度が37℃±0.5℃であり、第2の温度が28℃~34℃の範囲内である、本発明1001~1004のいずれかの方法。
[本発明1006]
第1の温度が37℃±0.5℃であり、29℃±0.5℃の第2の温度に下げられる、本発明1001~1005のいずれかの方法。
[本発明1007]
第2のpHが7.25またはそれより高い、本発明1001~1006のいずれかの方法。
[本発明1008]
第1のpH値がpH7±0.05pH単位であり、第1のpH値が0.25~0.4pH単位高められて第2のpHとされる、本発明1001~1007のいずれかの方法。
[本発明1009]
播種細胞密度が、約600000(6×10 5 )~約1000000(1×10 6 )細胞/mlである、本発明1001~1008のいずれかの方法。
[本発明1010]
細胞培養培地の重量オスモル濃度が、350mOsmol/kg±15mOsmol/kg~800mOsmol/kg±15mOsmol/kgである、本発明1001~1009のいずれかの方法。
[本発明1011]
免疫コンジュゲートが、CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲート、FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲート、もしくはIgG-IL-2免疫コンジュゲート、またはFAPを標的とする4-1-BBL免疫コンジュゲートである、本発明1001~1010のいずれかの方法。
[本発明1012]
細胞培養がフェドバッチ細胞培養である、本発明1001~1010のいずれかの方法。
[本発明1013]
哺乳動物細胞がCHO細胞である、本発明1001~1012のいずれかの方法。
[本発明1014]
本発明1001~1013のいずれかの方法によって得ることができる、免疫コンジュゲート、ならびに低レベルの断片、凝集体、および宿主細胞タンパク質
を含む、組成物。
[本発明1015]
免疫コンジュゲートが、CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲート、FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲート、もしくはIgG-IL-2免疫コンジュゲート、またはFAPを標的とする4-1-BBL免疫コンジュゲートである、本発明1014の組成物。
用語
本明細書において使用される場合、用語「免疫コンジュゲート」は、少なくとも1つのエフェクター部分および少なくとも1つの免疫グロブリン部分を含む融合ポリペプチド分子を意味する。特定の態様において、免疫コンジュゲートは、1つのエフェクター部分および1つの免疫グロブリン部分を含む。特定の態様において、免疫コンジュゲートは、1つのエフェクター部分および1つのIgG免疫グロブリン部分を含む。特定の態様において、免疫コンジュゲートは、2つのエフェクター部分および1つの免疫グロブリン部分を含む。本明細書において言及される免疫コンジュゲートは、融合タンパク質である、すなわち、免疫コンジュゲートの構成要素は、直接的または1つもしくは複数のリンカーペプチドを介して、ペプチド結合によって互いに連結されている。本発明による具体的な免疫コンジュゲートは、1つまたは複数のリンカー配列によって結合された、少なくとも1つのエフェクター部分および1つの免疫グロブリン部分から本質的になる。
・FcγRI(CD64)は、高い親和性で単量体IgGに結合し、マクロファージ、単球、好中球、および好酸球において発現されている。IgGのFc領域中のアミノ酸残基E233~G236、P238、D265、N297、A327、およびP329(KabatのEU指標に基づく番号付与)のうちの少なくとも1つの改変により、FcγRIへの結合が減少する。IgG2残基の233~236位をIgG1およびIgG4中に入れて置き換えると、FcγRIへの結合が103分の1に減少し、抗体感作赤血球に対するヒト単球応答がなくなった(Armour, K.L., et al., Eur. J. Immunol. 29 (1999) 2613-2624)。
・FcγRII(CD32)は、複合IgGに中度~低度の親和性で結合し、広範に発現されている。この受容体は、2つのサブタイプ、すなわちFcγRIIAおよびFcγRIIBに分けることができる。FcγRIIAは、死滅に関与している多くの細胞(例えば、マクロファージ、単球、好中球)の表面に存在しており、死滅プロセスを活性化することができるようである。FcγRIIBは、阻害プロセスにおいて役割を果たしていると思われ、B細胞、マクロファージの表面、ならびに肥満細胞および好酸球の表面に存在している。B細胞において、FcγRIIBは、それ以上の免疫グロブリン産生、および例えばIgEクラスへのアイソタイプスイッチを抑制する働きをすると思われる。マクロファージにおいて、FcγRIIBは、FcγRIIAによって媒介される食作用を阻害するように作用する。好酸球および肥満細胞において、B型は、別々の受容体へのIgE結合を介して、これらの細胞の活性化を抑制するのを助け得る。例えば、アミノ酸残基E233~G236、P238、D265、N297、A327、P329、D270、Q295、A327、R292、およびK414(KabatのEU指標に基づく番号付与)のうちの少なくとも1つに変異を有しているIgG Fc領域を含む抗体について、FcγRIIAに対する結合が減少していることが判明している。
・FcγRIII(CD16)は、IgGに中度~低度の親和性で結合し、2つのタイプとして存在している。FcγRIIIAは、NK細胞、マクロファージ、好酸球、ならびに一部の単球およびT細胞の表面に存在し、ADCCを媒介する。FcγRIIIBは、好中球の表面で高度に発現されている。例えば、アミノ酸残基E233~G236、P238、D265、N297、A327、P329、D270、Q295、A327、S239、E269、E293、Y296、V303、A327、K338、およびD376(KabatのEU指標に基づく番号付与)のうちの少なくとも1つに変異を有しているIgG Fc領域を含む抗体について、FcγRIIIAへの結合が減少していることが判明している。
(a)アミノ酸残基26~32(L1)、50~52(L2)、91~96(L3)、26~32(H1)、53~55(H2)、および96~101(H3)に存在する超可変ループ(Chothia, C. and Lesk, A.M., J. Mol. Biol. 196 (1987) 901-917);
(b)アミノ酸残基24~34(L1)、50~56(L2)、89~97(L3)、31~35b(H1)、50~65(H2)、および95~102(H3)に存在するCDR(Kabat, E.A. et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed. Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991), NIH Publication 91-3242.);
(c)アミノ酸残基27c~36(L1)、46~55(L2)、89~96(L3)、30~35b(H1)、47~58(H2)、および93~101(H3)に存在する抗原接触部分(MacCallum et al. J. Mol. Biol. 262: 732-745 (1996));ならびに
(d)アミノ酸残基46~56(L2)、47~56(L2)、48~56(L2)、49~56(L2)、26~35(H1)、26~35b(H1)、49~65(H2)、93~102(H3)、および94~102(H3)を含む、(a)、(b)、および/または(c)の組み合わせ
が含まれる。
本出願内で使用される用語「アフィニティークロマトグラフィー」は、「アフィニティークロマトグラフィー材料」を使用するクロマトグラフィー方法を意味する。アフィニティークロマトグラフィーでは、クロマトグラフィー材料のクロマトグラフィー官能基に対する静電的相互作用、疎水結合、および/または水素結合の形成に応じて変わる生物活性または化学構造に基づいて、抗体が分離される。特異的に結合した抗体をアフィニティークロマトグラフィー材料から回収するには、競合リガンドを添加してもよく、または緩衝液のpH値、極性、またはイオン強度などのクロマトグラフィー条件を変更してもよい。例示的な「アフィニティークロマトグラフィー材料」は、Ni(II)-NTAもしくはCu(II)-NTAなどの金属キレートクロマトグラフィー材料、またはそれに共有結合的に連結されたプロテインAもしくはプロテインGを含むクロマトグラフィー材料のような抗体アフィニティークロマトグラフィー材料、またはそれに共有結合された酵素基質類似体、酵素補因子、もしくは酵素阻害剤をクロマトグラフィー官能基として含むクロマトグラフィー材料のような酵素結合アフィニティークロマトグラフィー材料、またはそれに共有結合的に連結された多糖類、細胞表面受容体、糖タンパク質、もしくは完全な細胞をクロマトグラフィー官能基として含むクロマトグラフィー材料のようなレクチン結合クロマトグラフィー材料である。
本明細書において使用される「バイオマス」とは、培地中の培養細胞の量または重量を意味する。バイオマスは、生細胞密度、総細胞密度、(生細胞密度および総細胞密度についての)細胞時間積分、(生細胞密度および総細胞密度についての)細胞容積時間積分、血中血球容積、乾燥重量、または湿重量を明らかにすることにより、直接的にまたは間接的に測定され得る。
免疫コンジュゲートをコードする核酸を内に含む細胞を培養する特定の方法によって免疫コンジュゲートを製造するための方法が、本明細書において報告される。
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
細胞培養培地の第1の温度を第2の温度に下げ、かつ細胞培養培地の第1のpHを第2のpHに高める段階、
細胞または細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって免疫コンジュゲートを製造する段階。
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
細胞培養培地の第1の温度を第2の温度に下げ、かつ細胞培養培地の第1のpHを第2のpHに高める段階、
細胞または細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって免疫コンジュゲートを製造する段階。
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
細胞培養培地の第1の温度を第2の温度に下げ、かつ細胞培養培地の第1のpHを第2のpHに高める段階、
細胞または細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって免疫コンジュゲートを製造する段階。
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
細胞培養培地の第1の温度を第2の温度に下げ、かつ細胞培養培地の第1のpHを第2のpHに高める段階、
細胞または細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって免疫コンジュゲートを製造する段階。
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中で哺乳動物細胞を培養する段階、
細胞培養培地の第1の温度を第2の温度に下げ、かつ細胞培養培地の第1のpHを第2のpHに高める段階、
細胞または細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって免疫コンジュゲートを製造する段階。
SEQ ID NO: 01 CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる抗CEA IgGの可変重鎖ドメインVH
SEQ ID NO: 02 CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる抗CEA IgGの可変軽鎖ドメインVL
SEQ ID NO: 03 CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲートおよびFAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれるインターロイキン2変異体(IL-2)
SEQ ID NO: 04 CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる、IL-2を伴う全重鎖(ノブ)
SEQ ID NO: 05 CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる全重鎖(ホール)
SEQ ID NO: 06 CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる全軽鎖
SEQ ID NO: 07 FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる抗FAP IgGの可変重鎖ドメインVH
SEQ ID NO: 08 FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる抗FAP IgGの可変軽鎖ドメインVL
SEQ ID NO: 09 FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる、IL-2を伴う全重鎖(ノブ)
SEQ ID NO: 10 FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる全重鎖(ホール)
SEQ ID NO: 11 FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲートに含まれる全軽鎖
SEQ ID NO: 12 IgG-IL-2免疫コンジュゲートに含まれる非標的化IgGの可変重鎖ドメインVH
SEQ ID NO: 13 IgG-IL-2免疫コンジュゲートに含まれる非標的化IgGの可変軽鎖ドメインVL
SEQ ID NO: 14 IgG-IL-2免疫コンジュゲートに含まれるインターロイキン2変異体(IL-2)
SEQ ID NO: 15 IgG-IL-2免疫コンジュゲートに含まれる、IL-2を伴う全重鎖
SEQ ID NO: 16 IgG-IL-2免疫コンジュゲートに含まれる全軽鎖
一般的な方法および材料
細胞株
この研究においては、トランスフェクトしたCHO(Chinese hamster ovary)K1細胞株を使用した。
WO 2012/146628もしくはSEQ ID NO: 01~SEQ ID NO: 06に記載されているCEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲート(IL-2にコンジュゲートされた抗CEA抗体);またはWO 2012/107417もしくはSEQ ID NO: 07~SEQ ID NO: 11 およびSEQ ID NO: 03に記載されているFAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲート;またはWO 2015/118016もしくはSEQ ID NO: 12~SEQ ID NO: 16に報告されている非標的化IgG-IL-2免疫コンジュゲート;またはWO 2016/075278に記載されているFAPを標的とする4-1-BBL免疫コンジュゲートなどのいくつかの例示的免疫コンジュゲートを用いて、本発明を例示する。
細胞培養に必要とされる培地およびフィードを準備し、pH値、グルコース濃度、および重量オスモル濃度といったパラメーターを供給業者(Gibco/Life Technologies Inc.)の操作説明書に従って調整した。培地およびフィードを暗所、4℃で保管し、それぞれ4週間(前培養培地、発酵培地)、3週間(フィード1)、および2週間(フィード2)以内に使い切った。補正剤を室温で保管し、3ヶ月(グルコース溶液;50%)、6ヶ月(炭酸ナトリウム溶液;1M)、および12ヶ月(消泡剤溶液;Dow Corning(登録商標)Antifoam C乳濁液、食品グレード、10%)以内に消費した。
細胞を解凍し、振盪フラスコに入れて前培養培地中で2~3週間、前培養した。インキュベーションパラメーターは次の通りであった:温度37℃、湿度80%、CO2 7%、振盪頻度210rpm、振幅5cm。3~4日毎に細胞を継代し、播種に必要とされる体積になるまで、前培養培地中、選択圧(メトトレキサート)下で増殖させた。
3.5×105細胞/mlの出発細胞密度で、フィード1、フィード2、およびグルコースを用いる1つまたは14日のフェドバッチ工程で、細胞を培養した。フィードは発酵の3日目および6日目に開始し、発酵の残りの日数の間は、出発体積を基準として2%(v/v)の比率で連続的に添加した。別段の記載が無い限り、pH値は、CO2および1M Na2CO3を用いて、0.05pH単位のデットバンド範囲内に調整した。必要な場合には、泡消し溶液および抗生物質を添加した。工程の間、温度、pH値、およびpO2といったパラメーターをモニターし、管理した。14日後に発酵工程を停止した。培養液を採取し、滅菌ろ過した。バイオリアクターを分解し、清掃した。
2L容の二重壁ガラス製バイオリアクターは、スチール製の蓋で閉じられ、撹拌機、プローブ、フィード口などの内蔵部品が中に組み込まれる。4つの容器が1つのBIOSTAT(登録商標)DCU3/4 (Sartorius Stedim Biotech AG)コントロールシステムによって管理され、それゆえ、Quadシステムと呼ばれている。
培養工程時の生細胞密度および生存率を、Cedex HiRes (Roche Diagnostics GmbH)装置によるトリパンブルー染色を用いて評価した。
供給業者のプロトコールに従って、精製およびCEを実施した。通常、タンパク質を含む凍結試料を4℃で慎重に解凍し、可能な場合は氷上で保存した。凍結と解凍の繰り返しは避けた。発酵試料を遠心分離し(4000×g、体積に応じて10~30分)、精製し、かつ/または直ちに解析するか、または液体窒素中で急速冷凍し、80℃で保管した。
チップ上でのCEを、製造業者の取扱い説明書に従ってAgilent Bioanalyzer 2100またはPerkinElmer LabChip GXおよび各々のタンパク質キットを用いて実施した。
製品力価は、Bioprofile 100 Plusを用いて測定した。しかし、この装置は、断片化抗体と非断片化抗体を区別することができない。こういう訳で、断片の少ない正味の力価を下記に示すように算出した。
Tnet=(1-F)×T
上式で、Tnet=正味の製品力価(少ない断片)(mg/l)
T=合計力価(mg/l)
F=断片比率(%)
pHおよび温度の調整は、CHOフェドバッチ工程におけるクラスタリンレベルに影響を与える(cM1/cM2を用いて例示)
CHOフェドバッチ工程における上清クラスタリンレベルに対するpHおよび温度の影響を明らかにするために、3種の工程形式、すなわち工程1、工程2、および工程3を3つ1組で比較した。
クラスタリンレベルは、pH、温度、および培地重量オスモル濃度によって調整することができる(cM3を用いて例示)
2Lガラス製バイオリアクターまたは振盪フラスコのいずれかを用いるフェドバッチ実験において、工程ならびに培地パラメーターであるpH、温度、および重量オスモル濃度を、CHOフェドバッチ培養の上清クラスタリンレベルに与える影響について試験した。そのために、同じ複合IgG融合タンパク質(cM3=FAP-4-1-BBL免疫コンジュゲート)をいずれも発現する2種のクローン、すなわちクローン6およびクローン7ならびに工程形式1を使用した。温度変更およびpH変更を8日目に開始し、14日目に採取するまで保った。様々な培地重量オスモル濃度を培養開始以降使用した。
断片化レベルおよび凝集レベルの調整(cM1を用いて例示)
実施例2で説明したように、CHO細胞中の組換えによって製造された分子の断片化レベルおよび凝集レベルに基づいてpHおよび温度のような様々なパラメーターを解析した。この場合もやはり、3種の異なるフェドバッチ工程形式、すなわち工程1、工程2、および工程3(実施例2を参照されたい)を比較した。ここでは、複合サイトカイン-IgG融合タンパク質(cM1=CEA-IL-2免疫コンジュゲート)を安定に発現するクローンをフェドバッチ工程に使用した。
免疫コンジュゲートの精製
生じた免疫コンジュゲートを採取した後に、さらなる精製を実施してもよい。簡単に説明すると、20mMリン酸ナトリウム、20mMクエン酸ナトリウムpH7.5中で平衡化したプロテインA(HiTrap ProtA、GE Healthcare)を用いる1回のアフィニティー段階によって、免疫コンジュゲートを精製した。上清を載せた後、カラムを最初に20mMリン酸ナトリウム、20mMクエン酸ナトリウム、pH7.5で洗い、続いて13.3mMリン酸ナトリウム、20mMクエン酸ナトリウム、500mM塩化ナトリウム、pH5.45で洗った。20mMクエン酸ナトリウム、100mM塩化ナトリウム、100mMグリシン、pH3を用いて免疫コンジュゲートを溶出させた。画分を中和し、集め、最終的な調合緩衝液:25mMリン酸カリウム、125mM塩化ナトリウム、100mMグリシンpH6.7中でのサイズ排除クロマトグラフィー(HiLoad 16/60 Superdex 200、GE Healthcare)によって精製した。280nmにおける光学濃度(OD)を測定し、アミノ酸配列に基づいて算出したモル吸光係数を用いることによって、精製タンパク質試料のタンパク質濃度を決定した。還元剤(5mM 1,4-ジチオトレイトール)の存在下および非存在下でのSDS-PAGEによって免疫コンジュゲートの純度および分子量を解析し、クーマシーブルー(SimpleBlue(商標)SafeStain、Invitrogen)で染色した。
Claims (10)
- 関心対象の免疫コンジュゲートをコードする1つまたは複数の核酸を含むCHO細胞を細胞培養培地中で培養することによって、製品に関係する不純物および工程に関係する不純物を減少させた免疫コンジュゲートを製造するための方法であって、
ここで該1つまたは複数の核酸が細胞培養条件下で発現され、
該方法が、
第1の温度および第1のpHの細胞培養培地中でCHO細胞を培養する段階、
該細胞培養培地の該第1の温度を第2の温度に下げ、かつ該細胞培養培地の該第1のpHを第2のpHに高める段階、
該細胞または該細胞培養培地から免疫コンジュゲートを回収する段階、ならびに
それによって該免疫コンジュゲートを製造する段階
を含み、
該第1の温度が37℃±0.5℃であり、該第2の温度が28℃~34℃の範囲内であり、
該第1のpH値がpH7±0.05pH単位であり、該第1のpH値が0.25~0.4pH単位高められて第2のpHとされる、
方法。 - 1つまたは複数の精製段階により免疫コンジュゲートを精製する段階をさらに含む、請求項1記載の方法。
- 第2の温度への低下および第2のpHへの上昇が、13~14日の合計培養期間の2~9日目である、請求項1または2記載の方法。
- 第2の温度への低下および第2のpHへの上昇が、ほぼ同じ時点である、請求項1~3のいずれか一項記載の方法。
- 第1の温度が37℃±0.5℃であり、29℃±0.5℃の第2の温度に下げられる、請求項1~4のいずれか一項記載の方法。
- 第2のpHが7.25またはそれより高い、請求項1~5のいずれか一項記載の方法。
- 播種細胞密度が、600000(6×105)~1000000(1×106)細胞/mlである、請求項1~6のいずれか一項記載の方法。
- 細胞培養培地の重量オスモル濃度が、350mOsmol/kg±15mOsmol/kg~800mOsmol/kg±15mOsmol/kgである、請求項1~7のいずれか一項記載の方法。
- 免疫コンジュゲートが、CEAを標的とするIL-2免疫コンジュゲート、FAPを標的とするIL-2免疫コンジュゲート、もしくはIgG-IL-2免疫コンジュゲート、またはFAPを標的とする4-1-BBL免疫コンジュゲートである、請求項1~8のいずれか一項記載の方法。
- 細胞培養がフェドバッチ細胞培養である、請求項1~8のいずれか一項記載の方法。
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