JP5855583B2 - 抗シグナルペプチド抗体の製造方法 - Google Patents
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Description
本発明は、抗シグナルペプチド抗体の製造方法に関する。
従来、タンパク質に対する抗体を作成するために、該タンパク質のアミノ酸配列の一部を化学合成したペプチドを抗原として用いている。この場合、タンパク質に比べて分子量の小さい該ペプチドは免疫原性が低いので、一般に、高分子量のキャリアタンパク質と架橋剤により共有結合（以下、「コンジュゲート」と表現することもある）させ、免疫に用いる抗原としている（非特許文献１）。
分子量の小さいペプチドが架橋されたキャリアタンパク質からなる抗原は、多数の該ペプチドをキャリアタンパク質に保持していることにより、目的の抗体を産出する免疫応答を強く誘起する。したがって、目的の抗体を得るためには高効率でペプチドとキャリアタンパク質との架橋反応を行わせる必要がある。高効率で架橋反応を行うためには、ペプチド、キャリアタンパク質及び架橋剤を溶液中に溶解、分散させ、基質同士が自由に衝突することが必要である。
分子量の小さいペプチドが架橋されたキャリアタンパク質からなる抗原は、多数の該ペプチドをキャリアタンパク質に保持していることにより、目的の抗体を産出する免疫応答を強く誘起する。したがって、目的の抗体を得るためには高効率でペプチドとキャリアタンパク質との架橋反応を行わせる必要がある。高効率で架橋反応を行うためには、ペプチド、キャリアタンパク質及び架橋剤を溶液中に溶解、分散させ、基質同士が自由に衝突することが必要である。
また、抗体を作成するタンパク質のどの部分のペプチド配列を抗原とするかを決定する指標として、（１）一箇所ではなく、複数箇所のペプチド配列を抗原として選ぶ、（２）Ｃ末端又はＮ末端の親水性が高いペプチド配列を抗原とする、（３）内部の比較的長く、親水性が高いペプチド配列を抗原とすることが推奨されている（非特許文献１）。これら（１）〜（３）の指標は、タンパク質の表面に露出している可能性が高い領域を抗原とする狙いがあり、生体内存在状態の３次元構造を形成しているタンパク質を検出する抗体が得られる可能性が高まる。したがって、実際に化学合成されるペプチドのほとんどは親水性が高く、キャリアタンパク質との架橋反応においても、親水性ペプチドは架橋反応を行わせる溶液中で容易に溶解するので、高効率に架橋反応を行わせることができる。
一方、生体内においてペプチドそのものがホルモンや神経伝達物質などの様々な機能を有することが知られている。そのようなペプチドに対する抗体を作成する場合、ペプチドの親水性が高ければ、キャリアタンパク質に該親水性ペプチドをコンジュゲートさせて、上記のような従来の抗体の作製方法を問題なく適用することができる。しかしながら、疎水性が高いペプチドに関しては、架橋反応を行わせる溶液中で溶解させることが困難であり、平易に適用することができず、架橋産物を作製することができなかった。
このような疎水性が高いペプチドとしては、ＴＡＴペプチドや、ＴＰ−１０などの細胞膜透過性ペプチドやシグナルペプチドが挙げられる。分泌タンパク質やミトコンドリアタンパク質などのシグナルペプチドの多くは、生体内においてタンパク質合成時にＮ末端に付加された状態で合成され、シグナルペプチドの配列にタンパク質が移行するべき区画（ミトコンドリア、細胞外など）に関する情報が含まれている。大部分のタンパク質は、目的の区画へ移行するとシグナルペプチダーゼによりシグナルペプチドが切断され除かれる。従来、このシグナルペプチドはタンパク質の移行するべき区画へ誘導する働きしかないと考えられていたが、近年、シグナルペプチダーゼによる切断を受けた後、別の生理的役割を担うことが複数報告されている（非特許文献２等）。
例えば、カルレティキュリン（calreticulin）のシグナルペプチドの一部が主要組織適合複合体（MHC）により細胞表面に提示されることが明らかにされている（非特許文献３）。この現象の生理学的意義については、細胞内タンパク質の発現量又は正常なシグナルペプチドの産生割合をモニターするための機構の一部である可能性が考えられているが、結論は出ていない。
また、カルシトニン（calcitonin）のシグナルペプチドの一部がMHCにより非小細胞性肺がん細胞の表面に提示され、細胞傷害性Ｔ細胞がこのペプチドをエピトープとして認識することが示されており、がんワクチンの開発につながると期待されている（非特許文献４）。
例えば、カルレティキュリン（calreticulin）のシグナルペプチドの一部が主要組織適合複合体（MHC）により細胞表面に提示されることが明らかにされている（非特許文献３）。この現象の生理学的意義については、細胞内タンパク質の発現量又は正常なシグナルペプチドの産生割合をモニターするための機構の一部である可能性が考えられているが、結論は出ていない。
また、カルシトニン（calcitonin）のシグナルペプチドの一部がMHCにより非小細胞性肺がん細胞の表面に提示され、細胞傷害性Ｔ細胞がこのペプチドをエピトープとして認識することが示されており、がんワクチンの開発につながると期待されている（非特許文献４）。
このように、これら提示されるシグナルペプチドが何らかの生理的・病理的意義を持つことは明らかである。したがって、従来得られなかった、シグナルペプチド等の疎水性が高いペプチドを認識する抗体は、今後の生理的現象の解明や病気の新規診断方法・治療方法につながると考えられる。
Antibodies、Cold Spring Harbor Laboratory、第一版、１９８８、ｐｐ．７２−７７
Trends in Cell Biology、１９８８、ｖｏｌ．８、ｐｐ．４１０−４１５
Science、１９９２、ｖｏｌ．２５５、ｐｐ．１２６４−１２６６
Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America、２００８、ｖｏｌ．２９、ｎｏ．１０５、ｐｐ．１０１１９−１０１２４
近年、疎水性が高いペプチドを認識する抗体の製造が求められている。従来は、検出対象のタンパク質において親水性の高いペプチド配列を選んでペプチドを合成していたので、そもそも疎水性が高いペプチドを合成し、キャリアタンパク質とコンジュゲートすることは行なわれなかった。そのため、シグナルペプチドを検出する抗体は未だ報告がない。
また、本発明者らにおいてもこのような従来方法を用いてコンジュゲート反応を行ってみたものの、疎水性が高いペプチドは溶液中で凝集、沈殿してしまうため、キャリアタンパク質と架橋することがほとんど不可能であるという結果であった。
本発明は前述の問題に鑑みてなされたものであり、疎水性が高いペプチドに対する抗体を製造する方法を提供することを目的の１つとする。
また、本発明者らにおいてもこのような従来方法を用いてコンジュゲート反応を行ってみたものの、疎水性が高いペプチドは溶液中で凝集、沈殿してしまうため、キャリアタンパク質と架橋することがほとんど不可能であるという結果であった。
本発明は前述の問題に鑑みてなされたものであり、疎水性が高いペプチドに対する抗体を製造する方法を提供することを目的の１つとする。
本発明者らが、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、疎水性ペプチドであるアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドをＰＥＧ系界面活性剤により可溶化させる方法により、抗シグナルペプチド抗体を製造することができることを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、以下のとおりである。
［１］
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
を含む、抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
［２］
前記ＰＥＧ系界面活性剤が、下記式で表される群から選択される少なくとも１種の化合物である、［１］に記載の抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
（式中、ｍは、０〜１０の整数であり、ｎは、１０〜７０の整数である。ｘは、３０〜６０の整数である。）
［３］
前記ＰＥＧ系界面活性剤が、ＣＳ−０５０又はＰＥＧ６０である、［１］又は［２］に記載の抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
［４］
前記工程（１）において、アジュバントをさらに混合する、［１］〜［３］のいずれかに記載の抗体の製造方法。
［５］
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、及び
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合する工程を含む、ハイブリドーマ細胞の製造方法。
［６］
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合してハイブリドーマ細胞を作製する工程、及び
（４）前記ハイブリドーマ細胞を培養する工程を含む、モノクローナル抗体の製造方法。
［１］
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
を含む、抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
［２］
前記ＰＥＧ系界面活性剤が、下記式で表される群から選択される少なくとも１種の化合物である、［１］に記載の抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
［３］
前記ＰＥＧ系界面活性剤が、ＣＳ−０５０又はＰＥＧ６０である、［１］又は［２］に記載の抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
［４］
前記工程（１）において、アジュバントをさらに混合する、［１］〜［３］のいずれかに記載の抗体の製造方法。
［５］
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、及び
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合する工程を含む、ハイブリドーマ細胞の製造方法。
［６］
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合してハイブリドーマ細胞を作製する工程、及び
（４）前記ハイブリドーマ細胞を培養する工程を含む、モノクローナル抗体の製造方法。
本発明により、疎水性が高いペプチドに対する抗体を製造する方法を提供することができる。
以下、本発明について、その好ましい態様を具体的に説明する。なお。本発明は、以下の発明を実施するための形態に限定されるものではなく、本発明の要旨の範囲内で種々変形して実施することができる。
本発明の抗シグナルペプチド抗体の製造方法は、
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
を含む、抗体の製造方法である。
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
を含む、抗体の製造方法である。
本発明において、疎水性が高いペプチドである「疎水性ペプチド」とは、ペプチド配列の全アミノ酸残基数中の疎水性アミノ酸残基の数が少なくとも３０％以上であるペプチドをいう。疎水性ペプチドとしては、疎水性アミノ酸残基の数が、３０％以上であれば特に限定されないが、５０％以上であってもよく、８０％以上であってもよい。
ここで、疎水性ペプチドとしては、アミノ酸残基数が５０以下のペプチドであり、３０以下であってもよく、２０以下であってもよい。疎水性ペプチドのアミノ酸残基数は、５以上であってもよく、１０以上であってもよい。
すなわち、例えば、疎水性ペプチドの疎水性アミノ酸残基の数が３０％であり、ペプチド配列の全アミノ酸残基数が５０である場合には、疎水性アミノ酸を１５残基含み、残りの３５残基は疎水性アミノ酸以外のアミノ酸であることを意味する。
ここで、疎水性ペプチドとしては、アミノ酸残基数が５０以下のペプチドであり、３０以下であってもよく、２０以下であってもよい。疎水性ペプチドのアミノ酸残基数は、５以上であってもよく、１０以上であってもよい。
すなわち、例えば、疎水性ペプチドの疎水性アミノ酸残基の数が３０％であり、ペプチド配列の全アミノ酸残基数が５０である場合には、疎水性アミノ酸を１５残基含み、残りの３５残基は疎水性アミノ酸以外のアミノ酸であることを意味する。
疎水性アミノ酸としては、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｐｒｏ、Ｇｌｙ、Ａｌａ及びＭｅｔをいい、Ｍｅｔについては、Ｓ−メチル化されたＳ−メチルメチオニンであってもよく、Ｍｅｔと記載する場合には、フリーのメチオニン又はＳ−メチルメチオニンを意味する。
なお、アミノ酸は、ＩＵＰＡＣの命名法に従い、１文字又は３文字表記により表わす。
アミノ酸残基とは、疎水性ペプチドが、例えば、Ｍｅｔ−Ｌｅｕ−Ｐｒｏというトリペプチドで表わされる場合、Ｍｅｔに由来するトリペプチド中の部分構造、Ｌｅｕに由来するトリペプチド中の部分構造、Ｐｒｏに由来するトリペプチド中の部分構造をいう。
なお、アミノ酸は、ＩＵＰＡＣの命名法に従い、１文字又は３文字表記により表わす。
アミノ酸残基とは、疎水性ペプチドが、例えば、Ｍｅｔ−Ｌｅｕ−Ｐｒｏというトリペプチドで表わされる場合、Ｍｅｔに由来するトリペプチド中の部分構造、Ｌｅｕに由来するトリペプチド中の部分構造、Ｐｒｏに由来するトリペプチド中の部分構造をいう。
疎水性ペプチドは、天然由来の単離されたペプチドであってもよく、従来公知の方法により製造されるペプチドであってもよい。ペプチド合成の分野において、アミノ酸残基数５０程度のペプチドは、従来公知の方法により化学合成してもよく、微生物などを用いて組み換え技術により合成されたものであってもよい。
疎水性ペプチドとして、細胞膜透過性ペプチドやシグナルペプチドが挙げられる。
シグナルペプチドとは、リボソームにてｍＲＮＡから翻訳された合成されたタンパク質を特定部位（たとえば小胞体膜表面の受容体）に誘導するための「道しるべ」となるペプチドであって、合成されたポリペプチド鎖の先端にある。タンパク質合成途中時にリボソーム表面から伸長されたシグナルペプチドを認識するＳＲＰ（Ｓｉｇｎａｌ ｐｅｐｔｉｄｅ ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ ｐａｒｔｉｃｌｅ）がシグナルペプチドに固定化、吸着されるとそのまま、小胞体膜表面のＳＲＰ認識受容体に認識固定化される。その後、小胞体膜表面上の膜タンパク質（トランスコロン）内からリボソーム中で起こるシグナルペプチドを含むポリペプチド伸長反応によってできるペプチド鎖が細胞内に押し出されていく。その過程にて細胞膜中のトランスコロンに隣接するシグナルペプチターゼ膜タンパク質によって、シグナルペプチドは切断され、その後別の膜タンパク質によってシグナルペプチド自体も分解される。シグナルペプチドは疎水性アミノ酸をその配列中に多く含むため、疎水性ペプチドであり、疎水性が高いため、普通の緩衝液には不溶である。現在、シグナルペプドには細胞誘導分化に関係した誘導機能が含まれている可能性を探る研究や、タンパク質蓄積による病疾患に関連する研究分野が注目されており、シグナルペプチド又はその断片と細胞との相互作用を厳密に調べる技術がますます重要となっており、従来技術によるとシグナルペプチドが疎水性であるため、抗体を作成することが困難であるところ、本発明の抗体の製造方法によれば、疎水性ペプチドであるアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドの抗体を得ることができる。
シグナルペプチドとは、リボソームにてｍＲＮＡから翻訳された合成されたタンパク質を特定部位（たとえば小胞体膜表面の受容体）に誘導するための「道しるべ」となるペプチドであって、合成されたポリペプチド鎖の先端にある。タンパク質合成途中時にリボソーム表面から伸長されたシグナルペプチドを認識するＳＲＰ（Ｓｉｇｎａｌ ｐｅｐｔｉｄｅ ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ ｐａｒｔｉｃｌｅ）がシグナルペプチドに固定化、吸着されるとそのまま、小胞体膜表面のＳＲＰ認識受容体に認識固定化される。その後、小胞体膜表面上の膜タンパク質（トランスコロン）内からリボソーム中で起こるシグナルペプチドを含むポリペプチド伸長反応によってできるペプチド鎖が細胞内に押し出されていく。その過程にて細胞膜中のトランスコロンに隣接するシグナルペプチターゼ膜タンパク質によって、シグナルペプチドは切断され、その後別の膜タンパク質によってシグナルペプチド自体も分解される。シグナルペプチドは疎水性アミノ酸をその配列中に多く含むため、疎水性ペプチドであり、疎水性が高いため、普通の緩衝液には不溶である。現在、シグナルペプドには細胞誘導分化に関係した誘導機能が含まれている可能性を探る研究や、タンパク質蓄積による病疾患に関連する研究分野が注目されており、シグナルペプチド又はその断片と細胞との相互作用を厳密に調べる技術がますます重要となっており、従来技術によるとシグナルペプチドが疎水性であるため、抗体を作成することが困難であるところ、本発明の抗体の製造方法によれば、疎水性ペプチドであるアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドの抗体を得ることができる。
一般に、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドとは、アミロイド前駆体タンパク質のＮ末端から１７残基までの配列番号１で記載されるアミノ酸配列で示されるシグナルペプチド（Met Leu Pro Gly Leu Ala Leu Leu Leu Leu Ala Ala Trp Thr Ala Arg Ala）を意味し、本明細書においては、配列番号１で示されるシグナルペプチドと限定して解される場合には、ＡＰＰ−ＳＰと記載する。
本発明の抗シグナルペプチド抗体の製造方法において用いられる、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドとしては、ＡＰＰ−ＳＰであってもよく、ＡＰＰ−ＳＰの部分配列であってもよい。本発明の製造方法において部分配列を用いる場合には抗シグナルペプチド抗体を製造できる部分配列を有するものであれば特に限定されるものではないが、ＡＰＰ−ＳＰの部分構造として、６残基以上の配列を有していることが好ましく、より好ましくは、１０残基以上の配列を有している。
本発明の目的を達成し得る範囲内であれば、ＡＰＰ−ＳＰの全配列及びＡＰＰ−ＳＰの部分配列は、１又は数個のアミノ酸が欠失、付加、及び／又は置換された配列であってもよい。
本発明の抗シグナルペプチド抗体の製造方法において用いられる、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドとしては、ＡＰＰ−ＳＰであってもよく、ＡＰＰ−ＳＰの部分配列であってもよい。本発明の製造方法において部分配列を用いる場合には抗シグナルペプチド抗体を製造できる部分配列を有するものであれば特に限定されるものではないが、ＡＰＰ−ＳＰの部分構造として、６残基以上の配列を有していることが好ましく、より好ましくは、１０残基以上の配列を有している。
本発明の目的を達成し得る範囲内であれば、ＡＰＰ−ＳＰの全配列及びＡＰＰ−ＳＰの部分配列は、１又は数個のアミノ酸が欠失、付加、及び／又は置換された配列であってもよい。
本発明において、「ＰＥＧ系界面活性剤」としては、分子内にポリエチレングリコール（ＰＥＧ）構造を有する界面活性剤であれば特に限定されるものではない。
ＰＥＧ系界面活性剤としては、親水性部分構造としてのＰＥＧと、疎水性部分構造としての、コレステロール骨格、炭素数８〜２０の飽和又は不飽和の脂肪族炭化水素骨格等とが、ＰＥＧ末端のアルコール性水酸基とエーテル結合、エステル結合等を介して、共有結合している化合物が挙げられる。
ＰＥＧ系界面活性剤として、本発明においてアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを可溶化できる化合物であれば特に限定されるものではないが、ＰＥＧ部分の繰り返し構造（エチレングリコール構造）の重合度としては、例えば、７０以下であり、６０以下であってもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤としては、親水性部分構造としてのＰＥＧと、疎水性部分構造としての、コレステロール骨格、炭素数８〜２０の飽和又は不飽和の脂肪族炭化水素骨格等とが、ＰＥＧ末端のアルコール性水酸基とエーテル結合、エステル結合等を介して、共有結合している化合物が挙げられる。
ＰＥＧ系界面活性剤として、本発明においてアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを可溶化できる化合物であれば特に限定されるものではないが、ＰＥＧ部分の繰り返し構造（エチレングリコール構造）の重合度としては、例えば、７０以下であり、６０以下であってもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤としては、例えば、下記式で表される群から選択される少なくとも１種の化合物等が挙げられる。
（式中、ｍは、０〜１０の整数であり、ｎは、１０〜７０の整数である。ｘは、３０〜６０の整数である。）
式中、ｎやｘが繰り返し構造の重合度を意味する。
式中、ｎやｘが繰り返し構造の重合度を意味する。
上記式で表される群から選択される少なくとも１種の化合物で表わされるＰＥＧ系界面活性剤としては、上記式において、ｘが５０であるＣＳ−０５０、ｍが１であり、ｎが６０であるＰＥＧ６０、ｎが３６であるＰＥＧ３６、ｎが２４であるＰＥＧ２４、ｎが１２であるＰＥＧ１２等が挙げられる。
本発明の抗体の製造方法においては、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチド（以下、単に「シグナルペプチド」と記載する場合がある）を、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程である工程（１）を含む。
アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドと、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液との混合は、特に限定されるものではなく、該シグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合すればよい（シグナルペプチドにＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液を混合してもよく、実質的に、シグナルペプチドを含む溶液に、ＰＥＧ系界面活性剤を混合してもよい。）。工程（１）において、シグナルペプチドは、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中で、ＰＥＧ系界面活性剤とミセルを形成することにより可溶化され、シグナルペプチドミセル凝集体を含むシグナルペプチド溶液とすることができる。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液の溶媒としては、シグナルペプチドを変性させない溶媒であれば特に限定されないが、水が挙げられ、また、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液には、ＤＭＳＯまたはＤＭＦ等の非プロトン性溶媒が含まれていてもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中の、ＰＥＧ系界面活性剤の濃度としては、０．１ｗｔ％〜５．０ｗｔ％であってもよく、０．５ｗｔ％〜２．０ｗｔ％であってもよく、０．８ｗｔ％〜１．５ｗｔ％であってもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中の、ＰＥＧ系界面活性剤以外の成分としては、該溶液が、水を主体とする緩衝溶液であってもよいことから、緩衝溶液成分として、塩化ナトリウム又は塩化カリウム等の塩類等を含んでいてもよい。ＰＥＧ系界面活性剤以外の成分の濃度としては、該溶液中、０．１ｗｔ％〜１０ｗｔ％であってもよく、１ｗｔ％〜５ｗｔ％であってもよい。
アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドと、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液との混合は、特に限定されるものではなく、該シグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合すればよい（シグナルペプチドにＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液を混合してもよく、実質的に、シグナルペプチドを含む溶液に、ＰＥＧ系界面活性剤を混合してもよい。）。工程（１）において、シグナルペプチドは、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中で、ＰＥＧ系界面活性剤とミセルを形成することにより可溶化され、シグナルペプチドミセル凝集体を含むシグナルペプチド溶液とすることができる。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液の溶媒としては、シグナルペプチドを変性させない溶媒であれば特に限定されないが、水が挙げられ、また、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液には、ＤＭＳＯまたはＤＭＦ等の非プロトン性溶媒が含まれていてもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中の、ＰＥＧ系界面活性剤の濃度としては、０．１ｗｔ％〜５．０ｗｔ％であってもよく、０．５ｗｔ％〜２．０ｗｔ％であってもよく、０．８ｗｔ％〜１．５ｗｔ％であってもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中の、ＰＥＧ系界面活性剤以外の成分としては、該溶液が、水を主体とする緩衝溶液であってもよいことから、緩衝溶液成分として、塩化ナトリウム又は塩化カリウム等の塩類等を含んでいてもよい。ＰＥＧ系界面活性剤以外の成分の濃度としては、該溶液中、０．１ｗｔ％〜１０ｗｔ％であってもよく、１ｗｔ％〜５ｗｔ％であってもよい。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中にシグナルペプチドを混合する際に、シグナルペプチドの濃度は、シグナルペプチドを溶液中で可溶化させられれば特に限定されるものではないが、例えば、０．１ｍｇ/ｍＬ〜５ｍｇ/ｍＬである。
ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液と、シグナルペプチドの混合する際の反応温度は特に限定されるものではなく、前もって、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液を加温して混合してもよく、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液を冷却して混合してもよく、また、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液に室温下でシグナルペプチドを混合してもよい。
混合する際に、超音波攪拌装置等を用いることができる。
混合する際に、超音波攪拌装置等を用いることができる。
本発明において、「シグナルペプチドミセル凝集体」が抗原として作製されるが、以下シグナルペプチドミセル凝集体について詳細を説明する。
シグナルペプチドミセル凝集体においては、シグナルペプチドが、自己凝集し、ＰＥＧ系界面活性剤によって取り囲まれた構造である、シグナルペプチドの凝集オリゴマーとして存在している。すなわち、シグナルペプチドミセル凝集体においては、シグナルペプチドが、ＰＥＧ系界面活性剤との凝集複合体として、可溶化・安定化されていると考えられる。また、ＤＬＳ（動的光散乱粒度分布計）を用いてミセルの分散状態を確認することもできる。シグナルペプチドミセル凝集体は、ＤＬＳ測定の結果として、約２．５〜１００ｎｍの半径を有していてもよく、シグナルペプチドの凝集オリゴマー中には、約５００〜２０００のシグナルペプチドが存在していてもよい。
シグナルペプチドミセル凝集体においては、シグナルペプチドが、自己凝集し、ＰＥＧ系界面活性剤によって取り囲まれた構造である、シグナルペプチドの凝集オリゴマーとして存在している。すなわち、シグナルペプチドミセル凝集体においては、シグナルペプチドが、ＰＥＧ系界面活性剤との凝集複合体として、可溶化・安定化されていると考えられる。また、ＤＬＳ（動的光散乱粒度分布計）を用いてミセルの分散状態を確認することもできる。シグナルペプチドミセル凝集体は、ＤＬＳ測定の結果として、約２．５〜１００ｎｍの半径を有していてもよく、シグナルペプチドの凝集オリゴマー中には、約５００〜２０００のシグナルペプチドが存在していてもよい。
シグナルペプチドミセル凝集体を作成する際に、アジュバントをさらに混合して、エマルジョン化（ｏｉｌ ｉｎ ｗａｔｅｒ）してもよい。アジュバントによりエマルジョン化された溶液において、シグナルペプチドミセル凝集体は、凝集ミセルとしての形態が保持されている。
アジュバントとしては、例えば、フロイント完全アジュバント(例えば、シグマ社製、Ｆ５８８１)、不完全アジュンバント（例えば、シグマ社製、Ｆ５５０６）等が挙げられる。
アジュバントの添加量としては、アジュバントを含む溶液のトータルの容積に対して４０％〜６０％であってもよく、４５％〜５５％であってもよく、４８％〜５２％であってもよい。
アジュバントとしては、例えば、フロイント完全アジュバント(例えば、シグマ社製、Ｆ５８８１)、不完全アジュンバント（例えば、シグマ社製、Ｆ５５０６）等が挙げられる。
アジュバントの添加量としては、アジュバントを含む溶液のトータルの容積に対して４０％〜６０％であってもよく、４５％〜５５％であってもよく、４８％〜５２％であってもよい。
アジュバントをさらに混合する際の反応温度は特に限定されるものではなく、前もって、シグナルペプチドミセル凝集体の溶液を加温して混合してもよく、シグナルペプチドミセル凝集体の溶液を冷却して混合してもよく、また、シグナルペプチドミセル凝集体の溶液に室温下でアジュバントを混合してもよい。
シグナルペプチドミセル凝集体は、粒度分布を揃えるために整粒してもよく、例えば、０．４５μｍフィルターを通して、不純物、ごみなどを除去する等の方法により粒度を揃えることができる。
シグナルペプチドミセル凝集体の粒度は、５ｎｍ〜２００ｎｍであってもよく、５ｎｍ〜１００ｎｍであってもよい。
シグナルペプチドミセル凝集体の粒度は、日機装社製の動的光散乱粒度計測装置を用いて測定することができる。
シグナルペプチドミセル凝集体の粒度は、日機装社製の動的光散乱粒度計測装置を用いて測定することができる。
本発明の抗体の製造方法においては、工程（１）で作成されたシグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程である工程（２）を含む。
シグナルペプチドミセル凝集体を、被免疫動物に投与することにより、被免疫動物における免疫反応を惹起して、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドの抗体を産生させることができる。
シグナルペプチドミセル凝集体を、被免疫動物に投与することにより、被免疫動物における免疫反応を惹起して、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドの抗体を産生させることができる。
被免疫動物としては、特に限定されるものではないが、実験動物として用いられる、モルモット、ラット、マウス、ウサギ及びヒツジ等が挙げられる。
シグナルペプチドミセル凝集体の投与方法としては、特に限定されるものではないが、例えば、皮下、腹腔内、静脈内、筋肉内及び皮内等の投与経路が挙げられる。シグナルペプチドミセル凝集体の投与スケジュールとしては、特に限定されるものではないが、例えば、２週間の投与間隔で、抗原を約２〜１０回投与することにより、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドに対する抗体を産生させることができる。
投与スケジュールに併せて適宜、被免疫動物から血清サンプルを採取して抗体の産生量を確認して、十分に免疫反応が惹起されているか確認することもできる。
最終免疫後、被免疫動物から血清を採取して、従来公知の方法により精製して抗シグナルペプチド抗体を得ることができる。
初回免疫、追加免疫のためのシグナルペプチドミセル凝集体の投与量は、特に限定されるものではないが、シグナルペプチドの投与量として、例えば、マウス１匹当たり１０〜２００μｇとすることができる。
投与スケジュールに併せて適宜、被免疫動物から血清サンプルを採取して抗体の産生量を確認して、十分に免疫反応が惹起されているか確認することもできる。
最終免疫後、被免疫動物から血清を採取して、従来公知の方法により精製して抗シグナルペプチド抗体を得ることができる。
初回免疫、追加免疫のためのシグナルペプチドミセル凝集体の投与量は、特に限定されるものではないが、シグナルペプチドの投与量として、例えば、マウス１匹当たり１０〜２００μｇとすることができる。
シグナルペプチドミセル凝集体を投与する際に、アジュバントを同時投与してもよく、斯かるアジュバントとしては、免疫反応を高力価で惹起することのできる従来公知のアジュバントを用いることができる。アジュバントの具体例として、初回免疫時にフロイント完全アジュバント(シグマ社製、Ｆ５８８１)を、追加免疫時にフロイントの不完全アジュンバント（シグマ社製、Ｆ５５０６）を使用することができる。
本発明の抗体の製造方法により、ポリクローナル抗体を得ることができるが、続いて、従来公知の方法により抗体を精製して、純度の高い抗体とすることができる。
また、抗体を産生した被免疫動物の脾臓又はリンパ節等から抗体産生細胞を採取することにより、ハイブリドーマ細胞を製造することができ、また、モノクローナル抗体を得ることもできる。
また、抗体を産生した被免疫動物の脾臓又はリンパ節等から抗体産生細胞を採取することにより、ハイブリドーマ細胞を製造することができ、また、モノクローナル抗体を得ることもできる。
本発明のハイブリドーマ細胞を製造する方法は、
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、及び
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合する工程を含む、ハイブリドーマ細胞を製造する方法である。
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、及び
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合する工程を含む、ハイブリドーマ細胞を製造する方法である。
本発明のモノクローナル抗体を製造する方法は、
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合してハイブリドーマ細胞を作製する工程、及び
（４）前記ハイブリドーマ細胞を培養する工程を含む、モノクローナル抗体を製造する方法である。
（１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与する工程、
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合してハイブリドーマ細胞を作製する工程、及び
（４）前記ハイブリドーマ細胞を培養する工程を含む、モノクローナル抗体を製造する方法である。
本発明において、工程（２）において、シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物に投与し、免疫反応を惹起させ、次いで、当業者周知の方法に従い、モノクローナル抗体を取得することができる。
抗体を産生するのに十分に免疫した被免疫動物の脾臓又はリンパ節などより抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合させてハイブリドーマ細胞を作製した後、目的の抗原、好ましくは目的のタンパク質に対して特異的なモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞のスクリーニングを行う。
当該ハイブリドーマ細胞を培養することにより、安定的にモノクローナル抗体を製造することができる。
抗体を産生するのに十分に免疫した被免疫動物の脾臓又はリンパ節などより抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合させてハイブリドーマ細胞を作製した後、目的の抗原、好ましくは目的のタンパク質に対して特異的なモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞のスクリーニングを行う。
当該ハイブリドーマ細胞を培養することにより、安定的にモノクローナル抗体を製造することができる。
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。但し本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
（１）アミロイド前駆体タンパクのシグナルペプチドの合成
ＧＬ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｌｔｄ．(Ｓｈａｎｇｈａｉ)に委託して、ヒトアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチド（ＡＰＰ−ＳＰ、配列番号１）の化学合成を行った。
ＧＬ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｌｔｄ．(Ｓｈａｎｇｈａｉ)に委託して、ヒトアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチド（ＡＰＰ−ＳＰ、配列番号１）の化学合成を行った。
（２）シグナルペプチドミセル凝集体の作成
（１）で得られたＡＰＰ−ＳＰを、ＰＥＧ系界面活性剤である、０．５％ ＣＳ−０５０（日脂株式会社製）水溶液又は１％ ＰＥＧ６０（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製）水溶液に、ＡＰＰ−ＳＰ濃度が１ｍｇ／ｍＬとなるように溶解させた。
得られたＰＥＧ系界面活性剤を含むＡＰＰ−ＳＰ溶液の分散状態を動的光散乱粒度分布計（ＤＬＳ）ＵＰＡ−ＵＴ１５１（日機装社製）を用いて計測した結果を図１に示す。
（１）で得られたＡＰＰ−ＳＰを、ＰＥＧ系界面活性剤である、０．５％ ＣＳ−０５０（日脂株式会社製）水溶液又は１％ ＰＥＧ６０（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製）水溶液に、ＡＰＰ−ＳＰ濃度が１ｍｇ／ｍＬとなるように溶解させた。
得られたＰＥＧ系界面活性剤を含むＡＰＰ−ＳＰ溶液の分散状態を動的光散乱粒度分布計（ＤＬＳ）ＵＰＡ−ＵＴ１５１（日機装社製）を用いて計測した結果を図１に示す。
（３）エマルジョン分散溶液の作成
（２）で得られたＡＰＰ−ＳＰ溶液を、アジュバントオイル（パラフィンオイルを主体としたエマルジョン作成原料）と等量ずつ混合させ、ＡＰＰ−ＳＰを含むエマルジョン分散溶液を作成した。
初回免疫用の分散溶液の作成には、フロイント完全アジュバント(シグマ社製、Ｆ５８８１)を、追加免疫用の分散溶液の作成には、フロイントの不完全アジュンバント（シグマ社製、Ｆ５５０６）を用いた。
得られたエマルジョン分散溶液のＤＬＳによる粒度分布測定を行ったところ３８ｎｍ付近を中心とするミセル凝集体の存在を確認した（データ非開示）。
（２）で得られたＡＰＰ−ＳＰ溶液を、アジュバントオイル（パラフィンオイルを主体としたエマルジョン作成原料）と等量ずつ混合させ、ＡＰＰ−ＳＰを含むエマルジョン分散溶液を作成した。
初回免疫用の分散溶液の作成には、フロイント完全アジュバント(シグマ社製、Ｆ５８８１)を、追加免疫用の分散溶液の作成には、フロイントの不完全アジュンバント（シグマ社製、Ｆ５５０６）を用いた。
得られたエマルジョン分散溶液のＤＬＳによる粒度分布測定を行ったところ３８ｎｍ付近を中心とするミセル凝集体の存在を確認した（データ非開示）。
（４）被実験動物への投与
（３）で得られたエマルジョン分散溶液を４週令の雌性ＳＰＦ／ＶＡＦ マウス ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣγ１Ｃγ１ｊ（日本チャールズ・リバー社製）にＡＰＰ−ＳＰが６０μｇずつ投与されるよう調整して、腹腔内に皮下注射により、表１に示す投与スケジュールで投与した。採血１〜７は眼底より行なった。なお、アジュバントとして初回免疫時（０日）はフロイントの完全アジュバント（シグマ社製、Ｆ５８８１）を、追加免疫時（１４日以降）にはフロイントの不完全アジュバント（シグマ社製、Ｆ５５６０）を用いた。投与群については、表２に示す。
（３）で得られたエマルジョン分散溶液を４週令の雌性ＳＰＦ／ＶＡＦ マウス ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣγ１Ｃγ１ｊ（日本チャールズ・リバー社製）にＡＰＰ−ＳＰが６０μｇずつ投与されるよう調整して、腹腔内に皮下注射により、表１に示す投与スケジュールで投与した。採血１〜７は眼底より行なった。なお、アジュバントとして初回免疫時（０日）はフロイントの完全アジュバント（シグマ社製、Ｆ５８８１）を、追加免疫時（１４日以降）にはフロイントの不完全アジュバント（シグマ社製、Ｆ５５６０）を用いた。投与群については、表２に示す。
（５）抗体価の測定
表１に示した採血で得た血清を用いてＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ−Ｌｉｎｋｅｄ ＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ）を以下のように行なった。
（１）で化学合成したＡＰＰ−ＳＰと、ＰＥＧ６０とを、２．５ｍｇ／ｍＬ ＡＰＰ−ＳＰ、１％ＰＥＧ６０となるようにして得られた調製溶液を、０．４５μｍフィルターでろ過した。
ろ過液を純水で３５０倍希釈し、９６穴マイクロウェルプレート（Ｎｕｎｃ社製）に１００μＬずつ添加し、室温で一晩静置した。ウェル内の溶液を破棄し、３％ ＢＳＡ（シグマ社製、Ａｌｂｕｍｉｎ、ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ、Ｆｒａｃｔｉｏｎ Ｖ、ｍｉｎｉｍｕｍ ９６％、ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ ｐｏｗｄｅｒ）、０．１％ ＮａＮ３、ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ、ｐＨ７．０）を２５０μＬ添加し、３時間静置した。ウェル内の溶液を破棄し、１％ ＢＳＡ、０．０５％ ＮａＮ３、ＴＢＳ（Ｔｒｉｓ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ、ｐＨ７．５）で１０００倍希釈した採血６および７で得られた血清を１００μＬ添加し、１時間静置した。ＰＢＳＴ（ＰＢＳ（ｐＨ７．４）、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０）でウェル内を６回洗浄後、１％ ＢＳＡ含有ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で４０００倍希釈したＨＲＰ ｌａｂｅｌｅｄ Ａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ(Ｈ＋Ｌ ｃｈａｉｎ)（ＭＢＬ社製）を１００μＬ添加し、１時間静置した。ＰＢＳＴでウェル内を６回洗浄後、ＴＭＢ＋（Ｄａｋｏ社製）を１００μＬ添加し、３０分間暗室で静置した。２規定硫酸を１００μＬ添加後、４５０ｎｍと６５０ｎｍの吸光度を測定し、その差を測定データとした。
表１に示した採血で得た血清を用いてＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ−Ｌｉｎｋｅｄ ＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ）を以下のように行なった。
（１）で化学合成したＡＰＰ−ＳＰと、ＰＥＧ６０とを、２．５ｍｇ／ｍＬ ＡＰＰ−ＳＰ、１％ＰＥＧ６０となるようにして得られた調製溶液を、０．４５μｍフィルターでろ過した。
ろ過液を純水で３５０倍希釈し、９６穴マイクロウェルプレート（Ｎｕｎｃ社製）に１００μＬずつ添加し、室温で一晩静置した。ウェル内の溶液を破棄し、３％ ＢＳＡ（シグマ社製、Ａｌｂｕｍｉｎ、ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ、Ｆｒａｃｔｉｏｎ Ｖ、ｍｉｎｉｍｕｍ ９６％、ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｄ ｐｏｗｄｅｒ）、０．１％ ＮａＮ３、ＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ、ｐＨ７．０）を２５０μＬ添加し、３時間静置した。ウェル内の溶液を破棄し、１％ ＢＳＡ、０．０５％ ＮａＮ３、ＴＢＳ（Ｔｒｉｓ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ、ｐＨ７．５）で１０００倍希釈した採血６および７で得られた血清を１００μＬ添加し、１時間静置した。ＰＢＳＴ（ＰＢＳ（ｐＨ７．４）、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０）でウェル内を６回洗浄後、１％ ＢＳＡ含有ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で４０００倍希釈したＨＲＰ ｌａｂｅｌｅｄ Ａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ(Ｈ＋Ｌ ｃｈａｉｎ)（ＭＢＬ社製）を１００μＬ添加し、１時間静置した。ＰＢＳＴでウェル内を６回洗浄後、ＴＭＢ＋（Ｄａｋｏ社製）を１００μＬ添加し、３０分間暗室で静置した。２規定硫酸を１００μＬ添加後、４５０ｎｍと６５０ｎｍの吸光度を測定し、その差を測定データとした。
黄色に発色しているウェルに高い力価をもつ血清抗体（ポリクローナル抗体）が存在している。なお、Ｎ１及びＮ２として、ｎ数＝２で反応を行った。
各ウェルの４５０ｎｍにおける吸光度を測定したデータをグラフ化して、図２に示す。
図２から、１４週目に急速な抗体力価上昇しめす血清サンプルが観測された。
本方法にて免疫させて得られた抗体力価は５０，０００倍希釈にてＥＬＩＳＡによる吸光度の高い値の例では約０．７から０．３前後の強度を示す。このように、ＰＥＧ系界面活性剤とＡＰＰ−ＳＰとのシグナルペプチドミセル凝集体を作成し、コンジュゲートタンパク分子を用いずに直接、該凝集体を抗原として検体に投与して、非常に高い力価の血清抗体が得られることが分かった。
各ウェルの４５０ｎｍにおける吸光度を測定したデータをグラフ化して、図２に示す。
図２から、１４週目に急速な抗体力価上昇しめす血清サンプルが観測された。
本方法にて免疫させて得られた抗体力価は５０，０００倍希釈にてＥＬＩＳＡによる吸光度の高い値の例では約０．７から０．３前後の強度を示す。このように、ＰＥＧ系界面活性剤とＡＰＰ−ＳＰとのシグナルペプチドミセル凝集体を作成し、コンジュゲートタンパク分子を用いずに直接、該凝集体を抗原として検体に投与して、非常に高い力価の血清抗体が得られることが分かった。
（６）シグナルペプチドミセル凝集体の作成
また、（１）で得られたＡＰＰ−ＳＰを、ＰＥＧ系界面活性剤である、１％ ＰＥＧ１２（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製水溶液又は１％ ＰＥＧ６０（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製）水溶液に、ＡＰＰ−ＳＰ濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように溶解させた。
比較例として、１０％ ＳＤＳ（和光純薬）水溶液を用いた。
得られたＰＥＧ系界面活性剤を含むＡＰＰ−ＳＰ溶液の分散状態を動的光散乱粒度分布計（ＤＬＳ）ＵＰＡ−ＵＴ１５１（日機装社製）を用いて計測した結果を図３に示す。
シグナルペプチドミセル凝集体の水溶液の円２色性スペクトルを測定したところ（データ非開示）、ＰＥＧ系界面活性剤であるＰＥＧ１２やＰＥＧ６０を用いた場合には、ＡＰＰ−ＳＰに含まれるαヘリックス構造を保持しながらＰＥＧ系界面活性剤による可溶化ができることが分かった。一方、ＳＤＳとの可溶化ではＡＰＰ−ＳＰが変性してしまい、２次構造を保持できずに溶液化されていることが分かった。
また、（１）で得られたＡＰＰ−ＳＰを、ＰＥＧ系界面活性剤である、１％ ＰＥＧ１２（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製水溶液又は１％ ＰＥＧ６０（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製）水溶液に、ＡＰＰ−ＳＰ濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように溶解させた。
比較例として、１０％ ＳＤＳ（和光純薬）水溶液を用いた。
得られたＰＥＧ系界面活性剤を含むＡＰＰ−ＳＰ溶液の分散状態を動的光散乱粒度分布計（ＤＬＳ）ＵＰＡ−ＵＴ１５１（日機装社製）を用いて計測した結果を図３に示す。
シグナルペプチドミセル凝集体の水溶液の円２色性スペクトルを測定したところ（データ非開示）、ＰＥＧ系界面活性剤であるＰＥＧ１２やＰＥＧ６０を用いた場合には、ＡＰＰ−ＳＰに含まれるαヘリックス構造を保持しながらＰＥＧ系界面活性剤による可溶化ができることが分かった。一方、ＳＤＳとの可溶化ではＡＰＰ−ＳＰが変性してしまい、２次構造を保持できずに溶液化されていることが分かった。
以下のようにしてモノクローナル抗体を作成した。
（７）シグナルペプチドミセル凝集体の作成
（１）で化学合成したＡＰＰ−ＳＰを、ＰＥＧ系界面活性剤として、ＰＥＧ６０（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製）を用いて１．０ｍｇ／ｍＬ ＡＰＰ−ＳＰ、１％ ＰＥＧ６０となるよう調製して、ＡＰＰ−ＳＰが可溶化したシグナルペプチドミセル凝集体を得た。
（７）シグナルペプチドミセル凝集体の作成
（１）で化学合成したＡＰＰ−ＳＰを、ＰＥＧ系界面活性剤として、ＰＥＧ６０（Ｐｏｌｙｐｕｒｅ ＡＳ社（Ｎｏｒｗａｙ）製）を用いて１．０ｍｇ／ｍＬ ＡＰＰ−ＳＰ、１％ ＰＥＧ６０となるよう調製して、ＡＰＰ−ＳＰが可溶化したシグナルペプチドミセル凝集体を得た。
（８）エマルジョン分散溶液の作成
（７）で得られたシグナルペプチドミセル凝集体の溶液と等量のアジュバントを混合し、超音波処理して、抗原としてのエマルジョン分散溶液を得た。
エマルジョン分散溶液を、表３に示す投与スケジュールで、ＡＰＰ−ＳＰが６０μｇずつ投与されるよう調整して、腹腔内に皮下注射により、４週令の雌性ＳＰＦ／ＶＡＦ マウス ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣγ１Ｃγ１ｊ（日本チャールズ・リバー社製）に投与した。採血１〜７は眼底より行なった。なお、アジュバントとして初回免疫時（０日）はフロイントの完全アジュバント（Ｆ５８８１、シグマ社製）を、追加免疫時（１４日以降）にはフロイントの不完全アジュバント（Ｆ５５０６、シグマ社製）を用いた。
（７）で得られたシグナルペプチドミセル凝集体の溶液と等量のアジュバントを混合し、超音波処理して、抗原としてのエマルジョン分散溶液を得た。
エマルジョン分散溶液を、表３に示す投与スケジュールで、ＡＰＰ−ＳＰが６０μｇずつ投与されるよう調整して、腹腔内に皮下注射により、４週令の雌性ＳＰＦ／ＶＡＦ マウス ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣγ１Ｃγ１ｊ（日本チャールズ・リバー社製）に投与した。採血１〜７は眼底より行なった。なお、アジュバントとして初回免疫時（０日）はフロイントの完全アジュバント（Ｆ５８８１、シグマ社製）を、追加免疫時（１４日以降）にはフロイントの不完全アジュバント（Ｆ５５０６、シグマ社製）を用いた。
（９）抗体価の測定
表３に示した採血で得た血清を用いて、上記（５）と同様にしてＥＬＩＳＡを行った。
抗体価の上昇が見られたサンプルにおける採血１〜７で得られた血清を用いた。４５０ｎｍと６５０ｎｍの吸光度を測定し、４５０ｎｍから６５０ｎｍの吸光度を差し引いた値を縦軸として、得られた結果を図４に示す。
図４の結果より、マウス体内において、ヒトアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチド（ＡＰＰ−ＳＰ）に結合性を有する抗体産生が行なわれていることが確認できた。
表３に示した採血で得た血清を用いて、上記（５）と同様にしてＥＬＩＳＡを行った。
抗体価の上昇が見られたサンプルにおける採血１〜７で得られた血清を用いた。４５０ｎｍと６５０ｎｍの吸光度を測定し、４５０ｎｍから６５０ｎｍの吸光度を差し引いた値を縦軸として、得られた結果を図４に示す。
図４の結果より、マウス体内において、ヒトアミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチド（ＡＰＰ−ＳＰ）に結合性を有する抗体産生が行なわれていることが確認できた。
（１０）抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの作成
株式会社ベックスに委託して、（９）抗体価の測定において、抗体価の上昇がみられたマウスのＢ細胞をもとにハイブリドーマを作製した。
ＡＰＰ−ＳＰに対する抗体価の上昇が確認された免疫開始後９４日目のマウスの脾臓を摘出して調整したＢ細胞と、ミエローマ細胞Ｐ３Ｕ１とを、５０％ＰＥＧ１５００（ロシュ社製）の作用によって細胞融合させた。融合後の細胞を、あらかじめフィーダー細胞を加えた９６穴プレート１０枚へ蒔き、ＨＡＴ培地によりハイブリドーマを選択的に増殖させた。
反応性が確認されたウェル内の細胞を２４穴プレートにて拡大培養させた。拡大培養後、上記（５）と同様にしてＥＬＩＳＡを行い、陽性が示されたハイブリドーマを選択し、クローニングを行なった。クローニングは限界希釈法を２回繰り返すことにより行い、最終的にＡＰＰ−ＳＰに反応を示すモノクローナル抗体を産生する１種類のクローンを得た（以下、このクローンを１２Ａ３ハイブリドーマと呼ぶ）。かかる１２Ａ３ハイブリドーマは、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ、日本国 千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）に２０１２年１月６日に特許手続上の微生物の寄託等の国際的承認に関するブタペスト条約に基づいた国際寄託され受領されている（受領番号ＮＩＴＥ ＡＢＰ−１１９８）。
株式会社ベックスに委託して、（９）抗体価の測定において、抗体価の上昇がみられたマウスのＢ細胞をもとにハイブリドーマを作製した。
ＡＰＰ−ＳＰに対する抗体価の上昇が確認された免疫開始後９４日目のマウスの脾臓を摘出して調整したＢ細胞と、ミエローマ細胞Ｐ３Ｕ１とを、５０％ＰＥＧ１５００（ロシュ社製）の作用によって細胞融合させた。融合後の細胞を、あらかじめフィーダー細胞を加えた９６穴プレート１０枚へ蒔き、ＨＡＴ培地によりハイブリドーマを選択的に増殖させた。
反応性が確認されたウェル内の細胞を２４穴プレートにて拡大培養させた。拡大培養後、上記（５）と同様にしてＥＬＩＳＡを行い、陽性が示されたハイブリドーマを選択し、クローニングを行なった。クローニングは限界希釈法を２回繰り返すことにより行い、最終的にＡＰＰ−ＳＰに反応を示すモノクローナル抗体を産生する１種類のクローンを得た（以下、このクローンを１２Ａ３ハイブリドーマと呼ぶ）。かかる１２Ａ３ハイブリドーマは、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ、日本国 千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）に２０１２年１月６日に特許手続上の微生物の寄託等の国際的承認に関するブタペスト条約に基づいた国際寄託され受領されている（受領番号ＮＩＴＥ ＡＢＰ−１１９８）。
（１１）１２Ａ３ハイブリドーマが産生する抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体の評価
抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体のＡＰＰ−ＳＰに対する反応特異性を調べるため、競合ＥＬＩＳＡを行なった。具体的には、上記（５）と同様の方法でＥＬＩＳＡを行なうのだが、一次抗体反応には、１２Ａ３ハイブリドーマを培養させた培養上清を３倍希釈で使用し、この溶液に０．２％ ＰＥＧ６０を含む場合（競合−）と、１００μｇ／ｍＬ ＡＰＰ−ＳＰ、０．２％ ＰＥＧ６０を含む場合（競合＋）とを用意し比較した。図５に結果を示すように、ＡＰＰ−ＳＰを競合させた場合、シグナル強度が９２％減少したため、本モノクローナル抗体のＡＰＰ−ＳＰに対する結合性を確認することが出来た。
また、マウスモノクローナル抗体サブクラス判定キット（ロシュ社製）を用いて１２Ａ３ハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体のサブクラスを解析したところ、ＩｇＧ２ａであることが示された。
抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体のＡＰＰ−ＳＰに対する反応特異性を調べるため、競合ＥＬＩＳＡを行なった。具体的には、上記（５）と同様の方法でＥＬＩＳＡを行なうのだが、一次抗体反応には、１２Ａ３ハイブリドーマを培養させた培養上清を３倍希釈で使用し、この溶液に０．２％ ＰＥＧ６０を含む場合（競合−）と、１００μｇ／ｍＬ ＡＰＰ−ＳＰ、０．２％ ＰＥＧ６０を含む場合（競合＋）とを用意し比較した。図５に結果を示すように、ＡＰＰ−ＳＰを競合させた場合、シグナル強度が９２％減少したため、本モノクローナル抗体のＡＰＰ−ＳＰに対する結合性を確認することが出来た。
また、マウスモノクローナル抗体サブクラス判定キット（ロシュ社製）を用いて１２Ａ３ハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体のサブクラスを解析したところ、ＩｇＧ２ａであることが示された。
（１２）抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体の製造
メスのマウスＢＡＬＢ／ｃ ３匹にプリスタン（シグマ社製）を１匹あたり０．５ｍＬ腹腔内に投与した。１週間後、あらかじめ培養しておいた１２Ａ３ハイブリドーマを１匹あたり１×１０７個腹腔内に投与した。１週間後、腹水を採取し、遠心操作により上清を回収した。３匹から９．５ｍＬの上清液が得られた。得られた上清液に５０％になるよう飽和硫酸アンモニウム溶液を滴下し、４℃で１時間撹拌させた。
次に、遠心操作を行い、上清を破棄した。再度、５０％飽和硫酸アンモニウム、ＰＢＳ（ｐＨ７．４）を添加し、軽く撹拌した後、遠心操作を行って上清を破棄した。得られた沈殿にリン酸緩衝液を添加、溶解させた。さらに、脱塩カラムＰＤ−１０（ＧＥヘルスケア社製）を用いてリン酸緩衝液にバッファー交換を行なった。この溶液から、ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ カラム（ＧＥヘルスケア社製）を使用したアフィニティクロマトグラフィーにより、ＩｇＧ画分のみ精製した。溶出液は０．１Ｍ グリシン（ｐＨ２．７）で行い、脱塩カラムＰＤ−１０によりリン酸緩衝液にバッファー交換した。ＵＶ２８０ｎｍの吸光度を測定することにより、１５ｍｇの抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体が得られたことがわかった。
メスのマウスＢＡＬＢ／ｃ ３匹にプリスタン（シグマ社製）を１匹あたり０．５ｍＬ腹腔内に投与した。１週間後、あらかじめ培養しておいた１２Ａ３ハイブリドーマを１匹あたり１×１０７個腹腔内に投与した。１週間後、腹水を採取し、遠心操作により上清を回収した。３匹から９．５ｍＬの上清液が得られた。得られた上清液に５０％になるよう飽和硫酸アンモニウム溶液を滴下し、４℃で１時間撹拌させた。
次に、遠心操作を行い、上清を破棄した。再度、５０％飽和硫酸アンモニウム、ＰＢＳ（ｐＨ７．４）を添加し、軽く撹拌した後、遠心操作を行って上清を破棄した。得られた沈殿にリン酸緩衝液を添加、溶解させた。さらに、脱塩カラムＰＤ−１０（ＧＥヘルスケア社製）を用いてリン酸緩衝液にバッファー交換を行なった。この溶液から、ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ カラム（ＧＥヘルスケア社製）を使用したアフィニティクロマトグラフィーにより、ＩｇＧ画分のみ精製した。溶出液は０．１Ｍ グリシン（ｐＨ２．７）で行い、脱塩カラムＰＤ−１０によりリン酸緩衝液にバッファー交換した。ＵＶ２８０ｎｍの吸光度を測定することにより、１５ｍｇの抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体が得られたことがわかった。
（１３）精製後の抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体のＥＬＩＳＡ評価
（１２）で得られた抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体を用いて、上記（５）と同様のＥＬＩＳＡを行なった。但し、一次抗体には（１２）で得た抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体を含む溶液を使用した。結果を図６に示す。
図６に示すように、精製後、本抗体のＡＰＰ−ＳＰに対する反応性が確認できた。
（１２）で得られた抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体を用いて、上記（５）と同様のＥＬＩＳＡを行なった。但し、一次抗体には（１２）で得た抗ＡＰＰ−ＳＰモノクローナル抗体を含む溶液を使用した。結果を図６に示す。
図６に示すように、精製後、本抗体のＡＰＰ−ＳＰに対する反応性が確認できた。
関連出願の相互参照
本出願は、２０１１年１月７日出願の日本特許出願（特願２０１１−２４６４号）及び２０１１年１月７日出願の日本特許出願（特願２０１１−２４６５号）に基づくものであり、その内容はここに参照として取り込まれる。
本出願は、２０１１年１月７日出願の日本特許出願（特願２０１１−２４６４号）及び２０１１年１月７日出願の日本特許出願（特願２０１１−２４６５号）に基づくものであり、その内容はここに参照として取り込まれる。
本発明により、疎水性が高いペプチドに対する抗体を製造する方法を提供することができる。本発明の製造方法により得られる抗ＡＰＰ−ＳＰ抗体は、アルツハイマー病の診断、治療などに利用することができるという点で、産業上の利用可能性を有する。
配列番号１は、アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドのアミノ酸配列を示す。
Claims (6)
- （１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、及び
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物（ヒトを除く）に投与する工程、
を含む、抗シグナルペプチド抗体の製造方法。 - 前記ＰＥＧ系界面活性剤が、下記式で表される群から選択される少なくとも１種の化合物である、請求項１に記載の抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
- 前記ＰＥＧ系界面活性剤が、上記式において、ｘが５０であるＣＳ−０５０、又はｍが１であり、ｎが６０であるＰＥＧ６０である、請求項２に記載の抗シグナルペプチド抗体の製造方法。
- 前記工程（１）において、アジュバントをさらに混合する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の抗体の製造方法。
- （１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物（ヒトを除く）に投与する工程、及び
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合する工程を含む、ハイブリドーマ細胞の製造方法。 - （１）アミロイド前駆体タンパク質のシグナルペプチドを、ＰＥＧ系界面活性剤を含む溶液中に混合して、シグナルペプチドミセル凝集体を作成する工程、
（２）前記シグナルペプチドミセル凝集体を被免疫動物（ヒトを除く）に投与する工程、
（３）前記被免疫動物より抗体産生細胞を採取し、ミエローマ細胞と融合してハイブリドーマ細胞を作製する工程、及び
（４）前記ハイブリドーマ細胞を培養する工程を含む、モノクローナル抗体の製造方法。
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