JP2011016763A - 疎水性ペプチドに対する抗体の製造方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明によって提供される製造方法は、疎水性ペプチドに対する抗体の製造方法であって、上記疎水性ペプチドのN末端側に親水性ポリマーが付加され、且つ該疎水性ペプチドのC末端側に少なくとも一つのCys残基が付加され、さらに上記Cys残基にキャリアタンパク質が連結されたコンジュゲートを抗原として、該抗原で免疫した哺乳動物から抗体を取得することを特徴とする。
【選択図】図1
Description
例えば、非特許文献1では、適当な架橋剤を用いて高分子量のキャリアタンパク質と低分子量のポリペプチドとを連結したコンジュゲートを用いて抗体を製造している。また、キャリアタンパク質に連結されるポリペプチドは、親水性のアミノ酸残基を備えるものの方がより効率よくキャリアタンパク質と連結することができることが報告されている。
さらに、非特許文献4では、カルシトニン(calcitonin)のシグナルペプチドの一部がMHCにより非小細胞性肺がん細胞の表面に提示され、当該ペプチドをエピトープとして細胞傷害性T細胞が認識することが明らかとなっており、シグナルペプチドの解析によって、がんワクチンをはじめとする様々な免疫疾病治療薬の開発につながることが期待されている。そのため、生体内の生理的現象の解明や、免疫疾病の診断および治療方法の研究において、かかるシグナルペプチドを抗原として用いて製造される抗体の有用性が近年高まっている。
ここで開示される上記疎水性ペプチドに対する抗体の製造方法は、上記疎水性ペプチドのN末端側に親水性ポリマーが付加され、且つ該疎水性ペプチドのC末端側に少なくとも一つのCys残基が付加され、さらに、上記Cys残基にキャリアタンパク質が連結されたコンジュゲートを抗原として、該抗原で免疫した哺乳動物から抗体を取得することを特徴とする。
また、本明細書において「疎水性のアミノ酸残基」とは、Val、Leu、Ile、Phe、Trp、Pro、Gly、AlaおよびMetをいう。また、かかる疎水性のアミノ酸残基の数が全アミノ酸残基数の少なくとも30%以上であるペプチドを、以下、本明細書では「疎水性ペプチド」と略称する。
また、本明細書において「ペプチド」とは、複数のペプチド結合を有するアミノ酸ポリマーを指す用語であり、ペプチド鎖に含まれるアミノ酸残基の数によって限定されない。従ってアミノ酸残基数が10程度までのオリゴペプチドあるいはそれ以上のアミノ酸残基から成るポリペプチドも本明細書における「ペプチド」に包含される。
また、本明細書において「コンジュゲート」とは、上記疎水性ペプチドにキャリアタンパク質およびその他の担体(親水性ポリマー、Cys残基)が共有結合で連結された生成物をいう。
また他の好ましい一態様では、上記ポリエチレングリコールとして、NHSエステルを有するものを使用し、上記疎水性ペプチドおよび該NHSエステルを有するポリエチレングリコールを、尿素および界面活性剤を少なくとも含む反応溶液中で一定時間加熱することにより、該疎水性ペプチドのN末端側に該ポリエチレングルコールを付加する。尿素および界面活性剤を少なくとも含む溶液中で、上記疎水性ペプチドおよび上記NHSエステルを有するポリエチレングリコールを加熱して反応させることによって、疎水性ペプチドに対するPEG化を促進し得る。
上記架橋剤としては、具体的にビス(スルホスクシンイミジル)スベレート(BS3)またはm−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル(MBS)を好ましく用いることができる。
更に好ましくは、上記疎水性ペプチドは、アミロイド前駆体タンパク質シグナルペプチド(APPsp)のアミノ酸配列:MLPGLALLLLAAWTARA(配列番号1);を含む。
好ましい抗体の例示として、以下の配列:MLPGLALLLLAAWTARA(配列番号1);から構成されるアミロイド前駆体タンパク質シグナルペプチド(APPsp)に対するポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体が挙げられる。
また、ここで開示される検出方法の好ましい一態様では、上記検体は、親水性ポリマー、尿素および界面活性剤を少なくとも含む反応溶液中で一定時間加熱して用いられる。また、上記親水性ポリマーとして、分子量が1000以下であって、NHSエステルを有するポリエチレングリコールが好ましく使用される。
すなわち、本発明によれば、上記疎水性ペプチドとして、全アミノ酸残基数が50以下(例えば10〜50個)の比較的短い鎖長であるものが好ましく採用され、全アミノ酸残基数が30以下(例えば10〜20個)で構成されるものも好適に使用することができる。また、ここで使用される疎水性ペプチドは、全アミノ酸残基数のうちの少なくとも30%以上のアミノ酸が疎水性アミノ酸残基であり得る。具体的には、Val、Leu、Ile、Phe、Trp、Pro、Gly、AlaおよびMetよりなる群から選択される疎水性アミノ酸残基数が占める割合が、全アミノ酸残基数の30%以上であり、この割合が50%以上であってもよく、さらにはこの割合が80%以上の疎水性ペプチドを使用することができる。
シグナルペプチドは、生体内でタンパク質が目的の区画(小胞体、ミトコンドリアなど)へ移行し、シグナルペプチダーゼにより切断された後、様々な生理的な役割を担うことが知られている。したがって、シグナルペプチドの解析によって、生体内の生理的現象の解明や、免疫疾病の診断および治療薬の開発につながることが期待されている。しかしながら、多数のシグナルペプチドは疎水性アミノ酸残基を含む鎖長の短いポリペプチドであるため、哺乳動物の生体内から効率的に検出または単離することが困難であった。そこで、既知のいずれかのシグナルペプチドを構成するアミノ酸配列を含む疎水性ペプチド(すなわち、該シグナルペプチドそのものの他、該シグナルペプチドを配列中のいずれかに人為的に組み込んで設計されたペプチドを含む)を使用することによって、ここに開示される抗体の製造方法により得られる疎水性ペプチドに対する抗体は様々な利用(該抗体に認識される疎水性ペプチドの検出方法等)が期待される。
本実施形態に係る疎水性ペプチドの一例として、いくつかの配列を表1に示す。
また、本実施形態に係る疎水性ペプチドは、表1に示すように、HD5SP1のようなディフェンシンのシグナルペプチドを構成するアミノ酸配列を含むものでもよい。ただし、表1に例示した疎水性ペプチドのみに限定するものではない。
なお、上記疎水性ペプチドを構成するアミノ酸残基のいくつかが、該疎水性ペプチドの構造または機能に有意に影響することなく容易に改変され得ることは、当該分野において周知である。さらに人為的に改変させるだけではなく、天然のペプチドにおいて、当該ペプチドの構造または機能を有意に変化させない変異体が存在することもまた周知である。よって当業者は、周知技術を使用して疎水性ペプチドのアミノ酸配列において1または数個のアミノ酸を容易に変異させることができる。また、当業者は当該疎水性ペプチドが所望の活性を有しているか否かを容易に確認し得る。
さらに、上記PEGの特徴としては、分子量が1000以下のものが好ましい。また、下記の一般式(1)で示されるPEGであるが、ここで好ましく用いられるPEGは、式(1)中、nは5〜20の整数であり、このうち5〜15が好ましく、10〜13がより好ましく、例えばnが12で示されるPEGを親水性ポリマーとして用いることができる。
HO−(CH2−CH2−O)n−H (1)
かかる製造方法は、まず、抗原となるべくコンジュゲートを作製する。そこで、疎水性ペプチド(典型的には疎水性のアミノ酸残基数が全アミノ酸残基数の少なくとも30%以上である、全残基数が50残基以下のアミノ酸残基から構成される。)を用意(化学合成)する。Fmoc(9−fluorenylmethoxycarbonyl)固相合成法を用いて、上記疎水性ペプチドのN末端側に親水性ポリマー(例えば分子量が1000以下のポリエチレングルコール)を有し、C末端側に少なくとも一つのCys残基を有する構造を備えるペプチドを化学合成することができる。あるいは、Fmocを用いて、疎水性ペプチドのC末端側に少なくとも一つのCys残基を有するペプチドを固相合成した後、後述する方法によって、該ペプチドのN末端側に親水性ポリマーを付加してもよい。
疎水性ペプチドは、水溶液中では凝集または沈殿し易いため、そのままではキャリアタンパク質を連結したコンジュゲートを作製するのは困難であるが、このように、上記疎水性ペプチドにPEGを付加し水に対する溶解性を向上させることによって、後述するコンジュゲートを効率良く作製することができる。
また、上記疎水性ペプチドのC末端側にCys残基を付加したものを用意(化学合成)することにより、後述するキャリアタンパク質の連結(コンジュゲーション)において、SH基選択的な架橋剤を用いた反応が可能となる。
また、このときの加熱条件としては、約80℃以上100℃以下の温度が好ましく、例えば、凡そ95℃の温度で1時間程度インキュベートすることにより疎水性ペプチドのN末端にPEGを好適に付加し得る。
免疫する哺乳動物は、モルモット、ラット、マウス、ウサギ、ヒツジ等の実験動物が用いられるが、モノクローナル抗体あるいはポリクローナル抗体を得るためには、ラット、マウス、ウサギが好適である。免疫方法は、例えば、皮下、腹腔内、静脈内、筋肉内、皮内等のいずれの投与経路を用いてもよいが、主として、皮下、腹腔内、静脈内に注入するのが好ましい。また、免疫間隔、免疫量等も特に制限なく種々の方法を用いることが可能であるが、例えば、2週間隔で約2〜10回免疫し、最終免疫後、約1〜5回、好ましくは約2〜7日後に生体内から検体を採取する方法がよく用いられる。また、免疫量は1回に投与するペプチド量を限定するものではいが、例えば、マウス当り10〜200μg程度を用いることが好ましい。初回は上記コンジュゲートをアジュバント(例えば、フロイントの完全アジュバント)とよく混合してマウスの腹腔内に投与し、細胞を増殖させ、2週間隔で再び該コンジュゲートをアジュバント(例えば、フロイントの不完全アジュバント)をよく混合して腹腔内に投与し、腹水を採取することにより、高力価の疎水性ペプチドに対するモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体を効率良く取得することができる。なお、目的のモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体の精製は、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過法、硫安塩析法等の公知の方法により行うことができる。
上記検体としては、いかなる態様のものでもよく、例えば、血液、血清、血漿、リンパ液、尿、髄液、唾液、汗、腹水、羊水、細胞および臓器の抽出液等から調整した生体試料を使用することができる。なお、上記生体試料は、必要に応じて適切に処理することができる。例えば、細胞の分離、抽出操作などした試料については、免疫組織染色法、酵素免疫測定法、凝集法、競合法、サンドイッチ法など既知の方法を適用することができる。免疫組織染色法は、例えば標識化抗体を用いる直接法、該抗体に対する抗体の標識化されたものを用いる間接法などにより行い得る。標識化剤としては蛍光物質、放射性物質、酵素、金属、色素など公知の標識物質はいずれも使用できる。
かかるPEG化の反応条件としては、上述の抗体の製造方法で詳述した条件と同様の方法を用いて、疎水性ペプチドにPEGを好適に付加することができる。これにより、検体中に含まれるPEG化した疎水性ペプチドを上記製造方法により得られた抗体を用いて容易に検出することができる。なお、抗体の製造方法で抗原として用いたコンジュゲートは、疎水性ペプチドのC末端にCys残基が付加されているが、検体中からの疎水性ペプチドの検出においては、該検体に含む疎水性ペプチドはPEG化処理のみで、Cys残基の付加は不要である。すなわち、上記疎水性ペプチドに対する抗体の製造方法により得られた抗体は、Cys残基を有しないPEG化した疎水性ペプチドを検出することができる。
ヒトアミロイド前駆体タンパク質(APP)のアミロイド前駆体タンパク質シグナルペプチド(APPsp)のアミノ酸配列:MLPGLALLLLAAWTARAのN末端にPEG(上記式(1)で示される一般式のうち、nが整数12)を有し、C末端にCys残基を有する疎水性ペプチド(以下、「PEG-APPsp-Cys」という)を以下の方法で化学合成した。
すなわち、上記ペプチド合成はSyro II(Multi SynTech, Germany)を用いてFmoc固相合成法(Solid Phase Peptide Synthesis method)により行った。具体的には、各アミノ酸誘導体は側鎖が保護されたものを使用し、ポリスチレン固相担体上でペプチド鎖構築を行い完全長を作製した。そして、担体から切り出して脱保護し、精製することによりPEG-APPsp-Cysを得た。なお、カラムは、Superco Discovery HS C18, particle 3μm(pore 120ÅCarbon20%)を用い、移動相として0.1%TFA(トルフルオロ酢酸)/H2Oを90〜40%に、0.1%TFA/ACN(アセトニトリル)を10〜60%を勾配させてPEG-APPsp-Cysを含む分画を回収した。図1に、上記合成したペプチドPEG-APPsp-Cysの化学構造式を示す。
上記合成した疎水性ペプチドPEG-APPsp-CysをMBS法によりキャリアタンパク質KLHに連結させてコンジュゲートを作製した。該コンジュゲートを抗原として、ウサギ一羽に免疫した。表2に、かかる免疫方法を示す。
上記コンジュゲートを抗原として免疫したウサギから得られた抗APPsp抗体の力価を評価するため、EIAを行った。抗原には、コンジュゲートを作製する際に使用したPEG-APPsp-Cysを用いた(図1参照)。
上記EIAで確認した力価がPEG-APPsp-CysのAPPsp領域に対する反応結果であることを確認するため、PEG単体に対して抗APPsp抗体が結合しないことを、以下に示す手順で確認した。
上記コンジュゲートを抗原として免疫したウサギから得られた抗APPsp抗体の力価を評価するため、ドットブロット法による抗APPsp抗体の力価測定を行なった。以下、ドットブロット法の操作を示す。
上記コンジュゲートを抗原として免疫したウサギから取得した抗APPsp抗体の力価を評価するため、ウェスタンブロット法による抗APPsp抗体の力価測定を行なった。以下、ウェスタンブロット法の操作を示す。
上記コンジュゲートを抗原として免疫したウサギから得られた抗APPsp抗体のPEG-APPsp-Cysに対する力価が、PEG-APPsp-CysのC末端に位置するCys残基の有無により影響されるか否かについて検討した。
上記PEG-APPspの合成は、Fmoc固相合成法により行なった。合成したペプチドは、ODSカラムを用いて、移動相として0.1%TFA/H2Oと0.1%TFA/ACNを用いた濃度勾配法により精製した。そして、2 μg/mL PEG-APPsp-Cys, 2 M 尿素溶液を含む溶液、および2 μg/mL PEG-APPsp, 2 M 尿素溶液を含む溶液をそれぞれ調製した。上記調製したそれぞれの溶液100 μLをMicrotiter Assembly Breakable Strip 1×8, EBに加え、一晩静置した。そして、Auto MINI Washerでマイクロウェルの溶液を排出し、250 μL Blocking solution(1% BSA, PBS, 5% sucrose, 0.1% NaN3)を加えた。室温で2時間インキュベートした後、Auto MINI WasherでBlocking solutionを除いた。ここにPBST(0.1% Tween20, PBS)で希釈した抗APPsp抗体のIgGを100 μLずつ加えた。なお、IgGはprotein Aを用いたアフィニティ精製により得たものを用いた。さらに、室温で1時間インキュベートした後、Auto MINI Washerを用いてPBSTで6回洗浄した。0.1% BSA, PBS溶液で2000倍希釈したAnti-rabbit immunoglobulins/HRPを100 μL加え、室温で1時間インキュベートした。Auto MINI Washerを用いてPBSTで6回洗浄した後、100 μL オルトフェニレンジアミン溶液(0.417% オルトフェニレンジアミン, 0.009% H2O2)を加えた。そして、室温で30分間インキュベートした後、2規定硫酸を100 μL加え反応をとめた。Labsystems Multiskan Bichromaticでマイクロウェルの溶液の492 nmおよび600 nmの吸光度を測定した。吸光度(492 nm)から吸光度(600 nm)を差し引いた吸光度をプロットして作成したグラフを図7に示す。
APPspのアミノ酸配列:MLPGLALLLLAAWTARAのN末端に付加したPEG(上記式(1)で示される一般式のうち、nが整数12)鎖端に、さらにCys残基を付加した疎水性ペプチド(以下、「Cys-PEG-APPsp」という)を抗原として用いてポリクローナル抗体を作製し、PEGの位置関係が抗体の作製にどのような影響を及ぼすか調べた。
まず、上記Cys-PEG-APPspをMBS(m-Maleimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimide Ester)法によりキャリアタンパク質KLHに連結させてコンジュゲートを作製した。すなわち、2.86 mg/mL Cys-PEG-APPsp, 14.3% DMSO, 5% TritonX-100, 2.86 mg/mL maleimide activated mcKLH(PIERCE, #77606)となるように調製した溶液を用意し、該溶液を22℃で21時間インキュベートさせた。なお、maleimide activated mcKLHはEDTA(エチレンジアミン四酢酸)を含む状態で凍結乾燥されたものを使用したので、上記調製した溶液中にはEDTAが存在するが、EDTAは凝集作用があるので免疫する溶液中には含まれないことが望ましいため、EDTAを除去する操作を行った。かかるEDTAの除去は、50 kDa以下の分子を透過する膜を有するAmicon Ultra-4 50K NMWL (Millipore, #UFC910024)を用いてEDTAを含む溶媒をPBSに置換して行った。こうして作製したコンジュゲートを抗原として、表3に示す免疫方法でウサギ一羽およびマウス五匹に免疫し、全採血により血清を得た。
まず、2 μg/mL PEG-APPsp, 2 M 尿素溶液をMicrotiter Assembly Breakable Strip 1×8, EBに100 μLずつ加え、一晩静置した。Auto MINI Washerでマイクロウェルの溶液を排出し、250 μL Blocking solution(1% BSA, PBS, 5% sucrose, 0.1% NaN3)を加えた。室温で2時間インキュベートした後、Auto MINI WasherでBlocking solutionを除いた。ここにPBST(0.1% Tween20, PBS)で500, 8000, 64000倍に希釈した上記血清を100 μLずつ加えた。室温で1時間インキュベートした後、Auto MINI Washerを用いてPBSTで6回洗浄した。0.1% BSA, PBS溶液で2000倍希釈したAnti-rabbit immunoglobulins/HRPまたは4000倍希釈したHRP labeled Anti-mouse IgG (H+L chain) (MBL, #330)をそれぞれ100 μL加え、室温で1時間インキュベートした。さらに、Auto MINI Washerを用いてPBSTで6回洗浄した後、100 μL オルトフェニレンジアミン溶液(0.417% オルトフェニレンジアミン, 0.009% H2O2)を加えた。室温で30分間インキュベートした後、2規定硫酸を100 μL加え反応をとめた。Labsystems Multiskan Bichromaticでマイクロウェルの溶液の492 nmおよび600 nmの吸光度を測定した。吸光度(492 nm)から吸光度(600 nm)を差し引いた吸光度をプロットして作成したグラフを図9に示す。
上述の[8.PEGの付加位置の異なる疎水性ペプチドを用いて作製したコンジュゲートを抗原とするポリクローナル抗体の作製(比較例1)]で用いた架橋剤の種類をMBSからBS3に変えて作製したコンジュゲートを抗原として用いて、ポリクローナル抗体を作製した。
すなわち、上記合成したPEG-APPspを架橋剤Bis[Sulfosuccinimidyl]suberate(BS3)によりキャリアタンパク質KLHに連結させてコンジュゲートを作製するため、2.5 mg/mL PEG-APPsp, 12.5% DMSO, 1% TritonX-100, 2.5 mg/mL KLH(Wako, #080-7666), 7.8 mM BS3となるように溶液を調製し、22℃で15.5時間インキュベートした。こうして作製したコンジュゲートを抗原として、表3に示す免疫方法でウサギ一羽およびマウス五匹に免疫し、全採血により血清を得た。
図11中のA〜Cの構造模式図は、[2.疎水性ペプチドのコンジュゲートによる抗原の作製と免疫によるポリクローナル抗体の作製(実施例1)]、[8.PEGの付加位置の異なる疎水性ペプチドを用いて作製したコンジュゲートを抗原とするポリクローナル抗体の作製(比較例1)]および[9.異なる架橋剤を用いて作製したコンジュゲートを抗原とするポリクローナル抗体の作製(比較例2)]において使用した抗原をそれぞれ示す。図11に示すように、高力価が得られたAの抗原は、N末端側からPEG、APPsp、キャリアタンパク質の順番で位置する構造を有する。一方、抗体が得られなかったBおよびCの抗原は、APPsp、PEG、キャリアタンパク質の順番で位置する構造を有する。したがって、PEGを付加したペプチドに対する力価の高い抗体を作製する場合は、Aに示す抗原の構造のように、キャリアタンパク質を中心とすると、構造式の最も端部にPEGが配置されるような抗原を用いることが必要であることが示された。
次に、アミロイド前駆体タンパク質シグナルペプチド(APPsp)のアミノ酸配列:MLPGLALLLLAAWTARA(配列番号1)のN末端にPEGを付加する際の反応条件について、NHS-dPEG12Biotin(Quanta Biodesign, #10198)を用いて検討した。図12に、NHS-dPEG12Biotinの化学構造式を示す。
中性水溶液(PBS, 1%Nonidet P-40)下で反応を行ったところ、APPspはNHS-dPEG12Biotinと全く反応しなかったため、APPspのアミノ末端アミノ基は遊離した状態ではないことが示された。そこで、APPspのアミノ末端アミノ基を遊離させる条件を以下の手順で検討した。
そして、上記調製した溶液に、DMSOに溶解した1mg/mL APPspを1/100容添加し、APPsp終濃度を10μg/mLとした。これらの溶液を各2本ずつ調製し、1セットをReacti-Bind Maleic Anhydride Plate(PIERCE #15100)ウェル当たり各100μL添加し、37℃で1時間保温した。別のセットは96℃で3分加熱後に、同様に処理した。処理後、ウェル内の溶液を除き、ウェルをPBSTで2回洗浄した。ウェルに250μLのStarting Block Blocking Buffer (PIERCE, #37538) を添加し、室温で10分間置きブロッキングを行った。ウェル内の溶液を除き、1%BSA, PBSTで1000倍希釈した抗APPsp抗体のIgGを添加し、室温で1時間静置した後、さらにウェルをPBSTで6回洗浄した。1% BSA, PBST溶液で4000倍希釈したAnti-rabbit immunoglobulins/HRPを100 μL加え、室温で1時間インキュベートした。PBSTで6回洗浄した後、100 μL オルトフェニレンジアミン溶液(0.417% オルトフェニレンジアミン, 0.009% H2O2)を加えた。室温で30分間インキュベートした後、2規定硫酸を100 μL加え反応をとめた。Labsystems Multiskan Bichromaticでマイクロウェルの溶液の492 nm, 600 nmの吸光度を測定した。吸光度(492 nm)から吸光度(600 nm)の値を差し引いた吸光度をプロットして作成したグラフを図13に示す。
上述の[10.APPspのN末端の共有結合反応条件の検討]で確認した反応条件を用いてPEG化したAPPspに対して、抗APPsp抗体による検出を試みた。
標的とする疎水性ペプチドを含む生体試料のサンプル溶液をPEG化処理し、さらに上記作製したポリクローナル抗体を使用することによって、標的とする疎水性ペプチドを検出することが可能であるか検証した。以下、ウシ胎児血清に添加した疎水性ペプチドAPPspをPEG化処理し、抗APPsp抗体によって該PEG化処理APPspを検出できるか検討した。
なお、サンプル1および3を除く、サンプル2,4,5にはPEG(NHS-dPEG12Biotin)を添加した。また、サンプル1および2を除く、サンプル3〜5には疎水性ペプチドAPPspを含む溶液を調製した。それぞれのサンプルの組成は以下のとおりである。
サンプル1: 8 M 尿素, 30% DMSO, 1% Tween20, 25% ウシ胎児血清(Gibco, #10099-141), 0.4×PBSを含む溶液
サンプル2: 5 mM NHS-dPEG12Biotin, 8 M 尿素, 30% DMSO, 1% Tween20, 25% ウシ胎児血清, 0.4×PBSを含む溶液
サンプル3: 2.5 mg/mL APPsp, 8 M 尿素, 30% DMSO, 1% Tween20, 25% ウシ胎児血清, 0.4×PBSを含む溶液
サンプル4: 1 mg/mL APPsp, 5 mM NHS-dPEG12Biotin, 8 M 尿素, 30% DMSO, 1% Tween20, 25% ウシ胎児血清, 1% Tween20, 0.4×PBSを含む溶液
サンプル5: 2.5 mg/mL APPsp, 5 mM NHS-dPEG12Biotin, 8 M 尿素, 30% DMSO, 1% Tween20, 25% ウシ胎児血清, 0.4×PBSを含む溶液
Claims (14)
- 疎水性ペプチドに対する抗体の製造方法であって、
前記疎水性ペプチドのN末端側に親水性ポリマーが付加され、且つ該疎水性ペプチドのC末端側に少なくとも一つのCys残基が付加され、さらに前記Cys残基にキャリアタンパク質が連結されたコンジュゲートを抗原として、該抗原で免疫した哺乳動物から抗体を取得することを特徴とする、製造方法。 - 前記親水性ポリマーとして、分子量が1000以下のポリエチレングリコールを使用する、請求項1に記載の製造方法。
- 前記ポリエチレングリコールとして、NHSエステルを有するものを使用し、前記疎水性ペプチドおよび該NHSエステルを有するポリエチレングリコールを、尿素および界面活性剤を少なくとも含む反応溶液中で一定時間加熱することにより、該疎水性ペプチドのN末端側に該ポリエチレングルコールを付加する、請求項2に記載の製造方法。
- ホモ二官能性基またはヘテロ二官能性基を有する架橋剤を用いて前記Cys残基に前記キャリアタンパク質を連結する、請求項1〜3のいずれかに記載の製造方法。
- 前記架橋剤としては、ビス(スルホスクシンイミジル)スベレート(BS3)またはm−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル(MBS)を用いる、請求項4に記載の製造方法。
- 前記疎水性ペプチドとして、既知のいずれかのシグナルペプチドを構成するアミノ酸配列を含むように化学合成された合成ペプチドを使用する、請求項1〜5のいずれかに記載の製造方法。
- 前記疎水性ペプチドは、アミロイド前駆体タンパク質シグナルペプチド(APPsp)のアミノ酸配列:
MLPGLALLLLAAWTARA(配列番号1);
を含む、請求項6に記載の製造方法。 - 請求項1〜7のいずれかに記載の製造方法により製造された、疎水性ペプチドに対する抗体。
- 以下のアミノ酸配列:
MLPGLALLLLAAWTARA(配列番号1);
から構成されるアミロイド前駆体タンパク質シグナルペプチド(APPsp)に対するポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体である、請求項8に記載の抗体。 - 請求項1〜7のいずれかに記載の製造方法により得られた抗体または請求項8〜9のいずれかに記載の抗体を用いた抗原抗体反応に基づいて、検体中から所定の疎水性ペプチドを検出する、検出方法。
- 前記検体は、親水性ポリマー、尿素および界面活性剤を少なくとも含む反応溶液中で一定時間加熱して用いられる、請求項10に記載の検出方法。
- 前記親水性ポリマーとして、分子量が1000以下であって、NHSエステルを有するポリエチレングリコールが使用される、請求項11に記載の検出方法。
- 検体中から所定の疎水性ペプチドを検出するための試薬であって、
請求項1〜7のいずれかに記載の製造方法により得られた抗体または請求項8〜9のいずれかに記載の抗体と、親水性ポリマー、尿素および界面活性剤とを少なくとも含有する、疎水性ペプチド検出用試薬。 - 前記親水性ポリマーとして、分子量が1000以下であって、NHSエステルを有するポリエチレングリコールが使用される、請求項13に記載の試薬。
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