JP5699416B2 - ポリフェノール類の重合体を含有したリパーゼ阻害剤 - Google Patents
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Description
本発明は、抗酸化作用およびリパーゼ阻害作用を有するポリフェノール類の重合体、並びにこれを含有した抗酸化剤およびリパーゼ阻害剤に関する。
糖尿病などに代表される生活習慣病は、遺伝因子と環境因子の相乗作用により発症する。生活習慣病は動脈硬化症等の深刻な疾患に進行することが多く、わが国における保険医療費は増加の一途を辿っている。このような状況下、生活習慣病の前症状であるメタボリックシンドローム段階での予防が注目されているが、わが国におけるメタボリックシンドロームは未病扱いとなっているため、保険が適用できない。そのため、薬剤を用いない方法で、メタボリックシンドロームの予防を目指す必要がある。
メタボリックシンドロームの増悪化は、食後の血糖値や中性脂肪の上昇にともなう酸化的ストレスの亢進によって促進されることが知られている。従って、食後の酸化的ストレスの抑制（以下、「食後抗酸化」という）作用を有する食品素材の開発が望まれている。
一方、ポリフェノールは、体内に摂取、蓄積された悪玉のＬＤＬコレステロールの酸化を阻害し、高血圧、動脈硬化および動脈硬化を原因とした脳血管障害、心臓病などを予防する効果があることから、広く機能性食品の素材として用いられている。緑茶カテキンに代表される天然ポリフェノールの大部分は単量体であるが、紅茶やぶどう等には生理活性に優れた多量体（オリゴマー）が微量含まれており、その機能は単量体より一般に優れており、機能性食品素材としての開発が望まれているが、含有量が極めて低くかつ化学構造も多岐にわたり複雑であるために抽出等による多量体製造法では品質を一定に保つことが困難である。このような理由から天然ポリフェノールの多量体は非常に高額となっており、市場に浸透しているとは言いがたく、メタボリックシンドローム予防の手段としては定着していないのが実情である。
このような問題を解決すべく、特許文献１には、ポリフェノールとアルデヒドの重縮合、または酸化重合することにより合成されるポリフェノール重合物を含有する抗酸化剤が記載されている。ポリフェノールの具体例としては、カテキンおよびルチンが挙げられており、これらの重合体が一定の抗酸化作用を有することが特許文献１に示されている。
また、メタボリックシンドロームの予防として重要なのが肥満対策である。肥満の主たる要因は脂肪の過剰摂取である。また、脂肪の過剰摂取は、肥満のみならず、肥満に起因する糖尿病、高脂血症、高血圧、動脈硬化等を発症させることが知られている。
肥満を予防するためには、食事制限により摂取カロリーを減らすことが有効な手段ではあるものの、日常生活においての実行は困難である場合が多い。そこで、食事由来の脂肪が体内に吸収されることを安全かつ健康的に抑制することは、肥満及びそれに関連する疾患の治療あるいは健康増進の目的で、現実的で有用な方策であると考えられる。
そのため、植物由来のリパーゼ阻害活性物質、特にリパーゼ阻害活性を有するポリフェノール類が注目されている。特許文献２には、茶に含まれる種々のポリフェノールのリパーゼ阻害活性を評価した結果、プロアントシアニジン類、特にガレート基を有するプロアントシアニジン類が強いリパーゼ阻害活性を有すると記載されている。
また、特許文献３には、茶に含まれるエピガロカテインガレート（ＥＧＣＧ）の2量体がリパーゼ阻害活性を有すると記載されている。
また、特許文献３には、茶に含まれるエピガロカテインガレート（ＥＧＣＧ）の2量体がリパーゼ阻害活性を有すると記載されている。
本発明は、高い抗酸化活性およびリパーゼ阻害活性を有するポリフェノール重合体、並びにこれを含有する抗酸化剤およびリパーゼ阻害剤を提供することを目的とする。
上記課題を解決するための本発明の重合体は、下記の構成を有する。
（１）下記一般式（１）で表されるフラバノン誘導体、下記一般式（２）表されるジヒドロカルコン誘導体、または下記一般式（３）で表されるレスベラトロール誘導体、または下記一般式（４）で表されるロスマリン酸誘導体を酸化重合してなる重合体。
（各式中、Ｒ1〜Ｒ3は同一または異なる基であって、水素原子、アルキル基、アルカノイル基またはグリコシド結合した糖部分を示し，Ｒ4は水素原子、水酸基、アルコキシ基、アルカノイルオキシ基またはグリコシド結合した糖部分を示し、Ｒ5〜Ｒ15は同一または異なる基であって、水素原子、アルキル基、アルカノイル基またはグリコシド結合した糖部分を示す。）
（２）ナリンゲニン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、フロレチン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体から選ばれる少なくとも１種を酸化重合させて得られる重合体。
（３）前記配糖体が、ナリンギン、およびネオヘスペリジンジヒドロカルコンまたはフロリジンである（１）または（２）に記載の重合体。
（４）配糖体の糖が、ペントース、ヘキソースおよびそれら誘導体から選ばれる単糖または二糖以上の多糖である（２）または（３）に記載の重合体。
（５）かんきつ類（ミカン属植物、キンカン属植物）およびローズマリーからなる群より選ばれる少なくとも１種から抽出した抽出物を酸化重合させて得られる重合体。
（６）数平均分子量が５００〜５００００である（１）〜（５）のいずれかに記載の重合体。
（７）前記酸化重合が、前記酸化重合が、オキシダーゼまたはペルオキシダーゼを用いて行われる（１）〜（６）のいずれかに記載の重合体。
（１）下記一般式（１）で表されるフラバノン誘導体、下記一般式（２）表されるジヒドロカルコン誘導体、または下記一般式（３）で表されるレスベラトロール誘導体、または下記一般式（４）で表されるロスマリン酸誘導体を酸化重合してなる重合体。
（２）ナリンゲニン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、フロレチン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体から選ばれる少なくとも１種を酸化重合させて得られる重合体。
（３）前記配糖体が、ナリンギン、およびネオヘスペリジンジヒドロカルコンまたはフロリジンである（１）または（２）に記載の重合体。
（４）配糖体の糖が、ペントース、ヘキソースおよびそれら誘導体から選ばれる単糖または二糖以上の多糖である（２）または（３）に記載の重合体。
（５）かんきつ類（ミカン属植物、キンカン属植物）およびローズマリーからなる群より選ばれる少なくとも１種から抽出した抽出物を酸化重合させて得られる重合体。
（６）数平均分子量が５００〜５００００である（１）〜（５）のいずれかに記載の重合体。
（７）前記酸化重合が、前記酸化重合が、オキシダーゼまたはペルオキシダーゼを用いて行われる（１）〜（６）のいずれかに記載の重合体。
本発明の抗酸化剤は、上記（１）〜（７）のいずれかに記載の重合体を含有する。具体例を挙げると、本発明の抗酸化剤は、ナリンゲニン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、フロレチン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体を酸化重合させた重合体を含有するのがよい。また、たとえばナリンギンを多く含むかんきつ類（ミカン属植物、キンカン属植物）の抽出物やロスマリン酸を多く含むローズマリー抽出物といった、本発明の対象となる物質を多く含む天然物を酸化重合させた重合体を含有させたものもよい。
上記（１）〜（７）のいずれかに記載の重合体は、例えば飲食料、動物飼料、化粧料、医薬組成物などに含有して使用される。
本発明のリパーゼ阻害剤は、下記一般式（１′）で表されるフラバノン誘導体、下記一般式（２）で表されるジヒドロカルコン誘導体、下記一般式（３）で表されるレスベラトロール誘導体、または下記一般式（４）で表されるロスマリン酸誘導体を酸化重合してなる重合体を含有するリパーゼ阻害剤。
（各式中、Ｒ1〜Ｒ3は同一または異なる基であって、水素原子、アルキル基、アルカノイル基またはグリコシド結合した糖部分を示し，Ｒ4は水素原子、水酸基、アルコキシ基、アルカノイルオキシ基またはグリコシド結合した糖部分を示し、Ｒ5〜Ｒ15は同一または異なる基であって、水素原子、アルキル基、アルカノイル基またはグリコシド結合した糖部分を示し、Ｒ16は水素原子、水酸基、アルカノイルオキシ基またはグリコシド結合した糖部分を示す。）
具体例を挙げると、本発明のリパーゼ阻害剤は、ナリンゲニン、ヘスペレチン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、フロレチン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体から選ばれる少なくとも１種を酸化重合させて得られる重合体を含有するのがよい。また、たとえばナリンギンを多く含むかんきつ類（シトラス属植物、キンカン属植物）の抽出物やロスマリン酸を多く含むローズマリー抽出物といった、本発明の対象となる物質を多く含む天然物を酸化重合させた重合体を含有させたものもよい。
このようなリパーゼ阻害剤は、飲食料、動物飼料、医薬組成物または化粧料に含有して使用される。
具体例を挙げると、本発明のリパーゼ阻害剤は、ナリンゲニン、ヘスペレチン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、フロレチン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体から選ばれる少なくとも１種を酸化重合させて得られる重合体を含有するのがよい。また、たとえばナリンギンを多く含むかんきつ類（シトラス属植物、キンカン属植物）の抽出物やロスマリン酸を多く含むローズマリー抽出物といった、本発明の対象となる物質を多く含む天然物を酸化重合させた重合体を含有させたものもよい。
このようなリパーゼ阻害剤は、飲食料、動物飼料、医薬組成物または化粧料に含有して使用される。
本発明に係るポリフェノール類の重合体は、高い抗酸化活性およびリパーゼ阻害活性を有するので、抗酸化剤および／またはリパーゼ阻害剤として、これを飲食料、動物飼料、医薬組成物などに含有させることにより、メタボリックシンドローム予防の手段として、特に肥満対策として有用であり、糖尿病、高脂血症、高血圧、動脈硬化および動脈硬化を原因とした脳血管障害、心臓病などを予防する効果がある。また、本発明の重合体は、高い抗酸化活性およびリパーゼ阻害活性を有するため、化粧料としても有用である。
本発明に係るポリフェノール類の重合体は、前記一般式（１）または（１′）で表されるフラバノン誘導体または前記一般式（２）表されるジヒドロカルコン誘導体、または下記一般式（３）で表されるレスベラトロール誘導体、または下記一般式（４）で表されるロスマリン酸誘導体を酸化重合して得られるものである。
前記式中、アルキル基としては、例えばメチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基、ｔ−ブチル基、ヘキシル基などの炭素数１〜６のアルコキシ基が挙げられ、特にメチル基、エチル基であるのがよい。
アルコキシ基としては、例えばメトキシ基、エトキシ基、プロポキシ基、ブトキシ基、ｔ−ブトキシ基、ヘキシルオキシ基などの炭素数１〜６のアルコキシ基が挙げられ、特にメトキシ基、エトキシ基であるのがよい。
アルカノイル基としては、例えばアセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、ヘキサノイル基などの炭素数２〜６のアルカノイル基が挙げられ、特にアセチル基であるのがよい。
アルカノイルオキシ基としては、例えばアセトキシ基、プロピオニルオキシ基、ブチリルオキシ基、ヘキサノイルオキシ基などの炭素数２〜６のアルカノイルオキシ基が挙げられ、特にアセトキシ基であるのがよい。
アルコキシ基としては、例えばメトキシ基、エトキシ基、プロポキシ基、ブトキシ基、ｔ−ブトキシ基、ヘキシルオキシ基などの炭素数１〜６のアルコキシ基が挙げられ、特にメトキシ基、エトキシ基であるのがよい。
アルカノイル基としては、例えばアセチル基、プロピオニル基、ブチリル基、ヘキサノイル基などの炭素数２〜６のアルカノイル基が挙げられ、特にアセチル基であるのがよい。
アルカノイルオキシ基としては、例えばアセトキシ基、プロピオニルオキシ基、ブチリルオキシ基、ヘキサノイルオキシ基などの炭素数２〜６のアルカノイルオキシ基が挙げられ、特にアセトキシ基であるのがよい。
また、各式中、グリコシド結合によって配糖体を形成する糖は、ペントース、ヘキソースおよびそれら誘導体から選ばれる単糖または二糖以上の多糖から構成される。
ペントースとしては、特に限定されないが、キシロース（xylose）、リキソース（lyxose）、アラビノース（arabinose）、フルクトース（fructose）、アピオース（apiose）などが例示される。また、ヘキソースとしては、特に限定されないが、グルコース（glucose）、マンノース（mannose）、ラムノース（rhamnose）、ガラクトース（galactose）、ソルビトール（sorbitol）、ｍｙｏ-イノシトール（myo-inositol）、フコース（fucose）、ハマメロース（hamamelose）、グルクロン酸（glucuronic acid）、ガラクツロン酸（galacturonic acid）などが例示される。
ペントースとしては、特に限定されないが、キシロース（xylose）、リキソース（lyxose）、アラビノース（arabinose）、フルクトース（fructose）、アピオース（apiose）などが例示される。また、ヘキソースとしては、特に限定されないが、グルコース（glucose）、マンノース（mannose）、ラムノース（rhamnose）、ガラクトース（galactose）、ソルビトール（sorbitol）、ｍｙｏ-イノシトール（myo-inositol）、フコース（fucose）、ハマメロース（hamamelose）、グルクロン酸（glucuronic acid）、ガラクツロン酸（galacturonic acid）などが例示される。
これらの単糖が二つ以上結合した多糖としては、例えばマルトース（maltose）、スクロース（sucrose）、トレハロース（trehalose）、ネオヘスペリドース（neohesperidose）、ルチノース（rutinose）、セロビオース（cellobiose）、ソフォロース（sophorose）、ゲンチノビオース（gentiobiose）、ラフィノース（raffinose）、スタキオース（stachyose）、その他のオリゴ糖や多糖が挙げられる。
前記誘導体としては、水酸基がメトキシ基、アセチル基、カルボキシル基等で置換された糖誘導体が例示される。
前記誘導体としては、水酸基がメトキシ基、アセチル基、カルボキシル基等で置換された糖誘導体が例示される。
前記一般式（１）で表されるフラバノン誘導体、一般式（２）表されるジヒドロカルコン誘導体、下記一般式（３）で表されるレスベラトロール誘導体、または下記一般式（４）で表されるロスマリン酸誘導体を酸化重合してなる本発明に係る重合体としては、例えばナリンゲニンnaringenin（別名：5,7,4'-trihydroxyflavanone）、ヘスペレチンジヒドロカルコンhesperetin dihydrochalcone（別名：3,2',4',6'-tetrahydroxy-4-methoxydihydrochalcone）、フロレチンphloretin(別名：3-(4-Hydroxyphenyl)-1-(2,4,6-Trihydroxyphenyl)-1-Propanone)、レスベラトロールresveratrol（別名：trans-1,2-(3,4',5-trihydroxydiphenyl) ethylene）、ロスマリン酸rosmarinic acid（別名：3,4-dihydroxycinnamic acid (R)-1-carboxy-2-(3,4-dihydroxyphenyl) ethyl ester）およびそれらの配糖体から選ばれる少なくとも１種を酸化重合させて得られる重合体が挙げられる。ナリンゲニンの配糖体としてはナリンギンnaringin (別名：naringenin-7-O-β-neohesperidoside)が、ヘスペレチンジヒドロカルコンの配糖体としてはネオヘスペリジンジヒドロカルコンneohesperidin dihydrochalcone（以下、ＮＨＤＣということがある）が、フロレチンの配糖体としてはフロリジンphlorizin(別名：1-[2-(β-D-glucopyranosyloxy)-4,6-dihydroxyphenyl]-3-(4-hydroxyphenyl)propan-1-one)がそれぞれ例示されるが、これに限定されない。ＮＨＤＣは、ヘスペレチンジヒドロカルコンの4’位にneohesperidose（2-O-α-L-rhamnosyl-D-Glucose）がグリコシド結合したものである。
上記ナリンギン、フロリジン、ヘスペリジンジヒドロカルコン、ＮＨＤＣの化学構造は以下の通りである。
・ナリンギン：式（1）において、Ｒ1＝Ｒ3＝Ｈ、Ｒ2＝β‐neohesperidose
・フロリジン：式（2）において、Ｒ4＝Ｒ5＝Ｒ6＝Ｒ7＝Ｈ、Ｒ8＝β‐glucose
・ヘスペレチンジヒドロカルコン：式（2）において、Ｒ4が５位に結合、Ｒ4＝ＯＨ、Ｒ5＝ＣＨ3、Ｒ6＝Ｒ7＝Ｒ8＝Ｈ
・ＮＨＤＣ：式（2）において、Ｒ4が５位に結合、Ｒ4＝ＯＨ、Ｒ5＝ＣＨ3、Ｒ6＝Ｒ8＝Ｈ、Ｒ7＝β-neohesperidose
（ＮＨＤＣは、ヘスペレチンジヒドロカルコンとＲ8以外は同じである。）
上記ナリンギン、フロリジン、ヘスペリジンジヒドロカルコン、ＮＨＤＣの化学構造は以下の通りである。
・ナリンギン：式（1）において、Ｒ1＝Ｒ3＝Ｈ、Ｒ2＝β‐neohesperidose
・フロリジン：式（2）において、Ｒ4＝Ｒ5＝Ｒ6＝Ｒ7＝Ｈ、Ｒ8＝β‐glucose
・ヘスペレチンジヒドロカルコン：式（2）において、Ｒ4が５位に結合、Ｒ4＝ＯＨ、Ｒ5＝ＣＨ3、Ｒ6＝Ｒ7＝Ｒ8＝Ｈ
・ＮＨＤＣ：式（2）において、Ｒ4が５位に結合、Ｒ4＝ＯＨ、Ｒ5＝ＣＨ3、Ｒ6＝Ｒ8＝Ｈ、Ｒ7＝β-neohesperidose
（ＮＨＤＣは、ヘスペレチンジヒドロカルコンとＲ8以外は同じである。）
前記ナリンギンは、主にユズ（Citrus junos）、スダチ（C. sudachi）、ダイダイ (C. aurantium var. daidai)、ウンシュウミカン (C. unshu)、キンカン（Fortunella spp.） 等かんきつ類（シトラス属植物、キンカン属植物）の果皮等に含まれている。ＮＨＤＣは、ナリンギン、ネオヘスぺリジン等を原料に、化学的に誘導して得られる化合物であり、甘味料や香料原料として用いられる。フロリジンは、リンゴ、ナシの果皮等に含まれている。レスベラトロールは赤ワイン、ブドウ果皮、ピーナッツの果実および果皮に含まれている。ロスマリン酸はローズマリーのほか、シソ、ウツボグサ等シソ科植物に含まれている。
また、前記一般式（１′）で表されるフラバノン誘導体は、一般式（１）で表されるフラバノン誘導体の他に、後述するヘスペレチンおよびその配糖体などを含むものである。
ナリンギン、ＮＨＤＣ等の前記一般式（１）または（１′）で表されるフラバノン誘導体および前記一般式（２）表されるジヒドロカルコン誘導体は、溶媒中所定温度で酸化酵素触媒とともに混合することにより、容易に酸化重合されうる（Ｌ． Ｍｅｊｉａｓ， Ｍ． Ｈ． Ｒｅｉｈｍａｎｎ， Ｓ． Ｓｅｐｕｌｖｅｄａ−Ｂｏｚａ， Ｈ． Ｒｉｔｔｅｒ， Ｍａｃｒｏｍｏｌ． Ｂｉｏｓｃｉ． ２００２， ２， ２４、およびＭ． Ｋｕｒｉｓａｗａ， Ｊ． Ｅ． Ｃｈｕｎｇ， Ｙ． Ｊ． Ｋｉｍ， Ｈ． Ｕｙａｍａ， Ｓ． Ｋｏｂａｙａｓｈｉ， Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ２００３， ４， ４６９を参照）。
当該酸化重合で使用される触媒としては、フェノール類の酸化を起こすのに十分な酸化能を有するものであれば特に制限はないが、オキシダーゼまたはペルオキシダーゼ（EC 1.11.1.7）を使用するのが好ましい。オキシダーゼとしては、例えばラッカーゼ（EC 1.10.3.2）、カテコールオキシダーゼ（EC 1.10.3.1）、チロシナーゼ（EC 1.14.18.1）、ビリルビンオキシダーゼ（EC 1.3.3.5）などが挙げられる。これらの酵素は種々の起源のものが使用でき、特に制限はなく、例えば植物由来、細菌由来、坦子菌類由来のものを使用することができる。これらの中で、ラッカーゼは酸化能が高く、しかも酸化剤として空気中の酸素（分子状酸素）が利用できるために、特に好適である。ラッカーゼの例としては、漆の木から得られるラッカーゼ、またはPyricularia属、Pleurotus属、Pycnoporus属、Polystictus属、Mycelopthora属もしくはNeurospora属の微生物ラッカーゼを挙げることができる。特にPycnoporus属、Mycelopthora属のラッカーゼを好ましく使用できる。
また、ペルオキシダーゼは酸化剤が必要であるが、酸化能が非常に高いという特質がある。ペルオキシダーゼの例としては、西洋ワサビおよび大豆ペルオキシダーゼが挙げられ、これらは酸化能が高く、しかも量産されて安価であるため、本発明では好ましく使用することができる。
使用する触媒は、精製・未精製を問わない。触媒量は原料モノマー１ｇに対して通常１〜１，０００，０００ユニット、好ましくは３〜５００，０００ユニット、さらに好ましくは５〜２００，０００ユニットである。
ペルオキシダーゼを用いて重合させる際に用いる前記酸化剤としては、酸化反応を開始させる酸化剤であればよく、一般的には過酸化物が用いられる。過酸化物は有機過酸化物および無機過酸化物のいずれでも良い。この中で特に好ましいものとして、過酸化水素を挙げることができる。過酸化水素の濃度は、特に限定されない。
酸化剤である過酸化物や酸素は、原料モノマーの合計量に対して０．３〜１０倍モルが好ましく、より好ましくは０．５〜３倍モルが特に好ましい。
酸化剤である過酸化物や酸素は、原料モノマーの合計量に対して０．３〜１０倍モルが好ましく、より好ましくは０．５〜３倍モルが特に好ましい。
酸化重合で使用される溶媒としては、モノマーと触媒が共に溶解するものが好ましく、水または有機溶媒と水の混合溶媒が挙げられる。水は蒸留水や脱イオン水でもよいが、水の代わりに緩衝液を用いてもよい。緩衝液を用いる場合はｐＨ２〜１２の範囲が望ましい。緩衝液の種類としては、酢酸緩衝液、リン酸緩衝液、炭酸緩衝液等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
混合溶媒を用いる場合の有機溶媒は水と相溶する溶媒がより好ましい。水と相溶する有機溶媒として、メタノール、エタノール、エチレングリコール、２，２，２−トリフルオロエタノール、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド、ジメチルスルホキシド、Ｎ−メチルピロリドン、ニトロメタン、ニトロベンゼン、ピリジン、１，４−ジオキサン、アセトン、メチルエチルケトン等が挙げられる。これらは単独あるいは混合物として使用される。また、有機溶媒−水の混合比はモノマーと酵素触媒が共に溶解する任意の量を用いることができる。好ましくは１：９９〜９０：１０、特に好ましくは１：９９〜７０：３０の範囲が望ましい。
反応温度は、酵素触媒が不活性化しない温度が望ましい。好ましくは０〜１００℃の範囲であり、より好ましくは１０〜６０℃の範囲である。反応温度が高い場合は、一般に酵素は失活するが、混合溶媒系によっては酵素を安定化するので、その場合は高い反応温度も採用可能となる。
上記重合反応によって得られる酸化重合体の数平均分子量は通常５００〜２０，０００の範囲である。
上記重合反応によって得られる酸化重合体の数平均分子量は通常５００〜２０，０００の範囲である。
次に本発明にかかるリパーゼ阻害剤を説明する。このリパーゼ阻害剤は、例えばナリンゲニン、ヘスペレチン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体から選ばれる少なくとも１種を酸化重合させて得られる重合体を含有する。
このうち、ヘスペレチンhesperetin（別名：5,7,3'-trihydroxy-4'-methoxyflavanone）の配糖体としては、下記に示すヘスペリジンhesperidin (別名：hesperetin-7-O-β-rutinoside)が例示でき、このものはナリンジンと同様ユズ（Citrus junos）、スダチ（C. sudachi）、ダイダイ (C. aurantium var. daidai)、ウンシュウミカン (C. unshu)、キンカン（Fortunella spp.） 等かんきつ類（シトラス属植物、キンカン属植物）の果皮等に含まれる。フロリジンを含むリンゴ、ナシの果皮等、またははレスベラトロールを含む赤ワイン、ブドウ果皮、ピーナッツの果実および果皮、またはロスマリン酸を含むシソ、ウツボグサ等シソ科植物、ローズマリー等、これら天然物の粗抽出物をそのまま、あるいは部分精製したものを原料に酸化重合させてもよい。また、さらに糖を付加して水溶性を高めた「αＧヘスペリジン」（東洋精糖（株）製）等も好適に使用可能である。
ヘスペリジン：式（１′）において、Ｒ1＝ＣＨ3、Ｒ2＝Ｒ3＝Ｈ、Ｒ16＝ＯＨ
ヘスペリジン：式（１′）において、Ｒ1＝ＣＨ3、Ｒ2＝Ｒ3＝Ｈ、Ｒ16＝ＯＨ
ヘスペレチンまたはその配糖体の重合体は、共に前記したナリンゲニン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体と同様にして酸化重合して得ることができ、同様の数平均分子量を有する。このヘスペレチンまたはその配糖体の重合体は、高いリパーゼ阻害活性と共に、抗酸化活性にも優れている。
ナリンゲニン、ヘスペレチン、ヘスペレチンジヒドロカルコン、レスベラトロール、ロスマリン酸およびそれらの配糖体を代表例とする本発明に係る重合体は、あらゆる飲食料に添加することができる。本発明に係る食品の具体例としては、ジュース等の清涼飲料、コーヒー、紅茶、リキュール、牛乳、乳清飲料、乳酸菌飲料、キャンデー、チューインガム、チョコレート、ビスケット、飴、グミ、ヨーグルト、アイスクリーム、プディング等が挙げられる。重合体の食品への含有量は、０．５〜１００ｍｇ／ｇの範囲が適当であるが、この範囲よりも多量に配合しても安全性や効果に問題はない。
本発明に係る前記重合体は、動物飼料にも含有させることができる。動物飼料の具体例としては、家畜用飼料、キャットフード、ドッグフード等のペットフード等が挙げられる。前記重合体の動物飼料への配合量は０．５〜１００ｍｇ／ｇの範囲が適当であるが、この範囲よりも多量に配合しても安全性や効果に問題はない。
本発明に係る前記重合体は医薬品の形態で使用することもできる。医薬品として使用する際には、治療及び予防に有効な量の前記重合体が製薬学的に許容できる担体または希釈剤とともに製剤化されるとよい。製剤中の有効成分の量も限定されるものではないし、本発明の効果を損なわない範囲内で他の薬剤と併用することも可能である。
また、当該医薬品は経口または非経口のいずれでも投与できる。非経口投与として静脈内投与、筋肉内投与、皮下投与、関節膣などの投与経路が挙げられる。投与量は年齢、個人差、病状等に依るので特に限定されないが、０．１〜５００ｍｇ／ｋｇ（体重）、好ましくは１〜１００ｍｇ／ｋｇ（体重）で、通常、一日量を１回又は数回に分けて投与する
本発明に係る前記重合体は、その抗酸化機能に基づき、例えば抗老化用の外用薬または化粧料として用いるのに好適である。また、本発明に係る前記重合体は、そのリパーゼ阻害機能に基づき、例えば微生物性のリパーゼを阻害してニキビ，皮膚炎，フケなどを抑制または予防する外用薬または化粧料として用いるのに好適である。すなわち、皮脂腺の肥大増殖や毛嚢孔の角化亢進等が原因となって皮脂が溜まると、毛嚢の毛漏斗に存在する皮膚常在菌のニキビ桿菌や皮膚ブドウ状球菌が増加し、これらの菌のリパーゼが皮脂を構成している皮質成分の内のトリグリセリドを分解して遊離脂肪酸に変え、この遊離脂肪酸が上皮に作用し、各種の酵素を産生して、ニキビ，皮膚炎，フケ等の要因になり得る。本発明のリパーゼ阻害用外用薬または化粧料は、局所適用等で微生物性リパーゼに対する阻害効果を有効に発揮し得る。
本発明に係る前記重合体を外用薬または化粧料として用いる場合、当該重合体に加えて、本発明の効果を損なわない範囲内で、通常の外用薬や化粧品に用いられる他の成分、例えば油性成分、界面活性剤、アルコール類、水、保湿剤、美白剤、酸化防止剤、紫外線吸収剤、各種皮膚栄養剤等を必要に応じて適宜配合することができる。
また、外用薬や化粧料の形態は特に限定されるものではなく、溶液系、可溶化系、乳化系、粉末分散系、水−油二層系、水−油−粉末三層系、軟膏、ゲル等の任意の形態が適用される。具体的には、例えば化粧水、乳液、クリーム、パック、ファンデーション、毛髪用化粧料等に適用することができるが、これらに限定されるものではない。
以下、実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明は以下の実施例のみに限定されるものではない。
なお、各実施例における測定値は以下の方法にて求めた。
１．数平均分子量（Ｍｎ）の測定
東ソー社製のゲルろ過クロマトグラフィを用いて重合体の数平均分子量（Ｍｎ）を測定した。測定条件は以下の通りである。
溶離液：０．１ｍｏｌ／ＬのＬｉＣｌを含むジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）溶液
流速：１．０ｍｌ／ｍｉｎ
カラム温度：６０℃
基準物質：ポリエチレンスタンダード
供試試料は全てアセチル化物をＤＭＦに溶解し、メンブレンフィルターにてろ過したのち測定に供した。
１．数平均分子量（Ｍｎ）の測定
東ソー社製のゲルろ過クロマトグラフィを用いて重合体の数平均分子量（Ｍｎ）を測定した。測定条件は以下の通りである。
溶離液：０．１ｍｏｌ／ＬのＬｉＣｌを含むジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）溶液
流速：１．０ｍｌ／ｍｉｎ
カラム温度：６０℃
基準物質：ポリエチレンスタンダード
供試試料は全てアセチル化物をＤＭＦに溶解し、メンブレンフィルターにてろ過したのち測定に供した。
２．水溶性試験
原料（ポリフェノールまたは抽出物）またはその重合体である試料０．１ｇを２５℃の水５ｍｌに加えて、１分間攪拌した。その結果、よく溶解したものを◎、溶解したものを○、少し溶解したものを△、溶解しないものを×として評価した。
原料（ポリフェノールまたは抽出物）またはその重合体である試料０．１ｇを２５℃の水５ｍｌに加えて、１分間攪拌した。その結果、よく溶解したものを◎、溶解したものを○、少し溶解したものを△、溶解しないものを×として評価した。
３．風味
パネラー３名がそれぞれ試料３ｍｇを口に入れて風味を評価した。甘味、塩味、苦味、酸味、辛味、旨味の各要素に対して官能強度を点数化した。また、風味上の特徴を記述してもらい、原料と重合化物とで比較した。
パネラー３名がそれぞれ試料３ｍｇを口に入れて風味を評価した。甘味、塩味、苦味、酸味、辛味、旨味の各要素に対して官能強度を点数化した。また、風味上の特徴を記述してもらい、原料と重合化物とで比較した。
４．抗酸化性〔スーパーオキシド消去能（ＳＯＤ様活性）〕の評価
キサンチン／キサンチンオキシダーゼ系を用いてスーパーオキシドアニオンを発生させ、化学発光法で検出することによりＳＯＤ様活性を評価した。０．０５ｍＭＥＤＴＡを含む１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７）を用いて０．１５Ｕ／ｍｌキサンチンオキシダーゼ（from Butter milk,0.23 U/mg）溶液を調製した。またキサンチン ７．５ｍｇを１Ｎ ＮａＯＨ ６００μｌに溶解させた後、蒸留水７．５ｍｌを加え、さらにリン酸緩衝液１６．９ｍｌを加えて希釈し、２ｍＭとした。試料は３０％のＤＭＳＯを含む蒸留水で各濃度に調製した。ＭＰＥＣ(2-methyl-p-methoxyphenylethynylimidazopyrazinone) ２．８ｍｇはメタノール１０ｍｌに溶解させ、使用時に蒸留水で３倍に希釈した。
発光測定装置（コロナ電気株式会社製）にキサンチン溶液を導入した。９６ｗｅｌｌプレートに試料溶液１０μｌとリン酸緩衝液１７０μｌ、ＸＯ溶液６０μｌ、ＭＰＥＣ溶液１０μl を混合し、キサンチン溶液５０μl 分注後の発光量を３０秒間測定した。ＳＯＤ様活性はＥＣ50（対象〔３０％ ＤＭＳＯ〕に対して活性酸素を５０％消去するのに必要な試料量）として測定した。
キサンチン／キサンチンオキシダーゼ系を用いてスーパーオキシドアニオンを発生させ、化学発光法で検出することによりＳＯＤ様活性を評価した。０．０５ｍＭＥＤＴＡを含む１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７）を用いて０．１５Ｕ／ｍｌキサンチンオキシダーゼ（from Butter milk,0.23 U/mg）溶液を調製した。またキサンチン ７．５ｍｇを１Ｎ ＮａＯＨ ６００μｌに溶解させた後、蒸留水７．５ｍｌを加え、さらにリン酸緩衝液１６．９ｍｌを加えて希釈し、２ｍＭとした。試料は３０％のＤＭＳＯを含む蒸留水で各濃度に調製した。ＭＰＥＣ(2-methyl-p-methoxyphenylethynylimidazopyrazinone) ２．８ｍｇはメタノール１０ｍｌに溶解させ、使用時に蒸留水で３倍に希釈した。
発光測定装置（コロナ電気株式会社製）にキサンチン溶液を導入した。９６ｗｅｌｌプレートに試料溶液１０μｌとリン酸緩衝液１７０μｌ、ＸＯ溶液６０μｌ、ＭＰＥＣ溶液１０μl を混合し、キサンチン溶液５０μl 分注後の発光量を３０秒間測定した。ＳＯＤ様活性はＥＣ50（対象〔３０％ ＤＭＳＯ〕に対して活性酸素を５０％消去するのに必要な試料量）として測定した。
５．リパーゼ阻害活性の評価
リパーゼ活性の測定は、基質に蛍光性の４−メチルウンベリフェロンのオレイン酸エステル（４−ＵＭＯ）を使用し、反応によって生成した４−メチルウンベリフェロンの蛍光を測定することにより実施した。測定にあたり、緩衝液は、１５０ ｍＭ ＮａＣｌ、１．３６ ｍＭ ＣａＣｌ２を含む １３ ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ (ｐＨ ８．０) を用いた。基質である４−ＵＭＯ（Ｓｉｇｍａ社製）は０．１ＭのＤＭＳＯ溶液として調製したものを上記緩衝液で１０００倍希釈したものを、また、リパーゼはブタ膵リパーゼ（Ｓｉｇｍａ社製）を、同様に上記緩衝液を用い４００Ｕ／ｍｌ溶液として調製したものを酵素測定に供した。
リパーゼ活性の測定は、基質に蛍光性の４−メチルウンベリフェロンのオレイン酸エステル（４−ＵＭＯ）を使用し、反応によって生成した４−メチルウンベリフェロンの蛍光を測定することにより実施した。測定にあたり、緩衝液は、１５０ ｍＭ ＮａＣｌ、１．３６ ｍＭ ＣａＣｌ２を含む １３ ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ (ｐＨ ８．０) を用いた。基質である４−ＵＭＯ（Ｓｉｇｍａ社製）は０．１ＭのＤＭＳＯ溶液として調製したものを上記緩衝液で１０００倍希釈したものを、また、リパーゼはブタ膵リパーゼ（Ｓｉｇｍａ社製）を、同様に上記緩衝液を用い４００Ｕ／ｍｌ溶液として調製したものを酵素測定に供した。
酵素反応は、２５℃条件下において、９６穴マイクロプレートに５０μlの４−ＵＭＯ緩衝液溶液、２５ μl の３０ ％ ＤＭＳＯ（あるいは試料溶液）を添加し混合した後に、２５μlのリパーゼ緩衝液溶液を添加することにより開始させた。３０分間反応を行った後に、１００μl の０．１Ｍ クエン酸緩衝液（ｐＨ４．２）を添加して反応を停止させ、反応によって生成した４−メチルウンベリフェロンの蛍光（励起波長３６０ｎｍ、蛍光波長４６０ｎｍ）を９６穴マイクロプレートリーダー（ＢＩＯ−ＴＥＫ社製 Ｓｙｎｅｒｇｙ ＨＴ）を用い測定した。
被験試料の阻害活性は、ＩＣ50〔対照（３０％ ＤＭＳＯ）の活性に対して５０％阻害を与える試料量〕として求めた。
被験試料の阻害活性は、ＩＣ50〔対照（３０％ ＤＭＳＯ）の活性に対して５０％阻害を与える試料量〕として求めた。
（ナリンジン重合体の合成）
３０ｍｌ容器にナリンジン２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０ μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、９４．４ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は８００、分子量分布は１．０であった。
３０ｍｌ容器にナリンジン２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０ μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、９４．４ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は８００、分子量分布は１．０であった。
（ナリンジン重合体の合成）
３０ｍｌの容器にナリンジン２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ）（４ｍｇ、４００ｕｎｉt）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５ μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１４３．７ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２４００、分子量分布は１．４であった。
３０ｍｌの容器にナリンジン２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ）（４ｍｇ、４００ｕｎｉt）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５ μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１４３．７ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２４００、分子量分布は１．４であった。
（αＧ−ヘスペリジン重合体の合成）
３０ｍｌの容器にαＧ―ヘスペリジン（東洋精糖（株）製）２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１６１．７ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は８３００、分子量分布は１．３であった。
３０ｍｌの容器にαＧ―ヘスペリジン（東洋精糖（株）製）２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１６１．７ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は８３００、分子量分布は１．３であった。
（αＧ―ヘスペリジン重合体の合成）
３０ｍｌの容器にαＧ―ヘスペリジン２００ｍｇを取り、２０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１６８．２ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は１０５００、分子量分布は１．５であった。
３０ｍｌの容器にαＧ―ヘスペリジン２００ｍｇを取り、２０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１６８．２ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は１０５００、分子量分布は１．５であった。
（ＮＨＤＣ重合体の合成）
３０ｍｌの容器にＮＨＤＣ ２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて懸濁溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１７８．９ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は９５００、分子量分布は１．９であった。
３０ｍｌの容器にＮＨＤＣ ２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて懸濁溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１７８．９ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は９５００、分子量分布は１．９であった。
（ＮＨＤＣ重合体の合成）
５０ｍｌの容器にＮＨＤＣ１００ｍｇを取り、４０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて懸濁溶液を調製した。この溶液に１０ μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、９３．１ ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は９０００、分子量分布は１．８であった。
５０ｍｌの容器にＮＨＤＣ１００ｍｇを取り、４０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて懸濁溶液を調製した。この溶液に１０ μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、９３．１ ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は９０００、分子量分布は１．８であった。
（ＮＨＤＣ重合体の合成）
３０ｍｌの容器にＮＨＤＣ ５００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて懸濁溶液を調製した。この溶液に５０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。４８時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、４６５．０ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は９７００、分子量分布は２．０であった。
３０ｍｌの容器にＮＨＤＣ ５００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて懸濁溶液を調製した。この溶液に５０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。４８時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、４６５．０ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は９７００、分子量分布は２．０であった。
（ＮＨＤＣ重合体の合成）
３０ｍｌの容器にＮＨＤＣ２００ｍｇを取り、２０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１９９．９ｍｇの重合体を得た。
３０ｍｌの容器にＮＨＤＣ２００ｍｇを取り、２０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１９９．９ｍｇの重合体を得た。
（フロリジン重合体の合成）
３０ｍｌの容器にフロリジン１００ｍｇを取り、５ mlのエタノールと５ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に１０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１７．８ ｍｇの重合体を得た。
３０ｍｌの容器にフロリジン１００ｍｇを取り、５ mlのエタノールと５ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に１０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１７．８ ｍｇの重合体を得た。
（フロリジン重合体の合成）
３０ｍｌの容器にフロリジン１００ｍｇを取り、５ｍｌのエタノールと５ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に０．５ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来）（２ｍｇ、２００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに２回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、７６．４ｍｇの重合体を得た。
３０ｍｌの容器にフロリジン１００ｍｇを取り、５ｍｌのエタノールと５ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に０．５ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来）（２ｍｇ、２００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに２回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、７６．４ｍｇの重合体を得た。
これらの実施例で得た重合体の重合条件、性状、ＥＣ50およびＩＣ50を測定した。その結果を表１、２に示す。また、比較のため、それぞれの単量体である各ポリフェノールについても同様の評価を行ったので、その結果も併せて表２に示す。
表１から明らかなように、実施例１〜１０で得た重合体は、その由来する単量体（ポリフェノール配糖体）に比べて、ＳＯＤ様活性およびリパーゼ阻害活性が著しく増強されている。しかも、水への溶解性が改善され（特に実施例３、４、７〜１０）、さらに風味も単量体よりも改善されるか無味になっていることがわかる。
（レスベラトロールの重合）
３０ｍｌの容器にレスベラトロール２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１２４．９ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は３８００、分子量分布は１．４であった。
３０ｍｌの容器にレスベラトロール２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１２４．９ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は３８００、分子量分布は１．４であった。
（レスベラトロールの重合）
３０ｍｌの容器にレスベラトロール２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、２０２．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２３００、分子量分布は１．５であった。
３０ｍｌの容器にレスベラトロール２００ｍｇを取り、１０ｍｌのメタノールと１０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、２０２．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２３００、分子量分布は１．５であった。
（ロスマリン酸の重合）
３０ｍｌの容器にロスマリン酸２００ｍｇを取り、５ｍｌのエタノールと１５ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１８４．４ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は８５０、分子量分布は５．２であった。
３０ｍｌの容器にロスマリン酸２００ｍｇを取り、５ｍｌのエタノールと１５ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１８４．４ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は８５０、分子量分布は５．２であった。
参考例（重合化に供する抽出物の製造）
すだち（搾汁後の果皮）、キンカン（果実）は、それぞれ原料５００ｇを４．５ｋｇの３０％ＥｔＯＨで２時間還流を行った。ローズマリー（葉）は原料２００ｇを４ｋｇの３０％ＥｔＯＨで２時間還流を行った。それぞれ室温冷却後、ろ過し、ろ液を一晩冷蔵放置した。ついで、ろ液をさらにろ過し、得られたろ液を減圧濃縮し、さらに凍結乾燥して抽出物を得た。
なお、ユズ抽出物は、ナリンギン含量を９０％に高めた東洋精糖（株）製の市販品（商品名：ゆずポリフェノール）を用いた。
すだち（搾汁後の果皮）、キンカン（果実）は、それぞれ原料５００ｇを４．５ｋｇの３０％ＥｔＯＨで２時間還流を行った。ローズマリー（葉）は原料２００ｇを４ｋｇの３０％ＥｔＯＨで２時間還流を行った。それぞれ室温冷却後、ろ過し、ろ液を一晩冷蔵放置した。ついで、ろ液をさらにろ過し、得られたろ液を減圧濃縮し、さらに凍結乾燥して抽出物を得た。
なお、ユズ抽出物は、ナリンギン含量を９０％に高めた東洋精糖（株）製の市販品（商品名：ゆずポリフェノール）を用いた。
（ユズ抽出物の重合）
５０ｌの容器にユズ抽出物（東洋精糖（株）製、柚子抽出物を精製しナリンギン含量を高めたゆずポリフェノール）を３００ｇ取り、３０ｌのイオン交換水を加えて溶液を調製した。この溶液に３０ｇのラッカーゼを加え、エアポンプを用いるエアレーション下、３０℃にて撹拌した。２４時間後、反応混合物の一部を採取し、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥した。反応液５０ｍｌから０．５２２ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は６７００、分子量分布は１．４であった。
５０ｌの容器にユズ抽出物（東洋精糖（株）製、柚子抽出物を精製しナリンギン含量を高めたゆずポリフェノール）を３００ｇ取り、３０ｌのイオン交換水を加えて溶液を調製した。この溶液に３０ｇのラッカーゼを加え、エアポンプを用いるエアレーション下、３０℃にて撹拌した。２４時間後、反応混合物の一部を採取し、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥した。反応液５０ｍｌから０．５２２ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は６７００、分子量分布は１．４であった。
（ユズ抽出物の重合）
３０ｍｌの容器にユズ抽出物２００ｍｇを取り、２０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、２０３．２ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２９００、分子量分布は１．３であった。
３０ｍｌの容器にユズ抽出物２００ｍｇを取り、２０ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）を加えて溶液を調製した。この溶液に１ｍｌのリン酸緩衝液（ｐＨ＝７）に溶かしたＨＲＰ（西洋ワサビ由来）（４ｍｇ、４００ｕｎｉｔ）溶液を加えた。その後、過酸化水素水（３０％、２５μl）を２分おきに４回加え、室温で撹拌した。３時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、２０３．２ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２９００、分子量分布は１．３であった。
（スダチ抽出物の重合）
３０ｍｌの容器にスダチ抽出物２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、８６．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２２００、分子量分布は２９であった。
３０ｍｌの容器にスダチ抽出物２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、８６．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は２２００、分子量分布は２９であった。
（キンカン抽出物の重合）
３０ｍｌの容器にキンカン抽出物２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０ μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１８．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は３３０、分子量分布は１．１であった。
３０ｍｌの容器にキンカン抽出物２００ｍｇを取り、２０ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０ μlのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１８．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は３３０、分子量分布は１．１であった。
（ローズマリー抽出物の重合）
３０ｍｌの容器にローズマリー抽出物２００ｍｇを取り、１ｍｌのエタノールと１９ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０ μｌのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１８３．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は１２００、分子量分布は６．５であった。
３０ｍｌの容器にローズマリー抽出物２００ｍｇを取り、１ｍｌのエタノールと１９ｍｌの酢酸緩衝液（ｐＨ＝５）を加えて溶液を調製した。この溶液に２０ μｌのラッカーゼを加え、空気下、室温で撹拌した。２４時間後、排除分子量１０００の透析チューブを用いて、反応混合物の透析を行った。透析後、透析チューブ内の溶液を凍結乾燥し、１８３．８ｍｇの重合体を得た。得られた重合体をアセチル化したところ、そのアセチル化物の数平均分子量は１２００、分子量分布は６．５であった。
これらの実施例で得た重合体の重合条件、性状、ＥＣ50およびＩＣ50を測定した。その結果を表３，４に示す。また、比較のため、それぞれの単量体である各ポリフェノールについても同様の評価を行ったので、その結果も併せて表に示す。
表から明らかなように、実施例１１〜１８で得たラッカーゼ処理天然素材は、未処理原料に比べて、ＳＯＤ様活性およびリパーゼ阻害活性が著しく増強されている。しかも、水への溶解性が改善され（特に実施例）、さらに風味も単量体よりも改善されるか無味になっていることがわかる。
以上、本発明で見出された各重合体は、安価かつ簡便に作ることができ、水溶性呈味性等が改善されているのでさまざまな食品等に応用することができるので、抗酸化剤、リパーゼ阻害剤として幅広く利用することができる。
以上、本発明で見出された各重合体は、安価かつ簡便に作ることができ、水溶性呈味性等が改善されているのでさまざまな食品等に応用することができるので、抗酸化剤、リパーゼ阻害剤として幅広く利用することができる。
試験例（ラット長期飼育試験）
下記表５に示す高脂肪食飼料を作成し、ラットを用いて長期飼育試験を行い、脂肪摂取に起因する肥満、酸化ストレスに対する各重合物の作用について検討した。
被験試料として、ナリンジン重合体は実施例２、αＧヘスペリジン重合体は実施例３、ＮＨＤＣ重合体は実施例５の条件にて大量製造し、それぞれ試験に用いた。
＜飼育試験＞
近交系Ｆ３４４ラット（雄）を１週間予備飼育後、体重に基づいて高脂肪食（ＨＦ群）、高脂肪食＋０．１％重合ナリンジン（Ｎ群）、高脂肪食＋０．１％重合αＧヘスペリジン（Ｈ群）および高脂肪食＋０．１％重合ＮＨＤＣ（ＮＨ群）の４群分けした（ｎ＝６〜７）。ＨＦ群をコントロール群とした。
飼育期間は６週間とし、それぞれの飼料を。飼育期間中、体重測定と残飼重量測定を行った。飼育終了後エーテル麻酔下血液および各臓器を採取し、各組織の重量を測定した。さらに、ヘパリン処理した注射器を用いて解剖時に下大静脈から採取した血液を遠心分離し、上清（血漿）を得た。この上清を用いて以下の検査を行った。
（a）血液検査
和光純薬工業製測定キットを用いて血糖値（グルコースＣＩＩテストワコー）、トリグリセリド値（トリグリセライドテストワコー）、クレアチンホスホキナーゼ活性（ＣＰＫＩＩ−テストワコー）を測定した。
ＴＢＡＲＳ値はOXI tek TBARS Assay kit（ZeptoMetrix corporation,Buffalo社NY)を用いて測定した。
これらのうち、トリグリセリド値は脂肪の指標であり、クレアチンホスホキナーゼ活性ならびにＴＢＡＲＳ値は酸化ストレスの指標である。
（b）肝臓トリグリセリド値の測定
凍結肝臓を用いてＦｏｌｃｈ法に従って脂質の抽出を行い、ＬタイプワコーＴＧ・Ｇ（和光純薬工業製）を用いて測定した。それぞれの測定結果を表６に示す。
なお、飼料総摂取量および解剖時の心臓、脾臓、小腸、腎臓各重量は各群で有意差は認められなかった。
表６に示す体重は解剖時に測定したものである。ＮＨ群は他群に比べて体重の増加が大きいが、有意差は認められなかった。肝臓重量は、コントロールであるＨＦ群に比べ、Ｎ群とＨ群は有意に低い値を示した。精巣周辺脂肪重量は、Ｎ群がＨＦ群よりも有意に低い値を示した。その他の群に差は認められなかった。血糖値は各群間で有意差は認められなかった。血漿トリグリセリド値に関しては、重合物を与えた群はいずれもＨＦ群に比べ有意な低値を示した。肝臓トリグリセリド値は、Ｎ群、Ｈ群がＨＦ群よりも有意に低い値を示した。血漿ＴＢＡＲＳ値は、重合化物を与えた群がいずれもＨＦ群に比べて有意に低い値を示した。血漿クレアチンホスホキナーゼ活性には有意差は認められなかったものの、重合物を与えた群はいずれもＨＦ群に比べ低い値を示した。
以上のように、本発明にかかる重合物を与えた群はコントロールであるＨＦ群に比べて血漿トリグリセリド値が低く、精巣周辺脂肪重量も低い結果を得た。重合物を摂取すると高脂肪食に起因する血中脂肪量および内臓脂肪の増加が抑制されることがわかる。また、心筋、骨格筋等の炎症はフリーラジカルによって惹起するといわれており、それらの炎症マーカーである血漿クレアチンホスホキナーゼ活性、過酸化脂質の指標である血漿ＴＢＡＲＳ値も低いことから、重合物を摂取すると酸化ストレスが軽減されることがわかる。
下記表５に示す高脂肪食飼料を作成し、ラットを用いて長期飼育試験を行い、脂肪摂取に起因する肥満、酸化ストレスに対する各重合物の作用について検討した。
＜飼育試験＞
近交系Ｆ３４４ラット（雄）を１週間予備飼育後、体重に基づいて高脂肪食（ＨＦ群）、高脂肪食＋０．１％重合ナリンジン（Ｎ群）、高脂肪食＋０．１％重合αＧヘスペリジン（Ｈ群）および高脂肪食＋０．１％重合ＮＨＤＣ（ＮＨ群）の４群分けした（ｎ＝６〜７）。ＨＦ群をコントロール群とした。
飼育期間は６週間とし、それぞれの飼料を。飼育期間中、体重測定と残飼重量測定を行った。飼育終了後エーテル麻酔下血液および各臓器を採取し、各組織の重量を測定した。さらに、ヘパリン処理した注射器を用いて解剖時に下大静脈から採取した血液を遠心分離し、上清（血漿）を得た。この上清を用いて以下の検査を行った。
（a）血液検査
和光純薬工業製測定キットを用いて血糖値（グルコースＣＩＩテストワコー）、トリグリセリド値（トリグリセライドテストワコー）、クレアチンホスホキナーゼ活性（ＣＰＫＩＩ−テストワコー）を測定した。
ＴＢＡＲＳ値はOXI tek TBARS Assay kit（ZeptoMetrix corporation,Buffalo社NY)を用いて測定した。
これらのうち、トリグリセリド値は脂肪の指標であり、クレアチンホスホキナーゼ活性ならびにＴＢＡＲＳ値は酸化ストレスの指標である。
（b）肝臓トリグリセリド値の測定
凍結肝臓を用いてＦｏｌｃｈ法に従って脂質の抽出を行い、ＬタイプワコーＴＧ・Ｇ（和光純薬工業製）を用いて測定した。それぞれの測定結果を表６に示す。
表６に示す体重は解剖時に測定したものである。ＮＨ群は他群に比べて体重の増加が大きいが、有意差は認められなかった。肝臓重量は、コントロールであるＨＦ群に比べ、Ｎ群とＨ群は有意に低い値を示した。精巣周辺脂肪重量は、Ｎ群がＨＦ群よりも有意に低い値を示した。その他の群に差は認められなかった。血糖値は各群間で有意差は認められなかった。血漿トリグリセリド値に関しては、重合物を与えた群はいずれもＨＦ群に比べ有意な低値を示した。肝臓トリグリセリド値は、Ｎ群、Ｈ群がＨＦ群よりも有意に低い値を示した。血漿ＴＢＡＲＳ値は、重合化物を与えた群がいずれもＨＦ群に比べて有意に低い値を示した。血漿クレアチンホスホキナーゼ活性には有意差は認められなかったものの、重合物を与えた群はいずれもＨＦ群に比べ低い値を示した。
以上のように、本発明にかかる重合物を与えた群はコントロールであるＨＦ群に比べて血漿トリグリセリド値が低く、精巣周辺脂肪重量も低い結果を得た。重合物を摂取すると高脂肪食に起因する血中脂肪量および内臓脂肪の増加が抑制されることがわかる。また、心筋、骨格筋等の炎症はフリーラジカルによって惹起するといわれており、それらの炎症マーカーである血漿クレアチンホスホキナーゼ活性、過酸化脂質の指標である血漿ＴＢＡＲＳ値も低いことから、重合物を摂取すると酸化ストレスが軽減されることがわかる。
Claims (2)
- ナリンジン、αＧヘスペリジン、ネオヘスペリジンジヒドロカルコンおよびフロリジンから選ばれる少なくとも１種を、ラッカーゼ又はペルオキシダーゼを用いて酸化重合してなる数平均分子量５００−２００００の重合体を含有するリパーゼ阻害剤。
- 飲食料、動物飼料、化粧料または医薬組成物の形態で使用される請求項１に記載のリパーゼ阻害剤。
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