JP5129760B2 - 担体およびその製造方法 - Google Patents
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Description
前記リガンドはニトリロトリ酢酸誘導体であることが好ましい。
前記リガンドには金属イオンが固定されていることが好ましい。
前記金属イオンは遷移金属イオンであることが好ましく、Cu(II)イオンであることがより好ましい。
前記生理活性物質は前記遷移金属イオンに配位結合する官能基を有し、該官能基によって前記生理活性物質が前記遷移金属イオンに固定されていることが好ましい。
前記官能基はイミダゾール基であることが好ましい。
前記有機溶剤は非プロトン系極性溶媒であることが好ましく、ジメチルスルホキサイドまたはN,N−ジメチルホルムアミドであることがより好ましい。
本発明の担体は、バイオセンサー用チップあるいはバイオリアクター用チップに好適に用いられる。
本発明の担体における基板は、表面プラズモン共鳴バイオセンサー用を考えた場合、一般的にはBK7等の光学ガラス、あるいは合成樹脂、具体的にはポリメチルメタクリレート、ポリエチレンテレフタレート、ポリカーボネート、シクロオレフィンポリマーなどのレーザー光に対して透明な材料からなるものが使用できる。このような基板は、好ましくは、偏光に対して異方性を示さずかつ加工性の優れた材料が望ましい。
自己組織化膜(SAMs)とは、外からの細かい制御を加えていない状態で、膜材料そのものがもつ機構によって形成される一定の秩序をもつ組織をもった単分子膜やLB膜などの超薄膜を意味し、自己集合性分子からなる。この自己集合性分子は末端に嵩高い基を有さず、自己組織化膜を形成した場合に、金属膜上にSAMの隙間や欠損が生じにくく、整然とした状態でパッキングされるものであり、より詳細には、一方の末端に水酸基、カルボキシル基、アルコキシ基、メチル基、アミノ基からなる群より選ばれる官能基を有し、他方の末端に−SH(チオール)、−SS(スルフィド)、−SeH(セレノール)、−SeSe(ジセレニド)、−COSH(チオ酸)からなる群から選ばれる官能基を有する化合物によって構成される。そして自己集合性分子の自己組織化により、非平衡な状況で長距離にわたって秩序がある構造やパターンが形成される。
自己組織化膜にはリガンドが結合される。リガンドとなる化合物としては、各種キレート剤を用いることができ、ニトリロトリ酢酸(NTA)、イミノジ酢酸、フェナンスロリン、テルピリジン、ビピリジン、トリエチレンテトラアミン、ジエチレントリアミン、トリス(カルボキシメチル)エチレンジアミン、ジエチレントリアミンペンタ酢酸、ポリピラゾリルホウ酸、1,4,7−トリアゾシクロノナン、ジメチルグリオキシム、ジフェニルグリオキシム等の多座配位子およびその誘導体を好ましくあげることができる。この中でも、ニトリロトリ酢酸又はその誘導体であることがさらに好ましい。ニトリロトリ酢酸は4座配位子であり、このリガンドが自己組織化膜の自己集合性分子の末端の官能基に結合することにより、分子レベルで近接した3つのカルボキシル基へと変換されることになる。
用いる塩基の量としては結合リガンド量に対して0.1モル%以上10000モル%以下が好ましく、より好ましくは100モル%以上1000モル%以下、さらには300モル%以上500モル%以下であることが好ましい。
金属イオンは、不飽和金属錯体を形成する金属イオンであればよく、得られる金属錯体の安定性の観点からは遷移金属イオンが好ましく、具体的には、Cu(I)、Cu(II)、Ni(II)、Co(II)、Co(III)、Fe(II)、Fe(III)、Ga(III)のいずれかのイオンであり、リガンドの種類に応じて適宜選択することができる。中でも好ましくは、Cu(II)、Ni(II)、Co(III)、Fe(III)であり、さらに好ましくは、Cu(II)イオンである。
金属イオンとリガンド密度の組み合わせとしては、金属イオンがCu(II)イオンの場合、リガンド密度は0.8個/nm2以上であることが好ましい。
生理活性物質は、例えば免疫タンパク質、酵素、微生物、核酸、低分子有機化合物、非免疫タンパク質、免疫グロブリン結合性タンパク質、糖結合性タンパク質、糖を認識する糖鎖、脂肪酸もしくは脂肪酸エステル、あるいは配位子結合能を有するポリペプチドもしくはオリゴペプチドなどが挙げられる。これらの生理活性物質は、金属イオンへの配位結合により基板上に固定されるものであり、金属イオンに対して配位可能な官能基を有する、即ち、金属配位能を有するものであればよい。このような金属配位能は、強い配位力を持つ配位子を共有結合することによって容易に付与することができる。
生理活性物質の固定化は、生理活性物質を含む溶液を塗布することによって行う。本発明において、「塗布」とは、浸漬する方法も含む。生理活性物質が含窒素複素環基を有する場合、生理活性物質の含窒素複素環が金属イオンに配位結合し、錯体を形成することによって固定化される。
例えば、リガンドとしてNTAを使用し、6配位可能な金属イオンを付与した場合、6配位部位中4つの配位部位を、(1)NTAが保有する3つのカルボキシル基と1つの窒素原子が占有し、残りの2つの配位部位は、(2)生理活性物質の含窒素複素環基と、(3)水分子または水酸化イオンなどが占有することにより、6配位の錯体を形成する。
ここでは、金属イオンは、6配位可能な金属イオンを例に挙げて説明したが、配位数については7配位以上でもよく、5配位以下でもよい。また、錯体を形成するカルボキシル基は、1つのリガンドから供給されずともよく、複数のリガンドから供給され、錯体を形成してもよい。
以下、本発明の一実施の形態を示す担体を製造する工程を図面を用いて説明する。図2は金属膜の形成から自己組織化膜にリガンドを結合するまでを示した模式図、図3はリガンドに金属イオンを固定し、これに生理活性物質を固定するまでを示した模式図である。なお、図3においてはリガンド、金属イオンおよび生理活性物質の結合および固定をより具体的に説明するために、リガンドを拡大するとともに、リガンドとしてNTA、金属イオンとしてCu(II)イオン、生理活性物質としてイミダゾール基を有するタンパク(図中Pで表示)を例にとって示している。
続いて、SAMsにリガンドを結合させる。リガンドの結合は、例えば、SAMが末端にカルボキシル基を有する場合には、このカルボキシル基を活性化した後に、リガンドとなる化合物を有機溶剤中で反応させることによって、リガンドをSAMに固定化することができる(図2(c))。
本発明の担体は、バイオセンサーやバイオリアクター(例えばバイオリアクター技術、1988年、(株)シーエムシー、バイオチップとバイオセンサー、2006年、共立出版(株))に適用することができる。バイオセンサーとは最も広義に解釈され、生体分子間の相互作用を電気的信号等の信号に変換して、対象となる物質を測定・検出するセンサーを意味し、バイオリアクターとは、酵素、菌体、細胞、オルガネラなどの生体触媒による生化学的反応を利用して、有用物質の生産、エネルギーの発生、環境汚染物質の分解などに応用する反応器である。以下、それぞれについての適用について説明する。
通常のバイオセンサーは、検出対象とする化学物質を認識するレセプター部位と、そこに発生する物理的変化又は化学的変化を電気信号に変換するトランスデューサー部位とから構成される。生体内には、互いに親和性のある物質として、酵素/基質、酵素/補酵素、抗原/抗体、ホルモン/レセプターなどがある。バイオセンサーでは、これら互いに親和性のある物質の一方を基板に固定化して分子認識物質として用いることによって、対応させるもう一方の物質を選択的に計測するという原理を利用している。
表面プラズモン共鳴の現象は、ガラス等の光学的に透明な物質と金属薄膜層との境界から反射された単色光の強度が、金属の出射側にある試料の屈折率に依存することによるものであり、従って、反射された単色光の強度を測定することにより、試料を分析することができる。
酵素を固定化した不溶性担体を用いて有用物質の生成、反応等を行うことが可能なバイオリアクター(例えば実公平4-18398号、実公平4-18399号等)においては、上記不溶性担体として、本発明の担体を適用することができる。
以下に本発明の担体についての実施例を示す。
(SAMsの作製)
センサーチップ上に金膜のみが形成されているBiacore社センサーチップAuを12分間、UVオゾン処理を行った後、10mlのエタノールに50μmol の16-mercaptohexadecanoic acid(Aldrich製)を溶解させた溶液と金膜を40℃で20時間反応させて、金膜上にカルボキシル基を形成し、エタノールで1回、超純水で1回洗浄した。
1mmolのEDCと0.2mmolのNHSをDMSO1mlに添加した溶液を50μl加え、30分間室温で反応させた。溶液を除去、DMSOで1回洗浄後、0.1mmolのAB-NTA(同仁化学製)をDMSO1mlに添加した液を2時間反応させた。溶液を除去、超純水で1回洗浄し、共鳴プラズモン測定用チップを作製した。
作製した共鳴プラズモン測定用チップをBiacore社製の表面プラズモン共鳴装置であるBiacore3000にセットし、SPR用HEPES緩衝液(20mM HEPES-HCl, 150mM NaCl, pH7.2)を10μl/minの流速で安定させ1mmol/lのCuSO4水溶液を10μl添加した後に、HBS-Nバッファーで10分間洗浄し、その後に1μmol/lのHis10-Ubiquitin (R&D systems社製、ヒスチジンユニットが10個連なったものが結合しているユビキチン)水溶液を10μl添加し、添加終了1分後の屈折率と1時間後の屈折率からタンパク残存率を測定した。
作製した共鳴プラズモン測定用チップをBiacore社製の表面プラズモン共鳴装置であるBiacore3000にセットし、SPR用HEPES緩衝液(20mM HEPES-HCl, 150mM NaCl, pH7.2)を10μl/minの流速で安定させ、その後に2 μmol/lのHis6- Ubiquitin(Novus biologicals社製、ヒスチジンユニットが6個連なったものが結合しているユビキチン)水溶液を30μl添加し、10mM NaOH水溶液を10μlで洗浄し、His6-ubiquitinの非特異吸着量を測定した。
実施例1の(NTAの結合)において、0.1mmolのAB-NTA(同仁化学製)をDMSO1mlに添加した液を用いるかわりに、0.1mmolのAB-NTA(同仁化学製)とDBU(東京化成製)0.06mlとDMSO 0.94mlを用いた以外は実施例1と同様にしてタンパク残存率と非特異吸着量を測定した。
実施例2の(タンパク質の固定)において、1mmol/lのCuSO4水溶液を用いるかわりに10mmol/l NiCl2水溶液を用いた以外は実施例2と同様にしてタンパク残存率と非特異吸着量を測定した。
センサーチップ上に金膜のみが形成されているBiacore社センサーチップAuを12分間、UVオゾン処理を行った後、10mlの純水に50μmol のDithiobis(同仁化学社製、NTA末端を有するSAM試薬)を溶解させた溶液と金膜を40℃で20時間反応させて、エタノールで1回、超純水で1回洗浄し、金膜上にNTA結合基板を作製した。(タンパク質の固定)と(非特異吸着量の測定)については実施例1と同様にし、タンパク残存率と非特異吸着量を測定した。
実施例1の(NTAの結合)において、0.1mmolのAB-NTAをDMSO 1mlに溶かす代わりにNaOH水溶液1mlにとかした液を用いた以外は実施例1と同様にしてタンパク残存率と非特異吸着量を測定した。
実施例1〜3、比較例1および2において、NTAを結合した後に、0.1MのNiCl2水溶液を添加し、10分後に溶液を除去し、超純水で2回洗浄した。50mMのEDTA水溶液5mlで2度抽出を行った。この抽出液を合わせてICP分析装置で測定してNiの数を検出し、このNiの数と被覆面積(50mm2)からリガンド数を換算し、リガンド密度を求めた。
実施例1〜3、比較例1および2において、未修飾金基盤の屈折率をBiacore3000により測定し、SAMs(非特異吸着防止層)を作製した後に、再度屈折率を測定した。その屈折率差(比較例1はNTA結合基板作製時と同等)と、非特異吸着分子(実施例1〜3および比較例2は16-mercaptohexadecanoic acid、比較例1はDithiobis)の分子量から非特異吸着防止層の密度を算出した。
結果を表1に示す。表1の非特異吸着量は比較例2の値を1としたときの相対値で示している。なお、表1のタンパク残存率はSPRにより添加後1分後の屈折率と1時間バッファーを流した後の屈折率から、(添加1分後の固定量/1時間後の固定量)により算出した。
Claims (9)
- 基板と、該基板表面上に結合された自己集合性分子からなる自己組織化膜と、該自己組織化膜に結合されたリガンドとを備え、該リガンドに金属イオンが固定されている担体であって、
前記自己組織化膜が、一方の末端に水酸基、カルボキシル基、アルコキシ基、メチル基、アミノ基からなる群より選ばれる官能基を有し、他方の末端に−SH(チオール)、−SS(スルフィド)、−SeH(セレノール)、−SeSe(ジセレニド)、−COSH(チオ酸)からなる群から選ばれる官能基を有する化合物によって構成され、
前記金属イオンがCu(II)イオンであって、
前記リガンドがニトリロトリ酢酸誘導体であり、
該ニトリロトリ酢酸誘導体が0.8個/nm2以上2個/nm2以下の密度で前記自己組織化膜に結合していることを特徴とする担体。 - 前記金属イオンに生理活性物質が固定されていることを特徴とする請求項1記載の担体。
- 前記生理活性物質が前記Cu(II)イオンに配位結合する官能基を有し、該官能基によって前記生理活性物質が前記Cu(II)イオンに固定されていることを特徴とする請求項1または2記載の担体。
- 前記官能基がイミダゾール基であることを特徴とする請求項3記載の担体。
- 請求項1〜4いずれか1項記載の担体の製造方法であって、前記基板に前記自己集合性分子からなる自己組織化膜を結合し、該自己組織化膜に前記リガンドを結合させる担体の製造方法において、前記自己組織化膜に前記リガンドを結合する工程を有機溶剤中で行うことを特徴とする担体の製造方法。
- 前記有機溶剤が非プロトン系極性溶媒であることを特徴とする請求項5記載の担体の製造方法。
- 前記非プロトン系極性溶媒がジメチルスルホキサイドまたはN,N−ジメチルホルムアミドであることを特徴とする請求項6記載の担体の製造方法。
- 請求項1〜4記載の担体を備えていることを特徴とするバイオセンサー用チップ。
- 請求項1〜4記載の担体を備えていることを特徴とするバイオリアクター用チップ。
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