JP5101492B2 - 融合タンパク質の自己タンパク質分解切断による組換えタンパク質の産生 - Google Patents
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Description
「対象異種ポリペプチド」の語は、天然に存する(融合)ポリペプチドから天然に存するオートプロテアーゼにより天然の状態では切断されることのないポリペプチドをいう。対象異種ポリペプチドの例には、工業用酵素(製造用酵素)または特にヒトの治療についての治療活性をもつポリペプチドがある。
配列番号2:
配列番号3:
配列番号4:
配列番号52:
形質転換された細菌宿主細胞、すなわち発現株は、自体公知の微生物学的実践法にしたがって培養される。
本発明方法において、封入体は自体公知の方法で宿主細胞から単離される。
配列番号6: VSIFEW
配列番号7: AVSIEWY
配列番号8: AVSFIWY
配列番号9: VSFIWYK
配列番号10:ASRFWYA
配列番号11:AFYTWYA
配列番号12:AFYRWYK
配列番号13:AFYRWY
配列番号14:AFYRWYA
配列番号15:AVSIFEWY
配列番号16:AVSRNWY
配列番号17:ASRFWY
配列番号18:AFYRWYAA
配列番号19:AFYRWY
配列番号20:ASRFWYAA
配列番号21:AFYRWYAA
配列番号22:AFYSWYAA
から成る群から選択されるアミノ酸配列を有する:
a)式X1X2X3X4(式中、X1〜X4はアミノ酸残基であり、X1〜X4のうち少なくとも2個はW、YまたはFである)を含むペプチド;
b)式X5X6X7X8(式中、X5〜X8はアミノ酸残基であり、X5〜X8のうち少なくとも1個はWであり、X5〜X8のうち少なくとも1個はEまたはDである)を含むペプチド;および
c)R、K、EおよびDから成る群のアミノ酸単量体およびY、FおよびWから成る群のアミノ酸単量体から成るポリ−アミノ酸、好ましくはポリ−KY、ポリ−KF、ポリ−KW、ポリ−RY、ポリ−RF、ポリ−RW、ポリ−EY、ポリ−DY、ポリ−EF、ポリ−EW、ポリ−DFおよびポリ−DW
から成る群から選択されるが、ただし、a)およびb)によるペプチドは、35アミノ酸残基の最大長を有し、c)によるポリ−アミノ酸は20アミノ酸残基の最小長を有するものとする。
ペプチドアフィニティークロマトグラフィーおよび種々の融合ポリペプチドを利用する、本発明による異種ポリペプチドの製造
1.1.ペスチウイルスのNproオートプロテアーゼを利用する異種ポリペプチドの製造
この実施例は、ペスチウイルスオートプロテアーゼ6×His−Nproの融合ポリペプチドとしてのGFPmut3.1の製造について記載しており、リフォールディングおよび切断については、ペプチドアフィニティーマトリックスで実施する。
下記1.2.2記載の要領で宿主細胞の形質転換を実施する。
実施例1におけるクロマトグラフィー操作を、AKTA 100 Explorer クロマトグラフィーシステム(Amersham Biosciences)で実施する。調製したペプチドアフィニティー吸着剤を、HR5カラム(内径5mm、Amersham Biosciences)に充填する。ゲル体積は約1mlである。
実施例1で使用するオリゴペプチドリガンドを下記の方法で調製する:
433Aペプチド合成装置(Applied Biosystems、ウィーン、オーストリア国)においてFmoc−保護アミノ酸(Bachem、ブーデンドルフ、スイス国)の1−ヒドロキシ−1H−ベンゾトリアゾール/N,N'−ジシクロヘキシルカルボジイミド(HOBt/DCC)−活性化により固相ペプチド合成を実施する。4−ヒドロキシメチル−フェノキシメチル−コポリスチレン−1%ジビニルベンゼン樹脂(HMP樹脂、Wang 樹脂)でペプチドを合成する。側鎖用の保護基は、チロシン、セリンおよびトレオニンについてはtert−ブチル(t−Bu)であり、グルタミン酸およびアスパラギン酸の場合はOtBuであり、リシンおよびトリプトファンの場合はtert−ブトキシカルボニル(Boc)であり、システイン、ヒスチジン、アスパラギンおよびグルタミンについてはトリチル(Trt)である。第1アミノ酸のカップリングについては、4−ジメチルアミノピリジン(DMAP)を触媒として使用する。第1アミノ酸のカップリング後、無水安息香酸を用いることによりキャッピング工程を実施する。Fmoc基の脱保護を、20%ピペリジンにより実施する。側鎖脱保護および樹脂からの切断を、95%トリフルオロ酢酸(TFA)、2.5%水および2.5%トリイソプロピルシラン(TIS)を含有する切断混合物との反応により実施する。ジクロロメタン(DCM)による洗浄後、粗ペプチドを、エーテル沈澱の反復、次いで凍結乾燥により精製する。30ml/分で5〜50%アセトニトリル対水(0.1%TFA)の直線勾配を用い、P3500ポンプ(Amershama Biosciences、ウプサラ、スウェーデン国)を備えた Luna 15μ C18(2)250×21.2mmカラム(Phenomenex、トレンス、カリフォルニア、米国)でのRP−HPLCによりペプチドをさらに精製する。1分当たり1%アセトニトリルの直線勾配でLuna 3μ C18(2)100×4.6mmカラム(Phenomenex)を用いるHP1090液体クロマトグラフ(Hewlett Packard、米国)での分析的RP−HPLCにより純度を確認する。マトリックス支援レーザー脱離イオン化−飛行時間型質量分析法(ThermoBioanalysis、ヘンプステッド、英国)により、等質性および同一性を確認する。
実施例1で使用されるアフィニティーマトリックスを、下記の方法で製造する:
10gのFractogel エポキシ(M)(Merck、ダルムシュタット、ドイツ国)を、室温で48時間、50mlの1Mジアミノジプロピルアミン(DADPA)と反応させる。反応後、ゲルを50mlの10mMのHClおよび3×50mlの水で洗浄する。ゲルを水に再懸濁し、0.1MのNaOHの添加によりpHを7.0に調節し、2gの無水コハク酸を加える。30分緩やかに攪拌した後、10MのNaOHを加えることにより、pHを7.0に調節し、さらに2gの無水コハク酸を加える。さらに30分攪拌後、ゲルを50mlの0.1MのNaOH、50mlのリン酸緩衝食塩水(PBS)、3×50mlの水および20%エタノールで洗浄する。吸引乾燥後、ゲルを4℃で貯蔵する。
実施例1によるアフィニティーマトリックスを下記の方法で活性化する:
1gの含水Fractogelを、1.1.3章記載の要領でDADPA−SAスペーサーにより修飾し、5mlのアセトニトリルで2回洗浄する。3時間、アセトニトリルに溶かした3mlの0.1Mのスクシンイミジル−トリクロロエチルカーボネートおよび0.1Mのトリエチルアミンで活性化を行う。それに続いてゲルをアセトニトリルおよび1mMのHClで洗浄する。ペプチドAFYRWYAを、3mg/mlの濃度でPBSに溶かす。5mlのペプチド溶液を、迅速にゲルに加え、24時間反応させる。ペプチドVSFIWYKを、0.1Mトリエチルアミン含有ジメチルホルムアミド(DMF)に溶かす。5mlのペプチド溶液を、迅速にゲルに加え、24時間反応させる。カップリングの前後における試料のRP−HPLCにより、カップリング収率を測定する。
0.15MのNaClを含む100mMのNa2CO3緩衝液(pH10.0)にペプチドを溶かす。CIMディスクを、製造業者が供給したカートリッジに据え付け、室温で48時間、循環モードでP1ポンプ(Amersham Biosciences)を用いることにより、ペプチド溶液をゆっくりとディスクを通してポンプ輸送する。カップリングの前後における試料のRP−HPLCにより、カップリング収率を測定する。カップリング後、残存するエポキシ基を、48時間0.5Mのエタノールアミン(pH10.0)で遮断する。
6×His標識を有するN−末端オートプロテアーゼNproおよびC−末端融合GFPmut3.1を含む融合ポリペプチドを発現する組換え大腸菌(E.coli)HMS174(DE3)を、10l−発酵槽中で培養する。融合ポリペプチドは、下記のアミノ酸配列を含む:
配列番号23:
採取後、細胞(580g含水重量)を、2500mlの50mMのトリス/HCl、5mMのEDTA、1%トリトンX−100、pH8.0に懸濁する。冷蔵懸濁液を800barで3回APV−2000高圧ホモジナイザー(Invensys)に通すことにより、細胞を破壊する。通過させる間、懸濁液を氷上で冷却し、Ultraturraxを用いてホモジネートする。ホモジネートを低速での遠心分離(JLA 10.500、7500rpm、30分)にかけることにより、組換え融合ポリペプチドを含む封入体を得る。
沈澱物を50mMのトリス/HCl、5mMのEDTA、1%トリトンX−100、pH8.0に懸濁し、遠心分離にかける。この処理を反復する。H2O−洗浄処理後、沈澱物をH2Oに懸濁する。得られた封入体−懸濁液を−20℃でさらなる使用時まで貯蔵する。封入体−懸濁液を、室温で50mMのトリス/HCl、10Mの尿素、50mMのDTT、pH7.3により1:5に希釈する。不溶性成分を遠心分離により除去する。約15mg/mlのポリペプチド濃度を得る。ポリペプチド溶液を50mMのトリス/HCl、100mMのNaCl、4Mの尿素、pH7.3で希釈することにより、約2mg/mlのポリペプチド濃度に到達させる。
0.5mlのポリペプチド溶液を、Fractogel−DADPA−SA−VSFIWYK(0.5×5cm)マトリックスに適用し、それぞれのペプチドの調製およびカップリングを上記1.1.2および1.1.3の要領で実施する。50cm/時の直線的流速で50mMのトリス/HCl、100mMのNaCl、4Mの尿素、pH7.3によりカラムを平衡状態にする。試料注入後、流速を150cm/時まで高める。
非結合成分を、5倍カラム容量の平衡緩衝液で洗浄する。リフォールディング緩衝液、特に0.5Mのトリス/HCl、2mMのEDTA、3%グリセリン、5mMのDTT、pH7.3への緩衝液交換を4.5倍カラム容量で実施する。
カオトロピックからコスモトロピックへ条件を変えた後、流れを止めることにより、融合ポリペプチドを25時間クロマトグラフィー樹脂においてリフォールディングさせる。活性オートプロテアーゼは、C−末端融合GFPmut3.1を切断させる。それに続いて流速50cm/時でリフォールディング緩衝液により溶出すると、蛍光測定法およびSDS−PAGEにより確認される、精製天然GFPmut3.1が得られる。
クロマトグラフィー樹脂のリフォールディングを、50cm/時の流速で0.1MのNaOHにより実施する。
この実施例では、ペスチウイルスオートプロテアーゼNproの突然変異体:6×His−NproEDDIEの融合ポリペプチドとしてのGFPmut3.1の製造について記載しており、リフォールディングおよび切断をペプチドアフィニティーマトリックスで実施する。
1.2.1.1 7H−Np−Gmut3.1−pET30aプラスミドの構築:
N−末端に7−His標識を含むN−末端先端切除型Nproについての遺伝子を含むDNAフラグメントを、NP6−pET(Sandoz)プラスミドからのPCRプライマー対:
T7−pET(配列番号24):
GFP F−Kpn(配列番号26):
Npro−プロ−インスリンについてのDNA配列(配列番号28):
6H−Npro−F−NdeI(配列番号29):
Operon Biotechnologies Inc.により、特注合成され、pUC119に挿入されたNpro−プロ−インスリンについてのDNA配列を含む構築物から、必要とされるNpro−プロ−インスリン配列を、下記のプライマー対:
Npro−F−NdeI(配列番号31):
を用いるPCRにより増幅する。
Operon Biotechnologies Inc.により、特注合成され、pUC119に挿入されたNpro−プロ−インスリンについてのDNA配列を含む構築物から、必要とされるNpro−配列を、下記のプライマー対:
Npro−F−NdeI(配列番号31)
およびNpro−R−SaII(配列番号32):
6H−Npro−F−NdeI、(配列番号29)およびNpro−R−Sal、(配列番号32)および得られたフラグメントを用いることにより、構築物S−Np−Ins−pET30a(1.2.1.3参照)において、NdeIおよびSpeIについての制限部位(太文字)を介してNproを置換することにより、6H−EDDIE−Ins−pET30aを作製する。ベクター6H−EDDIE−Insを、SpeI/SalIにより消化し、大きい方のフラグメントをゲル電気泳動および抽出により単離し、プロ−インスリンについての配列を除去する。Operon Biotechnologies Incにより特注製造されたpUC119における合成sGFPmut3.1遺伝子
配列番号46:
sGFP−F−Spe、(配列番号47):
sGFP−R−Sal(配列番号48):
エレクトロコンピテント細胞を、1リットルの細菌培養物(37℃および225rpmで生育、OD600=0.5)から調製する。細胞懸濁液を氷上で15分間冷却(連続攪拌)し、沈降させ(4℃、2500g、および10分)、上清を完全除去する。残存する沈澱物を4℃の脱イオン水1リットルに再懸濁し、再びスピンダウンし(4℃、2500g、10分)、断続的に遠心分離処理(4℃、2500g、10分)をしながら50mlの脱イオン水(4℃)で2回洗浄する。沈澱を50mlの10%滅菌グリセリン溶液(4℃)で最終洗浄し、沈降させ(4℃、2500g、10分)、2.5mlの10%滅菌グリセリン溶液(4℃)に再懸濁し、冷凍し、−80℃で40μlアリコートにおいて貯蔵する。1アリコートのエレクトロコンピテント細胞を氷上で解凍し、5ngのDNAを含むライゲーション反応物1μlを加え、空気を吹き込まずに1mm電極ギャップを有する電気穿孔キュベットに移す。4.5分より一定して短時間で1.5kV、25μF、200オームに設定された BIO-RAD パルスコントローラー(Bio-Rad Laboratories Inc.、2000アルフレッド・ノーベル・ドライブ、ハーキュリーズ、カリフォルニア94547、米国;カタログ番号1652098、Life Science Research Products 1998)を含む BIO‐RAD Gene Pulser(登録商標)(Bio-Rad Laboratories Inc.、2000アルフレッド・ノーベル・ドライブ、ハーキュリーズ、カリフォルニア94547、米国;カタログ番号1652077、Life Science Research Products 1998)により電気穿孔を行う。その直後、180μlのTY−ブロス(1.0%w/vペプトン、0.7%w/v酵母抽出物、0.25%w/vNaCl)を加え、懸濁液を滅菌14mlプラスチック管に移し、30分間(37℃、225rpm)インキュベーションする。次いで、懸濁液を選択培地で平板培養する。37℃で一晩インキュベーション後、コロニーを採取し、2mlのTY−ブロスに移し、37℃および225rpmで一晩インキュベーションする。一晩培養物1mlを標準方法によるプラスミド調製に使用し、プラスミド調製物を制限分析およびDNA配列決定にかける。配列解析により確認後、本明細書記載の方法により、プラスミドを発現株でのさらなる形質転換に使用する。
下記のアミノ酸配列をもつN−末端オートプロテアーゼ6H−NproEDDIEおよびC−末端GFPmut3.1との融合ポリペプチドを発現するpET30プラスミドを含む組換え大腸菌(E.coli)HMS 174(DE3)を、バッフル付フラスコ中、総容量1.8リットルでLB−ブロス中において培養する。
配列番号49:
細胞破壊を酵素的に実施する。簡単に述べると、細胞を、40mlの20mMのトリス/HCl、5mMのEDTA、2mMのMgCl2(pH8.2)に懸濁する。72mgのリゾチームおよび300UのBenzonase(登録商標)を加える。RTで45分間インキュベーション後、1.3gのNaClおよび0.5mlのトリトンX−100を加える。さらに15分後、懸濁液を遠心単離(Beckman JA 25.50、10000rpm、15分、4℃)にかけて、封入体を得る。
沈澱を20mlの0.5%デオキシコレート中で1回、20mlの1M NaCl中で2回洗浄し、次いでH2Oで洗浄する。生じた沈澱(約2g含水重量)を10mlのH2Oに懸濁し、さらなる使用時まで−20℃で貯蔵する。
おおよそのポリペプチド濃度が2mg/mlである溶液2mlを、上記要領でペプチドアフィニティーマトリックスに適用する。簡単に述べると、Fractogel‐DADPA-SA-AFYRWYA(0.5内径×5cm)を、50mMのトリス/HCl、100mMのNaCl、4Mの尿素(pH7.3)により平衡状態にする。2mlの試料を流速25cm/時で注入する。
非結合成分を、流速150cm/時で5倍カラム容量の平衡緩衝液により洗い流す。4.5倍カラム容量の200mMトリス/HCl、2mMのEDTA、10%グリセリン(pH7.3)との緩衝液交換によりリフォールディングを誘導する。
流れを止めることにより、結合融合ポリペプチドを25時間リフォールディングさせておく。リフォールディング時、結合したオートプロテアーゼはその特異部位で切断し、融合パートナーGFPmut3.1を放出する。次いで、融合ポリペプチドを、流速150cm/時で200mMトリス/HCl、2mMのEDTA、10%グリセリン(pH7.3)緩衝液により洗浄する。1mlフラクションを集め、280nmでのUV吸光度および488nmの励起および520nmの放射での蛍光について分析する。融合パートナーGFPmut3.1を含むフラクションを、精製GFPmut3.1についてのSDS−PAGEによりさらに分析する。
切断された対象ポリペプチドの溶出後、流速150cm/時で5倍カラム容量の0.1M NaOHでカラムのリフォールディングを実施する。
固定化金属イオンアフィニティークロマトグラフィーを用いた、本発明による異種ポリペプチドの製造
この実施例では、ペスチウイルスオートプロテアーゼNproの突然変異体:6×His−NproEDDIEの融合ポリペプチドとしてのGFPmut3.1の製造について記載しており、リフォールディングおよび切断を固定化金属イオンアフィニティーマトリックスで実施する。
キレーティング・セファロース・ファースト・フロー(Amersham Biosciences)を、内径0.5×5cmの床寸法までカラムに充填し、貯蔵溶液を水で洗浄する。次の段階で、金属イオンNi2+を、カラムにローディングする。総カラム容量の約3分の2の100mM NiCl2またはNiSO4を適用する。非結合Ni2+イオンを洗い流す。50mMのトリス、100mMのNaCl、4Mの尿素(pH7.3)によりカラムを平衡状態にした後、約2mg/mlの濃度でポリペプチド溶液0.5mlをカラムに適用する。ローディングの流速は50cm/時である。
非結合試料成分を、5倍カラム容量の平衡緩衝液により洗い流した後、500mMのトリス/アセテート、0.25Mのしょ糖、1mMのDTT(pH7.3)への緩衝液交換を実施する。
4.5倍カラム容量で処理後、流れを止めることにより、融合ポリペプチドをリフォールディングさせると、リフォールディング時、オートプロテアーゼは融合パートナーを切断する。1mlの500mMトリス/アセテート、0.25Mしょ糖、1mMのDTT(pH7.3)緩衝液を用いて再び流れを150cm/時の速度で活性化することにより、対象ポリペプチドの溶出を実施する。フラクションを集め、蛍光測定およびSDS−PAGEにより分析する。
クロマトグラフィー樹脂のリフォールディングを、50mMのアセテート、6Mの塩化グアニジニウム(pH3.5)により流速50cm/時で実施する。
カラムでのNproEDDIE−sSPA−Dの切断
この実施例では、ペスチウイルスオートプロテアーゼNproの突然変異体:NproEDDIEの融合ポリペプチドとしての発現によるブドウ球菌(staphylococcus)プロテインAドメインDの製造について記載しており、リフォールディングおよび切断をペプチドアフィニティーマトリックスで実施する。オートプロテアーゼNproEDDIEおよびC−末端融合プロテインAドメインD(sSPA−D)を含む融合タンパク質を、NproEDDIE−sSPA−Dと称し、下記の要領で製造する:
Fractogel−DADPA−IT−ペプチド(0.5×5cm)マトリックスについて、それぞれのペプチドの選択およびカップリングを上記要領で実施したものを、50cm/時の直線的流速で50mMのトリス/HCl、100mMのNaCl、4Mの尿素、pH7.3により平衡状態にする。1mlのポリペプチド溶液を、50cm/時の直線的流速で適用する。試料注入後、流速を150cm/時まで高める。
非結合成分を、5倍カラム容量の平衡緩衝液で洗い流す。リフォールディング緩衝液、具体的には1Mのトリス/HCl、2mMのEDTA、0.25Mのしょ糖、10mMの −モノチオグリセリン、pH7.3への緩衝液交換を、6倍カラム容量で実施する。
カオトロピックからコスモトロピックへ条件を変えた後、流れを止めることにより、融合ポリペプチドをクロマトグラフィー樹脂において25時間リフォールディングさせる。活性オートプロテアーゼは、C−末端融合sSPA−Dを切断する。リフォールディング緩衝液による後続の溶出により、天然sSPA−Dを得る。150cm/時で10CVの0.2M NaOHによりマトリックスのリフォールディングを実施する。
カラムでの6His−NproEDDIE−GFPmut3.1のリフォールディングおよび切断
この実施例では、6His−NproEDDIE−GFPmut3.1融合ポリペプチドの発現による天然GFPmut3.1の製造、アクチゲル−ポリKWと称されるアフィニティーマトリックスでのリフォールディングおよび切断について記載する。クロマトグラフィー条件は、上記と同じである。
カラムでのNproEDDIE―sSPA−Dの切断
この実施例では、NproEDDIE−sSPA−D融合ポリペプチドの発現による天然sSPA−Dの製造、アクチゲル−ポリKYと称されるアフィニティーマトリックスでのリフォールディングおよび切断について記載する。クロマトグラフィー条件は、上記と同じである。
カチオン交換クロマトグラフィーを用いたカラムでのリフォールディング
粗Npro37−6His((1)MELNHFELLYKTSKQKPVGVEEPVYDTAGRPLFGNPSEVHPQSTLKLPHDRGRGDIRTTLRDLPRKGDCRSGNHLGPVSGIYIKPGPVYYQDYTGPVYHRAPLEFFDETQFEETTKRIGRVTGSDGKLYHIYVEVDGEILLKLAKRGTPRTLKWTRNTTNCPLWVTSC-(168))封入体抽出物を、8M尿素、50mMのNa−リン酸pH7.0に再懸濁した。最終タンパク質濃度は0.5mg/mlであった。2mlを、上記と同じ緩衝液で予め平衡状態にしておいた50cm/時の直線的速度でのHiTrap SPセファロースFFカラム(2.5×0.7cm内径;カラム容量1ml;GE Healthcare)にローディングした。次いで、カラムを、50mMのNa−リン酸pH7、2mMのEDTA、5%グリセリン、10mMのα−モノチオグリセリン(MTG)を含む緩衝液へと緩衝液交換した。タンパク質を室温で1時間リフォールディングさせた。リフォールディング緩衝液をさらに適用することにより、リフォールディングおよび切断されたタンパク質の溶出を実施した。2MのNaCl、50mMのNa−リン酸pH7を含む緩衝液によりリフォールディングを実施した。融合タンパク質(6His)のリフォールディングをSDS−PAGE分析によりモニターした。
Claims (13)
- 対象ポリペプチドおよび前記ポリペプチドのN−末端のところに自己タンパク質分解切断機能を呈するポリペプチドであるオートプロテアーゼを含む融合ポリペプチドを用いる、相同N−末端を有する対象異種ポリペプチドの製造方法であって、a)アフィニティークロマトグラフィーシステムにより、可溶性で自己タンパク質分解切断が不活性な形態で融合ポリペプチドを結合し、b)融合ポリペプチドのリフォールディングにより、融合ポリペプチドの自己タンパク質分解切断機能の活性化および対象異種ポリペプチドの切断を誘発し、そしてc)次に対象異種ポリペプチドを溶出する工程を含み、上記工程を一アフィニティークロマトグラフィーシステムで実施する方法。
- 融合ポリペプチドが、融合ポリペプチドをコードする核酸分子を含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞を利用する、封入体形態での細菌宿主細胞における組換え発現により提供される、請求項1記載の方法。
- オートプロテアーゼが、ペスチウイルス由来である、請求項1または2記載の方法。
- オートプロテアーゼが、CSFV、BDVおよびBVDVから成る群から選択されるウイルス由来である、請求項1〜3のいずれかに記載の方法。
- オートプロテアーゼが、配列番号1のアミノ酸配列を有する、請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- オートプロテアーゼが、配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号5、配列番号50、配列番号51、配列番号52、配列番号53、配列番号54、配列番号55および配列番号56から成る群から選択されるアミノ酸配列を有する、請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- アフィニティークロマトグラフィーシステムが、固定化金属イオンクロマトグラフィー(IMAC)およびペプチドアフィニティークロマトグラフィーから成る群から選択される、請求項1〜6のいずれかに記載の方法。
- アフィニティークロマトグラフィーシステムが固定化金属イオンクロマトグラフィーであり、融合ポリペプチドが金属キレートアフィニティー標識を含む、請求項7記載の方法。
- 金属キレートアフィニティー標識がポリヒスチジンである、請求項8記載の方法。
- ペプチドアフィニティークロマトグラフィーシステムが、トリプトファン残基を含む、配列番号9:VSFIWYKまたは配列番号14:AFYRWYAのオリゴペプチドリガンドを利用するものであり、リガンドが、カオトロピック条件下で自己タンパク質分解切断機能を発揮する融合ポリペプチドの一部分に選択的に結合し、コスモトロピック条件への変化中およびコスモトロピック条件下で結合を維持する、請求項7記載の方法。
- 配列番号9:VSFIWYKおよび配列番号14:AFYRWYAから成る群から選択される、請求項1〜10のいずれかに記載の方法で使用されるオリゴペプチドリガンド。
- 配列番号9:VSFIWYKおよび配列番号14:AFYRWYAから成る群から選択される、請求項1〜10のいずれかに記載の方法におけるオリゴペプチドリガンドの使用。
- 配列番号2、配列番号3、配列番号4、配列番号5、配列番号50、配列番号51、配列番号52、配列番号53、配列番号54、配列番号55および配列番号56から成る群から選択されるアミノ酸配列を有するオートプロテアーゼの、請求項1〜10のいずれかに記載の方法における使用。
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