JP5025177B2

JP5025177B2 - 動物用飼料添加剤

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Publication number: JP5025177B2
Application number: JP2006193915A
Authority: JP
Inventors: 明彦門田; 源士鈴木; 真治伊藤; 康明杉本; 正己望月
Original assignee: Idemitsu Kosan Co Ltd
Current assignee: Idemitsu Kosan Co Ltd
Priority date: 2006-02-20
Filing date: 2006-07-14
Publication date: 2012-09-12
Anticipated expiration: 2026-07-14
Also published as: JP2007325580A

Description

本発明は、酸性酵素を産生する能力を有するアスペルギルス・オリゼーを含む動物用飼料添加剤に関する。

家畜やペット（以下、動物という。）などの飼料は、粉砕などの加工は行われるものの、一般的に加熱処理等は行われないため、消化吸収率が低くなり、飼料効率が悪いという問題がある。また、最近ではヒトの病気として知られる潰瘍性大腸炎やクローン病などの炎症性腸管障害が動物にも報告されており、下痢などの症状を引き起こすという問題がある。また、このような炎症性腸管障害は、飼料の吸収低下や健全肥育を妨げることも知られている。動物の腸内感染症を引き起こす病原菌としては、病原性大腸菌、サルモネラ属細菌、クロストリジウム属細菌、カンピロバクター属細菌などが知られている。このような病原菌は、異常増殖すると毒素（エンテロトキシン、サイトトキシン）を産生し、腸管粘膜に障害を起こし、軟便や激しい下痢等を引き起こすことが知られている。また、コクシジウムは、鶏、豚、牛などの腸管内に寄生する原虫であり、感染すると下痢、食欲不振などを引き起こす。このような炎症性腸管障害を予防・治療するために抗生物質を用いることが行われているが、薬剤耐性菌の出現などの問題がある。

近年、腸内フローラのバランスを改善し、腸内の病原菌の増殖を抑制するために、プロバイオティクスを用いる技術が注目されている（特許文献１、特許文献２）。しかしながら、乳酸菌やビフィズス菌は、０．３％デオキシコール酸の濃度で死滅するものやｐＨ４以下で死滅するものが多く、大腸菌群と総称される細菌以外は、胆汁酸のうち微生物に対して強い抗菌性を持つデオキシコール酸の存在下で生存できない菌種が多い。そこで、動物の消化管内でも死滅せず、宿主に有利な効果をもたらす菌種が探し求められている。

一方、動物用の飼料をその加工段階で酵素や酵素生産菌で処理して、ある程度分解しておくことにより動物の胃腸の負担を軽減する技術などが、消化器系の疾病の予防や改善に有用であることが報告されている（特許文献３）。また、麹菌を用いて魚粉を低水分で発酵させてプロテアーゼ、リパーゼ等を高濃度に含有する魚用の魚粉発酵飼料を得る方法が知られている（特許文献４）。しかしながら、このような技術においては、飼料中の水分含量を高め飼料の成分分解を行った後、乾燥して製品化するという煩雑な工程が必要であるという問題があった。さらに、成分分解のために水分の含量を高めた飼料は、腐敗菌やカビなどが発生しやすく、品質の維持が困難であるなどの問題もあった。
また、麹菌の胞子を動物に経口投与することにより動物の糞を改質する方法が報告されているが、動物の体重増加を促進するという用途については検討されておらず、麹菌に酸性酵素を産生させた形態で動物に投与することも知られていない（特許文献５）。
また、甲殻類の甲殻粉砕物に発酵栄養源を加えて混合し、これにアスペルギルス・オリゼーを接種してキチン又はキトサンを分解させて発酵物を得て、動物に与えることが記載されている（特許文献６）。しかしながら、アスペルギルス・オリゼーに酸性酵素を産生させた形態で動物に投与することについては知られていない。

一方で、アスペルギルス・オリゼーは麹酸を産生することが報告されている（非特許文献１）。また、麹酸はAerobacter、Alcaligenes、Bacillus、Brucella、Chromobacterium、Clostridium、Corynebacterium、Diplococcus、Eberthella、Escherichia、Klebsiella、Leptospira、Micrococcus、Neisseria、Pasteurella、Proteus、Pseudomonas、Salmonella、Sarcina、Shigella、Serratia、Spirillum、Staphylococcus、Streptococcus、Vibrioに対して抗菌活性を有することが報告されている（非特許文献２）。しかしながら、麹
酸を投与したマウスで肝細胞腫瘍の発生が認められ、ラットにおいても麹酸の肝発ガン性の可能性が示唆されている。また、遺伝毒性の有無については明らかにはなっていないが、遺伝毒性を有する可能性についても否定はできない。すなわち、飼料において麹酸を含有させることについては注意が必要である。

特表２００５−５０７６７０号公報特表２００４−５２３２４１号公報特開２００４−１４１１４７号公報特表平６−３１９４６４号公報特開平１１−１７１６７４号公報特開２００２−２３８４６６号公報 George A. Burdock, Madhusudan G. Soni, and Ioana G. Carabin (2001) Regulatory Toxicology and Pharmacology 33, 80-101 Harry E. Morton, Walter Kocholaty, Renate Junowicz-Kocholaty, and Albert Kelner (1945) J. Bacteriol 50, 579-584

本発明は、動物の消化活動を補助し、飼料効率を高めるための安全かつ簡便な手段を提供することを課題とする。具体的には、動物の消化器官内において増殖が可能な菌を利用して、動物の腸内の病原菌やコクシジウムの増殖を抑えることにより感染症を予防・治療し、動物の体重増加を実現する手段を提供することを課題とする。

本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究を行った結果、アスペルギルス・オリゼーが酸性酵素、とりわけ酸性アミラーゼの産生能力に優れること、アルペルギルス・オリゼーが、腸内感染症を引き起こす病原菌に対する抗菌活性及びコクシジウムに対する殺原虫活性を有すること、及びこれらがプロバイオティクスとして機能することを見出した。また、これらの菌の酸性酵素産生能は、玄米を栄養源として培養した場合に極めて優れることを見出した。そして、これらの菌体と菌体により産生された酸性酵素を組み合わせて飼料と共に動物に摂取させることにより、消化を促進し、腸内感染症を予防・改善し、動物の体重増加に寄与することを知見し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、以下の通りである。
（１）アスペルギルス・オリゼー（Aspergillus oryzae）及び該菌が産生する酸性酵素を含む培養物を含む、動物用飼料添加剤。
（２）前記酸性酵素が、酸性アミラーゼである、（１）に記載の動物用飼料添加剤。
（３）前記アスペルギルス・オリゼーが、アスペルギルス・オリゼーＩＫ−０５０７４株（ＦＥＲＭＢＰ−１０６２２）又はこれと同じ酸性酵素を産生する能力を有する該菌株の変異株である（１）又は（２）に記載の動物用飼料添加剤。
（４）前記菌が、動物の腸内感染症を引き起こす病原菌に対する抗菌活性及び／又はコクシジウムに対する殺原虫活性を有することを特徴とする、（１）〜（３）の何れか一に記載の動物用飼料添加剤。
（５）前記培養物が、植物性栄養源を含む（１）〜（４）の何れか一に記載の動物用飼料添加剤。
（６）前記植物性栄養源が、玄米である（５）に記載の動物用飼料添加剤。
（７）（１）〜（６）の何れか一に記載の動物用飼料添加剤を含む飼料。
（８）菌の増殖のための栄養源を含む固体培地で、アスペルギルス・オリゼーを培養し、得られた培養物を飼料に含有させることを特徴とする、飼料の製造方法。

本発明のアスペルギルス・オリゼー及び該菌が産生する酸性酵素を含む培養物を含む動物用飼料添加剤を飼料に混合し、動物に摂取させることにより、栄養吸収が促進され、飼料効率が上がる。また、動物の腸内においてアスペルギルス・オリゼーの菌体濃度が増加することにより、腸内フローラのバランスが改善される。さらに、病原菌やコクシジウムの増殖を抑制し、動物の腸内感染症を予防・改善する。

本発明の動物用飼料添加剤は、アスペルギルス・オリゼー（Aspergillus oryzae）及び酸性酵素を含むことを特徴とする。

本発明の動物用飼料添加剤に含有するアスペルギルス・オリゼーは、当該技術分野において、麹菌の種の同定に一般的に用いられる方法により分類した場合に、当該種に分類される菌である。菌種の同定には、例えば、「H. Murakami, The Journal of General and Applied Microbiology, 17, p.281-309, (1971)」、「Nikkuni, S., et al, The Journal
of General and Applied Microbiology, 44, p.225-230, (1998)」なども参照することができる。

アスペルギルス・オリゼーは、土壌、麹などに見出される糸状不完全菌類の一種で醤油、味噌の醸造に用いられる菌である。本発明の動物用飼料添加剤においては、下記に詳述する酸性酵素のうち少なくとも一種、好ましくは酸性アミラーゼを産生する能力を有していて、動物に摂食させる上で安全なものであれば、特に制限なく用いることができる。本発明の動物用飼料添加剤においては、市販されている菌株を用いてもよく、このような菌としてアスペルギルス・オリゼーＩＫ−０５０７４株を好ましく用いることができる。ＩＫ−０５０７４株は、各種発酵食品から分離された株で、平成１８年２月１５日に、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に受託番号ＦＥＲＭＰ−２０７９８として寄託され、平成１８年６月２０日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号ＦＥＲＭＢＰ−１０６２２が付与されている。

ＩＫ−０５０７４株の菌学的性質は以下のとおりである。
（１）コロニーの性状（Ｃｚａｐｅｋ−Ｄｏｘ寒天培地（２５℃で７日間培養））
大きさは直径５０〜６０ｍｍ、色は黄から緑、時間の経過により褐色がかった色に変化する。菌糸体は目立たず、裏面は無色である。
（２）形態
分生子柄：薄壁〜厚壁、滑面〜わずかに粗面であり、直径は２０μｍ以下、長さは２ｍｍ以下、頂のうは直径４０〜５０μｍ、８０μｍ以下の球形。
基底梗子：大きな分生子柄のほとんどにおいて存在し、長さは１２μｍ以下。
フィアライド：アンプル型、長さは８〜１２μｍ、短い頸部を有する。
分生子：直径５〜６μｍの球形、色は黄から緑、表面は滑面〜微細な粗面。

以上より、ＩＫ−０５０７４株は、アスペルギルス・オリゼー（Aspergillus oryzae）に帰属すると推定された。

また、本発明の動物用飼料添加剤においては、ＩＫ−０５０７４株の変異株を用いることもできる。ＩＫ−０５０７４株の変異株は、ＩＫ−０５０７４株を自然変異させたり、化学的変異剤や紫外線等で変異処理したりして得られた菌株からＩＫ−０５０７４株と同じ酸性酵素を産生する能力を有する菌株を選抜して得ることができる。また、酸性酵素を産生する能力に加え、ＩＫ−０５０７４株と同じ抗菌活性、殺原虫活性、胆汁酸耐性、耐酸性の少なくとも一つをさらに有するＩＫ−０５０７４株の変異株を用いることも好まし
い。また、さらに上記以外の菌学的性質もＩＫ−０５０７４株と同様である変異株を用いることも好ましい。

また、本発明の動物用飼料添加剤においては、例えば土壌、麹などから単離したアスペルギルス・オリゼーのうち、酸性酵素を産生する能力を有している菌株を単離して用いてもよい。

酸性酵素を産生する能力とは、菌を通常の培養条件で培養して得られた培養物中に、酸性酵素活性を検出することができる程度に酸性酵素を産生することをいう。酸性酵素については後述する。培養物の酸性酵素活性の検出は、常法に従って行うことができる。例えば、国税庁所定分析法（改正第３回税庁訓令第１号）の固体こうじの分析法のグルコアミラーゼ活性測定法、α−アミラーゼ活性測定法、耐酸性α−アミラーゼ活性測定法、酸性プロテアーゼ活性測定法及び酸性カルボキシペプチダーゼ活性測定法に準拠して測定することができる。

また、本発明に用いる上記アスペルギルス・オリゼーは、動物の腸内感染症を引き起こす病原菌に対して抗菌活性を有していることが好ましい。
上記病原菌は、通常腸内細菌科に属する。グラム陰性細菌に属する病原菌としては、病原性大腸菌（Escherichia coli）、サルモネラ属（Salmonella）、カンピロバクター属（Campylobacter）に属する細菌が挙げられる。グラム陽性細菌に属する病原菌としてはクロストリジウム属（Clostridium）、バチルス属（Bacillus）、リステリア属（Listeria）、スタフィロコッカス属（Staphylococcus）、ストレプトコッカス属（Streptococcus）に属する細菌が挙げられる。
病原性大腸菌としては、例えば、腸管侵入性大腸菌（Enteroinvasive E. coli: EIEC）、腸管毒素原性大腸菌（Enterotoxigenic E. coli: ETEC）、腸管病原性大腸菌（Enteropathogenic E. coli: EPEC）、志賀毒素産生性大腸菌（Shiga toxin producing E. coli: STEC）、腸管凝集接着性大腸菌（Enteroaggregative E. coli: EAEC）などが挙げられる。サルモネラ属に属する細菌としては、S. pullorum、S. gallinarum、S. typhi、S. typhimurium、S. enteritidis、S. choleraesuis、S. derby、S. dublinなどが挙げられる。カンピロバクター属に属する細菌としては、C. jejuni、C. coli、C. fetus、C. fetus subsp. intestinalisなどが挙げられる。
クロストリジウム属に属する細菌としては、C. perfringens、C. botulinum、C. difficileなどが挙げられる。バチルス属に属する細菌としては、B. cereusなどが挙げられる。リステリア属に属する細菌としては、L. monocytogenesなどが挙げられる。スタフィロコッカス属に属する細菌としては、黄色ブドウ球菌（S. aureus）などが挙げられる。ストレプトコッカス属に属する細菌としては、S. suis、S. pyogenesなどが挙げられる。本発明の動物用飼料添加剤に含まれるアスペルギルス・オリゼーは特にサルモネラ属細菌、中でもS. enteritidis及びクロストリジウム属細菌、中でもC. perfringens、浮腫病菌などの大腸菌、黄色ブドウ球菌に対して高い抗菌活性を有する。

病原菌に対して抗菌活性を有するとは、病原菌と同一の培地に接種した場合に、病原菌の増殖を抑制する能力を有していることをいう。抗菌活性を有するアスペルギルス・オリゼーは、例えば、土壌、麹などの分離源をSalmonella enteritidis（ＳＥ）、Clostridium perfringens（ＣＰ）、Escherichia coli（ＥＣ）、Staphylococcus aureus（ＳＡ）などの病原菌を接種した寒天培地に添加し、培養を行った後、阻止円を形成した菌体を分離することにより得ることができる。このようにして得た菌は、上述した病原菌の増殖を抑制する能力を有しているため、動物に投与することにより、動物の腸内感染症を予防・治療することができる。
また、動物の腸内感染症を引き起こす病原菌の増殖が抑制されていることは、例えば動物の盲腸内容物や糞中の病原菌の菌体濃度（生菌数）を測定することなどにより確認する
ことができる。

また、本発明に用いる上記アスペルギルス・オリゼーは、動物の腸内感染症を引き起こすコクシジウムに対して殺原虫活性を有していることが好ましい。
コクシジウムとは、胞子虫類（Sporozoasida亜綱）に属する原虫をいう。具体的にはEimeria属、Isospora属、Toxoplasma属、Cryptosporidium属などが挙げられる。Eimeria属に属する原虫としては、E. tenella、E. necatrix、E. acervulina、E. maxima、E. mitis、E. zuernii、E. bovisなどが挙げられる。Isospora属に属する原虫としては、I. suis、I. belli、I. hominisなどが挙げられる。Toxoplasma属に属する原虫としては、T. gondiiなどが挙げられる。Cryptosporidium属に属する原虫としては、C. parvumなどが挙げられる。本発明の動物用飼料添加剤は、特に、E. tenella、E. zuerniiによる感染症に対して好適に用いることができる。

コクシジウムに対して殺原虫活性を有するとは、コクシジウムのオーシストと菌の培養物を共存させた場合に、オーシストの発芽・増殖を抑制し、好ましくはオーシストを減少させる能力を有していることをいう。具体的には、オーシストの細胞壁を変形、溶解し、オーシストを崩壊させる能力を有していることをいう。オーシストの崩壊や細胞壁の状態は、顕微鏡を用いて観察すればよい。
コクシジウムに対する殺原虫活性を有するアスペルギルス・オリゼーは、例えば、以下の方法により得ることができる。土壌、麹などの分離源をE. tenellaやE. zuerniiのオーシストを懸濁させた滅菌水を入れたシャーレに加え、３７℃で培養を行い、１〜７日間観察を行う。オーシストの変形もしくは溶解が認められたシャーレから菌体を分離し、これを再度、E. tenella やE. zuerniiのオーシストを懸濁させた滅菌水を入れたシャーレに加え、３７℃で培養を行い、オーシストの変形もしくは溶解を確認する。このようにしてシャーレに含まれる菌を培養し、それぞれアスペルギルス・オリゼーの菌学的性質を有する菌を選ぶことにより、本発明に用いるアスペルギルス・オリゼーを得ることができる。このようにして得た菌を動物に投与することにより、動物の腸内コクシジウム感染症を予防・治療することができる。

また、本発明の動物用飼料添加剤に含まれるアスペルギルス・オリゼーを投与することにより、コクシジウムの増殖が抑制されているかについては、例えば動物の盲腸内容物や糞中のコクシジウムのオーシストを顕微鏡下で観察することなどにより確認することができる。

本発明の動物用飼料添加剤に含まれるアスペルギルス・オリゼーは、胃酸や胆汁酸に対する耐性を有しているものが好ましい。これにより、動物の腸内でも菌体が酸性酵素を産生し、後述する酸性酵素の機能が持続すると考えられる。また、菌体が腸内で増殖することにより、腸内フローラのバランス改善にも寄与する。胃酸や胆汁酸に対して耐性を有するとは、通常の消化器官内の条件において菌が死滅することなく、腸まで到達することをいう。通常、ヒトや動物の胃内部は空腹時にはｐＨ２あるいはそれ以下に達することがあるが、食物を摂取した状態では、胃内部のｐＨは３．５〜６の範囲で空腹時よりも高い。従って、本発明の飼料添加剤に用いることができる耐酸性を有する菌株は、例えば、分離源をｐＨ３．５で２時間程度処理した場合に、生存する能力を有する菌株を選抜して得ることができる。さらに、このようにして選抜した菌をデオキシコール酸濃度１０ｇ／ｌの存在下で２４時間程度処理して、生存する能力を有する菌株を選抜することにより、さらに胆汁酸耐性である菌株を得ることができる。また、菌が死滅せず腸まで到達していることは、例えば、動物の排泄物中の菌体の濃度を測定することにより確認することができる。

本発明の動物用飼料添加剤に含有するアスペルギルス・オリゼーの菌体濃度は、飼料添
加剤を動物に投与した際に、菌体が消化器官内で死滅しない範囲であればよく、通常は、後述するような酸性酵素活性を有する飼料添加剤を製造するために適当な濃度の菌体を培養し、飼料添加物中の酸性酵素活性を調節すればよい。

本発明の動物用飼料添加剤に含まれる酸性酵素は消化器官内の酸性条件下において失活せずに活性を有するものであれば特に制限されないが、アスペルギルス・オリゼーが産生する消化酵素であることが好ましい。この中でも最適ｐＨを２．５〜５．５に有する酵素が好ましい。例えば、酸性のα−アミラーゼ、グルコアミラーゼ、タカジアスターゼ、プロテアーゼ、セルラーゼ、リボヌクレアーゼ、ヌクレアーゼ、キシラナーゼ、ペクチナーゼ、リパーゼなどを挙げることができ、本発明の動物用飼料添加剤は、これらのうち少なくとも一種を含有する。この中でも特に、家畜の飼料成分のうち主な成分の一つであるデンプンを分解する酸性アミラーゼを含むことが好ましい。本発明の動物用飼料添加剤に含まれる酸性アミラーゼは、デンプンを加水分解する酸性酵素であれば特に制限されず、例えば、α−アミラーゼ、β−アミラーゼ、グルコアミラーゼなどが挙げられる。この中でも最適ｐＨを３付近に有する耐酸性α−アミラーゼを好ましく挙げることができる。
本発明の動物用飼料添加剤は、アスペルギルス・オリゼーが産生する酸性酵素のみを含んでいてもよいが、さらに他の菌種や他の生物種由来の酵素を含んでいてもよい。

本発明の動物用飼料添加剤における酸性酵素の含有量は、動物の種類、体重などに応じて適宜調節することができる。通常は、国税庁所定分析法（改正第３回税庁訓令第１号）の固体こうじの分析法に準拠して酸性酵素の活性を測定した場合、動物用飼料添加剤１ｇ当たりの酸性酵素活性の総和が、１２，０００Ｕ以上であることが好ましく、２０，０００Ｕ以上であることがさらに好ましい。特に、動物用飼料添加剤１ｇ当たりの酸性アミラーゼ活性が、１００Ｕ以上であることが好ましく、３００Ｕ以上であることがさらに好ましい。また、酸性プロテアーゼ活性と酸性カルボキシペプチダーゼ活性の総和が、１０，０００Ｕ以上であることが好ましく、１５，０００Ｕ以上であることがさらに好ましい。

本発明の動物用飼料添加剤は、アスペルギルス・オリゼーを培養し、該菌に酸性酵素を産生させることによって得ることができる。本発明の動物用飼料添加剤に用いることができるアスペルギルス・オリゼーは、通常の培養条件で培養することにより酸性酵素を産生する。例えば、培養温度は２５℃〜４０℃で行うことができるが、通常は２８〜３２℃で培養することが好ましい。また、培養方法は、往復動式振とう培養、ジャーファーメンター培養などによる液体培養法や固体培養法を用いることができるが、アスペルギルス・オリゼーの酸性酵素産生遺伝子の中には、固体培地においてのみ発現する遺伝子も存在するため、本発明においては固体培養法を用いることが好ましい。

培養に用いる培地成分は、動物性又は植物性の何れを用いてもよいが、植物性の栄養源を含有することが好ましく、例えば、玄米、フスマ、コメヌカ、大豆、大麦などを含有することが好ましい。この中でも、特に玄米を栄養源とすることが好ましい。これにより、酸性アミラーゼなどの酸性酵素の産生効率を高めることができる。
また、その他の炭素源としてグルコース、スクロース、糖蜜などの糖類、また窒素源としてアンモニア、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウムなどのアンモニウム塩や硝酸塩等を添加することもできる。

本発明の動物用飼料添加剤においては、このようにして得た培養物をそのまま動物用飼料添加剤とすることもできるし、得られた培養物から、菌体及び酸性酵素を含む一部を分離して、動物用飼料添加剤に含有させることもできる。例えば、固体培地を用いて菌体の培養を行う場合は、菌体を培地と共に粉砕したものを動物用飼料添加剤に含有させることが簡便性の面から好ましい。さらに、培養物を乾燥させたり、保存性を高めるための任意成分をさらに添加したりするなどの加工をして、製品の品質安定性を高めることも好まし
い。

乾燥方法は、特に制限されるものではなく、例えば、通風乾燥、自然乾燥、噴霧乾燥、凍結乾燥などにより行うことができるが、この中でも通風乾燥が好ましく用いられる。また、凍結乾燥を用いることもできるが、その際には、保護剤を添加してもよい。保護剤の種類は、特に制限されないが、スキムミルク、グルタミン酸ナトリウム及び糖類から一種又は二種以上を選択して用いるのが好ましい。また、糖類を用いる場合にその種類は特に制限されないが、グルコースやトレハロースを用いるのが好ましい。
さらに、乾燥後は、得られた乾燥物に、脱酸素剤、脱水剤を加えて、ガスバリアー性のアルミ袋に入れて密封し、室温から低温で貯蔵することが好ましい。これにより、菌体を長期間生きたままで保存することが可能となる。

また、本発明の動物用飼料添加剤は、麹酸の含有濃度が低いことが好ましい。通常は、麹酸の含有濃度が０．１ｍｇ／ｌ以下であることが好ましく、０．０１ｍｇ／ｌ以下であることがさらに好ましい。

また、本発明の動物用飼料添加剤は、通常用いられている動物用飼料の成分と混合して、動物の成長促進のための飼料とすることができる。また、上述したアスペルギルス・オリゼーがさらに動物の腸内感染症を引き起こす病原菌に対する抗菌活性及び／又はコクシジウムに対する殺原虫活性を有している場合には、病原菌及び／又はコクシジウムによる動物の腸内感染症を予防・治療するための飼料とすることができる。
飼料の種類や成分は、本発明の動物用飼料添加剤に含まれる菌体が死滅せず、かつ酸性酵素が失活しない限りにおいて特に制限されず、通常、家畜の飼料やペットフード、動物用サプリメントなど、動物の飼料として用いられているものに添加することができる。

本発明の飼料は、本発明の動物用飼料添加剤を飼料の成分に添加することにより製造することができる。本発明の飼料に含まれる動物用飼料添加剤の含有量は、与える動物の種類、体重、年齢、性別、使用目的、健康状態、飼料の成分などにより適宜調節することができ特に制限されないが、通常は飼料全量に対して、乾燥状態で１０〜５０００ｐｐｍ、好ましくは５０〜１０００ｐｐｍとするのがよい。

また、本発明の動物用飼料添加剤は、そのまま飼料成分に添加し、混合してもよいが、粉末状、固形状の動物用飼料添加剤を添加、混合する場合は、飼料への混合を容易にするために液状又はゲル状の形態にして使用することもできる。この場合は、水、大豆油、菜種油、コーン油などの植物油、液体動物油、ポリビニルアルコールやポリビニルピロリドン、ポリアクリル酸などの水溶性高分子化合物を液体担体として用いることができる。また、飼料中における菌体濃度の均一性を保つために、アルギン酸、アルギン酸ナトリウム、キサンタンガム、カゼインナトリウム、アラビアゴム、グアーガム、タマリンド種子多糖類などの水溶性多糖類を配合することも好ましい。また、雑菌の繁殖を防ぐために有機酸を配合し、液体生菌剤を酸性にすることもできる。

本発明の飼料を摂取させる動物の種類は、特に制限されず、例えば、哺乳類、鳥類、爬虫類、両生類、魚類などが挙げられる。この中でも、特に家禽、家畜に対して好適に用いることができる。動物に摂取させる飼料の量は、動物の種類、体重、年齢、性別、使用目的、健康状態、飼料の成分などにより適宜調節することができる。

（１）耐酸性、胆汁酸耐性アスペルギルス属菌の選抜
ポテトデキストロース寒天培地のｐＨを５に調整し、１２１℃で１５分間殺菌した。この寒天培地の温度が６０℃まで低下したところでデオキシコール酸ナトリウムを培地１ｌ
当たり１０ｇの濃度で添加し、各種発酵食品を分離源として多くのアスペルギルス属菌を接種し、培地に生育してきた菌株のうち、最も生育の良好な株を選抜した。この株をアスペルギルス・オリゼーＩＫ−０５０７４株とし、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託した。ＩＫ−０５０７４株の菌学的性質は、上述したとおりである。

（２）菌種の比較実験
（ａ）菌体の培養及び酸性酵素活性の測定
玄米を固体培地として、（１）で選抜したアスペルギルス・オリゼーＩＫ−０５０７４株の培養を行った。すなわち、玄米１００ｇを一昼夜水に浸けて膨潤させた後、蓋に無菌フィルターの付いた直径１４センチ、深さ１０センチのポリカーボネート製容器に２センチの厚さに入れ、オートクレーブにて１２１℃で１５分間殺菌した。この容器に上記の各菌体を接種して２８℃で１０日間培養し、種菌を製造した。
次いで、上記と同様に膨潤させた玄米を３０×４０×１０センチのステンレスバットに厚さ１．５センチに積層し、２０×２５センチのフィルターで覆った通気口を有する蓋をかけ、大型オートクレーブに入れて１２１℃で２５分間殺菌した。このバットを冷却した後、あらかじめ培養しておいた上記種菌を全量接種した。このバットを２８℃の孵卵器に入れ、１０日間培養した。
培養後、３５℃で通風乾燥し、ジェットミルで粉砕し、ＩＫ−０５０７４株の固体培養物を得た。また、アスペルギルス・カワチ（Aspergillus kawachii）ＡＯＫ１００６ｓ株（株式会社秋田今野商店）を用いて上記と同様にして固体培養物を得た。

次に、ＩＫ−０５０７４株をポテトデキストロース液体培地を１２１℃、１５分殺菌した後、６０℃まで低下したところでデオキシコール酸ナトリウムを培地１ｌ当たり５ｇの濃度で添加した培地に接種し、２８℃で６日間培養した。この培養物を０．４μｍのフィルターでろ過し、菌体を集めた。集めた菌体に培養前の培地を流して３回洗浄し、菌体外酵素を除去した。次いで、菌体に培地成分を添加し、３６℃で２４時間通風乾燥し、酸性酵素を含まないＩＫ−０５０７４株の固体培養物を得た。

それぞれの固体培養物１ｇ当たりの耐酸性α−アミラーゼ活性、及び酸性プロテアーゼ活性と酸性カルボキペプチダーゼ活性の総和を測定した。結果を表１に示す。なお、上記酸性酵素の測定は、国税庁所定分析法（改正第３回税庁訓令第１号）の固体こうじの分析法の耐酸性α−アミラーゼ活性測定法、酸性プロテアーゼ活性測定法及び酸性カルボキシペプチダーゼ活性測定法に準拠して行った。

（ｂ）投与試験
上記で得られた固体培養物の鶏雛への投与試験を行った。上記で得たＩＫ−０５０７４株の固体培養物を飼料（ＳＤブロイラー前後期用、日本配合飼料株式会社製）全質量に対して、１００ｐｐｍ、１５０ｐｐｍの濃度で飼料に混合し、それぞれ実施例１及び２とした。また、アスペルギルス・カワチの固体培養物を同様に飼料に混合したものを比較例１及び２とし、酸性酵素を除去したＩＫ−０５０７４株の固体培養物を１５０ｐｐｍの濃度で飼料に混合したものを比較例３とした。また、オートクレーブ殺菌をして菌を添加せずに乾燥した玄米を１５０ｐｐｍの濃度で飼料に混合し、対照区とした。投与試験は１０羽を一群として、孵化後１週間目の鶏雛に上記飼料を４８日間自由に摂取させて肥育した。孵化後５５日目の各群の鶏雛の平均体重を表１に示す。

アスペルギルス・オリゼーＩＫ−０５０７４株を培養して得られた培養物の耐酸性α−アミラーゼ活性は、アスペルギルス・カワチを培養して得られた培養物の耐酸性α−アミラーゼ活性の約５７倍であった。また、酸性プロテアーゼ活性及び酸性カルボキシペプチダーゼ活性の総和も約６倍であった。これより、ＩＫ−０５０７４株は、酸性アミラーゼ、酸性プロテアーゼ及び酸性カルボキシペプチダーゼの産生能力に優れており、特に酸性アミラーゼの産生能力に優れていることが分かる。

本発明の動物用飼料添加剤を含む飼料を投与した実施例１、２の群の鶏雛の体重は、比較例１〜３の群の鶏雛の体重に比して増加していた。これにより、本発明のアスペルギルス・オリゼー及びこれが産生する酸性酵素を含有する動物用飼料添加剤を含む飼料は、動物の成長を促進する効果を有することが分かる。

（３）アスペルギルス・オリゼーの培養物の抗菌活性の測定
ＩＫ−０５０７４株と病原菌を共培養することによってこれらの菌の病原菌に対する抗菌活性を試験した。

Salmonella enteritidis（ＳＥ）については、標準寒天培地にて３７℃、２４時間好気培養を行った。平板上に発育したコロニーをかきとり滅菌生理食塩水に浮遊させた。１Ｌ容の三角フラスコにブレインハートインフュージョンブイヨン「日水」５００ｍｌを作製し、オートクレーブ殺菌後、ＳＥの最終濃度が約１．０×１０⁴〜１．０×１０⁵ＣＦＵ／ｍｌとなるよう無菌的に投入した。三角フラスコに、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入し、実施例３とした。ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入した三角フラスコを比較例４とし、麹菌培養物を加えない三角フラスコを対照区とした。おのおのの三角フラスコを３７℃の恒温器で、好気条件下で緩攪拌培養した。

Clostridium perfringens（ＣＰ）については、アネロパックケンキ（三菱ガス化学(株)製）を用い、卵黄加ＣＷ寒天培地（日水製薬（株）製）にて３７℃、２４時間嫌気培養を行った。平板上に発育したコロニーをかきとり滅菌生理食塩水に浮遊させた。１Ｌ容の三角フラスコにブレインハートインフュージョンブイヨン「日水」５００ｍｌを作製し、オートクレーブ殺菌後、ＣＰの最終濃度が約１．０×１０⁴〜１．０×１０⁵ＣＦＵ／ｍｌとなるよう無菌的に投入した。三角フラスコに、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入し、実施例４とした。ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入した三角フラスコを比較例５とし、麹菌培養物を加えない三角フラスコを対照区とした。おのおのの三角フラスコを３７℃の恒温器で、アネロパックケンキを用いて嫌気条件下で緩攪拌培養した。

試験開始後、０日、３日、７日目においてＳＥおよびＣＰの生菌数測定を実施した。ＳＥの生菌数測定方法は、採取した培養液を、滅菌生理食塩水で１０倍段階希釈後、希釈段階液の０．１ｍｌをＸ−ＳＡＬ寒天培地「日水」に塗布し、３７℃、２４時間好気培養を行い、発育した特徴的なコロニーを計数した。ＣＰの生菌数測定方法は、採取した培養液を、滅菌生理食塩水で１０倍段階希釈後、希釈段階液の０．１ｍｌを卵黄加ＣＷ寒天培地（日水製薬（株）製）に塗布し、アネロパックケンキを用いて３７℃、２４時間嫌気培養を行い、発育した特徴的なコロニーを計数した。

また、同時に麹酸濃度を定量するため、培養液を８，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、その上清をセルロース混合エステルタイプメンブレンフィルター（孔径０．４５μｍ、アドバンテック東洋（株）製）で濾過した。ＨＰＬＣ装置は、Waters600(Multisolvent
Delivery system)及びwaters 490E(Programmable multiwavelength Detector)を用いた。カラムは、YMC-Pack ODS-AM 6.0mm×150mm（ワイエムシイ社製）を用いた。移動相は０．１ｍｏｌ／ｌリン酸二水素ナトリウム溶液（ｐＨ３．０）−メタノール（９７：３）、流速は１．０ｍｌ／ｍｉｎ、カラム温度は４０℃、測定波長は２７０ｎｍで麹酸の検出を行った。検量線は麹酸（試薬特級、和光純薬工業（株）製品）を用いて作製した。
表２にＳＥの生菌数を、表３にＳＥの共培養試験の培養物の麹酸濃度を、表４にＣＰの生菌数を、表５にＣＰの共培養試験の培養物の麹酸濃度を示す。

実施例３に示すように、ＩＫ−０５０７４株と共培養した場合には、ＳＥの生菌数が試験３日目以降から検出限界以下となり、比較例４に示すＡＯＫ１００６ｓ株の固体培養物に比べ明らかに高いＳＥに対する抗菌活性を示した。なお、対照区においては試験後、菌数の上昇が認められ、３日目に３．３×１０⁸ＣＦＵ／ｍｌを示した。
また、何れの懸濁液においても麹酸含量は検出限界以下であった。

実施例４に示すように、ＩＫ−０５０７４株と共培養した場合には、ＣＰの生菌数が試験３日目以降から検出限界以下となり、比較例５に示すＡＯＫ１００６ｓ株の固体培養物に比べ明らかに高いＣＰに対する抗菌活性を示した。対照区については試験７日目まで菌数の上昇が認められ、７日目に１．３×１０⁶ＣＦＵ／ｍｌを示した。
また、何れの懸濁液においても麹酸含量は検出限界以下であった。

Escherichia coli(ＥＣ)については、標準寒天培地（日水製薬（株）製）にて３７℃で２４時間好気培養した。平板上に発育したコロニーをかき取り、滅菌生理食塩水に浮遊させた。１Ｌ容の三角フラスコにブレインハートインフュージョンブイヨン「ニッスイ」（日水製薬（株）製）５００ｍｌを作製し、オートクレーブ殺菌後、ＥＣの最終濃度が約１．０×１０⁵〜１．０×１０⁶ＣＦＵ／ｍｌとなるよう無菌的に投入した。三角フラスコに（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入し、実施例５とした。ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入した三角フラスコを比較例６とし、麹菌培養物を加えない三角フラスコを対照区とした。おのおのの三角フラスコを３７℃の恒温器で、好気条件下で緩攪拌培養した。

Staphylococcus aureus（ＳＡ）については、標準寒天培地にて３７℃で２４時間好気培養した。平板上に発育したコロニーをかき取り、滅菌生理食塩水に浮遊させた。１Ｌ容
の三角フラスコにブレインハートインフュージョンブイヨン「ニッスイ」（日水製薬（株）製）５００ｍｌを作製し、オートクレーブ殺菌後、ＳＡの最終濃度が約１．０×１０⁵〜１．０×１０⁶ＣＦＵ／ｍｌとなるよう無菌的に投入した。三角フラスコに、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入し、実施例６とした。ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物５ｇを無菌的に投入した三角フラスコを比較例７とし、麹菌培養物を加えない三角フラスコを対照区とした。おのおのの三角フラスコを３７℃の恒温器で、好気条件下で緩攪拌培養した。

試験開始後、０日、３日、７日目においてＥＣおよびＳＡの生菌数測定を実施した。ＥＣの生菌数測定方法は、採取した培養液を、滅菌生理食塩水で１０倍段階希釈後、希釈段階液の０．１ｍｌをクロモカルトコリフォームアガー「Ｍｅｒｃｋ」（Ｍｅｒｃｋ製）に塗布後、３７℃、２４時間好気培養を行い、発育した特徴的なコロニーを計数した。ＳＡの生菌数測定方法は、採取した培養液を、滅菌生理食塩水で１０倍段階希釈後、希釈段階液の０．１ｍｌを卵黄加マンニット食塩培地「栄研」（栄研器材（株）製）に塗布後、３７℃、４８時間好気培養を行い、発育した特徴的なコロニーを計数した。
表６にＥＣの生菌数を、表７にＳＡの生菌数を示す。

実施例５に示すように、ＩＫ−０５０７４と共培養した場合はＥＣの生菌数が試験３日目以降から検出限界以下となり、比較例６に示すＡＯＫ１００６ｓ株の固体培養物に比べ明らかに高いＥＣに対する抗菌活性を示した。なお、対照区においては試験後菌数の上昇が認められ、３日目に４．０×１０⁸ＣＦＵ／ｍｌを示した。

実施例６に示すように、ＩＫ−０５０７４と共培養した場合はＳＡの生菌数が試験３日目以降から検出限界以下となり、比較例７に示すＡＯＫ１００６ｓ株の固体培養物に比
べ明らかに高いＳＡに対する抗菌活性を示した。対照区については試験後菌数の上昇が認められ、３日目に３．７×１０⁸ＣＦＵ／ｍｌを示した。

（４）鶏ヒナに対するSalmonella enteritidis攻撃試験
鶏ヒナの飼料（ＳＤブロイラー前期用、日本配合飼料(株)製、抗菌性物質無添加飼料）全質量に対して、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍとなるように混合した飼料を実施例７とした。ブロイラー種鶏(銘柄：チャンキー)由来の種卵より孵化した鶏ヒナ１２羽を一群として、実施例７の飼料を１４日間与えた。一方、ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍとなるように混合した飼料を、比較例８とした。麹菌培養物の代わりに乳糖を１００ｐｐｍ混合した飼料を対照区とし、同様に試験を行った。７日齢で１羽当たり２．０×１０⁵ＣＦＵのSalmonella enteritidis(ＳＥ)を経口投与した。ＳＥは、群馬県の養鶏業者の農場で死亡した鶏の盲腸内容物より分離した菌株を用いた。１４日齢で盲腸内容物と、総排泄腔を綿棒で拭うことにより糞を採取した。

盲腸内容物のＳＥ生菌数を以下の方法により測定し、感染指数及び防御指数を算出した。
盲腸内容物１ｇを滅菌リン酸緩衝生理食塩水を加えて１０倍に希釈し、十分混合して試料原液とした。ついで、試料原液を滅菌生理食塩水を用いて１０倍で段階希釈し、段階希釈液とした。試料原液及び段階希釈液をそれぞれＳＳ寒天平板培地「ニッスイ」（日水製薬(株)製）およびブリリアントグリーン寒天平板培地(Difco Laboratories製)に０．１ｍｌずつ塗沫し、３７℃で２４時間培養し、各平板培地に生育した典型的なＳＥのコロニー数を測定した。さらに、コロニーより釣菌してリジン脱炭酸試験用、ＳＩＭ寒天培地「ニッスイ」（日水製薬(株)製）およびＴＳＩ寒天培地「ニッスイ」（日水製薬(株)製）に接種して３７℃で２４時間培養して性状の確認を行った。
この中からＳＥと認められたコロニー数に希釈液の希釈倍率を乗じて盲腸内容物１ｇ当たりのＳＥ生菌数を算出した。この結果を元に、以下のようにして感染指数及び防御指数を算出した。感染指数とは、病原菌の感染率の高さを示す値であり、防御指数とは、麹菌を含まない飼料を投与した場合と比較した場合のそれぞれの飼料が病原菌の感染を防御する能力を示す値である。
感染指数：各個体の盲腸内容物中のＳＥ生菌数の対数の平均値（ｌｏｇＣＦＵ／ｇの平均値）
防御指数：対照群の感染指数／各試験群の感染指数

総排泄腔より採取した糞に関しては、以下の方法により個体別に定性培養を行うことによりＳＥの性状を確認した。すなわち、綿棒に付着した糞を１０ｍｌの滅菌リン酸緩衝生理食塩水に懸濁し、試料原液とした後、これをＳＳ寒天平板培地およびブリリアントグリーン寒天平板培地に０．１ｍｌずつ塗まつし、３７℃で２４時間培養し、各平板培地に生育した典型的なＳＥのコロニー形成の有無を判定した。さらに、コロニーより釣菌してＬＩＭ寒天培地「ニッスイ」（日水製薬(株)製）、ＳＩＭ寒天培地およびＴＳＩ寒天培地に接種して３７℃で２４時間培養して性状の確認を行った。
結果を表８に示す。

実施例７のＩＫ−０５０７４株を含む飼料を投与した鶏ヒナは、盲腸内容物のＳＥの菌体濃度が極めて低く、ＳＥの感染指数はきわめて低かった。比較例８のＡＯＫ１００６ｓ株を含む飼料を投与したヒナは、対照区と比較してＳＥの生菌数にほとんど変化がなかった。これより、本発明のアスペルギルス・オリゼーが産生する酸性酵素を含む培養物にはＳＥによる感染症を予防する効果がある事が示された。

（５）鶏ヒナに対するClostridium perfringens攻撃試験
鶏ヒナの飼料（ＳＤブロイラー前期用、日本配合飼料(株)製、抗菌性物質無添加飼料）全質量に対して、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍとなるように混合した飼料を実施例８とした。ブロイラー種鶏(銘柄：チャンキー)由来の種卵より孵化した鶏ヒナ１２羽を一群として、実施例８の飼料を１４日間与えた。一方、ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍとなるように混合した飼料を比較例９とした。麹菌培養物の代わりに乳糖を１００ｐｐｍ混合した飼料を対照区とし、同様に試験を行った。７日齢で１羽当たり１．５×１０⁹ＣＦＵのClostridium perfringens
(ＣＰ)を経口投与した。ＣＰは、群馬県の養鶏業者の農場で死亡した鶏の盲腸内容物より分離した菌株を用いた。１４日齢で盲腸内容物と、総排泄腔を綿棒で拭うことにより糞を採取した。

盲腸内容物のＣＰ生菌数を以下の方法により測定し、感染指数及び防御指数を算出した。
盲腸内容物１ｇを滅菌リン酸緩衝生理食塩水を加えて１０倍に希釈し、十分混合して試料原液とした。ついで、試料原液を滅菌生理食塩水を用いて１０倍で段階希釈し、段階希釈液とした。試料原液および段階希釈液をそれぞれクロストリジア測定用培地（日水製薬(株)製）に０．１ｍｌずつ塗まつし、アネロパックケンキを用いて３５℃で２４時間嫌気培養し、各平板培地に生育した黒色集落数を測定した。さらに、コロニーより釣菌して卵黄加ＣＷ寒天培地（日水製薬(株)製）に接種して、３５℃で２４〜４８時間好気および嫌気培養して性状の確認を行った。
この中からＣＰと認められたコロニー数に希釈液の希釈倍率を乗じて盲腸内容物１ｇ当たりのＣＰ生菌数を算出した。この結果を元に、上記と同様にして感染指数及び防御指数を算出した。

総排泄腔より採取した糞に関しては、以下の方法により個体別に定性培養を行うことによりＣＰの性状を確認した。すなわち、綿棒に付着した糞を１０ｍｌの滅菌リン酸緩衝生理食塩水に懸濁し、試料原液とした後、これをクロストリジア測定用培地（日水製薬(株)製）に０．１ｍｌずつ塗まつし、アネロパックケンキを用いて３５℃で２４時間嫌気培養し、各平板培地に生育した黒色集落形成の有無を判定した。さらに、コロニーより釣菌して卵黄加ＣＷ寒天培地（日水製薬(株)製）に接種して、３５℃で２４〜４８時間好気およ
び嫌気培養して性状の確認を行った。
結果を表９に示す。

実施例８のＩＫ−０５０７４株を含む飼料を投与した鶏ヒナは、盲腸内容物のＣＰの菌体濃度が極めて低く、ＣＰの感染指数はきわめて低かった。比較例９のＡＯＫ１００６ｓ株を含む飼料を投与したヒナは、対照区と比較してＣＰの生菌数はほとんど変化しなかった。これより、本発明のアスペルギルス・オリゼーが産生する酸性酵素を含む培養物にはＣＰによる感染症を予防する効果がある事が示された。

（６）子牛に対するEscherichia coli攻撃試験
生後１週齢の雄子牛（ホルスタイン種）を８頭を一群として飼育した。子牛用混合飼料（ミラクルメイト（株）科学飼料研究所製）全質量に対し、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍとなるように混合した飼料を実施例９とした。これらの子牛用混合飼料を４週齢まで給餌した。一方、ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍ混合した飼料を比較例１０とした。麹菌培養物の代わりに乳糖を１００ｐｐｍ混合した飼料を対照区とし、同様に試験を行った。２週齢で１頭当たり１．５×１０⁶ＣＦＵのEscherichia coli（ＥＣ）を全頭に経口投与した。４週齢まで飼育し、各群の子牛の死亡率を算出した。

また、小腸内容物を採取し、小腸内容物のＥＣの生菌数を以下の方法で測定した。小腸内容物１ｇを滅菌リン酸緩衝生理食塩水を加えて１０倍に希釈し、充分混合して試料原液とした。ついで、試料原液を滅菌生理食塩水を用いて１０倍で段階希釈し、段階希釈液とした。試料原液および段階希釈液をそれぞれクロモカルトコリフォームアガー「Ｍｅｒｋ」に０．１ｍｌずつ塗沫し、３７℃で２４時間培養し、各平板培地に生育した典型的なＥＣのコロニー数を測定した。ＥＣと認められたコロニー数に希釈液の希釈倍率を乗じて小腸内容物１ｇ当たりのＥＣ生菌数を算出した。この結果を元に、上記と同様にして感染指数及び防御指数を算出した。
結果を表１０に示す

実施例９のＩＫ−０５０７４株を含む飼料を投与した子牛は、死亡率は０％であった。また、小腸内容物のＥＣの感染指数は低かった。比較例１０のＡＯＫ１００６ｓ株を含む飼料を投与した子牛は、死亡率が１３％であった。また、対照区と比較してＥＣの生菌数はあまり変化しなかった。これより、本発明のアスペルギルス・オリゼーが産生する酸性酵素を含む培養物にはＥＣによる感染症を予防する効果がある事が示された。

（７）子豚に対する浮腫病菌攻撃試験
子豚用飼料（ＳＤ子豚人工乳前期用、日本配合飼料（株）製、抗菌性物質無添加飼料）全質量に対し、（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍとなるように混合した飼料を実施例１０とした。３５日齢の子豚（大ヨークシャー種）３０頭を一群として１９日間給餌した。一方、ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物を１００ｐｐｍ混合した飼料を、比較例１１とした。麹菌培養物の代わりに乳糖を１００ｐｐｍ混合した飼料を対照区とし、同様に試験を行った。４０日齢で１頭当たり１．８×１０⁵ＣＦＵの浮腫病菌（Escherichia coli）を経口的に感染させた。５４日齢まで飼育し、各群の子豚の死亡率を算出した。
また、上記と同様にして、小腸内容物を採取し、小腸内容物のＥＣの生菌数を測定し、感染指数及び防御指数を算出した。
結果を表１１に示す。

実施例１０のＩＫ−０５０７４株を含む飼料を投与した子豚は、死亡率は約２０％程度であり、比較例１１の飼料を投与した群の死亡率に比較して小さかった。また、小腸内容物のＥＣの感染指数は低かった。また、対照区と比較して浮腫病菌の生菌数はほとんど変化しなかった。これより、本発明のアスペルギルス・オリゼーが産生する酸性酵素を含む培養物には浮腫病を予防する効果がある事が示された。

（８）コクシジウム防除試験
（ａ）Eimeria tenella防除試験
Eimeria tenellaに自然感染した鶏の糞を集め、オーシストを実体顕微鏡下で分離し、生理食塩水で洗浄した。直径９ｃｍのシャーレに生理食塩水５ｍｌを加え、洗浄したオーシストを約４０００個／ｍｌとなるように投入した。（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物を、シャーレ当たり５０ｍｇずつ投入し、実施例１１とした。ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物５０ｍｇを投入したシャーレを比較例１２とし、麹菌培養物を加えないシャーレを対照区とした。おのおののシャーレを３７℃において振とう（１５０ｒｐｍ）した。７日後に、実体顕微鏡下で、オーシストの個数の測定、細胞壁の変形や溶解の状態の観察を行い、オーシストの減少率及び溶解変性率を算出した。
結果を表１２に示す。

実施例１１に示すように、ＩＫ−０５０７４株の固体培養物は、比較例１２に示すＡＯＫ１００６ｓ株の固体培養物に比べ、明らかにE. tenellaのオーシスト数を減少させ、また高いオーシスト溶解変性活性を示した。

（ｂ）Eimeria zuernii防除試験
Eimeria zuerniiに自然感染した牛下痢便を集め、オーシストを実体顕微鏡下で分離し、生理食塩水で洗浄した。直径９ｃｍのシャーレに生理食塩水５ｍｌを加え、洗浄したオーシストを約２０００個／ｍｌとなるように投入した。（２）（ａ）で得たＩＫ−０５０７４株の粉砕固体培養物を、シャーレ当たり５０ｍｇずつ投入し、実施例１２とした。ＡＯＫ１００６ｓ株の粉砕固体培養物５０ｍｇを投入したシャーレを比較例１３とし、麹菌培養物を加えないシャーレを対照区とした。おのおののシャーレを３７℃において振とう（１５０ｒｐｍ）した。７日後に、実体顕微鏡下で、オーシストの個数の測定、細胞壁の変形や溶解の状態の観察を行い、オーシストの減少率及び溶解変性率を算出した。
結果を表１３に示す。

実施例１２に示すように、ＩＫ−０５０７４株の固体培養物は、比較例１３に示すＡＯＫ１００６ｓ株の固体培養物に比べ、明らかにE. zuerniiのオーシスト数を減少させ、また高いオーシスト溶解変性活性を示した。

Claims

アスペルギルス・オリゼー（Aspergillus oryzae）ＩＫ−０５０７４株（ＦＥＲＭＢＰ−１０６２２）又はこれと同じ酸性酵素を産生する能力を有する該菌株の変異株及び該菌が産生する酸性酵素を含む培養物を含む、家禽又は家畜用飼料添加剤であって、前記培養物は玄米を含み、家禽又は家畜の腸内感染症を引き起こす病原菌に対する抗菌活性及び／又はコクシジウムに対する殺原虫活性を有することを特徴とする家禽又は家畜用飼料添加剤。
飼料添加剤１ｇ当たりの、酸性アミラーゼ活性が１００Ｕ以上であり、酸性プロテアーゼ活性と酸性カルボキシペプチダーゼ活性の総和が１０，０００Ｕ以上である、請求項１に記載の家禽又は家畜用飼料添加剤。
請求項１又は２に記載の家禽又は家畜用飼料添加剤を含む家禽又は家畜用飼料。
玄米を含む固体培地で、アスペルギルス・オリゼーＩＫ−０５０７４株（ＦＥＲＭＢＰ−１０６２２）又はこれと同じ酸性酵素を産生する能力を有する該菌株の変異株を培養し、得られた培養物を飼料に含有させることを特徴とする、家禽又は家畜用飼料の製造方法であって、前記菌が、家禽又は家畜の腸内感染症を引き起こす病原菌に対する抗菌活性及び／又はコクシジウムに対する殺原虫活性を有する、家禽又は家畜用飼料の製造方法。