JP4455322B2 - 二重特異性抗体ならびにキャリアペプチドと活性薬剤を含むハプテン構築物を用いる薬物プレターゲッティング - Google Patents
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Description
本発明は、例えば放射免疫療法(RAIT)などの治療用と、および例えば放射免疫診断(RAID)および磁気共鳴画像法(MRI)などの診断用途のための免疫学的試薬に関する。詳しくは本発明は、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体(bsAb)および二重特異性抗体フラグメント(bsFab)に関する。さらに本発明は、特定の免疫原に対して惹起されたモノクローナル抗体、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有するヒト化およびキメラモノクローナル二重特異性抗体および抗体フラグメント、このような抗体および抗体フラグメントをコードするDNA、ならびにこれらのDNAを発現するベクターに関する。もっと初期の米国特許仮出願番号60/090,142号および同60/104,156号には、現在本発明に含まれているものの一部が開示されており、それらの内容は引用することにより本明細書の一部とされる。
癌の治療および診断のアプローチには、抗体または抗体フラグメントを罹患組織に向けることが含まれ、この抗体または抗体フラグメントは罹患部位に診断剤または治療剤をターゲッティングすることができる。検討されてきたこの方法の1つのアプローチとして、標的罹患組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、標的低分子量ハプテンに特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有するbsAbの使用が含まれる。この方法では、bsAbを投与して標的に局在化させ、正常な組織からクリアリングする。しばらくしてから、bsAbの第二の特異性によって認識され、元の標的にも局在する、放射性標識された低分子量のハプテンが得られる。
(A)該患者に、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントを投与すること;
(B)所望により、該患者にクリアリング組成物を投与し、該組成物により、局在していない抗体または抗体フラグメントを循環からクリアリングすること;
(C)該患者に、二重特異性抗体または抗体フラグメントの少なくとも1つの他のアームによって認識可能な少なくとも1つのエピトープを含むか、これを担持するキャリア部分と、1以上の結合した治療剤もしくは診断剤または酵素とを含んでなる第一のターゲッティング可能な構築物を投与すること;および
(D)ターゲッティング可能な構築物が酵素を含んでなる場合において、
1)該酵素が標的部位においてプロドラッグを薬物に変換することができる場合には、プロドラッグ;
2)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、該患者中で解毒されて毒性の低い中間体を形成することができる薬物、
3)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、天然の過程によって該患者中で活性化され、毒性の低い中間体に変換されることによって解毒を受けるプロドラッグ、あるいは、
4)該酵素が標的部位において該プロドラッグを薬物に変換することができる場合には、該二重特異性抗体または抗体フラグメントの少なくとも1つの他のアームによって認識され得る少なくとも1つのエピトープを含むか、またはこれを担持するキャリア部分と、プロドラッグとを含む、第二のターゲッティング可能な構築物
を該患者にさらに投与することを含んでなる。
(A)標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメント;
(B)二重特異性抗体または抗体フラグメントの少なくとも1つの他のアームによって認識され得る少なくとも1つのエピトープを含むか、またはこれを担持するキャリア部分と、1以上の結合した治療剤もしくは診断剤または酵素とを含んでなる第一のターゲッティング可能な構築物;
(C)所望により、局在していない抗体および抗体フラグメントのクリアリングに有用なクリアリング組成物;および
(D)所望により、第一のターゲッティング可能な構築物が酵素を含む場合において、
1)該酵素が標的部位においてプロドラッグを薬物に変換することができる場合には、プロドラッグ;
2)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、該患者中で解毒されて毒性の低い中間体を形成することができる薬物、
3)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、天然の過程によって該患者中で活性化され、毒性の低い中間体に変換されることによって解毒を受けるプロドラッグ、あるいは、
4)該酵素が標的部位において該プロドラッグを薬物に変換することができる場合には、該二重特異性抗体または抗体フラグメントの少なくとも1つの他のアームによって認識され得る少なくとも1つのエピトープを含むか、またはこれを担持するキャリア部分と、プロドラッグとを含む、第二のターゲッティング可能な構築物
を含んでなる。
(A)宿主細胞に上記の組換えDNA構築物を導入する工程;ならびに
(B)細胞を増殖させ、抗体または抗体フラグメントを単離する工程
を含んでなる。
(1)(A)二重特異性融合タンパク質のフラグメントを宿主中で産生し得る発現カセットを含んでなる組換えDNA構築物であって、5’から3’の転写方向で、宿主細胞中で機能的な転写開始調節領域、宿主細胞中で機能的な翻訳開始調節領域、軽鎖抗体フラグメントに連結したscFvをコードするDNA配列、ならびに宿主細胞中で機能的な転写および翻訳終結調節領域を含み、二重特異性融合タンパク質のフラグメントが調節領域の調節下にある組換えDNA構築物を宿主細胞に導入すること;
(B)(A)における軽鎖抗体フラグメントに相補的で、軽鎖抗体フラグメントに会合する場合、結合部位が標的組織に特異的なFabフラグメントを形成するFdフラグメントを宿主細胞中で産生し得る発現カセットを含んでなる組換えDNA構築物であって、5’から3’の転写方向で、宿主細胞中で機能的な転写開始調節領域、宿主細胞中で機能的な翻訳開始調節領域、FdフラグメントをコードするDNA配列、ならびに宿主細胞中で機能的な転写および翻訳終結調節領域を含んでなり、Fdフラグメントが調節領域の調節下にある組換えDNA構築物を宿主細胞に同時導入すること;
(C)細胞を増殖させ、二重特異性融合タンパク質を単離すること;あるいは
(2)(A)二重特異性融合タンパク質のフラグメントを第一の宿主中で産生し得る発現カセットを含んでなる組換えDNA構築物であって、5’から3’の転写方向で、第一の宿主細胞中で機能的な転写開始調節領域、第一の宿主細胞中で機能的な翻訳開始調節領域、軽鎖抗体フラグメントに連結したscFvをコードするDNA配列、ならびに第一の宿主細胞中で機能的な転写および翻訳終結調節領域を含んでなり、二重特異性融合タンパク質のフラグメントが調節領域の調節下にある組換えDNA構築物を第一の宿主細胞に導入すること;
(B)(2)(A)における軽鎖抗体フラグメントに相補的で、軽鎖抗体フラグメントに会合する場合、結合部位が標的組織に特異的なFabフラグメントを形成するFdフラグメントを第二の宿主細胞中に産生し得る発現カセットを含んでなる組換えDNA構築物であって、5’から3’の転写方向で、第二の宿主細胞中で機能的な転写開始調節領域、第二の宿主細胞中で機能的な翻訳開始調節領域、FdフラグメントをコードするDNA配列、ならびに第二の宿主細胞中で機能的な転写および翻訳終結調節領域を含んでなり、Fdフラグメントが調節領域の調節下にある組換えDNA構築物を第二の宿主細胞に導入すること;
(C)第一の宿主細胞および第二の宿主細胞を増殖させること;
(D)所望により、二重特異性融合タンパク質フラグメントおよびFdフラグメントを単離すること;
(E)それらのフラグメントを組み合わせて二重特異性融合タンパク質を産生し、その二重特異性融合タンパク質を単離すること
を含んでなる。
(A)該被験体に、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、少なくとも二種のHSGハプテンを含むターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントを投与すること;
(B)所望により、該被験体にクリアリング組成物を投与し、該組成物により、局在していない抗体または抗体フラグメントを循環からクリアリングすること;
(C)該被験体に、少なくとも二種のHSGハプテンと少なくとも1つのキレート剤とを含んでなるキャリア部分を含んでなり、また、少なくとも1種の診断用および/または治療用陽イオン、および/または1以上のキレート化された、または化学的に結合された治療剤もしくは診断剤または酵素を含んでもよいターゲッティング可能な構築物を投与すること;および
(D)ターゲッティング可能な構築物が酵素を含んでなる場合において、
1)該酵素が標的部位においてプロドラッグを薬物に変換することができる場合には、プロドラッグ;
2)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、該被験体中で解毒されて毒性の低い中間体を形成することができる薬物;あるいは、
3)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、天然の過程によって該被験体中で活性化され、毒性の低い中間体に変換されることによって解毒を受けるプロドラッグ
を該被験体にさらに投与することを含んでなる。
標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを含んでなる二重特異性抗体または抗体フラグメントの有効量を投与すること(該少なくとも1つのアームは標的細胞、組織または病原体上、あるいはそれにらにより産生されるか、またはそれらと関連する分子上の相補的結合部分に結合することができる);ならびに、
を含んでなる。
該被験体に、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントを投与すること;
所望により、該被験体にクリアリング組成物を投与し、該組成物により、局在していない抗体または抗体フラグメントを循環からクリアリングすること;ならびに、
該被験体に、
を含んでなる。
(A)標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメント(前記構築物は、
(B)二重特異性抗体または抗体フラグメントの少なくとも1つの他のアームによって認識され得る少なくとも1つのエピトープを含むか、またはこれを担持するキャリア部分と、1以上の結合した治療剤もしくは診断剤または酵素を含んでなるターゲッティング可能な構築物;
(C)所望により、局在していない抗体および抗体フラグメントのクリアリングに有用なクリアリング組成物;ならびに
(D)所望により、該第一のターゲッティング可能な構築物が酵素を含む場合において、
1)該酵素が標的部位においてプロドラッグを薬物に変換することができる場合には、プロドラッグ;
2)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、該被験体中で解毒されて毒性の低い中間体を形成することができる薬物、あるいは、
3)該酵素が解毒型中間体を有毒型に再変換し、その結果、標的部位において該薬物の毒性を高め得る場合には、天然の過程によって該被験体中で活性化され、毒性の低い中間体に変換されることによって解毒を受けるプロドラッグ
を含んでなる。
該ターゲッティング可能な構築物を、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントと接触させて混合物を得ること(該少なくとも1つのアームは、標的細胞、組織もしくは病原体上、またはそれらによって産生される、もしくはそれらに関連する分子上の相補的結合部分に結合し得る);ならびに
所望により、該混合物をインキュベートすること;ならびに
該混合物を分析すること
を含んでなる。
標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントの有効量を投与すること(該少なくとも1つのアームは、標的細胞、組織上、またはそれらによって産生される、もしくはそれらに関連する分子上の相補的結合部分に結合し得る);ならびに
を含んでなる。
標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントの有効量を投与すること(該少なくとも1つのアームは、標的細胞、組織もしくは病原体上、またはそれらによって産生される、もしくはそれらに関連する分子上の相補的結合部分に結合し得る);ならびに
を含んでなる。
標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントの有効量を投与すること(該少なくとも1つのアームは標的細胞、組織もしくは病原体上、またはそれらによって産生される、もしくはそれらに関連する分子上の相補的結合部分に結合し得る);ならびに
を含んでなる。
標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗体フラグメントの有効量を投与すること(該少なくとも1つのアームは標的細胞、組織もしくは病原体上、またはそれらによって産生される、もしくはそれらに関連する分子上の相補的結合部分に結合し得る);ならびに
を含んでなる。
本発明は、標的組織に対して反応性のある少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な複合体に対して反応性のある少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体(bsAb)または抗体フラグメント(bsFab)を提供する。望ましくは、ターゲッティング可能な複合体は、少なくとも2単位の認識可能なハプテンを有するペプチドを含む。認識可能なハプテンの例としては、限定されるものではないが、ヒスタミンスクシニルグリシン(HSG)およびフルオレセインイソチオシアネートが挙げられる。ターゲッティング可能な構築物は罹患組織の処置または同定に有用な種々の薬剤と結合させることができる。結合される薬剤の例としては、限定されるものではないが、キレート剤、金属キレート複合体、薬物、毒素(例えば、リシン、アブリン、リボヌクレアーゼ(例えば、RNアーゼ)、DNアーゼI、ブドウ球菌エンテロトキシン−A、アメリカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、ゲロニン、ジフテリア毒、シュードモナス外毒素、シュードモナス内毒素)およびその他のエフェクター分子が挙げられる。さらに、プロドラッグの活性化または薬物の標的特異的毒性の増強に有用な酵素を、ターゲッティング可能な構築物に結合させることができる。従って、ターゲッティング可能な構築物に対して反応性のあるbsAbの使用により、適用ごとに新しいbsAbを惹起することなく種々の治療および診断適用を行うことができる。二重特異性抗体(bsAb)プレターゲッティングは診断および治療適用の潜在的に免疫原性のない、選択性の高い代替法である。本明細書に記載のbsAbプレターゲッティング系は、種々の異なるイメージングまたは治療剤とともに用いるために開発できる可能性があるという点で、他のプレターゲッティング系に優る、さらなる著しい利点がある。この系の柔軟性は、ヒスタミン−スクシニル−グリシン(HSG)に対する抗体の使用とHSG残基を含むペプチドの開発に基づくものである。HSG含有ペプチドは111In、90Y、または177Luのキレート化のためのDOTA、あるいはテクネチウム/レニウムキレートを用いて合成したものである。プレターゲッティングでは、これらの抗原を発現する腫瘍に腫瘍ターゲッティング能を与えるために、これらのペプチドは、抗癌胎児抗原(CEA)または抗結腸特異的抗原−p(CSAp)抗体のいずれかのFab’で化学的に安定化させた抗HSG Fab’を用い、二重特異性抗体との組み合わせにおいて使用された。しかしながら、他の抗原標的としては、CD19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD30、CD74、CD80、HLA−DR、la、MUC1、MUC2、MUC3、MUC4、EGFR、HER2/neu、PAM−4、BrE3、TAG−72(B72.3,CC49)、EGP−1(例えばRS7)、EGP−2(例えば17−1Aおよびその他のEp−CAM標的)、Le(y)(例えばB3)、A3、KS−1、S100、IL−2、T101、壊死抗原、葉酸受容体、脈管形成因子(例えばVEGF)、テネイシン、PSMA、PSA、腫瘍関連サイトカイン、MAGE、および/またはそのフラグメントなどに対する当技術分野で公知の多様な腫瘍関連抗原が挙げられる。組織特異的抗体(例えば、CD34、CD74などのような骨髄細胞に対するもの、パラチドグロブリン抗体など)、ならびに血餅のフィブリン、アテローム性動脈硬化症プラークのマクロファージ抗原(例えばCD74抗体)などの非悪性罹患組織に対する抗体、また、特定の病原体の抗体(例えば、細菌、ウイルスおよび寄生虫に対するもの)が当技術分野で周知である。
dis)、肺炎双球菌(Pneumococcus)、B型インフルエンザ菌(Hemophilis influenzae B)、梅毒トレポネーマ(Treponema pallidum)、ライム病スピロヘータ、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)、らい菌(Mycobacterium leprae)、ウシ流産菌(Brucella abortus)、結核菌(Mycobacterium tuberculosis)および破傷風毒素)、マイコプラズマ(例えば、マイコプラズマ・アルスリティディス(Mycoplasma arthritidis)、M.ヒオリニス(M. hyorhinis)、M.オーラル(M. orale)、M.アルギニニ(M. arginini)、アコレプラスマ・ライドラウィー(Acholeplasma laidlawii)、M.サリバルム(M. salivarum)、および肺炎マイコプラズマ(M. pneumoniae)、ならびに原生動物(例えば、熱帯熱マラリア原虫(Plasmodium falciparum)、三日熱マラリア原虫(Plasmodium vivax)、トキソプラズマ(Toxoplasma gondii)、ランゲリ・トリパノソーマ(Trypanosoma rangeli)、クルーズ・トリパノソーマ(Trypanosoma cruzi)、ローデシア・トリパノソーマ(Trypanosoma rhodesiensei)、ブルセイ・トリパノソーマ(Trypanosoma brucei)、マンソン住血吸虫(Schistosoma mansoni)、日本住血吸虫(Schistosoma japanicum)、ウシバベシア(Babesia bovis)、エルメリア・テネラ(Elmeria tenella)、回旋糸状虫(Onchocerca volvulus)、熱帯リーシュマニア(Leishmania tropica)、旋毛虫(Trichinella spiralis)、回旋糸状虫(Onchocerca volvulus)、タイレリア・パルバ(Theileria parva)、胞状条虫(Taenia hydatigena)、テニア・オビス(Taenia ovis)、カギナシサナダ(Taenia saginata)、単胞条虫(Echinococcus granulosus)およびメソセストイデス・コルチ(Mesocestoides corti)が挙げられる。米国特許第5,332,567号明細書を参照されたい。
ターゲッティング可能な構築物は多様な構造であり得るが、免疫応答の惹起をなくすためだけでなく、bsAbターゲッティング方法の範囲内で使用する場合はin vivoで迅速にクリアリングされるように選択される。強い免疫応答の惹起には疎水性の薬剤が最良であるのに対し、迅速なin vivoクリアリングのためには親水性の薬剤が好ましく、従って、疎水性と親水性の間のバランスを確立する必要がある。これは、多くの有機部分の固有の疎水性を相殺する親水性キレート剤の使用に一部依存することにより達成される。また、溶液の反対の性質を有するターゲッティング可能な構築物のサブユニット(例えば、ペプチド)を選択することができ、あるものは疎水性であり、またあるものは親水性であるアミノ酸を含む。ペプチド以外に、炭水化物を使用することができる。
ターゲッティング可能な構築物における親水性のキレート部分の存在は、迅速なin vivoクリアランスを保証する助けとなる。キレート剤は親水性の他、それらの金属結合特性に関して選択され、少なくとも、そのbsAbエピトープがペプチドの一部であるか、または非キレート化学ハプテンであるターゲッティング可能な構築物に関しては金属−キレート複合体の認識がもはや問題ではないので、所望に応じて変更してもよい。
キレート剤−ペプチド複合体は、固体として長期保存することができる。これらを、金属結合反応のための単位用量に定量し、固体、液体、または半液体溶液、凍結溶液または凍結乾燥調製物のいずれかとして単位用量で保存できる。これらは周知の手順によって標識することができる。
以下に示される考察の多くは罹患組織を処置する場合の本発明の二重特異性抗およびターゲッティング可能な構築物の使用に関して着目するものであることに注意すべきである。しかしがら、、本発明は、米国特許第6,126,916号明細書、同第6,077,499号明細書、同第6,010,680号明細書、同第5,776,095号明細書、同第5,776,094号明細書、同第5,776,093号明細書、同第5,772,981号明細書、同第5,753,206号明細書、同第5,746,996号明細書、同第5,697,902号明細書、同第5,328,679号明細書、同第5,128,119号明細書、同第5,101,827号明細書、および同第4,735,210号明細書(これらは引用することにより本明細書の一部とされる)に記載の方法を用いて、正常な組織および臓器の処置および/またはイメージングに本発明の二重特異性抗体およびターゲッティング可能な構築物を用いることも意図する。本明細書において「組織」とは、限定されるものではないが、卵巣、胸腺、副甲状腺、骨髄または脾臓由来の組織をはじめとする組織をさす。正常組織をターゲッティングする場合に重要な使用としては、子宮内膜症など、異所性である(すなわち、正規の位置からはずれている)組織を同定および処置することである。
ペプチド主鎖および/またはハプテンに対するAbをAb産生に関する周知の方法によって作製する。例えば、正常な免疫能を有する動物に完全フロイントアジュバント中の免疫原、例えば、(ペプチド)n−KLH(ここで、KLHはキーホールリンペットヘモシアニンであり、かつn=1〜30)を注入し、続いて、不完全フロイントアジュバント中に懸濁した同じ免疫原を2回注入し、抗原のi.v.追加免疫の3日後に脾臓細胞を回収した。次いで、回収した脾臓細胞を、Sp2/0−Ag14骨髄腫細胞と融合し、得られたクローンの培養物上清を、直接結合ELISAにより抗ペプチド反応性について解析する。産生したAbの詳細な特異性は、最初の免疫原のペプチド断片を用いて解析することができる。これらの断片は、自動ペプチド合成装置によって容易に作製することができる。Ab産生では、酵素欠損ハイブリドーマを単離して融合細胞株を選択することができる。この技術を使用してリンカー(例えば、In(III)−DTPAキレート)を含む1以上のキレートに対する抗体を惹起することもできる。In(III)−ジ−DTPAに対するマウスモノクローナル抗体が公知である(Barbet'395、前記)。
本発明は、米国特許第6,096,289号明細書に記載されているような、上記のターゲッティング可能な構築物と結合するbsAbおよび治療薬または診断薬の術中、血管内、内視鏡的腫瘍および病巣検出、生検ならびに治療における使用を包含する。
L−チロシンの代わりにD−チロシンを使用し、DTPAの代わりにN−トリチル−HSG−OHを使用することを除き、Karacay et. al. Bioconjugate Chem. 11: 842-854 (2000)により記載されているようにペプチドを合成した。N−トリチル−HSG−OHの最終カップリングは、樹脂上のペプチドに対して10倍過剰のN−トリチル−HSG−OHを使用して行った。N−トリチル−HSG−OH(NMP中0.28M)を、1当量(HSGに対して)のN−ヒドロキシベンゾトリアゾール、1当量のベンゾトリアゾール−1−イル−オキシ−トリス−(ジメチルアミノ)ホスホニウムヘキサフルオロホスフェ−ト(BOP)および2当量のジイソプロピルエチルアミンを使用して活性化した。活性化した基質を樹脂と室温にて15時間混合した。
窒素パージを行った脱気水170mLに溶かした22.093gヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン、0.45g2,4−ジヒドロキシ安息香酸、0.257g酢酸ナトリウム塩、および10.889g α−D−グルコヘプタン酸ナトリウム塩を含有する調合緩衝液を調製した。数滴の1 M NaOHを添加してこの溶液をpH 5.3に調整した後、全量220mLにさらに希釈した。スズ緩衝溶液は、0.2mLのSnCl2(200mg/mL)を3.8mLの調合緩衝液で希釈することにより調製した。ペプチド Ac−Lys(HSG)−D−Tyr−Lys(HSG)−Lys(Tscg−Cys)−NH2(配列番号4)(0.0026g)を78mLの緩衝溶液に溶かし、0.52mLのスズ緩衝液と混合した。次いで、このペプチド溶液を0.22μm Millex GV フィルターで濾過し、1.5mLアリコートを3mL凍結乾燥バイアルに入れた。充填したバイアルはすぐに冷凍し、凍結乾燥させ、真空下にてクリンプシールを装着した。
DOTA−Phe−Lys(HSG)−Tyr−Lys(HSG)−NH2(配列番号2)(IMP 237)を合成し、二重特異性抗体腫瘍プレターゲッティングによって90Yまたは177Luなどの治療用放射性同位元素を腫瘍へと送達させた。二重特異性抗体は、腫瘍の抗原と結合する1つの部分とHSGペプチドと結合するもう1つの部分からなる。HSGペプチドと結合する抗体は679である。この系はまた、111In−111などの画像診断用同位元素を送達させるにも利用し得る。
標準Fmoc固相ペプチド合成を用い、Sieberアミド樹脂(Nova-Biochem)でIMP 237を合成し、次の保護したアミノ酸:Fmoc−Lys(Aloc)−OH、Fmoc−Tyr(But)−OH、Fmoc−Lys(Aloc)−OH、Fmoc−Phe−OH、(Advanced Chemtechの試薬)トリ−t−ブチルDOTA(Macrocyclics)を順に添加してペプチド主鎖を構築した。次いで、サイドのリジン側鎖をDangles et. al. J. Org. Chem. 52: 4984-4993 (1987)の方法によりPd[P(Ph)3]4で脱保護した。その後、アミノ酸の連結に利用するBOP/HBTU二重カップリング手順を用い、HSGリガンドをトリチルHSGとして添加した(以下で記述する合成)。ペプチドを樹脂から切断し、TFA処理により保護基を除去した。HPLCによりペプチドを精製し、1.823gのFmoc−Lys(Aloc)−Tyr(But)−Lys(Aloc)−NH−Sieberアミド樹脂から0.6079gのペプチドを得た。
グリシンt−ブチルエステル塩酸塩(15.263g,9.1×10−2mol)と19.760g Na2CO3とを混合した後、50mLのH2Oに懸濁し、氷浴で冷却した。次いで、無水コハク酸(9.142g,9.14×10−2mol)を、室温までゆっくりと温めた反応溶液に添加し、この溶液を18時間攪拌した。クエン酸(39.911g)を50mLのH2O に溶かし、ゆっくりと反応溶液に添加し、その後、2×150mL EtOAcで抽出した。この有機抽出物をNa2SO4で乾燥させ、濾過し、濃縮し、25.709gの白色の固体を得た。
90 Yキットの調製
DOTA−Phe−Lys(HSG)−Tyr−Lys(HSG)−NH2(配列番号2)を0.25M NH4OAc/10%HPCD緩衝液に9、18、35、70および140μg/mLの濃度にて溶かした。この溶液を0.22μm Millex GV フィルターで滅菌濾過し、1mLアリコートを酸洗浄済の凍結乾燥バイアルに入れた。充填したバイアルは充填したらすぐに冷凍し、凍結乾燥させた。凍結乾燥サイクルが完了したら、凍結乾燥装置から取り出したらすぐにバイアルを真空密閉し、クリンプシールを装着した。
111In(〜300μCi/キット)を脱イオン水中0.5mLに希釈し、凍結乾燥キットに添加した。このキットを沸騰水浴中で15分間加熱し、バイアルを冷却し、0.5M酢酸緩衝液中2.56×10−5M In 0.5mLを添加し、このキットを再び沸騰水浴中で15分間加熱した。標識ペプチドのバイアルを室温まで冷却し、逆相HPLC(HPLC条件:Waters Nova−Pak C−18、8×100mm RCMカラム、3mL/分にて、100%(H2O中0.1%TFA)〜100%(90%CH3CN,0.1%TFA,10%H2O)の直線勾配を用いて溶出)により評価した。HPLC分析により、この処方での標識(4.7%遊離した111In)に必要なペプチドの最小濃度が35μg/mLであることが分かった。逆相HPLCトレースにより、111In標識ペプチドのシャープなピークが示された。サイズ排除HPLCによれば、標識ペプチドは、過剰な679 IgGと混合すると完全に結合した。
GW−39ヒト結腸腫瘍異種移植片(colonic xenograft tumor)(100〜500mg)を有するヌードマウスに二重特異性抗体hMN−14×m679(1.5×10−10mol)を注入した。111In標識ペプチド(8.8μCi,1.5×10−11mol)を注入する前に、24時間にわたって抗体を除去した。注入後3、24、48時間の時点で動物を犠牲にした。
ペプチド、IMP 237およびIMP 241を、Karacay et. al. Bioconjugate Chem. 11: 842-854 (2000)により記載されている手順にしたがって標識した。ペプチド、IMP 241(0.0019g)を0.5M NH4Cl(pH5.5,587μl)に溶かした。1.7μLアリコートのペプチド溶液を0.5M NH4Cl(pH5.5,165μl)で希釈した。10μLの111In(1.8mCi)をペプチド溶液に添加し、混合物を沸騰水浴中で30分間加熱した。
アリコート(30μL)の111In IMP 241を300μLの新鮮なマウス血清に入れ、37℃のインキュベーター内に置いた。ペプチドはHPLCにより上記のようにモニタリングした。
IMP 241ペプチド中のD−チロシンは、IMP 237と比べてマウス血清中でのペプチドの分解が遅い。
111In IMP 237と111In IMP 241とのin vivo安定性を、30分および60分の時点でマウス由来の尿サンプルを(HPLCにより)試験して比較した。ペプチド、IMP 241およびIMP 237を上記のように111In−111標識した。
ペプチド主鎖でのTyrのD−Tyrとの置換によりin-vivoにおけるペプチドの代謝を最小化した。
GW−39ヒト結腸腫瘍異種移植片(100〜500mg)を有するヌードマウスに二重特異性抗体mMu−9×m679(1.5×10−10mol)を注入した。111In標識ペプチド(8.8μCi,1.5×10−11mol)を注入する前に48時間、抗体を除去してもかまわない。注入後3、24、48時間の時点で動物を犠牲にした。
ペプチド、Ac−Phe−Lys(Ac)−Tyr−Lys(Ac)−OH(配列番号2)を、固相合成用樹脂を使用し、最初の残基(リジン)を、示差的に保護した誘導体、α−Fmoc−Lys(Aloc)−OHとして樹脂に付着させて構築する。α−Fmoc保護基を選択的に除去し、Fmoc−Tyr(OBut)、α−Fmoc−Lys(Aloc)−OH、およびFmoc−Phe−OHを、カップリングとα−アミノ基脱保護の交互サイクルで添加する。次いで、Aloc−およびOBut−側鎖保護基を、TFAと反応させて除去し、遊離α−およびε−アミノ基を無水酢酸との反応によりキャップし、Ac−Phe−Lys(Ac)−Tyr−Lys(Ac)−OH(配列番号2)を得る。
水に溶かし、1N HClで4.0にpHを調整した、ペプチド、Ac−Phe−Lys(Ac)−Tyr−Lys(Ac)−OH(配列番号2)を、1モル等量の1−エチル−3(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミドで処理し、4℃にて1時間反応させる。pH 8.5にて緩衝化したキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)を100倍モル過剰の活性化ペプチドで処理し、共役反応を4℃にて1時間進行させる。ペプチド−KLH複合体をサイズ排除クロマトグラフィーにより未反応のペプチドから精製し、抗体産生に使用する。
正常な免疫能を有するマウスに、完全フロイントアジュバント中のペプチド抗原混合物を注入する。不完全フロイントアジュバントと混合したペプチドの2回の追加抗原注射を、次の数週間の間に投与する。脾臓細胞を動物から採取し、Sp2/0−Ag14骨髄腫細胞と融合させる。得られたクローンの培養上清を、ELISAにより、元来のペプチド免疫原でコーティングしたプレートを使用して、抗ペプチド反応性について分析する。融合細胞系を選択できるよう酵素欠損ハイブリドーマを単離し、選択したクローンを培養培地で増殖させ、抗ペプチドAbを産生させる。
抗ペプチドAbは、IgG画分を単離するためにプロテインAカラムを、次いで、所望の生成物を清浄するためにイオン交換カラムを使用して、クロマトグラフィーにより精製される。目的のAbは、目的のペプチドを活性化ビーズまたは樹脂に化学的にカップリングさせることにより調製した、固相支持体に結合した該ペプチドからなるアフィニティーカラムの使用により最終的に精製される。
抗ペプチドAbを、200μg/μLのペプシンとともにpH 4にて1時間インキュベートし、未消化のIgGを除去するためにプロテインAのタンデムカラムを、次いで、低分子量混入物質を除去するためにG−50−Sephadexにより精製する。
抗ペプチド−F(ab’)2を、10mM EDTAを含有する新しく調製した0.1M PBS中システイン溶液との反応によりFab’フラグメントに還元する。反応の進行は、HPLCにより追跡し、約1時間で完了すると、Fab’−SHをスピンカラムクロマトグラフィーにより精製し、10mM EDTAを含有するpH<5の脱酸素緩衝液に入れて貯蔵する。
抗CEA Ab IgGを、暗所において、10mM過ヨウ素酸ナトリウムとの4℃にて90分間の反応により酸化する。酸化Abをスピンカラムクロマトグラフィーにより精製し、過剰の架橋剤4−(4−マレイミドフェニル)酪酸ヒドラジド(MPBH)と混合する。反応を2時間進行させ、IgG−ヒドラゾン−マレイミドをスピンカラムクロマトグラフィーにより精製する。ヒドラゾン結合を、10mMシアノ水素化ホウ素ナトリウムとの反応により還元し、再精製する。
実施例10)のIgG−ヒドラジド−マレイミドを、実施例6で調製した等モル量の抗ペプチドFab’−SHにより、pH 6.0、室温にて30分間で処理する。残りの遊離チオール基はヨードアセトアミドとの30分間の反応によりブロックする。二重特異性Ab抗CEA−IgG×抗ペプチド−Fab’を、未反応のFab’を除去するためにサイズ排除クロマトグラフィーにより、次いで、IgG×Fab’を未反応のIgGから分離するために固相に結合したペプチドを使用するアフィニティークロマトグラフィーにより精製する。
ペプチド、Ac−Phe−Lys(Bz−DTPA)−Tyr−Lys(Bz−DTPA)−NH2(配列番号2)を、固相合成用樹脂を使用し、最初の残基(リジン)を、示差的に保護した誘導体、α−Fmoc−Lys(Aloc)−OHとして該樹脂に付着させて構築する。α−Fmoc保護基を選択的に除去し、Fmoc−Tyr(OBut)、α−Fmoc−Lys(Aloc)−OH、およびFmoc−Phe−OHを、カップリングとα−アミノ基脱保護の交互サイクルで添加する。Aloc側鎖をパラジウム(0)触媒との反応により除去する。別法として、TFAとの反応により除去され得るBoc保護基を使用してもよく、遊離アミノ基を過剰のITC−Bz−DTPAと反応させる。過剰のBz−DTPAを除去した後、α−アミノ基を無水酢酸との反応によりキャップし、TFAを用いて樹脂から全ペプチドを取り外し(チロシル残基の脱保護を伴う)、Ac−Phe−Lys(Bz−DTPA)−Tyr−Lys(Bz−DTPA)−NH2を得る。
100倍モル過剰の標題のペプチドを、pH 5.5の酢酸緩衝液中のイットリウム−90放射性核種と混合する。放射性標識は30分後に完了し、定量的である。
pH 8.0の0.2Mリン酸緩衝液中カルボキシルエステラーゼ(5mg)を、5倍モル過剰の架橋剤スルホ−スクシンイミジル−[4−マレイミドメチル]−シクロヘキサン−1−カルボキシレート(スルホ−SMCC)で処理する。2時間室温にて撹拌した後、G−25 Sephadexのスピンカラムを使用して活性化酵素を低分子量混入物質から分離し、1mM EDTAを含有するpH7の0.1Mリン酸緩衝液中で平衡化させる。テトラペプチド、N−アセチル−Cys−Lys(DTPA)−Tyr−Lys(DTPA)−NH2(配列番号11)(10倍モル過剰)を活性化酵素に添加し、スピンカラムに使用したのと同じ緩衝液に溶かす。室温にて1時間撹拌した後、Cys−Lys(DTPA)−Tyr−Lys(DTPA)−NH2(配列番号11)ペプチドカルボキシルエステラーゼ複合体を、pH 6.0の0.25M酢酸緩衝液によるG−25 Sephadexでのスピンカラムクロマトグラフィーにより未反応のペプチドから精製する。結合の成功は複合体のアリコートのインジウム−111での標識およびサイズ排除HPLCによる分析により立証される。
CEAを発現している腫瘍を有する患者に、抗CEA−IgG×抗ペプチド−Fab’二重特異性Abを施与する。7日後、患者に(実施例13の)Y−90−ジ−Bz−DTPA−ペプチドを施与する。Y−90標識ペプチドは、非標的組織から迅速にクリアリングされるが、抗CEA−IgG×抗ペプチド−Fab’二重特異性Abでプレターゲッティングした部位に集中して局在し、腫瘍を破壊する。
WI2と称される、MN−14に対する抗イディオタイプAbを、実施例8で概略を示したように、ペプシンを使用してF(ab’)2フラグメントに消化する。F(ab’)2を、実施例9で概略を示したように、低分子量チオールを使用してFab’フラグメントに還元する。還元終了時に、Fab’−SHをスピンカラムクロマトグラフィーにより精製し、過剰のヨードアセトアミドと反応させ、ヒンジ領域のチオール基をブロックし、再結合を防止する。過剰のヨードアセトアミドからの再精製後、Fab’を400倍モル過剰のガラクトシル化剤、シアノメチル−2,3,4,6−テトラ−O−アセチル−1−チオ−β−D−ガラクトピラノシドのチオ−イミデート(Karacay et al.を参照)と反応させる。ガラクトシル化タンパク質を2つのスピンカラムにより精製し、ガラクトース:Fab’比をMALDI−MSにより決定する。
CEAを発現している腫瘍を有する患者に、抗CEA−IgG(MN−14)×抗ペプチド−Fab’二重特異性Abを施与する。3日後、患者にクリアリング用量のガラクトース−WI2−Fab’を施与する。クリアリング用量のガラクトース−WI2−Fab’施与から24時間後、患者にY−90−ジ−Bz−DTPA−ペプチドを施与する。Y−90標識ペプチドは、非標的組織から迅速にクリアリングされるが、抗CEA−IgG×抗ペプチド−Fab’二重特異性Abでプレターゲッティングした部位に集中して局在し、腫瘍を破壊する。
最初のアミノ酸、Aloc−Lys(Fmoc)−OHを、ペプチド合成装置の0.21mmolのリンクアミド樹脂に付着させ、次いで、標準Fmoc自動合成プロトコールを使用してリジンの側鎖にTc−99mリガンド結合残基、Fmoc−Cys(Trt)−OHおよびTscGの付加を行い、次のペプチド、Aloc−Lys(TscG−Cys(Trt)−リンク樹脂を形成した。次いで、Aloc基を、10mLのCH2Cl2、0.75mLの氷酢酸および2.5mlのジイソプロピルエチルアミンに溶かした、100mgのPd[P(Ph)3]4を含有する溶液8mLで樹脂を処理することにより除去した。次いで、樹脂混合物を0.8mlの水素化トリブチルスズで処置し、60分間ボルテックス混合した。次いで、ペプチド合成を合成装置で続け、次のペプチド、Lys(Aloc)−Tyr−Lys(Aloc)−Lys(Tscg−Cys−)−リンク樹脂(配列番号7)を作製した。10mLのDMF、3mLの無水酢酸および6mLのジイソプロピルエチルアミンを含有する溶液8mLを添加して樹脂を60分間ボルテックス混合することによりN末端をアセチル化した。次いで、側鎖Aloc保護基を上記のように除去し、標準Fmoc脱保護プロトコールを使用して樹脂をピペリジンで処理し、樹脂に残った全ての酢酸を除去した。
DTPA5gを、メタノール中1.0M水酸化テトラブチルアンモニウム40mLに溶かした。メタノールを高真空下で除去し、粘性のオイルを得た。オイルを50mL DMFに溶かし、揮発性溶媒をロータリーエバポレーターにより高真空下にて除去した。DMF処理をあと2回繰返した。次いで、粘性あるオイルを50ml DMFに溶かし、5g HBTUと混合した。次いで、8mlアリコートの活性化DTPA溶液を樹脂に加え、これを14時間ボルテックス混合した。DTPA処理は、樹脂が、カイザー試験によってアミンについて試験陰性と判定されるまで繰返した。別法として、DTPA テトラ−t−ブチルエステルをDICおよびHBTUなどの通常のカップリング剤とともに使用してもよい(Arano Y, Uezono T, Akizawa H, Ono M, Wakisaka K, Nakayama M, Sakahara H, Konishi J, Yokoyama A., "Reassessment of diethylenetriaminepentaacetic acid (DTPA) as a chelating agent for indium-111 labeling of polypeptides using a newly synthesized monoreactive DTPA derivative," J Med Chem. 1996 Aug 30; 39 (18): 3451-60を参照)。
次いで、ペプチドを、30ml TFA、1mlトリイソプロピルシラン、および1mlエタンジチオールから作製した溶液8mlでの60分間の処理により樹脂から切断した。未精製の切断ペプチドを30mlのエーテルに注ぐことにより沈殿させ、遠心分離により回収した。次いで、4×30cm Waters 分取C−18 Delta−Pakカラム(15μm、100Å)を使用する逆相HPLCによりペプチドを精製した。HPLC画分を回収し、凍結乾燥させ、ESMSにより所望の生成物を含む画分(MH±1590)を得た。
ペプチドを、78μgのペプチド、0.92mgの非放射性InCl3、100μgの塩化第一スズ、3mgのゲンチジン酸、およびHPCD(再構成時に10%)を含む凍結乾燥キットに配合した。
IMP 192キットは、25mCi Na99mTcO4を含有する1.5mL生理食塩水でバイアルの内容物を再構成することにより標識した。キットを室温にて10分間インキュベートした後、沸騰水浴中で15分間加熱した。次いで、標識ペプチドの溶液を室温まで冷却した。アリコートを安定性試験用に取り出した。アリコートを生理食塩水、pH 7.5の0.05Mリン酸塩中1mMシステイン、および新鮮なヒト血清で1:10希釈した。最初のキット溶液、生理食塩水希釈物およびシステイン攻撃液は室温でインキュベートし、一方、血清サンプルは37℃でインキュベートした。サンプルはHPLCおよびITLCによりモニタリングした。標識ペプチドはin vitroでの試験で安定していた。血清中の標識ペプチドの保持時間は6.3分から7.3分に変化した。この変化はいくつかの血清成分のペプチドとのイオン対形成に起因し得る。
このbsAbは、実施例8と同様に、hMN−14Fab’SH(ヒト化モノクローナル抗CEA抗体)および734Fab’mal(ネズミ抗ジDTPA)フラグメントを架橋することにより調製した。hMN−14および734のFab’SHフラグメントは、10mM EDTAの存在下、10mM 2−メルカプトエチルアミンを用いて、pH 7.3、37℃にて60分間、F(ab’)2フラグメントを還元することにより調製した。スピンカラム(Penefsky)精製(Sephadex G−50−80、50mM NaOAc、0.5mM EDTA、pH 5.3)後にFab’SHを回収した。4mM N,N’−o−フェニレンジマレイミドを使用して、室温にて60分間、734Fab’SHフラグメントにマレイミド基(群)を導入した。スピンカラム精製を使用して、Fab’malを単離した。734Fab’malおよびhMN−14Fab’SHの架橋を、1:1のモル比において、4℃にて16時間進行させた。この間に形成され得るジスルフィド結合を破壊するために、反応混合物を10mM 2−メルカプトエチルアミンでpH 5.3、23℃にて1時間処理した。SH基をpH 6.4にてN−エチルマレイミドを用いてブロックした。反応混合物をスピンカラムに通し、過剰の小分子量化合物を除去した。次いで、サイズ排除HPLC分析用カラム、Bio−Sil SEC−250で精製した後にbsAbを単離した。精製したbsAbのHPLC保持時間は10.23分であった。
bsAbをクロラミンTを使用して放射性ヨウ化物にした(Greenwood and Hunter)。放射性ヨウ化bsAbの、CEA、WI2(ラット抗MN−14イディオタイプ抗体)および放射性標識ペプチジルDTPAキレートとの結合を、サイズ排除HPLC分析により調べた。10〜20倍モル過剰のCEAで処理した場合、約90%の放射性ヨウ化bsAbがCEAと結合した。bsAbは放射性標識インジウム−DTPAキレートと複合体を形成した(IMP−156またはIMP−192):
IMP 156:Ac−Phe−Lys(DTPA)−Tyr−Lys(DTPA)−NH2(配列番号2)。
放射性ヨウ化bsAbを、加湿5%CO2雰囲気下、37℃にて、新鮮なヒト血清中での安定性について試験した。アリコートをSE−HPLCにより調べた。血清タンパク質と結合した放射性ヨウ素を検出するために、アリコートをWI2と混合し、bsAbピークをより早期の保持時間に変化させた。bsAbは、血清中で48時間インキュベートした後に、WI2に対する結合能の3〜5%の減少を示した。bsAbを血清中で72時間インキュベートした場合には、わずかな凝集物の形成(4〜7%)が観察された。
このペプチジルキレートのTc−99m複合体のin vitroにおける安定性は、生理食塩水、新鮮なヒト血清および10mMシステイン中での最大20時間のインキュベーションにより確立した。in vivoにおける安定性は、プレターゲッティング試験において99m−Tc−IMP−192を注入したマウスから採取した尿を分析して調べた。尿中に排出された活性は、SE−HPLCにより示されるように活性が依然として抗体と結合するから、無傷ペプチドであるのように思われる。正常なBALB/cマウスでの99m−Tc−IMP−192の生体分布試験では、迅速な血液クリアランスが示された、表7。in vitroおよびin vivoでの試験により、99m−Tc−IMP−192の安定性が明示される。
組換え法を使用して、ヒト化モノクローナル抗CEA抗体由来のFabフラグメントおよびネズミ抗ジDTPA由来のscFvを含む一価の二重特異性融合タンパク質を作製した。図3参照。単鎖734(734scFv)の構造はGGGS(配列番号10)−VL−(GGGGS) 3 (配列番号9)−VHとして設計され、近位のGGGS(配列番号10)は、scFvがhMN−14の重鎖の定常領域に連結するためのフレキシブル結合を提供する(図1)。また、scFvはhMN−14の軽鎖の定常領域に連結することができる。hMN−14重鎖Fdの734scFvへのインフレーム連結に必要である好適なリンカー配列を、特異的プライマーセットを使用するPCR反応により734のVLおよびVKドメインに導入した。
bscAbフラグメントを、挿入部位にフランキングする5’カゼインプロモーター配列および3’非翻訳ゲノム配列を有する発現ベクターにクローニングする。次いで、当技術分野では標準的な手順を使用して、発現カセットを受精したマウス卵子の前核に注入する。次いで、卵子を受容体である雌の子宮に移植し、懐胎させる。出産後、その子孫をサザン解析により導入したDNAの存在についてスクリーニングする。当技術分野では公知の標準的な免疫学的方法を使用し、トランスジェニック雌由来の乳汁をbscAbの存在および機能性について解析する。bscAbは固定化抗原との相補的結合、カラムクロマトグラフィーまたは当技術分野では公知の他の方法により乳汁から精製することができる。
bscAbフラグメントを、ソラマメ(Vicia faba)由来の短縮レグミンB4プロモーターと54塩基対のLeB4非翻訳RNAリーダーを有し、LeB4シグナルペプチドをコードしている発現ベクターにクローニングし、タンパク質を小胞体に指向させる。Zambryski et al.により記載された方法に従い、アグロバクテリウム(Agrobacterium)媒介性遺伝子導入を使用して、発現カセットをタバコリーフディスクに形質転換する。形質転換はサザン解析により確認する。当技術分野では公知の標準的な免疫学的方法を使用し、トランスジェニック植物をbscAbの存在および機能性について解析する。bscAbは当技術分野では公知の標準方法を使用して植物組織から精製することができる。
GW39腫瘍異種移植片を有する雌ヌードマウス(Taconic NCRNU、3〜4週齢)をプレターゲッティング試験に使用した。腫瘍は0.3〜0.8gであった。
結腸癌を有する69歳の男性が治癒を目的とする切除を受け、1年後にCEAの血清レベルが50ng/mLであることが分かっている。その患者はCTスキャンを受け、1cm〜3cmまでの5つの腫瘍病変が肝臓の左葉に存在している。その患者に100mgのhMN14−Fab/734−scFv融合タンパク質を施与する。3日後、患者にクリアリング用量のガラクトース−WI2−Fab’を施与する。クリアリング用量のガラクトース−WI2−Fab’の24時間後、血中の融合タンパク質はクリアリング剤の注入直前のタンパク質の濃度の20倍減少する。次いで、患者に50mCiのY−90を含有するIMP 245 Y−90−ジ−Bz−DTPA−ペプチドを注入する。3ヵ月後のCTスキャンの実施にて、3つの病変が消失し、残る2つのものは大きくなっていないことがはっきりと示されている。このときのCEAの血清レベルは10ng/mLに減少している。その後の6ヶ月間、CEAの血清レベルの増加は見られず、CTスキャンにて2つの腫瘍病変が成長していないことが明示されている。CEAの増加が観察される場合には1回目の治療の1年後にその治療を繰り返し行い、2回目の治療の3ヵ月および6ヵ月後に2つの腫瘍病変の大きさの縮小が認められている。6ヵ月後の血清CEAレベルは5ng/mL未満である。
ウサギ肝臓カルボキシルエステラーゼ(SIGMA;タンパク質含量−17mg)2バイアルを、2.2mlの0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液、pH 7.7で再構成し、25倍モル過剰のCA−DTPAと、新しく調製した、DMSO中の後者の原液(−25mg/ml)を使用して混合する。複合体混合物中のDMSOの最終濃度は3%(v/v)である。1時間インキュベートした後、混合物を2つの5mLスピンカラム(0.1Mリン酸ナトリウムpH 7.3中Sephadex G50/80)で予備精製し、過剰の試薬およびDMSOを除去する。溶出液を0.2Mリン酸ナトリウム、pH 6.8を使用し、4ml/分にてTSK 3000G Supelcoカラムで精製する。複合体を含む画分をCentricon−10(商標)濃縮器で濃縮し、緩衝液を0.1M酢酸ナトリウム、pH 6.5と交換する。回収:0.9ml、4.11mg/ml(3.7mg)。標準条件を使用した分析用HPLCによる分析およびインラインでのUV検出の結果、保持時間9.3分の大きなピークと10.8分の小さなピークが95対5の比にて判明した。酵素解析では非修飾のカルボキシルエステラーゼに匹敵する115酵素単位/タンパク質mgが示された。非修飾のCEおよびDTPA修飾したCE両方の質量分析(MALDIモード)では1.5に近い平均DTPA置換比が示される。放射性インジウムでスパイクした既知の過剰のインジウムを使用した金属結合アッセイにより、二重試験にて、DTPA:酵素の比率が1.24および1.41であることが確認された。カルボキシルエステラーゼ−DTPAを酢酸In−111で、12.0mCi/mgの比活性にて標識した後、過剰の非放射性酢酸インジウムで処理し、最後に、10mM EDTAで処理し、過剰の非放射性インジウムを除去する。HPLCおよびITLC分析による取込みは97.7%である。HPLCサンプルは20倍モル過剰の二重特異性抗体hMN−14Fab’×734Fab’と完全に複合体を形成し、得られた生成物はさらに二重特異性抗体に対して80倍モル過剰のWI2(hMN−14に対する抗ID)と複合体を形成する。
0.0596gの量のフェニルヒドラジン含有ペプチド、IMP 221(H2N−NH−C6H4−CO−Lys(DTPA)−Tyr−Lys(DTPA)−NH2 MH+ 1322、Fmoc SPPSにより作製)を3mLのDMF中0.0245gの塩酸ドキソルビシンと混合した。この反応溶液を暗所において室温にて反応させた。4時間後、さらに0.0263gのIMP 221を添加し、反応を一晩続けた。次いで、全ての反応混合物を、Waters Nova−Pak(3−40×100mmセグメント、6μm、60Å)プレップカラムで、80:20〜60:40 緩衝液A:B(緩衝液A=0.3%NH4OAc、緩衝液B=90%CH3CN中0.3%NH4OAc)の勾配を用いて40分かけて溶出するHPLCにより精製した。生成物を含む画分を合わせ、凍結乾燥させ、0.0453gの所望の生成物を得た。これはESMSによりMH+ 1847と確認された。
実施例31のペプチドをIn−111標識用のキットに調合した。5.014g 2−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリンおよび0.598gクエン酸を含有する85mLの溶液を調製した。1 M NaOHを添加してこの溶液をpH 4.20に調整し、水で100mLに希釈した。0.0010g量のペプチド、IMP 224を100mLの緩衝液に溶かし、1mLアリコートを0.22μm Millex GV フィルターで滅菌濾過し、2mL凍結乾燥バイアルに入れた。これらはすぐに冷凍し、凍結乾燥させた。
In−111を0.5mLの水に溶かし、凍結乾燥キットに注入した。キット溶液を室温にて10分間インキュベートした後、0.5M NaOAcおよび2.56×10−5M冷インジウムを含有するpH7.2の緩衝液0.5mLを添加した。
IMP 224キットを、記載されているように2.52mCiのIn−111で標識した。アリコート(0.15mL、370μCi)を回収し、0.9mL 0.5Mクエン酸緩衝液、pH4.0、0.9mL 0.5Mクエン酸緩衝液、pH 5.0、および0.9mL 0.5Mリン酸緩衝液、pH 7.5と混合した。標識ペプチドの安定性は、逆相HPLCにより追跡した。HPLC条件:Waters Radial−Pak C−18 Nova−Pak 8×100mm、流速3mL/分、勾配:10分かけて100%A=0.3%NH4OAc〜100%B=90%CH3CN、0.3%NH4OAc。
キットを0.5mL水中400μCi In−111で再構成した。In−111キット溶液を室温にて10分間インキュベートした後、冷インジウムを含有するpH 7.2の0.5M酢酸緩衝液1.5mLで希釈した。標識ペプチドを、飽和NaCl中、ITLCにより分析した。遊離したIn−111はITLCストリップの上部20%の位置に存在した。
キットを0.5mL水中4mCi In−111で再構成した。In−111キットを室温にて10分間インキュベートした後、冷インジウムを含有するpH 7.2の0.5M酢酸緩衝液0.5mLで希釈した。標識ペプチドを、飽和NaCl中、ITLCにより分析した。遊離したIn−111はITLCストリップの上部20%の位置に存在した。
10μgのペプチドを含有するIMP 224の凍結乾燥キットを使用した。キットを2mLバイアルに入れて凍結乾燥させ、1mL滅菌水で再構成した。0.5mLアリコートを取り出し、1.0mCi In−111と混合した。In−111キット溶液を室温にて10分間インキュベートした後、0.1mLを取り出し、滅菌バイアルにて冷インジウムを含有する酢酸緩衝液BM8−12、1.9mLで希釈した。標識ペプチドを、飽和NaCl中、ITLCにより分析した。遊離したIn−111はITLCストリップの上部20%の位置に存在した。
IMP192の合成で記述したように、通常の二重カップリング手順によりペプチドを合成した。5当量の保護したDOTAを使用する16時間のベンゾトリアゾール−1−イル−オキシ−トリス−(ジメチルアミノ)ホスホニウムヘキサフルオロホスフェ−ト(BOP)のシングルカップリングにより、トリ−t−ブチルDOTAをペプチドのC末端に付加した。次いで、無水酢酸を使用して樹脂をキャップした。パラジウム触媒を使用して側鎖にあるAloc基を除去し、IMP 243の合成で記述したように、N−トリチル−HSG基を付加した。生成物を樹脂から切断し、HPLCにより精製し、凍結乾燥後に4つの画分から0.2385gの生成物を得た。ESMS MH+ 1832。
窒素パージを行った脱気水170mLに溶かした22.093gヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン、0.45g 2,4−ジヒドロキシ安息香酸、0.257g酢酸ナトリウム塩、および10.889g α−D−グルコヘプタン酸ナトリウム塩を含有する調合緩衝液を調製した。数滴の1 M NaOHを添加してこの溶液をpH 5.3に調整した後、全量220mLにさらに希釈した。スズ緩衝溶液は、0.2mLのSnCl2(200mg/mL)を3.8mLの調合緩衝液で希釈することにより調製した。ペプチド、IMP 245(0.0029g)を0.1M HCl中1.6×10−3M InCl3 1mLに溶かした。ペプチド溶液を0.5M NH4OAc2mLと混合し、室温にて15分間インキュベートさせた。次いで、調合緩衝液75mLおよびスズ緩衝液0.52mLをペプチド溶液に添加した。次いで、このペプチド溶液を0.22μm Millex GV フィルターで濾過し、1.5mLアリコートを3mL凍結乾燥バイアルに入れた。充填したバイアルはすぐに冷凍し、凍結乾燥させ、真空下にてクリンプシールを装着した。
高温(沸騰水浴):
生理食塩水1.5mL中、過テクネチウム酸塩溶液(29mCi)をキットに添加した。キットを室温にて10分間インキュベートし、沸騰水浴中で15分間加熱した。キットは室温まで冷却した後に使用した。
生理食塩水1.5mL中、過テクネチウム酸塩溶液(25mCi)をキットに添加した。キットを室温にて14分間インキュベートし、37℃の水浴中で18分間加熱した。キットは室温まで冷却した後に使用した。この標識でのHPLC保持時間は別のインジェクターを使用したためにわずかに異なる。
ペプチドを逆相HPLCおよびサイズ排除HPLCにより分析した(以下に示す)。サイズ排除HPLCトレースにより、ペプチドが2つのmMu−9×m679および2つのhMN−14×m679二重特異性抗体と結合することが示された(全開示内容が引用することにより本明細書の一部とされる"A Universal Pre-Targeting System for Cancer Detection and Therapy Using Bi-specific Antibodies," Sharkey, R. M., McBride, W. J., Karacay, H., Chang, K., Griffiths, G. L., Hansen, H. J., and Goldenberg, D. M.を参照)。逆相HPLC分析では、大きなピークの前にいくつかの小さなピークが示され、加熱による小さなピークと大きなピークとの比率の大きな変化はないように思われた。
Tc−99m IMP 245単独 54%、
Tc−99m IMP 245+hMN−14×m679 66%、
Tc−99m IMP 245+mMu−9×m679 66%。
アリコートのTc−99m IMP 245、50μLを470μLの新鮮なマウス血清で希釈し、37℃にてインキュベートした。2.5時間および19時間の時点でアリコートを取り出し、逆相HPLCにより分析した。ペプチドは比較的安定しているように思われた。
レニウムオキソ錯体を、0.0504gのIMP 245を0.0045gのReOBr4N(bu)4(Cotton et. al.の方法により合成)および1mL DMF中50μL DIEAと室温にて5日間混合することにより作製した。全ての反応混合物をHPLCにより精製し、0.0118gの所望の生成物を得た。
ESMS MH+ 2031。
ペプチド、IMP 245(0.0029g、1.58×10−6mol)を0.0020gのInCl3を含有するpH 5.5の0.5M NH4OAc緩衝液2.0mLに溶かした。ペプチド溶液を50℃にて17分間加熱した。調合緩衝液を22.093gヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン(HPCD)、0.450g 2,4−ジヒドロキシ安息香酸(ゲンチシン酸)、0.257g酢酸ナトリウム塩、10.889g α−D−グルコヘプタン酸から調製し、窒素パージを行ったDI水170mLに溶かした。数滴の1 M NaOHを添加してこの溶液をpH 5.30に調整し、DI水で最終量220mLに希釈した。その後、調合緩衝液を0.22μmフィルターで滅菌濾過した。スズ緩衝液は、アルゴンパージを行った滅菌バイアルで、0.2mL(6M HCl中200mg/mL SnCl2)を3.8mLの調合緩衝液で希釈することにより調製した。次いで、ペプチド溶液を76mLの調合緩衝液および0.56mLのスズ緩衝液と混合した。次いで、この溶液の1.5mLアリコートをMillex GV 0.22mmフィルターに通し、3mL凍結乾燥バイアルに入れた。充填したバイアルはすぐにドライアイスで冷凍し、凍結乾燥させた。凍結乾燥サイクルが完了したらキットを真空密閉した。各キットは55μgのペプチドを含み、1.5mL量の生理食塩水中99mTcO4 −での再構成に向けて調合した。
アスコルビン酸を配合するTc−99m キットを、ゲンチシン酸の代わりに0.222gのL−アスコルビン酸を使用することを除き、ゲンチシン酸キットと同様に調製した。
キットを生理食塩水中99mTcO4 1.5mL(0.5〜70mCi)で再構成し、室温にて10分間インキュベートした。次いで、キットを沸騰水浴中で15分間加熱し、室温まで冷却した後に使用した。
初期標識計画では、DOTAに冷インジウムを注入し、キットから高収量のTc−99m/In IMP 245を得ることが好ましいことが明示されている。1.5mL中30mCi Tc−99mにて標識する場合、ゲンチシン酸処方では、ペプチドのよりクリーンな最初の標識が生ずるが、アスコルビン酸処方では、ペプチドを室温にて一晩保存した場合にはるかに高い安定性を有するキットを提供した。新鮮なマウス血清中、37℃にての初期安定性試験の結果、Tc−99m標識ペプチドがキット中と同じくらい血清中でも安定していることが示された。範囲を拡大した勾配でのHPLC分析によって、標識ペプチドが2つのピークを有することが分かった。これらの2つのピークは、synおよびanti型Tcオキソ種の形成によるものと考えられる。ピークの比率はペプチド配列、処方および標識条件に応じて変化し得る。
ペプチドを0.5M NH4OAc、pH3.08に、2.2×10−3M(ペプチド)にて溶かした。次いで、アリコート、3.5μLのペプチド溶液を165μLの0.5M NH4OAc、pH3.93および6μLのY−90溶液と混合した。その後、この混合物を85〜95℃にて20分間加熱した。逆相HPLCにより、ペプチドが十分に標識されていることがわかった。
ペプチド、0.0025g ReO IMP 245(MH+ 2031)を0.5M NH4OAc、pH 3.98緩衝液560μL(2.2×10−3Mペプチド)に溶かした。アリコート、2.7μLのReO IMP 245を2μLのIn−111(573μCi)および150μLの0.5M NH4OAc、pH 3.98緩衝液と混合した。その後、この溶液を沸騰水浴中で20分間加熱した。HPLC分析により、Tc−99m/In IMP 245と同程度の保持時間でのクリーンな、標識されたピークが示された。
bsMAbsの調製:
ヒト化MN−14抗CEAまたはネズミMu−9抗CSApおよびネズミ679のFab’フラグメントからなる二重特異性F(ab’)2抗体を、架橋剤としてPDMを使用して調製した。各親抗体のF(ab’)2をまず調製した。hMN−14またはMu−9では、F(ab’)2を1mM DTTを用いてFab’−SHに還元し、これを0.5mM EDTA(酢酸塩/EDTA緩衝液)を含有するpH 5.3の酢酸緩衝液でダイアフィルトレーションを行ってDTTを除去し、5〜10mg/mLに濃縮し、必要になるまで2〜8℃にて保存した。679では、F(ab’)2を1mM DTTを用いてFab’−SHに還元し、次いで、これを5容量の酢酸塩/EDTA緩衝液で希釈し、続いて、20mM PDM(90%DMF中調製物)を最終濃度4mMまで迅速に添加した。室温にて30分間攪拌した後、得られた溶液(679 Fab’−PDMを含有)を遊離PDMが最小となるまで酢酸塩/EDTA緩衝液でダイアフィルトレーションを行い、5〜10mg/mLに濃縮した。次いで、hMN−14 Fab’−SHまたはMu−9 Fab’−SHの溶液を679 Fab'−PDMの溶液と、Fab’量に基づき1:1比にて混合した。システインを最終濃度2mMまで添加し、共役反応物をクエンチし、Superdex 200充填カラム(Amersham, Pharmacie Bio, Piscataway, NJ)での精製後に所望の二重特異性複合体(〜100kDa)を得た。これらの二重特異性複合体をSE−HPLC、SDS−PAGE、およびIEFにより解析した。hMN−14×m679 F(ab’)2については、二重特異性がBIAcoreならびにSE−HPLCによって立証された。さらに、HSGに対するhMN−14×679の親和性は、製造業者推奨の方法により1つのHSG置換基とチオールを含有するペプチドを添加して誘導したCM−5チップを使用したBIAcore解析により決定した(Biacore, Inc., Piscataway, NJ 08854)。
90Y−、l77Lu−および111In−放射性標識に使用する二価HSG−ペプチド、IMP 241は、これらの放射性金属の結合を容易にするDOTAリガンドを含む。IMP 241を0.5M酢酸アンモニウム(pH 4.0)に、2.2×10−3Mの濃度まで溶かした。90YCl3 をPerkin Elmer Life Sciences, Inc.(Boston, MA)より、111InCl3をIsoTex Diagnostics(Friendswood, TX)より、および177LuをResearch Reactor Facility, University of Missouri-Columbia,(Columbia, MO)より入手した。
GW−39、CEA産生ヒト結腸癌細胞系(Goldenberg, D. M. and Hansen, H. J, Carcinoembryonic antigen present in human colonic neoplasms serially propagated in hamsters, Science, 175: 1117-18 (1972)を参照)をヌードマウスにおいて、1〜2gの腫瘍を滅菌生理食塩水ですりつぶし、すりつぶした混合物を50メッシュワイヤースクリーンに通し、生理食塩水量を腫瘍1g当たり10ml生理食塩水の最終割当量に調整することにより、連続増殖させた。およそ6週齢の雌NCrヌードマウス(Charles River Laboratories, Inc., Fredrick MDまたはTaconic, Germantown, NY)にこの懸濁液0.2mLを皮下移植した。腫瘍移植の2〜3週後、動物に放射性標識ペプチドを単独で注入するか、あるいは、プレターゲッティングするためにbsMAbを、続いて、1〜2日後に放射性標識ペプチドを注入した。プレターゲッティングするために、1.5×10−10モル(l5μg;6μCi125I)のbsMAbを静脈注射し(0.1〜0.2mL)、続いて、111In−IMP−241(1.5×10−11モル、8〜10μCi)、177Lu−IMP−241(1.5×10−11モル、5μCi)、または99mTc−IMP−243(1.5×10−11、25〜30μCi)の静脈注射(0.1〜0.2 mL)を行った。ペプチド注入後の指定された時点で、動物に麻酔をかけ、心臓穿刺により採血し、その後、剖検に先だって安楽死させた。組織を取り出し、重量を計り、注入される物質から調製した標準とともに、各放射性核種に好適なウインドウを使用するγ線シンチレーションにより計数した。二重同位元素計測を使用する場合には、適切な後方散乱補正を作成した。消化組織(胃、小腸および大腸)の重量を計り、それらの内容物を計数した。データは、組織1g当たりの注射投与量の割合(%ID/g)および腫瘍の正常組織に対するパーセンテージ比(T/NT)として表している。表および図で示す全ての値は、そこに示される各試験に使用した動物数で計算した値の平均と標準偏差である。
IMP−241のDOTAキレート基は、111In、90Yおよび177Luなどの他の放射性金属とともに使用することができる。ペプチドを、各々約600、1650、および300Ci/mmolの比放射能を有するこれらの放射性核種で放射性標識した。177Luの比放射能の低さは、生成物を使用する時点でのその経過時間と177Luの比放射能を最適化するように実施されていない同位元素の製造工程の両方に起因した。99mTc−ペプチドの比放射能は1500〜1600Ci/mmolであった。どの場合にも、放射性標識条件は、精製が不要となるようペプチドでの放射活性の取り込みが確実に>98%であるように開発された。逆相HPLCでは、37℃にて新鮮なマウス血清と混合した場合に、全てのペプチドが24時間にわたり安定しており、それらの調製後にも最初の溶出プロフィールを保持していることがわかった。IMP−243および245の、範囲を拡大した勾配でのHPLC分析によって、標識ペプチドがsynおよびanti型テクネチウムオキソ種の形成によるものと考えられる2つのピークを有することが分かった。
生体分布を目的として、組織でのペプチドの検出を容易にするためにIMP−241をγ線を放射する放射性核種、111Inまたは177Luで放射性標識し、一方、IMP−243およびIMP−245は99mTcで放射性標識した。腫瘍を有するヌードマウスにおいて、177Lu−および111In−IMP−241は類似の分布およびクリアランス特性を示した(表20および21)。いずれの場合も、ペプチドは血液から迅速にクリアリングされるため、その注入後3時間以内に血液中には正確に定量するのに十分な放射活性が存在しなかったが、主要な器官では定量を可能とするのに十分な放射活性が存在した。放射活性は腎排泄によって体外に排出されるが、注入した活性のわずかなものがモニタリング期間にわたり腎臓内に残存していた。注入の0.5〜1.0時間後では、平均腎臓重量0.15gにて、注入した全活性の約0.6%が腎臓に存在するだけであった。177Lu−IMP−241を施与したさらなる動物群で48時間の時点にて剖検を行なったが、腎臓には正確に記録するだけの放射活性しかなかったため、そのデータは表には示していない。しかしながら、腎臓での177Lu−IMP−241は0.94±0.2%ID/gのレベルまで低下し、これは24時間の時点で見られるレベルと比べて約45%の低下であった。放射活性の大部分は尿中に排出されるが、消化管を通じてクリアリングされるごくわずかな放射活性もある。あらゆる消化組織(すなわち、胃、小腸および大腸)では、1.0〜3.0時間まで、注入した全活性の約0.6〜0.7%の割合を占め得る。24時間までには、あらゆる消化組織では、放射活性の0.07%の割合を占めるにすぎなかった。
hMN−14×m679 F(ab’)2 bsMAbを使用して99mTc−IMP−243および99mTc−IMP−245のプレターゲッティング能力を試験した。bsMAbを、99mTc−IMP−243またはIMP−245のいずれかによりその分布が同時に表示され得るように、125Iで放射性標識した。bsMAbをi. v.にて動物に施与し、24時間後、放射性標識ペプチドを施与し、3および24時間後に動物の剖検を行なった。プレターゲッティング設定では、99mTc−IMP−243の腫瘍での取込みは、その注入の3および24時間後にペプチド単独で見られるものよりもほぼ28倍および70倍多かった(表23)。腫瘍での取込みは3時間の時点で12.25±3.32%ID/gであり、24時間までに7.36±3.19まで低下した。この時点を過ぎての腫瘍での99mTc−IMP−243の減少は、この同時点を過ぎて4.78±1.11%ID/g〜2.24±0.53%ID/gまで下がった腫瘍でのbsMAbの減少ほど大きくはなかった。99mTc− IMP−243の腫瘍/非腫瘍比率は、ペプチドがまだクリアリングされず、これが24時間までにほぼ20倍高まった大腸の場合を除いて、3時間以内では全てが2.0:1より大きかった。腫瘍/血液の比率はペプチド注入の3時間後に2.4±0.6であった。99mTc−IMP−245の腫瘍での取込みは99mTc−IMP−243で見られるものと類似していた(表6)が、主として、bsMAbがこれらの動物において、99mTc−IMP−243を施与した動物においてよりも低いレベルまでクリアリングされるため、腫瘍/非腫瘍比率では99mTc−IMP−245が有利であった。しかしながら、99mTc−IMP−245プレターゲッティングでは1時間の時点でさえも胃腸での取り込みが低かったため、このペプチドは99mTc−IMP−243とは異なる利点を有していた。99mTc−IMP−245の腫瘍/腎臓比率は99mTc−IMP−243で得られるものよりも高かった。これらの生体分布データからは、99mTc−IMP−245によるプレターゲッティングにより直接放射性標識したFab’フラグメントで見られるものよりも早い時点で優れた画像コントラストが提供されるはずであることが示唆される。また、99mTc標識ペプチドを使用した場合の腫瘍/腎臓比率が、その注入の3時間後に99mTc−hMN−14 Fab’で直接放射性標識した抗体フラグメントよりも実質的に高いことも強調すべきであろう(表25)。
Claims (81)
- 下記式の化合物:
X−Phe−Lys(HSG)−D−Tyr−Lys(HSG)−Lys(Y)−NH2(この化合物は、XまたはYにおいて硬酸陽イオンキレート剤を含み、残りのXまたはYにおいて軟酸陽イオンキレート剤を含む)。 - 硬酸陽イオンキレート剤が、カルボン酸基またはアミン基を含むものである、請求項1に記載の化合物。
- 硬酸陽イオンキレート剤が、NOTA、DOTA、DTPA、およびTETAからなる群から選択されるものである、請求項1に記載の化合物。
- 軟酸陽イオンキレート剤がチオール基を含むものである、請求項1に記載の化合物。
- 軟酸陽イオンキレート剤が、Tscg−CysおよびTsca−Cysからなる群から選択されるものである、請求項1に記載の化合物。
- 硬酸陽イオンキレート剤および軟酸陽イオンキレート剤が、相互に異なる陽イオンで標識化されている、請求項1に記載の化合物。
- 少なくとも1種の放射性核種、治療剤または診断剤をさらに含んでなる、請求項1に記載の化合物。
- 放射性核種が、225Ac、111Ag、72As、77As、211At、198Au、199Au、212Bi、213Bi、75Br、76Br、11C、55Co、62Cu、64Cu、67Cu、166Dy、169Er、18F、52Fe、59Fe、67Ga、68Ga、154Gd、155Gd、156Gd、157Gd、158Gd、166Ho、120I、123I、124I、125I、131I、110In、111In、194Ir、177Lu、51Mn、52mMn、99Mo、13N、15O、32P、33P、211Pb、212Pb、109Pd、149Pm、142Pr、143Pr、223Ra、82mRb、186Re、188Re、189Re、105Rh、47Sc、153Sm、75Se、83Sr、89Sr、161Tb、94mTc、94Tc、99mTc、86Y、90Y、90Y、および89Zrからなる群から選択されるものであり、ターゲッティング可能な構築物が1を超える放射性核種を含む場合、それらの放射性核種が異なる放射性核種であり得る、請求項7に記載の化合物。
- DOTA−Phe−Lys(HSG)−D−Tyr−Lys(HSG)−Lys(Tscg−Cys)−NH2で表される、請求項1に記載の化合物。
- Tscg−Cys−Phe−Lys(HSG)−D−Tyr−Lys(HSG)−Lys(DOTA)−NH2で表される、請求項1に記載の化合物。
- 硬酸陽イオンキレート剤が、第IIa族および第IIIa族の金属陽イオンからなる群から選択される陽イオンを含むものである、請求項1に記載の化合物。
- 軟酸陽イオンキレート剤が、遷移金属、Bi、ランタニド類およびアクチニド類からなる群から選択される陽イオンを含むものである、請求項1に記載の化合物。
- 軟酸陽イオンキレート剤が、Tc、Re、およびBiからなる群から選択される陽イオンを含むものである、請求項1に記載の化合物。
- X−Phe−Lys(HSG)−D−Tyr−Lys(HSG)−Lys(Y)−NH−Rを含んでなるターゲッティング可能な構築物であって、
XまたはYにおいて硬酸陽イオンキレート剤を含み、残りのXまたはYにおいて軟酸陽イオンキレート剤を含み、かつ、Rにおいて治療剤、診断剤または酵素を含む、ターゲッティング可能な構築物。 - Rが共有結合によってターゲッティング可能な構築物に連結されている、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- Rがリンカー部分によってターゲッティング可能な構築物に連結されている、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- リンカー部分が少なくとも1つのアミノ酸を含むものである、請求項16に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 硬酸陽イオンキレート剤および軟酸陽イオンキレート剤が、相互に異なる陽イオンで標識化されている、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 硬酸キレート剤および軟酸キレート剤の少なくとも1つに結合した少なくとも1種の放射性核種をさらに含んでなる、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 放射性核種が、225Ac、111Ag、72As、77As、211At、198Au、199Au、212Bi、213Bi、75Br、76Br、11C、55Co、62Cu、64Cu、67Cu、166Dy、169Er、18F、52Fe、59Fe、67Ga、68Ga、154Gd、155Gd、156Gd、157Gd、158Gd、166Ho、120I、123I、124I、125I、131I、110In、111In、194Ir、177Lu、51Mn、52mMn、99Mo、13N、15O、32P、33P、211Pb、212Pb、109Pd、149Pm、142Pr、143Pr、223Ra、82mRb、186Re、188Re、189Re、105Rh、47Sc、153Sm、75Se、83Sr、89Sr、161Tb、94mTc、94Tc、99mTc、86Y、90Y、90Y、および89Zrからなる群から選択されるものであり、ターゲッティング可能な構築物が1を超える放射性核種を含む場合、それらの放射性核種は異なる放射性核種であり得る、請求項19に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記治療剤が、放射性核種、薬物、プロドラッグまたは毒素を含む、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記プロドラッグが、エピルビシングルクロニド、CPT−11、エトポシドグルクロニド、ダウノマイシングルクロニドおよびドキソルビシングルクロニドからなる群から選択されるものである、請求項21に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記毒素が、リシン、アブリン、リボヌクレアーゼ(RNアーゼ)、DNアーゼ I、ブドウ球菌エンテロトキシン−A、アメリカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、ゲロニン、ジフテリア毒、シュードモナス外毒素、およびシュードモナス内毒素からなる群から選択されるものである、請求項21に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記治療剤が、ドキソルビシン、SN−38、エトポシド、メトトレキサート、6−メルカプトプリンまたはリン酸エトポシドを含んでなるものである、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記診断剤が光線力学的療法のための1以上の薬剤を含む、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 光線力学的療法のための前記薬剤が光増感剤である、請求項25に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記光増感剤が、ベンゾポルフィリン一酸環A(BPD−MA)、錫エチオプルプリン(SnET2)、スルホン化アルミニウムフタロシアニド(AISPc)およびルテチウムテキサフィリン(Lutex)からなる群から選択されるものである、請求項26に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記診断剤が磁気共鳴画像法(MRI)用の1以上の画像増強剤を含んでなる、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記画像増強剤が、Mn、Fe、LaおよびGdを含む、請求項28に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記診断剤が、X線またはコンピューター断層撮影用の1以上の放射線不透過剤または造影剤を含んでなる、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記放射線不透過剤または造影剤が、バリウム、ジアトリゾエート、エチオド化オイル、クエン酸ガリウム、イオカルム酸、イオセタム酸、ヨーダミド、ヨージパミド、ヨードキサム酸、イオグラミド、イオヘキソール、イオパミドール、イオパン酸、イオプロセム酸、イオセファム酸、イオセル酸、イオスラミドメグルミン、イオセメ酸、イオタスル、イオテトル酸、イオサラム酸、イオトロキシ酸、イオキサグル酸、イオキソトリゾ酸、イポデート、メグルミン、メトリザミド、メトリゾエート、プロピリオドン、または塩化タリウムを含む、請求項30に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記診断剤が1以上の超音波造影剤を含んでなる、請求項14に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記超音波造影剤がリポソームまたはデキストランを含む、請求項32に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 前記リポソームがガス充填されている、請求項33に記載のターゲッティング可能な構築物。
- 被験体において罹患組織を処置または同定するのに有用なキットであって、
(A)請求項1に記載の化合物を含んでなるターゲッティング可能な構築物、
(B)標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、前記ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを有する二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメント(ここで、該ターゲッティング可能な構築物は、該二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメントの少なくとも1つの他のアームによって認識可能な少なくとも1つのエピトープを含む、またはこれを担持するキャリア部分と、結合した1以上の治療剤もしくは診断剤、または酵素とを含む)、ならびに
(C)所望により、局在していない抗体および抗体フラグメントのクリアリングに有用なクリアリング組成物
を含んでなる、キット。 - 前記診断剤が、110In、111In、177Lu、18F、52Fe、62Cu、64Cu、67Cu、67Ga、68Ga、86Y、90Y、89Zr、94mTc、94Tc、99mTc、120I、123I、124I、125I、131I、154−158Gd、32P、11C、13N、15O、186Re、188Re、51Mn、52mMn、55Co、72As、75Br、76Br、82mRbおよび83Srからなる群から選択されるものである、請求項35に記載のキット。
- 前記治療剤が、111In、177Lu、212Bi、213Bi、211At、62Cu、64Cu、67Cu、90Y、125I、131I、32P、33P、47Sc、111Ag、67Ga、142Pr、153Sm、161Tb、166Dy、166Ho、186Re、188Re、189Re、212Pb、223Ra、225Ac、59Fe、75Se、77As、89Sr、99Mo、105Rh、109Pd、143Pr、149Pm、169Er、194Ir、198Au、199Auおよび211Pbからなる群から選択されるものである、請求項35に記載のキット。
- 前記ターゲッティング可能な構築物が、少なくとも1種の診断用もしくは治療用陽イオン、および/または1以上の錯化した、もしくは化学的に結合した治療剤、診断剤もしくは酵素をさらに含んでなるものである、請求項35に記載のキット。
- 前記標的組織が腫瘍である、請求項35に記載のキット。
- 前記腫瘍が、結腸特異的抗原−p(CSAp)、癌胎児性抗原(CEA)、CD19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD30、CD74、CD80、HLA−DR、Ia、MUC1、MUC2、MUC3、MUC4、EGFR、HER2/neu、PAM−4、TAG−72、EGP−1、EGP−2、A3、KS−1、Le(y)、S100、PSMA、PSA、テネイシン、葉酸受容体、VEGFR、壊死抗原、IL−2、T101、MAGEからなる群から選択される抗原を産生する、または該抗原に関連するものである、請求項39に記載のキット。
- 標的組織に特異的に結合する少なくとも1つの前記アームが、ヒト、キメラもしくはヒト化抗体、またはヒト、キメラもしくはヒト化抗体の抗原結合フラグメントである、請求項35に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が、抗CEA抗体のFvおよび抗HSG抗体のFvを含んでなるものである、請求項35に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がキメラ化またはヒト化されている、請求項42に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がヒト抗CEA抗体およびヒト抗HSG抗体である、請求項42に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗CEA抗体のCDRを含んでなるものである、請求項42に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗HSG抗体のCDRを含んでなるものである、請求項42に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が融合タンパク質である、請求項42に記載のキット。
- 請求項1に記載の化合物を含んでなる、ターゲッティング可能な構築物。
- 哺乳類において正常な組織をイメージングするのに有用なキットであって、
二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメント、ならびに
請求項1に記載の化合物を含んでなるターゲッティング可能な構築物
を含んでなり、
前記二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメントが、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、前記ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを含んでなるものである、キット。 - 前記正常組織が、卵巣、胸腺、副甲状腺、子宮内膜、骨髄または脾臓に由来する組織である、請求項49に記載のキット。
- 前記ターゲッティング可能な構築物が、少なくとも1種の放射性核種、治療剤、診断剤または酵素をさらに含んでなるものである、請求項49に記載のキット。
- 被験体において罹患組織を手術中に同定するのに有用なキットであって、
二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメント、ならびに
請求項1に記載の化合物を含んでなるターゲッティング可能な構築物
を含んでなり、
前記二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメントが、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、前記ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを含んでなるものである、キット。 - 前記ターゲッティング可能な構築物が、少なくとも1種の診断用もしくは治療用陽イオン、および/または1以上の錯化した、もしくは化学的に結合した治療剤、診断剤もしくは酵素をさらに含んでなるものである、請求項52に記載のキット。
- 前記標的組織が腫瘍である、請求項52に記載のキット。
- 前記腫瘍が、結腸特異的抗原−p(CSAp)、癌胎児性抗原(CEA)、CD19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD30、CD74、CD80、HLA−DR、Ia、MUC1、MUC2、MUC3、MUC4、EGFR、HER2/neu、PAM−4、TAG−72、EGP−1、EGP−2、A3、KS−1、Le(y)、S100、PSMA、PSA、テネイシン、葉酸受容体、VEGFR、壊死抗原、IL−2、T101、MAGEからなる群から選択される抗原を産生する、または該抗原に関連するものである、請求項54に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が、抗CEA抗体のFvおよび抗HSG抗体のFvを含んでなるものである、請求項52に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がキメラ化またはヒト化されている、請求項56に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がヒト抗CEA抗体およびヒト抗HSG抗体である、請求項56に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗CEA抗体のCDRを含んでなるものである、請求項56に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗HSG抗体のCDRを含んでなるものである、請求項56に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が融合タンパク質である、請求項56に記載のキット。
- 被験体における罹患組織の内視鏡による同定に有用なキットであって、
二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメント、ならびに
請求項1に記載の化合物を含んでなるターゲッティング可能な構築物
を含んでなり、
前記二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメントが、標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、前記ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを含んでなるものである、キット。 - 前記ターゲッティング可能な構築物が、少なくとも1種の診断用もしくは治療用陽イオン、および/または1以上の錯化した、もしくは化学的に結合した治療剤、診断剤もしくは酵素をさらに含んでなるものである、請求項62に記載のキット。
- 前記標的組織が腫瘍である、請求項62に記載のキット。
- 前記腫瘍が、結腸特異的抗原−p(CSAp)、癌胎児性抗原(CEA)、CD19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD30、CD74、CD80、HLA−DR、Ia、MUC1、MUC2、MUC3、MUC4、EGFR、HER2/neu、PAM−4、TAG−72、EGP−1、EGP−2、A3、KS−1、Le(y)、S100、PSMA、PSA、テネイシン、葉酸受容体、VEGFR、壊死抗原、IL−2、T101、MAGEからなる群から選択される抗原を産生する、または該抗原に関連するものである、請求項64に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が、抗CEA抗体のFvおよび抗HSG抗体のFvを含んでなるものである、請求項62に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がキメラ化またはヒト化されている、請求項66に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がヒト抗CEA抗体およびヒト抗HSG抗体である、請求項66に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗CEA抗体のCDRを含んでなるものである、請求項66に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗HSG抗体のCDRを含んでなるものである、請求項66に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が融合タンパク質である、請求項66に記載のキット。
- 被験体における罹患組織を静脈内において同定するのに有用なキットであって、
標的組織に特異的に結合する少なくとも1つのアームと、ターゲッティング可能な構築物に特異的に結合する少なくとも1つの他のアームとを含んでなる二重特異性抗体または抗原結合抗体フラグメント、ならびに
請求項1に記載の化合物を含んでなるターゲッティング可能な構築物
を含んでなる、キット。 - 前記ターゲッティング可能な構築物が、少なくとも1種の診断用もしくは治療用陽イオン、および/または1以上の錯化した、もしくは化学的に結合した治療剤、診断剤もしくは酵素をさらに含んでなるものである、請求項72に記載のキット。
- 前記標的組織が腫瘍である、請求項72に記載のキット。
- 前記腫瘍が、結腸特異的抗原−p(CSAp)、癌胎児性抗原(CEA)、CD19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD30、CD74、CD80、HLA−DR、Ia、MUC1、MUC2、MUC3、MUC4、EGFR、HER2/neu、PAM−4、TAG−72、EGP−1、EGP−2、A3、KS−1、Le(y)、S100、PSMA、PSA、テネイシン、葉酸受容体、VEGFR、壊死抗原、IL−2、T101、MAGEからなる群から選択される抗原を産生する、または該抗原に関連するものである、請求項74に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が、抗CEA抗体のFvおよび抗HSG抗体のFvを含んでなるものである、請求項72に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がキメラ化またはヒト化されている、請求項76に記載のキット。
- 抗CEA抗体および/または抗HSG抗体がヒト抗CEA抗体およびヒト抗HSG抗体である、請求項76に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗CEA抗体のCDRを含んでなるものである、請求項76に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が抗HSG抗体のCDRを含んでなるものである、請求項76に記載のキット。
- 前記二重特異性抗体が融合タンパク質である、請求項76に記載のキット。
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