JP3805599B2 - Plant vitality agent - Google Patents

Description

【００１２】
ΔＣ：同化箱の入口と出口のＣＯ₂濃度差（ｐｐｍ）
Ａ：葉面積（ｃｍ²）
Ｖ：同化箱への通気流入量（Ｌ／ｈｒ）（ここで、通気には、二酸化炭素を０．０２〜０．０４％含有する空気を用いる）
ｔ：気温（℃）。
【００１３】
〔iii〕暗呼吸速度の算出
測定装置として、〔ii〕と同じ装置を用いる。該装置の個体用同化箱に、〔ii〕で用いたのと同じ種類の植物個体を〔ii〕と同様に試験区と対照区の二区に分けて入れ、温度２５℃、通気流入量２０Ｌ／ｍｉｎ、照度０ｋｌｘ．の条件にて９０分間順化後、赤外線ガス分析計にて同化箱の入口と出口の二酸化炭素濃度を測定する。その測定値を前記〔ii〕の式に代入して、試験区、対照区それぞれの暗呼吸速度（単位：ｍｇＣＯ₂／ｄｍ²／ｈ）を算出する。
【００１４】
〔iv〕光合成速度の向上度の算出
上記により得られた見かけの光合成速度（ＣＯ₂／ｄｍ²／ｈ）と暗呼吸速度（ＣＯ₂／ｄｍ²／ｈ）の合計が真の光合成速度（ＣＯ₂／ｄｍ²／ｈ）であり、上記で算出した数値から、試験区と対照区のそれぞれの真の光合成速度を得る。
【００１５】
このようにして得られた試験区の真の光合成速度（Ｐ₁）と対照区の真の光合成速度（Ｐ₀）とから、光合成速度の向上度（％）を、〔（Ｐ₁−Ｐ₀）／Ｐ₀〕×１００により算出する。
【００１６】
本発明では、光合成速度向上度が５％以上、好ましくは７％以上、より好ましくは９％以上、更に好ましくは１１％以上の物質を植物活力剤として用いることで、植物の成長を増強できる。また、ＳＰＡＤ値や葉面積も増大する。光合成速度は植物の代謝速度の指標ではあるが、一般にその向上度と本発明で見出したような植物成長増強効果の相関は知られていない。
【００１７】
本発明では、水溶液又は水分散液として植物体あたり、植物活力剤となる物質を、有効成分として０．０１〜５０００ｐｐｍ、更に０．１〜１０００ｐｐｍ、特に１〜５００ｐｐｍを投与した際に、上記光合成速度向上度が５％以上となる物質が好ましい。この場合、この濃度で投与開始後、５０日以内に光合成速度向上度が５％以上となる物質が更に好ましい。また、粒剤、粉剤等の固形剤として１０００ｍ²（１０ａ）あたり、活性成分として０．００１〜３０００ｋｇ、更に０．０１〜１０００ｋｇ、特に０．０５〜１００ｋｇの割合で投与した際に、５０日以内に光合成速度向上度が５％以上となる物質が好ましい。
【００１８】
本発明では、光合成速度向上度が５％以上であって、且つ下記（ａ）〜（ｅ）の少なくとも１つ、更に少なくとも２つ、より更に少なくとも３つ、特に５つ全てを満たす物質が好ましい。
（ａ）ＳＰＡＤ値向上度が２ポイント以上
（ｂ）植物体重量（生重量又は乾重量）増加量が１０％以上
（ｃ）植物体の葉面積向上度が５％以上
（ｄ）葉身部アスコルビン酸濃度増加量が５％以上
（ｅ）葉身部硝酸イオン濃度減少度が１０％以上。
【００１９】
ここで、（ａ）ＳＰＡＤ値向上度は、上記〔ｉ〕と同様に、同一条件で生育させた試験区及び対照区のＳＰＡＤ値を、それぞれミノルタ社製ＳＰＡＤ５０２にて測定し、その向上度を算出する。向上度は２ポイント以上が好ましく、３ポイント以上がより好ましく、４ポイント以上が更に好ましい。本発明において、ＳＰＡＤ値の測定には、「ミノルタ葉緑素計ＳＰＡＤ５０２」（ミノルタ社製）を用いる。これは、植物体（葉）のクロロフィル量を非破壊で測定する器具である。この測定器の間に生葉をはさみ光をあてる（キセノンランプによるストロボ発光）。透過光はクロロフィル最大波長である６７０ｎｍと、タンパク質などの高分子の非特異吸収帯である７５０ｎｍのフィルターを通過し、集積回路で両波長の吸光量の差を求めデジタル変換した後、数値が表現される。数値は０〜８０の数値（ＳＰＡＤ値）で表示される。ＳＰＡＤ値は、葉の単位面積当たりのクロロフィル含量と相関が高く、ＳＰＡＤ５０２測定値（Ｘ）とクロロフィル含量（Ｙ）（ｍｇ／１００ｃｍ²）の間には次の回帰式が成り立つ（植物栄養実験法、株式会社博友社、第２刷、平成３年４月２０日発行、Ｐ３６６−３６７）。
Ｙ＝０．０９９６Ｘ−０．１５２
つまり、ＳＰＡＤ値が高ければ植物体の葉の単位面積当たりのクロロフィル含量が多く、より植物体が生育していることを示す。
【００２０】
本発明におけるＳＰＡＤ値向上度は、
ＳＰＡＤ値向上度＝（試験区のＳＰＡＤ値）−（対照区のＳＰＡＤ値）
で算出される。
【００２１】
ＳＰＡＤ値の測定時期は、植物活力剤となる物質を処理した後で、植物の葉がＳＰＡＤ計にて測定しうる面積（約５ｍｍ×５ｍｍ以上）に達していれば問わない。また、ＳＰＡＤ値の測定部位は、植物活力剤となる物質を処理した植物と植物活力剤となる物質を処理していない植物の同じ葉位を最低２０回測定し、その平均値を用いる。
【００２２】
また、（ｂ）植物体重量は、上記〔ｉ〕と同様に、同一条件で生育させた試験区及び対照区の生重量又は乾重量から、その増加量を算出する。増加量は１０％以上が好ましく、１５％以上がより好ましく、２０％以上が更に好ましい。植物体重量の測定は次のように行われる。植物活力剤となる物質を処理した植物（試験区）と植物活力剤となる物質を処理していない植物（対照区）のそれぞれ植物体すべてを栽培装置（ポット等）から取り出し、根に付いた土壌や汚れ等を流水にて十分落とし、それぞれの重量を測定する（生重量）。また、それぞれの植物体を７０℃で５日間乾燥させその後の重量を測定する（乾重量）。植物体重量増加量は、それぞれ以下のように算出される。ここで、生重量と乾重量の何れで算出してもよいが、同化された物質の正味量を直接的に反映する意味で乾重量で算出するのが好ましい。
植物体重量（生重量）増加量（％）＝〔（試験区の生重量−対照区の生重量）／（対照区の生重量）〕×１００
植物体重量（乾重量）増加量（％）＝〔（試験区の乾重量−対照区の乾重量）／（対照区の乾重量）〕×１００
この植物体重量増加量は、物質生産及び重量の増加をあらわすものであり、植物体の生育の直接的な指標となる。
【００２３】
また、（ｃ）植物体の葉面積向上度は、上記〔ｉ〕と同様に、同一条件で生育させた試験区及び対照区の植物体全体の葉の面積から、その向上度を算出する。向上度は５％以上が好ましく、７％以上がより好ましく、９％以上が更に好ましい。本発明において、葉面積向上度は、自動面積計ＡＡＣ−４００型（林電工（株））を用いて測定される。この自動面積計は試料が走査光線をいくら遮ったかを光電素子で検出する装置であり、最小単位１ｍｍ²で最大表示数は９９９９９．９９ｃｍ²まで計数表示可能である。該装置の電源スイッチを入れ最低１５分間位ウォーミングアップを行い、テストプレート（既知面積：９９．８ｃｍ²）を挿入し、１％以内の誤差範囲に調整する。試験区又は対照区の植物体の葉身部を切断し、これを試料とし、フィルム入口中央部から挿入し出口まで送られると葉面積がｍｍ²単位で表示される。測定に用いる植物は、葉身部に丸み・ひずみが少ないものを用いると良い（例：トマト、キュウリ、ホウレンソウなど）。試験区と対照区のそれぞれの葉面積から、以下の式により葉面積向上度を算出する。
葉面積向上度（％）＝〔（試験区の葉面積−対照区の葉面積）／（対照区の葉面積〕×１００
葉面積が大きいということは、植物体が光エネルギーを受光し、光合成を行い、より多くの物質生産を行うことが可能となると考えられ、葉面積向上度が大きいことは、植物体の生育がより進んでいることの一つの指標となる。
【００２４】
また、（ｄ）葉身部アスコルビン酸濃度増加量は、上記〔ｉ〕と同様に、同一条件で生育させた試験区及び対照区の植物の葉身部のアスコルビン酸濃度からその増加量を算出する。葉身部のアスコルビン酸濃度の測定には、ＲＱフレックス（メルク製）が用いられる。アスコルビン酸は黄色のモリブドリン酸を還元し、青色のリンモリブデンブルーを生成する。前記の装置は、この試験紙呈色部分に光を当て、その反射光の強さからサンプル中のアスコルビン酸の濃度を測定する。具体的な測定方法は次の通りである。植物活力剤となる物質で処理した植物（試験区）と植物活力剤となる植物で処理していない植物（対照区）とから葉身部を切り取る。果菜の場合は同じ葉位部から、葉菜の場合は植物体全体を測定対象葉身部とする。サンプリング葉身部重量の２０倍重量の蒸留水を添加し、氷冷しながら乳鉢にて粉砕し、二重のガーゼで濾過し、濾液をＲＱフレックス（メルク製）にて葉身部アスコルビン酸濃度の測定を行う。アスコルビン酸の分解を抑制するために、得られた濾液は氷冷水にて測定時まで保存する。測定時の濾液温度を室温（１５℃〜２０℃）まで戻し、濾液が得られてから１時間以内に測定を行う。試験区及び対照区それぞれの葉身部アスコルビン酸濃度から以下の式により増加量（％）を算出する。
葉身部アスコルビン酸濃度増加量（％）＝〔（試験区の葉身部アスコルビン酸濃度−対照区の葉身部アスコルビン酸濃度）／（対照区の葉身部アスコルビン酸濃度）〕×１００
葉身部のアスコルビン酸濃度が高いということは、葉菜類では可食部のビタミンＣ含量が多いことを意味し、品質向上という面で意義がある。また、アスコルビン酸は果菜・葉菜において、光合成が盛んになることにより、植物体内で発生する有害な酸素ラジカルの消去剤（スカベンジャー）の役目を果たすともいわれ、有益なものと考えられる。
【００２５】
また、（ｅ）葉身部硝酸イオン濃度減少度は、上記〔ｉ〕と同様に、同一条件で生育させた試験区及び対照区の葉身部の硝酸イオン濃度からその減少量を算出する。葉身部の硝酸イオン濃度の測定には、ＲＱフレックス（メルク製）が用いられる。サンプル中の硝酸は還元剤により亜硝酸になり、酸性バッファー中で生じた亜硝酸と芳香族アミンが反応し、ジアゾニウム塩を生成する。ジアゾニウム塩はＮ−（１−ナフチル）−エチレンジアミンとアゾカップリングし、赤紫色のアゾ化合物を生成する。前記の装置は、この試験紙呈色部分に光を当て、その反射光の強さからサンプル中の硝酸イオンの濃度を測定する。具体的な測定方法は次の通りである。植物活力剤となる物質で処理した植物（試験区）と植物活力剤となる植物で処理していない植物（対照区）とから葉身部を切り取る。果菜の場合は同じ葉位部から、葉菜の場合は植物体全体を測定対象葉身部とする。サンプリング葉身部重量の２０倍重量の蒸留水を添加し、氷冷しながら乳鉢にて粉砕し、二重のガーゼで濾過し、濾液をＲＱフレックス（メルク製）にて葉身部アスコルビン酸濃度の測定を行う。測定時の濾液温度は室温（１５℃〜２０℃）で行い、濾液が得られてから１時間以内に測定を行う。試験区及び対照区それぞれの葉身部硝酸イオン濃度から以下の式により減少度（％）を算出する。
葉身部硝酸イオン濃度減少度（％）＝〔（対照区の葉身部硝酸イオン濃度−試験区の葉身部硝酸イオン濃度）／（対照区の葉身部硝酸イオン濃度）〕×１００
人が摂取した硝酸は消化管で吸収されたのち、その約２５％が唾液から再分泌され、唾液中の微生物により亜硝酸になる。口内で生成した亜硝酸が胃内に移行すると酸性条件でニトロソ化合物が生成される。亜硝酸、ニトロソ化合物などのような毒性の高い物質に変換する硝酸摂取を減らすことは食品の安全性において重要なことであり、その濃度が低いことは特に農作物の場合意義がある。
【００２６】
これら（ａ）〜（ｅ）の測定のための植物の生育条件はそれぞれ異なっていてもよいが、全て同一であることが好ましく、全て前記した光合成速度向上度と同一であることがより好ましい。
【００２７】
本発明の植物活力剤は、以下の標準光合成速度向上度が５％以上の物質からなることがより好ましい。
【００２８】
＜標準光合成速度向上度＞
ガラス温室内で温度２５℃、自然光、二酸化炭素と湿度は自然条件で、植物の栽培を行う。呉羽化学（株）製のクレハ園芸培土（肥料成分；Ｎ：Ｐ：Ｋ＝０．４：１．９：０．６（ｇ）／培土１ｋｇ）を５０穴セルトレイに詰め、トマト“瑞健”の種子を播種し、クレハ園芸培土を薄く覆土し、十分に水を灌水し発芽させる。発芽２週間後にクレハ園芸培土を詰めた１５ｃｍ（直径）ポットにトマト苗を移植する。植物活力剤となる物質を、有効成分濃度で５０ｐｐｍとなるように、大塚化学株式会社製の「大塚ＯＫＦ２」（肥料成分、Ｎ：Ｐ：Ｋ：Ｃａ：Ｍｇ＝１４：８：１６：６：２）の３０００倍液で希釈したものを、移植後７日目（本葉展開期）から週１回の間隔で７回、１ポット当たり約５０ｍｌで土壌へ浸透させる（試験区）。また、対照区として大塚化学株式会社製の「大塚ＯＫＦ２」の３０００倍液のみで同様に処理したものを用意する（対照区）。７回目の処理終了後、その３日目に前記〔ｉ〕〜〔iv〕と同様の方法で各区の真の光合成速度を算出する。ここで、試験区、対照区共に、個体は複数用意し、任意に抽出した３個体についてそれぞれ３回ずつ真の光合成速度の測定を行い、各区９つのデータを得、それぞれの平均値をもって前記式により算出された向上度を、その物質の標準光合成速度向上度とする。
【００２９】
この標準光合成速度向上度が５％以上である物質は、多くの植物、特に農作物として用いられる植物の活力をより効率的に向上させることができる。
【００３０】
更に、本発明の植物活力剤となる物質は、上記の標準光合成速度向上度の測定条件で生育させた試験区及び対照区から算出される前記（ａ）〜（ｅ）の少なくとも１つが前記の範囲を満たすことがより好ましい。
【００３１】
前記（ａ）〜（ｅ）については、試験区、対照区共に、個体は複数用意し、任意に抽出した３個体ずつを用い、その平均値で（ａ）、（ｃ）、（ｄ）及び（ｅ）の値を算出する。また、（ｂ）の算出には別の３個体を用いる。ここで、ＳＰＡＤ値は、それぞれの個体につき、それぞれ２０回測定（データ数６０）した平均値とし、その他は、それぞれ３個体（データ数３）の平均値とする。
【００３２】
本発明の植物活力剤となる物質は、例えば下記のようなものが挙げられる。
【００３３】
（１）脂肪酸又はその誘導体
下記一般式で表される１価脂肪酸及びその塩並びに１価脂肪酸エステル
ＲＣＯＯ(ＡＯ)_nＸ
式中、Ｒは水素又は炭素数１〜２９、好ましくは炭素数５〜２５、更に好ましくは炭素数１３〜２１のアルキル基又はアルケニル基を示し、Ｘは水素原子、炭素数１〜３０のアルキル基もしくはアルケニル基もしくはアシル基又は対イオンを示す。好ましくは水素原子、炭素数１４〜２２のアルキル基もしくはアルケニル基もしくはアシル基である。対イオンは、ナトリウム、カリウムなどのアルカリ金属、カルシウム、マグネシウムなどのアルカリ土類金属、トリメチルアミン、トリエチルアミン、長鎖アルキルアミン塩などのアルキルアミン塩、エタノールアミンなどのアルカノールアミン塩、アンモニウム塩の何れでも良く、好ましくはアルカリ金属、アルカリ土類金属である。また、１価脂肪酸及びそのエステルの炭化水素基は、飽和、不飽和何れでも良く、好ましくは飽和であり、直鎖、分岐鎖、環状の何れでも良く、好ましくは直鎖、分岐鎖、さらに好ましくは直鎖である。また、ＡＯはオキシアルキレン基を示し、オキシエチレン基、オキシプロピレン基及びオキシブチレン基から選ばれる１つ以上の基であることが好ましく、ランダム、ブロックいずれでも良く、ｎは平均付加モル数であり、０〜３０、好ましくは０〜１０、特に好ましくは０〜５を示す。
【００３４】
また、脂肪酸誘導体として、ペンタエリスリトール脂肪酸エステル、ポリグリセリン脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステル等の糖エステル誘導体等が挙げられる。
【００３５】
上記脂肪酸誘導体のうち、親水基と疎水基を持つ物質の場合、グリフィンのＨＬＢ(Hydrophile-Lipophile-Balance)が１０以下のものが好ましく、更に８以下が好ましく、特に５以下が好ましい。
【００３６】
（２）有機酸又はその誘導体
クエン酸、グルコン酸、リンゴ酸、ヘプトン酸、シュウ酸、マロン酸、乳酸、酒石酸、コハク酸、フマル酸、マレイン酸、アジピン酸、グルタル酸等のオキシカルボン酸、多価カルボン酸やこれらの塩、例えばカリウム塩、ナトリウム塩、アンモニウム塩、アルカノールアミン塩、脂肪族アミン塩等が挙げられる。また、アルキルクエン酸エステル、アルキルクエン酸アミドなどのオキシカルボン酸エステル又はアミド、多価カルボン酸エステル又はアミドが挙げられる。
【００３７】
（３）脂質又はその誘導体
牛脂、豚脂、魚油、鯨油等の動物性油脂；ヤシ油、パーム油、パームステアリン油、ヒマシ油、ダイズ油、オリーブ油等の植物性油脂；モノアシルグリセロール、ジアシルグリセロール等の油脂誘導体；フォスファチジルコリン、フォスファチジルセリン、フォスファチジルエタノールアミン、スフィンゴミエリン、フォスファチジン酸等のリン脂質；スフィンゴリピド；グリコリピド；テルペノイド；ステロール類等が挙げられる。また、油脂の誘導体として、油脂とグリセリンの混合物のアルキレンオキサイド付加物が挙げられ、アルキレンオキサイド平均付加モル数は１〜３０、好ましくは１〜１０、特に好ましくは１〜５である。
【００３８】
上記脂質誘導体のうち、親水基と疎水基を持つ物質の場合、グリフィンのＨＬＢが１０以下のものが好ましく、更に８以下が好ましく、特に５以下が好ましい。
【００３９】
（４）アルコール又はその誘導体
１価アルコール及びその誘導体又は多価アルコール及びその誘導体が挙げられる。
【００４０】
（４−１）１価アルコール及びその誘導体
下記一般式で表されるものが挙げられる。
ＲＯ(ＡＯ)_nＸ
式中、Ｒは炭素数１〜３０、好ましくは炭素数１２〜２６、特に好ましくは炭素数１４〜２２のアルキル基又はアルケニル基を示し、飽和、不飽和の何れでも良く、直鎖、分岐鎖、環状の何れでも良い。好ましくは直鎖又は分岐鎖、特に好ましくは直鎖のアルキル基である。また、Ｘは水素原子又は炭素数１〜３０、好ましくは炭素数１２〜２６、特に好ましくは炭素数１４〜２２のアルキル基又はアルケニル基を示し、飽和、不飽和の何れでも良く、直鎖、分岐鎖、環状の何れでも良い。好ましくは直鎖又は分岐鎖、特に好ましくは直鎖のアルキル基である。ＡＯはオキシアルキレン基を示し、オキシエチレン基、オキシプロピレン基及びオキシブチレン基から選ばれる１つ以上の基であることが好ましく、ランダム、ブロック何れでも良い。ｎは平均付加モル数を示し、０〜３０、好ましくは０〜１０、特に好ましくは０〜５モルである。
【００４１】
該１価アルコール及びその誘導体の具体例としては、メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、ラウリルアルコール、ミリスチルアルコール、セチルアルコール、ステアリルアルコール、エイコサノール、ベヘニルアルコール、フィトール、オレイルアルコール等の１価アルコール；ＰＯＥ（ポリオキシエチレンの略）（ｎ＝１）ステアリルエーテル、ＰＯＥ（ｎ＝３）セチルエーテル等のポリオキシアルキレンモノアルキルエーテル；ジステアリルエーテル、ステアリルセチルエーテル等のジアルキルエーテル；ポリオキシアルキレンジアルキルエーテル等が挙げられる。
【００４２】
（４−２）多価アルコール及びその誘導体
多価アルコールの例として、エチレングリコール、ジエチレングリコール、ポリエチレングリコール等のグリコール類；ソルビトール、マンニトール、グルコース等の糖アルコール；エリトリトール、ペンタエリスリトール、ペンチトール、グリセリン等又はこれらの誘導体が挙げられる。
【００４３】
また、これら多価アルコールの縮合物又は１価アルコールと多価アルコールの縮合物が挙げられる。多価アルコールの縮合物としては、下記式ポリグリセリン及びその誘導体が挙げられる。
【００４４】
【化１】

【００４５】
〔式中、ｎは２〜５０の数を示し、Ｒは水素原子又は炭素数２〜３１のアシル基であり、Ｘは炭素数２〜４のアルキレン基であり、ｍ₁、ｍ₂及びｍ₃は各々０〜３０の数である。〕。
【００４６】
また、１価アルコールと多価アルコールの縮合物として、バチルアルコール、イソステアリルグリセリルエーテル、ベヘニルグリセリルエーテル等のアルキルグリセリルエーテルが挙げられる。また、１価アルコールと糖又は糖アルコールの縮合物として、デシルポリグルコシド、ステアリルポリグルコシド等のアルキルポリグルコシドが挙げられる。
【００４７】
また、Ｎ−ラウロイルＮ−メチルグルカミド、Ｎ−ステアロイルＮ−メチルグルカミド等の多価アルコール脂肪酸アミドが挙げられる。
【００４８】
また、これらの多価アルコール及び誘導体のアルキレンオキサイド付加物が挙げられ、アルキレンオキサイドは、エチレンオキサイド、プロピレンオキサイド、及びブチレンオキサイドから選ばれる１つ以上であることが好ましく、ランダム付加、ブロック付加の何れでも良い。平均付加モル数は、０〜３０、好ましくは０〜１０、特に好ましくは０〜５モルである。
【００４９】
上記アルコール誘導体のうち、親水基と疎水基を持つ物質の場合、グリフィンのＨＬＢが１０以下のものが好ましく、更に８以下が好ましく、特に５以下が好ましい。
【００５０】
（５）アミン類又はその誘導体
モノメチルアミン、ジメチルアミン、トリメチルアミン等の、炭素数１〜７の炭化水素基、好ましくはアルキル基を有する１、２又は３級の低級アミン、炭素数８〜３０の炭化水素基、好ましくはアルキル基を有する１、２又は３級の長鎖アミン、ジアミン、トリアミン等のポリアミン等のアミン類又はその塩が挙げられる。また、誘導体として４級アンモニウム塩、コリンやその塩、コリンの脂肪酸塩等が挙げられる。
【００５１】
（６）アミノ酸又はその誘導体
アスパラギン酸、トレオニン、セリン、グルタミン酸、グルタミン、プロリン、グリシン、アラニン、システイン、バリン、メチオニン、イソロイシン、ロイシン、チロシン、フェニルアラニン、リシン、ヒスチジン、トリプトファン、アルギニン等のＤ型、又はＬ型アミノ酸が挙げられる。また、オルニチン、クレアチン、ヒドロキシプロリン、アシル化グルタミン等の誘導体が挙げられる。
【００５２】
（７）蛋白質又はその誘導体
グルタチオン、オキシトシン等のアミノ酸がつながったペプチド又はポリペプチド類、カゼイン、ケラチン、ヘモグロビン、アルブミン、コラーゲン等のタンパク質及び糖タンパク、生体反応を触媒する酵素類が挙げられる。
【００５３】
（８）核酸又はその誘導体
リボ核酸、デオキシリボ核酸、これらの分解物、アデノシン三リン酸等のヌクレオシドリン酸、その構成単位のヌクレオチド等が挙げられる。
【００５４】
（９）テルペン類又はその誘導体
オレンジ油、テレピン油、ハッカ油、ユーカリ油、樟脳（ｄ−カンフル）、ｄｌ−カンフル、１−メントール、ｄｌ−メントール、チモール等のテルペン類又はその誘導体が挙げられる。
【００５５】
（Ａ）天然抽出物
ヒノキチオール、キチン、キトサン、クロレラ分解物、木酢液等の天然抽出物が挙げられる。
【００５６】
（Ｂ）発酵生成物
アミノ酸発酵、混合有機酸発酵、グリセロール発酵、ペニシリン発酵等で得られる発酵生成物が挙げられる。
【００５７】
（Ｃ）発酵残渣
上記（Ｂ）の発酵残渣及び微生物培養における残渣等が挙げられる。
【００５８】
（Ｉ）ビタミン類
チアミン、リボフラビン、ニコチン酸、パントテン酸、ピリドキシン、ビオチン、葉酸、ビタミンＢ₁₂、アスコルビン酸等の水溶性ビタミン又はこれらの補酵素類、ビタミンＡ、Ｄ、Ｅ、Ｋ等の脂溶性ビタミンが挙げられる。
【００５９】
これらの中でも上記（１）、（２）、（３）、（４）から選ばれる物質が好ましく、（１）、（３）、（４）から選ばれる物質がより好ましく、（４）から選ばれる物質が特に好ましい。
【００６０】
本発明の植物活力剤は、上記本発明の物質の単独からなってもよいし、その他の成分を含有するものであってもよい。その他の成分として、界面活性剤及びキレート剤が挙げられる。界面活性剤及びキレート剤は、前記の光合成速度向上度、（ａ）〜（ｅ）の要件、標準光合成速度向上度を満たすものであってもよい。
【００６１】
界面活性剤は、非イオン界面活性剤、陽イオン界面活性剤、両性界面活性剤及び陰イオン界面活性剤から選ばれる一種以上が好ましい。
【００６２】
非イオン界面活性剤としては、ソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシアルキレンソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシアルキレン脂肪酸エステル、グリセリン脂肪酸エステル、ポリオキシアルキレングリセリン脂肪酸エステル、ポリグリセリン脂肪酸エステル、ポリオキシアルキレンポリグリセリン脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステル、樹脂酸エステル、ポリオキシアルキレン樹脂酸エステル、ポリオキシアルキレンアルキルエーテル、ポリオキシアルキレンアルキルフェニルエーテル、アルキル（ポリ）グリコシド、ポリオキシアルキレンアルキル（ポリ）グリコシド等が挙げられる。好ましくは、窒素原子を含まないエーテル基含有非イオン界面活性剤及びエステル基含有非イオン界面活性剤が挙げられる。
【００６３】
陰イオン界面活性剤としては、カルボン酸系、スルホン酸系、硫酸エステル系及びリン酸エステル系界面活性剤が挙げられるが、カルボン酸系及びリン酸エステル系界面活性剤が好ましい。カルボン酸系界面活性剤としては、例えば炭素数６〜３０の脂肪酸又はその塩、多価カルボン酸塩、ポリオキシアルキレンアルキルエーテルカルボン酸塩、ポリオキシアルキレンアルキルアミドエーテルカルボン酸塩、ロジン酸塩、ダイマー酸塩、ポリマー酸塩、トール油脂肪酸塩等が挙げられる。スルホン酸系界面活性剤としては、例えばアルキルベンゼンスルホン酸塩、アルキルスルホン酸塩、アルキルナフタレンスルホン酸塩、ナフタレンスルホン酸塩、ジフェニルエーテルスルホン酸塩、アルキルナフタレンスルホン酸の縮合物塩、ナフタレンスルホン酸の縮合物塩等が挙げられる。硫酸エステル系界面活性剤としては、例えばアルキル硫酸エステル塩、ポリオキシアルキレンアルキル硫酸エステル塩、ポリオキシアルキレンアルキルフェニルエーテル硫酸塩、トリスチレン化フェノール硫酸エステル塩、ポリオキシアルキレンジスチレン化フェノール硫酸エステル塩、アルキルポリグリコシド硫酸塩等が挙げられる。リン酸エステル系界面活性剤として、例えばアルキルリン酸エステル塩、アルキルフェニルリン酸エステル塩、ポリオキシアルキレンアルキルリン酸エステル塩、ポリオキシアルキレンアルキルフェニルリン酸エステル塩等が挙げられる。塩としては、例えば金属塩（Ｎａ、Ｋ、Ｃａ、Ｍｇ、Ｚｎ等）、アンモニウム塩、アルカノールアミン塩、脂肪族アミン塩等が挙げられる。
【００６４】
両性界面活性剤としては、アミノ酸系、ベタイン系、イミダゾリン系、アミンオキサイド系が挙げられる。アミノ酸系としては、例えばアシルアミノ酸塩、アシルサルコシン酸塩、アシロイルメチルアミノプロピオン酸塩、アルキルアミノプロピオン酸塩、アシルアミドエチルヒドロキシエチルメチルカルボン酸塩等が挙げられる。ベタイン系としては、アルキルジメチルベタイン、アルキルヒドロキシエチルベタイン、アシルアミドプロピルヒドロキシプロピルアンモニアスルホベタイン、アシルアミドプロピルヒドロキシプロピルアンモニアスルホベタイン、リシノレイン酸アミドプロピルジメチルカルボキシメチルアンモニアベタイン等が挙げられる。イミダゾリン系としては、アルキルカルボキシメチルヒドロキシエチルイミダゾリニウムベタイン、アルキルエトキシカルボキシメチルイミダゾリウムベタイン等が挙げられる。アミンオキサイド系としては、アルキルジメチルアミンオキサイド、アルキルジエタノールアミンオキサイド、アルキルアミドプロピルアミンオキサイド等が挙げられる。
【００６５】
上記界面活性剤は一種でも、二種以上混合して使用しても良い。また、上記界面活性剤は、植物活力剤の有効成分を、均一に可溶化、分散させる意味で、親水性の高い界面活性剤が望ましい。該界面活性剤においては、グリフィンのＨＬＢは１０以上、更に１２以上が好ましい。また、これらの界面活性剤がポリオキシアルキレン基を含む場合は、好ましくはポリオキシエチレン基を有し、その平均付加モル数が１〜５０であることが挙げられる。更に好ましくは平均付加モル数が５〜３０、特に好ましくは１０〜３０である。
【００６６】
界面活性剤としては、エステル基含有非イオン界面活性剤、窒素原子を含まないエーテル基含有非イオン界面活性剤、両性界面活性剤、カルボン酸系陰イオン界面活性剤及びリン酸系陰イオン界面活性剤から選ばれる一種以上が好ましい。特に、エステル基含有非イオン界面活性剤及び窒素原子を含まないエーテル基含有非イオン界面活性剤から選ばれる一種以上が好ましい。本発明の植物活力剤は、活性成分（本発明の光合成速度向上度が５％以上である物質）と界面活性剤の重量比率が、界面活性剤／有効成分＝０．０１〜１００、更に０．０５〜５０、特に０．１〜３０であることが、活性成分を植物へ効率的に浸透させる点で好ましい。
【００６７】
キレート剤としては、アミノポリカルボン酸系キレート剤、芳香族及び脂肪族カルボン酸系キレート剤、アミノ酸系キレート剤、エーテルポリカルボン酸系キレート剤、ホスホン酸系キレート剤（例えばイミノジメチルホスホン酸（ＩＤＰ）、アルキルジホスホン酸（ＡＤＰＡ）等である）、又はジメチルグリオキシム（ＤＧ）等が挙げられ、これらは酸のまま或いはナトリウム、カリウム、アンモニウム等の塩の形のものであってもよい。
【００６８】
アミノポリカルボン酸系キレート剤としては、
ａ）ＲＮＸ₂型化合物
ｂ）ＮＸ₃型化合物
ｃ）Ｒ−ＮＸ−ＣＨ₂ＣＨ₂−ＮＸ−Ｒ型化合物
ｄ）Ｒ−ＮＸ−ＣＨ₂ＣＨ₂−ＮＸ₂型化合物及び
ｅ）Ｘ₂Ｎ−Ｒ’−ＮＸ₂型及びこの型の化合物でＸを４以上含む化合物の全てが使用できる。上記式中Ｘは−ＣＨ₂ＣＯＯＨ又は−ＣＨ₂ＣＨ₂ＣＯＯＨを表し、Ｒは水素原子、アルキル基、水酸基、ヒドロキシアルキル基又はこの種の公知のキレート化合物を表す置換基を表し、Ｒ’はアルキレン基、シクロアルキレン基及びこの種の公知のキレート化合物を表す基を表す。これらの代表例としては、エチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ）、シクロヘキサンジアミンテトラ酢酸（ＣＤＴＡ）、ニトリロトリ酢酸（ＮＴＡ）、イミノジ酢酸（ＩＤＡ）、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）イミノジ酢酸（ＨＩＭＤＡ）、ジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＤＴＰＡ）、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）エチレンジアミン三酢酸（ＥＤＴＡ−ＯＨ）及びグリコールエーテルジアミンテトラ酢酸（ＧＥＤＴＡ）並びにこれらの塩等が挙げられる。
【００６９】
芳香族及び脂肪族カルボン酸系キレート剤としては、クエン酸、シュウ酸、グリコール酸、ピルビン酸又はアントラニル酸及びこれらの塩等である。
【００７０】
アミノ酸系キレート剤としては、グリシン、セリン、アラニン、リジン、シスチン、システイン、エチオニン、チロシン又はメチオニン及びこれらの塩及び誘導体等である。更に、本発明に使用し得るエーテルポリカルボン酸系キレート剤としては、例えば次式で表される化合物並びにその類似化合物及びその塩（特にＮａ塩等）が挙げられる。
【００７１】
【化２】

【００７２】
本発明の植物活力剤の形態は、液体、フロワブル、ペースト、水和剤、粒剤、粉剤、錠剤等いずれでも良く、水に希釈して使用する場合には、通常植物活力剤の有効成分濃度が０．０１〜５０００ｐｐｍの水溶液、水性分散液あるいは乳化液として植物の葉面や根へ散布される。
【００７３】
本発明は、上記本発明の植物活力剤を植物に供給することからなる植物の活力向上方法を提供する。本発明の植物活力剤の植物への供給方法としては色々な手段を使うことができる。例えば、粉剤や粒剤を直接化成肥料等の固形肥料のように投与したり、希釈された水溶液を葉面、茎、果実等直接植物に散布したり、土壌中に注入する方法や水耕栽培やロックウールのように根に接触している水耕液や供給水に希釈混合して供給する方法が挙げられる。
【００７４】
本発明の植物活力剤により処理できる植物としては、果菜類では、キュウリ、カボチャ、スイカ、メロン、トマト、ナス、ピーマン、イチゴ、オクラ、サヤインゲン、ソラマメ、エンドウ、エダマメ、トウモロコシ等が挙げられる。葉菜類では、ハクサイ、ツケナ類、チンゲンサイ、キャベツ、カリフラワー、ブロッコリー、メキャベツ、タマネギ、ネギ、ニンニク、ラッキョウ、ニラ、アスパラガス、レタス、サラダナ、セルリー、ホウレンソウ、シュンギク、パセリ、ミツバ、セリ、ウド、ミョウガ、フキ、シソ等が挙げられる。根菜類としては、ダイコン、カブ、ゴボウ、ニンジン、ジャガイモ、サトイモ、サツマイモ、ヤマイモ、ショウガ、レンコン等が挙げられる。その他に、稲、麦類、花卉類等にも使用が可能である。
【００７５】
【発明の効果】
本発明の植物活力剤は、適切な濃度で処理すれば植物に対し薬害がなく、効率的に植物体の活力を向上させる為、各種農作物に使用することが可能である。また、本発明により植物の根の活着の促進、重量増加、ＳＰＡＤ値の増大、葉面積の増大、葉身部アスコルビン酸濃度の増加、葉身部硝酸イオン濃度の減少等の植物成長に対する改善がみられる。
【００７６】
【実施例】

上記条件にて５０穴セルトレイに播種し、発芽２週間後にポットに移植し、７日後から週１回の間隔で表１、２に示したような植物活力剤と、肥料成分として「大塚ＯＫＦ２」（大塚化学株式会社製）３０００倍希釈液を混合した植物活力剤混合液を計７回土壌処理した。なお、混合液の植物活力剤の濃度は表１、２に示したとおりであり、残部は水であり、処理量は１ポット当たり約５０ｍｌで土壌へ浸透させた。７回目の処理終了後、３日目に前記の方法にて見かけの光合成速度、暗呼吸速度をそれぞれ測定し、真の光合成速度を算出し、光合成速度向上度を算出し、対照区に対する相対値で示した。なお、試験区、対照区共に、個体は複数用意し、任意に抽出した３個体についてそれぞれ３回ずつ真の光合成速度の測定を行い、各区９つのデータを得、それぞれの平均値をもって前記式により光合成速度向上度を算出した。結果を表１、２に示す。
【００７７】
また、前記光合成速度向上度を算出した同じ３個体について、７回目の処理終了後、３日目に、ＳＰＡＤ値、葉面積向上度、葉身部アスコルビン酸濃度増加量及び葉身部硝酸イオン濃度減少度を前記の方法で測定した。また、これらと別の３個体について、７回目の処理終了後、３日目に、前記の方法で植物体重量（乾物重）増加量を測定した。これらの結果を表１、２に示すが、ＳＰＡＤ値は、それぞれの個体につきそれぞれ２０回測定（データ数６０）した平均値であり、その他は、３個体（データ数３）の平均値である。また、ＳＰＡＤ値以外は対照区に対する相対値である。
【００７８】
【表１】

【００７９】
なお、本発明品１−５について、前記の方法で標準光合成速度向上度を測定したところ、１８．７％であった。
【００８０】
【表２】

【００８１】
ＰＯＥはポリオキシエチレンの略であり（ ）内の数字は、エチレンオキサイドの平均付加モル数である（以下同様）。
【００８２】
実施例２＜ホウレンソウへの土壌処理試験＞
品種：ホウレンソウ“エスパー”
栽培容器：栽培用 １８ｃｍ（直径）ポット
使用培土：クレハ園芸培土（呉羽化学（株）製）〔肥料成分；Ｎ：Ｐ：Ｋ＝０．４：１．９：０．６（ｇ／培土１ｋｇ）〕
上記条件にてクレハ園芸培土を１ポット当たり１．３Ｌ（１．５ｋｇ）使用し、播種した。播種後１２日後から処理を開始し、週１回の間隔で表３、４に示したような植物活力剤を計５回土壌処理した。植物活力剤の濃度は表３、４に示したとおりで残部は水であり、処理量は１ポット当たり約１５０ｍｌで土壌へ浸透させた。５回目の処理終了後、３日目に前記の方法にて見かけの光合成速度、暗呼吸速度をそれぞれ測定し、真の光合成速度を算出し、光合成速度向上度を算出し、対照区に対する相対値で示した。なお、試験区、対照区共に、個体は複数用意し、任意に抽出した３個体についてそれぞれ３回ずつ真の光合成速度の測定を行い、各区９つのデータを得、それぞれの平均値をもって前記式により光合成速度向上度を算出した。結果を表３、４に示す。
【００８３】
また、前記光合成速度向上度を算出した同じ３個体について、５回目の処理終了後、３日目に、ＳＰＡＤ値、葉面積向上度、葉身部アスコルビン酸濃度増加量及び葉身部硝酸イオン濃度減少度を前記の方法で測定した。また、これらは別の３個体について、５回目の処理終了後、３日目に、前記の方法で植物体重量（乾物重）増加量を測定した。これらの結果を表３、４に示すが、ＳＰＡＤ値は、それぞれの個体につきそれぞれ２０回測定（データ数６０）した平均値であり、その他は、３個体（データ数３）の平均値である。また、ＳＰＡＤ値以外は対照区に対する相対値である。
【００８４】
【表３】

【００８５】
【表４】

[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention is applied to the roots, stems, foliage or fruits of plants in a solution state, paste state or solid state by foliar spraying, soil spraying, soil irrigation, soil irrigation or the like, or in a culture medium such as hydroponics. It is related with the plant vitality agent used by administering by the method of adding. Here, hereinafter, the “plant” represents a plant, fruit, fruit tree, cereal, seed, bulb, flower, herb (herb), taxonomic plant, etc. that can be recognized from the word of the plant itself. .
[0002]
[Prior art]
Various nutritional elements are necessary for plants to grow, but it is known that if some of these elements are deficient, plant growth will be hindered. For example, as the three major elements of fertilizer, nitrogen is a component element of protein. Phosphorus plays an important role not only in the constituent elements of nucleic acids and phospholipids but also in energy metabolism and synthesis and decomposition reactions of substances. Has physiological effects of substance metabolism and mass transfer. The lack of these major components generally leads to poor plant growth. Calcium is an important component of plant bodies and cells, and also plays an important role in maintaining the balance of the metabolic system, presenting calcium deficiency symptoms and causing physiological disorders. In addition, various nutrients are necessary for plants such as Mg, Fe, S, B, Mn, Cu, Zn, Mo, Cl, Si, and Na.
[0003]
These nutrients such as nitrogen, phosphorus, and potassium are fertilized in the form of original fertilizer and additional fertilizer, or liquid fertilizer is diluted and applied by soil irrigation or foliar application. These fertilizers are indispensable for plant growth, but even if given in a certain concentration or higher, they cannot contribute further to the improvement of plant growth and yield.
[0004]
However, promoting the growth of crops and increasing the yield by increasing the yield per unit area is an important issue in agricultural production, and various plant growth regulators necessary for this purpose have been developed and used. Plant growth regulators typified by gibberellins and auxins are used to control germination, rooting, elongation, flowering, fruit growth, and morphogenic reactions. And complex and has limited applications.
[0005]
[Problems to be solved by the invention]
As a result of applying a large amount of fertilizer in the soil for the purpose of increasing crop yields, various elements in the soil become excessive, resulting in a poor balance of absorption and stagnation of plant growth. There are problems that cannot be achieved or quality such as sugar content (Brix. Value) does not increase. In addition, since the roots have limited nutrient absorption, there is an attempt to spray an aqueous solution or suspension of the required fertilizer element directly on the leaves and fruits. However, there is a problem in terms of absorption efficiency, and spraying an excessive amount of fertilizer component conversely stresses plants and causes phytotoxicity.
[0006]
Under such circumstances, there is a demand for a plant vital agent that does not cause phytotoxicity to plants, has no limitation of use, and exhibits an excellent plant growth enhancing effect.
[0007]
[Means for Solving the Problems]
The present invention relates to a plant vital agent composed of a substance having a photosynthesis rate improvement degree calculated by the following formula of 5% or more.
Photosynthesis rate improvement (%) = [(P ₁ -P ₀ ) / P ₀ ] × 100
P ₀ : True photosynthetic rate without the use of a plant vital agent (mgCO ₂ / Dm ² / H)
P ₁ : True photosynthetic rate (mgCO) when using a substance that is a plant vital agent ₂ / Dm ² / H)
The present invention also relates to a plant vitality agent comprising a substance satisfying at least one of the following (a) to (e), which has a photosynthetic rate improvement degree calculated by the following formula of 5% or more.
Photosynthesis rate improvement (%) = [(P ₁ -P ₀ ) / P ₀ ] × 100
P ₀ : True photosynthetic rate without the use of a plant vital agent (mgCO ₂ / Dm ² / H)
P ₁ : True photosynthetic rate (mgCO) when using a substance that is a plant vital agent ₂ / Dm ² / H)
(A) Chlorophyll meter value (hereinafter abbreviated as SPAD value) improvement is 2 points or more
(B) Increase in plant weight (raw weight or dry weight) is 10% or more
(C) The plant leaf area improvement is 5% or more
(D) The increase in leaf ascorbic acid concentration is 5% or more
(E) Decrease in nitrate concentration in leaf blades is 10% or more
[0008]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
The degree of photosynthetic rate improvement in the present invention is the degree of improvement in the true photosynthetic rate per unit area of leaves for plants containing chloroplasts in cells. In the present invention, the degree of improvement in the photosynthetic rate when the same type of plant is grown under the same conditions is measured. Here, the “true photosynthesis rate” is the sum of the “apparent photosynthesis rate” and the “dark respiration rate”, and is measured by the following methods.
[0009]
[I] Pretreatment of plants
First, a plurality of plants to be measured are grown under the same conditions. At that time, a plurality (preferably the same number) of a system (test group) and a non-use system (control group) using a substance serving as a plant vital agent are prepared. Usually, the substance is added to the soil or hydroponics or foliar sprayed. At this time, environmental conditions such as temperature, humidity, light intensity and carbon dioxide concentration, conditions such as soil type and composition, growth conditions such as administration fertilization amount and growth period are arranged in the test group and the control group. That is, it is grown for a certain period under the same conditions except for the addition of a substance that becomes a plant vitality agent. Specific numerical values for the pretreatment conditions may be appropriately determined in consideration of the type of plant, the growth stage, and the like. The plants of the test group and the control group that have been pretreated in this way are used for the calculation of the following apparent photosynthetic rate and dark respiration rate.
[0010]
[Ii] Calculation of apparent photosynthesis rate
As the measuring device, use the simultaneous photosynthesis / transpiration measuring device described in “II Prototype of Simultaneous Photosynthesis / Transpiration Measuring Device” on pages 97-99 of “Report of Vegetable Experiment Station A No. 12” (Nagaoka et al., December 1984). . In the assimilation box for the individual of the apparatus, the same plant individual is divided into two sections, a test group and a control group. Temperature 25 ° C., aeration inflow 20 L / min, illuminance 87 klx. After acclimatization for 90 minutes under the above conditions, the carbon dioxide concentrations at the inlet and outlet of the assimilation box are measured with an infrared gas analyzer. Substituting the measured value into the following formula, the apparent photosynthetic rate (unit: mgCO2) of each of the test group and the control group ₂ / Dm ² / H). This formula is described on page 196 of "Latest Crop Physiology Experiment Method" (April 20, 1990, Second Printing, Agricultural Technology Association).
[0011]
[Expression 1]

[0012]
ΔC: CO at the entrance and exit of the assimilation box ₂ Concentration difference (ppm)
A: Leaf area (cm ² )
V: Aeration inflow amount into assimilation box (L / hr) (Here, air containing 0.02 to 0.04% carbon dioxide is used for ventilation)
t: Air temperature (° C.).
[0013]
[Iii] Calculation of dark breathing rate
The same device as [ii] is used as a measuring device. In the assimilation box for the individual of the apparatus, plant individuals of the same type used in [ii] are divided into two sections, the test section and the control section, as in [ii], and the temperature is 25 ° C. and the inflow amount is 20 L. / Min, illuminance 0 klx. After acclimatization for 90 minutes under the above conditions, the carbon dioxide concentrations at the inlet and outlet of the assimilation box are measured with an infrared gas analyzer. By substituting the measured value into the formula [ii], the dark respiration rate (unit: mgCO ₂ / Dm ² / H).
[0014]
[Iv] Calculation of improvement rate of photosynthesis rate
Apparent photosynthesis rate (CO ₂ / Dm ² / H) and dark breathing rate (CO ₂ / Dm ² / H) is the true photosynthesis rate (CO ₂ / Dm ² / H), and the true photosynthetic rate of each of the test group and the control group is obtained from the numerical value calculated above.
[0015]
The true photosynthesis rate (P ₁ ) And the true photosynthetic rate (P ₀ ) And the degree of improvement in photosynthesis rate (%), [(P ₁ -P ₀ ) / P ₀ ] X100.
[0016]
In the present invention, plant growth can be enhanced by using a substance having a photosynthesis rate improvement of 5% or more, preferably 7% or more, more preferably 9% or more, and still more preferably 11% or more as a plant vital agent. In addition, the SPAD value and the leaf area increase. The photosynthesis rate is an indicator of the metabolic rate of the plant, but generally there is no known correlation between the degree of improvement and the plant growth enhancing effect as found in the present invention.
[0017]
In the present invention, the above-mentioned photosynthesis is performed when a substance serving as a plant vitality agent is administered as an active ingredient in an aqueous solution or aqueous dispersion as 0.01 to 5000 ppm, further 0.1 to 1000 ppm, particularly 1 to 500 ppm. A substance having a speed improvement of 5% or more is preferable. In this case, a substance having a photosynthesis rate improvement of 5% or more within 50 days after the start of administration at this concentration is more preferable. Also, 1000m as a solid agent such as granule and powder ² Substances whose rate of improvement in photosynthetic rate becomes 5% or more within 50 days when administered at a rate of 0.001 to 3000 kg, further 0.01 to 1000 kg, particularly 0.05 to 100 kg as an active ingredient per (10a) Is preferred.
[0018]
In the present invention, a substance satisfying at least one of the following (a) to (e), further at least two, more preferably at least three, and particularly all five is preferable, with a photosynthesis rate improvement degree of 5% or more. .
(A) SPAD value improvement is 2 points or more
(B) Increase in plant weight (raw weight or dry weight) is 10% or more
(C) The plant leaf area improvement is 5% or more
(D) The increase in leaf ascorbic acid concentration is 5% or more
(E) Decrease in nitrate concentration in leaf blades is 10% or more.
[0019]
Here, (a) SPAD value improvement degree measured the SPAD value of the test group and the control group grown on the same conditions by SPAD502 by Minolta, respectively, similarly to said [i], and the improvement degree was measured. calculate. The degree of improvement is preferably 2 points or more, more preferably 3 points or more, and still more preferably 4 points or more. In the present invention, “MINOLTA chlorophyll meter SPAD502” (manufactured by Minolta Co., Ltd.) is used for measuring the SPAD value. This is an instrument for nondestructively measuring the amount of chlorophyll in a plant body (leaf). A fresh leaf is sandwiched between the measuring instruments and light is applied (flash emission with a xenon lamp). Transmitted light passes through a filter of 670 nm, which is the maximum wavelength of chlorophyll, and 750 nm, which is a non-specific absorption band of polymers such as proteins. Is done. The numerical value is displayed as a numerical value (SPAD value) from 0 to 80. The SPAD value is highly correlated with the chlorophyll content per unit area of the leaf, and the SPAD502 measured value (X) and the chlorophyll content (Y) (mg / 100 cm ² ) Holds the following regression equation (Plant Nutrition Experiment, Hirotomo Co., Ltd., 2nd edition, issued on April 20, 1991, P366-367).
Y = 0.0996X-0.152
That is, if the SPAD value is high, the chlorophyll content per unit area of the plant body is large, indicating that the plant body is growing.
[0020]
The SPAD value improvement degree in the present invention is:
SPAD value improvement = (SPAD value in test group) − (SPAD value in control group)
Is calculated by
[0021]
The measurement time of the SPAD value is not limited as long as the leaf of the plant reaches an area (about 5 mm × 5 mm or more) that can be measured with a SPAD meter after processing the substance serving as the plant vital agent. The SPAD value is measured at least 20 times at the same leaf position of a plant treated with a plant vital agent and a plant not treated with a plant vital agent, and the average value is used.
[0022]
Moreover, (b) The plant body weight calculates the increase amount from the raw weight or dry weight of the test plot and the control plot grown under the same conditions as in the above [i]. The increase amount is preferably 10% or more, more preferably 15% or more, and still more preferably 20% or more. The plant weight is measured as follows. All plant bodies of the plant treated with the plant vital agent (test zone) and the plant not treated with the plant vital agent (control zone) were removed from the cultivation device (pot, etc.) and attached to the roots. Thoroughly remove soil and dirt with running water and measure the weight of each (raw weight). In addition, each plant is dried at 70 ° C. for 5 days, and then the weight is measured (dry weight). The amount of increase in plant weight is calculated as follows. Here, although it may be calculated by either raw weight or dry weight, it is preferable to calculate by dry weight in a sense that directly reflects the net amount of the assimilated substance.
Increase in plant body weight (raw weight) (%) = [(raw weight in test group−raw weight in control group) / (raw weight in control group)] × 100
Increase in plant body weight (dry weight) (%) = [(dry weight of test group−dry weight of control group) / (dry weight of control group)] × 100
This increase in plant weight represents an increase in substance production and weight, and is a direct indicator of plant growth.
[0023]
Further, (c) the degree of improvement in the leaf area of the plant is calculated from the area of the leaves of the whole plant in the test plot and the control plot grown under the same conditions as in [i] above. The degree of improvement is preferably 5% or more, more preferably 7% or more, and still more preferably 9% or more. In the present invention, the degree of improvement in leaf area is measured using an automatic area meter AAC-400 (Rinden Electric Co., Ltd.). This automatic area meter is a device that detects with photoelectric elements how much the sample has blocked the scanning beam, and has a minimum unit of 1 mm. ² And the maximum display number is 999999.99cm ² Counting display is possible. Turn on the power switch of the device and warm up for at least 15 minutes. Test plate (known area: 99.8 cm) ² ) And adjust to within 1% error range. The leaf area of the plant body of the test group or the control group is cut, this is used as a sample, and the leaf area is mm when inserted from the center of the film inlet and sent to the outlet. ² Displayed in units. The plant used for the measurement should be a plant with little roundness and distortion in the leaf blade (eg, tomato, cucumber, spinach, etc.). From the leaf area of each of the test group and the control group, the degree of improvement in leaf area is calculated by the following formula.
Leaf area improvement (%) = [(leaf area of test group−leaf area of control group) / (leaf area of control group) × 100
The large leaf area is considered to enable the plant body to receive light energy, perform photosynthesis, and produce more substances, and the large improvement in leaf area means that the plant body grows. It is an indicator of progress.
[0024]
Further, (d) the amount of increase in the ascorbic acid concentration of the leaf blade part is calculated from the ascorbic acid concentration in the leaf part of the plant in the test plot and the control plot grown under the same conditions as in [i] above. To do. RQ flex (manufactured by Merck) is used to measure the ascorbic acid concentration in the leaf blades. Ascorbic acid reduces yellow molybdophosphoric acid to produce blue phosphomolybdenum blue. The apparatus illuminates the colored portion of the test paper and measures the concentration of ascorbic acid in the sample from the intensity of the reflected light. The specific measurement method is as follows. A leaf blade is cut out from a plant treated with a substance serving as a plant vital agent (test group) and a plant not treated with a plant serving as a plant vital agent (control group). In the case of fruit vegetables, from the same leaf position part, in the case of leaf vegetables, the whole plant is taken as the measurement target blade part. Add distilled water of 20 times the weight of the sampled leaf blade, grind it in a mortar while cooling with ice, filter through double gauze, and concentrate the ascorbic acid on the leaf with RQ flex (Merck). Measure. In order to suppress the decomposition of ascorbic acid, the obtained filtrate is stored in ice-cold water until measurement. The filtrate temperature at the time of measurement is returned to room temperature (15 ° C. to 20 ° C.), and measurement is performed within 1 hour after the filtrate is obtained. The amount of increase (%) is calculated from the leaf corpuscle ascorbic acid concentration in each of the test group and the control group by the following formula.
Increased amount of leaf ascorbic acid concentration (%) = [(leaf body ascorbic acid concentration in test section−leaf body ascorbic acid concentration in control section) / (leaf body portion ascorbic acid concentration in control section)] × 100
A high ascorbic acid concentration in the leaf blade means that the leaf vegetable has a high vitamin C content in the edible portion, which is significant in terms of quality improvement. In addition, ascorbic acid is said to play a role as a scavenger for harmful oxygen radicals generated in plants by vigorous photosynthesis in fruit and leafy vegetables, and is considered to be beneficial.
[0025]
In addition, (e) the degree of decrease in nitrate concentration in the leaf blade part is calculated from the nitrate ion concentration in the leaf part of the test plot and the control plot grown under the same conditions as in [i] above. RQ flex (manufactured by Merck) is used to measure the nitrate ion concentration in the leaf blade. Nitric acid in the sample is converted to nitrous acid by the reducing agent, and the nitrous acid generated in the acidic buffer reacts with the aromatic amine to produce a diazonium salt. The diazonium salt is azo coupled with N- (1-naphthyl) -ethylenediamine to produce a reddish purple azo compound. The apparatus illuminates the colored portion of the test paper and measures the concentration of nitrate ions in the sample from the intensity of the reflected light. The specific measurement method is as follows. A leaf blade is cut out from a plant treated with a substance serving as a plant vital agent (test group) and a plant not treated with a plant serving as a plant vital agent (control group). In the case of fruit vegetables, from the same leaf position part, in the case of leaf vegetables, the whole plant is taken as the measurement target blade part. Add distilled water of 20 times the weight of the sampled leaf blade, grind it in a mortar while cooling with ice, filter through double gauze, and concentrate the ascorbic acid on the leaf with RQ flex (Merck). Measure. The filtrate temperature at the time of measurement is room temperature (15 ° C. to 20 ° C.), and the measurement is performed within 1 hour after the filtrate is obtained. The degree of decrease (%) is calculated from the concentration of nitrate ions in the leaf blades of the test group and the control group according to the following formula.
Degree of decrease in nitrate concentration of leaf blades (%) = [(Nitrate ion concentration of leaf blade in control group−Nitrate ion concentration of leaf blade in test group) / (Nitrate ion concentration of leaf blade in control group)] × 100
The nitric acid ingested by humans is absorbed in the digestive tract, and about 25% of it is re-secreted from saliva and converted into nitrite by microorganisms in the saliva. When nitrous acid produced in the mouth moves into the stomach, a nitroso compound is produced under acidic conditions. It is important for food safety to reduce the intake of nitric acid, which is converted into highly toxic substances such as nitrous acid and nitroso compounds, and the low concentration is particularly significant for crops.
[0026]
The growth conditions of the plants for the measurement of (a) to (e) may be different from each other, but they are preferably all the same, and more preferably all the same as the above-mentioned degree of improvement in photosynthesis rate.
[0027]
The plant vitality agent of the present invention is more preferably composed of a substance having the following standard photosynthetic rate improvement degree of 5% or more.
[0028]
<Standard photosynthesis speed improvement>
Plants are cultivated in a glass greenhouse under conditions of 25 ° C., natural light, carbon dioxide and humidity. Kureha Horticultural Culture Soil (fertilizer component; N: P: K = 0.4: 1.9: 0.6 (g) / 1 kg of culture soil) made by Kureha Chemical Co., Ltd. is packed into a 50-well cell tray and tomato “Ruiken” Seeds, cover the Kureha Horticulture soil thinly, irrigate with sufficient water and germinate. Two weeks after germination, tomato seedlings are transplanted into a 15 cm (diameter) pot filled with Kureha Horticulture soil. “Otsuka OKF2” (fertilizer component, N: P: K: Ca: Mg = 14: 8: 16: 6: manufactured by Otsuka Chemical Co., Ltd.) so that the substance serving as a plant vitality agent is 50 ppm in the active ingredient concentration. The one diluted with 3000 times solution of 2) is infiltrated into the soil at about 50 ml per pot 7 times once a week from the 7th day (main leaf development stage) after transplanting (test group). Moreover, what was processed similarly only with the 3000 times solution of "Otsuka OKF2" by Otsuka Chemical Co., Ltd. is prepared as a control zone (control zone). After completion of the seventh processing, on the third day, the true photosynthetic rate of each section is calculated by the same method as [i] to [iv]. Here, in each of the test group and the control group, a plurality of individuals are prepared, and the true photosynthetic rate is measured three times for each of the arbitrarily extracted three individuals, nine data are obtained for each group, and the above formula is obtained with each average value. The degree of improvement calculated by the above is defined as the standard photosynthesis rate improvement degree of the substance.
[0029]
A substance having a standard photosynthesis rate improvement of 5% or more can more efficiently improve the vitality of many plants, particularly plants used as agricultural crops.
[0030]
Furthermore, the substance used as the plant vitality agent of the present invention includes at least one of the above (a) to (e) calculated from the test group and the control group grown under the measurement conditions for the standard photosynthesis rate improvement degree. It is more preferable to satisfy the range.
[0031]
Regarding (a) to (e), a plurality of individuals are prepared in both the test group and the control group, and three samples extracted arbitrarily are used, and the average values thereof are (a), (c), (d) and The value of (e) is calculated. In addition, another three individuals are used for the calculation of (b). Here, the SPAD value is an average value measured 20 times (data number 60) for each individual, and the other is an average value of 3 individuals (data number 3).
[0032]
Examples of the substance that serves as the plant vitality agent of the present invention include the following.
[0033]
(1) Fatty acid or its derivative
Monovalent fatty acids and salts thereof represented by the following general formula and monovalent fatty acid esters
RCOO (AO) _n X
In the formula, R represents hydrogen or an alkyl group or alkenyl group having 1 to 29 carbon atoms, preferably 5 to 25 carbon atoms, more preferably 13 to 21 carbon atoms, and X represents a hydrogen atom or an alkyl group having 1 to 30 carbon atoms. A group, an alkenyl group, an acyl group or a counter ion; Preferably they are a hydrogen atom, a C14-C22 alkyl group, an alkenyl group, or an acyl group. The counter ion may be any of alkali metals such as sodium and potassium, alkaline earth metals such as calcium and magnesium, alkylamine salts such as trimethylamine, triethylamine and long chain alkylamine salts, alkanolamine salts such as ethanolamine, and ammonium salts. The alkali metal and alkaline earth metal are preferable. The hydrocarbon group of the monovalent fatty acid and its ester may be either saturated or unsaturated, preferably saturated, and may be linear, branched or cyclic, preferably linear or branched, more preferably Is linear. AO represents an oxyalkylene group, preferably one or more groups selected from an oxyethylene group, an oxypropylene group and an oxybutylene group, which may be either random or block, and n is the average number of moles added. 0-30, preferably 0-10, particularly preferably 0-5.
[0034]
Examples of the fatty acid derivative include sugar ester derivatives such as pentaerythritol fatty acid ester, polyglycerin fatty acid ester, sorbitan fatty acid ester, and sucrose fatty acid ester.
[0035]
Among the fatty acid derivatives, in the case of a substance having a hydrophilic group and a hydrophobic group, the glycine HLB (Hydrophile-Lipophile-Balance) is preferably 10 or less, more preferably 8 or less, and particularly preferably 5 or less.
[0036]
(2) Organic acid or its derivative
Citric acid, gluconic acid, malic acid, heptonic acid, oxalic acid, malonic acid, lactic acid, tartaric acid, succinic acid, fumaric acid, maleic acid, adipic acid, glutaric acid and other oxycarboxylic acids, polyvalent carboxylic acids and their salts Examples thereof include potassium salt, sodium salt, ammonium salt, alkanolamine salt, aliphatic amine salt and the like. Further, oxycarboxylic acid esters or amides such as alkyl citrate esters and alkyl citrate amides, and polyvalent carboxylic acid esters or amides may be mentioned.
[0037]
(3) Lipid or its derivative
Animal fats and oils such as beef tallow, pork fat, fish oil and whale oil; vegetable fats and oils such as palm oil, palm oil, palm stearin oil, castor oil, soybean oil and olive oil; fat and oil derivatives such as monoacylglycerol and diacylglycerol; Examples thereof include phospholipids such as zylcholine, phosphatidylserine, phosphatidylethanolamine, sphingomyelin, and phosphatidic acid; sphingolipids; glycolipids; terpenoids; sterols and the like. Moreover, the alkylene oxide adduct of the mixture of fats and oils is mentioned as a derivative of fats and oils, The alkylene oxide average addition mole number is 1-30, Preferably it is 1-10, Most preferably, it is 1-5.
[0038]
Among the above-mentioned lipid derivatives, in the case of a substance having a hydrophilic group and a hydrophobic group, those having an HLB of griffin of 10 or less are preferred, more preferably 8 or less, and particularly preferably 5 or less.
[0039]
(4) Alcohol or its derivatives
A monohydric alcohol and its derivative or a polyhydric alcohol and its derivative are mentioned.
[0040]
(4-1) Monohydric alcohol and its derivatives
What is represented by the following general formula is mentioned.
RO (AO) _n X
In the formula, R represents an alkyl group or an alkenyl group having 1 to 30 carbon atoms, preferably 12 to 26 carbon atoms, particularly preferably 14 to 22 carbon atoms, which may be either saturated or unsaturated. Any of an annular shape may be used. A linear or branched chain is preferable, and a linear alkyl group is particularly preferable. X represents a hydrogen atom or an alkyl group or an alkenyl group having 1 to 30 carbon atoms, preferably 12 to 26 carbon atoms, particularly preferably 14 to 22 carbon atoms, which may be saturated or unsaturated, Either a branched chain or a ring may be used. A linear or branched chain is preferable, and a linear alkyl group is particularly preferable. AO represents an oxyalkylene group, and is preferably one or more groups selected from an oxyethylene group, an oxypropylene group, and an oxybutylene group, and may be either random or block. n shows an average added mole number, and is 0-30, Preferably it is 0-10, Most preferably, it is 0-5 mol.
[0041]
Specific examples of the monohydric alcohol and derivatives thereof include monohydric alcohols such as methanol, ethanol, propanol, butanol, lauryl alcohol, myristyl alcohol, cetyl alcohol, stearyl alcohol, eicosanol, behenyl alcohol, phytol, oleyl alcohol; Abbreviation of oxyethylene) (n = 1) polyoxyalkylene monoalkyl ethers such as stearyl ether and POE (n = 3) cetyl ether; dialkyl ethers such as distearyl ether and stearyl cetyl ether; polyoxyalkylene dialkyl ethers and the like It is done.
[0042]
(4-2) Polyhydric alcohol and its derivatives
Examples of the polyhydric alcohol include glycols such as ethylene glycol, diethylene glycol, and polyethylene glycol; sugar alcohols such as sorbitol, mannitol, and glucose; erythritol, pentaerythritol, pentitol, glycerin, and derivatives thereof.
[0043]
Moreover, the condensate of these polyhydric alcohol or the condensate of monohydric alcohol and polyhydric alcohol is mentioned. Examples of the polyhydric alcohol condensate include the following polyglycerol and derivatives thereof.
[0044]
[Chemical 1]

[0045]
[Wherein n represents a number of 2 to 50, R represents a hydrogen atom or an acyl group having 2 to 31 carbon atoms, X represents an alkylene group having 2 to 4 carbon atoms, m ₁ , M ₂ And m _Three Are numbers from 0 to 30, respectively. ].
[0046]
Examples of the condensate of monohydric alcohol and polyhydric alcohol include alkyl glyceryl ethers such as batyl alcohol, isostearyl glyceryl ether, and behenyl glyceryl ether. Moreover, alkyl polyglucosides, such as a decyl polyglucoside and a stearyl polyglucoside, are mentioned as a condensate of monohydric alcohol and sugar or sugar alcohol.
[0047]
Moreover, polyhydric alcohol fatty acid amides, such as N-lauroyl N-methyl glucamide and N-stearoyl N-methyl glucamide, are mentioned.
[0048]
In addition, alkylene oxide adducts of these polyhydric alcohols and derivatives may be mentioned. The alkylene oxide is preferably one or more selected from ethylene oxide, propylene oxide, and butylene oxide, and any of random addition and block addition But it ’s okay. The average number of added moles is 0 to 30, preferably 0 to 10, particularly preferably 0 to 5 mol.
[0049]
Among the above alcohol derivatives, in the case of a substance having a hydrophilic group and a hydrophobic group, those having an HLB of griffin of 10 or less are preferable, 8 or less is more preferable, and 5 or less is particularly preferable.
[0050]
(5) Amines or derivatives thereof
C1-C7 hydrocarbon groups such as monomethylamine, dimethylamine, trimethylamine, etc., preferably 1, 2 or tertiary lower amines having alkyl groups, C8-C30 hydrocarbon groups, preferably alkyl groups And amines such as polyamines such as 1, 2 or tertiary long-chain amines, diamines and triamines or salts thereof. Examples of the derivatives include quaternary ammonium salts, choline and salts thereof, and fatty acid salts of choline.
[0051]
(6) Amino acid or its derivative
Examples include D-type or L-type amino acids such as aspartic acid, threonine, serine, glutamic acid, glutamine, proline, glycine, alanine, cysteine, valine, methionine, isoleucine, leucine, tyrosine, phenylalanine, lysine, histidine, tryptophan, arginine. . In addition, derivatives such as ornithine, creatine, hydroxyproline, acylated glutamine and the like can be mentioned.
[0052]
(7) Protein or its derivative
Examples include peptides or polypeptides linked with amino acids such as glutathione and oxytocin, proteins and glycoproteins such as casein, keratin, hemoglobin, albumin and collagen, and enzymes that catalyze biological reactions.
[0053]
(8) Nucleic acid or its derivative
Examples include ribonucleic acid, deoxyribonucleic acid, degradation products thereof, nucleoside phosphates such as adenosine triphosphate, nucleotides of the structural unit, and the like.
[0054]
(9) Terpenes or their derivatives
Examples include terpenes such as orange oil, turpentine oil, peppermint oil, eucalyptus oil, camphor (d-camphor), dl-camphor, 1-menthol, dl-menthol and thymol, or derivatives thereof.
[0055]
(A) Natural extract
Examples include natural extracts such as hinokitiol, chitin, chitosan, chlorella degradation products, and wood vinegar.
[0056]
(B) Fermentation product
Examples include fermentation products obtained by amino acid fermentation, mixed organic acid fermentation, glycerol fermentation, penicillin fermentation and the like.
[0057]
(C) Fermentation residue
Examples include the fermentation residue (B) and the residue in microbial culture.
[0058]
(I) Vitamins
Thiamine, riboflavin, nicotinic acid, pantothenic acid, pyridoxine, biotin, folic acid, vitamin B ₁₂ And water-soluble vitamins such as ascorbic acid or these coenzymes, and fat-soluble vitamins such as vitamins A, D, E, and K.
[0059]
Among these, a substance selected from the above (1), (2), (3), and (4) is preferable, a substance selected from (1), (3), and (4) is more preferable, and a substance selected from (4) is selected. Particularly preferred are materials that are
[0060]
The plant vitality agent of the present invention may consist of the above-mentioned substance of the present invention alone or may contain other components. Examples of other components include surfactants and chelating agents. The surfactant and the chelating agent may satisfy the above-mentioned photosynthesis rate improvement degree, the requirements (a) to (e), and the standard photosynthesis rate improvement degree.
[0061]
The surfactant is preferably one or more selected from nonionic surfactants, cationic surfactants, amphoteric surfactants and anionic surfactants.
[0062]
Nonionic surfactants include sorbitan fatty acid esters, polyoxyalkylene sorbitan fatty acid esters, polyoxyalkylene fatty acid esters, glycerin fatty acid esters, polyoxyalkylene glycerin fatty acid esters, polyglycerin fatty acid esters, polyoxyalkylene polyglycerin fatty acid esters, Examples thereof include sugar fatty acid esters, resin acid esters, polyoxyalkylene resin acid esters, polyoxyalkylene alkyl ethers, polyoxyalkylene alkyl phenyl ethers, alkyl (poly) glycosides, polyoxyalkylene alkyl (poly) glycosides, and the like. Preferably, an ether group-containing nonionic surfactant containing no nitrogen atom and an ester group-containing nonionic surfactant are used.
[0063]
Examples of the anionic surfactant include carboxylic acid-based surfactants, sulfonic acid-based surfactants, sulfate ester-based surfactants, and carboxylic acid-based surfactants. Examples of the carboxylic acid-based surfactant include fatty acids having 6 to 30 carbon atoms or salts thereof, polyvalent carboxylates, polyoxyalkylene alkyl ether carboxylates, polyoxyalkylene alkylamide ether carboxylates, rosinates, Dimer acid salt, polymer acid salt, tall oil fatty acid salt and the like can be mentioned. Examples of the sulfonic acid surfactant include alkylbenzene sulfonate, alkyl sulfonate, alkyl naphthalene sulfonate, naphthalene sulfonate, diphenyl ether sulfonate, alkyl naphthalene sulfonate condensate, and naphthalene sulfonic acid condensation. Examples include physical salts. Examples of sulfate surfactants include alkyl sulfates, polyoxyalkylene alkyl sulfates, polyoxyalkylene alkyl phenyl ether sulfates, tristyrenated phenol sulfates, polyoxyalkylene distyrenated phenol sulfates. And alkyl polyglycoside sulfate. Examples of the phosphate ester surfactant include alkyl phosphate ester salts, alkylphenyl phosphate ester salts, polyoxyalkylene alkyl phosphate ester salts, and polyoxyalkylene alkylphenyl phosphate ester salts. Examples of the salt include metal salts (Na, K, Ca, Mg, Zn, etc.), ammonium salts, alkanolamine salts, aliphatic amine salts, and the like.
[0064]
Examples of amphoteric surfactants include amino acids, betaines, imidazolines, and amine oxides. Examples of the amino acid system include acyl amino acid salts, acyl sarcosine salts, acyloylmethylaminopropionates, alkylaminopropionates, acylamidoethylhydroxyethylmethylcarboxylates, and the like. Examples of the betaine series include alkyl dimethyl betaine, alkyl hydroxyethyl betaine, acylamidopropyl hydroxypropyl ammonia sulfobetaine, acylamidopropyl hydroxypropyl ammonia sulfobetaine, ricinoleic acid amidopropyl dimethyl carboxymethyl ammonia betaine, and the like. Examples of the imidazoline series include alkyl carboxymethyl hydroxyethyl imidazolinium betaine, alkyl ethoxy carboxymethyl imidazolium betaine, and the like. Examples of amine oxides include alkyldimethylamine oxide, alkyldiethanolamine oxide, alkylamidopropylamine oxide, and the like.
[0065]
The above surfactants may be used singly or in combination of two or more. The surfactant is preferably a highly hydrophilic surfactant in order to uniformly solubilize and disperse the active ingredient of the plant vitality agent. In the surfactant, the HLB of griffin is preferably 10 or more, more preferably 12 or more. Moreover, when these surfactant contains a polyoxyalkylene group, Preferably it has a polyoxyethylene group and the average added mole number is 1-50. More preferably, the average added mole number is 5 to 30, particularly preferably 10 to 30.
[0066]
Surfactants include ester group-containing nonionic surfactants, non-nitrogen-containing ether group-containing nonionic surfactants, amphoteric surfactants, carboxylic acid-based anionic surfactants, and phosphate-based anionic surfactants. One or more selected from agents are preferred. In particular, at least one selected from an ester group-containing nonionic surfactant and an ether group-containing nonionic surfactant not containing a nitrogen atom is preferable. In the plant vitality agent of the present invention, the weight ratio of the active ingredient (the substance whose photosynthesis rate improvement of the present invention is 5% or more) and the surfactant is surfactant / active ingredient = 0.01 to 100, and further 0. 0.05 to 50, particularly 0.1 to 30 is preferable from the viewpoint of efficiently infiltrating the active ingredient into the plant.
[0067]
Examples of chelating agents include aminopolycarboxylic acid chelating agents, aromatic and aliphatic carboxylic acid chelating agents, amino acid chelating agents, ether polycarboxylic acid chelating agents, and phosphonic acid chelating agents (for example, iminodimethylphosphonic acid (IDP)). ), Alkyldiphosphonic acid (ADPA), etc.), or dimethylglyoxime (DG), etc., which may be in the form of an acid or a salt of sodium, potassium, ammonium or the like.
[0068]
As aminopolycarboxylic acid chelating agent,
a) RNX ₂ Type compound
b) NX _Three Type compound
c) R-NX-CH ₂ CH ₂ -NX-R type compound
d) R-NX-CH ₂ CH ₂ -NX ₂ Type compounds and
e) X ₂ N-R'-NX ₂ All of the types and compounds of this type containing 4 or more X can be used. Wherein X is —CH ₂ COOH or -CH ₂ CH ₂ COOH represents, R represents a hydrogen atom, an alkyl group, a hydroxyl group, a hydroxyalkyl group or a substituent representing a known chelate compound of this kind, R ′ represents an alkylene group, a cycloalkylene group and a known chelate compound of this kind. Represents the group to represent. Typical examples of these include ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA), cyclohexanediaminetetraacetic acid (CDTA), nitrilotriacetic acid (NTA), iminodiacetic acid (IDA), N- (2-hydroxyethyl) iminodiacetic acid (HIMDA), diethylenetriaminepenta. Examples include acetic acid (DTPA), N- (2-hydroxyethyl) ethylenediaminetriacetic acid (EDTA-OH), glycol etherdiaminetetraacetic acid (GEDTA), and salts thereof.
[0069]
Examples of aromatic and aliphatic carboxylic acid-based chelating agents include citric acid, oxalic acid, glycolic acid, pyruvic acid or anthranilic acid, and salts thereof.
[0070]
Examples of amino acid chelating agents include glycine, serine, alanine, lysine, cystine, cysteine, ethionine, tyrosine or methionine, and salts and derivatives thereof. Furthermore, examples of the ether polycarboxylic acid-based chelating agent that can be used in the present invention include compounds represented by the following formula and similar compounds and salts thereof (particularly Na salts).
[0071]
[Chemical 2]

[0072]
The form of the plant vitality agent of the present invention may be any of liquid, flowable, paste, wettable powder, granule, powder, tablet, etc. When used diluted in water, the active ingredient concentration of the usual plant vitality agent Is sprayed on the leaves and roots of plants as an aqueous solution, aqueous dispersion or emulsion of 0.01 to 5000 ppm.
[0073]
This invention provides the vitality improvement method of a plant which consists of supplying the plant vitality agent of the said invention to a plant. Various means can be used as a method for supplying the plant vitality agent of the present invention to a plant. For example, powders and granules can be administered directly like solid fertilizers such as chemical fertilizers, diluted aqueous solutions can be sprayed directly onto plants such as foliage, stems and fruits, or injected into the soil or hydroponics And a method of diluting and supplying to a hydroponic solution or supply water that is in contact with the root, such as rock wool.
[0074]
Examples of plants that can be treated with the plant vital agent of the present invention include cucumbers, pumpkins, watermelons, melons, tomatoes, eggplants, peppers, strawberries, okras, green beans, broad beans, peas, green beans, corn, and the like. For leafy vegetables, Chinese cabbage, hornbill, cabbage, cauliflower, broccoli, cabbage, onion, leeks, garlic, rakkyo, leek, asparagus, lettuce, saladna, celery, spinach, garlic, parsley, honey bee, seri, udo, myoga , Fuki, perilla etc. Root vegetables include radish, turnip, burdock, carrot, potato, taro, sweet potato, yam, ginger, lotus root and the like. In addition, it can also be used for rice, wheat, and flowering plants.
[0075]
【The invention's effect】
The plant vitality agent of the present invention has no phytotoxicity to plants when treated at an appropriate concentration, and can be used for various crops in order to efficiently improve the vitality of the plant body. Further, according to the present invention, improvement of plant growth such as promotion of plant root survival, increase in weight, increase in SPAD value, increase in leaf area, increase in ascorbic acid concentration in leaf blades, decrease in nitrate concentration in leaf blades, etc. Be looked at.
[0076]
【Example】

Planted in a 50-well cell tray under the above conditions, transplanted to a pot 2 weeks after germination, and plant vital agents as shown in Tables 1 and 2 at intervals of once a week from 7 days, and “Otsuka OKF2” as a fertilizer component (Plant made by Otsuka Chemical Co., Ltd.) The plant vital agent mixed solution mixed with the 3000-fold diluted solution was treated with soil seven times in total. In addition, the density | concentration of the plant vital agent of a liquid mixture was as having shown to Table 1, 2, the remainder was water, and it was made to osmose | permeate soil by about 50 ml per 1 pot. On the third day after the completion of the seventh treatment, the apparent photosynthesis rate and the dark respiration rate are measured by the above method, the true photosynthesis rate is calculated, the photosynthesis rate improvement is calculated, and the relative value to the control group It showed in. In addition, in each of the test group and the control group, a plurality of individuals were prepared, and the true photosynthetic rate was measured three times for each of the three individuals arbitrarily extracted, and nine data were obtained for each group. The degree of photosynthetic rate improvement was calculated. The results are shown in Tables 1 and 2.
[0077]
In addition, for the same three individuals for which the photosynthetic rate improvement degree was calculated, on the third day after the completion of the seventh treatment, the SPAD value, the leaf area improvement degree, the leaf ascorbic acid concentration increase amount, and the leaf blade nitrate ion concentration The degree of reduction was measured by the method described above. Moreover, about 3 individuals different from these, the plant body weight (dry matter weight) increase amount was measured by the said method on the 3rd day after the completion | finish of the 7th process. These results are shown in Tables 1 and 2. The SPAD value is an average value measured 20 times for each individual (data number 60), and the other is an average value for three individuals (data number 3). . The values other than the SPAD value are relative to the control group.
[0078]
[Table 1]

[0079]
In addition, it was 18.7% when the standard photosynthetic-speed improvement degree was measured by the said method about this invention product 1-5.
[0080]
[Table 2]

[0081]
POE is an abbreviation for polyoxyethylene, and the numbers in parentheses are the average added moles of ethylene oxide (the same applies hereinafter).
[0082]
Example 2 <Soil treatment test for spinach>
Variety: Spinach "Esper"
Cultivation container: 18cm (diameter) pot for cultivation
Used soil: Kureha Horticultural soil (manufactured by Kureha Chemical Co., Ltd.) [fertilizer component; N: P: K = 0.4: 1.9: 0.6 (g / culture soil 1 kg)]
Under the above conditions, 1.3 K (1.5 kg) of Kureha horticultural soil was used per pot. The treatment was started 12 days after sowing, and the soil was treated with a plant vital agent as shown in Tables 3 and 4 at intervals of once a week for a total of 5 times. The concentration of the plant vital agent was as shown in Tables 3 and 4, with the balance being water, and the treatment amount was about 150 ml per pot and infiltrated into the soil. On the third day after the end of the fifth treatment, the apparent photosynthetic rate and the dark respiration rate are measured by the above method, the true photosynthetic rate is calculated, the photosynthetic rate improvement is calculated, and the relative value with respect to the control group It showed in. In addition, in each of the test group and the control group, a plurality of individuals are prepared, and the true photosynthetic rate is measured three times for each of the three individuals arbitrarily extracted, and nine data are obtained for each group. The degree of photosynthetic rate improvement was calculated. The results are shown in Tables 3 and 4.
[0083]
In addition, for the same three individuals for which the photosynthetic rate improvement degree was calculated, on the third day after the completion of the fifth treatment, the SPAD value, the leaf area improvement degree, the leaf ascorbic acid concentration increase amount, and the leaf blade nitrate ion concentration The degree of reduction was measured by the method described above. In addition, for three different individuals, the increase in plant weight (dry matter weight) was measured by the method described above on the third day after the completion of the fifth treatment. These results are shown in Tables 3 and 4. The SPAD value is an average value measured 20 times (data number 60) for each individual, and the others are average values of 3 individuals (data number 3). . The values other than the SPAD value are relative to the control group.
[0084]
[Table 3]

[0085]
[Table 4]

Claims (5)

[I] a surfactant, and, [II] a is an a substance below photosynthetic rate increased degree calculated by equation 5% or more, (4) dialkyl ether or a derivative thereof, (5) fatty acid choline salts, (6) glutamic acid and amino acids or derivatives thereof selected from the group consisting of leucine, (I) pyridoxine, plant-activating agent comprising one or more materials selected from vitamins selected from the group consisting of biotin and vitamin B ₁₂ .
Photosynthesis rate improvement (%) = [(P ₁ −P ₀ ) / P ₀ ] × 100
P ₀ : True photosynthetic rate when not using a plant vital agent (mgCO ₂ / dm ² / h)
P ₁ : True photosynthesis rate (mgCO ₂ / dm ² / h) when a substance that becomes a plant vital agent is used [I] surfactant, and [II] a degree of photosynthesis rate improvement calculated by the following formula is 5% or more, and satisfies at least one of the following (a) to (e): (4) dialkyl ether Le or derivatives thereof, (5) fatty acid salts of choline, (6) amino acids or derivatives thereof selected from the group consisting of glutamic acid and leucine, from vitamins selected from the group consisting of (I) pyridoxine, biotin and vitamin B ₁₂ Plant vitality agent containing one or more substances selected.
Photosynthesis rate improvement (%) = [(P ₁ −P ₀ ) / P ₀ ] × 100
P ₀ : True photosynthetic rate when not using a plant vital agent (mgCO ₂ / dm ² / h)
P ₁ : True photosynthesis rate (mgCO ₂ / dm ² / h) when a substance that becomes a plant vital agent is used
(A) Increase in chlorophyll meter value is 2 points or more (b) Increase in plant weight (raw weight or dry weight) is 10% or more (c) Increase in leaf area of plant is 5% or more (d) Leaf blade Ascorbic acid concentration increase is 5% or more (e) Leaf blade nitrate ion concentration decrease is 10% or more   The plant vital agent according to claim 2, wherein the substance satisfies two or more of (a) to (e).   The plant vitality agent according to any one of claims 1 to 3, comprising a chelating agent.   The plant vitality agent according to any one of claims 1 to 4, which is used as a plant growth enhancer.