JP3524401B2 - 酵素抗体複合体およびその製造方法 - Google Patents

酵素抗体複合体およびその製造方法

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Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は担体を介して共有結
合した酵素抗体複合体に関するもので、その複合体は免
疫組織化学、エンザイムイムノアッセイなどの免疫測定
に利用される。
【0002】
【従来の技術】近年の免疫化学の進歩により、抗原抗体
反応を用いて微量の物質を感度良く検出する免疫測定が
広く用いられるようになった。例えば免疫組織化学の分
野においては、組織切片上の特定の物質をそれを認識す
る抗体を用いて検出することができる。その手法は、ま
ず組織切片上で検出すべき特定の物質を特異的に認識す
るする抗体(第一抗体)を反応させる。その際、第一抗
体に酵素を結合させておけば、その酵素活性により着色
性の基質を発色させることで特定の物質の検出が可能と
なる。しかしながら、実際にはこのシステムでは感度が
低いことと多種の第一抗体に酵素を標識することが現実
には多大な労力を要し困難なことから一般的ではない。
【0003】そのため通常は第一抗体との反応後、第一
抗体と特異的に結合する第二抗体と反応させる。このよ
うにすれば第一抗体の動物種に応じて数種の第二抗体を
用意すればよい。その際、第二抗体に直接酵素を結合さ
せた標品を用いれば、その酵素活性により基質を発色さ
せて検出することができる。しかしながら、このシステ
ムでもなお感度が低いために、工夫がなされている。
【0004】通常は複数のビオチンを結合させた第二抗
体を使用し、さらにビオチンと特異的に結合するストレ
プトアビジンに酵素を結合させたもの(酵素試薬)を反
応させることにより、第二抗体一分子当たりに結合する
酵素数を増幅させて特定の物質を良好な感度で検出す
る。また、予めストレプトアビジンと酵素が多数結合し
た複合体を形成させておき、ビオチンが結合した第二抗
体と反応させる増幅方法も使われている。このように組
織切片上の特定の物質を抗体を用いて検出することは可
能である。その操作には、1)第一抗体との反応、2)
第二抗体との反応、3)酵素試薬との反応、4)発色、
の過程が必要である。この場合、もし高品質な酵素標識
第二抗体が得られれば、1)第一抗体との反応、2)酵
素標識第二抗体との反応、3)発色、と従来より一段階
少ない操作で染色を実施できる。
【0005】また、2種の抗体を用いたエンザイムイム
ノアッセイは、特定の物質を感度良く検出することを可
能にした。エンザイムイムノアッセイにより特定の物質
を検出するには以下の作業を要する。即ち1)特定の物
質と結合する抗体(第一抗体)をマイクロタイタープレ
ートあるいはポリスチレンビーズなどに固相化する。
2)次にアルブミンなどの蛋白質でプレートあるいはビ
ーズをブロッキングする。3)特定の物質が含まれる溶
液を加え、一定時間反応させる。4)酵素標識した特定
の物質に結合する抗体(第二抗体)を加え、一定時間反
応させる。5)酵素の基質を加え、その発色の程度を分
光光度計にて測定する。なお、それぞれの段階の間には
洗浄操作が含まれる。
【0006】特定の物質の量は、この物質に結合した第
二抗体の標識酵素の酵素活性と相関することから、発色
の程度により特定の物質が定量できる。ここで使用され
る抗体はモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体のい
ずれでもよい。ただし、モノクローナル抗体の場合は固
相化に用いる抗体と標識する抗体が特定の物質の異なる
部位に結合する性質のものを使用する必要がある。エン
ザイムイムノアッセイの場合は免疫組織化学と異なり、
第二抗体に直接酵素を標識し増幅操作は行わないのが通
常である。従って、その測定系の感度は酵素標識した第
二抗体の品質に強く依存する。
【0007】以上のように高品質な酵素標識抗体を得る
ことにより、免疫組織化学の分野においてはより少ない
操作で染色を行うことが可能となり、またエンザイムイ
ムノアッセイにおいてはより高感度の測定を行うことが
可能となる。
【0008】
【発明が解決しようとする課題】したがって、本発明の
目的は、高品質な酵素標識抗体を新たに提供することで
ある。
【0009】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、高品質な
酵素標識抗体を得るために酵素抗体複合体の製造方法に
ついて検討を行った結果、担体を介して酵素と抗体を結
合させることでその目的が達成されることを見出し、更
に研究を行い、遂に本発明の完成に至ったものである。
【0010】即ち、本発明は、マレイミド基あるいはチ
オール基を導入した1分子以上の酵素と、酵素にマレイ
ミド基を導入した場合にはチオール基を、また酵素にチ
オール基を導入した場合にはマレイミド基を導入した担
体がそれらを介して共有結合し、さらに前記複合体に残
存する少なくとも1個のアミノ基にマレイミド基を導入
し、抗体あるいは抗体断片上の還元して得たチオール基
を介して前記複合体のマレイミド基と共有結合した酵素
抗体複合体に関するものである。さらには、マレイミド
基あるいはチオール基を導入した酵素と、酵素にマレイ
ミド基を導入した場合にはチオール基を、また酵素にチ
オール基を導入した場合にはマレイミド基を導入した担
体を共有結合させる工程およびその複合体に残存する少
なくとも1個のアミノ基にマレイミド基を導入し、還元
した抗体をそのチオール基を介して共有結合させる工程
を含む酵素抗体複合体の製造方法に関するものである。
以下に本発明を詳細に説明する。
【0011】本発明は当初免疫組織化学、エンザイムイ
ムノアッセイの分野において使用できる酵素抗体複合体
について検討する過程でなされたものであるが、他の分
野に適用することに何ら制限はない。
【0012】本発明でいう担体とは少なくとも2以上の
アミノ基を有する物質であれば特別な制限はない。しか
し、免疫測定の感度を上げるには多数の酵素、抗体を担
体に結合させることが望ましい。従って、ある程度の大
きさの分子量でしかも多数のアミノ基を有することが必
要である。そのような目的を達成する担体の例として
は、多数のアミノ基を有するペプチドポリマー及び/又
は多糖類が挙げられ、更にはそれらの分子量が5,00
0〜500,000、さらに好ましくは10,000〜
300,000の分子量のものが適している。ただし、
上記の分子量の範囲は一応の目安を示したものであっ
て、液中で沈澱や沈降を生じないものであれば上記範囲
よりも大きな分子量のものでも使用可能であり、また、
本発明の目的が達成されるのであれば上記範囲よりも小
さい分子量のものでも使用可能である。
【0013】本発明においては、結合性を有する多数の
アミノ基を含有するペプチドが担体として適宜使用され
る。その1例としては、リジン、アルギニン、オルニチ
ン、グルタミン、各種塩基性アミノ酸等α−アミノ基、
ε−アミノ基その他を有するアミノ基を有するペプチド
が例示される。更にその具体例としては、ε−アミノ基
を有するリジンのポリマーであるポリリジンのほか、リ
ジンを多数有するとともに他のアミノ酸も有する各種ペ
プチドが挙げられる。そして後者のペプチドポリマーの
例として、リジンとグリシンのランダムコポリマー、リ
ジンとセリンのランダムコポリマー、リジンとグルタミ
ン酸のランダムコポリマーなどが挙げられ、各種分子量
のものが市販されている。
【0014】一方、アミノ基を導入した多糖類も、本発
明における担体として使用することができる。多糖類と
しては、デキストラン、アガロース、デキストリン、D
EAE(又はDEAA、TEAE、CM)−セルロー
ス、可溶性澱粉等が例示される。アミノ基の導入は、公
知の方法にしたがって、多糖類の骨格にアミノ基を導入
することによって行われる。例えば、アミノデキストラ
ンは、デキストランを原料として公知の方法によって調
製することができる。その例として、例えば、アミノデ
キストランを過ヨウ素酸ナトリウムで酸化してアルデヒ
ド基を生成させた後、ジアミンと反応させ水素化ホウ素
ナトリウムにて還元することにより、調製できる。その
分子量は原料のデキストランの分子量を選択することに
より所望する分子量のアミノデキストランが得られる。
【0015】本発明において使用する酵素としては、1
以上のアミノ基を有するものであればすべての酵素が使
用可能であって、免疫測定法において一般的に使用され
る酵素が適宜使用される。その非限定例としては次のも
のが挙げられる:西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカ
リフォスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、グルコー
スオキシダーゼ等。
【0016】更に本発明においては、これらの酵素にマ
レイミド基を導入するが、そのためには1分子中にマレ
イミド基とスクシンイミドエステル基を有する化合物を
使用する。例えば、一端にマレイミド基を、他端にN−
ハイドロキシスクシンイミド基を有する二価の架橋剤を
用いればよい。例えば、N-(6-Maleimidocaproyloxy)suc
cinimide(EMCS)、N-(4-Maleimidobutyryloxy)suc
cinimide(GMBS)などである。これらの物質は酵素
のアミノ基と結合して酸アミド結合(−NH−CO−)
を形成して酵素と結合する一方、マレイミド基が導入さ
れる(このマレイミド基は、後述するように、担体に導
入されたチオール基と反応してチオエーテル結合(−S
−)を形成して担体に結合する)。
【0017】1分子中にマレイミド基とスクシンイミド
基を併有する化合物としては、上記したEMCS、GM
BSのほか、次のものが非限定的に例示される:N−ス
クシンイミジル−N−マレイミドアセテート(N-Succin
imidyl-N-maleimidoacetate)、N−スクシンイミジル
−4−(N−マレイミド)ブチレート(N-Succinimidyl
-4-(N-maleimido) butyrate)、N−スクシミジル−6−
(マレイミド)ヘキサノエート(N-Succimidyl-6-(N-ma
leimido) hexanoate、N−スクシンイミジル−4−(N
−マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カルボキシ
レート(N-Succinimidyl-4-(N-maleimidomethyl) cyclo
hexane-1-carboxylate)、N−スクシンイミジル−m−
(N−マレイミド)ベンゾエート(N-succinimidyl-m-
(N-maleimido) benzoate)、N−スクシミジル−p−
(N−マレイミドフェニル)−4−ブチレート(N-Succ
inimidyl-p-(N-maleimidophenyl)-4-butyrate)、N−ス
ルホスクシンイミジル−4−(N−マレイミドメチル)
シクロヘキサン−1−カルボキシレート(N-Sulfosucci
nimidyl-4-(N-maleimidomethyl) cyclohexane-1-carbox
ylate)、N−スクシンイミジル−m−(N−マレイミ
ド)ベンゾエート(N-Succinimidyl-m-(N-maleimido) b
enzoate)、N−スルホスクシンイミジル−p−(N−マ
レイミドフェニル)−4−ブチレート(N-Sulfosuccini
midyl-p-(N-maleimidophenyl)-4-butyrate) など。
【0018】また本発明においては、上記と異なり、酵
素にチオール基を導入する場合も包含されるが、その場
合、酵素にチオール基を導入するには、S-acetylmercap
tosuccinic anhydride、N-Succinimidyl 3-(2-pyridyld
ithio)propionate(SPDP)などを用いる方法が知ら
れている。これらの試薬は酵素のアミノ基と反応しブロ
ックされたチオール基が酵素に導入される。その後、S-
acetylmercaptosuccinic anhydrideを用いた場合にはHy
dorxylamine、SPDPを用いた場合にはDTTで処理
することによりチオール基をブロックしている保護基を
除去し、チオール基を生成する。
【0019】担体にマレイミド基、チオール基を導入す
る方法は、酵素にそれらを導入する方法と何ら変わりは
ない。マレイミド基とチオール基は速やかに反応して共
有結合する。従って、マレイミド基を導入した酵素とチ
オール基を導入した担体を混合することにより、両者は
共有結合する。チオール基を導入した酵素とマレイミド
基を導入した担体も全く同様である。担体を酵素と結合
させる際、後に抗体とも結合させるため担体に少なくと
も1以上のアミノ基を残存させるようにマレイミド基、
チオール基を導入する必要がある。この条件の設定には
特別な困難は伴わず、例えばマレイミド基、チオール基
を導入する際に用いる試薬のモル数を担体のアミノ基の
モル数より少なくすればよい。
【0020】本発明でいう抗体はポリクロナール抗体、
モノクロナール抗体のいずれでもよい。抗体の重鎖はS
−S結合により重鎖同士が結合しており、その結合は還
元剤にて切断されチオール基を生じる。還元剤としては
メルカプトエタノール、メルカプトエチルアミンなどが
あげられる。また、抗体はペプシンによる消化でF(ab')
2断片を生じる。F(ab')2も上記還元剤によりS−S結合
が切断されFab'となりチオール基が新たに生じる。これ
らのチオール基は抗体の抗原結合には関与せず、しかも
抗原結合部位の近傍には存在しないためこのチオール基
を介して他の物質と結合しても抗原への結合性が失われ
ることはない。抗体断片としては、F(ab')2のほか、Fa
b'、F(abc')2、Fabc'等も使用することができる。
【0021】酵素が結合した担体にマレイミド基を導入
する方法は、上述したとおりである。マレイミド基を導
入した酵素結合担体と、還元することによりチオール基
を生成した抗体あるいは抗体断片は両者を混合すること
により容易に共有結合させることができ、それにより抗
体を介した酵素抗体複合体が完成する。
【0022】本発明の実施態様のひとつとして、ポリ−
L−リジンを担体として用い、マレイミド基を導入した
酵素を用いた場合の酵素抗体複合体の製造について、以
下に概説する。
【0023】 チオール基結合担体の作成 ポリ−L−リジン含有液にS−アセチルメルカプトエチ
ルコハク酸無水物を加えて反応させた後、ヒドロキシル
アミンを反応させ、担体にチオール基を導入する(担体
−SHの作成)。但し、担体はすべてチオール化するの
ではなく、いくつかのアミノ基は遊離のまま残してお
く。
【0024】 マレイミド基結合ペルオキシダーゼの
作成 西洋ワサビペルオキシダーゼ(POD)にEMCSを反
応させ、マレイミド基結合ペルオキシダーゼ(M−PO
D)を作成する。
【0025】 POD−ポリLリジン複合体の作成 チオール基結合担体とM−PODとを混合して4℃、1
8時間反応させることにより、複合体(担体−SH−M
−POD)を作成する。この反応により、上記したSH
−M−PODのグループ、SHのみのグループが導入さ
れるほか、何も導入されないフリーのアミノ基を有する
担体(複合体)が得られる。
【0026】 マレイミド基結合前記複合体の作成 前記複合体にEMCS溶液を加えて両者を反応させ、前
記複合体の遊離のアミノ基の一部にマレイミド基を導入
する。この反応により、SH−M−PODグループ、更
にMのみのグループが導入されるほか、何も導入されな
いフリーのアミノ基を残存せしめたままの担体(複合
体)が得られる。
【0027】 還元した抗体断片の作成 ヤギ抗ウサギIgGをペプシン処理してそのF(ab')2
片を得、これにシステアミンを反応させて還元した抗体
断片(SH−Fab')を得る。
【0028】 酵素抗体複合体の作成 還元した抗体断片とで得た複合体とを混合して反応さ
せることにより、担体に結合したマレイミド基の多数に
断片(SH−Fab')を導入し、酵素抗体複合体を得
る。この反応により、SH−M−POD、Mの各グルー
プが導入され更にMの一部にはS−Fab'が導入され
るほか、何も導入されないフリーのアミノ基を残存せし
めたままの担体(酵素抗体複合体)が得られる。
【0029】本発明に係る酵素抗体複合体は、上記した
構造を採ることにはじめて成功したものであり、そのた
め、先ず、抗体(M−S−Fab')の数が多くて抗原
と結合する確率がきわめて高くなり、その結果、感度が
きわめて高くなり、また、標識酵素(SH−M−PO
D)の数が多いため、たとえごく一部の抗体しか抗原に
結合しなくとも、多数の標識酵素がそれには結合してい
るために(換言すれば、シグナルが多いために)これを
発色せしめた場合、きわめて強い発色が得られ、この点
でも感度がきわめて高くなる。したがって、本発明によ
れば、ごく微量の試料、非常に希釈された試料であって
も、正確にその分析をすることができるという著効が奏
される。
【0030】
【実施例】以下に本発明を更に詳細に説明するために実
施例を記載するが、本発明はこれら実施例に限定される
ものではない。
【0031】
【実施例1】(酵素担体複合体の製造)マレイミド基結
合ペルオキシダーゼを次のように調製した。1.2ml
の0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.5)に溶
解した16mgの西洋ワサビペルオキシダーゼに300
μlのDMFに溶解した5mgのEMCSを加え、室温
で30分反応させた。その後、セファデックスG25
(ファルマシア製)にてゲルろ過を行い403nmの吸
光度を測定し、そのピークを集め限外濾過にて濃縮し
た。
【0032】次に、チオール基結合ポリリジンを以下の
通り調製した。880μlの0.1Mりん酸緩衝液に溶
解した4.4mgのポリLリジンハイドロブロマイド
(シグマ社製、分子量120000)に20μlのDM
Fに溶解した3.2mgのS-acetylmercaptosuccinic a
nhydrideを加え、30℃、20分間反応させた。その
後、200μlの0.1Mトリス緩衝液(pH7)及び
1M hydoxylamine(pH7)、20μlのEDTAナ
トリウム溶液(pH7)を加え、30℃、5分間反応さ
せた。次に反応液をセファデックスG25にてゲルろ過
し、230nmの吸光度のピークを集め、限外ろ過にて
濃縮した。
【0033】マレイミド基結合ペルオキシダーゼとチオ
ール基結合ポリLリジンを混合し4℃、18時間反応さ
せた。反応物をウルトロゲルAcA44(BIOSEP
RA社製)にてゲルろ過し、各分画の403nmの吸光
度を測定した。西洋ワサビペルオキシダーゼとポリLリ
ジンの複合体は高分子画分に存在した。
【0034】
【実施例2】(酵素抗体複合体の製造1)1.5mlの
0.1Mりん酸ナトリウム緩衝液(pH7.5)に溶解
した5mgの西洋ワサビペルオキシダーゼとポリLリジ
ンの複合体に375μlのDMFに溶解した15mgの
EMCSを加え室温で30分間反応させた。反応物をセ
ファデックスG25を用いたゲルろ過にて分離し、40
3nmのピークを分取、限外ろ過にて濃縮した。
【0035】次に、2.3mlの0.1Mりん酸ナトリ
ウム緩衝液(pH6)に溶解した23mgのヤギ抗ウサ
ギIgGに0.1M cysteamine hydrochlorideを31
1μl加え37℃、1.5時間反応させた。反応物はセ
ファデックスG25にてゲルろ過し、280nmのピー
クを集め限外ろ過にて濃縮した。これらの濃縮物を混合
し、4℃、18時間反応させた。反応物をウルトロゲル
AcA44にてゲルろ過し、各分画の280nm、40
3nmの吸光度を測定した。両波長の吸収を持つ高分子
量画分が酵素抗体複合体であった。
【0036】
【実施例3】(酵素抗体複合体の製造2)1.2mlの
0.1Mりん酸ナトリウム緩衝液(pH7.5)に溶解
した2mgの西洋ワサビペルオキシダーゼとポリLリジ
ンの複合体に300μlのDMFに溶解した15mgの
EMCSを加え室温で30分間反応させた。反応物をセ
ファデックスG25を用いたゲルろ過にて分離し、40
3nmのピークを分取、限外ろ過にて濃縮した。
【0037】ヤギ抗ウサギIgGは、公知の方法によ
り、そのF(ab')2断片を調製した。1mlのりん酸ナト
リウム緩衝液(pH6)に溶解した5mgのヤギ抗ウサ
ギIgGF(ab')2に0.1M cysteamine hydrochloride
を111μl加え37℃、1.5時間反応させた。反応
物はセファデックスG25にてゲルろ過し、280nm
のピークを集め限外ろ過にて濃縮した。これらの濃縮物
を混合し、4℃、18時間反応させた。反応物をウルト
ロゲルAcA44にてゲルろ過し、各分画の280n
m、403nmの吸光度を測定した。両波長の吸収を持
つ高分子量画分が酵素抗体複合体であった。
【0038】
【実施例4】(免疫組織化学における実施例3で調製し
た酵素抗体複合体と従来法で調製した酵素標識抗体の比
較)第一抗体としてウサギ抗S−100ポリクローナル
抗体(ニチレイ)を用い、胃の組織切片の染色を行っ
た。まず、組織を薄切しスライドに付着させた。その
後、脱パラフィン処理及び脱ペルオキシダーゼ処理を行
い上記第一抗体と室温で1時間反応させた。PBSでよ
くすすいだ後、第二抗体を滴下した。第二抗体は実施例
3で作製したものを2μg/mlの濃度で用いた。ま
た、従来法でペルオキシダーゼ標識した抗体も同濃度で
使用した。標識方法は酵素免疫測定法第3版医学書院p
86〜92に従い、用いた原料及び試薬はすべて実施例
3と同様のものを用いた。これらの第二抗体とは室温で
30分間反応させた。
【0039】さらに、ストレプトアビジン・ビオチン法
(SAB法)とも比較するため、第二抗体としてビオチ
ン標識抗ウサギポリクローナル抗体(ニチレイ)とも反
応させた。その場合、第二抗体と10分間反応させた
後、洗浄しペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジン
(ニチレイ)を滴下、5分間反応させた。その後いずれ
の場合もよく洗浄し、基質溶液(ジアミノベンチジン、
過酸化水素)を滴下し反応させ精製水で洗浄、封入を行
い顕微鏡にて検鏡した。その結果を下に示した。実施例
3で作製した酵素抗体複合体は直接それらを標識したも
のと比較して染色強度が格段に優れており、また増幅操
作をおこなうSAB法よりも優れていた。得られた結果
を下記表に示す。
【0040】 A:従来法の酵素標識抗体 B:実施例3の酵素抗体複
合体 C:ストレプトアビジン・ビチオン法
【0041】
【実施例5】(エンザイムイムノアッセイにおける実施
例3で調製した酵素抗体複合体と従来法で調製した酵素
標識抗体の比較)96穴マイクロタイタープレートにヤ
ギ抗ウサギIgGを10μg/mlの濃度で100μl
を加え、室温で2時間インキュベートした。生理食塩水
で洗浄後、1%ウシ血清アルブミンを200μl加え2
時間インキュベートした。所定の濃度(0〜200pg
/ml)のウサギIgGを100μl加え2時間インキ
ュベートし、生理食塩水で洗浄後、実施例3で調製した
酵素抗体複合体あるいは従来法で調製した酵素標識抗体
をいずれも抗体量換算で2μg/mlの濃度で100μ
l加え30分インキュベートした。さらに生理食塩水で
洗浄し、基質溶液(テトラメチルベンチジン、過酸化水
素)を100μl加え15分反応させ、1N硫酸50μ
l加えて反応を止めた。呈色の程度をマイクロプレート
リーダーで測定した。結合は図1の通りで、実施例3で
調製した酵素抗体複合体が従来法で調製した酵素標識抗
体と比較して著しく優れていた。
【0042】図1は上記の結果を示すものである。図
中、横軸はウサギIgGの濃度、縦軸は450nmの吸
光度を示すものである。○は実施例3で作製した酵素抗
体複合体、●は従来法で作製した酵素標識抗体である。
【0043】
【発明の効果】本発明の酵素抗体複合体は、特に免疫組
織化学、エンザイムイムノアッセイにおける酵素標識抗
体(第1抗体はもとより第2抗体としても)として有用
であり、感度の高い免疫測定を可能にするものである。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明の実施例5の結果を示す図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 平3−158758(JP,A) 特開 平2−201162(JP,A) 特開 平3−89165(JP,A) 特開 平3−89164(JP,A) 特開 平2−66459(JP,A) 特開 昭61−205863(JP,A) 特開 昭63−101754(JP,A) 特開 昭61−13156(JP,A) 国際公開90/013029(WO,A1) (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) G01N 33/535

Claims (7)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 担体として分子量が5,000〜50
    0,000のポリリジン又はアミノデキストランを用
    い; (1)マレイミド基を導入した1分子以上の酵素とチオ
    ール基を導入した担体とをこれらの基を介して共有結合
    し; (2)上記(1)によって得た酵素−担体複合体に残存
    する少なくとも1個のアミノ基にマレイミド基を導入
    し; (3)還元することによって得た抗体あるいは抗体断片
    上のチオール基を介して上記(2)によって得た酵素−
    担体複合体のマレイミド基と共有結合してなること; を特徴とする酵素−担体−抗体複合体。
  2. 【請求項2】 請求項1の(1)において、チオール基
    を導入した1分子以上の酵素とマレイミド基を導入した
    担体とをこれらの基を介して共有結合してなること、を
    特徴とする請求項1に記載の複合体。
  3. 【請求項3】 担体が10,000〜300,000の
    分子量を有するものであること、を特徴とする請求項1
    又は2に記載の複合体。
  4. 【請求項4】 抗体断片が抗体のF(ab’)2である
    こと、を特徴とする請求項1〜3のいずれか1項に記載
    の複合体。
  5. 【請求項5】 酵素が、西洋ワサビペルオキシダーゼ、
    アルカリフォスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、グ
    ルコースオキシダーゼから選ばれる少なくともひとつで
    あること、を特徴とする請求項1〜4のいずれか1項に
    記載の複合体。
  6. 【請求項6】 請求項1〜5のいずれか1項に記載の複
    合体を含有すること、を特徴とする免疫測定用キット。
  7. 【請求項7】 アミノ基を有する担体を用い; (1)マレイミド基又はチオール基を導入した酵素と担
    体とを共有結合して、酵素−担体複合体を形成せしめ; i)その際、マレイミド基を導入した酵素の場合は、チ
    オール基を導入した担体とチオール基を介して担体に酵
    素を共有結合し;あるいは、 ii)チオール基を導入した酵素の場合は、マレイミド基
    を導入した担体とマレイミド基を介して担体に酵素を共
    有結合し; (2)上記(1)によって得た酵素−担体複合体に残存
    する少なくとも1個のアミノ基にマレイミド基を導入
    し;そして、 (3)還元することによって得た抗体あるいは抗体断片
    上のチオール基を介して上記(2)によって得た酵素−
    担体複合体のマレイミド基を共有結合すること; を特徴とする酵素−担体−抗体複合体の製造方法。
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