JP3088983B2 - 上皮細胞に特異的な成長因子をコードするdna - Google Patents
上皮細胞に特異的な成長因子をコードするdnaInfo
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Description
知の繊維芽細胞成長因子(FGFs)を含む因子ファミリー
に類似したポリペプチド成長因子の単離に関する。ま
た、本発明は新規な成長因子をコードするメッセンジャ
ーRNA(mRNA)からの、相補型DNA(cDNA)セグメ
ントの構築に関する。更に、本発明はこのようなDNA
セグメントの生成物を組換え細胞によって合成すること
に関しする。また、この成長因子をコードするDNAの
同定およびクローニングによって可能になった、ある種
の他の新規な生産物の製造および使用に関する。
られる。 aFGF; 酸性繊維芽細胞成長因子 bFGF; 塩基性繊維芽細胞成長因子 EGF ; 上皮成長因子 HSAC; ヘパリン- セファロース・アフィニティー クロマトグラフィー kb ; キロ塩基 kDa ; キロダルトン KGF ; ケラチン細胞成長因子 NaDodSO4 /PAGE ; ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)/ポリアクリルアミド・ ゲル電気泳動 RP- HPLC ; 逆相高速液体クロマトグラフィー TGFα;トランスフォーミング成長因子
である。これら大きな影響力を有する分子は、一般に一
つの細胞型から放出され、他の細胞型の増殖に影響する
ように作用する(後述する実験セクションI中の参照文
献I−1を参照のこと)。成長因子における興味は、そ
れが新形成中に含まれていることが示されたこと(後述
の実験セクションII中の参照文献II−2)によって高ま
っている。シミアン肉種ウイルス(simian sarcoma viru
s)のV-sisトランスフォーミング遺伝子は、血小板由来
成長因子のB鎖に対して相同性を有するタンパクをコー
ドする(I−1,I−2)。更に、多数のオンコジェン
が、成長因子レセプタをコードする遺伝子の相同性を有
している。こうして、成長因子およびそのレセプタ- 媒
介された信号形質導入経路に関する理解が進むことによ
って、正常細胞および腫瘍細胞の両方の成長メカニズム
に対する洞察が容易に提供される。
ファミリーの一つには、酸性繊維芽細胞成長因子(aFG
F)、塩基性繊維芽細胞成長因子(bFGF)、並びにhst
及びint-2 オンコジェンが含まれる。
はヘパリン結合特性を有している:即ち、aFGF(I
−20,I−21);bFGF(I−19,I−2
0);顆粒細胞/マクロファージ・コロニー刺激因子
(I−1);およびインターロイキン3(I−1)であ
る。これら夫々のポリペプチド因子はストローマル細胞
(stromal cells) によって産生される。このような因子
は、細胞外マトリックス中またはストローマル細胞の表
面を被覆するプロテオグリカン上に蓄積されるようであ
る(I−1,I−25)。それらの蓄積、放出および特
定の標的細胞との接触は、この相互作用によって調節さ
れるものと仮定されている(I−25,I−28)。
胞から誘導されることが広く認識されている。間充織組
織から誘導される上皮細胞増殖のエフェクターは知られ
ているが(I−1,I−2,I−3)、それらの分子同
定および構造は未だ解明されていない。
成長因子に関する知識不足の観点から、上皮細胞増殖の
調節メカニズムに関する改善された知識及び分析を提供
する方法、検定試薬(composition) 組成物およびバイオ
アッセイが必要であること、並びに究極的にはそれらの
中に含まれる因子に基づく新規な診断及び治療が必要で
あることが明らかである。
他の方法では製造され得ず、且つ上皮細胞増殖プロセス
に関係すると思われる間充織起源タンパク因子を製造す
る手段を開発するために、タンパクの単離法および組換
えDNA技術の適用を企画した。また、本発明はこれら
上皮細胞成長プロセスに関係する因子の分子メカニズム
の適用を企画した。
NA技術の開発に関し、その中には、上皮細胞に影響を
与え且つ他のペプチド因子の混入がない新規な成長因子
タンパクの製造が含まれる。また、新規なDNAセグメ
ントおよびバイオアッセイの方法も含まれる。
(aFGF)、塩基性繊維芽細胞成長因子(bFGF)、並びに
hst及びint-2 オンコジェンの関連生成物を含む公知の
成長因子ファミリーの構造的および/または機能的特徴
を有する新規なタンパクに関する。このFGFポリペプ
チドファミリーの新メンバーは、FGF類のヘパリン結
合特性を保持しているが、独特の標的細胞特異性を有す
るに至っている。この成長因子は上皮細胞に特異的で、
しかもケラチン細胞に対して特に活性であるように思え
る。従って、この新規な因子は「ケラチン細胞成長因子
(KGF)」と称する。KGFは繊維芽細胞に対する活
性が欠如しているにもかかわらず、見出だされたFGF
ポリポプチドファミリーの6番目のメンバーであるた
め、KGFはFGF−6とも称される。
たKGFまたはKGF様タンパク、並びにこれらタンパ
クの製造方法に関する。このような精製因子は、天然に
これらタンパクを分泌するヒト細胞を培養し、本発明に
従う単離方法を実施することによって製造され得る。こ
れらタンパクは、例えばKGFまたはKGF様ポリペプ
チドをコードするDNAセグメントの単離を導く生化学
的または生物学的研究に用いることができる。
パクをコードするこのようなDNAセグメントに関す
る。主要な態様において、本発明は以下に挙げる群から
なるKGF関連生成物をコードするDNAセグメントに
関する:ヒト胎児肺繊維芽細胞系M426 から抽出された
ポリアデニル化RNA由来の、ヒトcDNAクローン32
または42;これらクローンの組換え体または突然変異
体;および上記ヒトDNAセグメントの何れかにハイブ
リダイズさせることによって検出され得る関連DNAセ
グメントであって、KGF様タンパクまたはその一部を
コードするもの。
DNAセグメントは適切な宿主細胞の中で発現され得、
これによってKGFまたはKGF様タンパクを製造す
る。本発明はまた、本発明のDNAセグメントのセンス
・ストランドの転写の結果として産生されたmRNAに
関する。
び本発明のDNAを具備した組換えDNA分子に関す
る。これらの組換分子は、KGF・cDNAおよび以下
の何れかのベクターDNAを具備した分子によって例示
される:即ち、バクテリオファージλクローニングベク
ター(λpCEV9によって例示される);DNA配列
プラスミドベクター(例えば、pUC変種);バクテリ
ア遺伝子発現ベクター(例えばpKK233-2 );または
哺乳類遺伝子発現ベクター(pMMTのようなもの)で
ある。
のDNAで形質転換された細胞、好ましくは哺乳類細胞
を包含する。更に、本発明は、本発明のDNAで形質転
換された昆虫細胞、酵母細胞、並びに Escherichia col
i 及び B.subtilis のようなバクテリア細胞を含む細胞
を包含する。本発明のこの側面における他の態様に従え
ば、上記形質転換DNAは細胞内で発現され得、これに
より細胞内において、該DNAによってコードされるK
GFまたはKGF様タンパクを増大させる。
F翻訳生成物には、分泌のためのシグナル配列として働
き、且つ成熟KGF分子には存在しないN末端疎水性領
域が含まれる。本発明の遺伝子発現に係る側面での最も
好ましい態様においては、本発明のDNAによって形質
転換された細胞は、該DNAによってコードされるタン
パクを、ヒト胎児肺繊維芽細胞によって分泌される形態
(先端を切断された形)で分泌する。
って、或いは本発明のRNAの翻訳によって産生される
KGFまたはKGF様タンパクを意図している。好まし
くは、これらのタンパクは分泌された形(即ち、明瞭な
シグナル配列が欠如したもの)であろう。これらのタン
パク因子は機能的研究に用いることができ、また定性的
及び定量的レセプター結合アッセイのような更なる構造
的および機能的分析のために精製することができる。
大量に製造できることは、上皮細胞の成長の特異的刺激
が特に重要な状況において、その臨床適用の試験を可能
にするであろう。従って、本発明は例えば火傷の傷の治
療または移植された角膜組織の刺激を含むかかる症状の
治療に用いるための、KGFまたはKGF様ポリペプチ
ドを含有した調剤組成物を包含する。
様タンパクは、本発明の「未修飾の」DNA及びRNA
によるタンパク生産物、または修飾された若しくは遺伝
子工学的に加工されたタンパク生産物であろう。DNA
配列中における工学的変異の結果、修飾されたKGF様
タンパクは、天然に存在する対応の「天然型の」タンパ
クと比較して、アミノ酸配列中に一以上の相違を有する
であろう。本発明におけるこの側面に従えば、該修飾さ
れたKGF様タンパクには、KGFのアミノ酸配列およ
びFGFペプチドファミリーの少なくとも一つの他のメ
ンバーのアミノ酸配列を具備した「キメラ」分子が含ま
れるであろう。
子に関する類似の成功した研究の結果からすれば、この
ようなキメラKGF様ポリペプチドの開発によって、臨
床目的のKGF様ペプチドの優れた第二世代の形態が導
かれると思われる。これら修飾されたKGF様生産物
は、例えばより小さく、より安定、より強力、および/
または生産がより容易もしくは低コストであり得る。
関連遺伝子から産生された、mRNAのヒト細胞中での
発現およびタンパクを測定するための新規なバイオアッ
セイ法を包含する。このような態様の一つに従えば、本
発明のDNAは、関連mRNA誘導の定常状態レベルま
たは速度論を測定するためのプローブとして用い得る。
KGF関連cDNAクローンの入手が可能になることに
よって、この成長因子の異常発現が、形成異常および新
形成(例えば乾癬または悪性もしくは良性の上皮腫瘍)
を含む、上皮細胞の過剰成長に特徴付けられる臨床症状
中に含まれるか否かを決定することが可能になる。
によってコードされるペプチドに対して製造される新規
な抗体をも意図している。本発明のこの態様では、該抗
体はその起源においてモノクローナルまたはポリクロー
ナルであり、天然のKGF関連ポリペプチド、組換KG
F関連ポリペプチド、または化学合成によるKGF関連
ポリペプチドを用いて生成される。
ペプチドを含むKGF様タンパクに対して、好ましくは
該タンパクがその天然の(生物学的に活性な)形態であ
るときに、特異的に結合する。これらの抗体はKGFの
検出もしくは精製に用いることができ、或いはKGFも
しくはKGF様タンパク因子の検出もしくは精製のため
に用いることができる。本発明のこの側面における最も
好ましい態様においては、該抗体はKGFの成長促進活
性を中和し、これによってメカニズム研究を可能にする
と共に、最終的にはKGFの過剰レベルを含む臨床症状
の治療を可能にするであろう。
は、精製されたKGFまたはKGF様タンパクと、これ
らタンパクの調製方法に関する。本発明のこの側面にお
ける主要な態様は、約28 kd の見掛けの分子量によって
特徴付けられる均質KGFに関する。この見掛けの分子
量は、NaDodSO4 /PAGE中でのマイグレーシ
ョン、逆相高速液体クロマトグラフィー上での単一バン
ドとしての移動、および少なくとも約 3.4×104 q 位
/mg、好ましくは少なくとも約 3.2×105 単位/mgの
比活性に基づいている。ここで、1単位の活性は、以下
に概説する標準的なアッセイ条件下において、所定の上
皮細胞(ケラチン細胞)中での可能な最大のDNA合成
刺激の半分の刺激を生じるような量として定義される。
定するために、このような因子を検出するためのインデ
ィケータ細胞として、BALB/MK(I−6)と称されるク
ローンBALB/cマウスケラチン細胞系を用いた。これら
細胞は、血清を含む培地中においてさえ、その成長を外
来の上皮細胞マイトジェン源に依存している。これら細
胞のための化学的に定義された培地の開発によって、BA
LB/MKの増殖に必要な二つの主要なマイトジェン経路を
示すことが可能になっている。一つはインスリン様の成
長因子I(または高濃度のインスリン)を含み、他方は
表皮成長因子(EGF)、トランスフォーミング成長因
子α(TGFα)、酸性繊維芽細胞成長因子(aFG
F)または塩基性繊維芽細胞成長因子(bFGF)によ
って満足される(I−7)。
れに対する繊維芽細胞として NIH/3T3 を夫々用い、新
規上皮細胞特異性マイトジェンについて、種々のヒト細
胞系からの馴らし培地のアッセイを行った。これら本発
明のバイオアッセイによって、ヒト胎児肺繊維芽細胞系
から放出されたこのような新規成長因子の一つ(ここで
はケラチン細胞成長因子(KGF)という)を均質に精
製することが可能になった。
様活性のバイオアッセイは、以下のステップを具備して
いる: (i) マウスケラチン細胞(BALB/MK細胞)を集密するま
で培養成長させ、次いで血清フリーの培地中で24-72 時
間維持する; (ii)試験サンプルの添加に続き、酸沈殿可能なDNA中
への 3H−チミジンの取り込みによって、DNAの合成
刺激を測定する。
測定するために、DNAの合成刺激(試験サンプルを添
加しないときのチミジン取り込みのバックグラウンドに
対する合成刺激の比で表わしたもの)を、同じアッセイ
条件下においてケラチン細胞以外の細胞で観察された類
似の刺激と比較すればよい。このような比較において、
KGFマイトジェン活性は、繊維芽細胞に対するのとは
反対にケラチン細胞に対する顕著な特異性(少なくとも
約500 倍の刺激)を示す。また、他の典型的な上皮細胞
型に対するよりもケラチン細胞に対してより大きな活性
を示し、これは上記の場合より小さいが(少なくとも約
50倍)、重要なものである(より詳しいデータについて
は後述の表I−2を、またバイオアッセイ標準条件の詳
細については実験セクションIの材料および方法を参照
のこと)。
ジェン活性の単離を含むKGFの製造方法を用いること
によって、この分子の物理的および生物学的性質を詳細
に特徴付けるために十分な量が単離される。なお、この
方法は限外濾過、ヘパリン-セファロース・アフィニテ
ィーカラムクロマトグラフィー (HSAC)、並びに吸着
逆相高速液体クロマトグラフィー(RP-HPLC )または分
子篩HPLC(TSK-HPLC)を具備している。
(I−8)のような産生細胞からKGFを製造する方法
は、例えば以下のステップを具備している: (i) 血清含有培地から血清フリーの培地まで循環される
単層培養を用いた馴らし培地の調製と、その血清フリー
の産物を使用するまで-70 ℃で貯蔵すること; (ii)中間での緩衝液による稀釈(低分子量物質の除去を
容易にするため)を伴った幾つかの連続ステップで、1
0 kDaのカットオフ分子量を有する膜を用いた限外濾過
により濃縮し、続いて任意に-70 ℃で保存すること; (iii) NaCl濃度を徐々に増大させた溶出液を用いて
行う、ポリマー支持体(例えばセファロース)に結合さ
れたヘパリン上でのアフィニティークロマトグラフィ
ー; (iv)10 kDaのカットオフ分子量をもった小スケール限
外濾過装置(例えばアミコン社から入手可能な Centric
on-10 ミクロ濃縮器)で、少なくとも10〜12倍に濃縮
し、-70 ℃で保存すること; 精製プロセスの次のステップは、下記のステップ(v) ま
たはステップ(vi)の何れかを具備している。 (v) 有機溶媒系での、先のHSACで得られた活性画分(0.
6 M NaClプール)の逆相HPLC;または (Vi)生理学的pHの緩衝水溶液中(例えば、Tris-HCl、
pH 6.8/0.5M NaCl)において、分子篩HPLC(例えばLK
Bから入手可能なTSK-G3000 SWガラスパックカラム)を
行ない、続いて-70 ℃で保存する。
ータは省略)から判断すると、上記TSKステップ(vi)
で調製された試料はRP-HPLCrで得られたものと殆ど同じ
純度である;しかし、TSKによると遥かに良好な活性
回収が得られる(後述の表I−1)。更に、TSK-精製さ
れたものは、RP-HPLC で精製されたものよりも高い比活
性を有している。上記 TSKプロセスで調製されたKGF
は、ナノモル以下の濃度で上皮細胞中のDNA合成を刺
激した。しかし、同程度もしくはより高濃度(5mM)に
おいて、繊維芽細胞または上皮細胞のDNA中へのチミ
ジン取り込みは全く誘導しなかった。該活性はRP-HPLC
ステップで用いられる酸、熱および溶媒に敏感であった
(感受性および製造法の詳細については、実験セクショ
ンIを参照のこと)。
て、精製KGFのアミノ末端から2-13位について、曖昧
さのないアミノ酸配列を以下のように決定した:Asn-As
p-Met-Thr-Pro-Glu-Gln-Met-Ala-Thr-Asn-Val (実験セ
クションI参照)。
リペプチドをコードするDNAセグメントが含まれる。
本発明のDNAは以下に挙げるDNAによって例示され
る:ヒト胎児肺繊維芽細胞系M426 から抽出したポリア
デニル化RNAから誘導されたヒトcDNAクローン32
及び49;これらクローンの組換え体または突然変異体;
これらDNAセグメントに対してハイブリダイズするこ
とによって検出され得る関連DNAセグメント。
Fアミノ酸配列の既知の部分に対応するcDNAクロー
ンを探査するために、Asn-Asp-Met-Thr-Pro-Glu-Gln-Me
t-Ala の9アミノ酸配列をコードする可能な全てのヌク
レオチド配列に基づいて、オリゴヌクレオチドプローブ
の二つのプールを作成した。ヒト胎児肺繊維芽細胞系M
426 から抽出された一次成長因子源であるポリアデニル
化RNAを用い、cDNAライブラリーをcDNAクロ
ーニングベクター(λpCEV9)中に構築した。32P
でラベルしたオリゴヌクレオチドを用いた該ライブラリ
ー(9×105プラーク)のスクリーニングによって、
両方のプローブにハイブリダイズする88個のプラーク
が同定された。
ーンのうち、一つのクローン(クローン49という)は3.
5 kbのcDNA挿入を有していたが、他のクローンは1.
8 kb〜2.1 kbに亘る挿入を有していた。小さい方のクロ
ーンの分析によって、幾つかの共通の制限酵素部位が明
らかになり、また代表的な小クローン(クローン32およ
びクローン49)の配列によって、それらのcDNAが重
なっていることが示された(図8)。この二つのcDN
Aの配列によって、完全なKGFをコードする配列を含
む 3.85 kbの連続配列が確立された。全長に亘る合成K
GFcDNAの配列についての、センス・ストランドの
DNAヌクレオチド配列、およびコードされる一次タン
パクの予想配列を図9〜図11に示した。
は、完全なKGFをコードする配列を具備したこれらセ
グメントの組換え形と同様に、本発明の最も好ましいD
NA類である。
列との類似性に基づくと、このcDNA配列から、一次
KGFおよび hst翻訳生成物はシグナル配列として作用
する疎水性N末端領域を含んでいることが明らかであ
る。従って、このN末端ドメインは、ヒト胎児繊維芽細
胞によって分泌される精製された成熟KGF分子中には
存在しない。
配列65-156及び162-189 の二つの主要な相同領域を、F
GFファミリーの他の全てのメンバーと共有する。これ
らは、異なるファミリーメンバーにおいて、短く且つ種
々の長さの非相同アミノ酸配列によって分離されてい
る。精製された形のKGFの配列には五つのシステイン
残基が含まれ、その二つはFGF関連タンパクファミリ
ーに共通して保持される。塩基性残基の五つの対は、K
GF配列の全てに亘って現れる。これと同じパターン
は、他のFGFファミリー中にも認められる。
ゲノムDNAのサザンブロット分析)において本発明の
DNAおよびRNA、特に最も好ましくは上記に列挙し
たDNAを用いることにより、過度の実験を行うことな
く、ゲノムcDNAライブラリーをスクリーニングして
本発明の範囲に入る他のKGF様DNAを見出だすこと
が可能であることが、当業者には明らかである。更に、
本発明のDNAをこのように用いることによって、制限
酵素長さの多形性(RFLPs )のようなKGF遺伝子、並
びにこの遺伝子または他の近隣遺伝子を含む遺伝病に関
連した遺伝子マーカーを同定し得る。
も含まれる。本発明のこの側面における主要な態様に従
えば、このような修飾DNAは、KGFおよび他のGF
Gペプチドファミリーの少なくとも一つのアミノ酸配列
セグメントを含むKGF様タンパクをコードする。こう
して、例えばKGFの分泌型と他のFGF関連タンパク
の類似位置との間には何等顕著なN末端相同性がないか
ら、新規な構造的及び機能的性質を有するポリペプチド
は、FGFファミリーにおける他のポリペプチドの異な
ったN末端セグメントをコードするDNAセグメント
を、その通常のNH2 - 末端配列の代りにKGF・DN
Aにグラフトすることにより生成され得る。
キメラは、KGF・NH2 - 末端ドメインが、その独特
の標的細胞特異性を説明するに十分であるか否かを決定
するために有用である。また、キメラの研究は、どのド
メインがその生物学的活性に対するヘパリンの異なった
影響に寄与するかに関する洞察を提供するに違いない。
泌型KGFの加工および発現の成功によって既に確かめ
られている。この分泌型KGFにおいて、NH2 末端か
ら約40アミノ酸(図II−1で番号32を付した成熟型K
GFのアミノ末端 cys残基で始まり、KGF残基78の
argで終わる)は、aFGFのCO3 末端コアの約140
アミノ酸(残基39の argで始まり、aFGFコーディン
グ配列のC末端に続く)に連結される。このキメラ生成
物はKGFのようにケラチン細胞に対する細胞選択性を
有するが、ヘパリンに対する感受性に欠け、この特徴は
KGFよりもむしろaFGFの特徴に類似する。この新
規なKGF様成長因子は、抗凝固剤として通常用いられ
るヘパリンの存在下に、上皮細胞特異性の成長因子の投
与が望まれる臨床適用において利点を有するであろう。
このキメラ分子の更に詳細な構成および該ポリペプチド
の性質は、実験セクションIIで説明される。
A及び下記に例示するの何れかのベクターDNAを含む
組換DNA分子が含まれる:バクテリオファージλクロ
ーニングベクター(λpCEV9 );DNA配列プラスミド
ベクター(pUC 変種);バクテリア発現ベクター(pKK2
33-2);または哺乳類発現ベクター(pMMT/neo)。この
ような組換えDNAは、実験セクションに詳細に記載し
た構成によって例示される。
含まれる:即ち、分泌型KGFのためのコーディング配
列およびバクテリア発現ベクター(例えばpKK233-2)有
する分子、または全体の一次翻訳生成物(NH2 末端シ
グナルペプチドを含む)および挿入されたDNAを哺乳
類細胞(例えば NIH/3T3)中で発現可能な哺乳類発現ベ
クター(pMMTによって例示されるもの)を有する分子で
ある。
ーを含む組換えDNAの構築は、実験セクションIIに記
載される。簡単にいえば、KGF・cDNAは、そのコ
ーディング配列をプラスミド発現ベクター pKK233-2
(II−31)内でハイブリッドtrkプロモータの制御下
に置くことによって、E.coli中で発現されてポリペプチ
ドを生成した。
トまたは動物の培養細胞中で発現可能な哺乳類ベクター
とを具備する組換えDNAの構築は、このような比較的
単純なポリペプチドを発現させる公知の方法を用いた、
標準的な遺伝子発現技術によって行うことができる。本
発明のこの側面におけるDNA (哺乳類ベクター pMM
T を含む)の一つの特別の態様は、本発明の組換え細胞
の下に、このセクションにおいて、以下で更に詳細に説
明する。
NAは、本発明のタンパク製造方法に関連して、多量の
実質的に純粋なKGFまたはKGF様タンパクを造るた
めに使用され得る。こうして製造された実質的に純粋な
KGFは、公知の技術を用いて、種々の体液および組織
サンプル中における当該タンパクのためのレセプタの存
在を決定するための臨床検査に用いることができる。
可能なトランスフォーミングDNA)で形質転換された
細胞、好ましくはバクテリアまたは哺乳類細胞を包含す
る。本発明のこの側面での好ましい態様において、本発
明のDNAによって形質転換された細胞は、完全にマイ
トジェン様の形でKGFタンパクを産生する。最も好ま
しくは、これらのタンパクは分泌形 (即ち、見掛けの
シグナル配列を欠いたもの)であろう。これらのタンパ
ク因子は機能的研究に使用でき、また定性的および定量
的レセプタ結合検定のような、更なる生化学的および機
能的分析のために精製され得る。
胞が、実験セクションIIで詳述するように、バクテリア
発現ベクター pKK233-2 を用いて構築された。要約する
と、通常の小スケール法によって、幾つかの組換えバク
テリアクローンのタンパク産生が試験された。試験され
た全ての組換え体が、アミノ末端KGFペプチドに対す
る抗体によって認識されるタンパクを合成した(以下を
参照のこと)。一つの組換え体が1リットル培養の中で
成長され、該組換え体はBALB/MKケラチン細胞のDNA
中へのチミジン取り込みを効率的に刺激するが、 NIH/
3T3 繊維芽細胞に対しては最低の活性しか示さない組換
えKGFを産生した。標準ケラチン細胞バイオアッセイ
におけるBALB/MK細胞の半上限刺激(half-maximal sti
mulation)が、 2〜5 ng/mlの濃度で達成された。これ
に対して、M426細胞から精製されたKGFの場合は10〜
15ng/mlである。
gの Mono-S 精製組換えKGFを生成した。遺伝子発現
の分野における当業者には、この初期収率が、過度の実
験を行なうことなく、公知の組換えDNA技術を適用す
ることによって改善され得ることが明らかであろう。
ス)は、N末端シグナル配列を含む配列をコードする全
KGF・cDNAと、マウス・メタロチオニン(MM
T)プロモータおよびネオマイシン耐性のための選択的
マーカー遺伝子を有するベクターpMMT/neo を用いて構
築された。この細胞は、本発明のバイオアッセイを用い
て、KGF、特にヒト繊維芽細胞によって産生される成
熟型(シグナルペプチドが欠如したもの)の製造につい
て評価されている。高レベルの血小板由来成長因子(PD
GF)のA鎖およびB鎖を含む他の幾つかの同様な組換え
ポリペプチドを首尾よく発現させるために、これと同じ
ベクターと宿主細胞の組合わせが用いられている(II−
32)。従って、上記の組換えDNAおよび本発明の形
質転換細胞を用いることにより、この方法で組換えKG
Fの高収率が達成され得ることが当業者に認識されるで
あろう。
とする条件での臨床試験を可能にするために、大規模製
造が使用され得る。ポリペプチドを局部投与(例えば、
皮膚または目の角膜に対して)または全身投与するため
の薬剤組成物を調製するための材料および方法は、この
技術分野で良く知られており、また過度の実験を行なわ
なくとも容易にKGFおよびKGF様ポリペプチドの投
与に適用し得る。
でコードされるペプチドに対して作られる新規な抗体を
包含する。本発明のこの態様は、KGFを認識する幾つ
かの種類の抗体によって例示される。実験セクションII
に概説したように、これらは実験免疫学の分野でよく知
られた標準的な方法論を用いて調製されている。これら
の抗体には次のものが含まれる:即ち、マウスにおい
て、ヒト繊維芽細胞由来の完全かつ精製されたタンパク
に対して生成されたモノクローナル抗体;KGF・cD
NA配列から予想されるアミノ酸配列に基づく配列をも
った合成ペプチド[例えば、KGF残基32-45 の配列、
即ち NDMTPEQMATNVR(アミノ酸配列のための標準的な一
文字コードを用いた;図II−1参照)をもったペプチ
ド]に対して、兎において生成されたポリクローナル抗
体;ヒト繊維芽細胞から天然に分泌されたKGFおよび
E.coli(上記参照)中で産生された組換えKGFの両者
に対して、兎において生成されたポリクローナル抗体で
ある。
A )および/またはウエスタンブロットにおいて、天然
に存在するKGFと同様に組換えKGFを認識する。幾
つかの例示抗体(これらは本発明の好ましい抗体であ
る)は、BALB/MKバイオアッセイにおいて、KGFのマ
イトジェン活性を中和するように思える。
本発明の抗体のフラグメント(抗原結合活性を保持し、
且つ当該技術分野で公知の方法により調製される)もま
た、本発明の範囲内である。更に本発明は、本発明の抗
体またはその活性フラグメントの薬剤組成物をも包含す
る。この薬剤組成物は、ポリペプチド投与のための薬剤
組成物を調製するために当該分野で良く知られた材料お
よび方法を用いて調製することができ、また過度の実験
を行うことなく、KGFおよびKGF様ペプチドの投与
に容易に適用することが可能である。
は、例えばバイオアッセイにおけるKGFの検出、また
はタンパク因子の精製のために用いることができる。ま
た、これらは当該技術分野で知られた方法で、KGFレ
セプタの単離に用いることができる。これらは、実験セ
クションIIに記載したように、公知の他の全ての成長因
子のそれとは明確に異なるようにみえる。
性を中和するこれらの好ましい抗体、並びにそのフラグ
メント及び薬剤組成物は、BALB/MKアッセイによって示
されるように、例えば上皮細胞の過剰成長で特徴付けら
れる臨床症状の治療に用いることができる。この臨床症
状には、形成異常および新形成 (例えば乾癬、または
悪性もしくは両性の上皮腫瘍)が含まれる。
た遺伝子の発現を検出するための新規なバイオアッセイ
方法が包含される。幾つかの例示的態様において、本発
明のDNAは関連mRNAの定常状態レベルを測定する
ためのプローブとして用いられた。KGF・DNAを用
いた本発明のこれらのバイオアッセイ方法、および標準
ノーザンブロッティング法は、実験セクションIIにおい
て詳細に説明される。
離細胞または種々の組織において、この様な方法がKG
F様タンパクの遺伝子発現分析に容易に適用され得るこ
とを認識するであろう。このようなバイオアッセイは、
例えば上皮細胞成長プロセスにおける種々のクラスの腫
瘍細胞または遺伝子欠損を同定するために有用である。
既述の説明を用い、また以下の実験セクションに記載し
た方法に従って、本発明の全範囲を利用できるものと確
信する。実験セクション中に開示された材料は、他に指
示がない限り例示の目的で開示されており、従ってどの
ような意味でも請求範囲を限定するものと解釈されては
ならない。
培地中において、上皮細胞に特異的な成長因子の同定に
導く実験を説明する。この因子は、ケラチン細胞に対す
る優勢な活性のために、先にケラチン細胞成長因子(K
GF)の用語で表わされたものであり、本発明に従って
限外濾過、ヘパリン- セファロース・アフィニティーク
ロマトグラフィー及びC4 逆相HPLCカラム上での疎水性
クロマトグラフィーの組合わせにより均一になるまで精
製された。KGFは酸および熱に不安定であり、略28,0
00のダルトン見掛けの分子量を有する単一のポリペプチ
ド鎖からなることが見出だされた。精製されたKGFは
上皮細胞に対する強力なマイトジェンであり、0.1nM お
よび最大1.0nM において検出可能な活性で、非活動BALB
/MK上皮ケラチン細胞におけるDNA合成を 500倍以上
も刺激することが可能であった。繊維芽細胞または上皮
細胞の何れかに対するマイトジェン活性の欠如は、KG
Fが従来特徴付けられた何れの成長因子とも異なった標
的細胞特異性を有していることを示している。ミクロシ
ーケンシングによって、公知の何れのタンパクとも有意
な相同性をもたない、アミノ末端配列が明らかになっ
た。ヒト胎児繊維芽細胞によるこの新規成長因子の放出
は、正常な上皮細胞増殖の間充織刺激において重要な役
割を果たすことを示している。
8)の初期継代を、175 cm2 のT- フラスコ上に撒き、
10%子牛血清(GIBCO )を補充したダルベッコ修飾イー
グル培地(DMEM;GIBCO )の中で10-14 日に亘って集密
状態にまで増殖させた。集密状態になったら、その単層
を1週毎に血清含有培地から血清フリー培地(DMEMのみ
からなる)へ交互に変えた。20mlのDMEMを添加するに先
立って、この細胞を5mlの燐酸緩衝生理食塩水で2回洗
浄した。72時間後、培養液を回収し、35mlの血清含有培
地で置き換えた。この馴らし培地は、使用するまで -70
℃で保存した。
解凍し、0.50ミクロンのフィルター(ミリポア社の HAW
P 142 50)を通して予備濾過し、ペリコンカセット装置
(ミリポア社のXX42 00K 60)および10kDa の分子量カ
ットオフを有するカセット(ミリポア社のPTGC 000 05
)を用いて200ml にまで濃縮した。濃縮の後のサンプ
ルに、20mMTris-HCl,pH7.5/0.3M NaCl の1リットルを
用いた連続した2回の稀釈ラウンドを施し、夫々につ
き、続いてペリコン装置を用いて他の限外濾過ステップ
を行う。リテンテート(残渣)中に回収された活性画分
は、ヘパリン- セファロース樹脂に直接適用され、また
は -70℃で保存される。
ークロマトグラフィー(HSAC)>限外濾過で回収された
リテンテートは、20mM Tris-HCl,pH7.5/0.3M NaCl 中で
平衡化されたヘパリン- セファロース樹脂(ファルマシ
ア社)に負荷された。該樹脂は、光学密度がベースライ
ンに戻るまで徹底して洗浄され、次いでNaCl濃度が徐々
に増大するリニア- ステップ勾配にかけられた。画分か
らチミジン取込みバイオアッセイのための部分を除いた
後、選択された画分をセントリコン-10ミクロ濃縮器(Ce
ntricon-10 microconcentrator; Amicon 社) を用いて1
0〜20倍に濃縮し、 -70℃で保存した。
画分(0.6 M NaClプール)を解凍し、プールし、更にセ
ントリコン-10 で 200μlの最終容量に濃縮した。該サ
ンプルを、 0.1%トリフルオロ酢酸(TFA,Fluka )/20
%アセトニトリル(ベーカー社、HPLC級)中で平衡化さ
れたVydacC4 HPLCカラム(分離群、Hesperia,CA )上
に負荷し、アセトニトリル濃度が徐々に増大する線形勾
配で溶出させた。バイオアッセイのための一部を、直ち
に10倍量の50μg/ml/20mM Tris-HCl,pH7.5 中で稀釈
した。残りのサンプルは、構造分析のための調製におい
て、Speed-Vac(Svant)中で乾燥された。
ヘパリン- セファロース画分が、20mM Tris-HCl,pH6.8/
0.5M NaCl 中で平衡化されたTSK-G3000SW Glas-Pacカラ
ム(LKB )上に負荷された。該サンプルは、この緩衝液
中において 0.4ml/min.の流速で溶出された。バイオア
ッセイのための一部を除いた後、該画分を -70℃で保存
した。
電気泳動(NaDodSO 4 /PAGE)>Laemmli の方法(I−
9)に従って、ポリアクリルアミドゲルが NaDodSO4と
共に調製された。サンプルを、 2.5%の2-メルカプトエ
タノール(vol/vol )の存在下で3分間煮沸した。該ゲ
ルは、BioRadからの試薬およびプロトコールを用いて、
固定および銀染色された(I−10)。分子量マーカー
は、ファルマシア社から入手したものである。
るに先立って、96ウエルの微小滴定プレート(FalconN
o.3596)を、1μg /cm2 のヒト・フィブロネクチン
(Collaborative Research社)で予備コートした。集密
に達したら、細胞を5μg /mlのトランスフェリン(Co
llaborative Research社)および 30nM のNa2 SeO
3 (ベーカー社)を含む血清フリーの培地中で24-72 時
間維持した。DNA中への 3H- チミジンの取込み(最
終濃度5μCi/ml,NEN)は、サンプル添加の16時間後か
ら始まって6時間のあいだ測定された。このアッセイ
は、細胞を氷冷燐酸緩衝生理食塩水で1回、また5%ト
リクロロ酢酸で2回洗浄することによって終了された。
その沈殿物を0.25M NaOH中に再溶解し、液体シンチレー
ション液(Biofluor社、NEN )中に移してカウントし
た。
て、種々の他の細胞系に関してDNAの合成刺激がモニ
ターされた。NIH/3T3 繊維芽細胞(I−11)はナショ
ナル・インスティチュート・オブ・ヘルスから入手し
た。一方、CCL208アカゲザル気管支上皮細胞(I−1
2)はアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション
から入手された。(I−13)に記載されたようにして
調製されたB5/589 ヒト乳房上皮細胞系は、マーサ・ス
タンファー(カルホルニア大学、バークレー)から入手
した。該乳房細胞は、10%子牛胎児血清および4ng/ml
のFGFを補充したRPMI中で成長された。血清フリーの
条件に維持されるとき、基礎培地はDMEMである。ヒト伏
在静脈上皮細胞の一次培養は、他の文献(I−14)に
記載されたようにして調製され、維持された。上皮成長
因子およびインスリンは、コラボラティブ・リサーチ社
(Collaborative Research)からのものである。酸性F
GFおよびbFGFは、カルホルニア・バイオテクノロ
ジー社から得たものである。組換えTGFαはジェネン
テック社から入手した。培地および血清は、GIBCO 、Bi
ofluids 社または NIH培地ユニットから入手したもので
ある。
- D- リシン(20μg /cm2 ;シグマ社)およびヒト・
フィブロネクチンで順次予備コートし、次いで略2.5 ×
104 個のBALB/MK細胞を接種した。基礎培地は、5μg
のトランスフェリン、30nMのNa2 SeO3および0.2mM
のエタノールアミン(シグマ社)を補充した、イーグ
ルの低Ca2+ミネラルエッセンシャル培地およびハムのF
-12 培地の1:1混合培地である。培地は2日または3
日毎に交換した。10日後に、細胞はホルマリン(フィ
ッシャー・サイエンティフィック社)で固定され、ギム
ザ(フィッシャー・サイエンティフィック社)で染色さ
れた。
カラムの活性画分から得た略4μg (150 pmol)のタン
パクを50%TFA中に再溶解し、アプライド・バイオシ
ステムズ社の気相タンパクシーケンサーにかけた。20回
のエドマン分解が行われ、自動オンラインHPLC(モデル
120A;アプライド・バイオシステムズ社)でアミノ酸誘
導体の同定が行われた。
図1〜図7に纏められている。これらの図に示したデー
タおよび/またはそれらに関する実験を簡単に説明すれ
ば次の通りである。
る馴らし培地のヘパリン−セファロース・アフィニティ
クロマトグラフィーである。数リットルのM426馴ら
し培地からの限外ろ過リテンテイト約150mlを、1
時間でヘパリン−セファロースカラム(ベッド容積6m
l)にかけた。このカラムを、平衡緩衝液150ml、
トリス−HC120mM、pH7.5/0.3M Na
Clを用いて洗浄した後、増加するNaCl濃度の変形
線形勾配を用いて保持される蛋白質(リテンテイト中の
蛋白質の合計の<5%)を溶出した。画分の量は3.8
mlであり、勾配溶出の間の流速は108ml/時であ
った。示された画分の2μlを、方法の項で説明したB
ALB/MK細胞における 3H−チミジン取込みの検定
のための、0.2mlの最終容量を有するマイクロタイ
ターウェルに移した。
の逆相C4 HPLCである。0−6MのNaClを用い
てヘパリン−セファロースから溶出させた活性画分を、
Centricon−10で処理し、0.1%トリフル
オロ酢酸/20%アセトニトリル(ACN)で平衡にし
たC4 Vydacカラム(4.6×250mm)に直接
かけた。このカラムを平衡緩衝液4mlで洗浄した後、
試料を増加%ACNの変形線形勾配で溶出した。画分の
量は0.2mlであり、流速は0.5ml/分であっ
た。BALB/MK細胞における 3H−チミジン取込み
の検定のためのアリコートを、50μg/mlウシ血清
アルブミン/20mMトリスHCl、pH7.5、で直
ちに10倍に希釈し、最終希釈200倍で試験した。
グラフィからの選択された画分のNaDodSO4 /P
AGE分析である。各画分の半分を乾燥し、NaDod
SO4 /2−メルカプトエタノールに再溶解し、熱変性
して、実質的に銀で染色された14%ポリアクリルアミ
ドゲルで電気泳動した。各分子量マーカー(KDaでの質
量)の位置は矢印で示される。
て引き起こされるBALB/MK細胞におけるDNA合
成である。活性は、バックグランド(100cpm)に
対して何倍の刺激であるかで表わされる。
の分子ふるいHPLC(TSK3000SW)クロマト
グラフィーである。約50μlのCentriconで
処理した、HSACからの0.6M NaClプール
を、予め20mMトリス−HCl、pH6.8/0.5
M NaClで平衡化されたLKB GlasPacT
SK 3000SWカラム(8×300mm)にかけ、
流速0.4ml/分で0.2mlの画分として溶出させ
た。アリコート2μlを、BALB/MK細胞における
3H−チミジン取込みの検定のための、0.2mlの最
終容積を有するマイクロタイターウェルに移した。分子
量マーカー(KDa)の溶出位置は、矢印で示される。
他の成長因子に応じたBALB/MK DNA合成の比
較である。バックグランドに対して何倍の刺激であるか
で表わされる、トリクロロ酢酸不溶DNAへの 3H−チ
ミジンの取込みを、示される成長因子の濃度の関数とし
て測定した。試料無添加である場合のバックグランド値
は150cpmであった。この結果は、2つの独立した
実験の平均値を示す。各実験における反復試験は、平均
値の10%以内であった。黒丸はTSK−精製マイトジ
ェン、三角はEFG、四角はaFGF、白丸はbFGF
である。
化学的に規定された培地におけるBALB/MK細胞の
成長比較である。培養物は、トランスフェリン、Na2
SeO3 、エタノールアミンおよび以下に示す成長因子
を補足した、イーグル最小必須培地およびハムF12培
地の1:1混合物中のポリ−D−リシン/フィブロネク
チンで予備被覆された35mmシャーレ上に、シャーレ
当り2.5×104 細胞の密度で塗布された。10日
後、このプレートを固定し、ギムザで染色した。キー:
a)成長因子なし;b)EGF単独;c)インシュリン
単独;d)KGF単独;e)EGF+インシュリン。成
長因子の最終濃度は:EGF、20ng/ml;インシ
ュリン、10μg/ml;およびKGF、40ng/m
lであった。
る。
系から得られた馴らし培地の予備スクリーニングによっ
て、或る繊維芽細胞系はBALB/MK及び NIH/3T3 細胞の
両方について検出され得るマイトジェン活性を含んでい
ることが示された。煮沸するとBALB/MKに対する活性は
破壊されたが、 NIH/3T3 に対するマイトジェン活性は
そのまま残存した。EGF(I−15)及びTGFα
(I−16)の公知の熱安定性に基づけば、BALB/MKマ
イトジェン活性は、これら公知の上皮成長因子とは異な
った要因に起因するものと思われる。
の活性物質の最も生産的な供給源として、M426ヒト胎児
肺繊維芽細胞系が選択された。ペリコン装置による限外
濾過は、サンプル容量を、その後のクロマトグラフィー
に適したレベルに減少するための便利な方法を提供す
る。精製スキームの開発において、篩、イオン交換およ
び等電点電気泳動クロマトグラフィーの種々の組合わせ
が試みられたが、これらは全て不満足な低収率しか与え
なかった。一方、他の成長因子の精製に用いられている
ヘパリン- セファロース・アフィニティークロマトグラ
フィー(HSAC)(I−17〜I−22)は、本発明にお
ける初期精製ステップとして有用であることが証明され
た。この段階では、他の因子が存在するかもしれないた
め回収された特定の活性の評価は不確かであるが、活性
の見掛けの収率は50〜70%であり、略1000倍の富化に対
応する。
ン活性の90%を越える量が、0.6M NaCl でHSACカラムか
ら溶出したこの活性ピークは、NIH/3T3 に対する何れの
活性とも関係がなかった(データは示していない)。BA
LB/MKマイトジェン活性のもっと小さいピークが、0.8
〜1.2M NaCl に一致して出現した。
分は、勾配の傾斜および光学密度プロファイルに基づい
て推定的に同定され得る。セントリコン-10 で10〜20倍
に迅速に濃縮することは、続いて -70℃で数ケ月保持さ
れ得る安定性にとって不可欠であることが分かった。
た調製法である、C4 Vydac カラムを用いたRP-HPLC
(これはアミノ酸配列分析に適した調製法である)によ
って達成された。C4 ステップでの活性物質の収率は通
常数パーセントにしか過ぎないが、このロスは使用した
溶媒に起因するものであろう。他の実験において、室温
で1時間、0.1%TFA/50% アセトニトリルに曝すこと
により、調製品のマイトジェン活性は98%減少した。に
もかかわらず、図2〜図4に示したように、光学密度プ
ロファイルにおける異なったピークに対応した、BALB/
MK刺激活性の単一ピークが得られた。このピーク画分
は、NaDodSO4 /PAGEおよび該ゲルの銀着色
に際して単一のバンドを生成し、また試験された夫々の
画分の相対的なマイトジェン活性(図4)は、活性プロ
ファイルを横切るバンドの強度に良好に対応していた。
000SW GlasPac カラムランでの分子篩クロマトグラフィ
ーを用いた、HPLC技術に代わる別の精製ステップは、BA
LB/MKバイオアッセイにおいて主要な活性ピークを与え
た(図5)。この調製品は、銀着色されたNaDodS
O4 /PAGE(データは示していない)から判断する
と、RP-HPLC で得られた物と同様に殆ど純粋であった
が、活性の回収は遥かに良好であった(下記の表I−
1)。このTSK-精製物はより高い比活性を有しているた
め、生物学的研究ではルーチンに用いられた。
HPLC精製品および分子篩精製品)は、この二つの調製品
においては区別できないように見えたが、これらのマイ
トジェン活性のプロファイルはNaDodSO4 /PA
GE上の異なったバンドに関連していた。
分離された因子によるものと仮定することにより算出し
た。表中の脚注は下記の通りである。 * 活性1ユニットは、BALB/MKバイオアッセイ
においてTSK精製因子により誘発されるチミジン取り
込みの最大刺激の半分と定義され、ここでは約3ngの
TSK精製陰性が活性1ユニットを刺激する。 a 蛋白質は、BioRad から購入した Bradford 試薬を
用いることにより評価した。 b 蛋白質は、A214 (1%)=140を用いることに
より評価した。
テップの結果が纏められており、活性の回収は、吸着RP
-HPLC よりも分子篩クロマトグラフィーの方が遥かに良
好であることを立証している。
け>当該精製因子は、還元条件下(図2〜図4)および
非還元条件下(データは示していない)でのNaDod
SO4 /PAGEに基づいて、約28kDa の推定分子量を
有していた。この値は、本来のコンホメーションを維持
すると期待される溶媒中での異なった二つの寸法のカラ
ムラン(columns run) (TSK-G3000-SW,図5;および s
uperose-12, データは示していない)における、その溶
出位置と良く一致していた。これらのデータから、該マ
イトジェンは分子量 25-30 kDaの単一のポリペプチド鎖
からなっていると思われる。
る不安定性は、BALB/MKマイトジェネシス・バイオアッ
セイにを用いることにより示された。活性は、50℃での
10分間のインキュベーションでは影響を受けなかった
が、60℃で10分後には68%減少し、また 100℃で10分後
には検出できなかった。室温において60分間、0.5Mの酢
酸に曝すと、活性は対照の14%にまで減衰した。これに
比較して、公知の成長因子(EGF)のマイトジェン活
性は、これら何れの処理によっても減少しなかった。
投与量応答曲線は、0.1 nMの少量で、検出可能なDNA
合成刺激を導くことを示している。従って、活性範囲
は、今日までに分析されている他の成長因子のそれと比
肩し得るものであった。濃度範囲 0.1〜1.0 nMにおいて
直線的な関係が観察され、1.0 nMでは 600倍の最大刺激
が観察された。BALB/MKケラチン細胞において、この新
規な因子はEGF、aGFGまたはbGFGよりも高い
最大チミジン取り込みを確実に誘導する(図6)。
の細胞型に対するその活性を、上皮細胞マイトジェン活
性を有することが知られた他の成長因子のそれと比較す
ることによって示される。下記の表I−2に示されるよ
うに、新しく単離された因子はBALB/MKに対して強いマ
イトジェン性効果を示し、また試験された他の上皮細胞
のDNA中への明確なチミジン取り込みを誘導した。こ
れとは全く対照的に、当該因子はマウス(またはヒト,
データは示していない)繊維芽細胞またはヒト伏在静脈
上皮細胞に対して検出可能なマイトジェン効果をもたな
かった。
って刺激された最大チミジン取り込みの比較。この取り
込みは、バックグラウンドに対して何倍の刺激であるか
を表している。このデータは、4つの異なる実験を纏め
て示している。表中の脚注は下記の通りである。 * aFGFに夜最大刺激は、ヘパリン(シグマ社)20
μg/mlの存在を必要とする。 nd =測定
子の標的細胞特異性に関するデータが要約されており、
新たに単離された因子がケラチン細胞(BALB/MK)に対
して強いマイトジェン効果を示すこと、並びに繊維芽細
胞またはヒト伏在静脈上皮細胞に対しては認め得る効果
をもたないことを示している。
れもケラチン細胞を選択的に刺激するようには見えな
い。TGFαおよびEGFは繊維芽細胞に対する強い活
性を示す一方で、FGFは繊維芽細胞と共に上皮細胞に
対してマイトジェン性であった。その上皮細胞特異性、
就中ケラチン細胞感受性のために、この新規なマイトジ
ェンは暫定的にケラチン細胞成長因子(KGF)と称さ
れた。
ず、持続した細胞成長を支持することを確立するため
に、完全に定義され且つこの成長因子が補充された血清
フリーの培地中で成長し得るBALB/MK細胞の能力が明ら
かにされた。図7に示したように、この化学的に定義さ
れた培地において、KGFは、EGFの優れた代替え品
として作用したが、インスリン(またはインスリン用成
長因子I)の代替え品としては作用しなかった。従っ
て、BALB/MK細胞の増殖に関して、KGFはEGF,a
GFG及びbGFGによって共有される主な信号伝達経
路を通して作用するように思える。
N- 末端アミノ酸配列を明らかにする>当該成長因子を
更に特徴付けするために、略150 pmolのC4 精製された
材料をアミノ酸配列分析にかけた。2-13サイクルについ
て、曖昧でない次のような指定を伴う単一の配列が検出
された:即ち、X-Asn-Asp-Met-Thr-Pro-Glu-Gln-Met-Al
a-Thr-Asn-Val である。最初のポジションの指定には高
いバックグラウンドノイズが含まれており、そのために
Xで示されている。
ンピュータ調査によって、KGFのN末端アミノ酸配列
はナショナル・バイオケミカル・リサーチ・ファウンデ
ーション・データ・バンクの何れのタンパクとも顕著な
相同性を示さないことが明らかになり、従ってこの成長
因子の新規性が支持された。
た研究によって、上皮細胞に対して独特の特異性をもっ
たヒト成長因子が同定された。本発明に従って、限外濾
過、HSACおよびRP-HPLC または TSK分子篩クロマトグラ
フィーを用いることにより、この分子の物理的および生
物学的性質の詳細な特徴付けを行うために充分な量が単
離された。
8,000の分子量に対応する単一の銀着色バンドが検出さ
れ、該バンドの強度はこれら画分中のマイトジェン活性
のレベルに比例していた。TSK クロマトグラフィーから
得られた活性画分中には、RP-HPLC によって得られたも
のと区別できないバンドがみられた。この精製されたタ
ンパクはナノモル以下の濃度で上皮細胞中でのDNA合
成を刺激したが、繊維芽細胞または上皮細胞中において
は、比肩し得る以上の如何なるチミジン取り込みをも誘
導しなかった。この特徴的な標的細胞特異性は、精製分
子から決定された単一の新規なN末端アミノ酸配列と相
俟って、KGFが新規な成長因子であるとの結論を導
く。
精製された因子はインスリン様成長因子I/BALB/MK 細
胞のインスリン成長要求を補足することができ、従っ
て、EGFG,TGFα及びGFGと共通の信号形質導
入経路を通して作用するに違いない。更に、当該新規因
子は、BALB/MK細胞におけるチミジン取込みの刺激にお
いて、公知の上皮細胞マイトジェンのどれよりも強い。
予備的な証拠は、この因子がヒト・ケラチン細胞の二次
培養の増殖をも支持できることを示している(データは
示していない)。
際して問題である。これは、熱および酸に対して本来的
に不安定性である外、凍結乾燥および透析に対しても不
安定である。担体タンパク、ヘパリン、プロテアーゼ阻
害剤、シリコン化管(siliconized tubes) 、または 4℃
若しくは-20 ℃での保存を用いたにもかかわらず、HSAC
後の24時間以内に活性は完全に喪失した。この段階でサ
ンプルを濃縮することによってのみ、その活性が維持さ
れ得る。
るためには強酸または湿潤剤を利用する必要があり、こ
れは吸着され易くまたは不溶性であることに一致してい
る。従って、活性保持のために、この精製された因子は
高濃度溶液の形で-70 ℃に維持された。この場合、数か
月は安定である。
機能を有するこの因子の基本的な性質を示している。ヘ
パリン結合特性を有する成長因子には、aFGF(I−
20〜I−22)、bFGF(I−19,I−22)、
顆粒細胞/マクロファージ・コロニー刺激因子およびイ
ンターロイキン3(I−25)が含まれる。これらの夫
々は、間質細胞によって産生される (I−25〜I−
27)。これら因子は細胞外マトリックス中、または間
質細胞表面を被覆するプロテオグリカン上に蓄積される
ように思える。その保存、放出および特定の標的細胞と
の接触は、この相互作用によって調節されるものと仮定
される(I−25,I−28)。上皮細胞増殖の間充織
由来エフェクタも既に記載されているが(I−29〜I
−31)、その同定はまだ明らかにされていない。その
ヘパリン結合特性(ヒト胎児繊維芽間質細胞によって放
出される)および上皮細胞屈性は、KGFに対して、正
常な上皮細胞成長のこのようなパラクリン媒体に期待さ
れる全ての特性を与える。
部のアミノ酸配列は、そのコーディング配列の分子クロ
ーニングを可能にし、また後述の実験セクションIIに記
載されたような、公知の成長因子ファミリーに対するそ
の構造的関係の決定を可能にする。
ファミリーの新しいメンンバーを定義する 先に述べた実験セクションIでの仕事によって、ケラチ
ン細胞成長因子(KGF)と称される新規なヘパリン結
合性成長因子が定義された。これはケラチン細胞に対し
て特に活性であり、上皮細胞に対して特異的であるよう
に思える。この第二の実験セクションでは、実験的に決
定されたNH2 末端アミノ酸配列に基づき、合成オリゴ
ムクレオチドをハイブリダイゼーション・プローブとし
て用いた、KGFをコードするcDNAの単離および特
徴付けが説明される。ヌクレオチド配列分析によって、
194-アミノ酸ポリペプチドをコードする582-bpの読み取
り枠(open reading frame)が同定された。この194-アミ
ノ酸ポリペプチドは、41%〜33%の範囲で、ヘパリン結
合性の酸性および塩基性繊維芽細胞成長因子、並びに h
si及び int-2オンコジェンの関連生産物と一致した。該
KGF遺伝子のRNA転写は、胎児および成体起源の正
常な繊維芽細胞中で発現されるが、上皮細胞、内皮細胞
またはグリア細胞中では発現されない。従って、KGF
は間充織によって正常に発現され、これは上皮細胞増殖
の制御に役割を果していると思われる。
ては、先に既述した通りである(上記の実験セクション
I、およびII−3参照)。結果に関して述べたデオキシ
オリゴヌクレオチドのプール (50 pmole)は、83モル
のγ- 32P-ATP(3000Ci/mmole ,Amersham社)およ
び10単位のT4 ポリヌクレオチドキナーゼを用いて、
5′末端をラベルされた。cDNAクローンを有する組
換えファージは、ニトロセルロース・フィルター上にレ
プリカ載置され、20%ホルムアミド、10%硫酸デキスト
ラン、10mMのTris-HCl(pH 7.5)、 8 X SSC、5X Denhard
t's 及び50μg/mlの変性サーモン精子DNAの中にお
いて42℃で一晩、32P- ラベルされたデオキシオリゴヌ
クレオチドでハイブリダイズされた。フィルターを、0.
5X SSC、0.1 %SDS中で50℃において洗浄し、Kodac
X-Omt ARフィルムに対して露出した。
オチド配列は、オーバラッピング制限フラグメントのジ
デオキシ鎖末端法(II−26)によって決定され、pU
Cベクター(II27)中にサブクローンされた。
ターの構築>成熟した分泌型のポリペプチドをコードす
るKGF・cDNAは、次のようにしてプラスミド発現
ベクター pKK233-2 (II−31)中のハイブリッド trk
プロモータの制御下に置かれた。これを達成するため
に、成熟KGF分子(即ち、そのシグナルペプチドを含
まないもの)をコードする情報を含んだ特定長さのKG
F・cDNAが、ポリメラーゼ・チェイン・リアクショ
ン(PCR)技術を(II−32)用いて増幅された。こ
のフラグメントは、当該ベクターの二つの部位(即ち、
S1 ヌクレアーゼ消化により平滑末端化されたNcoI 部
位とHindIII)との間に方向付けして挿入された。PC
R法によって製造されたKGF・cDNAの末端は、次
の通りであった:5′末端は平滑で、ATG コドンで始ま
り、成熟型KGFのアミノ末端残基(図II−1参照)で
ある33番のcys 残基のための TGCコドンが続くき、そし
て全KGFコーディング配列が続く。停止コドンである
TAAおよび直接これに続く四つの塩基TTGCはもまた、c
DNAの3′末端に含まれていた。cDNAの3′末端
の望ましい位置にDNA合成を指示するためにPCR法
で用いられたプライマーには、増幅されたcDNAをベ
クターDNA中に挿入するためのHindIII部位が含まれ
ていた。
る抗体の製造>ヒト繊維芽細胞由来の完全かつ精製され
たタンパクに対して、マウス内で、5回以上の皮下注射
を用いることによりモノクーナル抗体が生産された。試
験血液は、ヒト上皮細胞からの高度に精製されたKGF
を抗原に用い、固相(ELISA)検定でスクリーニングさ
れた。ハイブリドーマはルーチンの方法により製造さ
れ、またKGF関連抗体を検出するために、上澄み液は
ELISA 検定でスクリーニングされた。陽性クローンは通
常の方法により連続的にサブクローン化され、また大量
の抗体を製造するために、選択されたサブクローンがマ
ウス中で腹水腫瘍として成長された。抗体は、標準的な
技術 (例えばヒドロキシアパタイト又は免疫アフィニ
ティー樹脂)を用いることにより精製された。
は、兎中において、標準的な方法を用いることにより次
のようにして生成された。ポリペプチドは固相技術によ
って製造され、グルタルアルデヒドとの反応によってチ
ログロブリンに結合された。連続的に皮下注射が行わ
れ、試験血液はウエスタンブロト分析およびマイトジェ
ネシス・バイオアッセイを含む他の方法並びにELISA に
よってスクリーニングされた。IgG免疫グロブリンは、
固相化タンパクGを用いたアフィニティークロマトグラ
フィーによって単離された。
ら天然に分泌されたKGFおよび E.coli 中で産生され
た組換えKGFの両者に対して、以下のプロトコールを
用いることにより、兎中において生成された: i) 最初の注射および第一の追加免疫は、鼠径部のリン
パ節に投与された。 ii) その後の追加免疫は筋肉内へ行われた。
ンブロット分析およびマイトジェネシス・バイオアッセ
イ並びにELISA が含まれ、また合成ペプチドに対する抗
体について上述したと同様にしてIgGを精製した。
図8〜図14に纏められている。これらの図に示したデ
ータおよび/またはそれらに関する実験を簡単に説明す
れば次の通りである。
模式的な表現である。配列決定に用いられる重複pCE
V9クローン32および49は、未翻訳領域を線で記
し、かつコード配列をボックスで示す完全な構造図の上
部に示される。ハッチ領域はシグナルペプチドの配列を
示し、白抜きの領域は成熟蛋白質を示す。選択された制
限部位を示す。
列および予想されるアミノ酸配列である。塩基は右側に
番号付けされており、アミノ酸は全体を通して番号付け
されている。精製KGF由来のN−末端ペプチド配列に
は下線を付してある。疎水性N−末端ドメインはイタリ
ック体で示す。潜在的なアスパラギン結合グリコシレー
ション部位はオーバーライン表示されている。このRN
Aの3′末端に近い異なるポリアデニール化部位、AA
TTAAおよびAATACAはボックスとして示す。
GF・mRNAの同定である。レーンaおよびcはポリ
(A)−選択M426RNA、レーンdは全細胞M42
6RNAを表わす。フィルターは、レーンaおよびbが
クローン32(プローブA、図8)からの32P−標識6
95bp・BamHI/BclI断片で、またレーンc
およびdがクローン49(プローブB、図II−1A)か
らの541bp・ApaI/EcoRI断片でハイブリ
ダイズされている。
ーの位相的比較である。高い相同性を共有する2つのタ
ンパクドメインを黒塗りのボックスで示す。線影をつけ
たボックスは、推定シグナルペプチド配列を示す。2つ
の保護されたシステイン残基(C)の位置を示す。
けるKGF・mRNAのノーザンブロット分析、および
上皮細胞に対する既知の活性を有する他の成長因子のm
RNA発現との比較である。全細胞RNAを、セシウム
・トリフルオロ酢酸勾配遠心により単離した。RNA1
0μgを変性し、1%ホルムアルデヒドゲル中で電気泳
動した。穏やかなアルカリ変性(50mM NaOHで
30分間)の後、1M酢酸アンモニウムをコンベクタン
ト(convectant)としてRNAをニトロセル
ロースフィルターに移した。フィルターは、KGFコー
ド配列(A)の5′末端からの647bp Eco R
I断片を含有する32P−標識cDNAプローブもしくは
他の成長因子DNAからの類似のプローブとハイブリダ
イズした。下記タイプのヒト細胞が用いられた。扁平上
皮癌(A253、A388およびA431);乳房の上
皮細胞(S6およびR1);Ad12−SV40で不死
化されたケラチン細胞;主要ヒトケラチン細胞;新生児
包皮線維芽細胞、AG1523;成人皮膚線維芽細胞
(501T);および胚性肺線維芽細胞(WI−38お
よびM426)。
ーンの単離>KGFコーディング配列に対応したcDN
Aクローンを研究するために、9個のアミノ酸配列、即
ち精製KGFのミクロシーケンシング(実験セクション
I、および参考文献II−3参照)によって決定されたよ
うに、 Asn-Asp-Met-Thr-Pro-Glu-Gln-Met-Alaに基づい
て、26塩基の長さをもったオリゴヌクレオチドの二つの
プールが作成された。一方のオリゴヌクレオチドプール
は、9アミノ酸のための 256の可能な全てのコーディン
グ配列の混合物を含んでおり、他方はThr 及びPro のた
めのコドンの縮退第三位置(the degenarate third posi
tion) にイノシン残基を含んでいた。
コーディング配列の数を16に減少させる。tRNAアン
チコドン中のイノシンは、A、CまたはUと水素結合を
形成できる(II−4)。また、デオキシイノシンを含む
オリゴヌクレオチドは、対応するcDNAと効率良くハ
イブリダイズすることが示されている(II−5)。
供給源であるヒト胎児肺繊維芽細胞系 M426 (II−7)
から抽出されたポリアデニル化RNAを用いて、cDN
AクローニングベクターであるpCEV9中に構築された。
32P- ラベルされた26量体オリゴヌクレオチドを用いた
該ライブラリー(9 ×105 プラーク)のスクリーニング
によって、オリゴヌクレオチド・プローブの両方のプー
ルとハイブリダイズする88のプラークが同定された。
及びシーケンシング>分析された10個のプラーク精製ク
ローンのうちの一つ (クローン49)は、3.5 kbのcD
NA挿入を有していた。一方、残りのクローンは1.8 kb
〜2.1 kbに亘る挿入を有していた。
つかの共通の制限部位が明らかになった。小さいほうの
代表的なクローン (クローン32とクローン49)のシー
ケンシングによって、それらが重複部分を有するcDN
Aであることが明らかになった(図8)。クローン49は
メッセージのポリ(A)テールにプライムされていた
が、クローン32は、KGF・mRNAの3′非コード領
域中のA- リッチな配列に対するオリゴ(dT)プライ
マーのハイブリダイゼーションによって、ライブラリー
の構築の際に生じていた。
説明>二つのcDNA(クローン32及び49)のアライン
メントによって、完全なKGFコーディング配列を含む
3.85 kb の連続配列が確立された(図9〜図11)。開
始コドンと思われるATG がヌクレオチド位置446 に位置
しており、1030位置のTAA 停止コドンで終端する582 塩
基対の読み取り枠が確立された。この読み取り枠は22,5
12の算出分子量を有する194-アミノ酸ポリペプチドをコ
ードするであろう。
ボソームによる最適の開始(II−8)のためのコンセン
サス配列として提案された配列の GCC(G/A)CCATGG には
適合しないが、ATG コドンの3ヌクレオチド上流にAが
存在する。この位置におけるAは、前記コンセンサス配
列において最も高い確率で維持されているヌクレオチド
である。同じ読み取り枠において、このATG コドンの85
ヌクレオチド上流には、TAG 停止コドンが先行してい
る。
端に対して相同性を有する実験的に決定された19アミノ
酸配列は、提案された開始コドン下流の第32アミノ酸で
始まる。予期された配列と実験的に決定されたアミノ酸
配列とは完全に一致しており、曖昧さのないアサインメ
ントが可能であった。
研究するために、リップマン及びパーソンのFASTP プロ
グラムを用いて、ナショナル・バイオメディカル・リサ
ーチ・ファウンデーション・データベースのコンピュー
タ調査を行った(II−9)。この研究によって、KGF
について予期された一次構造と、酸性および塩基性FG
F並びに関連hst およびint-2-にコードされたタンパク
の一次構造との間に驚くべき関係が明らかになった。
A転写の発現>ヒト細胞内でのKGF・mRNAの発現
を確かめるための予備試験において、KGFコーディン
グ配列の大部分に亘るプローブ(プローブA、図8)
は、全M426RNAのノーザンブロット分析によって、単
一の2.4kb 転写を検出した(図12)。これは、コンポ
ジットcDNA配列の長さ(3.85kb)よりも遥かに短か
った。
426 RNAのスクリーニングに際しては、略5kbの追加
の転写が検出された。更に、クローン49の翻訳されなか
った領域、即ち3′〜クローン32の端までに由来するプ
ローブ(プローブB、図8)は、より大きいメッセージ
に対してのみハイブリダイズした(図12)。従って、
KGF遺伝子はRNAを替えるようにして転写されるよ
うに思える。FGFファミリーの他の二つのメンバー、
即ちbFGF(II−29)および int-2(II−30)も
また複数のRNAを発現し、その重要性は決定されるべ
く残されている。
に、種々のヒト細胞系および組織におけるその発現が試
験された。図14に示すように、胎児、新生児および成
人の上皮組織に由来する幾つかの繊維芽細胞系の夫々に
おいて、優勢な 2.4 kb KGF転写が検出された。しか
し、正常起源の上皮細胞系からは検出されなかった。ま
た、該転写は、正常な成人の腎および胃腸管器官から抽
出されたRNA中でも検出されたが、肺または脳からは
検出されなかった。KGF・RNA発現が、上皮組織に
比べて間質細胞中で驚くほど特異的であることは、この
因子が、上皮細胞成長の間充織刺激において正常な機能
を果たすことを示した。
られている他の成長因子のmRNAについても、上記に
挙げたと同じ組織内で分析した。分析された上皮細胞系
および間質細胞系の中には、aFGFまたはbFGF転
写の発現に一致するパターンなかった(図14)。該E
GF転写は、同じ細胞系の何れにおいても発現せず、ま
た種々の組織のうち腎でのみ観察された。最後に、TG
Fαメッセージは何れの間質繊維芽細胞系でも検出され
ず、また上皮細胞系の夫々において種々のレベルで発現
された。また、試験された組織のうち、腎において、低
レベルで検出された(図14)。
び皮膚成熟繊維芽細胞由来のRNA中には、単一の2.4
kb転写が存在している一方で、(B5/589)上皮細胞系お
よび(HA83)グリア細胞系、或いはヒト伏在静脈上皮細
胞の一次培養中には何等の転写も検出されなかったこと
が明らかである。
の阻害>ヘパリンは、種々の培養中の標的細胞に対する
aFGFのマイトジェン活性を実質的に増大させ、また
これを熱による不活性化に対して安定化させることが示
されている(II−21,II−22)。bFGFに密に結
合するにもかかわらず、ヘパリンは、そのマイトジェン
活性に対して最小限の影響しかもたない。KGFのFG
Fに対する関係の観点から、KGFマイトジェン活性に
対するヘパリンの影響が調べられた。下記の表II−1に
示したように、培地中にヘパリンが含まれているとき、
KGFに応答したBALB/MKによるチミジン取り込みは16
倍阻害された。対照的に、aFGFおよびbFGFの両
者の活性は同一の処理によって増大した。
ロタイタープレートに塗布し、血清含有培地中で成長さ
せて集団を形成させ、その後、試料添加前に血清非含有
培地に24−72時間置いた。既述の通りに有糸分裂誘
発検定を行なった(実験部分I上部およびII−3参
照)。示される場所においては、培養培地中に最終濃度
20μg/mlでヘパリンが含有されている。全ての成
長因子の濃度は、50ng/mlであった。表中の結果
は、ヘパリンの存在下(+)もしくは非存在下(−)で
の指示された検定細胞において、 3H−チミジン取込み
の何倍の刺激であるかを表わす。各々の値は、各点が順
々に重複分析の平均値を表わす2つの独立した実験から
の平均結果を示す。
GFマイトジェン活性に対する影響と他の成長因子に対
する影響との比較を纏めて示しており、KGFに応答し
たBALB/MK細胞によるDNA中へのチミジン取り込みが
ヘパリンによって阻害される一方、これとは対照的に、
aFGFおよびbFGFの活性に応答したときは何れの
場合も同じ処理によって増大することを示している。
で良く知られ、かつ上記の方法セクションに要約した標
準的な方法論を用いて、KGFまたはKGF様ポリペプ
チドを認識する幾種類かの抗体が調製された。これらに
は次のものが含まれる:ヒト繊維芽細胞由来の完全かつ
精製されたタンパクに対して、マウス内で生成されたモ
ノクローナル抗体;KGF・cDNAから予測されるア
ミノ酸配列に基づいた配列を有する合成ペプチドに対し
て、兎内で生成されたポリクローナル抗体;ヒト繊維芽
細胞から天然に分泌されたKGFおよび E.coli 中で産
生された組換えKGF(次のセクション参照)の両方に
対して、兎内で生成されたポリクローナル抗体。
たモノクローナル抗体が精製された。この三つの全て
が、固相(ELISA )検定において、天然に生じたKGF
と同様に組換え体を認識した。何れも変性条件下でKG
Fと交差反応せず(ウエスタンブロット)、またBALB/
MKバイオアッセイにおいてKGFのマイトジェン活性を
中和しない。
ペプチドを用いて、ポリクローナル抗体が生成された。
このアミノ酸配列は、KGFの32番から44番までの残基
(図II−1参照)にたいして、cDNAによって45位置
に実際にコードされる asp残基の代りにR(arg )残基
を加えたものに対応する。天然KGFポリペプチドにお
いて、このasp 残基は多分グリコシル化されており、従
って、当該ポリペプチドから直接に得られたアミノ酸配
列データ中では argであるように思える(以下の考察の
項を参照のこと)。この合成ペプチドで生成されたポリ
クローナル抗体は、ELISA およびウエスタンブロット分
析において、少なくとも10 ng の微量のタンパクを検出
できるレベルの感度で、天然に生じたKGFおよび組換
えKGFの両方を認識する。しかし、これら抗体はBALB
/MK におけるKGFのマイトジェン活性を中和しない。
ローナル抗血清は、ELISA およびウエスタンブロット検
定の両者において、KGFを認識する。また、BALB/MK
バイオアッセイにおいて、このような抗体はKGFのマ
イトジェン活性を阻害するように思える。
coli中でポリペプチドを製造するために、KGF・cD
NAは、そのコーディング配列をプラスミド pKK233-2
(II−31)内でハイブリッドtrk プロモータ(trp お
よびlac プロモータの要素からなる)の制御下に置くこ
とによって発現された。これを達成するために、成熟K
GF分子(即ち、そのシグナルペプチドを伴わないも
の)をコードする情報を含んだ特定の長さのKGF・c
DNAが、ポリメラーゼ・チェイン・リアクション技術
(II−32)を用いて増幅された。このフラグメント
は、標準的組換えDNAの方法論を用いて、ベクターの
二つの部位、即ち、S1ヌクレアーゼ消化によって平滑化
されたNcoI部位とHindIII部位との間に方向付けして挿
入された。選択された組換え体は、ATG 開始コドンがtr
k プロモータ調節要素と正しく並んでいることを確かめ
るために、そのcDNA5′末端でシーケンスされた。
がタンパク製造について試験された。要約すると、クロ
ーンは中間指数相(OD595 -0.5)まで成長され、1mM
のイソプロピルβ- D- チオガラクトピラノース(IPT
G)で90分間処理され、ウエスタンブロットのために、
細胞抽出物がSDS- ポリアクリルアミドゲルにかけら
れた。試験された全ての組換え体が、アミノ末端KGF
ペプチドに対して生成した抗体によって認識されるタン
パクを合成した。IPTGから最も大きい誘導を示した一つ
の組換え体が選択された。50μg/mlのアンピシリン及
び12.5μg/mlのテトラサイクリンを含むNZYブロス
中で、1リットルのバクテリアがOD595-0.5まで成長
され、IPTGで90分間処理された。遠心により細胞を回収
し、50mM燐酸ナトリウム(pH 7.3)、0.2M NaCl 中に再
懸濁させ、音波破砕により溶解させた。遠心分離により
細胞破片(cell debris) を除去し、溶解物を直接ヘパリ
ン-セファロース・アフィニティーカラムにかけた。
胞でのマイトジェン活性によって測定されたように、組
換えKGFは 0.6〜0.6 M NaCl中で溶出する。Mono-S(F
PLC)カラム(ファルマシア)を用いて引続き行った HSA
C の精製により、SDS- ポリアクリルアミドゲル及び
銀着色を用いた電気泳動分析により判断して、純度90%
以上と推定されるKGF調製物が得られた。
のチミジンの取り込みを効率良く刺激したが、 NIH/3T
3 繊維芽細胞に対しては最低限の活性しか示さなかっ
た。標準的なケラチン細胞バイオアッセイにおけるBALB
/MK細胞の半上限刺激は、2〜5ng/mlの濃度で達成さ
れたが、これに比較して、M426細胞から精製されたKG
Fについては10〜15ng/mlの濃度であった。
メラの構築>上記に示した研究によって、KGFは二つ
の異なった特徴を有することが示された。これらの特徴
は、他の多機能ポリペプチドのコーディング配列中に生
じることが良く知られているように、ポリペプチドの異
なった部分またはドメインによってコードされるもので
あろう。この可能性を試験するために、aFGFのC末
端コアに接合されたKGFのNH2 末端配列をコードす
るキメラDNAセグメントを、以下のように構築した。
KGF・cDNAの5′末端での Sau3AI 制限酵素部位
(GATC)が切断され、aFGF・cDNAにおける相同
部位に結合された。上記の Sau3AI 制限酵素部位は、残
基78及び79(夫々 arg 及びile ;図II−1)のための
コドン内にある。また、上記aFGF・cDNAの相同
部位は、アミノ酸39(arg) 及び40のためのコドン内にあ
る。このキメラDNAの3′および5′末端が、分泌型
のポリペプチドをコードするKGF・cDNAの挿入に
用いたと同じ方法(上記の方法を参照のこと)によっ
て、プラスミド pKK233-2のベクターDNAに結合され
た。
E.coli を構築し、また成熟KGFについて上記で説明
したようにして発現試験を行ったとき、KGFおよびa
FGFの両方の性質を有する新規生成物が産生された。
このペプチドは、ヘパリン- セファロース・クロマトグ
ラフィーによって富化され、またKGFと同様、ケラチ
ン細胞に対して標的細胞選択性を有するが、繊維芽細胞
(NIH/3T3 )に対しては最小限の活性しかもたないこと
が分かった。しかし、このキメラのマイトジェン活性は
ヘパリンによる阻害に対して感受性を欠いており、この
特徴はKGFよりもaFGFに類似している。事実、ケ
ラチン細胞に対するマイトジェン活性は、aFGFの場
合と同様に、ヘパリンによって実際に増大した。こうし
て、本発明に従えば、細胞標的特異性およびヘパリン感
受性の原因であるペプチドドメインはKGF中において
明確に区別され、また容易に分離可能である。
は、本発明の幾つかの主要な態様を例示している。これ
らには、KGFをコードするcDNAの単離、このよう
なcDNAの組換え細胞中での発現、KGFと反応する
種々の抗体の製造、並びにKGFおよびaFGFの両者
のアミノ酸配列および関連機能を具備した新規成長因子
をコードするキメラcDNAの構築および発現が含まれ
る。また、これら態様に関連した以下のポイントは、本
発明の理解を高めるために留意されるべきであろう。K
GF・cDNAから予測される配列は、ヒト繊維芽細胞
から分泌された精製KGFから決定されたアミノ酸配列
と一致した。更に、この配列は、直接のアミノ酸配列に
よっては決定的なアミノ酸の特定ができない位置につい
て、有力な説明を与えた。残基32および46は、cDNA
配列からシステインであると予測される。また、非修飾
システイン残基の加水分解された誘導体は、エドマン分
解に従っては検出できない。また、予測されたKGFア
ミノ酸配列は、残基45〜47に一つの可能なN- リンクし
たグリコシル化部位( Asn-X-Ser/Thr )を含んでい
た。もしAsn 45 がグリコシル化されると、それはここ
で用いたアミノ酸シーケンシング法によっては検出され
ないであろう。事実、NaDodSO4 /PAGE上に
おいて、KGFは精製されたタンパクについて予測され
るよりも高い分子量で、広いバンドとして移動する。こ
れはグリコシル化によって説明され得る。
パリン結合性マイトジェンである(II−10)。hst 遺
伝子はヒト胃癌(II−11)、隣接正常胃組織(II−1
2)および Kaposi 肉種(II−13)から、標準 NHI/
3T3 感染アッセイによりトランスフォーミング遺伝子と
して同定された。int-2 遺伝子の産物は、正常にはマウ
スの胚形成の最中に(II−14)、また異常にはマウス
乳癌ウイルスのプロウイルス的組込み(proviral integr
ation)の後に(II−15)発現される。
の6番目のメンバーである(II−28)。繊維芽細胞に
対する活性が欠如しているからFGF−6の名称は適切
ではないように思えるが、FGFファミリーに対する構
造的関連を示すために、この成長因子について当該命名
を用いてもよい。従来特徴付けされた全ての成長因子
は、標的として上皮細胞を排除するか、或いは感受性標
的細胞のメンバーの中に上皮細胞をんでいるかの何れか
であるから、KGFマイトジェン活性の上皮細胞に対す
る高度の特異的性質、特にケラチン細胞の感受性は独特
のものである。
現は上皮組織由来の間質細胞に特異的であるように思
え、これはその正常な上皮細胞増殖における機能を示唆
する。KGF・cDNAクローンの入手可能性によっ
て、この成長因子の異常発現が、上皮細胞の形成異常お
よび/または新形成に特徴付けられる臨床状態に関連す
るか否かを決定することが可能になる。更に、この新規
な因子を組換え技術で大量に製造できることによって、
上皮細胞の特異的成長が特に重要であるような状況にお
ける、その臨床適用の試験が可能になるに違いない。
他のタンパクとを並べて比較することによって、二つの
主な領域の相同性が明らかになる。この領域は、予測さ
れたKGF配列におけるアミノ酸65〜156 および 162〜
186 に亘っており、両者は該ファミリーの異なったメン
バーで長さが異なる短い非相同的なアミノ酸鎖で分離さ
れている(図13)。int-2 の場合、この配列の長さは
17残基であるが、hstでは二つの相同領域が隣接してい
る。KGFにおいて、この介在配列は5個のアミノ酸か
らなっている。
ノ酸配列の約44%が int-2(マウス)と同一であり、39
%がbFGF(ヒト)と同一であり、37%がaFGF
(ヒト)と同一であり、33%が hst(ヒト)と同一であ
る。この同じ領域において、6種類の全てのタンパクは
残基の19%が同一であり、保存的置換(conservative su
bstitution) が加納であり、28%の相同性を示した。
クのアミノ末端は非相同性であり、長さも種々である。
KGFおよびhst の一次翻訳生成物は、シグナル配列と
して働くと思われる疎水性N末端領域を含んでいる(II
−16)。これは、当該N末端ドメインが成熟KGF分
子中に存在しない事実によって更に支持される。これと
は対照的に、FGFは一見してシグナルペプチドを伴わ
ないで合成される(II−10)。int-2 タンパクは、不
規則なN末端疎水性残基の領域を含んでいるが(II−1
7)、このタンパクが分泌されるかどうかは分かってい
ない。更に、他のファミリーメンバーに比較すると、in
t-2 タンパクは長いC末端延長部を含んでいる。
を含んでおり、そのうちの二つはFGF関連タンパクの
ファミリーに亘って保持される(図13)。また、KG
F配列を通して5個の塩基性残基対が存在する。この同
じパターンは、他のFGFファミリーメンバーにも見出
だされており、それらとヘパリンとの相互作用に含まれ
るかもしれない(II−18)。また、二塩基部位もタン
パク分解プロセッシングの共通の標的であり、このよう
なプロセッシングによって、幾つかのKGF調製物に見
られる微細不均一性(microheterogeneity)を説明できる
であろう。
ATリッチであるが、特に3′非翻訳領域においてそう
である。該領域でのAT含量は70%で、推定コーディン
グ配列における60%および5′非翻訳領域における63%
と比較して明らかに高かった。3′非翻訳領域には多数
の ATTTA配列を含まれてた。これは、一時的に発現され
た不安定なRNAの選択的分解に含まれることが提案さ
れている。古典的な AATAAA ポリアデニル化シグナルは
存在しないが、二つの変形配列、即ち AATTAAおよび AA
TACA (II−20)が、cDNAの3′末端におけるポ
リ(A)配列の夫々24ヌクレオチド及び19ヌクレオチド
上流に検出された。
成長因子の活性コンホメーションの安定化、或いは酸性
FGF及びそのレセプタとの三元コンプレックス形成の
何れかに起因することが示唆されている(II−21,II
−22)。もしそうであるならば、ヘパリンはKGFの
遊離分子として活性でないコンホメーションを安定化
し、またはそのレセプタと効果的に相互作用できない密
なコンプレックスを形成するのであろう。
構造的類似性を反映しているのに対して、これら関連マ
イトジェンの間の標的細胞特異性は顕著に相違してい
る。FGFは、胎児の中胚葉および神経外胚葉を起源と
する最後まで分化していない細胞の分割を誘導する。繊
維芽細胞および血管内皮組織に加えて、培養された中胚
葉由来の標的細胞には、筋芽細胞、軟骨細胞および骨芽
細胞が含まれる(II−23)。FGFはまた、グリア星
状細胞および神経芽細胞に対してもマイトジェン的であ
る(II−24)。また、Kaposo肉種から単離されたオン
コジェンの産物(これはhst と同一である)も、NIH/3T
3 及び毛細血管内皮細胞の増殖を刺激する(II−2
5)。今日まで、KGF誘導マイトジェネシスは上皮細
胞においてのみ観察されており、繊維芽細胞または内皮
細胞においては検出可能な何等の活性もないことが示さ
れている(既述の実験セクションIおよびII−3参
照)。従って、KGFはFGFとは異なった細胞表面レ
セプタを介して作用すると思われる。
は、顕著なN末端相同性は全く存在しない。従って、K
GFのN末端ドメインがその独特の標的細胞特異性を説
明するに十分なものであるかどうかを決定するために、
KGFと基本型FGFとの間のキメラ分子の構築が企画
された。このような第一の組換えポリペプチド配列に関
する結果は、KGFのこのN末端ドメインは本質的にケ
ラチン細胞に対する細胞選択性をコードし、KGFのヘ
パリンに対する感受性は、aFGFの配列によって置換
されたC末端コア領域の何処かにコードされることを示
した。この新規KGF様成長因子は、通常使用される抗
凝固剤であるヘパリンの存在下で上皮細胞に特異的な成
長因子の投与が望ましいような臨床的適用において有利
であろう。また、キメラに関する追加の研究は、C末端
コアの何れの特異的ドメインが、それらの生物学的活性
に対するヘパリンの異なった効果に寄与するかに関する
洞察をも提供するに違いない。
的で、この明細書中で今まで指摘した刊行物、特許およ
び特許出願は、ここに参照として明細書中に組み込まれ
る。
らか詳細に説明した。また、本発明の範囲を逸脱するこ
となく、その形式および詳細において種々の組み合わせ
を行い得ることは明らかであろう。
し培地のヘパリン- セファロース・アフィニティーカラ
ムクロマトグラフィーの結果を描いたもので、マウスケ
ラチン細胞(BALB/MK)のためのマイトジェン活性の90
%以上が 0.6M NaClで溶出されたことを示してい
る。
いて、ヒト繊維芽細胞からのマイトジェンを更に精製し
た結果のうち、BALB/MKマイトジェン活性の逆相
(C4)HPLC上のプロファイルを示している。
ーから選択された画分の電気泳動分析(NaDodSO
4 /PAGE)を示しており、ピークHPLC画分が銀
染色ゲル上の単一バンドを含むことを示している。
ーされたBALB/MK細胞内におけるDNA合成の棒グラフ
であり、活性プロファイルを横切るタンパクバンドの強
度と良く相関した相対的マイトジェン活性を示してい
る。
asPac )カラムランでの分子篩クロマトグラフィーを用
いた、RP-HPLC に代わる別の精製ステップを示してお
り、ここではBALB/MKバイオアッセイにおけるマイトジ
ェン活性の主要ピークが現れている。
LB/MKのDNA合成と、他の成長因子に応答したBALB/
MKのDNA合成との間の比較を示している。
た、化学的に限定された培地中におけるBALB/MK細胞の
成長の比較を示している。
的模式図を示している。
想されるアミノ酸配列を示している。
び予想されるアミノ酸配列を示している。
び予想されるアミノ酸配列を示している。
Aのノーザンブロット分析による同定を示している。
クドメイン、推定シグナル配列および二つの保存された
システイン残基を強調して、KGFを含むFGFファミ
リー関連分子間のトポロジ−比較を示している。
組織におけるKGF関連mRNAの(ノーザンブトッ
ト)分析を示す電気泳動写真である。
Claims (2)
- 【請求項1】 被検サンプル中におけるケラチン細胞の
マイトジェン活性を試験するためのバイオアッセイ方法
であって、 i)KGF中和抗体の存在下において、前記被検サンプ
ルの一部を、周密状態に増殖され且つ血清を含まない培
地中に維持されたケラチン細胞の培養体に露出させて、
前記ケラチン細胞におけるDNA合成の刺激レベルを測
定することと、 ii)KGF中和抗体の不存在下において、前記被検サ
ンプルの他の一部を、周密状態に増殖され且つ血清を含
まない培地中に維持されたケラチン細胞の培養体に露出
させて、前記ケラチン細胞におけるDNA合成の刺激レ
ベルを測定することとを具備し、 上記工程(i)におけるDNA合成の刺激レベルが、上
記工程(ii)におけるDNA合成の刺激レベルに比較
して低いことにより、前記被検サンプル中におけるKG
Fの存在が示される方法。 - 【請求項2】 請求項1に記載のバイオアッセイ方法で
あって、前記KGF中和抗体は、下記のアミノ酸配列を
含むタンパクに対して特異的である方法。 CNDMTPEQMATNVNCS SPERHTRSYDYMEGGDIRVRRLF CRTQWYLRIDKRGKVKGTQEMKN NYNIMEIRTVAVGIVAIKGVESEF YLAMNKEGKLYAKKECNEDCNFK ELILENHYNTYASAKWTHNGGEM FVALNQKGIPVRGKKTKKEQKTA HFLPMAIT
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