JP2825645B2 - 2―(4―ヒドロキシフェノキシ―)プロピオン酸の発酵による製造方法 - Google Patents
2―(4―ヒドロキシフェノキシ―)プロピオン酸の発酵による製造方法Info
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Mushroom Cultivation (AREA)
- Low-Molecular Organic Synthesis Reactions Using Catalysts (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 本発明は2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピ
オン酸の製造方法に関する。
オン酸の製造方法に関する。
2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸
は、特に除草剤の製造についての有用な中間体である。
は、特に除草剤の製造についての有用な中間体である。
2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸の
ラセミ形、ならびに鏡像体純粋形の化学的製造方法は公
知である。この方法は、ヒドロキノンから出発するが、
その際、分離が困難な副生成物が生じるという欠点を有
する。従って、経済的方法は不可能である。
ラセミ形、ならびに鏡像体純粋形の化学的製造方法は公
知である。この方法は、ヒドロキノンから出発するが、
その際、分離が困難な副生成物が生じるという欠点を有
する。従って、経済的方法は不可能である。
微生物が芳香族化合物をヒドロキシル化することがで
きるのは公知である。この場合、原則として、ビスヒド
ロキシル化された化合物または多様な位置異性体の混合
物が生じる(R.J.W.Byrde,D.Woodcook,Biochem.J.65,68
2(1957))。
きるのは公知である。この場合、原則として、ビスヒド
ロキシル化された化合物または多様な位置異性体の混合
物が生じる(R.J.W.Byrde,D.Woodcook,Biochem.J.65,68
2(1957))。
2−(フェノキシ−)プロピオン酸を微生物により2
−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸にする
位置選択的酸化は今まで公知でなかった。
−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸にする
位置選択的酸化は今まで公知でなかった。
多様な微生物が、廉価な2−(フェノキシ−)プロピ
オン酸を、高度に位置選択的に酸化して、2−(4−ヒ
ドロキシフェノキシ−)プロピオン酸にすることが見出
されたのは意想外であった。
オン酸を、高度に位置選択的に酸化して、2−(4−ヒ
ドロキシフェノキシ−)プロピオン酸にすることが見出
されたのは意想外であった。
本発明の対象は、2−(フェノキシ−)プロピオン酸
またはその塩を、好気性条件下で、微生物の存在で、酸
化することを特徴とする2−(4−ヒドロキシフェノキ
シ−)プロピオン酸の発酵による製造方法である。
またはその塩を、好気性条件下で、微生物の存在で、酸
化することを特徴とする2−(4−ヒドロキシフェノキ
シ−)プロピオン酸の発酵による製造方法である。
この方法にとって、多数の微生物、特に菌類および細
菌が適している。使用可能な菌類は、たとえば土壌試
料、特に腐植質含有土壌試料から単離することができ
る。特にこの反応に適しているのはクロカビ菌株(Aspe
rgillus niger−Staemme)である。さらに、ハクキョウ
サンビョウキン(Beauveria)、Paecilomyces、Sclerot
icum、ヒトヨタケ(Coprinus)の属の多様な菌類も適し
ており、これらはたとえば、菌株収集機関から取り寄せ
ることができおよびヒドロキシル化のためのその適性は
簡単な予備実験で測定することができる。適当な細菌も
特に土壌試料から単離することができる。細菌として特
にStreptomyces菌株が挙げられる。
菌が適している。使用可能な菌類は、たとえば土壌試
料、特に腐植質含有土壌試料から単離することができ
る。特にこの反応に適しているのはクロカビ菌株(Aspe
rgillus niger−Staemme)である。さらに、ハクキョウ
サンビョウキン(Beauveria)、Paecilomyces、Sclerot
icum、ヒトヨタケ(Coprinus)の属の多様な菌類も適し
ており、これらはたとえば、菌株収集機関から取り寄せ
ることができおよびヒドロキシル化のためのその適性は
簡単な予備実験で測定することができる。適当な細菌も
特に土壌試料から単離することができる。細菌として特
にStreptomyces菌株が挙げられる。
本発明による方法を実施するために、適当な菌株を2
−(ペルオキシ−)プロピオン酸を含有する培養基に植
え付け、その中で、それぞれの微生物に望ましい成長−
もしくは産生条件で好気性にインキュベートする。発酵
は、1〜10日間連続的または間欠的に行うことができ
る。
−(ペルオキシ−)プロピオン酸を含有する培養基に植
え付け、その中で、それぞれの微生物に望ましい成長−
もしくは産生条件で好気性にインキュベートする。発酵
は、1〜10日間連続的または間欠的に行うことができ
る。
使用した微生物の細胞(これは、休止している増殖し
ない細胞の形で使用することもできる)を、基質に直接
作用させる。任意の公知のインキュベート法を使用する
ことができ、通気され撹拌される深いタンクの形の発酵
槽が特に有利である。最も良い結果は液体培養基のイン
キュベートにより得られる。
ない細胞の形で使用することもできる)を、基質に直接
作用させる。任意の公知のインキュベート法を使用する
ことができ、通気され撹拌される深いタンクの形の発酵
槽が特に有利である。最も良い結果は液体培養基のイン
キュベートにより得られる。
炭素源、窒素源、無機塩および場合によりわずかな量
の微量元素およびビタミンを含有する培養基が適当であ
る。窒素源として、無機または有機窒素化合物またはこ
の化合物を含有する材料を使用することができる。この
例は、アンモニウム塩、硝酸塩、トウモロコシ膨潤水、
ビール酵母自己分解物、大豆粉、小麦グルテン、酵母抽
出液、酵母、尿素およびジャガイモタンパク質である。
炭素源として、たとえばグルコースのような糖、グリセ
リンのようなポリオールまたは大豆油のような脂肪を使
用することができる。
の微量元素およびビタミンを含有する培養基が適当であ
る。窒素源として、無機または有機窒素化合物またはこ
の化合物を含有する材料を使用することができる。この
例は、アンモニウム塩、硝酸塩、トウモロコシ膨潤水、
ビール酵母自己分解物、大豆粉、小麦グルテン、酵母抽
出液、酵母、尿素およびジャガイモタンパク質である。
炭素源として、たとえばグルコースのような糖、グリセ
リンのようなポリオールまたは大豆油のような脂肪を使
用することができる。
無機塩の例は、カルシウム、マグネシウム、マンガ
ン、カリウム、亜鉛、銅、鉄およびその他の金属の塩が
挙げられる。塩のアニオンとして、特にリン酸イオンが
挙げられる。場合により、培養基に成長因子、たとえば
ビオチン、リボフラビンまたはその他のビタミンが添加
される。
ン、カリウム、亜鉛、銅、鉄およびその他の金属の塩が
挙げられる。塩のアニオンとして、特にリン酸イオンが
挙げられる。場合により、培養基に成長因子、たとえば
ビオチン、リボフラビンまたはその他のビタミンが添加
される。
前記した培養物質の混合比は、発酵の種類に依存し、
これは個々の場合において決められる。
これは個々の場合において決められる。
一般に、本発明による方法の実施のために、約1〜10
0g/lのフェノキシプロピオン酸濃度が適しており、約5
〜50g/lの濃度が有利である。
0g/lのフェノキシプロピオン酸濃度が適しており、約5
〜50g/lの濃度が有利である。
この培養条件は、最も有効な収率を達成するように決
められる。有利な培養温度は20〜40℃である。25〜30℃
の温度が特に有利である。pH値は、3〜9の範囲内に決
めるのが有利である。4〜7のpH値が特に有利である。
一般に、15〜100時間のインキュベート時間で十分であ
る。この時間内で、培養基中に所望の生成物の最大量が
蓄積される。この酸は、有利に塩、たとえばナトリウム
塩の形で添加される。この酸は、培養基に、最初に一度
に、生じた増殖の後に、または培養の間に数回に分けて
または連続的に添加することができる。
められる。有利な培養温度は20〜40℃である。25〜30℃
の温度が特に有利である。pH値は、3〜9の範囲内に決
めるのが有利である。4〜7のpH値が特に有利である。
一般に、15〜100時間のインキュベート時間で十分であ
る。この時間内で、培養基中に所望の生成物の最大量が
蓄積される。この酸は、有利に塩、たとえばナトリウム
塩の形で添加される。この酸は、培養基に、最初に一度
に、生じた増殖の後に、または培養の間に数回に分けて
または連続的に添加することができる。
2−(ペルオキシ−)プロピオン酸を使用するのが有
利であるが、その塩を使用することもできる。有利な塩
はアルカリ金属−およびアルカリ土類金属塩、たとえ
ば、Na−、K−、Li−塩である。
利であるが、その塩を使用することもできる。有利な塩
はアルカリ金属−およびアルカリ土類金属塩、たとえ
ば、Na−、K−、Li−塩である。
この新規の方法は、ラセミ体の2−(4−ヒドロキシ
フェノキシ−)プロピオン酸の酸化のため、ならびにそ
の対掌体の酸化のために適している。本発明による方法
の場合、不斉中心には触れられないままである。たとえ
ば、R−2−(フェノキシ)−プロピオン酸を使用した
場合、立体配置を維持しながら、相応するR−2−(4
−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸が得られる。
他のヒドロキシル化生成物は、この反応において観察さ
れない。従って、この新規の方法は、容易にかつ廉価に
2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸を選
択的に製造する方法である。
フェノキシ−)プロピオン酸の酸化のため、ならびにそ
の対掌体の酸化のために適している。本発明による方法
の場合、不斉中心には触れられないままである。たとえ
ば、R−2−(フェノキシ)−プロピオン酸を使用した
場合、立体配置を維持しながら、相応するR−2−(4
−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸が得られる。
他のヒドロキシル化生成物は、この反応において観察さ
れない。従って、この新規の方法は、容易にかつ廉価に
2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プロピオン酸を選
択的に製造する方法である。
次に、本発明を詳説する: 例1 多様な細菌菌株を試験するために、2つの液体培養基
を使用した: 培養基A グルコース 20g/l 酵母抽出液 5g/l 硫酸アンモニウム 5g/l 硫酸マグネシウム−7水和物 0.5g/l 硫酸マンガン−1水和物 0.05g/l リン酸二水素カリウム 1.5g/l リン酸水素二カリウム 3.6g/l (R)−2−(フェノキシ−)プロピオン酸 1g/l 硫酸鉄(II)−1水和物 2mg/l 硫酸亜鉛(II)−4水和物 100μg/l ホウ酸 300μg/l 塩化コバルト(II)−6水和物 200μg/l 酸化銅(II)−2水和物 10μg/l 塩化ニッケル(II)−6水和物 20μg/l モリブデン酸ナトリウム−2水和物 30μg/l pH値は5N苛性ソーダ液で6.8に調節した。グルコース
およびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オート
クレーブにかけた。(R)−2−(フェノキシ−)プロ
ピオン酸は、わずかな5N苛性ソーダ液と一緒に水に溶か
し、無菌濾過した。残留した培養液を121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。
を使用した: 培養基A グルコース 20g/l 酵母抽出液 5g/l 硫酸アンモニウム 5g/l 硫酸マグネシウム−7水和物 0.5g/l 硫酸マンガン−1水和物 0.05g/l リン酸二水素カリウム 1.5g/l リン酸水素二カリウム 3.6g/l (R)−2−(フェノキシ−)プロピオン酸 1g/l 硫酸鉄(II)−1水和物 2mg/l 硫酸亜鉛(II)−4水和物 100μg/l ホウ酸 300μg/l 塩化コバルト(II)−6水和物 200μg/l 酸化銅(II)−2水和物 10μg/l 塩化ニッケル(II)−6水和物 20μg/l モリブデン酸ナトリウム−2水和物 30μg/l pH値は5N苛性ソーダ液で6.8に調節した。グルコース
およびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オート
クレーブにかけた。(R)−2−(フェノキシ−)プロ
ピオン酸は、わずかな5N苛性ソーダ液と一緒に水に溶か
し、無菌濾過した。残留した培養液を121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。
培養基B グルコース 20g/l トウモロコシ膨潤水 40g/l リン酸二水素カリウム 1.5g/l リン酸水素二カリウム 3.6g/l (R)−2−(フェノキシ)プロピオン酸 1g/l このpH値を5N苛性ソーダ液で6.8に調節した。グルコ
ースおよびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。(R)−2−(フェノキシ−)
プロピオン酸をわずかな5N苛性ソーダ液と共に水に溶か
し、無菌濾過した。残留した培養液を121℃で45分間オ
ートクレーブにかけた。
ースおよびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。(R)−2−(フェノキシ−)
プロピオン酸をわずかな5N苛性ソーダ液と共に水に溶か
し、無菌濾過した。残留した培養液を121℃で45分間オ
ートクレーブにかけた。
無菌培養基20mlをそれぞれ、無菌の綿で封鎖しておい
た無菌の三角フラスコ100mlに満たした。それぞれ試験
すべき細菌菌株を白金耳に取ってフラスコに植え込ん
だ。次に、このフラスコを28℃で250UmMで3から7日間
振盪しながらインキュベートした。引き続き、発酵液10
00μlを取り出し、1N HCl 100μlおよび酢酸エチル
エステル800μlを添加し、15秒間強力に撹拌した。有
機相700μlを注意深く取り去り、50℃で、穏やかな窒
素流下で試験管中で蒸発させた。残分を酢酸エチルエス
テル70μlに溶かし、ガスクロマトグラフィーのための
試験管中に定量的に移した。これに、N−メチル−N−
トリメチルシリルトリフルオロアセトアミド(MSTFA)
を添加した。次いで、この試料をガスクロマトグラフィ
ーにより調査した。外部標準として、化学合成した純正
試料(R,S)−2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プ
ロピオン酸を使用した。
た無菌の三角フラスコ100mlに満たした。それぞれ試験
すべき細菌菌株を白金耳に取ってフラスコに植え込ん
だ。次に、このフラスコを28℃で250UmMで3から7日間
振盪しながらインキュベートした。引き続き、発酵液10
00μlを取り出し、1N HCl 100μlおよび酢酸エチル
エステル800μlを添加し、15秒間強力に撹拌した。有
機相700μlを注意深く取り去り、50℃で、穏やかな窒
素流下で試験管中で蒸発させた。残分を酢酸エチルエス
テル70μlに溶かし、ガスクロマトグラフィーのための
試験管中に定量的に移した。これに、N−メチル−N−
トリメチルシリルトリフルオロアセトアミド(MSTFA)
を添加した。次いで、この試料をガスクロマトグラフィ
ーにより調査した。外部標準として、化学合成した純正
試料(R,S)−2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)プ
ロピオン酸を使用した。
次の表は、結果の一覧表である。
例2 多様な土壌試料から、DREWS(Mikrobiologisches Pra
ktikum,第3版,Springer Verlag,47−48頁,1976)の手
順により、約400の異なる新規のStreptomyceten菌株を
単離した。これを例1の手順により試験した。次の表
は、陽性であると確認された菌株の反応率に関する一覧
表である。
ktikum,第3版,Springer Verlag,47−48頁,1976)の手
順により、約400の異なる新規のStreptomyceten菌株を
単離した。これを例1の手順により試験した。次の表
は、陽性であると確認された菌株の反応率に関する一覧
表である。
例3 次の成分を含有する液体培養基を製造した: グルコース 20g/l 酵母抽出液 5g/l 硫酸アンモニウム 5g/l 硫酸マグネシウム−7水和物 0.5g/l 硫酸マンガン−1水和物 0.05g/l リン酸二水素カリウム 1.5g/l リン酸水素二カリウム 3.6g/l Carbopol 946 (特に高い分子量を有するカルボキシビニルポリマ
ー) 3g/l (R)−2−(フェノキシ)プロピオン酸 3g/l 硫酸鉄(II)−1水和物 2mg/l 硫酸亜鉛(II)−4水和物 100μg/l ホウ酸 300μg/l 塩化コバルト(II)−6水和物 200μg/l 塩化銅(II)−2水和物 10μg/l 塩化ニッケル(II)−6水和物 20μg/l モリブデン酸ナトリウム−2水和物 30μg/l このpH値を5N苛性ソーダ液で6.8に調節した。グルコ
ースおよびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。この(R)−2−(フェノキシ
−)プロピオン酸をわずかな5N苛性ソーダ液と共に水に
溶かし、無菌濾過した。得られた培養基を121℃で10分
間オートクレーブにかけた。無菌培養基20mlをそれぞ
れ、無菌の100ml三角フラスコに充填し、これを無菌の
綿で封鎖した。菌類菌株のクロカビ(Aspergillus nige
r ATCC 11394)の芽胞を白金耳に取りフラスコに植え込
んだ。次に、このフラスコを28℃で、250UpMで3日間振
盪させてインキュベートした。引き続き、発酵液1000μ
lを取り出し、1N HCl 100μlおよび酢酸エチルエス
テル800μlを添加し、15秒間強力に撹拌した。有機相7
00μlを注意深く取り出し、50℃で穏やかな窒素流下で
試験管中で蒸発させた。残分を酢酸エチルエステル70μ
lに溶かし、ガスクロマトグラフィーのための試験管に
定量的に移した。これにN−メチル−N−トリメチルシ
リルトリフルオロアセトアミド(MSTFA)30μlを添加
した。次に、この試料をガスクロマトグラフィーにより
試験した。標準として、純正試料2−(4−ヒドロキシ
フェノキシ−)プロピオン酸を用いた。
ー) 3g/l (R)−2−(フェノキシ)プロピオン酸 3g/l 硫酸鉄(II)−1水和物 2mg/l 硫酸亜鉛(II)−4水和物 100μg/l ホウ酸 300μg/l 塩化コバルト(II)−6水和物 200μg/l 塩化銅(II)−2水和物 10μg/l 塩化ニッケル(II)−6水和物 20μg/l モリブデン酸ナトリウム−2水和物 30μg/l このpH値を5N苛性ソーダ液で6.8に調節した。グルコ
ースおよびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。この(R)−2−(フェノキシ
−)プロピオン酸をわずかな5N苛性ソーダ液と共に水に
溶かし、無菌濾過した。得られた培養基を121℃で10分
間オートクレーブにかけた。無菌培養基20mlをそれぞ
れ、無菌の100ml三角フラスコに充填し、これを無菌の
綿で封鎖した。菌類菌株のクロカビ(Aspergillus nige
r ATCC 11394)の芽胞を白金耳に取りフラスコに植え込
んだ。次に、このフラスコを28℃で、250UpMで3日間振
盪させてインキュベートした。引き続き、発酵液1000μ
lを取り出し、1N HCl 100μlおよび酢酸エチルエス
テル800μlを添加し、15秒間強力に撹拌した。有機相7
00μlを注意深く取り出し、50℃で穏やかな窒素流下で
試験管中で蒸発させた。残分を酢酸エチルエステル70μ
lに溶かし、ガスクロマトグラフィーのための試験管に
定量的に移した。これにN−メチル−N−トリメチルシ
リルトリフルオロアセトアミド(MSTFA)30μlを添加
した。次に、この試料をガスクロマトグラフィーにより
試験した。標準として、純正試料2−(4−ヒドロキシ
フェノキシ−)プロピオン酸を用いた。
例4 次の成分を含有する液体培養基を製造した: グルコース 40g/l 酵母抽出液 10g/l 硫酸マグネシウム−7水和物 0.5g/l 硫酸マンガン−1水和物 0.05g/l リン酸二水素カリウム 1.5g/l リン酸水素二カリウム 3.6g/l (R)−2−(フェノキシ−)プロピオン酸 1g/l 硫酸鉄(II)−1水和物 2mg/l 硫酸亜鉛(II)−4水和物 100μg/l ホウ酸 300μg/l 塩化コバルト(II)−6水和物 200μg/l 塩化銅(II)−2水和物 10μg/l 塩化ニッケル(II)−6水和物 20μg/l モリブデン酸ナトリウム−2水和物 30μg/l このpH値を5N苛性ソーダ液で6.8に調節した。グルコ
ースおよびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。この(R)−2−(フェノキシ
−)プロピオン酸をわずかな5N苛性ソーダ液と共に水に
溶かし、無菌濾過した。得られた培養基を121℃で10分
間オートクレーブにかけた。無菌培養基50mlをそれぞ
れ、無菌の100ml三角フラスコに充填し、これを無菌の
綿で封鎖した。
ースおよびリン酸塩をそれぞれ別々に121℃で10分間オ
ートクレーブにかけた。この(R)−2−(フェノキシ
−)プロピオン酸をわずかな5N苛性ソーダ液と共に水に
溶かし、無菌濾過した。得られた培養基を121℃で10分
間オートクレーブにかけた。無菌培養基50mlをそれぞ
れ、無菌の100ml三角フラスコに充填し、これを無菌の
綿で封鎖した。
Beauveria bassiana ATCC 7159の72hの古い前培養2.5
ml(同じ培養基で培養するが、(η)−2−(フェノキ
シ−)プロピオン酸5g/lだけ存在させる)に植え込んだ
後、28℃で4〜5日間、200Upmで振盪させてインキュベ
ートさせた。引き続くガスクロマトグラフィー分析は、
使用した酸の98%がヒドロキシル化していたことを示し
た。
ml(同じ培養基で培養するが、(η)−2−(フェノキ
シ−)プロピオン酸5g/lだけ存在させる)に植え込んだ
後、28℃で4〜5日間、200Upmで振盪させてインキュベ
ートさせた。引き続くガスクロマトグラフィー分析は、
使用した酸の98%がヒドロキシル化していたことを示し
た。
使用した(R)−2−(フェノキシ−)プロピオン酸
の98%が(R)−2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)
プロピオン酸に酸化されていた。2−(フェノキシ−)
プロピオン酸のS−鏡像体またはラセミ体を使用した場
合も、同様の結果が得られた。
の98%が(R)−2−(4−ヒドロキシフェノキシ−)
プロピオン酸に酸化されていた。2−(フェノキシ−)
プロピオン酸のS−鏡像体またはラセミ体を使用した場
合も、同様の結果が得られた。
例5 クロカビ(Aspergillus niger)の新規の菌株を、腐
植含有土壌試料から、DREWS(Mikrobiologisches Prakt
ikum,第3版,Springer Verlag,51−53頁(1976))の方
法により単離した。この菌株(番号1777)を例3の手順
により試験した。3日後に、使用した酸の99.8%が酸化
された。
植含有土壌試料から、DREWS(Mikrobiologisches Prakt
ikum,第3版,Springer Verlag,51−53頁(1976))の方
法により単離した。この菌株(番号1777)を例3の手順
により試験した。3日後に、使用した酸の99.8%が酸化
された。
例6 Aspergillus niger種の他の菌株を、例3に記載した
ように試験し、3ないし7日間後に発酵時間を分析し
た。次の表はこの結果の一覧表である: 例7 例3と同様に、他の菌類を試験し、3または7日後に
発酵時間を分析した。
ように試験し、3ないし7日間後に発酵時間を分析し
た。次の表はこの結果の一覧表である: 例7 例3と同様に、他の菌類を試験し、3または7日後に
発酵時間を分析した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI (C12P 7/42 C12R 1:55) (C12P 7/42 C12R 1:645) (C12P 7/42 C12R 1:66) (C12P 7/42 C12R 1:685) (C12P 7/42 C12R 1:79) (72)発明者 ハウアー,ベルンハルト ドイツ連邦共和国 デー―6701 フスゲ ンハイム メロヴィンガーシュトラーセ 1 (72)発明者 ジーゲル,ハルド ドイツ連邦共和国 デー―6720 シュパ イアー ハンス―プルマン―アレー 25 (56)参考文献 特開 昭61−109753(JP,A) Journal of the Ch emical Society.Per kin Transactions 1.,No.22,P.2438−2443 (1976) (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12P 7/42 CA(STN) REGISTRY(STN)
Claims (1)
- 【請求項1】2−(フェノキシ−)プロピオン酸又はそ
の塩を、好気性条件下で、放線菌又は菌類の存在で酸化
させることを特徴とする2−(4−ヒドロキシフェノキ
シ−)プロピオン酸の発酵による製造方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3910024A DE3910024A1 (de) | 1989-03-28 | 1989-03-28 | Verfahren zur fermentativen herstellung von 2-(4-hydroxipenoxi-)propionsaeure |
DE3910024.3 | 1989-03-28 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04503755A JPH04503755A (ja) | 1992-07-09 |
JP2825645B2 true JP2825645B2 (ja) | 1998-11-18 |
Family
ID=6377309
Family Applications (1)
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