JP2021176312A - 細胞を単離し分析するためのシステムおよび方法 - Google Patents

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Abstract

【課題】単一細胞を単離し分析するための方法を提供する。【解決手段】基板に画定されたウェルアレイであって、各ウェルが、開放面と、単一細胞形式と単一クラスタ形式のいずれかで細胞を捕捉するように構成されたウェルキャビティとを備えるウェルアレイと、ウェルアレイよりも上の流体リザーバを有する流体送達モジュールとを備え、そこを通る流体の流れは、基板の広範面に平行な方向の流体経路に沿って制御される、システムを用い、細胞の集団および非細胞粒子の集団を流体リザーバを通してウェルアレイ全体に分配して、ウェルアレイ内に個々の細胞粒子ペアの捕捉効率を高めるステップと、ウェルのセットにて捕捉された細胞粒子ペアを処理するステップとを含む、方法である。【選択図】図１

Description

関連出願の相互参照
［０００１］この出願は、２０１７年８月２９日に提出された米国仮出願番号６２／５５１，５７５および２０１８年５月１５日に提出された米国仮出願番号６２／６７１，７５０の利益を主張するものであり、これらはともにこの参照により全体として本書に組み込まれる。
技術分野
［０００２］本発明は、一般に、細胞を選別し分析する分野に関し、より具体的には、細胞選別分野において細胞を捕捉し分析するための新規かつ有用なシステムおよび方法に関する。
［０００３］細胞特異的な薬物検査、診断、およびその他のアッセイへの関心が高まっているため、細胞分析の分野では、個々の細胞の単離、識別、取得を可能にするシステムがより望まれている。さらに、個別化医療の開始により、低コスト、高忠実度の細胞選別および遺伝子配列決定システムが非常に望まれている。しかし、細胞捕獲システムの従来技術には、細胞固有の試験への広範な採用を妨げる様々な欠点がある。例えば、フローサイトメトリでは、細胞を同時に識別して分類する必要があり、細胞の観察は細胞が分類される時点に制限されている。フローサイトメトリでは、単一のフローサイトメトリワークフローにおいて同じ細胞に複数の分析を行うことができず、任意の細胞亜集団の分類が不可能である。他の例では、従来のマイクロ流体デバイスは、細胞選択は細胞特異的抗体に依存し、ここではマイクロ流体デバイスの基質に結合した抗体は、所望の抗原を発現する細胞に選択的に結合する。また、従来のマイクロ流体デバイスでは、細胞に損傷を与えずにその後の細胞除去ができず、特定の抗原を発現している細胞のみを捕捉するため、必要となり得る非発現細胞は、これらのシステムでは捕捉されない。このような細胞生存率の低下は、選別または単離された細胞で生細胞アッセイを実施することを妨げる可能性がある。セルラーフィルタは、細胞に大きな損傷を与えることなくサイズに基づいてサンプル要素を分離できるが、目詰まりが発生し、特定細胞の識別、個々の細胞の単離、識別された個々の細胞の取得ができない。この分野の他の技術では、個々の細胞に複合アッセイを行う能力がさらに制限されるが、サンプル調製ステップと過度に高価な機器が最小限に抑えられる。
［０００４］単一細胞分析の分野において、がん幹細胞などの希少細胞の単離、同定、および遺伝子分析では、現在、精度、速度、およびスループットに限界がある。さらに、単離プロセスにおいて細胞を識別する典型的な方法は、高温での固定、染色、または追加の生化学プロセスを必要とし、これが処理速度の低下に加えて、細胞および／またはその遺伝物質を損傷し得るため、多くのシステムでは、生細胞または細胞から抽出された生物材料の生存率および／または品質が維持されない。したがって、細胞選別分野では、下流での分析のために、メッセンジャーＲＮＡなどの生体分子を含む細胞および細胞内物質の生存率を最大化できる、細胞を単離および分析するための新しい有用なシステムおよび方法を作成する必要があった。さらに、生体分子の分子インデックス付けと遺伝子転写処理をさらに含む細胞単離ワークフローは、完全長ｍＲＮＡ、全ゲノム、および／または単一細胞エクソームの大規模な並列ＲＮＡシーケンスを含む、細胞分析アプリケーションのスループットと精度を向上させるいくつかの利点を提供できる。これまで、単一の統合デバイスで単一細胞の分離とＤＮＡ／ＲＮＡシーケンスライブラリの構築を容易にするシステムや方法はなかった。本書で説明するシステムと方法は、単一細胞の捕捉、生体分子ラベリング、流体送達、温度調節などの機能を統合することでこれらの制限に対処し、細胞をキャプチャするのに用いられる同じウェルアレイ内の個々の細胞により高度な生化学プロセスを実行できるようにし（例：逆転写、ポリメラーゼ連鎖反応、単一細胞ゲノム（ＤＮＡ／ＲＮＡ）シーケンス）、それによって、所望の細胞のキャプチャ効率が大幅に向上し、単一細胞実験ワークフローの速度と分析機能が向上する。
［０００５］図１は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の実施形態の概略図である。 ［０００６］図２Ａ〜２Ｃは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す。 ［０００７］図３Ａ〜３Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す。 ［０００８］図４Ａは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す。［０００９］図４Ｂ〜４Ｅは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の例示的な構成の概略図を示す。 ［００１０］図５Ａ〜５Ｃは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００１１］図６Ａ〜６Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００１２］図７は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００１３］図８Ａ〜８Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００１４］図９Ａ〜９Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の例示的な構成の概略図を示す。 ［００１５］図１０は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例の概略図を示す。 ［００１６］図１１Ａ〜１１Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例の概略図を示す。 ［００１７］図１２Ａ〜１２Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す。 ［００１８］図１３Ａは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００１９］図１３Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００２０］図１４は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す。 ［００２１］図１５Ａ〜１５Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例の断面図を示す。 ［００２２］図１６は、細胞を単離および分析するためのシステムの変形例を示す。 ［００２３］図１７は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００２４］図１８は、細胞を単離および分析する方法の実施形態のフローチャートを示す。 ［００２５］図１９は、細胞を単離および分析するための方法の一部の変形例の概略図を示す。 ［００２６］図２０は、細胞を単離および分析するための方法の実施形態の一部の変形例の概略図を示す。 ［００２７］図２１は、細胞を単離および分析する方法の実施形態の一部の変形例の概略図を示す。 ［００２８］図２２は、細胞を単離および分析する方法の実施形態の一部の変形例の概略図を示す。 ［００２９］図２３は、細胞を単離および分析するための方法の実施形態の一部の変形例の概略図を示す。 ［００３０］図２４は、細胞を単離および分析する方法の実施形態のフローチャートを示す。 ［００３１］図２５は、細胞を単離および分析するための方法の実施形態の一部の変形例の概略図を示す。 ［００３２］図２６は、細胞を単離および分析する方法の実施形態の一部の変形例の概略図を示す。 ［００３３］図２７は、細胞の単離および分析のためのシステムおよび方法の一部の実施形態の例を示す。 ［００３４］図２８Ａ〜２８Ｃは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の実施形態の例を示す。 ［００３５］図２９は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００３６］図３０Ａ〜３０Ｂは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００３７］図３１Ａ〜３１Ｃは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００３８］図３２Ａ〜３２Ｃは、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００３９］図３３は、細胞を単離および分析するためのシステムの一部の変形例を示す図である。 ［００４１］図３４は、細胞を単離および分析する方法の実施形態の一部の３つの変形例の概略図を示す。 ［００４２］図３５は、細胞を単離および分析するためのシステムの実施形態を示す。
［００４３］本発明の好ましい実施形態の以下の説明は、本発明をこれらの好ましい実施形態に限定することを意図するものではなく、むしろ当業者が本発明を製造および使用できるようにすることを意図する。
１．システム
［００４４］図１に示されるように、細胞のセットを単離および分析するためのシステム１００は、広範面を有する基板１１０と、基板の第１面１１２（例えば、上側広範面）に画定されたウェルアレイ１２０とを備え、ウェルアレイ１２０の各ウェル１２８は、第１面１１２に画定された開放面１２２と、第１面１１２に直接対向する第２面１１４（例えば、下側広範面）の近くの基板内に規定された底面１２４と、底面１２４と開放面１２２との間に延びてウェル１２８のウェルキャビティ１２８を形成する一組の壁１２６とを備える。ウェルアレイ１２０は、基板の活性領域１１６に、または他の適切な配置で配置することができる。ウェルアレイ１２０へのサンプルまたは流体４０の送達を促進するために、システム１００は、基板１１０に結合し、細胞のセットおよび／または別の流体４０を含むサンプルをウェルアレイ１２０に移送するように構成される流体送達モジュール１４０をさらに含むことができる。追加的または代替的に、システム１００は、システム１００を通る流体４０（例えば、生物学的サンプル、プロセス試薬、非細胞粒子を含む溶液）の流れ（例えば、方向、速度、流体の体積）、ならびにシステムを通る制御および／または作動を必要とする任意の他の適切な流れを制御する流量制御サブシステム（例えば、圧力ポンプシステム）１８０を含むことができる。追加的または代替的に、システム１００は、システム１００の複数部分の温度を制御するための熱制御モジュール１９０を含むことができる。追加的または代替的に、システム１００は、ウェルアレイ１２０の内容物の光学イメージング、照明、または照射を実行し、ウェルアレイ１２０によって保持される細胞の識別、局在化、および定量化を可能にするように構成されるイメージングサブシステム１９４を含むことができる。追加的または代替的に、システム１００は、ウェルアレイから、標的細胞、粒子、細胞粒子ペア、遺伝子複合体、および／または遺伝子産物の１つ以上を抽出できる抽出モジュールを含むことができる。しかしながら、システム１００の変形例は、２０１６年１０月２５日出願の「細胞捕捉システムおよび使用方法」と題する米国出願番号１５／３３３，４２０、２０１４年３月１３日出願の「細胞を捕獲および分析するためのシステム」と題する出願番号１４／２０８，２９８、および２０１４年５月２８日出願の「細胞を単離および分析するためのシステムと方法」と題する米国出願番号１４／２８９，１５５に記載されるように、任意の適切な構成および／または組み合わせの他の適切な部品を含むことができ、これらの文献はこの参照によりその全体が組み込まれる。
［００４５］システム１００は、既知のアドレス可能な場所で、単一細胞形式および単一クラスタ形式の少なくとも一方で、細胞集団２０の細胞を単離、捕捉、保持、および分析し、さらに個々の標的細胞（例えば、生物学的サンプル中の希少細胞）または細胞クラスタ（例えば、二重、三重）に実行可能な複数の単一細胞アッセイの実行を促進するように機能する。好ましい実施形態では、システム１００は、同一装置内で、細胞キャプチャとして、近接後続を配列決定するための捕捉された単一細胞の遺伝子ライブラリ（例えば、溶解させた標的細胞からの捕捉したｍＲＮＡから生成されたｃＤＮＡ、増幅ｃＤＮＡ、増幅ＤＮＡ）の調製を促進するように機能する。単一の細胞捕捉ウェルによって決定された定義された位置で細胞が捕捉されると、システム１００の流体送達モジュールを使用して、試薬を同時に、連続的に、および／または反復的に提供および送達して、単一細胞／細胞クラスタのそれぞれで実行される様々な細胞、亜細胞または分子の反応が実行されるようにする。追加的または代替的に、システム１００は、非細胞粒子（例えば、核酸材料、他の生物学的材料、他の非生物学的材料、分子プローブや試薬を含む粒子など）、ならびに単一細胞および単一の非細胞粒子（例えば、細胞粒子ペア）を捕捉し処理するように機能し得る。さらに、システム１００は、ウェルアレイおよび追加的または代替的にウェルアレイに送達される流体４０の制御された迅速な熱変調（例えば、９５℃から５℃の加熱と冷却サイクル）を可能にし、細胞または生物学的材料の生存率を維持し、生物学的アッセイの効率を高め、一連のウェル内で様々な生化学プロセスを実行することができる。システム１００はまた、単一細胞／単一クラスタレベルで、捕捉された細胞のそれぞれにおける事象の光学的調査および検出を可能にすることができる。システム１００は、追加的または代替的に、さらなる処理と分析のために、捕捉された細胞または非細胞粒子の１つ以上の選択的放出および／または選択的除去を可能にすることができる。いくつかの実施形態では、システム１００は、同じマイクロ流体チップ内またはチップ外のいずれかで、リアルタイム細胞追跡、生細胞回収、生化学プロセス（例えば、細胞溶解、細胞固定、ポリメラーゼ連鎖反応、逆転写など）および選択的下流分子分析（例えば、電気泳動、配列決定、蛍光イメージング）の利益を享受することができる。いくつかの実施形態では、システム１００を使用して、循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）と、循環幹細胞（ＣＳＣ）などのＣＴＣの亜集団とを捕捉することができるが、追加的または代替的に、任意の他の適切な細胞（例えば、赤血球、単球、マクロファージ、破骨細胞、樹状細胞、ミクログリア細胞、Ｔ細胞、Ｂ細胞、巨核球、生殖細胞、ナース細胞、神経細胞、幹細胞など）または可能性のある生物学的材料を捕捉するのに用いることができる。システム１００は、好ましくは基板１１０、より好ましくはマイクロ流体チップ上に規定されるが、代替として、任意の適切な基板上に配置するか、またはそれによって画定することができる。
［００４６］具体例では、システム１００は、単一細胞ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）で動作可能な方法に使用することができ、そのようなシステムは、ウェル内の単一細胞形式（または単一クラスタ形式）で複数細胞（例えば、１００細胞、１０００細胞、１０，０００細胞、１００，０００細胞、１，０００，０００細胞など）の高効率の捕捉とともに、ウェルへのオンチップ試薬送達、インキュベーション、およびサーモサイクリングを実現し、細胞捕獲からＰＣＲへのワークフローを提供する。より詳細には、システムのマイクロ流体およびその他の部分は、単一細胞または単一細胞クラスタの解像度のサンプル（例えば、前立腺臨床サンプル）を使用したＰＣＲを使用して、アッセイ（例えば、ＡＲＶ７ｍＲＮＡに関連するアッセイ）を実行することができる。特定例では、システム１００は、ウェルアレイ１２０に関連する流体リザーバ１６０内で１０μｌから最大１ｍＬのオーダーのサンプル量を収容でき、ここでサンプルは５００から１００，０００までの範囲の標的細胞を含むことができ、それによって多数の対象細胞を含む大量のサンプルを処理することができる。
［００４７］システム１００は、好ましくは、抗体被覆ウェルなしで細胞集団２０を含む生物学的サンプルから個々の細胞の捕捉および保持を達成し、好ましくは、単離、捕捉、保持、および／または除去を通して細胞の生存率が維持される。個々の細胞の捕捉は、好ましくは、流体層内の単一細胞のグループを含むサンプルを、基板の広範面に対して平行な方向（例えば、実質的に平行、０．１度以内、１度以内、４５度以内の平行度、完全に平行など）に、ウェルアレイ１２０上に流すか供給し、重力の影響下で流体層を通ってウェルアレイ１２０に向かって下降した細胞を捕捉することによって達成される。代替的に、個々の細胞の捕捉は、単一細胞のグループを含むサンプルを、基板の広範面に垂直な方向にウェルアレイ１２０上で流体リザーバ１６０によって提供される流体層に送達し、重力の影響下で細胞がウェルアレイ１２０に向かって流体層を通って下降した後に捕捉することによって達成される。しかしながら、いくつかの変形例では、個々の細胞の捕捉は、追加的にまたは代替的に、ウェルのセットのうちの１のウェルへ単一細胞の移動を促進するための任意の適切なメカニズムによって達成され得る。さらに、システム１００は、好ましくは、細胞を基板から持ち上げたり、細胞が捕捉され完全に保持されているウェルキャビティ１２８から細胞／細胞クラスタを移動させたりする望ましくない流体流を防ぐように構成される。しかし、いくつかの変形例では、システム１００は、任意の適切な方法で細胞／細胞クラスタの移動を促進するように構成することができる。システム１００を通る流体（例えば、生物学的サンプル、プロセス試薬４０）の流路は、システム１００内の各細胞／細胞クラスタが一貫した条件（例えば、勾配長スケール圧力、密度、温度、溶液組成、およびその他の適切な特性などの流れ特性の流路は、システムの長さスケールに比べて大きい）となるように多方面かつ均一であることが好ましいが、ただし、代わりに流路は単方向、双方向、または他の適切な特性を有してもよい。特定の実施例の変形例では、図２Ａ〜２Ｃに示されるように、システムを通る流体の流路１４１は、等しい長さ（例えば、ほぼ等しい長さ、製作公差内での等しい長さなど）の流体経路１４６のセット（例えば、ウェルアレイに結合されたマニホルドの）を含み、これらはマニホルド入口４４０で流体経路１４６のセットに供給される試薬が入口４４４の各アレイ（例えば、単一のウェル、リザーバの第１の縁の領域に沿って、基板の活性領域の第１の縁の領域に沿って）に実質的に同じ時点（例えば、同時に、１秒以内、１分以内など）に到達し、（例えば、ウェルアレイ１２０を含む）基板の活性領域１１６を横切って出口４４５のアレイを通ってマニホルド出口４４２まで通過するするように構成されている。細胞の輸送、単離、選別、および生存率の維持は、システムを通るサンプル流量を制御することによって（例えば、流れの特徴的な長さの尺度がウェルの特徴的な長さの尺度とほぼ同じになるように流量を調整することによって、高流量条件と低流量条件の間で流量をディザリングすることによってなど）、または他の適切な手段を通じて追加的に実現することができる。しかしながら、システム１００を通る流体の流れ特性は、他の方法で構成されてもよい。
［００４８］運用中、システム１００は、好ましくは、細胞集団２０を含む生物学的サンプルを受け取り、ウェルアレイ１２０全体に均一に生物学的サンプルの分布を促進する（例えば、均一なクロスフロー、スミアリング、サイトスピン手順、アレイの異なる領域での試料の一定部分のピペッティングを用いてなど）。しかしながら、システム１００は、追加的または代替的に、陽圧（例えば、アレイへ入口での陽圧）、および／または、流量制御サブシステム１８０によって加えられる負圧（例えば、アレイ出口での負圧）用いて、ウェルのセットにわたる流体４０（例えば、生物学的サンプル、処理試薬、非細胞粒子）の分配を促進することができる。追加的または代替的に、試料の分配を促進する作動圧力をパルス幅変調方式または正弦波方式で循環させて正味の作動圧力を提供し、入口で正味の陽圧または出口で正味の陰圧を提供してもよい。このように、生物学的サンプルがウェルアレイ１２０を横切って流れるときに、所定特性（例えば、サイズベースの特性、密度ベースの特性、粘着ベースの特性など）を有する所望の細胞をウェル１２８内に閉じ込めることができる。例えば、ＣＴＣを捕捉するように構成されたシステム１００の変形例では、ウェルは、単一細胞または単一クラスタ形式でのＣＴＣの捕捉および保持を促進するために、ＣＴＣ細胞の形態学的特徴の定義に基づいて構成されることが好ましい。しかしながら、システム１００は、追加的または代替的に、他の適切な形式の任意の他の適切な対象粒子を保持および促進するように構成することができる。作動圧力は、好ましくは、システム１００と流体連通する流量制御サブシステム１８０（例えば、手動操作ピペット、自動流体処理ロボット、真空圧力システム、電気機械マイクロポンプなど）によって提供されるが、追加的または代替的に任意の適切なメカニズムによって提供されてもよい。
［００４９］図３５に示されるシステム１００の好ましい実施形態では、最大２つの個別のウェルアレイを並行して（同期的に、非同期的に）処理することができる。しかしながら、システムの要素は、適切な数のアレイに対応するように、任意の数で構成することができる。
１．１システム−基板
［００５０］図３に示されるように、基板１１０は、ウェルアレイ１２０（マイクロウェルのセット、マイクロウェル、ウェル）を画定できる媒体を提供するように機能する。変形例では、基板１１０は、第１面（例えば、上側広範面）１１２と、第１面に直接対向する第２面（例えば、下側広範面）を有することができる。基板１１０の上側広範面１１２は、システム１００のマイクロ流体要素（例えば、入口、出口、入口マニホルド、出口マニホルド、流体チャネルなど）が少なくとも部分的に平面に画定されるように、平面であることが好ましい。あるいは、基板１１０の上側広範面１１２は、システム１００のマイクロ流体素子が少なくとも部分的に非平面的な面に画定されるように、非平面であり得る。変形例では、非平面的な表面は、凹面、凸面、または凹面、平面、および／または凸面を有する表面であり得る。そのような変形例は、ウェルアレイ１２０にサンプルを堆積および分配する様々な方法を実現することができる。非平面である上側広範面１１２を有する基板１１０の任意の変形例では、非平面部分は、浅い（例えば、広範面の幅に対して深さが浅い）または短い（例えば、広範面の幅に比べて高さが低い）。しかしながら、この非平面部分は、追加的または代替的に、深い部分（例えば、広範面の幅に対して深さが大きい）または高い部分（例えば、広範面の幅に対して相対的に高い高さを有する）を含むことができる。しかしながら、この表面は、代替的に、任意の他の適切な軸または対称の種類を有してもよく、または非対称であってもよい。好ましい用途では、基板の第１面は、平坦面１１８の整列軸を規定することができ、ここで平坦面１１８は基板の第１面と平行かつ同軸であり、基板の第１面と、基板のウェルアレイにアクセスするためにサンプルや処理試薬などの流体が流れる流体リザーバの基部との間に整列されている。
［００５１］基板１１０組成物は、機械的特性（例えば、機械的励振としての基板の機械的特性）、光学的特性（例えば、透明性）、電気的特性（例えば、導電性）、熱的特性（例えば、伝導率、比熱など）、物理的特性（例えば、濡れ性、多孔性など）、およびその他の適切な特性、の１以上に関する所望の特性を呈することができる。基板１１０は、好ましくは、基板１１０をイメージングして捕捉された単一細胞／細胞クラスタを分析するために、高い透明度を有する剛性材料（例えば、透明材料、半透明材料）から構成される。高透明性材料は、好ましくは光学的に透明であるが、追加的または代替的に、電磁スペクトルの他の部分（例えば、マイクロ波、近赤外線、紫外線など）に対して透明および／または半透明にすることができる。そのようないくつかの変形例では、基板１１０は、ガラス、セラミック、シリコーンベース材料（例えば、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ））、ポリマー（例えば、アガロース、ポリアクリルアミド、ポリスチレン、ポリカーボネート、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）、ポリエチレングリコールなど）、紙、多孔質材料、およびその他の適切な材料（高い透明性を有するそれらの複合材料を含む）のいずれか１つ以上から構成され得る。あるいは、基板１１０は、他の適切な光学特性を有する他の適切な材料で構成することができる。追加的または代替的に、基板は、セラミック材料、半導体材料、ポリマー、および任意の他の適切な材料のいずれか１つまたは複数で構成することができる。
［００５２］基板は、エッチング方法、成型方法、印刷方法（３Ｄ印刷プロセスなど）、機械加工方法、および脆性、弾性、または延性のある基板材料に適した他の適切な製造プロセスのいずれか１つまたは複数を使用して加工することができる。さらに、ウェルアレイを含む上側広範面１１２に画定された特徴は、成型、研磨、流動相での材料のスピンに続く材料のセット、機械加工、印刷（３Ｄ印刷など）、エッチング、およびその他の適切なプロセスによって作成することができる。具体例では、ウェルアレイ１２０は、シリコンモールド内にマイクロ流体要素をエッチングするために３マスクフォトリソグラフィプロセスおよび深反応性イオンエッチング（ＤＲＩＥ）プロセスを使用してシリコンモールド内に画定される。具体例では、シリコンモールドのエッチングされた要素は、その後、ホットエンボス加工プロセスを使用して、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）シートを基板１１０として転写される。この特定例における基板１１０は、ガラス顕微鏡スライドの寸法に実質的に一致するように、３インチ×１インチの寸法を有する。この特定例の変形例、および／またはウェルアレイ１２０の他の変形例では、環状オレフィンポリマー（ＣＯＰ）のホットエンボス加工をＰＭＭＡの代わりに使用して、ウェルアレイ１２０のマイクロ流体構造を形成することができる。しかしながら、代替的に、基板１１０は、他の適切な方法で処理された他の適切な基板１２０であってもよい。
［００５３］好ましくは、基板は、システム１００の他のサブコンポーネントとの相互作用（例えば、可逆的または非可逆的な取り付け、結合）を可能にする特徴を含む。一変形例では、基板１１０は、流体送達モジュール１４０の構成要素に結合することができ、基板は、基板の活性領域１１６に流体４０を出し入れする入口１４２および出口１４４を含む。このバリエーションの一例では、入口マニホルドの入口チャネルのセットと出口マニホルド１６４の出口チャネルのセットは、上部と下側広範面の間の基板内に直接埋め込むことができるが、追加的または代替的に、基板の上側広範面の少なくとも一部に作成することができる。別の例では、図２８Ａ〜２８Ｃ、図２９、および図３０Ａおよび３０Ｂに示されるように、基板１１０は、基板の活性領域よりも上に凹部１５２を含む第１のプレート１５０に位置合わせすることができ、第１のプレート１５０を基板に取り付けると、第１のプレート１５０の一領域をウェルアレイの上方に整列させて、システム１００の運用中にウェルアレイ全体に流体を移送する流体リザーバ１６０を協働的に画定することができる。流体リザーバ１６０は、第１のプレート１５０に可逆的に取り付けられるリザーバ蓋１６４によって密封され、その結果、組み合わされたアセンブリは、ウェルアレイの表面に平行に流れる試薬、空気、油または他の材料の送達のための流体経路１６２を提供する。再シール可能なリザーバ蓋１６４は、リザーバ蓋の底部に、液体リザーバ内に挿入されるリザーバ蓋の領域に、不混和液体（水交換油、油交換水）の移動、および、追加的または代替的に、流体経路１６２に沿った異なる流体相（空気交換水または空気置換水）の移動を容易にする一連の溝１６５を備えることができる。リザーバ蓋１６４の溝１６５は、２５ミクロン、５０ミクロン、１００ミクロン、１５０ミクロン、２００ミクロン、２５０ミクロン、３００ミクロン、３５０ミクロン、４００ミクロン、５００ミクロン、および／または１ミリメートルのオーダーの特性寸法を呈することができる。溝の数と溝１６５の寸法を調整して、約１０マイクロリットル、２５マイクロリットル、５０マイクロリットル、７５マイクロリットル、１００マイクロリットル、１５０マイクロリットル、および／または２００マイクロリットルなど、特定のデッドボリュームの液体をシステムに供給することができる。蓋の材料は、第２章に記載のように、マイクロウェルアレイで捕捉される細胞またはビーズのイメージングおよび／またはマイクロウェルの表面、粒子、および／または遺伝的複合体からの特定の生体分子を光切断するＵＶ照射を可能にするために光学的に透明であってもよい。リザーバ蓋１６４はまた、流体マニホルドとの適切なシールを可能にするエラストマー面（図３３）を有する。再シール可能な蓋は、流体操作の開始時、プロセスの途中、またはプロセスの終了時に、必要に応じてウェルアレイに細胞を送達し、ウェルアレイに粒子を送達し、ウェルアレイに試薬を送達し、および／またはウェルアレイから特定の細胞、粒子、および／または流体を取り去るために開閉することができる。リザーバ蓋１６４は、手動または自動で簡単に取り付けまたは取り外しできるように設計されているが、流体システムを完成させるために他の適切な方法で動作するように構成してもよい。
［００５４］第２の変形例では、基板１１０は、基板をプラットフォーム、加熱素子（例えば、熱制御モジュール１９４）、および／またはアッセイが実行されるステージに可逆的に取り付けおよび整列させるように機能する基板プラットフォーム１０５に取り付けることができる。このステージは、システム１００内の基板の位置を物理的に調整し、イメージングサブシステム１９４、熱制御モジュール１９０、および／または抽出モジュールといったシステムの他の要素へのウェルアレイのアクセスを改善するのに用いることができる。好ましくは、基板プラットフォーム１０５は、高精度の様々なアレイ構成（例えば、５０，０００ウェルアレイ、１００万ウェルアレイなど）を備えた基板を収容、固定、および操作するように構成でき、オプションの基板取り付け機構１１０を含むことができる。図３０Ａ〜３０Ｂ、図３１Ａ〜３１Ｃ、図３２Ａ〜３２Ｃ、および図３３の実施例に示されるように、基板プラットフォームは、リザーバ蓋１６４を収容および支持することができるプラットフォーム蓋１１５を含むことができ、プラットフォーム蓋１１５は、リザーバ蓋１６４を、基板に取り付けられた第１のプレート１５０によって形成された流体リザーバ１６０内に可逆的に固定および密封するように機能する。変形例では、プラットフォーム蓋１１５は、流体リザーバを気密封止するために、エラストマーガスケットまたは封止要素、および１〜４ポンドの範囲の圧力を加える戻り止めプランジャを含むことができる。特定の用途において、プラットフォーム蓋１１５は、リザーバ蓋１６４がウェルアレイ上で開ポジションまたは閉ポジションにある状態で、ウェルアレイを（例えば、イメージングサブシステム１９４を介して、肉眼で）観察できるようにする。さらに、基板１１０の光学的検査および／または熱変調を可能にするために、基板プラットフォームの底面が、基板プラットフォームに固定されたウェルアレイ１２０へのアクセス領域として機能する光学的に透明および／または高導電性材料を含むことができる。好ましい用途では、基板プラットフォーム１０５を使用して、熱制御モジュール１９０の加熱素子（例えば、サーモサイクラー面）に基板を正確かつ再現可能に配置し、加熱／冷却源へのウェルアレイの信頼性の高い均一な露出をより確実にすることができる。しかし、基板は、システムの他の適切な要素とエンゲージするように、他の適切な方法で構成することができる。
１．２システム−ウェルアレイ
［００５５］ウェルアレイ（マイクロウェルのセット、マイクロウェル、ウェル）１２０は、細胞のセットを個別に識別、処理、および分析できるように、アドレス可能な既知の位置にある細胞のセットを捕捉するように機能する。そのようなものとして、ウェルアレイ１２０は、好ましくは、単一細胞形式および単一クラスタ（例えば、細胞粒子ペア）形式の少なくとも一方での細胞捕獲を促進するように構成される。しかしながら、ウェルアレイ１２０は、追加的にまたは代替的に、任意の他の適切な形式で、任意の他の適切なタイプの粒子を受け取るように構成され得る。例えば、ウェルアレイ１２０は、哺乳動物の細胞、エンビロス、ミクロスフェア、粒子、細胞粒子ペア、およびミクロスフェア結合細胞を受容するように構成（例えば、寸法決め、成形）することができる。
［００５６］図１および図３Ａ〜３Ｂに示すように、ウェルアレイ１２０は、好ましくは、基板１１０の上側広範面１１２に画定され、ウェルアレイ１２０の各ウェル１２８は、基板内であって第２面（例えば、下側広範面１１４）の近くに規定される底面１２４と、底面１２４に直接対向し上側広範面の近くにある開放面１２２と、底面と開放面との間に延在しウェルキャビティ１２８を画定する一組の壁１２６とを備える。
［００５７］ウェルアレイ１２０は、基板１１０の活性領域１１６に画定され、この活性領域は、基板の任意の適切なエリア（例えば、１平方インチ、１０ｃｍ、２平方インチ、３平方インチ、４平方インチなど）であり得る（図２Ａ−２Ｃ）。好ましくは、基板の活性領域（およびウェルアレイ）は、単一の捕捉細胞の単離、処理、および分析を実行するために、イメージングサブシステム１９４、流体送達モジュール１４０、熱制御モジュール１９０、および／または抽出モジュールを含むシステム１００の他の要素によってアクセス可能である。ウェルアレイ１２０は、任意の適切な数のウェルを含むことができる（例えば、１００、１，０００、１０，０００ウェル、５０，０００ウェル、１００，０００ウェル、１００万ウェル、２００万ウェル、３００万ウェル、４００万ウェル、５００万スケール、６００万ウェル、７００万ウェル、９００万ウェル、１０００万ウェルなどの規模で）。好ましい変形例では、ウェルアレイは少なくとも２５０，０００のウェルを含む。特定例において、ウェルアレイは約１００万個のウェルを含む（図２８Ａ−２８Ｃおよび図２９）。ただし、ウェルアレイは、他の適切な方法で構成することができる。
［００５８］開放面１２２は、好ましくは、ウェル１２８の底面１２４へのアクセスを提供する基板１１０の開口部であり、基板１１０の上側広範面１１２に垂直な方向から単一の細胞、単一の粒子、および単一の細胞または粒子のクラスタ（例えば、細胞−粒子対）を受けるように構成されている。システムが細胞−粒子対を保持するように構成されている変形例では、図３Ａに示されるように、細胞−粒子対における細胞と粒子のそれぞれは、順番にまたは同時に受け取られ得る。したがって、開放面１２２は、底面１２４の特性寸法よりも大きい、小さい、または等しい特性寸法（例えば、幅、直径、円周など）を有することができる。循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）および単一細胞粒子ペア形式の粒子を捕捉する実施例では、底面１２４または開放面１２２の特性寸法は２０〜４０マイクロメートルの範囲であり、ウェルキャビティの高さは２０〜７５マイクロメートルの範囲であり得る。図３Ｂに示すように、システムが単一細胞または単一粒子のいずれかを保持するように構成されている別の変形例では、底面および／または開放面の特性寸法は２０〜４０マイクロメートルの範囲であり、ウェルキャビティの高さは１０〜４０マイクロメートルの範囲であり得る。ただし、他の変形例では、ウェルキャビティの高さやウェルキャビティの幅などの、ウェルアレイ内のウェルの寸法は、０．５ミクロンから５０ミクロンの間の任意の値にすることができ、システム１００で実行するアッセイ、標的細胞の寸法、および／または使用される粒子の寸法に基づいて任意に選択することができる。ウェルアレイ１２０の開放面積（すなわち、ウェルのセットにおける各ウェルの開放面の総面積）は、ウェルが画定されている基板の領域の総面積の５０％よりも大きいことが好ましく、より好ましくは、開放面積は総面積の８０％より大きい。しかしながら、開放面積は、基板の総面積の任意の適切な断片領域またはパーセンテージであり得る。
［００５９］各ウェルの開放面は、好ましくは、基板の上面と同一平面上に（例えば、平坦面１１８で）整列されるが、代替的に、基板内にわずかに凹んでいるか、他の方法で構成することができる。好ましくは、図３Ａおよび３Ｂに示されるように、ウェルアレイにおけるウェルの開放面は、基板の平坦面１１８と整列され、開放面の水平軸は平坦面１１８と同軸である。一例では、平坦面１１８は、基板の上側広範面に平行な側面を有する平面であり、基板の上側広範面と、基板の上側広範面よりも上の空間の領域との交差点で規定される。具体例では、平坦面１１８は、基板の上側広範面と、ウェルアレイの上方に位置する流体リザーバの下部領域との間に配置され、ウェルアレイの開放面と流体リザーバ内の流体経路との間の界面で定義される空間的境界である。好ましい用途では、平坦面１１８の下のウェルに受け入れられる細胞および／または粒子は、ウェルの開放面における流体流によってはアクセスできず、したがってウェルのウェルキャビティ１２８によって完全に保持され、一方で平坦面１１８を横切るまたは平坦面１１８上に残っている細胞および／または粒子は流体流によってアクセス可能であり、流体経路の下流へと移動され、したがってウェルキャビティ１２８によって部分的におよび／またはまったく保持されないと考えられる。しかしながら、平坦面１１８は、追加的または代替的に、基板および／またはウェルアレイの任意の寸法に関して構成することができる。さらに、各ウェルの開放面は、基板、流体リザーバ、および／または流体経路の任意の領域に対して配置することができる。
［００６０］好ましい変形例では、各ウェルの開放面は、ウェルアレイの真上かつ横方向に上の流体経路に直接流体的に結合される。ウェルアレイの開放面を横切る流体の流れを強化するために、各ウェルの開放面は任意で、コーティング（例えば、疎水性、親水性、静電物質、化学誘引性など）または物理的特徴（例えば、テクスチャ化、ノッチ、リッジなど）を有することができる。さらに、各ウェルの開放面は、単一の細胞または単一の細胞粒子ペアを確保して保持するための受動的または能動的な保持機能を任意で有することができる（例えば、ウェルキャビティ１２８が埋まっている場合に物理的または化学的にトリガしてウェルの開放面を増減する）。開放面１２２が底面１２４よりも小さい特性寸法を有する一実施例では、図４Ａに示すように、ウェル１２８は、底面１２４のよりも小さい特性寸法を提供するために開放面１２２の境界を形成するリップを有してもよい。このリップは、平面的または非平面的であり得、ウェル１２８での単一細胞または単一細胞クラスタの保持をさらに促進することができる。図４Ｂ〜４Ｅは、各ウェルの開放面の実施例を示し、円形開口、長方形開口、六角形開口、または他の適切な形状を含む、細胞および／または粒子をウェルキャビティに収容するための任意の形状を確定することができる。ただし、開放面１２２は、ウェルアレイ１２０のウェル１２８からの流体流、細胞の受容、および／または粒子の回収を促進する他の適切な特徴を含むことができる。
［００６１］底面１２４は、好ましくは、開放面１２２に平行であり、対称であり、開放面１２２に直接対向する。しかしながら、いくつかの変形例では、代替的に、底面１２４は、開放面１２２に対して非平行、非対称、および／またはずれていてもよい。基板１１０の上側広範面１１２と同様に、底面１２４は平面または非平面であってよく、非平面を有する底面１２４の実施例では、非平面は、図５Ａに示すように、任意の適切な幾何学的特性を有する凸部および／または凹部を含んでもよい。追加的または代替的に、図５Ｂおよび５Ｃに示されるように、底面１２４は、テクスチャード（例えば、所望の流体流動挙動を実現するため、所与の粒子タイプを誘引または反発するため）、所望の多孔性を特徴とする、所望の表面処理を特徴とする、固定化粒子または生化学部分を特徴とする、および他の適切な方法で細胞の受容および／または保持を促進する、の１以上であり得る。好ましい変形例では、チャンバの開放面から流体がチャンバの底面を通って流れないように底面が閉じているが、標的細胞よりも小さい特性寸法の粒子が下ってウェルキャビティ１２８を出られるように、この底面は代わりに１つ以上の流体チャネルを含むように構成することができる。ただし、底面は、他の適切な方法で構成してもよい。
［００６２］底面１２４および開放面１２２に関して、各ウェル１２８は、底面１２４と開放面１２２との間に延在する少なくとも１つの壁（例えば、一組の壁）１２６を有することが好ましい。実施例において、少なくとも図１および図４Ａに示されるように、各ウェル１２６の壁は、少なくとも１つの他の隣接するウェルから個々のウェル１２８を少なくとも部分的に物理的および流体的に分離しており、ある深さ、幅、および／またはウェルの断面寸法を規定しており、好ましくは、開放面１２２の水平軸によって規定される平面に垂直である。好ましくは、壁１２６の壁厚は４〜５マイクロメートルの間であるが、１０マイクロメートル未満の任意の寸法とすることができる。壁１２６は、開放面１２２によって画定される平面から底面１２４まで垂直に延びて、ウェルキャビティ１２８を画定することができる。そのようなものとして、いくつかの実施例では、ウェルアレイ内の各ウェルのウェルキャビティ１２８は、柱状（例えば、円柱、六角柱、多角柱、非多角柱など）であり得る。具体例では、各ウェルのウェルキャビティは六角柱を規定する。しかしながら、図６Ａおよび図６Ｂの変形例に示されるように、他の実施例において壁１２６は他の適切な方法で開放面１２２と底面１２４との間に延びることができる（例えば、湾曲壁、直線壁、曲がった壁など）。例えば、壁１２６は、開放面から底面へのウェルの特性寸法（例えば、直径、水平断面、垂直断面）を徐々に減少させてもよい（例えば、別個のステップを形成することによって、適切な勾配などを備えた線形または非線形の方法で特性寸法を徐々に調整することによって）。しかし、いくつかの変形例では、ウェル１２８は、開放面１２２によって規定される平面に垂直な明確な壁１２６を有さなくてもよい（例えば、底面が、開放面への垂直な壁を形成することなく何らかの方法で直接開放面まで延びてもよい）。実施例では、底面１２４と開放面１２２は、壁の有無にかかわらず、０．５ミクロンから５０ミクロン（例えば、単一ＣＴＣのキャプチャを伴う応用例では約２５ミクロン、単一の細胞粒子ペアのキャプチャを伴う応用例では約４０ミクロン）の間の距離（すなわちウェルキャビティ１２８の高さ）で分離してもよい。しかし、方法２００で説明した単離、処理、および分析のステップを実行するために、ウェルアレイのウェルを他の物理的特性および／または寸法で構成することができる。好ましい用途では、方法２００は、捕捉したい標的細胞の寸法、用いられる非細胞粒子の寸法、システム１００を使用して特定のアッセイを実行するために必要な他のパラメータ（ブロックＳ２１８で説明）に応じて、特定の寸法、数、幾何学、空間配置および／または他の適切な特性を有するウェルアレイを選択するステップを含むことができる。追加的または代替的に、壁のセットは、各ウェルをウェルアレイ１２０内の少なくとも１つの隣接するウェルに流体的に結合するチャネルのセットを含むことができる。そのような変形例では、一組のチャネルのチャネルは、隣接するウェル間の基板１１０の領域内に画定したり、または隣接するウェルの重複部分によって画定することができる。具体例では、チャネルは５ミクロンの特性寸法を有することができ、具体例の変形例では、チャネルは０．５ミクロンから７５ミクロンの範囲の特性寸法を有することができる。
［００６３］ウェルアレイの壁は、（前章で説明したように）基板の材料と同じ材料で構成されることが望ましいが、代わりに、他の適切な材料で構成して、所望の物理的または化学的特性をウェルアレイにおけるウェルキャビティに付与することもできる。例えば、壁は、ウェルの空洞に入った溶液中の様々な粒子または流体に対して非透過性または半透過性になるように構成することができ、付加的または代替的に、ウェルへの細胞や粒子の進入を制御するために、永久的または非永久的に剛性、可撓性、または形状変化するように構成することができる（例えば、伸びて開いたり、折りたたんで閉じたりする機能）。方法２００の一実施形態では、システム１００は単一の細胞−粒子対を捕捉するために使用され、細胞が第１のステップで捕捉され、第１のステップに続く第２のステップで粒子が捕捉され、ウェルアレイ内の各ウェルの壁の少なくとも一部は形状記憶ポリマーでできており、第１の開いた状態と第２の閉じた状態の間で動作可能である。一実施例では、標的細胞が第１のステップでウェル内に捕捉されたら、ウェルキャビティ１２８の壁は、第２のステップでウェル内への粒子の捕捉を可能にするために第１の開放状態を維持するが、第１のステップで標的細胞がウェル内に捕捉されなかったら、ウェルキャビティ１２８の壁を活性化して第２の閉じた状態に移行させ、入っていない各ウェルの開放面を本質的に閉じて、ウェル内での細胞粒子ペアの生成効率を高めることができるとともに、所望の標的細胞が入ったアレイのウェルを識別するのに役立つ。しかしながら、ウェルの物理的および化学的特性は、第２章で説明した方法２００の任意の適切な用途および／または実施例のためのシステムの性能を高めるべく、他の適切な方法で構成することができる。
［００６４］ウェルアレイ内の各ウェルのウェルキャビティ１２８の内面（例えば、ウェルキャビティ１２８の内部に面する壁の側壁）は、ウェルキャビティ１２８内に保持される内容物（例えば、捕獲された細胞、生物材料、非生物材料、非細胞粒子、細胞粒子ペアなど）と相互作用するように任意で構成することができる。そのような相互作用を可能にするために、内部表面は、ウェルキャビティ１２８のすべての側壁に機能的特徴（物理的または化学的）または表面結合部分を含むことができるが、代わりにウェルキャビティ１２８の任意の適切な部分または特定の領域に局在化してもよい（例えば、底面、開放面の近位、側壁に沿ってなど）。図７に示す第１の実施例では、内部表面は、溶解した捕捉細胞から放出された核酸物質、非細胞粒子から放出されたプローブまたはプローブセット３６、および／またはウェル内の他の適切な捕獲された物質に結合するように構成された機能性表面コーティング１３１を含む。機能性表面コーティング１３１は、第２章でさらに説明されるように、核酸プローブ３６の機能的リンカーに結合できる合成、動物由来、ヒト由来、または植物由来のタンパク質であり得る。一実施例では、機能性表面コーティングにより、ビオチン化表面化学（例えば、ビオチン−ストレプトアビジンリンカー）が機能的リンカーを含むプローブに結合することが可能になる。しかしながら、ウェル内面の機能性表面コーティングは、他の適切な方法でウェルキャビティ１２８内に保持された内容物に結合するように構成することができる。第２の実施例では、機能性表面コーティングは、下流での分析（例えば、光学イメージング）のために、捕捉された標的細胞または粒子を特定の方向に方向付けるなど、捕捉された内容を物理的に保持および／または操作するように構成されている。一実施例では、機能性表面コーティングは、捕捉された標的細胞の一領域に粘着する粘着層を提供するポリマーまたはタンパク質を含む（例えば、ポリマー接着剤、カテコール−ポリスチレン、ポリ−Ｄ−リジン、フィブロネクチン、コラーゲン、ビトロネクチンなど）。別の例では、機能性表面コーティングは、ウェルの開放面に向かって細胞を引き付けるポリマーまたはタンパク質を含むか、ウェルへの粒子の進入を制御するためのウェルの開放面における半永久的なバリアである。第３の実施例では、ウェルの内部表面は、捕捉された細胞の下流でのアッセイと分析を実行するために、化学薬剤（例えば、細胞と相互作用する薬物、ウェル内の溶液のｐＨを制御する薬剤、ウェル内の流体の密度を制御する薬剤）、生化学物質（例えば、蛍光マーカー、抗体など）、および／またはプロセス試薬（例えば、徐放性送達媒体／マイクロスフィアなどに含まれる溶解バッファ）を加えるように構成される。第４の実施例では、ウェルの内面は、表面積を増加、減少、または変化させる物理的特徴（例えば、ウェルキャビティ１２８内の隆起、突起、細孔、くぼみ）を含むことができる。さらに、これらの物理的特徴には、ウェル内に固定化された機能化微粒子、ウェル内に保持された内容物の光学的アクセスと光学検査を強化する反射要素、および／またはウェル内の細胞または粒子の位置を操作するための磁気要素が含まれる。
［００６５］ウェルアレイ１２０内のすべてのウェル１２８は実質的に同一であってよいが、代替的に、ウェルアレイ１２０は、任意の適切な特徴（例えば、形態的特徴、機械的特徴、表面コーティング特徴、熱伝導性特徴、導電性性特徴など）を備えてもよい。したがって、システム１００のいくつかの変形例は、処理および分析のために、複数の粒子タイプおよび複数のタイプのフォーマットの粒子のうちの少なくとも１つをアドレス可能な場所に取り込むように構成することができる。第１の例では、ウェルアレイ１２０は、単一細胞内の第１の細胞タイプを捕捉するために、第１の特性寸法（例えば、ウェル直径、ウェル深さ、ウェル容積など）を有するウェルを含むウェルの第１のサブセットと、単一の細胞フォーマットで第２の細胞タイプを捕捉するために、第２の特徴的寸法（例えば、ウェル直径）を有するウェルを含む第２のサブセットとを含むことができる。第１の例では、第１のサブセットをウェルアレイ１２０内の中央に配置し、第２のサブセットをウェルアレイ１２０内の周辺部に配置し、これが第１の特性寸法よりも小さい第２の特性寸法を有することにより、ウェルアレイ１２０の中央部分でより大きな粒子を捕獲し、アレイ１００の周辺部分でより小さな粒子の捕獲を促進することができる（例えば、サイトスピン用途）。この第１実施形態の１つの変形例では、ウェルアレイ１２０は、半径方向に特性寸法の勾配を有するウェルを有することができる（例えば、アレイの中心に向かってより大きなウェル寸法を有し、アレイの周辺部に向かってより小さなウェル寸法を有する）。第１実施形態の他の変形例では、ウェルアレイ１２０は、半径方向に他の適切な構造特性（例えば、形態学的特徴、機械的特徴、表面コーティング特徴、熱伝導性特徴、導電性特徴など）の勾配を有するウェルを有することができる。他の実施例では、ウェルアレイ１２０は、任意の適切な方向（例えば、直線方向、半径方向、円周方向など）に沿って、任意の適切な特徴特性（例えば、形態学的特徴、機械的特徴、表面コーティング特徴、熱伝導性特徴、導電性特徴など）の分布（例えば、勾配）を有するウェルを含むことができる。
［００６６］ウェルのサブセットを含む実施例では、サブセットを互いに分離することができる。第１の変形例では、各サブセットは、ウェルが画定されていない基板部分（例えば、広範面の平坦な領域）によって他のサブセットから分離することができる。第２の変形例では、サブセットは、ウェルの連続構造における流体的に分離された領域であり、ここでは特定のサブセットのウェルがいずれも別のサブセットのウェルに流体的に結合されていない。具体例では、基板は、アレイ縁間の均一な間隔（例えば、１ｍｍ、１００ミクロン、３ｍｍなど）で、広範面の平坦領域によって隣接するサブセットから分離された、２×６グリッドに配置されたウェルアレイ１２０の１２個の異なるサブセットを規定する。ウェルのサブセットは、複数グループ（例、２５０，０００ウェルセットのうちの２０，０００ウェルのサブセット内の７ウェルの複数グループ）にさらに分割することができ、各ウェルの一連のチャネルによってウェル間の適切な相互接続（例、サブセット間、グループ間など）を提供することができる。そのような構成により、ウェルのグループによる効率的な細胞捕捉（例えば、相互接続された７つのウェルを含むグループによる）が可能になり、ウェルのセットを複数の異なるサンプル（例えば、ウェルのサブセットのサブセットごとに１つのサンプル）にさらすことができる。一例では、ウェルは、直径が約３０ミクロン、深さが３０ミクロン、壁の厚さが４〜５ミクロンであり得る（例えば、これがより効率的な細胞捕捉を提供する）。しかし、関連する変形例では、ウェルアレイ１２０は、代替的に、任意の適切な方法で細分化および／または相互接続することができる。ウェルのサブセットおよび／またはグループは、任意の適切な方法で構成することができる。例えば、サブセットは直線的に配置してもよく（例えば、ウェルサブセットのグリッドレイアウト）、グループをパック構成で配置してもよい（例えば、六方最密、正方格子など）、またはその逆もしかりである。グループとサブセットの配置は、互いに独立していることが好ましいが、代替的に相互を基準とすることもできる（例えば、グループが直線的に配置されているため、サブセットが直線的に配置される）。さらに、システム１００の各基板１１０は、ウェル１２０の単一アレイを有してもよいし、任意の適切な方法で基板に画定されたウェルの複数のサブセットを有してもよい（例えば、放射状構成、長方形構成、線形構成、曲線構成、ランダム構成など）。
［００６７］図８Ａに示すように、ウェルアレイの具体例では、１４４ｍｍ２の２５０，０００ウェルのアレイを、フォトリソグラフィーエッチングプロセスを使用してプラスチック（例えば、材料ＣＯＰ４８０Ｒ）にエンボス加工することができる。次いで、運用時に比較的多くの液体試料（例えば、０．５ｍＬから５ｍＬ）を配置できるようにするウェルアレイを含む活性領域の周りに流体リザーバ１６０を設ける（例えば、接着または他の方法で取り付ける）。この特定例は、活性領域でウェルアレイに流体的に結合されたリザーバへの入口および出口として機能する２つのマイクロチャネルをさらに含むことができる。さらに、図８Ｂに示されるように、細胞含有サンプル（例えば、容積最大１ｍｌ）を、基板の活性領域の周囲を取り囲む流体送達モデルの第１のプレート１５０の凹部領域によって形成される流体リザーバ１６０に分配することができる。試料中に存在する細胞は、リザーバ内の流体層を介して経時的に下降し（例えば、重力により誘導される）、ウェルの開放面を通ってウェルキャビティ１２８内に入る。特定用途では、沈下時間は細胞のサイズに依存する。サイズが１０〜２５ミクロンの典型的な癌細胞は、約３０分で沈下する。細胞がウェルキャビティに入り、細胞の全容積がウェルキャビティ１２８内に完全に収まる（例えば、完全に保持され、平坦面１１８の下に下がり、ウェルの開放面の下に下がる）と、それらは単一細胞形式で捕捉される。ウェルアレイ内の各ウェル間の壁は薄いため（例えば、厚さ１０ミクロン未満、厚さ５ミクロン未満など）、殆どの細胞は内側に落ち着き、ウェル上部または部分的に保持されているのとは異なり、ウェル内に完全に保持される傾向がある。１ｍｌ ＰＢＳにスパイクされた細胞追跡染色癌細胞（ＳＫＢＲ３）の特定用途では、システム１００は９０％以上の捕捉効率を示した。
［００６８］さらに、ウェルアレイ１２０は、好ましくは、パックされたアレイに構成されるが、代替的に、任意の他の適切な方法で構成することができる。一例では、図９Ａに示されるように、ウェルアレイ１２０は六角形の最密充填アレイに配置することができる。別の例では、図９Ｂに示すように、ウェルアレイを長方形のアレイに配置することができる。別の例では、ウェルアレイ１２０は、例えば、ウェルアレイ１２０の一部からウェルアレイ１２０の別の部分への流体の流れを促進するために、任意の適切な不規則または不均一な様式で配置することができる。具体例では、各ウェルの中心からウェルアレイの隣接するウェルの中心までの最短距離は約３０ミクロンである。ただし、代替的に、ウェルアレイ１２０は、ウェル間の任意の適切な間隔で（例えば、パック構成または非パック構成で）、および他の適切な方法で配置されてもよい。
［００６９］図１０に示すようなウェルのセットの特定の構成例において、ウェルアレイは、六角形の最密充填構成で配置され、ウェルアレイの各ウェルは、基板の広範面（例えば、平坦面１１８）と位置合わせされた六角形の開放面を含む。さらに、各ウェルは、六角形の開放面に対向する底面に六角形のフットプリントを有する。ウェルアレイの各ウェルは、厚さ約５ミクロン、高さ約４０マイクロメートル、および構造的な幅約２５マイクロメートルの壁のセットを含む六角柱を形成するウェルキャビティ１２８を有する。基板は、約１５０平方ミリメートルの基板の活性領域内に２６７，０００個のこのような六角形のウェルを画定する。ただし、ウェルアレイは、他の適切な方法で構成することができる。
［００７０］システム１００のいくつかの変形例では、ウェルアレイ１２０の１つまたは複数のウェルはさらに、ウェルアレイ１２０のウェルにおけるパラメータ（例えば、細胞応答パラメータ）の刺激および／または検出を促進する他の適切な要素を含むことができる。一実施例では、ウェルアレイ１２０の１つ以上のウェルは、ウェル１２８の内容物からの生体電気信号の検出を実現し、および／またはウェル１２８の内容物の刺激を実現するために、ウェル１２８の表面で基板１１０に埋め込まれた電極を含むことができる。この実施例の変形例では、電極は、底面１２４とウェル１２８の壁１２６の少なくとも一方の露出部分に埋め込むことができる。他の実施例では、ウェルは、ウェル１２８の細胞／細胞クラスタへのプロセス試薬の送達を促進するか、ウェル１２８の内容物（例えば、処理された細胞内内容物）のウェル１２８からの抽出を促進するチャネルに結合されてもよい。しかしながら、システム１００は、単一細胞形式および単一クラスタ形式の少なくとも一方の細胞の処理および／または分析を容易にする他の適切な要素を含むことができる。
１．３ システム−流体供給モジュール
［００７１］システム１００は、細胞の集団、粒子の集団、および／またはプロセス試薬および／または分配流体などの別の流体を含むサンプルをウェルアレイ１２０に移送し、基板に結合できるように機能する流体送達モジュール１４０を含むことができる。そのようなものとして、流体送達モジュールは、システムの様々な部分の内外へ、およびその全体にわたる流体移動を可能にする入口１４２、出口１４４、および流体ガイドおよび／または構造を含むことができる。少なくとも図１１Ａ〜１１Ｂ、図２８Ａ〜２８Ｃ、および図２９に示すように、流体送達モジュール１４０は、基板１１２の上側広範面の近位に配置された第１のプレート１５０と、基板１１４の下側広範面の近位に配置された第２のプレート１５６と、さらに任意選択で、第１のプレート１５０を第２のプレートに結合させ、それによって第１のプレート１５０と第２のプレートとの間に基板１１０を位置決めおよび／または整列させるように構成されたクランプモジュールとを備えることができる。しかしながら、代替的に、第１のプレート１５０は、基板１１０および／またはシステム１００の任意の他の適切な要素に直接結合することができ、この場合は流体送達モジュール１４０から第２のプレートを省略することができる。このように、流体送達モジュール１４０は、基板１２０の位置決めを容易にして、ウェルアレイ１２０でサンプルまたは流体を受容および／または密封する（例えば、圧縮力、密閉シールなどにより）。追加的または代替的に、流体送達モジュール１４０は、第１プレートと基板の広範面との間に画定され、ウェルアレイ１２０を横切ってリザーバを通る制御された流体流れを実現する流体経路１６２の領域を提供する流体リザーバ１６０を含むことができる。
［００７２］変形例では、第１のプレート１５０は、基板１１０の上側広範面１１２にわたる長方形のフットプリントを有し得る。しかしながら、代替的に、第１のプレート１５０は、基板１１０の上側広範面１１２の全部または一部に及ぶように構成された他の任意の適切なフットプリント（例えば、非矩形フットプリント、円形フットプリント、楕円フットプリントなど）を有することができる。好ましい変形例では、図２８Ａ〜２８Ｃおよび図２９に示すように、第１のプレート１５０は、ウェルアレイ１２０の上に配置される開口部または凹部１５２を有する。第１のプレート１５０が基板１１０に取り付けられると、第１のプレート１５０の凹部１５２は、ウェルアレイに面する流体リザーバ１６０を画定する。流体リザーバ１６０は、リザーバ蓋１６４によって密封することができ、追加的および／または代替的に、任意選択でリザーバ蓋を流体リザーバ内に密閉するためのエラストマーガスケットおよび戻り止めプランジャを有するプラットフォーム蓋１１５内に配置することができる。図１１Ａおよび１１Ｂに示される別の変形例では、第１のプレート１５０は、第１のプレートの閉じた面の片側であって基板１１０の上側広範面１１２に面する表面に凹部１５２を有し、この凹部１５２および上側広範面１１２が共同で、流体送達モジュールの入口１４２および出口１４４に流体的に接続され得る管腔を規定する。凹部１５２の管腔は、好ましくは、（例えば、凹部と基板の広範面によって画定される管腔を占める流体層および／または流体経路１６２内に）ウェルアレイ１２０の近位のサンプルおよび／または処理試薬を一時的に保持する流体リザーバ１６０として機能する。したがって、凹部１５２は、ウェルアレイ１２０が画定された基板の活性領域にわたるとともに、第１のプレート１５０が基板１１０に結合されたときにアレイと整列することが好ましい。管腔（例えば、流体リザーバ）は、好ましくは凹部の底面と凹部の投影面積との間のギャップ距離の積によって規定される、任意の適切な容積を有することができる。ギャップ距離（例えば、流体リザーバの高さ）は、２５ミクロンから５ｍｍの間であることが好ましいが、代わりに任意の適切な距離であってもよい。
［００７３］一変形例では、凹部１５２は、基板１１０に面する第１のプレート１５０の表面に画定された長方形の凹部とすることができる。さらに、凹部は、図１１Ａおよび１１Ｂに示すような実質的に平坦な底面、または任意の他の適切な底面（例えば、非平坦底面）を有することができる。しかしながら、凹部１５２は、代替的に、他の適切な形態を有することができる。追加的または代替的に、凹部１５２は、第１のプレート１５０を基板１１０に結合したときに密閉シールを提供するために、基板１１０に近い凹部１５２の領域を囲むシール要素１５７（例えば、Ｏリング、シーラントなど）を含むことができる。追加的または代替的に、シーリング要素は、基板プラットフォーム蓋１１５上に配置され、閉じた構成（図３３）で第１のプレートに固定されてもよい。しかしながら、代替的に、第１のプレート１５０は、任意の他の適切な方法で構成されてもよい。
［００７４］第２のプレートは、基板１１０の広範面に直接対向する基板１１０の表面に近接して構成され、第１のプレート１５０を結合できるベースを提供し、それによって第１のプレート１５０と第２のプレートとの間に基板１１０を位置決めするように機能する。第２のプレートは、上側広範面１１２に対向する基板１１０の表面が結合できる相補的な表面を提供することが好ましい。一変形例では、第２のプレートは、基板１１０の平坦な表面（例えば、基板の広範面に直接対向する平坦な面）を結合できる表面を提供するために、実質的に平坦である。しかしながら、第２のプレートは、基板１１０に対して任意の他の適切な態様で構成されてもよい。さらに、第２のプレートは、基板１１０および／または第１のプレート１５０に対する第２のプレートの位置合わせを容易にする位置合わせ要素を含むことができる。変形例では、位置合わせ要素は、位置合わせを容易にする第２プレートの突起および／または凹部、位置合わせを容易にするトラック、磁気要素、および他の適切な位置合わせ要素のいずれか１以上を含むことができる。
［００７５］一変形例では、第１のプレート１５０は、ピン、ねじ、磁気カプラ、クランプ、および他の適切な結合機構のうちの１以上を含む結合機構で第２のプレートに結合されることが好ましい。閉塞を防ぐために、この結合機構は、システムの周辺部分（例えば、第１のプレート１５０、第２のプレート、および／または基板の周辺部分）、または基板の機能に干渉しない他の適切な場所に配置することができる。あるいは、システム１００のいくつかの変形例では、第２のプレートを省略し、任意の適切な方法で第１のプレート１５０と基板１１０との間に直接結合を有してもよい。
［００７６］図２Ａ〜２Ｃおよび図１４に示すように、流体送達モジュール１４０のいくつかの変形例は、システム１００の入口１４２をウェル１２０の各アレイに接続し、付加的または代替的に、ウェルアレイ１２０を出口１４４に接続する入口および出口チャネルのセット（例えば、それぞれのマニホルド入口４４０およびマニホルド出口４４２に関連する流体経路１４６のセット）を含むことができ、ここで出口はウェルアレイから除去された流体および／またはサンプル流体を収集するための（例えば、廃棄物を収容する、余剰の試薬を収容する、下流での処理のために所望のサンプルを収集する）容器に流体的に結合される。流体経路１４６のセットは、所望の流体（例えば、試薬含有流体、サンプル含有流体など）を実質的に一貫した流体流量および体積でウェルアレイ１２０に分配および配送するように機能する。流体経路１４６のセットは、ウェルのセットと任意の適切な対応を有することができ、例えば、単一のウェル１２８あたり１つの流体経路、単一のウェル１２８あたり複数の流体経路１４６、および／または複数のウェルに１つの流体経路などである。別の例では、流体経路１４６のセットは、入口１４２に接続された単一の流体経路から、各ウェルに個別に接続された流体経路１４６のセットに分岐する流体経路１４６のネットワークであり、この場合に入口とウェルの間の流体経路は、長さが実質的に等しい（例えば、正確に等しい長さ、１０〜１００ミクロン以内、所与の流量および経路断面についての特徴的な長さ以内、任意の適切なしきい値長さに等しい）。流体経路１４６のセットは、追加的または代替的に、グループおよび／またはウェルのサブセットを入口、ならびに他のグループおよび／またはウェルのサブセットに接続する流体経路１４６を含むことができる。このように接続されたサブセットのそれぞれは、同じ数のウェルを含んでもよいし、代替的に、各サブセットに流体経路１４６のセットによって接続された異なる数のウェルを有することができる。
［００７７］一実施例では、流体送達モジュールは第１のプレート１５０を備え、第１のプレート１５０は入口１４２および出口１４４を画定する。プレートはさらに、入口に流体的に接続され、ウェルアレイ１２０と協同で隣接する管腔（例えば、流体リザーバ１６０）を画定するように基板の広範面に面する凹部領域１５２をさらに画定する。流体送達モジュールは、細胞捕獲モードで動作可能であり、そこでは細胞の集団および／または堆積細胞を再分配するために使用される分配流体を含む流体サンプルが、入口と出口の間の流体リザーバ１６０に（例えば、差圧によって）流される。この例では、流体サンプルは、流体経路１６２を通って基板の広範面に実質的に平行に流される。サンプルはある流量（例えば、少なくとも０．５ミリリットル／秒、１ミリリットル／秒、１ミリリットル／分、１マイクロリットル／秒、１０マイクロリットル／秒、１００マイクロリットル／秒など）で流され、この流量は、単一の細胞にかかる垂直方向の力（重力、浮力など）の組み合わせが広範面にかかり、横方向に流れるサンプルから単一細胞のウェルのセットへの沈降を促進するために周囲の流体からの横方向の圧力が大きくなるように選択（例えば、制御）される。
［００７８］流体リザーバ１６０は、対象細胞および少なくとも１の流体を含む生物学的サンプルを流体送達モジュール１４０から受け取り、生物学的サンプルおよび少なくとも１の流体を流体経路１４６のセット（例えば、マニホルド、入口マニホルド、出口マニホルド）に送達して、細胞の捕捉や分析を実現するように機能する。第１の変形例では、流体リザーバ１６０は、大気圧への開口部を含み、流量制御サブシステム１８０と連通するとともに流体経路１４６のセットおよび廃棄物チャンバのうちの少なくとも１つによって流体リザーバ１６０に間接的に結合されるポンプによって加えられる負圧によって、流体リザーバ１６０からの入口から出口方向への流体送達が可能になる。第１の変形例では、出口から入口方向への流れを促進するために、加えられる負圧を逆にすることができる。第２の変形例では、流体リザーバ１６０は、大気圧への開口部を備えなくてもよいが、代わりに、それぞれ出口から出口方向と出口から入口方向の両方の流れを促進するために、流体リザーバ１６０で正圧および負圧を提供するように構成されたポンプに結合されてもよい。第２の変形の具体例では、流体リザーバ１６０は、手動ポンピングによって正圧および負圧を提供するように構成されたシリンジポンプに結合される。しかしながら、流体リザーバ１６０からマニホルドへの流体送達は、任意の代替の適切な方法で実行され得る。
［００７９］流体リザーバ１６０は、流体リザーバ１６０内の流体レベルを検出するように構成されたレベルセンサをさらに備えることができ、これは、気泡が流体経路１４６のセットに入るのを防ぐように機能する。したがって、レベルセンサは、トリガ流体レベル（例えば、閾値としての低い流体レベル）を検出したら信号を生成し、プロセッサに信号を送信し、これが信号を受信して、信号に基づいて流体経路１４６のセットに入る流体送達を制御するコマンドを生成するように構成することができる（例えば、流量制御サブシステム１８０を介して）。このコマンドは、流体リザーバ１６０から流体経路１４６のセットへの流体の流れを自動的に停止するのに使用したり、および／または他の適切な方法で流体の流れの制御を実施するように機能することができる。レベルセンサを備える流体リザーバ１６０の変形例では、レベルセンサは、ロードセル、超音波レベルセンサ、または流体リザーバ１６０内の流体レベルがある閾値を超えたときに信号を生成するように構成された任意の適切な信号であり得る。信号が検出されると、システム１００内の流体の流れを停止する応答および／または流体リザーバ１６０にさらに流体を追加する応答を生成し、したがって、気泡がマニホルドに入るのが防がれる。具体例では、流体リザーバ１６０は６ｍＬを超える体積容量を有し、ねじ付き雄雌カプリングによってマニホルド入口１６０に結合するように構成され、大気圧への開口部を備え、開口部はまた、シリンジポンプに結合する。具体例では、流体リザーバ１６０は、流体リザーバ１６０内の流体レベルがある閾値を通過したときに信号を生成するように構成された超音波レベルセンサをさらに含む。システム１００の他の変形例では、流体リザーバ１６０を完全に省略し、バルブの有無に拘わらず、流体送達導管のネットワークを使用して、少なくとも１つの流体を流体経路１４６のセットに送達することができる。
１．３．１．液体送達モジュール−カートリッジ
［００８０］流体送達モジュール１４０はさらに、ウェルアレイ内の細胞の捕捉および／または分析を容易にするために、少なくとも１つの流体を収容し、流体リザーバ１６０に送達するように機能する。好ましくは、図１２Ａおよび１２Ｂに示されるように、流体送達モジュール１４０は、試薬チャンバ１７２のセットを有する試薬カートリッジ１７０を備え、試薬チャンバのセット内の各試薬チャンバ１７６は、細胞の捕獲および／または分析を行うために流体セットのうちの１の流体を収容するように構成される。カートリッジ１７０は、円筒形、円錐形、円錐台形、角柱形、角錐形、または他の適切な形態であり得る。試薬チャンバ１７２のセット内の各試薬チャンバ１７６は、他のチャンバと同一であることが好ましいが、流体貯蔵の要件（例えば、容積要件、温度要件、露光要件、圧力要件）によっては他の試薬チャンバと同一でなくてもよい。流体のセットは、好ましくは、緩衝液（例えば、プライミング、洗浄、および透過化緩衝液）、固定液（例えば、固定前および固定後の溶液）、およびカクテル（例えば、溶解、阻害剤、一次抗体、および二次抗体カクテル）を含み、追加的または代替的に、染色剤（例えば、蛍光染色剤または組織学的染色剤）や、細胞捕捉または分析に適した他の液体を含むことができる。第１の例では、液体のセットには、溶解バッファ、ＲＮａｓｅ阻害剤、ｄＮＴＰなど、捕捉されたｍＲＮＡからオンチップｃＤＮＡ合成を実行するために使用される試薬が含まれる。第２の例では、流体のセットは、ウェルアレイ内の内容物のエキソヌクレアーゼ処理を実行して、一本鎖オリゴヌクレオチド配列を除去するために使用される試薬を含み得る（例えば、オリゴヌクレオチドプローブを含む粒子の捕獲集団から）。第３の例では、流体のセットには、ＰＣＲマスターミックス、ｄＮＴＰ、およびプライマーセットを用いるｃＤＮＡ増幅用の試薬を含み得る。第４の例では、流体のセットは、単一細胞から回収された核酸からの産物（例えば、遺伝物質、方法２００の実施例で生成された遺伝子複合体のセット）の標的増幅のための試薬を含み得る。第５の例では、流体のセットは、特定のオリゴヌクレオチド配列を単一細胞のＤＮＡまたはＲＮＡに連結するための酵素混合物およびオリゴヌクレオチド配列を含み得る。第６の例では、流体のセットは、核酸のタグ付けと標識のための酵素混合物を含み得る。第７の例では、流体のセットは、特定の塩基対長の核酸のサイズベースの精製および溶出に用いられるＳＰＲＩビーズの集団を含む試薬を含み得る。ただし、流体のセットは別の方法で構成することができ、システム１００および／または方法２００によって実行できる任意のアッセイ用の試薬の他の適切な組み合わせを含むことができる。磁気分離による捕捉細胞の精製をさらに促進するように構成されたシステム１００の実施例では、流体のセットは、生物学的サンプル内の対象物質（例えば、望ましくない細胞、断片、老廃物）に結合するように構成された親和性分子と結合した磁気ビーズの溶液も含んでもよい。一例では、試薬チャンバ１７６は、ＣＤ４５結合白血球（ＷＢＣ）に結合するように構成されたストレプトアビジン被覆磁性微粒子の溶液を含み得る。代替の変形例では、流体送達モジュール１４０は、単一の流体または複数の流体の送達を促進して生物学的サンプル内の細胞の捕捉および／または分析を促進するように構成された単一チャンバを含むことができる。他の変形例では、流体送達モジュール１４０のチャンバは、任意の適切な流体導管で置換することができる。
［００８１］流体送達モジュール１４０は、好ましくは、チャンバ内の１以上の流体（例えば、試薬、緩衝液、カクテル、染色、磁性粒子溶液など）とともに事前包装されるように構成され、この流体は事前定義された特定のプロトコルによる関心細胞の捕捉および／または分析を促進するように機能する。あるいは、流体送達モジュール１４０は、異なるプロトコルに従って関心細胞の捕捉および／または分析を容易にするために、ユーザが１以上の流体を流体送達モジュール１４０の１以上の試薬チャンバ１７６に移せるように、開放または半開放構成で事前包装することができる。好ましくは、流体送達モジュール１４０の少なくとも一部は、一回の使用または複数回の使用後に流体送達モジュール１４０の一部を廃棄できるように、消費可能に構成される。あるいは、流体送達モジュール１４０は再利用可能に構成され、流体を流体リザーバ１６０に移送するように構成された再利用可能な流体送達モジュール１４０に流体が繰り返し移送されてもよい。
［００８２］試薬チャンバ１７２のセットを有するカートリッジ１７０を含む流体送達モジュール１４０の実施形態では、各チャンバは、好ましくは、他の試薬チャンバから隔離され、個別にアクセス可能に構成されており、これが特定の流体の流体リザーバ１６０への送達を制御するように機能する。第１の実施例では、流体送達モジュール１４０は試薬チャンバ１７２のセットを備えるとおもに、当該試薬チャンバ１７２のセットを密閉するように構成された少なくとも１つのシールを備え、したがって、試薬チャンバのセット内の各チャンバを他のチャンバから隔離する。第１の実施例のシールは、チャンバのある位置でシールを穿刺することによって試薬チャンバ１７６へのアクセスを提供するように、穿刺可能なホイルシールである。第１の実施例では、各チャンバは２箇所でシールされ、これらの２箇所でシールを穿刺するとチャンバが大気圧にさらされ、静水圧によって、穿刺箇所を介してチャンバ内の流体を流体リザーバ１６０に送達しやすくなる。第１の実施例の別の例では、各チャンバは密封されており、穿刺位置においてシールを穿刺しつつ、穿刺位置に正圧をかけると（例えば、皮下注射針を用いたり、シリンジポンプを用いるなど）、チャンバ内の流体が流体リザーバ１６０に送られる。第３の実施例のさらに別の例では、各チャンバは密閉され、チャンバ位置に負圧を加えると（例えば、バルブや開口部を通して）、チャンバ内の流体の流体リザーバ１６０への送達が促進される。チャンバにおけるシールの穿刺、正圧の適用、および／または負圧の適用は、手動で実行してもよいし、カートリッジ１７０の試薬チャンバの内容物にアクセスできるように構成された作動システムを使用して自動的に実行してもよい。あるいは、流体送達モジュール１４０は、任意の他の適切な機構または要素の組み合わせを使用して、試薬チャンバ１７６の個々のアクセスおよび／または隔離を実現することができる。
［００８３］図１２Ａおよび１２Ｂに示される第１の具体例では、流体送達モジュール１４０’は、各々が細胞捕捉および／または分析を促進する流体または試薬を含むように構成された１０個の同一の隔離された試薬チャンバ１７６を含む実質的に円筒形のカートリッジ１７０を備える。この第１の具体例において、円筒形カートリッジ１７０は、開放されたチャンバを有する開放構成、開放された試薬チャンバと予めパッケージ化された試薬を含む密閉試薬チャンバとを有する半開放構成、および予めパッケージ化された試薬を含む密閉試薬チャンバを有する完全密閉構成のうちの１つを有し得る。半開放または密閉構成では、密閉された試薬チャンバの両端が穴あけ可能なホイルシールで密閉され、開放または半開放構成では、開放された試薬チャンバの一端が穴あけ可能なホイルシールで密閉される。１０個の試薬チャンバはそれぞれ４〜６ｍＬの容積を有し、２インチの長さの大部分に沿って実質的に均一なくさび形の断面を有する。第１の特定例において、流体がカートリッジ１７０のシール近くの下部領域に向かって流れるように、カートリッジ１７０は、図１２Ｂに示されるように、カートリッジ１７０の下部領域に傾斜を有する。
［００８４］第１の具体例の流体送達モジュール１４０’はまた、各チャンバ内の流体の流体リザーバ１６０への自動送達を実現進するために、円筒形カートリッジの各チャンバに個別にアクセスするように構成された作動システムに結合することができる。第１の具体例の作動システムは、ステッピングモータによって駆動される回転軸を備え、この回転軸は円筒形カートリッジに取り付けられる。第１の具体例では、１０個の試薬チャンバ１７２が回転軸を取り囲むように、回転軸は、カートリッジ１７０の回転軸（例えば、垂直回転軸）に沿って取り付けられる。この構成は、ステッピングモータとともに、運用時にカートリッジ１７０が回転するときに１０個の試薬チャンバ１７２の位置を特定できるように機能する。第１の具体例の作動システムはまた、カートリッジ１７０の単一の試薬チャンバ１７６のシールの穿刺を容易にするために、第１の穿孔器とカートリッジ１７０との間に相対変位を提供するように構成される第１のアクチュエータを含む。第１の具体例では、第１の穿孔器は、カートリッジ１７０の下方に位置し、カートリッジ１７０の回転構成を異ならせるとカートリッジ１７０の試薬チャンバ１７２と整列する穿刺チップを備え、この穿刺チップは第１の穿孔器の開口部の境界と近く（例えば、同心であり）、結合されている（例えば、隣接する）。したがって、穿刺チップを介して、あるチャンバ位置においてカートリッジ１７０のシールを穿刺することにより、チャンバの内容物が第１の穿孔器の開口部を通って、チャンバの内容物を受けるように構成された流体リザーバ１６０に流れる。いくつかの変形例では、穿刺チップは、流体がカートリッジ１７０から流体リザーバ１６０に流れるようにする開口部（例えば、垂直チャネル、傾斜チャネル、または他の適切な向きあるいは経路を有するチャネルへの開口部）を有してもよい。追加的または代替的に、穿刺チップの構造は、第１の穿孔器の表面の下に延在して、流体が流体リザーバ１６０に向かって誘導されるように滴下できるようにしてもよい。
［００８５］第１の具体例の１つの変形例では、作動システムは、穿孔器をカートリッジ１７０のシール内へと駆動するために、カートリッジ１７０に対して穿孔器を変位させることができる（例えば、垂直方向、非垂直の上下方向）。この変形例では、第１の穿孔具は、流体リザーバ１６０への流体送達を促進するドリッププレートに結合させることができる。第１の具体例の別の変形例では、作動システムは、カートリッジのシールを穿孔器の穿刺チップの方へ駆動するために、カートリッジ１７０を穿孔器に対して（例えば、垂直方向、非垂直の上下方向に）変位させることができる。第１の具体例のさらに他の変形例では、作動システムは、カートリッジ１７０のシールの穿刺を実現するために、カートリッジ１７０および穿孔器の一方または両方を他の任意の適切な方向（例えば、垂直方向、垂直方向から角度的に変位した方向、水平方向）に変位させることができる。このように、第１の具体例のいくつかの変形例では、カートリッジ１７０および／または穿孔器は、垂直または水平構成から離れるように傾けることができる。傾斜した変形例では、重力および／またはカートリッジ１７０の試薬チャンバ１７６への正圧または負圧の印加により、流体の流れを促進することができる。
［００８６］流体送達モジュール１４０”の第２の具体例では、作動システムは、試薬チャンバ１７６の第１の端部でシールを穿刺するために第１の穿孔器を駆動するように構成された第１のアクチュエータと、試薬チャンバ１７６の第２の端部に開口を作成するように構成される第２の穿孔器を駆動するように構成された第２のアクチュエータとを備える。試薬チャンバ１７６の第１の端部を穿刺することで、試薬チャンバ１７６の第１の端部を大気圧に通気し、試薬チャンバ１７６からの流体送達を促進する機能を果たし、試薬チャンバ１７６の第２の端部に開口部を形成することで、静水圧により、試薬チャンバ１７６内の流体が試薬チャンバ１７６から流体リザーバ１６０に流れるようにする機能を果たす。第２の具体例では、第１のアクチュエータは、チャンバに対して第１の穿孔具を直線的に変位させて、第１の穿孔具をチャンバの第１の端部の穿刺可能なフォイルシールへと駆動するように構成されるソレノイドアクチュエータである。第２のアクチュエータは、回転運動を直線運動に変換するように構成された回転ソレノイドアクチュエータであり、回転ソレノイドアクチュエータに連結された第２の穿孔器が、試薬チャンバ１７６の第２の端部にある穿刺可能なホイルシールを貫通してチャンバに開口部を作成する。しかしながら、第１のアクチュエータおよび第２のアクチュエータは、第２の具体例の変形例において、任意の適切なアクチュエータ（例えば、空気圧または油圧アクチュエータ）あるいは複数のアクチュエータによって置換または補完することができる。さらに、第１および第２の具体例の変形例では、穿孔器が試薬チャンバ１７６の内容物へのアクセス提供を可能にする任意の適切なアクチュエータを含むことができる。同様に、第１および第２の具体例のステッピングモータは、アクチュエータ位置の決定を可能にする任意の適切なアクチュエータまたは要素（例えば、リニアエンコーダに連結されたアクチュエータ）によって交換または補完することができる。このように、第１および第２の具体例の作動システムは、カートリッジ１７０を回転可能にして、個々の試薬チャンバ１７６をステッピングモータを使用して少なくとも１つの穿孔要素と位置合わせし、１以上のアクチュエータのサブシステムを使用して個々の試薬チャンバの穿刺を実現する。
［００８７］第１および第２の具体例の両方において、カートリッジの回転は、図１３に示すように、所望の試薬チャンバ１７６を、流体リザーバ１６０に連結され試薬チャンバ１７６の内容物を受けてマニホルド（例えば、流体経路１４６のセット）内へと分配するように構成された流体入口１４２と直接整列するように（例えば、直上に）位置付ける。しかしながら、第１および第２の具体例の変形例では、カートリッジ１７０、試薬チャンバ１７６、および／または流体リザーバ１６０は、整列しなくても（例えば、ずれていても）よいが、試薬チャンバ１７６から流体リザーバ１６０までの流体の流れを実現する任意の適切な方法で流体的に結合される。一例では、図１３Ｂに示すように、流体リザーバ１６０は、カートリッジの試薬チャンバ１７６と整列しなくてもよいが、流体導管（例えば、可撓性流体導管）を使用して穿孔器（または試薬チャンバ１７６）に結合されている。さらに、第１および第２の具体例のさらなる他の変形例は、カートリッジ１７０が回転せず、追加的または代替的にカートリッジの並進（例えば、Ｘ、Ｙ、および／またはＺ方向）によって、所望のカートリッジ試薬チャンバ１１２を整列させて処理流体を流体リザーバ１６０へ送達するようにしてもよい。さらに、他の変形例では、試薬カートリッジを所定の位置に固定したままにし（例えば、穿孔器および／または入口へアクセスするために回転させることなく）、ピペッターまたはキャピラリーを使用して目的の試薬チャンバの上部から液体を吸引して抽出し、必要に応じて、ウェルアレイの流体マニホルド、入口、流体リザーバ、流体経路、および／または出口へ流体分配するようにしてもよい。
１．３．２ 流体送達モジュール−流量制御サブシステム
［００８８］システム１００は、システム１００を通る流体および／またはサンプルの流れ、ならびにシステムを通る試薬の流れまたはその他の適切な流体の流れを制御するように構成された流量制御サブシステム１８０をさらに含むことができる。流量制御サブシステムは、好ましくは、フロー制御システムが流体送達モジュールの入口と出口との間に圧力勾配を適用するフローモードで動作可能である。この圧力勾配は、正の圧力勾配（入口と出口の間で定義される）または負の圧力勾配であり、連続的、周期的、非同期、（正負間での）往復式、またはその他の適切な方法であり得る。変形例では、流量制御サブシステムは、正圧および負圧の少なくとも一方を提供するように構成され、システム１００を通る流体の流れを促進するように機能するポンプを有する。好ましくは、ポンプ１８２は、システム１００の要素内で流体が順方向および逆方向に流れるように、正圧および負圧の両方を提供するように構成される。順方向の流れは、好ましくは、生物学的サンプルからの関心細胞の捕捉を促進し、逆方向の流れは、好ましくは、生物学的サンプルからの関心のある細胞の回収および／または分析を実現する。好ましくは、ポンプ１８２は、廃棄物チャンバに連結されるように構成され、少なくともポンプ１８２と大気の間、およびポンプ１８２と廃棄物チャンバの間に接続を提供するように構成される多方向バルブを備える。しかしながら、ポンプ１８２は、システムの任意の適切な要素に追加的または代替的に連結され、流体の流れを促進し、任意の適切な代替接続を提供するように構成されたバルブを備えてもよく、および／または多方向バルブ１６２を備えなくてもよい。いくつかの変形例では、ポンプ１８２はまた、ポンプ１８２によって提供される圧力の測定を可能にするように機能する圧力センサを備えることができる。一例では、ポンプ１８２はシリンジポンプであるが、ポンプ１８２は、システム１００内の流体の流れを促進するために正圧および負圧の少なくとも一方を提供するように構成された任意の適切なポンプであり得る。細胞の損傷を最小限に抑えるために、液体送達に用いられる圧力は低いものである（例えば、２ｐｓｉ未満または１ｐｓｉ未満）。好ましい変形例では、ポンプシステムは、０．１ｐｓｉの低いポンプ圧力を制御することができる。
１．４ システム−熱制御モジュール
［００８９］システム１００は、システム１００の運用中にウェルのセットおよび／または流体送達モジュールの内容物の温度を制御するために、基板およびその内容物を加熱および／または冷却するように機能する熱制御モジュール１９０をさらに含むことができる。実施例では、熱制御モジュールは、関心細胞および／または流体を含む生物学的サンプルを加熱および／または冷却して細胞の捕捉と分析を促進し、さらに細胞溶解、プローブハイブリダイゼーションのための酵素活性化、およびポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などの分子診断プロトコルのための生物学的サンプル混合物の熱サイクリングといった低温から高温へのサイクリングを必要とする反応を促進する機能を果たし得る。熱制御モジュール１９０は、ヒータ、ヒートシンク、センサ、ファン、および１つ以上のプロセッサを含むことができるが、この熱制御モジュールは、任意の指示に従って（例えば、ユーザ入力、自動、事前設定された温度スケジュール、特定のアッセイに従ってなど）、ウェルアレイの温度を感知し変更するための適切な要素を含むことができる。変形例では、熱制御モジュールのヒータ１９２は、好ましくは、生物学的サンプルおよび／または流体を制御可能に加熱および冷却するように構成された薄いヒータ（例えば、ペルチェ素子）である。熱制御モジュール１９０は、追加的または代替的に、温度センサ、または温度制御を実現するように構成された他の適切な要素を含むことができる。例えば、温度センサは、熱伝導性基板、加熱素子、または板状ヒータに結合することができる。温度制御は、ファジーロジック制御、比例−積分−微分アルゴリズム、またはその他の適切な手段によるパルス幅変調を用いて実現することができる。温度制御は、１℃の解像度、またはア用途に応じて他の適切な解像度で提供することができる。
［００９０］ヒータ１９２は、基板１１０のウェルアレイの温度を調節するように機能するが、追加的または代替的に、任意の適切な温度制御機構（例えば、電熱冷却プレート）を含んでもよい。変形例では、ヒータは、（例えば、ＰＣＲ成分、試薬、および／またはサンプルの）サーモサイクリングまたはインキュベーションのために基板１１０とインターフェースする低質量ヒータを含み、具体例では、ヒータは抵抗性電力抵抗器（７オーム）と２線式１００オームＲＴＤに接続されたアルミニウムヒータを含むことができ、ここで発熱素子はインハウスのヒータドライバおよび温度コントローラに接続されている。アルミニウムヒータを加熱するために、１２ボルトのＰＷＭ信号が発熱素子に供給される。ＲＴＤは温度検知を提供し、制御アルゴリズムを用いて温度が変調される。冷却時、加熱は停止され、熱を除去するためにファンが作動される。熱質量が小さいため、アニール温度（〜６０℃）から変性（〜９４℃）への加熱は２０秒で達成でき、９４℃から６０℃への冷却は特定の条件下で４０秒で達成することができる。別の具体例では、捕捉細胞から抽出されたｍＲＮＡの生存率を保つために、熱制御モジュールを使用してウェルアレイの温度を１０℃未満（例えば５℃）に維持することができる。
［００９１］ヒータは、好ましくは抵抗電熱加熱素子であるが、代替的または追加的に、誘導加熱素子、対流加熱素子、光学加熱素子、または他の適切な加熱機構を含むことができる。好ましくは、ヒータは基板の底面に隣接配置され、加熱素子の側方広範面は、ウェルアレイの下の基板の下側広範面１１４に直接結合されるが、代わりに基板１１２の上面
に隣接して、基板の底面または上面から離して（例えば、ヒータが非接触加熱機構を含む実施例）、あるいは基板に対する他の適切な位置に配置することができる。
［００９２］第１の実施例では、ヒータ１７０は、加熱素子に連結された熱伝導性基板を含む。この第１の変形例では、熱伝導性基板は、好ましくは加熱素子を収容するが、代わりに、加熱素子は、熱伝導性基板の表面に接触するように構成することができる。熱伝導性基板は、伝導性材料（例えば、シリコン、アルミニウム、銅、金、銀）、または発熱素子から熱を伝達するための他の適切な材料で構成され得る。好ましくは、熱伝導性基板は、発熱面全体にわたって温度が１℃未満のばらつきで、発熱面全体にわたって温度均一性を維持する。しかしながら、熱伝導性基板は、発熱面全体に適切な温度プロファイルを提供することができる。第１の実施例では、熱伝導性基板を特定の温度に加熱するのに必要なエネルギーを低減するために、熱伝導性基板は薄いプロファイルを有することが好ましい（例えば、厚さが４ｍｍ未満の寸法を有する）。熱伝導性基板は、冷却を提供するようにさらに構成してもよい。第１の実施例の具体例では、熱伝導性基板を室温から適切な時間内に１００℃の温度に加熱するのに必要な電力は５０ワット（例えば、４０、３０、２０、１０）未満である。
［００９３］第１の変形例では、１つの露出面と、他のすべての面を覆う断熱材とを有する板状の抵抗加熱器を使用することにより、１つの面を介した加熱を達成することができる。第２の変形例では、ペルチェヒータを使用することにより、ヒータの１の面を通して加熱を提供することができる。ペルチェヒータを使用するヒータ１９２の変形例では、ヒータ１９２は熱電材料を含み、熱電材料にかかる電圧差に応じてヒータ１９２の対向面に異なる温度を生成する。したがって、電流がペルチェヒータに流れると、ペルチェヒータの一方の面の温度が下がり、ペルチェヒータのもう一方の面の温度が上がる。しかしながら、システム１００は、生物学的サンプルおよび／または流体を加熱するように構成された他の任意の適切なヒータ１７０をさらに含むことができる。
［００９４］熱制御モジュールは、上記のヒータ１９２に加えておよび／または代わりに、試薬送達中にウェルアレイに提供される流体の温度を調節および制御するように機能する第２の加熱素子を含むことができる。図１５Ａおよび１５Ｂに示されるように、流体ヒータ１５４（例えば、規定された形状を有するアルミニウムヒータ）が、流体送達モジュール１４０の凹部１５２内に結合され得る。流体加熱プレート１５４は、プレート（例えば、流体送達モジュール１４０の第１プレート１５０）に結合されることが好ましく、この第１プレート１５０は、流体経路１４６のセットをウェルアレイに結合するように構成される（例えば、マニホルドを介して）。１の変形例では、流体ヒータ１５４は第１プレート１５０の表面に結合され、別の変形例では、流体ヒータ１５４は第１プレート１５０内に埋め込まれる。プレート１５０は、好ましくは、流体ヒータ１５４と、ウェルアレイに連結された流体リザーバ内の流体との間の熱伝達を促進し、生物学的サンプルおよび／またはウェルアレイ内の流体を適切に加熱できるように構成される。プレート１５０は、流体経路１６２を介して伝導性冷却を提供するようにさらに構成することができる。しかしながら、冷却は提供されなくてもよく、または他の適切な要素（例えば、必要に応じて強制空冷を提供するために連結されたファン送風機）を用いて提供してもよい。プレート１５０が冷却を提供するように構成される変形例では、冷却剤（例えば、水、油、空気、複合液体）を流体経路１６２に流し、制御流体ポンプを使用して制御することにより冷却を実現することができる。
［００９５］したがって、図１６に示されるシステム１００の変形例は、凹部領域内の流体送達モジュールの第１プレートに結合された流体ヒータ１５４をさらに含むことができ、流体ヒータ１５４は、流体ヒータ１５４によって提供される対流が広範面に平行な第２の方向に流れることができる流体層を少なくとも部分的に画定し、システムは、対流とウェルのセットとの間の拡散輸送を提供する拡散モードで動作可能である。より詳細には、ウェルのセットの開放面は、流体経路を通る対流試薬の流れが確立されるリザーバの領域と比較して非常に小さい。拡散輸送により、試薬を流体層からウェルのセットに輸送することができる。試薬がウェル（約３０−５０ミクロンの深さ）に拡散するのに必要な時間は、式：拡散時間〜（拡散長）２／拡散率で見積もることができ、複数および／または連続した試薬がウェルアレイに分配されるタイミング、速度、および温度は、適切に調整および／または任意に自動化して、様々な生化学アッセイ中にウェルの内容物が試薬に適切に均一に曝されるようにすることができる。例えば、ＰＣＲプライマ（拡散率１０−６ｃｍ２／ｓ）などの小分子は、ウェルに拡散するのに約９秒かかる。およそ４．７×１０−７ｃｍ２／ｓの拡散率のＴａｑポリメラーゼは、ウェルキャビティ全体に拡散するのに約１９秒必要である。したがって、「オールインワン」（例えば、連続、同時、単一、複数、試薬の混合）ＰＣＲ試薬をウェルアレイに送達するために、試薬は試薬がウェルアレイに拡散するまで十分な時間の提供を前提として対流式に流体リザーバに輸送される（約２〜３分）。変形例では、約４０ミクロンのウェルキャビティの高さを有する細胞粒子ペアを含むウェルの場合、細胞の上に不浸透性の非細胞粒子が存在すると、流体リザーバ１６０内の流体経路１６２およびの下のウェルキャビティの間の拡散流体経路を妨害する可能性があり、それによって単一細胞のみを含むウェルの場合よりも、捕捉された細胞に到達する試薬の拡散時間が少なくとも２倍（例えば、３、４、５、１０倍）長くなる。
１．５ システム−イメージングサブシステム１９４
［００９６］システム１００は、ウェルのセットの内容物をイメージングするように機能するイメージングサブシステム１９４をさらに含むことができ、ウェルのセットに捕捉された標的物体（例えば、ＣＴＣ、標識細胞、ミクロスフェア）を、システム１００に導入されたサンプル内の他の細胞や物質から区別するようにさらに機能し得る。イメージングサブシステム１９４は、好ましくは蛍光顕微鏡を含むが、追加的または代替的に、任意の適切なイメージング機構（例えば、光学顕微鏡、ＣＣＤカメラ、フォトダイオードアレイ、発光ダイオード、反射器、１つまたは複数のプロセッサなど）を含むことができる。蛍光顕微鏡は、好ましくは、ウェルのセットのうちの１つまたは複数において標的オブジェクトから放出される蛍光信号を検出し、それによってウェルが標的物体を含むことを同定するように動作可能である（例えば、識別モード、検出モードなど）。具体例において、イメージングシステム（例えば、蛍光イメージングシステム）は、アッセイに従って処理されたサンプルのリアルタイムまたはほぼリアルタイムの蛍光イメージングを提供するモードで動作可能であり得る。イメージングサブシステム１９４は、好ましくは、基板の下に配置され、基板の透明（または半透明）材料を通してウェルのセットの内容物をイメージングするように方向づけられる。あるいは、イメージングサブシステム１９４は、基板の上に配置され、ウェルのセットの内容物を基板自体の材料によって妨害されないようにイメージングするように方向付けることができる。しかしながら、イメージングサブシステム１９４は、他の方法で任意の適切な方法で配置することができる。
［００９７］追加的または代替的に、システム１００は、細胞の処理および／または分析を促進する他の適切な要素を含むことができる。例えば、システム１００は、イメージングを促進するように機能する光学素子（例えば、基板１１０内に埋め込んだり、基板１１０に結合された）を含むことができる。光学素子は、好ましくはイメージングを促進するために入射光を調整するように機能する。光学素子は、入射光を曲げたり、反射したり、コリメートしたり、焦点を合わせたり、排除したり、他の調整をしたりする機能を果たし得る。光学素子は、好ましくは基板内に画定されるが、代わりにシステム１００の任意の他の適切な部品によって画定してもよい。光学素子には、ウェルアレイ１２０を画定している反対側の基板面に画定されたアレイに隣接する基板の厚さ内に配置された光反射器、ウェルアレイ１２０を画定する近くの基板１１０の広範面に画定されたマイクロレンズ、光コリメータ、偏光子、干渉フィルタ、光反射器（例えば、９０°照明素子）、収集された蛍光放射光の経路への励起光線の進入を最小化する要素、回折フィルタ、光拡散器、および他の適切な光学素子、のいずれか１つ以上を含み得る。システム１００は、追加的にまたは代替的に、関心細胞１０をウェル１２８に引き付けるように機能するウェル親和性機構を含むことができる。ウェル親和性メカニズムには、電界トラップ、親和性部分（ウェル表面へのコーティングなど）、要素へ流れを誘導する機能（マイクロ流体構造など）、またはその他の適切な細孔親和性メカニズムが含まれる。しかしながら、システム１００は、他の適切な要素を含むことができる。
［００９８］変形例では、図１７に示されるように、イメージングサブシステム１９４は、ウェルを滅菌し、追加的または代替的に、光分解性化学結合などの光反応物質を含むウェルを照射する機能を果たす紫外線照明要素を含むことができる。この紫外線照明要素は、３００から４００ｎｍの間の波長を放出する１以上の発光ダイオード、水銀灯、および／またはメタルハライドランプを含むことができる。第２．４章で説明されているように、特定用途では、ウェルアレイに３０５ｎｍ以下の波長のＵＶ照射を５〜２０分間行って、プローブのセット３６を粒子に結合している（例えば、ビオチン化性質）感光性結合を切断することにより、粒子からプローブのセットを分離することができる。照明要素がウェルアレイの上方に配置されるいくつかの変形例では、ウェルアレイの下の熱制御モジュールの加熱要素は、ウェルアレイの各ウェル内の粒子の均一な照明を増進する反射面を含むことができる。しかしながら、ウェルアレイの内容物の光照明は、任意の適切な方法で、任意の照明要素の構成によって実行することができる。さらに、システム１００のイメージングサブシステムおよび／または他の要素は、各ウェルキャビティの内部を均一に照明するために、ウェルアレイに対して異なる位置に配置された反射面を含んでもよい。第２章でさらに説明される一実施例では、基板の下の熱制御モジュール１９０の加熱面は反射性であり、したがってＵＶ光が粒子の外側面および／またはウェルキャビティの内側面から捕捉された粒子の全面を照射するようにして分子（例えば、プローブのセット、遺伝子複合体）の光分解を生じさせる。しかしながら、イメージングサブシステムからウェルアレイへの入射光は、システム１００の他の要素の任意の他の機能によって修正、反射、屈折、拡散、および／または他の方法で操作して、各ウェルの内容の光学的検査を改善することができる。
［００９９］イメージングサブシステム１９４は、検出モジュールと、情報を提供するように構成された少なくとも１つのタグとを含むタグ識別システムもさらに含むことができる。タグ識別システムは、システム１００のバーコード、ＱＲコード、および／または他の識別タグを読み取り、識別タグからプロセッサに情報を伝達するように機能する。タグ識別システムを照明モジュール１１０に結合して、プラットフォームまたは他の適切なシステム要素に結合されたイメージング基板上に設けられたタグの識別および読み取りを容易にすることができる。他の変形例では、タグ識別システムは照明モジュールに結合されていなくてもよい。タグ識別システムは、位置が固定されていることが好ましいが、他のシステム要素に対して移動するように構成することもできる。代替例では、タグ識別システムは、システム１００の要素に配置されたタグまたはラベルをスキャンするためにユーザによって操作されるように構成されたスタンドアロンユニットであり得る。タグ識別システムは、バーコードリーダ、無線周波数識別（ＲＦＩＤ）リーダ、ＱＲコードリーダ、近距離通信デバイス、あるいはイメージング基板上またはシステム１００の他の態様（例えば、スライドガラス、カートリッジ、ウェルアレイなど）にある一意の識別子を識別できる機構を実装する他の適切な要素を含むことができる。タグ識別システムは、代替的または追加的に、識別タグ上のエンコードされていない情報（テキストなど）を解析および解釈するように構成することができる。システム１００のいくつかの変形例では、イメージングサブシステム１９４の光学センサは、タグ識別システムとしてさらに機能することができる。
［００１００］好ましくは、タグ識別システムによって識別および／または読み取られるように意図されたタグは、読み取られると情報をタグ識別システムに伝達することが好ましい。情報は、イメージング基板（例えば、ウェルアレイ、ガラススライド）の識別情報、プロトコル情報（例えば、染色プロトコル情報）、プロトコルを実行するために必要な推奨システムパラメータに関する情報、特定のイメージング基板に関するシステム１００のキャリブレーションに関する情報に関する情報、イメージング基板の内容物に関する情報、イメージング基板またはイメージング基板内の位置の確実な位置識別を容易にするように構成された情報、および／または他の適切なタイプの情報を含み得る。情報は、光学センサによってキャプチャされた画像データに結合（例えば、内部に埋め込まれ）、および／または他の適切な手段を使用してプロセッサに通信することができる。
１．６ システム−追加要素
［００１０１］捕捉された細胞のさらなる精製を促進するように構成されたシステム１００の実施形態では、システム１００は、望ましくない試料材料から捕捉された細胞の分離を可能にする磁石９０をさらに含むことができる。磁石９０は、好ましくは単一の磁石であるが、代替的に、磁気的に結合された粒子を捕捉するために大きな磁束を提供する目的で、（例えば、並列に並べられた）複数の磁石の１つであってもよい。好ましくは、磁石または磁石群９０は、システム１００の磁石ホルダに結合され、この磁石ホルダは、実験の一貫性のためにシステム１００の磁石の位置を安定させるように構成される。さらに、磁石９０は、磁石によって提供される磁場によって捕捉された細胞の精製が流体リザーバ１６０内で促進されるように、好ましくは流体リザーバ１６０の近位に配置されるように構成される。しかしながら、代替例では、システムの任意の適切な要素に対して磁石を固定したり、固定しなくてもよい。一実施例では、磁石９０は、流体リザーバ１６０の近位のマニホルド（例えば、流体経路１４６のセット）に固定され、磁気ビーズに結合されたサンプルの粒子が流体リザーバ１６０内の壁に可逆的に捕捉されるように、流体リザーバ１６０の壁に接触する長方形プリズム形状の磁石９０である。別の実施例では、磁石は、マニホルド、ウェルアレイ１８０、または流体リザーバ１６０の出口に磁場を提供するように構成することができ、それにより、処理および／または精製中に、磁気的に結合した粒子をマニホルド、細胞アレイ１８０、および流体リザーバ１６０の出口の少なくとも１つの中に捕捉することができる。
［００１０２］システム１００は、アレイのウェル１２８から単一細胞および細胞クラスタの少なくとも一方を抽出するように機能する抽出モジュール（例えば、細胞回収サブシステム）をさらに含むことができる。単一のウェル１２８から個々の細胞が選択的に取り出されることが好ましいが、抽出モジュールは、ウェルアレイ１２０からの複数の細胞／細胞クラスタの同時取り出しを実現することができる。細胞／細胞クラスタは、細胞に取り除く力を加えることにより取り出されることが好ましい。取り除く力は、内容物をウェル１２８から吸引することによって（すなわち、負圧を用いて）適用されることが好ましい。しかしながら、除去力は、追加的または代替的に、ウェルアレイ１２０を通して流体をポンピングして（例えば、周囲チャネル１５０を介して）、ウェル１２８から細胞／細胞クラスタを駆動する正圧を提供することにより適用することができる。一変形例では、抽出モジュールでポンプ機構によって提供されるポンプ圧は、１０，０００Ｐａ未満であり、特定の変形例では、提供されるポンプ圧は６，０００Ｐａである。別の特定の変形例では、提供されるポンプ圧は１，０００Ｐａである。ただし、他の適切なポンプまたは吸引圧力を使用することができる。
［００１０３］いくつかの変形例では、抽出モジュールは粒子抽出器を含むことができる。粒子抽出器は、システム１００内のアドレス可能な場所から１つまたは複数の単離された細胞および／または非細胞粒子を選択的に取り出すように機能する。粒子抽出器は、単一のウェル１２８から細胞／粒子クラスタを除去するように構成されることが好ましいが、複数のウェルから複数の細胞／粒子クラスタを同時に取り出すように構成することもできる。抽出モジュールは、好ましくは抽出モードで動作可能であり、抽出モードでは、抽出モジュールは、ウェルの底面に垂直な方向に沿って、ウェルのセットのウェルから単一細胞のセットおよび非細胞粒子のセットの少なくとも一方を抽出する。抽出モードでは、流体送達モジュールは基板から取り外されることが好ましい。しかしながら、細胞除去モジュールが抽出モードで動作する場合、流体送達モジュールは代替的に基板に結合されたままであってもよい。しかしながら、粒子抽出器は、２０１２年７月２５日に提出され、この参照により本明細書に組み込まれる米国特許出願第１３／５５７，５１０号「Cell Capture System and Method of Use」に記載されたものなど、他の適切な細胞除去ツールを含むことができる。
［００１０４］粒子抽出器の第１の実施例では、粒子抽出器は、基板１１０の上側広範面１１２に垂直な方向からウェルアレイ１２０にアクセスするように構成される。粒子抽出器は、好ましくは、基板１１０の上側広範面１１２から実質的に垂直方向に細胞／粒子クラスタを取り去るが、代替として、基板１１０の上側広範面１１２に対して角度のついた方向に細胞／粒子クラスタを取り去ることができる。粒子抽出器は、ウェルアレイ１２０にアクセスし、１以上のウェルと流体連通する実質的に流体的に隔離された容積を画定する（例えば、マイクロピペット、毛細管などの）中空チャネルを含むことが好ましい。中空チャネルは、ウェルでの流体シール形成を促進する１つまたは複数のシーリング要素（例えば、ポリマーコーティングまたは適切な幾何学形状）を先端に含むことができる。粒子抽出器は、ウェルの内容物を粒子抽出器に受け入れるための適切な形状を提供するために、近位端から先端に向かって先細になっていることが好ましい。しかしながら、粒子抽出器は、代わりに他の適切な形態を有することができる。したがって、中空針は、好ましくは、関心のあるウェル１２８内に実質的に流体的に隔離された容積を形成するように構成され、その後、低圧発生器（例えば、ポンプ）を使用して、保持された細胞／細胞クラスタをウェル１２８から吸引し、中空チャンネルを通って、粒子抽出器の細胞収集ボリュームに入る。一変形例では、粒子抽出器は、高さが２００マイクロメートル、中空チャネル直径が２５マイクロメートルのマイクロピペットである。別の変形では、粒子抽出器は、１５０マイクロメートルのチャネル直径を有する毛細管である。別の変形例では、ウェルアレイ１２０のウェルは、各グループが基板の広範面に平行な平面内の閉曲線によって囲まれるようにグループ化され、粒子抽出器は、この閉曲線の最大の弦よりも小さい内径を有する。ただし、これらの具体例の他の変形例は、他の適切な画定寸法を有してもよい。
［００１０５］システム１００からの細胞および／または非細胞粒子の除去は、好ましくは自動化されるが、追加的または代替的に、半自動化または手動化することができる。さらに、細胞および／または非細胞粒子の除去は、画像解析（例えば、プロセッサでの視覚処理を介して、光検出器を用いてなど）を通してウェルアレイ１２０から除去された細胞の自動固定化、透過化、染色、イメージング、および識別を含む細胞識別、または他の適切な方法とともに実行することができる。抽出モジュールは、例えば、作動サブシステムを用いて、関心のある細胞／粒子クラスタを含有するウェル１２８へ粒子抽出器を進めるのを促進するように構成することができる。抽出モジュールは、追加的または代替的に、細胞および／または粒子除去方法の選択および／または細胞除去ツールの選択を促進するように構成することができる。別の変形例では、抽出モジュールでの細胞の識別は半自動化することができ、細胞および／または粒子の回収を自動化してもよい。例えば、細胞の染色とイメージングを自動で行い、関心細胞の識別と選択は手動で行うことができる。別の変形例では、すべてのステップを手動で実行してもよい。ただし、自動または手動のステップの任意の組み合わせを使用することができる。
［００１０６］システム１００の実施例は、２０１６年１０月２５日出願の米国出願番号１５／３３３，４２０「Cell Capture System and Method of Use」、２０１４年１月２４日出願の米国出願番号１４／１６３，１８５「System and Method for Capturing and Analyzing Cells」、２０１５年９月２３日出願の米国出願番号１４／８６３，１９１「System and Method for Capturing and Analyzing Cells」、および２０１４年５月２８日出願の米国出願番号１４／２８９，１５５「System and Method for Isolating and Analyzing Cells」に記載の方法に類似する様式でアッセイを容易にするように動作可能である。このシステムは、オンチップ免疫化学、オンチップＤＮＡおよび／またはｍＲＮＡ ＦＩＳＨ、オンチップｍＲＮＡおよび／またはＤＮＡ ＰＣＲ、オンチップ等温増幅、オンチップ生細胞アッセイ、オンチップ細胞培養、および他の類似のアッセイを含む、様々なオンチップ（例えば、基板でのｉｎｓｉｔｕ）分析およびアッセイのために追加的または代替的に動作可能である。
［００１０７］具体例では、システムは以下の手順に従って操作することができる：４ミリリットルの全血サンプルを１０分間、０．４％ＰＦＡの等量で部分的に固定する；サンプルは癌細胞が濃縮されており、ＰＢＳで洗浄される；約８５％の癌細胞と約２０，０００の全血細胞を含む細胞を１ミリリットルのＰＢＳで逆流させて、細胞を含む逆流溶液を生成する；逆流溶液がシステム１００のウェルアレイ１２０上に流され、細胞がウェルに捕捉される；免疫染色試薬が、流体送達モジュールによってウェルのセットの各ウェルに流される；癌細胞が、免疫染色試薬でタグ付けされた細胞から放出される蛍光シグナルを検出する蛍光顕微鏡を使用して識別される；システムの細胞除去モジュール（例えば、３軸移動ステージのキャピラリーチューブ）を使用して、識別された細胞を対応するウェルから抽出し、ＰＣＲチューブに移して、単一細胞ゲノムを増幅する；増幅された単一細胞ゲノムは、下流での処理（例えば、全ゲノムシーケンス、ターゲットシーケンスなど）のためにパックされる。
［００１０８］さらに、細胞選別の分野の当業者が前述の詳細な説明および図面および特許請求の範囲から認識するように、上記システム１００の範囲から逸脱することなく、システム１００の実施形態、変形例、実施例、および特定用途に修正および変更を加えることができる。
２． 方法
［００１０９］図１８に示されるように、標的細胞の集団を単離および分析する方法２００は、ブロックＳ２１０で、標的細胞の集団をウェルアレイに受け取るステップと；ブロックＳ２２０で、粒子の集団をウェルアレイに分配するステップであって、粒子の集団の各粒子は、標的細胞の集団に関連する生体分子に対する結合親和性を有するプローブのセット３６に任意選択的に結合することができる、ステップと；ブロックＳ２３０で、ウェルアレイ全体に部分的に保持された粒子のサブセットを再配布するステップと；ブロックＳ２４０で、ウェルアレイを処理するステップとを含む。いくつかの変形例では、ブロックＳ２４０は、ブロックＳ２４２で、標的細胞の集団および粒子の集団の一部（例えば、プローブ３６のセット）から放出された核酸物質を含む遺伝子複合体７０のセットを生成するステップと、追加的または代替的に、ブロックＳ２４４で、ウェルアレイで生化学プロセスを実行するステップを含む。さらに、方法２００は、追加的または代替的に、ブロックＳ２５０における下流での分析のために、ブロックＳ２４０で、ウェルアレイから生成された遺伝子複合体７０のセットを取り出すステップを含み得る。
［００１１０］方法２００は、細胞の単離、捕捉、および保持を可能にするように機能し、より好ましくは、既知のアドレス可能な場所で、単一細胞形式および／または単一クラスタ形式（例えば、同じウェル内内に共局在する単一細胞と単一粒子の対）の細胞の効率的な捕捉を可能にし、さらに個々の細胞または細胞クラスタ（例えば、生物学的サンプル中の希少細胞、細胞粒子ペア）に実行できる複数の単一細胞／単一クラスタアッセイのパフォーマンスを促進する。好ましい実施形態では、図１９に示されるように、方法２００は、ウェルアレイのサブセットについて理想状態を達成するように機能し、理想状態のウェルは、ウェルアレイ内で単一クラスタ形式で個々の細胞粒子ペアを捕捉するために、ブロックＳ２１０で単一の細胞を受け取り、ブロックＳ２２０でその後に単一の粒子が続く。しかしながら、変形例では、方法２００は、単一の細胞および／または粒子より多くを受け取ったウェルアレイのサブセットについて、（例えば、基板の平坦面１１８に画定される空間的境界を横断する）ウェルの容量を超える細胞および／または粒子の集団を再分配し、それにより、ブロックＳ２１０とブロックＳ２３０の分配ステップにおけるエラー（例えば、凝集、過飽和）を修正して、ウェルアレイ内の単一細胞および／または単一クラスタの捕捉を改善することにより、理想状態を達成することができる。さらなる変形例では、方法２００は、前の分配ステップの結果としてウェルアレイにまだ入っていない（例えば、平坦面１１８上に残る）細胞および／または粒子の集団を再分配することができ、それにより、捕捉されていない細胞および／または粒子に、アクセス可能なウェルに収容される追加の機会を与え、導入された細胞および／または粒子集団の捕捉効率の向上を実現することができる。特に、好ましい実施形態の変形例の実装により、方法２００のステップは、他の方法による２０％未満の捕捉効率と比較して、単一細胞粒子ペアの捕捉効率を８０％を超える捕捉効率に高めることができる。方法２００のステップは、捕獲された細胞の集団の下流での分析を可能にするために、任意の順序または反復数でウェルアレイのサブセットの理想状態を達成するのに用いることができ、追加的および／または代替的に、任意の数の細胞、非細胞粒子、および／またはそれらの任意の組み合わせ（例えば、１またはそれ以上の細胞、１またはそれ以上の粒子などの組み合わせ）を保持するようにウェルアレイの内容物を操作するのに用いることができる。
［００１１１］好ましい応用例において、方法２００は、ウェルアレイの下流での遺伝分析の処理を可能にするように機能することができる。実施例では、図２０に示すように、ウェル内で捕捉された単一の細胞粒子ペアをウェル内で、識別可能な遺伝子配列を形成するように処理することができ、ここで細胞の核酸物質は粒子に結合された相補的ヌクレオチドプローブ結合することができる。このようにして、方法２００は、ウェルアレイから取り出す必要なく、細胞粒子ペアを迅速に単離および保持し、細胞粒子ペアに対して生化学的処理を実行することにより、短時間で処理できる細胞の数を増やすことに大きな利益を提供できる。いくつかの実施形態では、方法２００を使用して、循環腫瘍細胞（ＣＴＣ）および循環幹細胞（ＣＳＣ）などのＣＴＣの亜集団の捕捉および分析を促進することができるが、追加的または代替的に、処理および分析の対象となる可能性のある任意の他の適切な細胞を捕捉するために使用することができる。しかしながら、方法２００は、高スループットの細胞／粒子の単離またはペアリングが望まれる他の適切な用途に適した他の方法で実装することができる。
［００１１２］方法２００の変形例では、ブロックＳ２１０、Ｓ２２０、および／またはＳ２３０は、異なるアッセイに従って細胞集団を処理するためのプロトコルに従って、任意の適切な回数で実行され得る。さらに、ブロックＳ２１０、Ｓ２２０、Ｓ２３０、およびＳ２４０は、異なるアッセイに従って細胞集団を処理するためのプロトコルに従って、任意の適切な順序でまたは同時に実行することができる。方法２００の代替実施形態では、ブロックＳ２２０での粒子の分配、および追加的または代替的にブロックＳ２３０での再分配を、ブロックＳ２１０での標的細胞の分配の前に実行することができる。
［００１１３］方法２００のこの代替実施形態の変形例では、図２４、図２５、および図２６に示すように、ブロックＳ２２０はブロックＳ２１０の前に実行することができ、これがウェルアレイの各ウェル内の粒子集団の単一粒子捕捉を可能にするように機能し、ここで粒子の集団は、ラベリングされたプローブのセットを各ウェルに送達する送達媒体として作用する。好ましくは、粒子の集団の各粒子は、プローブのセット３６内のすべてのプローブに共通のユニット識別子を含むプローブまたはプローブのセット３６に取り外し可能に結合される（図７）。単一粒子がウェルにうまく捕捉されると、プローブのセット３６が粒子から放出され、各ウェルキャビティの内面に結合することができる。粒子はウェルから任意に除去することができ、それにより、ブロックＳ２１０に記載のように、単一細胞の捕捉のために単一細胞がウェルアレイにアクセスし易くなる。各ウェルはプローブのセット３６のユニット識別子を介して個々のウェルに固有のプローブのセット３６を含み、単一細胞がウェル内に捕捉されると、遺伝物質を含む捕捉された細胞の生体分子が放出され、ブロックＳ２４０の実施例（図２４、２５、および２６）で説明されているように、遺伝子複合体を生成するためのプローブのセット結合され得る。遺伝子複合体の取り出し、処理、および／または分析は、ブロックＳ２５０で実行することができる。図２４に示すように、標的細胞の集団を単離および分析する方法２００’は、各粒子がプローブ３６のセットを含む単一粒子形式でウェルアレイに粒子の集団を受け取るステップと；標的細胞の集団を単一細胞形式のウェルアレイ内に捕捉するステップであって、各細胞は各ウェル内のプローブ３６の対応するセットと相互作用することができる、ステップと；プロセス試薬をウェルアレイに入れて、ウェルアレイで生化学プロセスを実行するステップと；ウェルアレイからの生化学プロセスの産物を処理するステップとを含む。いくつかの変形例では、方法２００’は、粒子の集団のプローブ３６のセットをウェルアレイに結合するステップと；各細胞の放出された核酸物質および各ウェル内のプローブ３６のセットを含む遺伝子複合体７０のセットを生成するステップと；ウェルアレイ内の遺伝子複合体を処理するステップと；ウェルアレイから遺伝子複合体７０のセットを取り出すステップとを含む。方法２００’は、下流での処理のためにウェルアレイから追加の取り出すステップを必要とせずに、高スループット方式の単一細胞形式の遺伝子ライブラリを生成するために、単一細胞の分離、捕捉、およびラベリングを実現する機能を果たし得る。一意のラベル（単一細胞形式で捕捉された粒子）を含むプローブ３６のセットで各ウェルをラベリングすることにより、単一細胞形式で捕捉された細胞は、同じウェル内に位置する対応するプローブ３６のセットを用いてその後処理することができる。しかしながら、方法２００のステップの変形例では、単一細胞に由来する遺伝物質を単離およびラベリングし、容易に識別、処理、および分析できる遺伝子複合体の生成を達成するために任意の適切な順序で実行することができる。
［００１１４］方法２００は、好ましくは、上記第１章で説明したシステム１００を使用して少なくとも部分的に実施される。しかしながら、方法２００は、追加的または代替的に、細胞捕捉および分析のための他の適切なシステム１００を使用して実施することができる。上記第１章の実施例で説明したように、ウェルの寸法は、基板の平坦面１１８の下に細胞および／または粒子（例えば、完全に保持された細胞および粒子）を保持し、基板の平坦面１１８を交差する細胞および／または粒子（例えば、部分的に保持された細胞および粒子）が出るように構成および選択することができる。そのような実施例では、関連するウェルに完全に保持されていない細胞および／または粒子は、以下の章で説明する後続の再分配ステップで排出される。好ましい変形例では、ウェルの寸法は、単一細胞と単一粒子をウェルキャビティ１２８内かつ平坦面１１８の下の細胞粒子ペアとして保持するように選択されるが、ウェルの寸法は、任意の数または細胞および非細胞粒子の組み合わせを保持し、したがって方法２００によって他の適切な方法で利用されてもよい。
２．１ 方法−標的細胞の集団の受容
［００１１５］ブロックＳ２１０は、標的細胞の集団をウェルアレイに受けることを記述する。ブロックＳ２１０は、上記第１章で説明したシステム１００の実施形態で関心のある標的細胞を含む生物学的サンプルを受け取り、単一細胞形式および単一クラスタ形式の少なくとも一方でシステム１００のウェルへの標的細胞の分配を促進する機能を果たす。しかしながら、ブロックＳ２１０は、代替的に、単一細胞形式および単一クラスタ形式の少なくとも１つで細胞を捕捉するように構成された他の任意の適切なシステムで生物学的サンプルを受けるステップを含むことができる。ブロックＳ２１０の実施例では、生物学的サンプルは、体送達モジュールの第１のプレートの変形例により（例えば、第１のプレートの凹部によって画定される流体リザーバ１６０を介して、第１のプレート内に埋め込まれ、アレイと流体連通する流体チャネルからなど）、および／または任意の他の適切な方法で、アレイの実施例で直接受け取られる（例えば、ピペッティングにより、アレイに連結された流体チャネルを介した流体送達により）。さらに、ブロックＳ２１０の変形例では、細胞集団は、標的細胞（例えば、ＣＴＣ、ＣＳＣ、免疫細胞）の細胞集団および／または関心のある他の適切な粒子を含むことができる。
［００１１６］ブロックＳ２１０の変形例では、図２１に示すように、標的細胞の集団を受け取るステップは、標的細胞の集団をウェルアレイに分配するステップを含むことができ、任意で１以上の追加のステップで標的細胞の集団を再分配して最初の分配ステップの不正確さ（例えば、ウェルのサブセットが必要以上の細胞を受け取っている場合、細胞のサブセットが基板の一領域で凝集している場合など）を修正することを含み、これにより各ウェルに所望の量の標的細胞を捕捉することが促進される。好ましい実施形態では、ブロックＳ２１０とウェルアレイのウェルキャビティのサイズ制約との調整により、以下にブロックＳ２１８でさらに説明するように、ウェル内に捕捉および保持できる細胞の数および形状を決定することができる。例えば、高さが３０マイクロメートルのウェルは、平坦面１１８より１５〜２５マイクロメートルの間の特性直径を持つ１つの標的細胞を受容し、この最初の標的細胞の上にウェルに入るさらなる標的細胞は、平坦面１１８と交差し、ウェルキャビティ１２８の高さによって規定される境界線を超えることになる。したがって、ウェルキャビティ１２８によって完全に保持されず、むしろ平坦面１１８と交差する細胞は、後続の細胞再分配ステップによって、１より多い細胞を受け取った（すなわち、細胞が飽和状態にある）ウェルアレイのサブセットを、この再分配ステップによって単一細胞のみを含有するように修正することができる。しかしながら、標的細胞の集団を受け取るステップは、各ウェル内に所望の内容物を得るための分配および再分配ステップの任意の方法またはシーケンスを含むことができる。
［００１１７］ブロックＳ２１０は、好ましくは、方法２００の最初のステップとして、他の細胞または粒子分配ステップの前に実行され、このときウェルアレイは、ウェル内に他の細胞または非細胞粒子がない状態である（例えば、ウェルはブロックＳ２１０の前は非占有状態にある）。しかしながら、ブロックＳ２１０は、ブロックＳ２２０で粒子の集団の分配ステップの後など他の任意の適切なときに実行することができ、および／または、最初の細胞分布ステップの後に繰り返してもよい。さらに、標的細胞のウェルアレイへの所望の分布を達成するために、ブロックＳ２１０またはブロックＳ２１０のサブステップを、任意の適切な回数繰り返すことができる。
［００１１８］標的細胞の集団をウェルアレイに分配するステップは、標的細胞をウェル内に捕捉する際の細胞生存率を最大化するようにも機能する。第１の実施例では、標的細胞集団の最初の分配ステップは、細胞に追加の物理力を加えることなく、重力誘導エントリによってウェル内に細胞を装填するステップを含むことができる。一例では、ウェルアレイへの細胞の重力誘導エントリは、アレイの異なる複数領域でサンプルの少量のアリコート（例えば、アリコートあたり５０〜５００μｌの範囲）をピペッティングし、生物学的サンプルをアレイの開放面（各ウェルの開口端が配置されている）で所定時間インキュベートして、標的細胞が重力によってウェルに入るようにする。より具体的には、各アリコートをウェルアレイよりも上の流体リザーバ内のウェルアレイの異なる領域に送達して、各ウェルの開放面にわたってサンプルを分配して、ウェルアレイの上に流体層を生成し、ここから細胞がウェル内に降りるようにすることができる。変形例では、ウェルアレイへの単一の標的細胞の重力誘導エントリに割り当てられる時間は、１ｍＬの容量で５分から６０分までの範囲である（例えば、Ｋ５６２細胞では約２０分、ＰＢＭＣでは約３０分）。しかしながら、細胞の重力誘導エントリは、他の適切な方法によっても達成することができ、例えば、基板のアレイに生物学的サンプルを塗りつけ、一貫した安定した速度で液体リザーバ内の生物学的サンプルの安定した液体層を維持し、および／または、標的細胞へのさらなる物理力を最小化するサンプル堆積および分配のその他の適切な方法とすることができる。
［００１１９］第２の実施例では、標的細胞の集団の分配は、重力のみの場合以上に細胞捕捉の速度を加速する力の適用を含み得る。一例において、標的細胞の分配は、基板の広範面に平行な軸を中心に生物学的サンプルと基板をサイトスピンしたり、基板の広範面に垂直な軸を中心に生物学的サンプルと基板をサイトスピンしたり、または基板の広範面に対して任意の適切な角度に向けられた軸を中心に、生物学的サンプルと基板をサイトスピンすることによって達成できる。さらに、サイトスピニングを含むブロックＳ２１０の応用例において、回転軸は、任意の適切な方法で、基板の任意の適切な基準点からオフセットしてもよい。別の変形例では、ウェルアレイの開放面にわたるサンプルの分配は、基板の中点を通る横軸、または他の適切な回転軸の周りで基板を静かに傾けたり揺動させたりすることによって達成できる。ただし、細胞の捕捉には、細胞の損傷を最小限に抑えながら、ウェルへの細胞の進入の効率と速度を促進するためのサンプル分配に適した他の方法を含めることができる。
［００１２０］ブロックＳ２１０は、細胞の最適な分配を確保し、単一細胞形式で捕捉される標的細胞の数を最大化するために、追加の再分配ステップをオプションで含むことができる。好ましい実施形態では、図２１に示されるように、再分配は、平坦面１１８に平行な流体リザーバを通る流体経路に沿って細胞分配流体を流すステップを含み、ここで流体リザーバは、平坦面１１８でウェルの開放端に沿ってウェルアレイに広がっている。一変形例では、再分配は、細胞分配流体から部分的に保持された細胞のサブセットに（平坦面１１８を横断する）力を加え、それぞれの細胞飽和ウェルから部分的に保持された細胞を出して、これらの部分的に保持されていた細胞をウェルアレイの下流の、細胞を受け入れることができるウェル（例えば、非占有状態、細胞にアクセス可能な状態）に送ることができる。しかしながら、再分配は、追加的および／または代替的に、ウェルアレイに対する任意の位置で、ウェルアレイ全体に細胞の任意のサブセット（例えば、平坦面１１８より上であって流体リザーバ内のウェルアレイから遠位の細胞）を、他の占有状態のウェル（例えば、１つ以上の細胞を含むウェル、１つ以上の非細胞粒子を含むウェル）へと送るように機能してもよい。好ましい応用例において、ブロックＳ２１０における再分配は、単一細胞捕捉効率を改善することができ、ここでは標的細胞の集団内の細胞の少なくとも５０％が単一細胞形式で捕捉される。
［００１２１］細胞の再分布に使用される細胞分布流体は、任意の適切な流体であり得る。一変形例では、細胞分配流体は、ウェルアレイのウェルキャビティ内の溶液よりも低い密度を有し、それにより細胞分配流体がウェルアレイよりも上の流体経路を横切って流れる際に、細胞分配流体がウェルのウェルキャビティ１２８に進入しづらくなり、したがって、基板の平坦面１１８に交差して流路内に突出している細胞のみを出すことができる。しかしながら、細胞分布流体は、部分的に保持された細胞または流路の下流の基板の表面境界より上の細胞の受け渡しを支援することができる任意の適切な密度または特性を有することができる。
［００１２２］さらに、細胞分布流体の流量と流れ方向を調整および制御することができる。好ましい実施例では、流量および流れ方向は、細胞分配流体が流れることができる流体リザーバのいずれかの側に正味の正圧または正味の負圧を加えることが可能な流量制御サブシステムを備える流体送達モジュールによって制御することができる。流れの方向は、流路に沿って一方向にすることができるが、追加的および／または代替的に、細胞分配流体内の細胞をアクセス可能なウェルの開放端にさらすことができるように、双方向、多方向、ランダム化、および／または流路に対して任意の角度にすることができる。一例では、再分配は、細胞分配流体の少なくとも１つのフローサイクルを含むことができ、このフロー方向は、第１の順方向と、この順方向と反対の第２の逆方向との間で交互になり、第１の順方向の流体流によってウェルから出された部分的に保持された細胞が、ウェルアレイのうちの細胞アクセス可能なウェルにアクセスするために、第２の逆方向の流体流によってウェルアレイの方へ戻される。再分配フローサイクルの数は、細胞の集団内の標的細胞の少なくとも大部分がウェルアレイ内の基板の平坦面１１８の下に保持されるように必要な任意の適切なサイクル数であり得る。好ましい応用例において、再分配は、ウェルアレイ内に単一細胞形式で捕捉される標的細胞の集団の標的細胞の最大数をもたらす。ただし、細胞分配流体の流量と流れの方向は、別の方法で構成してもよい。
［００１２３］好ましい応用例では、図２１に示されるように、ウェルアレイのウェルは、平坦面１１８の下のウェルによって最大で単一の細胞が完全に保持されるように構成される。したがって、最初に完全に保持された細胞の上からウェルに入る追加の細胞は、平坦面１１８より下に降下することはない。代わりに、追加の細胞がウェルの開口端から突出し、ウェルキャビティ１２８と流体経路の間の平坦面１１８と交差し、したがって後続の再分配ステップにおいて細胞分配流体がアクセス可能になる。方法２００の第１のステップとしてブロックＳ２１０が実行され、ウェルアレイの各ウェルが他の細胞や非細胞粒子を含まない非占有状態にある第１の実施例では、ウェルアレイに細胞の集団を受け取るための最初の分配ステップは、本明細書で粒子アクセス可能状態または単一細胞状態として定義される単一の細胞を受容したウェルアレイのウェルの第１のサブセットと、本明細書で細胞飽和状態として定義される２つ以上の標的細胞を受容したウェルの第２のサブセットと、本明細書で非占有状態として定義される標的細胞を受容していないウェルの第３のサブセットとの任意の組み合わせをもたらし得る（図２１）。最初の分配ステップの完了時点では、ウェルの第１のサブセットのみが各ウェルに単一の細胞を正常に捕捉し、単一細胞捕捉を伴う好ましい用途の後続の処理ステップに利用可能である。ウェルの第１のサブセットのウェルの数を増やすため（ウェルアレイへの単一細胞の取り込み効率を高めるため）、追加の再分配ステップを用いて、粒子飽和ウェルの第２のサブセットに局在する追加の細胞を、非占有状態の第３のサブセットのウェルに再分配することができる。第２の実施例では、細胞集団を受け取るための最初の分配ステップは、細胞の亜集団が基板の平坦面１１８上および流体リザーバ内に残る出力条件をもたらし得る。ウェルアレイを埋めてウェルの第１のサブセットのウェルの数を増やすために利用可能な細胞の亜集団を利用するために、追加の再分配手順を用いて、空いているウェルの第３のサブセットのウェルに細胞の亜集団を任意で再分配してもよい。
［００１２４］ブロックＳ２１０は、第１章で説明した熱制御モジュールを使用して、低温で実行することができる。好ましい実施例では、ウェルアレイの温度は１０℃未満に維持されるが、ブロックＳ２１０は、追加的および／または代替的に、ウェルアレイ内の標的細胞の集団の生存率を維持するために他の適切な温度で実行することができる。
［００１２５］単一細胞形式での標的細胞の集団の効率的な捕捉を促進するために、標的細胞とウェルアレイ内のウェルの数の特定の比率を有する生体学的サンプルを使用して、ブロックＳ２１０を実行することができる。一変形例では、生物学的サンプル中の標的細胞の数は、ウェルアレイ内のウェルの数の２０％未満であることが好ましい。好ましくは、サンプル中の細胞数とアレイ中のウェル数との比は、１：１０まで低くすることができるが、その比は他の適切な比でもよい。具体例では、２００，０００ウェルを含むアレイの場合、生物学的サンプル溶液中の２０，０００未満の標的細胞（例えば、約２，５００細胞、５，０００細胞、１０，０００細胞、１５，０００細胞など）を使用してブロックＳ２１０を実行することができる。ただし、ブロックＳ２１０は、２００，０００ウェルで１５０，０００個の細胞、または２００，０００ウェルで２５０，０００個の細胞など、ウェルアレイのウェルの数に関連して、サンプルの任意の適切な数の細胞を使用して実行することができる。さらに、細胞の捕捉には、単一細胞の捕捉を促進するために、サンプル中の細胞の他の適切な濃度を含めることができる。
［００１２６］ブロックＳ２１０は、ウェルアレイへの生物学的サンプルの分配の前に、標的細胞の集団を含む生物学的サンプルを準備するステップＳ２１２をさらに含むことができる。実施例では、ブロックＳ２１２は、サンプル内の標的細胞の濃度を増加させることにより、ウェルアレイ内への標的細胞の捕捉効率を高めるように機能し、生物学的サンプルに細胞を加えるステップと、生理的サンプルに固定液を組み合わせるステップと、生物学的サンプルに食塩水を加えるステップと、生物学的サンプルをウェルアレイに送達するステップとの１以上を含み得る。しかしながら、ブロックＳ２１２は、追加的または代替的に、任意の他の適切な生物学的サンプル調製ステップを含むことができる。例えば、生物学的サンプルは、関心のある細胞集団を標的細胞集団として含み、したがって、生物学的サンプルに細胞を加える必要性をなくすことができる。生物学的サンプルには、生の生物学的サンプル（血液、尿、組織など）、濃縮された細胞株（血液から分離されたものなど）、または標的細胞の増強（例えば、マーカーで事前にラベリングされた小粒子に結合されたもの）が含まれる。第１の実施例では、生物学的サンプルは血液から分離されたがん幹細胞の濃縮された集団である。第２の実施例では、標的細胞（Ｔ細胞、Ｂ細胞、癌幹細胞など）を小さな粒子と結合させて、有効な細胞サイズが選択的に大きくなる。第３の実施例では、下流での細胞の同定および／または定量化を支援するために、標的細胞が蛍光標識、金ナノ粒子、または化学リンカーで事前ラベリングされる。しかしながら、生物学的サンプルは、他の適切な成分を含むことができ、適切な方法で前処理することができる。
［００１２７］一例では、上記のシステム１００の具体例を使用して、ブロックＳ２１２は、関心のある細胞集団（例えば、ＭＣＦ７乳癌細胞、ＳＫＢＲ３乳癌細胞、ＬｎＣＡＰ前立腺癌細胞、ＰＣ３前立腺癌細胞、ＨＴ２９結腸直腸癌細胞）とともに生物学的サンプル（例えば、２ｍＬの全血）を、細胞スパイクありまたはなしで、液体リザーバ１６０に送達し、流体送達モジュールの円筒形カートリッジを回転させて、適切な生物学的サンプル調製溶液を含むチャンバが、作動システムにより穴を開けられるようにする。次いで、生物学的サンプル調製溶液は、流体リザーバ１６０に流入し、生物学的サンプルと組み合わされ、その後、流量制御サブシステムのポンプによる圧力発生によってウェルアレイに送達され得る。しかしながら、ブロックＳ２１２は、基板のウェルアレイに受容される標的細胞集団を含む生物学的サンプルを調製する任意の他の適切な方法を含むことができる。
［００１２８］ブロックＳ２１０はさらに、生物学的サンプルをウェルアレイに分配する前に、ブロックＳ２１４で基板をプライミングするステップを含むことができ、これは基板の流体チャネル内に空気および／または細胞凝集体が閉じ込められるのを最小限に抑え、標的細胞集団を含む生物学的サンプルを受け取るシステムを準備するように機能する。基板のプライミングには、プライミング試薬または緩衝液を基板の流体チャネルに流すステップが含まれる。一例では、ウェルアレイに緩衝液を送達するステップは、１×リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中の１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および２ｍＭエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を含む緩衝液を送達するステップを含む。ただし、緩衝液を送達するステップは、他の適切な流体をウェルアレイに送達するステップを含み得る。この例では、上述のシステム１００の具体例を使用して、ブロックＳ２１４の基板のプライミングは、緩衝液を含むチャンバが作動システムによって穿刺されるように、流体送達モジュールの円筒形カートリッジを回転させるステップを含み得る。次いで、緩衝液が流体リザーバ１６０に流入し、ポンプによる圧力発生によってマニホルドおよびマイクロ流体チップに送達され得る。その後、ポンプで緩衝液を順方向と逆方向に駆動して、ウェルアレイから気泡を適切に除去することができる。しかしながら、ブロックＳ２１４は、標的細胞集団を捕捉するように構成されたウェルアレイに緩衝液を送達する他の適切な方法を含むことができる。
［００１２９］別の変形例では、基板のプライミングは、基板を滅菌するように機能し得る。一例では、基板の滅菌は、基板に合計８００μｌの１００％エタノールを添加し、続いて基板を紫外線下で（例えば、第１章で説明したイメージングサブシステム１９４を介して）約５〜２０分インキュベートして基質を殺菌する。しかしながら、細胞および／または非細胞粒子を分配する前に、他の適切な方法で基板をプライミングすることができる。
［００１３０］標的細胞の集団を捕捉した後、ブロックＳ２１０では、ブロックＳ２１６における捕捉細胞の識別、定量化、および位置特定を含む、捕捉細胞からの情報収集を任意で含むことができる。ブロックＳ２１６は、好ましくは、第１章で説明したイメージングサブシステム１９４を使用して達成されるが、システム１００の他の方法および／または要素を使用して達成することができる。ブロックＳ２１６で得られた情報は、方法２００の後続のまたは同時のステップの設定を通知、修正、および／または調整するためにさらに利用することができる。実施例では、捕捉された細胞を（例えば、直接的または間接的にラベリングされた）蛍光抗体で染色することにより、標的細胞の捕捉された集団を表現型で特徴付けおよび／または定量化することができる。例えば、特定の染色を使用して、生存細胞の数、細胞周期における細胞の特定の状態、および／または標的細胞のサブタイプを定量化することができる。さらに、イメージングサブシステム１９４を介したウェルアレイのイメージングを利用して、捕捉された細胞粒子ペアの正確な数を確認し、下流のライブラリ調製および／または次世代シーケンシングに適したパラメータを決定することができる（例えば、ＰＣＲ増幅サイクル数および／またはシーケンシング深度を決定するため）。第１の例では、単一細胞形式で正常に捕捉された細胞数に関する情報を使用して、ブロックＳ２２０での効率的な分配と単一の細胞粒子の捕獲に必要な粒子の数を決定および選択（例えば、溶液中の粒子の濃度を増減）することができる。第２の例では、サンプル内の細胞の大部分がすでに単一細胞形式で正常に捕捉されていることを示す情報を用いて、さらなる再分配ステップおよび／または処理ステップをスキップおよび／または調整するようシステムに指示することができる。これにより、処理時間が短縮され、パフォーマンスが向上する。あるいは、細胞凝集または不十分な細胞捕捉（例えば、流体リザーバに非捕捉細胞が大部分残っている）を示す情報により、追加の再分配ステップおよび／または処理ステップを含めるようにシステムに指示することができる。第２の実施例では、捕捉された細胞の個々の位置とウェルアレイ内の相対的な分布に関する情報を使用して、第１章で説明した流体送達モジュールの要素に指示して、より効率的な捕捉の設定へと調整することができる。一例では、捕捉された細胞の大部分が基板の第２面と比較して基板の第１面に位置することを示す情報を流体制御サブシステムに伝えて、特定の流量および流れ方向を選択させて、再分配ステップ中に非捕捉および／または部分的に保持された細胞を基板の第２面の方へ流すことができる。別の例では、流量制御サブシステムが単一細胞を含有するウェル（例えば、粒子がアクセス可能なウェル）の位置情報を使用して、ブロックＳ２２０で粒子がアクセス可能なウェルが粒子を受け取るように粒子の集団を分配する特定のプロトコルを選択し、理想的な状態を実現することができる。ただし、捕捉細胞に関する情報は、ウェルアレイ内の定量化および位置に限定されず、方法２００のステップのいずれかを指示および修正するために使用することができる。さらに、ブロックＳ２１６は、方法２００全体で任意の回数繰り返すことができるとともに、ブロックＳ２１０の細胞分配、ブロックＳ２２０の粒子分布、およびブロックＳ２３０の粒子再分布の個々のステップのパフォーマンスを評価および指示することを含む、方法２００の任意のステップの前、後、および／または間に実行することができる。
［００１３１］ブロックＳ２１０は、所望の標的細胞のサイズおよび数、ブロックＳ２２０で使用される粒子の寸法と数、捕捉の評価または実行されるプロトコル、および方法２００の少なくとも一部の完了時のウェル状態についての望ましい出力条件（各ウェルに捕捉されるべき細胞および／または粒子の数を含む）のうちの１以上に従って、ブロックＳ２１８における基板内の特定の寸法、幾何学的形状、密度、および／または空間的配置を有するウェルを含むウェルアレイを選択するステップを任意で含むことができる。ウェルアレイのウェルは、ブロックＳ２１０および／またはブロックＳ２２０の完了時におけるウェルの出力状態に影響を与え得る様々な寸法範囲を呈することができ、これには、水平断面、垂直断面、各ウェルの開放端の幅、ウェルキャビティ１２８の高さ、およびウェルキャビティ１２８の総容積が含まれる。ウェルの理想的な状態が正確に１つの細胞と１つの粒子を同じウェルに入れることが望ましい実施例では、ウェルの寸法は、細胞と粒子の両方を平坦面１１８（例：ウェルの開放端）より下に保持するのに十分であるが、ブロックＳ２１０で最初の細胞が受け取られた（細胞飽和状態となる）後に２番目の細胞を保持したり、あるいはブロックＳ２１０で最初の細胞を受けた後に２以上の粒子を保持したり（粒子飽和状態になる）するのに十分ではない。具体例では、１０〜１５マイクロメートルの特性直径を有する標的細胞と、１８〜２２マイクロメートルの特性直径を有する粒子集団とを含む標的細胞集団の場合、ウェルキャビティ１２８の高さは２０〜５０マイクロメートルの範囲であり、各ウェルの幅（例えば、水平断面）は２０〜３０マイクロメートルの範囲であり得る。別の例では、ウェルの理想的な状態が正確に１つの細胞（例えば１０〜１５マイクロメートル）または１つの粒子（例えば１８〜２２マイクロメートル）のいずれかを含む（ただし、細胞と粒子の両方ではない）場合、各ウェルキャビティ１２８の高さは１０〜３０マイクロメートルの範囲であり、各ウェルの幅（例えば、水平断面）は２０〜３０マイクロメートルの範囲であり得る。ただし、ウェルの寸法は、他の適切な基準に基づいて選択することができ、細胞集団の寸法および／または方法２００の任意のステップで使用される粒子の集団の寸法と一致および相関させることができる。
２．２ 方法−粒子の集団を分配する
［００１３２］ブロックＳ２２０は、粒子集団をウェルアレイに分配することを記載する。ブロックＳ２２０は、好ましくは、粒子集団のうちの単一の粒子を、ブロックＳ２１０の実施例で説明した粒子アクセス可能ウェル（例えば、ウェルの第１のサブセット）内に前に保持されている単一の標的細胞と共局在させ、それにより個々のウェル内に単一の細胞粒子ペアを捕捉するように機能する。ただし、ブロックＳ２２０は方法２００の任意の他のステップの前または後に実行できるとともに、前に任意数の細胞および／または非細胞粒子を含有するウェル、および／または前に占有されていないウェルを含むウェルアレイの個々のウェルに、任意の数の粒子を分配するのに利用することができる。好ましい応用例では、ブロックＳ２１０およびブロックＳ２２０の連続ステップの結果として、ブロックＳ２３０での粒子の再分配中に、細胞粒子ペアを含む粒子がウェルキャビティ１２８から出て行かないように、標的細胞および粒子はウェルのウェルキャビティ１２８によって完全に保持される（例えば、細胞粒子ペアは平坦面１１８の下に保持される）。ただし、ブロックＳ２２０は、ウェルアレイ全体に粒子の集団を分配し、ウェルアレイの個々のウェルに受け入れられて保持される粒子の数を制御するために、方法２００で他の適切な方法で実装できる。
［００１３３］好ましくは、ブロックＳ２２０は、ブロックＳ２１０に記載されるようにウェルアレイに標的細胞の集団を受けた後に実行され、標的細胞によって現在占有されているウェルに追加された粒子が標的細胞の上であって開口部の近位に定着するようにする。しかしながら、ブロックＳ２２０は、追加的および／または代替的に、ウェルアレイで標的細胞を捕捉する前に、および方法２００の他の適切なステップと時間的に関連して実行することができる。粒子の集団がウェルアレイに均一に分配され、ウェルごとの標的細胞と粒子の１：１の比率を促進するために、ブロックＳ２２０の後にブロックＳ２３０が続き、そこで粒子がウェルアレイ全体に再分配され、これはブロックＳ２１０で説明した細胞の再分配と類似である。しかしながら、ブロックＳ２２０は、他の適切なステップを含むことができる。
［００１３４］ブロックＳ２２０では、ウェルアレイに受容される粒子の集団（例えば、ミクロスフェア、ビーズなど）は、物理的特性（例えば、非膨張挙動、溶解性）、磁気特性、光学特性、化学特性（生体適合性、結合親和性）、および熱特性を含む、粒子の所望の特性をもたらす任意の適切な材料であり得る。粒子は、ポリスチレン、シリカ、非多孔質ガラス、多孔質ガラス、被覆ガラス、および／または１以上の適切な材料の組み合わせで作ることができる。粒子の密度は、好ましくは、含有溶液の緩衝液よりも大きい（例えば、少なくとも１．１ｇ／ｃｃ）が、代わりに他の適切な密度であってもよい。
［００１３５］好ましくは、粒子は、個々のウェル内に単一の細胞粒子ペアを共局在化するために、現在平坦面１１８より下で単一の標的細胞によって占有されているウェルに単一の粒子のみが入ることができるように構成される特性寸法を有する。好ましい実施例では、粒子集団内の各粒子は、直径が１０〜３０マイクロメートルの外殻を含む球状粒子である。容易な分配とウェルアレイへの定着を実現するために、粒子の集団は実質的に単分散の形状で生成することができる。実施例では、粒子の集団は、２０ミクロン、１５ミクロン、３０ミクロン、３５ミクロン、および／または４０ミクロンのいずれかの直径を含む特性寸法をもたらすことができ、標準偏差は２０％未満または１５％未満であり、これによって単一の細胞粒子ペアの捕捉効率が５０％以上に向上する。さらに、粒子の集団の均一性により、単一細胞シーケンシング調製生化学プロセス（ブロックＳ２５０）の様々なステップの完了時に、粒子回収率を高めることができる。沈降を最小限に抑え、分布を改善するために、粒子集団を含む溶液には、任意で約１０％のグリセロールを含めることができる。
［００１３６］このバリエーションの具体例では、粒子は、直径が約２０マイクロメートル（例えば、１５〜２５マイクロメートル）のポリスチレンコーティングを有するガラスビーズであるが、代替的および／または追加的に任意の他の適切な直径であってもよい。さらに、粒子は、任意の他の適切な３次元（例えば、長方形、三角形、長円形、棒状または他の多角形）または２次元の形状（例えば、シート状）とすることができる。ウェルの高さが約４０マイクロメートルであり、標的細胞が１５〜２５マイクロメートルの範囲の特性寸法を有する具体例では、１８〜２２ミクロンの直径を有する粒子を用いてステップＳ２２０で平坦面１１８の下に単一の捕獲細胞と単一の粒子とを共局在させることができる。ただし、システム１００による方法２００の実装例は、他の適切な方法で構成することができる。
［００１３７］ブロックＳ２２０の変形例では、粒子集団の外殻は、捕捉された標的細胞、捕捉された標的細胞の生体分子、ウェルキャビティ１２８の内面１３０、ウェル内の溶液、および／または本出願に記載のシステムおよび／または方法の他の適切な要素と相互作用するように機能する、様々な表面特性および／または表面特徴を含むことができる。
［００１３８］図２０に示すように、第１の実施例では、粒子の外殻は、ブロックＳ２４０の実施例に記載されているように、細胞から放出され、下流プロセス（例、逆転写酵素、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）など）を促進するために、細胞から放出される細胞内核酸物質（例：ｍＲＮＡ、ＤＮＡ、タンパク質など）に好ましく結合する機能を果たすプローブおよび／またはプローブ３６のセット（例えば、オリゴヌクレオチド、化学リンカーなど）に結合できる。ただし、プローブ３６のセットは、標的細胞の分析を実行するために、他の任意の方法で実装することができる。プローブがヌクレオチド配列を含む生体分子相互作用領域を含む実施例では、個々のプローブの生体分子相互作用領域は、追加的または代替的に、プライマー配列（例えば、ＰＣＲハンドル）、核酸物質が由来する細胞を同定するのに用いられる細胞バーコード（例えば、ユニット識別子）、同じ細胞の異なる分子（例えば、遺伝物質）を標識するための一意の分子識別子（ＵＭＩ、１のバーコードは複数のＵＭＩを有し得る）、ポリアデニル化ｍＲＮＡ種の捕捉を可能にするポリＤＴ配列、およびオリゴ合成のサポートとして機能するポリエチレングリコール（ＰＥＧ）誘導体と反応する表面ヒドロキシルの少なくとも１つの任意の組み合わせを含むことができる。生体分子相互作用領域に加えて、各プローブは、プローブを粒子に結合する粒子リンカーを含む粒子結合領域と、追加的または代替的に、（例えば、タンパク質、抗体親和性、化学的相互作用を介して）細胞の一部またはウェルの表面の一部に結合する機能的リンカーを含む基板結合領域を含むことができる（図２０、図７）。具体例において、粒子の外殻上の単一セットのプローブ３６に結合された単一粒子が、ブロックＳ２２０にて個々のウェルのウェルキャビティ１２８に受け入れられる。プローブ３６のセットは、紫外線（ＵＶ）波長を用いて活性化できる光開裂性結合を含む粒子リンカーによって粒子の外殻に結合される。ＵＶ照射下で、プローブ３６のセットをウェル内の粒子から制御可能に分離することができ、粒子を任意でウェルキャビティ１２８から取り出すことができ、それによって粒子の物理的制約なしにプローブ３６のセットがウェルキャビティ１２８内の環境と相互作用できるようになる。しかしながら、プローブ３６のセットの生体分子相互作用領域、粒子結合領域、および基板結合領域は、他の方法で構成することができる。
［００１３９］別の実施例では、各粒子の外殻を変更して、バーコード化されたオリゴヌクレオチドのリンカー密度を特定の数に合わせて調整し、単一細胞溶解物から捕捉される生体分子の数を最大化しつつ、ｃＤＮＡ逆転写、および／またはＰＣＲ増幅といった、プローブと形成された遺伝子複合体（例えば、ブロックＳ２４０中）の下流での処理における立体障害の影響を最小限に抑えることができる。単一細胞ＲＮＡ配列の場合、粒子は０．１〜５マイクロモル／グラムのリンカー密度になるように調整することができる。例えば、粒子上のリンカー密度は、単一細胞溶解物からの生体分子の最大数が約１００，０００分子、５００，０００分子、７５０，０００分子、１，０００，０００分子、２，０００，０００分子、３，０００，０００分子、４，０００，０００分子、および／または５，０００，０００分子のいずれかになるように調整することができる。オリゴヌクレオチド結合の前に、化学エッチング、機能化された表面の薄い層（ほんの僅か、０．１、１、２、および／または３ミクロンまでの厚さ）の化学成長といった様々なプロセスによって、粒子の外表面積および／または多孔性を調整することができる。別の実施例では、粒子の外殻は、ＤＮＡ、ｍＲＮＡ、タンパク質、代謝産物、グリカン、細胞酵素などの単一細胞または単一細胞溶解物からの異なるタイプの生体分子を結合できるように、所定の密度の複数の異なる官能基を含むことができる。ただし、粒子の集団の外殻の特徴と特性は、他の適切な方法で構成してもよい。
［００１４０］さらに、それ以外にも、粒子の集団の表面構造は、ウェルアレイ内で他の適切な機能または相互作用を実現するように構成することができる。第２の実施例では、粒子の外殻は、細胞またはウェルの壁のいずれかで抗体または他の適切なタンパク質に結合できる表面結合部分を含むことができる。第３の実施例では、粒子の外殻は、粒子の生体適合性を改善する合成または有機材料（例えば、ＰＥＧ、コラーゲンなど）を含むことができる。第４の実施例では、粒子の外殻は、フック、粘着剤、または拡張可能容積など、粒子がウェルに入り、ウェル内に保持されることを可能にする物理的特徴を含むことができる。ただし、粒子の外殻は別の方法で構成してもよい。
［００１４１］さらに、粒子の集団の各粒子は、粒子内に、合成試薬、生化学剤、および／または捕捉された細胞の生化学的アッセイを実施するために使用できる有機材料を任意に含むことができる。実施例では、粒子は、当該粒子から放出される薬物を含むように製造することができ（例えば、時間、温度、ｐＨなどによってトリガされる）、ウェルアレイ内の単一細胞での高スループット薬物試験に適用することができる。例えば、粒子の外殻は、特定の温度で経時的に溶解する生分解性材料で構成することができ、それによってウェル内の標的細胞の存在下で薬物が放出される。ただし、粒子の集団は、他の適切な方法で構成してもよい。
［００１４２］ブロックＳ２２０を実行するために、粒子の数とウェルの数の比は少なくとも１：１であり、好ましくは少なくとも１．５：１であるが、粒子は他の任意の適切な数であってもよい。単一の細胞粒子ペアの捕捉が望ましい実施例では、粒子溶液内の粒子の数は、単一細胞を含有するすべてのウェルが少なくとも１つの粒子を受け取るように選択される。アレイ内のウェルの数が２００，０００である具体例では、アレイに添加される粒子数は、３００，０００〜４００，０００粒子の範囲であることが好ましい。さらに、前述のように、ブロックＳ２１０の完了時に単一細胞形式で捕捉された細胞数に関する情報を取得することで、粒子溶液内の粒子数の選択を支援し、望ましい捕捉効率を高めることができ、ウェルアレイについて粒子の不飽和または過飽和を最小限にすることができる。一例では、２００，０００ウェルのアレイのうち５０００〜６０００ウェルの範囲が粒子アクセス可能な状態にあると判断すると、粒子溶液中の粒子の数を１０，０００から５０，０００粒子の範囲内で選択して粒子飽和状態の発生を最小限に抑え、これによって単一細胞への単一粒子の共局在化の効率および／または速度を改善することができる。ただし、ブロックＳ２２０でウェルアレイに添加される粒子数の選択は、他の適切な様式で行うことができる。
［００１４３］粒子の集団をウェルアレイに分配するステップは、ブロックＳ２１０で説明されるように、細胞の最初の分配と同様に、ウェルアレイに粒子をロードするように機能する最初の分配ステップを含む。実施例では、粒子の集団は、重力誘導エントリ（例えば、複数のアリコートでアレイにピペットで入れられる）、力を加えて（例えば、粒子の集団を含む溶液で基質をサイトスピニングする）、および／または第１章で説明した試薬送達モジュールによって流体リザーバ１６０に流入させることにより、ウェルアレイに入ることができる。具体例では、２００，０００〜６００，０００の範囲の粒子を含む粒子溶液を、ウェルアレイの様々な領域で溶液の少量アリコートをピペッティングして、ウェルの開放端より上の流体リザーバ内に均一な流体層を形成し、その後ウェルアレイを３３０ｒｐｍで４分間遠心分離することにより、ウェルアレイに分配することができる。しかしながら、粒子の最初の分配は、システム１００の任意の適切な要素を用いた他の適切な方法によって実行してもよい。
［００１４４］ブロックＳ２１０の後にブロックＳ２２０が実行される好ましい応用例では、ウェルアレイに粒子の集団を受け取るための最初の分配ステップは、図２２に示されるような、単一の細胞粒子ペアを含有する理想状態として定義される、単一粒子を受け入れる単一細胞を保持するウェルアレイの第１のウェルのサブセット；本明細書で粒子飽和状態として定義される、複数の粒子を受け入れる単一細胞を保持するウェルアレイの第２のサブセット；本明細書で細胞アクセス可能状態と定義される、単一粒子のみを受け入れる非占有ウェルの第３のサブセット、および複数の粒子を受け入れる非占有ウェルの第４のサブセット（図２２）；を含む結果の組み合わせをもたらし得る。最初の分布ステップが完了すると、理想状態のウェルの第１のサブセットのみが各ウェルに単一の細胞粒子ペアを正常に捕捉しており、単一細胞および／または単一の細胞粒子ペアの捕捉を伴う好ましい用途における後続処理ステップに利用することができる。理想状態のウェルの第１のサブセットのウェルの数を増やすため（ウェルアレイへの単一細胞粒子ペアの捕捉効率を高めるため）、粒子飽和ウェルの第２のサブセットに局在する追加の粒子が、ブロックＳ２３０に記載されているように、任意で、最初の分配ステップ後に占有されていないウェルおよび／または最初の分配ステップ後に粒子アクセス可能状態（例えば、単一の細胞のみを含む）のままであるウェルに再分配される。追加的および／または代替的に、流体リザーバに残っている部分的に保持された粒子および／または過剰な粒子は、廃棄物チャンバに連結された出口を通って流体リザーバから出ることができる。しかしながら、ブロックＳ２２０は、他の適切な方法で実行することができる。
２．３ 方法−粒子の集団を再分配する
［００１４５］ブロックＳ２３０では、粒子の集団を再分配するステップで、ウェルアレイ全体で粒子の最適な分配を確保するとともに、ウェルアレイにアクセスできる粒子の数を最大化して、好ましくは個々のウェル内で単一細胞の捕捉および／または単一の細胞粒子ペアリングを実現する。ブロックＳ２３０は、ウェルアレイに追加されたが個々のウェル（例えば、平坦面１１８の下のウェルキャビティ１２８に）内に完全に保持されていない粒子を再分配できる。これには平坦面１１８の上の流体リザーバに残った粒子（例えば、過剰な粒子）や、個々のウェルに入ったが、ウェルの容積容量を超え、平坦面１１８を横切って流体経路に入る粒子が含まれる。好ましい実施形態では、ブロックＳ１１０の細胞再分配ステップと同様に、粒子の再分配は、平坦面１１８に平行な流体リザーバを通る流体経路に沿って粒子分配流体を流すステップを含み、ここで流体リザーバは、平坦面１１８のウェルの開放端に沿ってウェルアレイにわたって広がる。１の実施例において、図２２に示すように、再分配ステップは、粒子分配流体によって部分的に保持された粒子のサブセットに（平坦面１１８を横断する）力をかけ、部分的に保持された粒子をそれぞれの粒子飽和ウェルから排出し、これらの部分的に保持された粒子をウェルアレイの下流の、粒子を受け取ることができる（例えば、非占有状態、粒子アクセス可能状態の）ウェルへと移す。しかしながら、再分配は、追加的および／または代替的に、ウェルアレイに対する任意の位置で（例えば、平坦面１１８より上にある粒子、流体リザーバ内のウェルアレイから遠位の粒子）、ウェルアレイにわたって粒子の任意のサブセットを、他の占有状態のウェル（例えば、１以上の細胞を含むウェル、１以上の非細胞粒子を含むウェル）へ移すように機能してもよい。
［００１４６］粒子および／または細胞の再分配に使用される粒子分配流体は、任意の適切な流体、またはウェルアレイの上面全体を流れる任意の適切な成分を含む流体であり得る。実施例では、粒子分配流体は、ウェルアレイのウェルキャビティ内の溶液よりも密度が低く、そのため、粒子分配流体がウェルアレイよりも上の流体経路を横切って流れるときに、粒子分配流体はウェルのウェルキャビティ１２８に簡単に進入せず、したがって、基板の平坦面１１８を交差して流路内に突出する粒子のみを排出することができる。ただし、分配流体は、他の適切な特性を有してもよい。流体リザーバが（例えば、流体経路に沿って）磁気要素のセットを含む別の変形例では、粒子分配流体は、ウェルアレイに対して特定の空間領域に渡って）分配流体の流れを制御および／または集中させる（例えば、流体リザーバ内の磁気要素に近い流体経路のみを通すのに利用できる磁気粒子のセットを含むことができる。しかしながら、分配流体は、分配流体の流量および／または流れ方向を変更できる他の機能的要素（例えば、静電特性、物理特性、化学特性、熱特性）をもたらしてもよい。さらに、粒子分配流体は、任意の適切な密度、特性を有し、および／または流路の下流で基板の平坦面１１８上に部分的に保持された粒子または過剰粒子を透過するのを助ける成分を含むことができる。
［００１４７］粒子分配流体の流量および流れ方向は調整および制御可能であることが望ましい。ブロックＳ１１０の好ましい実施例と同様に、流量と流れ方向は、粒子分配液が通過できる流体リザーバのいずれかの側に正味の正圧または正味の負圧を印加可能な流量制御サブシステムを含む流体供給モジュールによって制御することができる。流れの方向は、流体経路に沿って一方向であってもよいが、追加的および／または代替的に、双方向、多方向、ランダム化、および／または流体経路に対して任意の角度として、粒子分配流体内の粒子が粒子アクセス可能ウェルの開放端にさらされるようにしてもよい。一実施例では、再分配は、粒子分配流体の少なくとも１つのフローサイクルを含むことができ、ここで流れ方向は、第１の順方向と順方向と、順方向とは反対の第２の逆方向の間で交互になり、第１の順方向の流体流によって粒子飽和ウェルから排出された部分的に保持された粒子は、第２の逆方向の流体流れによってウェルアレイの方へ流し戻され、ウェルアレイの粒子アクセス可能なウェルおよび／または非占有ウェルにアクセスすることができる。再分配フローサイクル数は、粒子の集団内の粒子の少なくとも大部分がウェルアレイ内の基板の平坦面１１８より下に保持されるのに必要な任意の適切なサイクル数であり得る。好ましい応用例では、再分配により、粒子アクセス可能なウェルの少なくとも８０％が単一の粒子で満たされて、ウェルの理想状態が達成される。ただし、細胞分配流体の流量と流れ方向は、別の方法で構成してもよい。
［００１４８］ブロックＳ２１６で説明したように、ブロックＳ２１０、ブロックＳ２２０、およびブロックＳ２３０の細胞および／または粒子分配流体の流体流量および流れ方向は、ウェルアレイ内の捕捉された細胞の量および位置に応じて、方法２００の同期または非同期のステップ間に、それに応じて、および／またはリアルタイムで、変調および／または調整可能である。好ましい実施例では、光学サブシステムは一連の画像を記録して、粒子がアクセス可能なウェルの量と分布に関する情報を取得し、流体送達モジュールおよび／または流量制御サブシステムに指示を伝達して、捕捉効率を向上させるためｎ、粒子溶液中の粒子濃度、粒子分配流体の流量、粒子分配流体の方向、粒子分配流体の温度、および／または再分配の繰り返しサイクル数のうちの１以上の選択を補助する。ただし、ブロックＳ２３０の再分配のパラメータは、ユーザ入力（ブロックＳ２１０、ブロックＳ２２０、ブロックＳ２３０のいずれかの前、最中、および／または後）によって手動で決定したり、固定に設定したり（事前に決定、保存された設定に従って）、および／または他の方法で決定することができる。別の好ましい実施形態において、抽出モジュールは、イメージングサブシステムと協働するように使用され、イメージングのフィードバックに基づいて、複数の粒子を含むウェルから１つ以上の粒子を取り出し、粒子を含まない別のウェルに分配することができる。
２．４ 方法−ウェルアレイの処理
［００１４９］ブロックＳ２４０は、ウェルアレイの処理を規定するものであり、少なくとも１つのプロセス試薬をアレイで受け取ることにより、単一細胞形式および単一クラスタ形式のいずれかで１以上のプロセス試薬の細胞集団への拡散送達を促進すること、ウェルアレイで生化学プロセスを実行すること、ウェルアレイの内容を分析すること、追加的および／または代替的にウェルアレイで他の適切なプロセスのうちの以上を含むことができる。ブロックＳ２４０は、ウェルアレイから捕捉された成分（例えば、細胞および／または非細胞粒子）を取り出す必要がなく、ウェルアレイ内に捕捉された成分のシームレスで迅速な処理および分析を実現し、さらに複数のウェルアレイ（例えば、一度に２、４、６、１０アレイ）を同時に処理するのに利用することができる。好ましい実施形態では、ブロックＳ２４０の複数部分を、システム１００の構成要素と協調して自動的に実行することができ、ここで複数の試薬のシーケンス、タイミング（例えば、分配時間、流動期間）、速度、方向、および／またはプロセス試薬の量を含むプロセス試薬送達パラメータ（例えば、流体供給モジュールを使用）、ウェルアレイおよび／またはプロセス試薬の配列の温度変調のパラメータ（例えば、熱制御モジュールを使用）、および／または光学分析のパラメータ（例えば、光学サブシステムを利用）は、格納された設定、ユーザ入力、および／または適応入力、およびシステム１００の１以上のプロセッサを使用して、決定、選択、および／または調整することができる。ただし、ウェルアレイの処理は、他の適切なステップおよび／またはパラメータを含むことができ、他の適切な方法で実行することができる。
［００１５０］実施例では、１以上のプロセス試薬をウェルアレイに送達することで、標的細胞集団の捕捉細胞の透過処理、標的細胞集団の捕捉細胞の後固定、標的細胞集団の捕捉細胞のブロック、標的細胞集団の捕捉細胞の洗浄、標的細胞集団の捕捉細胞の抗体カクテルでの処理、標的細胞集団の捕捉細胞のインキュベーション、標的細胞集団の捕捉細胞の染色、標的細胞集団の捕捉細胞の溶解、標的細胞集団の捕捉細胞内の成分の単利、ウェルアレイの加熱、の１以上を実行するように機能し得る。ステップＳ２４０は、追加的または代替的に、分析のためにウェルアレイに捕捉された対象細胞を調製する任意の適切なステップを含むことができ、例えば、対象細胞へのハイブリダイゼーション緩衝液の送達、対象細胞への粒子および／または制御プローブの送達、対象細胞の脱水、および／または対象細胞の変性などである。一実施例では、ステップＳ２４０は、染色（例えば、蛍光染色または組織学的染色）を必要とする分析のために標的細胞集団の細胞を調製することができる。別の変形例では、ステップＳ２４０は、電気泳動を伴う分析のために標的細胞集団の細胞を準備することができる。さらに別の変形例では、ステップＳ２４０は、ＰＣＲなどの分子診断アッセイのために標的細胞集団の細胞を調製することができる。
［００１５１］変形例では、プロセス試薬は、ブロックＳ２１０、ブロックＳ２２０および／またはブロックＳ２３０について説明された実施例で生物学的サンプルまたは分配流体をアレイに分配するのと同様の方法で、ウェルアレイに送達され分配することができる。一例では、第１章で説明したように、流体送達モジュールのカートリッジに保存されたプロセス試薬は、カートリッジから分配され、ウェルアレイに直接かつ流体的に結合された流体リザーバ１６０を通してウェルアレイに分配され得る。ウェルアレイで様々なアッセイおよびプロセスを実行する速度を向上させるために、必要になるまで、流体送達モジュールの試薬カートリッジに複数のプロセス試薬を保存（例えば、プリロード）することができる。流体送達モジュールは、適切な量の所望の試薬を、流体入口を介してウェルアレイおよび流体リザーバ１６０に送達するように機能し、そこでは細胞への損傷を防ぎアッセイの効率（例えば、ウェル内の試薬の分布、ウェル全体の粒子の分布など）の改善のために、流体の流速がポンプシステムによって制御される。さらに、システムの上部蓋を使用して、流体リザーバ１６０全体の流体の流れをさらに制御して、流体リザーバ１６０に流体層を形成し、流体リザーバ１６０を横切ってウェルへの流体の移動を促進することができる。所望の試薬を流体リザーバに分配するために、ステップＳ２４０は、所望の試薬を含むチャンバが作動システムによって穿刺され得るように、流体送達モジュールの円筒形カートリッジを回転させることを含むことができる。次いで、プロセス試薬は、流体リザーバ１６０に流れ込み、流体制御モジュールのポンプによる圧力発生時にウェルアレイにわたって送達される。ただし、プロセス試薬をウェルアレイに分配するステップは、システム１００の他のサブコンポーネントによって、ユーザが手動で、または別の方法で実行することができる。
［００１５２］さらに、ブロックＳ２４０を熱制御モジュールと組み合わせて実行し、流体リザーバ１６０を横切る試薬の対流を制御し、ウェルアレイの温度を維持することができる（例えば、細胞の生存率を維持し、細胞内の遺伝物質物（例えば、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ）の生存率を維持し、ウェルへの試薬の拡散を助け、流体リザーバ１６０にわたる試薬の流れの速度を高めるなど）。実施例では、ブロックＳ２４０は、基板を介して、アレイで捕捉された細胞集団に熱を伝達または除去するステップを含むことができ、これは、ブロックＳ２４０で受け取ったプロセス試薬で細胞集団の制御されたインキュベーションおよび／またはサーモサイクリングを提供する。加熱は、好ましくは、ウェルアレイのセットの各ウェルで均一な加熱および／または冷却を提供するステップを含む。ただし、代替的に、加熱は、アレイ全体にわたって不均一に加熱および／または冷却を提供するステップを含むことができる（例えば、細胞集団に対する異なる加熱パラメータの影響を調べるために熱勾配を提供する）。実施例では、加熱は、基板を少なくとも１つの加熱素子と接触させるステップ、基板の環境温度を調整するステップ、および／または基板に結合または埋め込まれた加熱素子によって基板全体に熱を伝達するステップを含み得る。一例では、１以上の加熱素子をウェルアレイの下の基板の基部に結合することができ（図３１Ａ〜３１Ｃ）、これはウェルアレイを急速に加熱および／または冷却する機能を果たす。システムは、追加的および／または代替的に、基板の上蓋内に埋め込まれた１つまたは複数の加熱素子を含むことができ、これは、流体リザーバの流路を流れるプロセス試薬の温度を調整して、ウェル内部へのアクセスを向上させるように機能する（図１５Ａ、１５Ｂ、および図１６）。ただし、ウェルアレイへの熱の伝達および／または除去は、追加的または代替的に、任意の他の適切な方法で実行することができる。熱を伝達するステップに、細胞集団およびプロセス試薬とともに基板を所望温度で所望時間インキュベートするステップが含まれる変形例では、熱の伝達は、細胞集団の溶解、細胞集団の固定、細胞集団の透過化、細胞集団の染色、細胞集団の免疫化学の実行、細胞集団の細胞内核酸物質へのプローブ結合、ｉｎ−ｓｉｔｕハイブリダイゼーションアッセイ（例えば、蛍光ｉｎ−ｓｉｔｕハイブリダイゼーションアッセイ、ＦＩＳＨ）の実行、細胞集団の核酸物質に対するポリメラーゼ連鎖反応の実行、細胞集団の培養、および他の適切な用途のうちの１以上を促進することができる。ただし、プロセス試薬を受け取り、および／またはプロセス試薬の流れ（体積、速度、温度など）を調整するステップは、追加的または代替的に、他の適切な用途に適した他の方法で実行することができる。
［００１５３］ブロックＳ２４０の一実施例では、プロセス試薬は、標的細胞の集団から少なくとも１つの生体分子、例えば核酸物質（例えば、ｍＲＮＡ）および／またはタンパク質を放出する溶解試薬であり得る。捕捉された細胞の溶解は、溶解試薬を１５℃未満の温度でウェルアレイに添加し、続いてウェルアレイを約２５℃で、および／または５０℃などの少し高い温度でインキュベートして反応を完了させることにより達成される。いくつかの変形例では、細胞を溶解させるステップは、溶解反応を行う前に油の層（またはウェルキャビティに含有された溶液と混ざらない他の溶液）をウェルの頂部に分配して、放出された成分がウェルアレイ内の隣接するウェルに移動するのを防ぐことが含まれる。別の変形例では、細胞の溶解は、溶解反応を行う前にウェルの上部に空気層を分配して、放出された成分がウェルアレイ内の隣接するウェルに移動するのを防ぐことを含み得る。
［００１５４］理想的な状態でウェルアレイ内に捕捉された細胞粒子ペアを利用する好ましい応用例では、溶解反応後、ウェルアレイの温度を再び１５℃未満（ｍＲＮＡを保存するためには約５℃）に下げることができ、溶解した標的細胞のそれぞれから放出された生体分子は、対応する粒子（例えば、細胞粒子ペアに関して、標的細胞と同じウェル内に共局在化する粒子）のプローブにハイブリダイズし、捕捉された各細胞に関する遺伝子複合体７０（プローブのセットのヌクレオチド配列とハイブリダイズした細胞からのｍＲＮＡ）のセットを形成する。好ましくは、図２３に示すように、遺伝子複合体７０のセットの各遺伝子複合体は、少なくとも１のプローブと、標的細胞に由来する生体分子（例えば、ｍＲＮＡ）を含むことができ、ここで遺伝子複合体７０の単一のセット（例えば、すべて同じ細胞に由来する生体分子に関連付けられている）は、ウェルアレイのそれぞれの個々のウェル内に含まれる。遺伝子複合体７０のセットの生成は、ブロックＳ２２０でさらに説明されているように、粒子の集団の各粒子がプローブ３６のセットを含み、各プローブがユニット識別子（例えば各粒子の一意のヌクレオチド配列）および生体分子識別子（例えば、各プローブの一意のヌクレオチド配列、ＵＭＩ）を含む場合に達成される。細胞溶解時に、単一の標的細胞から放出された複数の分子は、個々の生体分子を粒子のプローブ３６のセットのそれぞれのプローブに結合および／またはハイブリダイズし、それによって下流の処理中に簡単に識別できるユニット識別子と生体分子識別子（ＲＮＡ、ＤＮＡシーケンスなど）を含む一意のヌクレオチド配列で各生体分子をラベリングすることにより、細胞−粒子ペアの細胞に由来するものとして識別することができる（例えば、相補的ヌクレオチドペアリング）。したがって、ヌクレオチド配列に同じユニット識別子を持つ遺伝子複合体は、細胞−粒子ペアの同じ標的細胞に由来すると考えられ、同じ細胞からの複数の分子の個々の分析を並行して行うことができる。個々のプローブへのｍＲＮＡの非特異的ラベリングを減らすために、緩衝液洗浄速度の最適化、個々のウェル内のすべてのｍＲＮＡ転写物を捕捉するための最適な結合時間の設定、溶解およびハイブリダイズステップ中のオンチップ冷却、およびプローブ密度の増加などの様々なステップを用いることができる。追加的および／または代替的に、特定の分子および／または粒子を溶解後洗浄溶液に加えて、細胞から出た未結合の細胞物質を捕捉し、それにより未結合の細胞物質が隣接ウェルに拡散するのを防ぐことができる。しかしながら、遺伝子複合体７０のセットは、別の方法で構成することができ、任意の生体分子、細胞、粒子、および／またはウェルアレイのウェルに関連する任意の適切なサブコンポーネントを含むことができる。
［００１５５］方法２００の代替実施形態では、図２４、図２５、および図２６に示されるように、プローブ３６のセットは、追加的および／または代替的に、個々のウェルキャビティの内面１３０に固定されてもよく、個々のウェル内溶液中に浮遊してもよく、および／または任意の適切な方法で構成することができる。一実施例では、標的細胞から放出された生体分子は、単一粒子とウェル内の単一細胞の共局在化なしに、プローブ３６のセットに結合してもよい。具体的には、ブロックＳ２１０で説明したように細胞を捕捉する前に、ブロックＳ２２０およびブロックＳ２３０で説明したのと同様の方法で、粒子を単一粒子形式でウェルに分配することができ、ここで各個別の粒子は、共通のユニット識別子を含むプローブ３６のセットが含まれる。粒子の集団を受け取って各ウェルに細胞粒子ペアを生成するのではなく、粒子の集団を受け取ると、各ウェル内に単一の粒子が捕捉される出力条件が得られる。方法２００’のこの実施形態の好ましい応用例において、単一細胞捕捉の前に各ウェル内に単一粒子を捕捉すると、各個々のウェルにプローブのセットの送達が可能となる（図２６）。単一粒子の捕捉時に、プローブ３６のセットを関連する粒子から分離し、個々のウェルキャビティ内に放出することができ、それにより各ウェルの内容物がその中の粒子のセットのユニット識別子によって識別可能になる。放出されたプローブ３６の各セットは、好ましくは、ウェルキャビティ１２８の内面１３０に固定され（例えば、生化学結合、抗体抗原反応を介して）、各ウェルをユニット識別子で効果的にラベリングし、ウェルから粒子を取り除けるようにして、標的細胞の集団がウェルアレイにアクセスできるようにする。プローブのセットを個々のウェルキャビティに加えた後、ブロックＳ２１０で説明したように、標的細胞の集団をウェルに分配することができ、これにより、標的細胞を単一細胞形式で捕捉することができる（例えば、各ウェルに１つの細胞）（図２５）。単一細胞の捕捉時に、上記のように細胞溶解を実施することができ、ここで放出された生体分子を含む遺伝子複合体７０のセットおよびプローブ３６のセットが各ウェル内に含まれ、粒子ではなくむしろウェルキャビティ１２８の内面１３０に結合される。このように、ユニット識別子で各ウェルに直接ラベリングすると、標的細胞の集団から遺伝子複合体のセットを生成する速度と効率を高めることができる。ただし、遺伝子複合体、細胞、生体分子、および／または非細胞粒子を含むウェルアレイの内容物は、他の適切な方法で処理することができる。
［００１５６］ブロックＳ２４０の２番目の実施例では、プロセス試薬をウェルアレイに追加して、標的細胞の集団の遺伝物質（例えば、遺伝子複合体）のｃＤＮＡ合成を実行し、それによって下流でさらに分析（例えば、遺伝子配列決定）可能な個々の細胞にそれぞれ関連する遺伝子産物８０を生成する。逆転写を介したｍＲＮＡを含む遺伝子複合体からのｃＤＮＡの合成は、一連のプロセス試薬を所定のシーケンスでウェルアレイに追加することによって実行でき、これはシステム１００の１以上のサブコンポーネントによって自動化されることが好ましい。好ましい実施例では、流体送達モジュールのプロセッサによって実行されるプログラムを使用して、一連のプロセス試薬を設定された時間、容積、速度、および温度でウェルアレイに追加することができる。この方法は、ブロックＳ２４２でサンプル調製プロトコルに関する情報を受信するステップをさらに含むことができる。ブロックＳ２４２は、好ましくはブロックＳ２４０の前に実行され、これは自動化システムを準備して情報に基づいて生物学的サンプルを処理および分析することができる。例えば、ブロックＳ２４２は、プロセス試薬をウェルアレイに送達するように構成された流体リザーバ１６０を備えた、流体送達モジュールの試薬チャンバのセットの試薬チャンバの自動整列を実施することができる。具体例では、隔離されたプロセス試薬を含有する円筒形カートリッジの回転を制御する整列コマンドのシーケンスを生成し、それにより、サンプル調製プロトコルに従って生物学的サンプルの処理を自動化することができる。あるいは、ブロックＳ２４２は、方法２００の任意の適切なステップの前または後に実行することができ、方法２００および／またはシステム１００の他のステップで収集された情報と連携させて使用することができる。例えば、ブロックＳ２４２は、ブロックＳ２１６で前述したように、ユーザがサンプル調製プロトコルに関する情報を入力できるようにしてもよいし、および／またはイメージングサブシステム１９４を使用してサンプル調製プロトコルに関する情報を自動的に受信してもよい。しかしながら、ブロックＳ２４２は、サンプル調製プロトコルに関する情報を受信する他の適切な方法を含むことができる。ただし、一連のプロセス試薬は、手動で、または他の適切な生化学的プロセスを実行する他の適切な方法によって、ウェルアレイに追加することができる。
２．５ 方法−ウェルアレイからの遺伝物質の取り出し
［００１５７］ブロックＳ２５０は、ウェルアレイから遺伝物質を取り出すステップを記載しており、これは下流の処理のためにウェルから遺伝物質を収集するように機能する。実施例では、ブロックＳ２４０で生成された遺伝子複合体および遺伝子産物の一部を含む遺伝物質は、標的細胞の識別情報を含む任意の生物学的物質を含み得る（例えば、合成タンパク質、天然タンパク質、核酸、バイオマーカー、生化学反応の副産物など）。ウェルアレイから取り出す前に、ウェルキャビティ１２８内の溶液中に浮遊したり、ウェルキャビティ１２８の内面１３０の領域、またはウェル内の適切な箇所、あるいはウェル内の他の適切なサブコンポーネントに関連した箇所に結合している粒子の集団に、遺伝物質を結合させることができる。第１の実施例では、遺伝物質は、溶解細胞からの生の細胞内遺伝物質（例えば、タンパク質、ｍＲＮＡ、ＤＮＡ、タンパク質）を含む。第２の実施例では、遺伝物質は、粒子から分離された、または粒子に結合されたプローブ３６のセットを含む。第３の実施例では、遺伝物質は、遺伝子産物８０（例えば、ブロックＳ２４０の実施例における遺伝子複合体の逆転写によって形成されるｃＤＮＡ配列）を含む。第４の実施例では、遺伝物質は、ポリメラーゼ連鎖反応（例えば、ｃＤＮＡライブラリ）により増幅されたブロックＳ２４０からの遺伝子産物８０を含む。ただし、遺伝物質は、ウェルアレイから取り出して、その後分析または処理することができる適切な生物学的物質を含むことができる。ブロックＳ２５０は、好ましくはブロックＳ２４０が完了した後に実行されるが、方法２００の他のステップに関して他の適切な時間に実行することができる。別の実施形態では、システム１００は、ブロックＳ２４０およびＳ２５０の複数のサイクルを実行して類似の遺伝子産物の生成および溶出を繰り返し、それにより、複数のライブラリの調製および／または単一細胞由来の遺伝子複合体の同じセットからの配列決定を行うことが可能になる。
［００１５８］遺伝物質が粒子の集団に結合したままである第１のバリエーションでは、遺伝物質の取り出しは、ウェルアレイから粒子の集団を取り出すことにより達成することができる。一実施例では、ウェルアレイ内の抽出流体の流体体積を増やすことにより、粒子をウェルアレイから洗い流すことができる（例えば、流体を手動でピペッティングしたり、ウェルアレイに流体を流すなど）。一例では、抽出流体（例えば、５〜１０ｍＬ ＰＢＳ）を、基板の上側広範面に垂直な方向にウェルアレイに分配することができるが、追加的および／または代替的に、基板の上側広範面に平行な方向で流体リザーバを通る流体経路に沿って抽出流体を流し、抽出流体が拡散によってウェルの開放面を介してウェルアレイに入れるようになることによって、アレイに分配することができる。追加的および／または代替的に、抽出流体をウェルアレイに分配するステップは、抽出流体に力を加え、それによって抽出流体の速度を変更し、ウェル内の粒子を再配置するステップを含むことができる（例えば、流体リザーバ内に上下にピペッティングすることや、正味の正圧または正味の負圧を流体に加えるなど）。一実施例では、十分な量の抽出流体を特定の流体速度（または少なくとも第１および第２の流体速度のサイクル）で添加すると、ウェルの開放面を介してウェルキャビティ１２８内に以前に沈んでいた粒子を出すことができ、粒子を下流での処理のために収集することができる（例えば、出口を通して収集容器に流し込んだり、リザーバから直接回収するなど）。第２の実施例では、基板を反転させ（例えば、基板の中心点を通る横軸を中心に基板を１８０°回転させる）、最大６０分間（例えば、約１０、２０、３０、４０、５０、６０分）基板をインキュベートすることにより、ウェルアレイから粒子を取り出すことができる。（前章で説明したように）流体リザーバが第１のプレート１５０で密閉されている実施例では、粒子は重力によってウェルの開放面からウェルアレイを出て流体リザーバに移動し得るが、粒子はウェルアレイから他の適切な収集容器へと出されてもよい。第３の実施例では、抽出モジュールを使用して、ウェルアレイから粒子を直接取り出すことができる。追加的および／または代替的に、粒子の抽出速度は、基板の遠心分離、基板の物理的振動（例えば、震盪、振動）、ウェルアレイへの流体体積の増加および／または減少、粒子に力を加える（例えば、磁気、電気、物理）、または他の適切な取り出し方法を含む追加のステップによって加速させることができる。
［００１５９］遺伝物質が粒子の集団に結合したままである第２のバリエーションでは、遺伝物質８０をウェル内の粒子から分離させ、流体をウェルからピペッティングして粒子をウェル内に残すことにより、遺伝物質を取り出すことができる。一実施例では、遺伝子複合体は、光切断可能なリンカーなどの可逆的生化学結合によって粒子に結合されており、ここでリンカーは粒子に可逆的に付着可能であり、粒子を特定の波長の光（例えば、可視光スペクトル、紫外線スペクトル）にさらすことで除去することができる。しかしながら、様々な化学物質を使用して、プローブを粒子、ウェル、または下流の分析に適した他の表面に制御可能に取り外す（または取り付ける）ことができる。具体例では、第１章で説明した光学サブシステムが発する均一な光によって、基板の第１の広範面の近くの基板の上から、ウェルの開放面を通してウェルキャビティ内へと、ウェルアレイを均一に照明することができる。この例では、３００〜４００ｎｍ（例えば３６５ｎｍ）の範囲の紫外光を最大３０分間（例えば約５、１０、２０、３０分間）ウェルアレイに照射することができる。好ましい実施例では、熱制御モジュールが、紫外線が通過する第１の広範面に直接対向する第２の広範面（下面）にて基板の下に配置された反射面を有し、それによって入射光を反射させてウェルに戻してビーズの全体を照らし、粒子の集団からの遺伝子複合体の均一かつ同時の光切断を実現することができる。ただし、ウェル内に含まれる粒子の集団への均一な照射は、他の適切な方法によって達成することができ、これには露光中に基板を静かに振ったり回転させたりしてウェル内のビーズを回転させたり、液体リザーバ１６０を横切る流体流を圧力システムと組み合わせて利用し、ウェル内のビーズの回転を操作することが含まれる。さらに、任意の波長または光の波長の組み合わせを使用し、粒子の集団を照らして光に敏感な化学反応を実行してもよい。さらに、入射光ビームの強度は、任意の適切な強度にすることができる。ウェル内の粒子の集団から遺伝子産物８０を分離するために光学照明が使用される本実施例では、遺伝子産物の品質を維持するために、熱制御モジュールを使用してウェルアレイの温度を制御し、ウェルキャビティによる溶液の加熱の影響を最小限に抑えることができる。さらに、例えば、回収の速度および／または効率を高める試薬、または回収中の遺伝物質の生存率を向上させる薬剤などの、追加の試薬をウェルアレイに添加して、効率を高めたり、光切断化学反応の実効性を支援したりすることができる。
［００１６０］ブロックＳ２５０の別の変形例では、遺伝物質を粒子から分離するステップは、遺伝物質をウェルから取り出すのではなく、裸の粒子をウェルから取り出し、したがって遺伝物質をさらなる処理のために個々のウェルに残すステップをさらに含むことができる。この変形例では、遺伝物質は、ウェルキャビティ１２８内に自由に浮遊したままとしてもよいし、またはウェルキャビティ１２８内に固定化してもよい。粒子は、前述の実施例の方法（例えば、磁石）によって除去し、遺伝物質をウェルキャビティ１２８の内面１３０に結合したままにすることができる。第１章で説明したように、ウェルキャビティ１２８の内面１３０は、小さな分子を物理的、エネルギー的、または化学的に捕捉できる表面の特徴を有し、および／または小さな分子が高い親和性を有する（粒子より高い結合親和性を有する）表面特徴を有することができる。具体例では、遺伝物質は、各ウェルの壁内の一連の隆起または突起によって物理的に閉じ込められる。別の具体例では、遺伝物質はコンジュゲートプローブから組み込まれた機能的リンカー（例えば、ビオチンタンパク質）を含み、ウェルの内面１３０に前にコーティングされたストレプトアビジンと結合するように構成されてもよい。別の具体例では、遺伝物質は、ウェルの表面を覆う親和性ミクロスフェア／薬剤に結合してもよい。ただし、遺伝物質は様々な適切な方法で処理することができる。
［００１６１］捕捉された標的細胞および／または捕捉された標的細胞に由来する遺伝物質の下流での分析は、ウェルのセットの内容物（例えば、細胞、細胞内成分）の採取、ウェルのセットで捕捉された細胞の培養、細胞集団によって発現されるバイオマーカーの検出（例えば、蛍光検出を使用）、定量分析（例えば、ｍＲＮＡ発現の定量分析）の実行、バイオマーカー発現に基づいた細胞表現型（例、癌細胞表現型）の特性評価、細胞表現型の特性評価に基づいた推奨療法の提供、細胞集団の捕捉細胞でフローサイトメトリを実行、および他の適切な分析の実行、のうちの１以上を含み得る。遺伝子材料、特にブロックＳ２４０で生成されたｃＤＮＡがＲＮＡ配列決定に使用される好ましい応用例では、遺伝子材料をさらに処理して、エキソヌクレアーゼ処理、前増幅ＰＣＲ、ＳＰＲＩクリーンアップ、およびタグ付けを実行することにより、特定のフラグメントサイズと品質の遺伝子材料を含むｃＤＮＡライブラリを生成することができる。さらに、システム１００を使用して、および方法２００の実施例の実装を通じて収集されたデータを使用して、ジェノタイピングライブラリ、ＣＲＩＳＰＲプール、免疫プロファイリング、経路分析、薬物スクリーニング、および系統追跡を含む単一細胞ターゲットパネルを生成および利用することができる（図３４）。しかしながら、方法２００の変形例は、追加的または代替的に、単一細胞形式および単一クラスタ形式の少なくとも一方における細胞集団の受け取り、処理、および／または分析を促進する他の適切なステップまたはブロックを含むことができる。
［００１６２］好ましい実施形態およびその変形例のシステム１００および方法２００は、コンピュータ可読命令を格納するコンピュータ可読媒体を受け取るように構成された機械として少なくとも部分的に実施および／または実装することができる。命令は、好ましくはシステムおよびプロセッサおよび／またはコントローラの１つまたは複数の部分と統合されることが好ましいコンピュータ実行可能コンポーネントによって実行されることが好ましい。コンピュータ可読媒体は、ＲＡＭ、ＲＯＭ、フラッシュメモリ、ＥＥＰＲＯＭ、光学デバイス（ＣＤまたはＤＶＤ）、ハードドライブ、フロッピードライブ、または任意の適切なデバイスなど、任意の適切なコンピュータ可読媒体に保存することができる。コンピュータ実行可能コンポーネントは、好ましくは汎用または特定用途向けプロセッサであるが、任意の適切な専用ハードウェアまたはハードウェア／ファームウェアを組み合わせたデバイスが、代替的にまたは追加的に命令を実行してもよい。
［００１６３］図面は、好ましい実施形態、構成例、およびそれらの変形例に係るシステム、方法、およびコンピュータプログラム製品の可能な実装のアーキテクチャ、機能、および動作を示している。これに関して、フローチャートまたはブロック図の各ブロックは、指定された論理機能を実装するための１以上の実行可能な命令を含むモジュール、セグメント、またはコードの一部を表してもよい。また、いくつかの代替実施例では、ブロックに記載されている機能は、図に記載されている順序とは異なる順序で発生する可能性があることに留意されたい。例えば、実際には、関連する機能に応じて、連続して示された２つのブロックを実質的に同時に実行してもよいし、逆の順序で実行してもよい。また、ブロック図および／またはフローチャート図の各ブロック、およびブロック図および／またはフローチャート図のブロックの組み合わせは、指定された機能または工程を実行する専用ハードウェアベースシステム、または特殊用途のハードウェアとコンピュータ命令の組み合わせによって実装できることに留意されたい。
［００１６４］当業者が上述の詳細な説明および図面および特許請求の範囲から認識するように、添付の特許請求の範囲で定義される本発明の範囲から逸脱することなく、本発明の好ましい実施形態に修正および変更を加えることができる。

Claims (40)

  1. 標的細胞の集団を単離および分析する方法であって：
    ・標的細胞の集団を、基板の表面に画定されたウェルアレイに受容するステップであって、前記ウェルアレイの各ウェルは前記表面に対して垂直に、前記表面の下の基板内に延在し、非占有状態である、ステップと；
    ・少なくとも第１ウェルおよび第２ウェルを含む前記ウェルアレイのウェルの第１サブセットについて粒子アクセス可能状態を得るステップであって、ここで標的細胞の集団の第１の標的細胞は前記第１ウェルの開放端を通して前記表面の下に受容され、標的細胞の集団の第２の標的細胞は前記第２ウェルの開放端を通して前記表面の下に受容されている、ステップと；
    ・粒子の集団を前記ウェルアレイに分配するステップであって、ここで前記粒子の集団の各粒子は、標的細胞の集団に関連する生体分子に対する結合親和性を有するプローブに結合される、ステップと；
    ・前記粒子の集団をウェルアレイに分配することにより、
    ｏ粒子アクセス可能状態のウェルの第１サブセットの少なくとも第１ウェルについて理想状態を得るステップであって、当該理想状態を得るステップは、前記粒子の集団の第１の粒子を前記第１ウェル内の前記表面の下に受容し、それにより、前記第１の粒子を前記第１ウェル内の第１の標的細胞と共局在化させることを含む、ステップと、
    ｏ前記粒子アクセス可能状態のウェルの第１サブセットの前記第２ウェルについて粒子飽和状態を得るステップであって、当該粒子飽和状態を得るステップは、前記粒子の集団の少なくとも第２と第３の粒子を前記第２ウェル内に受容することを含み、ここで前記第２の粒子は前記表面の下に受容され、前記第３の粒子は表面を横切っている、ステップと；
    ・少なくとも前記第３の粒子を含む部分的に保持された粒子のサブセットを前記ウェルアレイ全体に再分配するステップであって、前記部分的に保持された粒子のサブセット内の部分的に保持された粒子の各々が前記表面を横切り、部分的に保持された粒子のサブセットを再分配するステップは：
    ｏ前記表面に沿って、前記表面に平行な方向に前記ウェルアレイにまたがる流体リザーバを通る流体経路に沿って粒子分配流体を流すステップであって、ここで前記粒子分配流体は、少なくとも前記表面を横切っている第３の粒子を排出し、それによって前記第２ウェルを前記粒子飽和状態から理想的状態へと遷移させる、ステップと、
    ・少なくとも前記第１ウェルおよび前記第２ウェルを含む前記ウェルアレイの理想的なウェルのセットを処理するステップであって、前記理想的なウェルのセットの各ウェルは前記理想状態にあり、前記理想状態の各ウェルは標的細胞の集団のうちの正確に１つの標的細胞と、前記粒子の集団のうちの正確に１つの粒子とを含む、ステップとを含むことを特徴とする方法。
  2. 標的細胞の集団を単離および分析する方法であって：
    ・標的細胞の集団を、基板の表面に画定されたウェルアレイに受容するステップであって、前記ウェルアレイの各ウェルは前記表面に対して垂直に、前記表面の下の基板内に延在し、非占有状態である、ステップと；
    ・前記ウェルアレイのウェルの第１サブセットについて粒子アクセス可能状態を得るステップであって、ここで前記ウェルの第１サブセットの第１のウェルは、当該第１のウェルの開放端を介して前記表面の下に標的細胞の集団の第１の標的細胞を受容している、ステップと；
    ・前記標的細胞の集団をウェルアレイに受容するステップの後に、粒子の集団を前記ウェルアレイに分配するステップであって、前記粒子の集団の各粒子は、前記標的細胞の集団に関連する生体分子に対する結合親和性を有するプローブに結合される、ステップと；
    ・前記粒子の集団を前記ウェルアレイに分配することにより、
    ｏ前記ウェルの第１サブセットの少なくとも前記第１のウェルについて粒子飽和状態を得るステップであって、この粒子飽和状態を得ることは、前記第１のウェル内に、前記表面の下に第１の粒子を受容しており、部分的に保持された粒子は前記表面を横切ることを含む、ステップと；
    ・部分的に保持された粒子のサブセットを前記ウェルアレイ全体に再分配するステップであって、前記部分的に保持された粒子のサブセット内の部分的に保持された粒子はそれぞれ前記表面を横切っており、前記部分的に保持された粒子のサブセットを再分配するステップは、
    ｏ前記表面に沿って、前記表面に平行な方向に、前記ウェルアレイにまたがる流体リザーバを通る流体経路に沿って粒子分配流体を流すことであって、前記粒子分配流体が、前記第１のウェルから前記表面を横切る部分的に保持された粒子を出し、それにより前記第１のウェルを粒子飽和状態から理想状態へと遷移させることを含む、ステップと；
    ・少なくとも前記第１のウェルを含む前記ウェルアレイの理想的なウェルのセットを処理するステップであって、前記理想的なウェルのセットの各ウェルは前記理想状態にあり、標的細胞の集団のうちの正確に１つの標的細胞と、前記粒子の集団のうちの正確に１つの粒子とを含む、ステップとを含むことを特徴とする方法。
  3. 請求項２に記載の方法において、さらに：
    ・前記部分的に保持された粒子が前記第１のウェルから出たときに、前記ウェルアレイを横切って流体経路の下流に前記部分的に保持された粒子を移動させるステップと；
    ・前記部分的に保持された粒子を下流のウェルに受容するステップであって、ここで、前記下流のウェルは粒子アクセス可能状態にあり、前記部分的に保持された粒子は前記下流のウェルに、前記表面の下に受け入れられ、それにより前記下流のウェルを粒子アクセス可能状態から理想状態へと遷移させる、ステップとを含むことを特徴とする方法。
  4. 請求項２に記載の方法において、さらに、粒子の集団を前記ウェルアレイに分配する際に、
    ・前記ウェルの第１サブセットのうちの少なくとも第２のウェルの理想状態を得るステップであって、前記第２のウェル内に、前記表面の下に、前記粒子の集団のうちの正確に１つの粒子を受容することを含む、ステップを含むことを特徴とする方法。
  5. 請求項２に記載の方法において、前記標的細胞の集団をウェルアレイに受容するステップは、前記流体経路に沿って細胞分配流体を流すステップをさらに含み、前記細胞分配流体は、前記ウェルアレイにわたって部分的に保持された標的細胞のサブセットを放出させるものであり、ここで前記部分的に保持された標的細胞のサブセットの部分的に保持された標的細胞はそれぞれ、前記表面を横切るものである、方法。
  6. 請求項５に記載の方法において、さらに：
    ・前記標的細胞の集団を前記ウェルアレイに受容したときに、
    ｏ前記ウェルアレイのウェルの第２のサブセットについて細胞飽和状態を得るステップをさらに含み、ここで、前記細胞飽和状態を得ることは、前記ウェルの第２サブセットの少なくとも第１の細胞飽和ウェルに、１つの標的細胞を前記表面の下に受容し、部分的に保持された標的細胞を前記表面を横切る状態で受容することを含む、ステップと、
    ｏ前記流体経路に沿って細胞分配流体を流すことにより、少なくとも前記第１の細胞飽和ウェルを前記細胞飽和状態から前記粒子アクセス可能状態に移行させるステップであって、前記細胞分配流体が、前記第１の細胞飽和ウェルから前記部分的に保持された標的細胞を出すステップとを含む、方法。
  7. 請求項６に記載の方法において、さらに：
    ・前記部分的に保持された標的細胞が前記第１の細胞飽和ウェルから出たときに、前記部分的に保持された標的細胞を、前記ウェルアレイを横切って流体経路の下流に移動させるステップと、
    ・前記部分的に保持された標的細胞を、前記第１の細胞飽和ウェルの下流の非占有ウェルに受容するステップであって、ここで、前記部分的に保持された細胞は、前記非占有ウェルの前記表面の下に収容され、それにより、前記非占有ウェルを非占有状態から粒子アクセス可能状態に移行させるステップとを含む方法。
  8. 請求項２に記載の方法において、前記流体経路に沿って前記粒子分配流体を流すステップは、前記流体リザーバに結合されたフロー制御モジュールにより、前記粒子分配流体の流れ方向を制御するステップであって、前記流れ方向は、第１の方向と、当該第１の方向と反対の第２の方向との間で交互に切り替わる、ステップを含む方法。
  9. 請求項２に記載の方法において、前記流体経路に沿って前記粒子分配流体を流すステップは、前記流体リザーバに結合されたフロー制御モジュールにより、前記粒子分配流体の流量を制御するステップであって、前記流量は０．５ｍＬ／分より大きい、ステップを含む方法。
  10. 請求項２に記載の方法において、前記第１の生体分子がリボ核酸であり、前記粒子の集団の各粒子のプローブが、核酸物質に結合するように構成されたヌクレオチド配列を含む、方法。
  11. 請求項２に記載の方法において、前記理想的なウェルのセットを処理するステップは：
    ・前記理想的なウェルのセットの少なくとも第１のウェル内で、前記第１の標的細胞から生体分子を放出するステップであって、
    ｏ前記流体経路に沿って、前記ウェルアレイへとプロセス試薬を流すことを含み、ここで、前記ウェルアレイの温度は、前記基板に結合された熱制御モジュールにより１５℃未満に維持されている、ステップと；
    ・前記第１の標的細胞から第１の生体分子を放出したら、前記第１の生体分子を前記第１の粒子の第１プローブに結合して、前記第１の粒子に結合した第１の遺伝子複合体を生成するステップと、を含む方法。
  12. 請求項１１に記載の方法において、
    ・前記理想的なウェルのセットの第１のウェル内で、前記第１の遺伝子複合体に対して生化学プロセスを実行するステップをさらに含む方法。
  13. 請求項１２に記載の方法において、前記生化学プロセスを実行するステップは、前記理想的なウェルのセットの少なくとも第１のウェル内で逆転写を行い、それにより、前記第１のウェル内で、前記第１の遺伝子複合体に関連する第１のヌクレオチド配列を生成することを含む方法。
  14. 請求項１１に記載の方法において、前記理想的なウェルのセットを処理するステップが、前記理想的なウェルのセットの第１のウェルから前記第１の遺伝子複合体の少なくとも一部を取り出すことをさらに含む方法。
  15. 請求項１４記載の方法において、前記粒子の集団の各粒子のプローブが、光開裂可能なリンカーによって前記粒子の集団の粒子に結合されており、前記理想的なウェルのセットの第１のウェルから前記第１の遺伝子複合体の少なくとも一部を取り出すステップは、少なくとも１つの波長の光で前記ウェルアレイを照射して、前記第１の粒子から前記第１の遺伝子複合体の一部を放出させることを含む、方法。
  16. 請求項１５に記載の方法において、前記光の波長が３００〜４００ｎｍである、方法。
  17. 請求項１１に記載の方法において、前記第１のプローブは、前記第１のプローブの第１の一意の識別子を含み、前記第１の遺伝子複合体を生成するステップは、前記第１の一意の識別子を前記第１の標的細胞に関連付けることを特徴とする方法。
  18. 請求項２に記載の方法において、前記ウェルアレイの各ウェルが前記理想状態を得るように構成され、各ウェルの長さは２０〜７５マイクロメートルであり、各ウェルの幅は２０〜３０マイクロメートルである、方法。
  19. 請求項２に記載の方法において、前記ウェルアレイの各ウェルが前記基板内にプリズム状容積を画定しており、前記ウェルは前記基板の表面に広がる六角形の最密構成で配置されていることを特徴とする方法。
  20. 請求項２に記載の方法において、前記ウェルアレイ内の各ウェルの開放端が六角形を画定し、各ウェルの開放端の水平断面が前記表面と整列されている、方法。
  21. 単一細胞形式で標的細胞の集団を分析する方法において：
    ・基板の表面に画定されたウェルアレイにわたって粒子の集団を分配するステップであって、前記ウェルアレイの第１のウェルは、第１の内面と、前記表面に垂直に、前記表面の下に、前記表面の中に延在する第１のウェルキャビティとを備え、前記粒子の集団の各粒子は、前記第１のウェルキャビティの第１の内面に対する第１の結合親和性を有する第１の領域と、前記標的細胞の集団に関連する生体分子に対する第２の結合親和性を有する第２の領域とを有するプローブに取り外し可能に結合される、ステップと；
    ・少なくとも前記第１のウェルに、前記表面の下に、前記粒子の集団の第１の粒子を、前記第１のウェルの開放端を通して受け取ることにより、前記粒子の集団をウェルアレイに捕捉するステップと；
    ・前記ウェルアレイの第１のウェル内に、前記第１の粒子から第１のプローブを放出するステップと；
    ・前記第１のプローブを前記第１の粒子から放出したら、前記第１のプローブの第１の領域を、前記第１のウェルの第１の内面に結合させるステップと；
    ・前記第１のプローブを第１のウェルに結合させたら、前記第１のウェルから第１の粒子を取り出すステップと；
    ・少なくとも前記第１のウェルに、前記表面の下に、前記第１のウェルの開放端を通して標的細胞の集団の第１の標的細胞を受け取ることにより、前記標的細胞の集団をウェルアレイに捕獲するステップと；
    ・前記ウェルアレイの第１のウェル内に、前記第１の標的細胞から第１の生体分子を放出するステップであって、
    ｏ前記表面に沿って前記ウェルアレイにまたがる流体リザーバを通る流体経路に沿って、前記表面に平行な方向に、プロセス試薬を流すことを含むステップと；
    ・前記第１の生体分子と、前記第１のウェルの第１の内面に結合された第１のプローブとを含む第１の遺伝子複合体を生成するステップと、を含むことを特徴とする方法。
  22. 請求項２１に記載の方法において、前記粒子の集団をウェルアレイに捕捉するステップは、前記流体経路に沿って粒子分配流体を流すことをさらに含み、前記粒子分配流体が、前記ウェルアレイのうちの粒子飽和ウェルのサブセットから、部分的に保持された粒子のサブセットを出し、前記部分的に保持された粒子のサブセット内の第１の部分的に保持された粒子は、第１の粒子飽和ウェルの開放端を介して前記表面を横切ることを特徴とする方法。
  23. 請求項２２に記載の方法において、さらに：
    ・前記第１の部分的に保持された粒子が前記第１の粒子飽和ウェルから出たら、前記第１の部分的に保持された粒子を前記ウェルアレイにわたって前記流体経路の下流に移動させるステップと；
    ・前記第１の部分的に保持された粒子を、前記第１の粒子飽和ウェルの下流の非占有ウェルに受容するステップであって、前記第１の部分的に保持された粒子は、前記非占有ウェルの表面の下へと下降する、ステップとを含む方法。
  24. 請求項２２に記載の方法において、前記粒子分配流体を流すステップは、前記流体リザーバに結合されたフロー制御モジュールで、前記粒子分配流体の流量を制御することを含み、当該流量は０．５ｍＬ／分より大きいことを特徴とする方法。
  25. 請求項２２に記載の方法において、前記粒子分配流体を流すステップは、前記流体リザーバに結合されたフロー制御モジュールで、前記粒子分配流体の流れ方向を制御することを含み、この流れ方向は、第１の方向と、当該第１の方向と反対の第２の方向との間で交互に切り替わることを特徴とする方法。
  26. 請求項２１記載の方法において、前記標的細胞の集団をウェルアレイに捕捉するステップは、前記流体経路に沿って細胞分布流体を流すステップをさらに含み、ここでは前記細胞分布流体が、前記ウェルアレイの細胞飽和ウェルのサブセットから、部分的に保持された標的細胞のサブセットを出し、第１の部分的に保持された標的細胞は、第１の細胞飽和ウェルの開放端を通って前記表面を横切ることを特徴とする方法。
  27. 請求項２６に記載の方法において、さらに：
    ・前記第１の細胞飽和ウェルから前記第１の部分的に保持された標的細胞を出したときに、前記ウェルアレイを横切る流体経路の下流に前記第１の部分的に保持された標的細胞を移動させるステップと、
    ・前記第１の部分的に保持された標的細胞を、前記第１の細胞飽和ウェルの下流の非占有ウェルに受容するステップとを含み、前記第１の部分的に保持された細胞は、非占有ウェルの前記表面の下に下降することを特徴とする方法。
  28. 請求項２１に記載の方法において、前記粒子の集団の各粒子のプローブが、光開裂可能なリンカーによって、前記粒子の集団の１の粒子に脱着可能に連結されており、前記第１の粒子から少なくとも前記第１のプローブを放出するステップは、少なくとも１つの波長の光で前記ウェルアレイを照明して、前記第１の粒子から前記第１プローブを放出することを特徴とする方法。
  29. 請求項２８に記載の方法において、前記光の波長は３００〜４００ｎｍであることを特徴とする方法。
  30. 請求項２１に記載の方法において、前記第１の粒子の前記第１のプローブは、可逆的化学結合により前記第１の粒子に結合されることを特徴とする方法。
  31. 請求項２１記載の方法において、前記第１の生体分子がリボ核酸であり、前記第の粒子の第１のプローブが核酸物質に結合するように構成されたヌクレオチド配列を含むことを特徴とする方法。
  32. 請求項２１に記載の方法において、前記第１のプローブは、前記第１のプローブについて第１の一意の識別子を含み、前記第１の遺伝子複合体を生成するステップは、前記第１の一意の識別子を前記第１の標的細胞に関連付けることを含む方法。
  33. 請求項２１に記載の方法において、前記第１の遺伝子複合体を生成するステップは、前記基板に結合された熱制御モジュールを用いて前記ウェルアレイの温度を１０℃未満に低下させることをさらに含む、方法。
  34. 請求項２１に記載の方法において、前記第１の遺伝子複合体に対して生化学プロセスを実行するステップをさらに含む方法。
  35. 請求項３４に記載の方法において、前記生化学プロセスを実行するステップは、逆転写を実行して、前記第１のウェル内の前記第１の遺伝子複合体に関連する少なくとも第１のヌクレオチド配列を生成することを含む、方法。
  36. 請求項３４に記載の方法において、前記生化学プロセスを実行するステップは、少なくとも前記第１のウェル内でポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を実施して、前記第１のウェル内の前記第１の標的細胞に関連する増幅された遺伝物質を生成することを含む、方法。
  37. 請求項２１に記載の方法において、前記第１の遺伝子複合体の少なくとも一部を前記第１のウェルから取り出すステップをさらに含む、方法。
  38. 請求項２１に記載の方法において、前記ウェルアレイの各ウェルは、前記標的細胞の集団のうちの正確に１つの標的細胞と、前記表面の下の粒子の集団のうちの正確に１つの粒子と、のいずれか１つを保持するように構成され、ここで各ウェルの長さは１０〜４０マイクロメートルであり、各ウェルの幅は２０〜４０マイクロメートルであることを特徴とする方法。
  39. 請求項２１に記載の方法において、前記ウェルアレイの各ウェルが、前記基板内にプリズム状の容積を画定しており、前記ウェルが、前記基板の表面に広がる六角形の最密構成で配置されていることを特徴とする方法。
  40. 請求項２１に記載の方法において、前記ウェルアレイ内の各ウェルの開放端が六角形を画定しており、各ウェルの開放端の水平断面が表面と整列していることを特徴とする方法。
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Families Citing this family (31)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10466160B2 (en) 2011-08-01 2019-11-05 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for retrieving and analyzing particles
ES2797448T3 (es) 2011-08-01 2020-12-02 Bio Rad Laboratories Sistema de captura de células
US9404864B2 (en) 2013-03-13 2016-08-02 Denovo Sciences, Inc. System for imaging captured cells
US10391490B2 (en) 2013-05-31 2019-08-27 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for isolating and analyzing cells
EP3227684B1 (en) 2014-12-03 2019-10-02 Isoplexis Corporation Analysis and screening of cell secretion profiles
EP4036578A1 (en) 2016-11-11 2022-08-03 Isoplexis Corporation Compositions and methods for the simultaneous genomic, transcriptomic and proteomic analysis of single cells
EP3545284A4 (en) 2016-11-22 2020-07-01 Isoplexis Corporation SYSTEMS, DEVICES AND METHODS FOR CAPTURING CELLS AND MANUFACTURING METHODS THEREOF
US10391492B2 (en) * 2017-08-29 2019-08-27 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for isolating and analyzing cells
WO2019104337A1 (en) 2017-11-27 2019-05-31 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Rna printing and sequencing devices, methods, and systems
EP3941630A4 (en) * 2019-03-18 2023-04-05 Cellular Research, Inc. PRECISE DISTRIBUTION OF CONSTITUENTS INTO FLUIDS
WO2020197787A1 (en) * 2019-03-22 2020-10-01 Becton, Dickinson And Company Spectral unmixing of fluorescence imaging using radiofrequency-multiplexed excitation data
US10633693B1 (en) * 2019-04-16 2020-04-28 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for leakage control in a particle capture system
US11273439B2 (en) 2019-05-07 2022-03-15 Bio-Rad Laboratories, Inc. System and method for target material retrieval from microwells
SG11202112151UA (en) 2019-05-07 2021-12-30 Bio Rad Laboratories System and method for automated single cell processing
US20220226815A1 (en) * 2019-05-09 2022-07-21 The Research Foundation For The State University Of New York Method and device for parallel single-cell processing
CA3143241A1 (en) * 2019-06-14 2020-12-17 Bio-Rad Laboratories, Inc. System and method for automated single cell processing and analyses
KR20220024734A (ko) * 2019-06-26 2022-03-03 바이오 래드 래버러토리스 인코오포레이티드 마이크로웰에서 표적 물질을 회수하기 위한 시스템 및 방법
US11617504B2 (en) * 2019-09-18 2023-04-04 Verily Life Sciences Llc Retinal camera with dynamic illuminator for expanding eyebox
WO2021248291A1 (zh) * 2020-06-09 2021-12-16 苏州新格元生物科技有限公司 单细胞处理仪器
WO2022019782A1 (en) * 2020-07-20 2022-01-27 Rawle Christopher Bruce An apparatus & method for processing and analysing one or more samples
WO2022050247A1 (ja) * 2020-09-02 2022-03-10 凸版印刷株式会社 流体デバイス及びその使用
CN112945869B (zh) * 2021-02-01 2021-11-16 杭州赛基生物科技有限公司 智慧医院液体试样检测试剂盒用膜载体、试剂盒及膜载体制造方法
DE102021203897A1 (de) * 2021-04-20 2022-10-20 Robert Bosch Gesellschaft mit beschränkter Haftung Verfahren zum Erkennen von kernhaltigen Zellen in einer Probenflüssigkeit eines Patienten unter Verwendung einer mikrofluidischen Vorrichtung und mikrofluidische Vorrichtung
TWI793671B (zh) * 2021-07-09 2023-02-21 中國醫藥大學 細胞治療用生物晶片及其製造方法
CN113617403A (zh) * 2021-08-05 2021-11-09 上海交通大学 一种新型单细胞western blot的微流控芯片
CN113671165B (zh) * 2021-08-23 2023-06-20 哈尔滨工业大学（深圳） 一种用于活细胞力学性能高通量精密检测的装置及方法
EP4194542A1 (en) * 2021-12-07 2023-06-14 Fluigent Apparatus for feeding a liquid medium to a fluidic system
CN114733586B (zh) * 2022-03-09 2023-05-26 珠海大略科技有限公司 一种微粒子流动聚焦装置及方法
EP4252907A1 (en) * 2022-03-30 2023-10-04 Blink AG A method for arranging microspheres in a non-aqueous liquid phase
DE102022209420A1 (de) 2022-09-09 2024-03-14 Robert Bosch Gesellschaft mit beschränkter Haftung Array für eine mikrofluidische Vorrichtung, mikrofluidische Vorrichtung und Verfahren zu ihrem Betrieb.
CN116121031B (zh) * 2022-12-23 2024-03-12 重庆大学 用于单细胞筛选的多级化微流控芯片及其制备方法

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2009195160A (ja) * 2008-02-21 2009-09-03 Hitachi Ltd 核酸増幅用デバイス
US20090258383A1 (en) * 2006-08-31 2009-10-15 Joseph Kovac Opto-fluidic architecture for particle manipulation and sorting
JP2015527588A (ja) * 2012-08-24 2015-09-17 イェール ユニバーシティーＹａｌｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ハイスループット多重検出用システム、装置及び方法
US20160199838A1 (en) * 2013-03-13 2016-07-14 Denovo Sciences, Inc. System and method for capturing and analyzing cells
WO2016151719A1 (ja) * 2015-03-23 2016-09-29 株式会社日立製作所 核酸反応デバイス
US20160289669A1 (en) * 2015-01-22 2016-10-06 Becton, Dickinson And Company Devices and systems for molecular barcoding of nucleic acid targets in single cells
WO2016162997A1 (ja) * 2015-04-09 2016-10-13 株式会社日立製作所 遺伝子解析システム
JP2017063716A (ja) * 2015-09-30 2017-04-06 ソニー株式会社 細胞の分析方法、細胞分析用チップ、細胞分析用試薬、細胞分析用キット及び細胞分析用装置

Family Cites Families (273)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3008032A (en) 1958-10-23 1961-11-07 Jr Michael H Wolfbauer Improvements in fluid-operated pressure-applying devices such as pressure-equalizingresistance welding device
SE428609B (sv) 1981-03-20 1983-07-11 Coulter Electronics Provvexlare for blandning och provtagning av blod eller liknande sedimenterande vetskor
US4551435A (en) 1983-08-24 1985-11-05 Immunicon, Inc. Selective removal of immunospecifically recognizable substances from solution
US5281517A (en) 1985-11-04 1994-01-25 Cell Analysis Systems, Inc. Methods for immunoploidy analysis
US4710635A (en) 1986-04-14 1987-12-01 Becton, Dickinson And Company Dual laser excitation from single laser source
US5281540A (en) 1988-08-02 1994-01-25 Abbott Laboratories Test array for performing assays
JPH07119757B2 (ja) 1991-03-31 1995-12-20 日本光電工業株式会社 血球計数装置
US5637469A (en) 1992-05-01 1997-06-10 Trustees Of The University Of Pennsylvania Methods and apparatus for the detection of an analyte utilizing mesoscale flow systems
US5547849A (en) 1993-02-17 1996-08-20 Biometric Imaging, Inc. Apparatus and method for volumetric capillary cytometry
US5491343A (en) 1994-03-25 1996-02-13 Brooker; Gary High-speed multiple wavelength illumination source, apparatus containing the same, and applications thereof to methods of irradiating luminescent samples and of quantitative luminescence ratio microscopy
US6287850B1 (en) 1995-06-07 2001-09-11 Affymetrix, Inc. Bioarray chip reaction apparatus and its manufacture
US20030069173A1 (en) 1998-03-16 2003-04-10 Life Technologies, Inc. Peptide-enhanced transfections
US5883370A (en) 1995-06-08 1999-03-16 Psc Inc. Automated method for filling drug prescriptions
US6641708B1 (en) 1996-01-31 2003-11-04 Board Of Regents, The University Of Texas System Method and apparatus for fractionation using conventional dielectrophoresis and field flow fractionation
US5993630A (en) 1996-01-31 1999-11-30 Board Of Regents The University Of Texas System Method and apparatus for fractionation using conventional dielectrophoresis and field flow fractionation
US5888370A (en) 1996-02-23 1999-03-30 Board Of Regents, The University Of Texas System Method and apparatus for fractionation using generalized dielectrophoresis and field flow fractionation
US5851488A (en) 1996-02-29 1998-12-22 Biocircuits Corporation Apparatus for automatic electro-optical chemical assay determination
US7244622B2 (en) 1996-04-03 2007-07-17 Applera Corporation Device and method for multiple analyte detection
US5942443A (en) 1996-06-28 1999-08-24 Caliper Technologies Corporation High throughput screening assay systems in microscale fluidic devices
US6074827A (en) 1996-07-30 2000-06-13 Aclara Biosciences, Inc. Microfluidic method for nucleic acid purification and processing
US6228624B1 (en) 1996-08-02 2001-05-08 Immunivest Corporation Method to select and transfect cell subpopulations
DE69818650T2 (de) 1997-03-25 2004-08-12 Immunivest Corp., Wilmington Gerät und methoden zum einfnag und zur analyse von partikel-einheiten
US6410724B1 (en) 1997-04-07 2002-06-25 Institut Pasteur Diagnostic means useful for predictive assessment of human hepatocellular carcinoma disease (HCC), as well as diagnostic methods using the same
US6133030A (en) 1997-05-14 2000-10-17 The General Hospital Corporation Co-cultivation of cells in a micropatterned configuration
US6016712A (en) 1997-09-18 2000-01-25 Accumetrics Device for receiving and processing a sample
US6992761B2 (en) 1997-09-20 2006-01-31 Molecular Devices Corporation Broad range light detection system
JP3551293B2 (ja) 1998-02-02 2004-08-04 東洋紡績株式会社 核酸抽出装置
DE69941689D1 (de) 1998-02-12 2010-01-07 Univ Texas Verfahren und reagenzien zur raschen und effizienten isolierung zirkulierender krebszellen
FI102906B1 (fi) 1998-02-23 1999-03-15 Bio Nobile Oy Menetelmä ja väline aineen siirtämiseksi
US6929953B1 (en) 1998-03-07 2005-08-16 Robert A. Levine Apparatus for analyzing biologic fluids
US6818437B1 (en) 1998-05-16 2004-11-16 Applera Corporation Instrument for monitoring polymerase chain reaction of DNA
DE69933770D1 (de) 1998-07-09 2006-12-07 Biocept Inc Verfahren zur verwendung einer universellen bibliothek von peptid-nukleinsäuren zur optimierung der dns-hybridisierung
FR2782730B1 (fr) 1998-08-25 2002-05-17 Biocom Sa Procede de separation cellulaire pour l'isolation de cellules pathogeniques, notamment cancereuses rares, equipement et reactif pour la mise en oeuvre du procede et application du procede
CA2342798A1 (en) 1998-09-02 2000-03-16 Langerhans Aps Apparatus for isolation of particles, preferably cell clusters
US6127177A (en) 1998-09-11 2000-10-03 Massachusetts Institute Of Technology Controlled reversible poration for preservation of biological materials
US8131053B2 (en) 1999-01-25 2012-03-06 Amnis Corporation Detection of circulating tumor cells using imaging flow cytometry
US8406498B2 (en) 1999-01-25 2013-03-26 Amnis Corporation Blood and cell analysis using an imaging flow cytometer
AU2876900A (en) 1999-02-10 2000-08-29 Cell Works Inc. Class characterization of circulating cancer cells isolated from body fluids andmethods of use
US7638464B2 (en) 1999-04-26 2009-12-29 Biocept, Inc. Three dimensional format biochips
US6174683B1 (en) 1999-04-26 2001-01-16 Biocept, Inc. Method of making biochips and the biochips resulting therefrom
US6818185B1 (en) 1999-05-28 2004-11-16 Cepheid Cartridge for conducting a chemical reaction
US7306672B2 (en) 2001-04-06 2007-12-11 California Institute Of Technology Microfluidic free interface diffusion techniques
US6692952B1 (en) 1999-11-10 2004-02-17 Massachusetts Institute Of Technology Cell analysis and sorting apparatus for manipulation of cells
US20060128006A1 (en) 1999-11-10 2006-06-15 Gerhardt Antimony L Hydrodynamic capture and release mechanisms for particle manipulation
US7867763B2 (en) 2004-01-25 2011-01-11 Fluidigm Corporation Integrated chip carriers with thermocycler interfaces and methods of using the same
US6790330B2 (en) 2000-06-14 2004-09-14 Board Of Regents, The University Of Texas System Systems and methods for cell subpopulation analysis
US6525997B1 (en) 2000-06-30 2003-02-25 International Business Machines Corporation Efficient use of display real estate in a wrist watch display
JP4933706B2 (ja) 2000-09-22 2012-05-16 オリンパス株式会社 顕微鏡
EP1348034B1 (en) 2000-11-15 2016-07-20 Minerva Biotechnologies Corporation Oligonucleotide identifiers
CN1491355A (zh) 2001-02-12 2004-04-21 用于容纳光学分析用的样品样本的盒体
US7968305B2 (en) * 2001-03-24 2011-06-28 Aviva Biosciences Corporation Biochips including ion transport detecting structures and methods of use
EP1373472B1 (en) 2001-04-03 2007-06-27 Biocept, Inc. Methods and gel compositions for encapsulating living cells and organic molecules
US7863012B2 (en) 2004-02-17 2011-01-04 Veridex, Llc Analysis of circulating tumor cells, fragments, and debris
ES2253533T3 (es) 2001-09-06 2006-06-01 Adnagen Ag Procedimiento para la deteccion cualitativa y/o cuantitativa de celulas.
EP1444500B1 (en) 2001-10-15 2008-06-11 Biocept, Inc. Microwell biochip
US20050014201A1 (en) 2001-10-25 2005-01-20 Mordechai Deuthsch Interactive transparent individual cells biochip processor
US7338760B2 (en) 2001-10-26 2008-03-04 Ntu Ventures Private Limited Sample preparation integrated chip
US20030138819A1 (en) 2001-10-26 2003-07-24 Haiqing Gong Method for detecting disease
AU2002357791B9 (en) 2001-12-05 2008-09-25 The J. David Gladstone Institutes Robotic microscopy systems
WO2003085379A2 (en) 2002-04-01 2003-10-16 Fluidigm Corporation Microfluidic particle-analysis systems
US7718072B2 (en) 2002-04-26 2010-05-18 Abbott Laboratories Structure and method for handling magnetic particles in biological assays
US7354389B2 (en) 2002-05-28 2008-04-08 Autogenomics, Inc. Microarray detector and methods
US7846382B2 (en) 2002-06-04 2010-12-07 Protasis Corporation Method and device for ultrasonically manipulating particles within a fluid
US7198901B1 (en) 2002-09-19 2007-04-03 Biocept, Inc. Reflective substrate and algorithms for 3D biochip
WO2004029221A2 (en) 2002-09-27 2004-04-08 The General Hospital Corporation Microfluidic device for cell separation and uses thereof
US7011794B2 (en) 2002-11-25 2006-03-14 Immunivest Corporation Upon a cartridge for containing a specimen sample for optical analysis
JP2004177377A (ja) 2002-11-29 2004-06-24 Hitachi Ltd 検査方法および検査装置
WO2004067162A2 (en) 2003-01-30 2004-08-12 Ciphergen Biosystems Inc. Apparatus for microfluidic processing and reading of biochip arrays
US7035170B2 (en) 2003-04-29 2006-04-25 International Business Machines Corporation Device for displaying variable data for small screens
CN1788193A (zh) 2003-05-13 2006-06-14 阿菲梅特里克斯公司 用于提供波长可调的激发光束的系统、方法和产品
US9200245B2 (en) 2003-06-26 2015-12-01 Seng Enterprises Ltd. Multiwell plate
CA2432972A1 (en) 2003-07-04 2005-01-04 Jeak L. Ding Sushi peptides, processes for making and uses thereof
EP2413136B1 (en) 2003-07-18 2013-07-03 Bio-Rad Laboratories, Inc. System and method for multi-analyte detection
US20050106667A1 (en) 2003-08-01 2005-05-19 Genentech, Inc Binding polypeptides with restricted diversity sequences
US7767152B2 (en) 2003-08-11 2010-08-03 Sakura Finetek U.S.A., Inc. Reagent container and slide reaction retaining tray, and method of operation
US7501283B2 (en) 2003-08-11 2009-03-10 Sakura Finetek U.S.A., Inc. Fluid dispensing apparatus
GB0321158D0 (en) 2003-09-10 2003-10-08 Central Research Lab Ltd Apparatus and method for handling cells,embryos or oocytes
SG110153A1 (en) 2003-09-22 2005-04-28 Agency Science Tech & Res Device and method of detecting mutations and polymorphisms in dna
US7799559B2 (en) 2003-10-24 2010-09-21 Olympus Corporation Culture microscope apparatus
US7449558B2 (en) 2003-10-30 2008-11-11 National University Of Singapore Site-specific labelling of proteins
US7129042B2 (en) 2003-11-03 2006-10-31 Diagnostic Hybrids, Inc. Compositions and methods for detecting severe acute respiratory syndrome coronavirus
US7238521B2 (en) 2003-11-24 2007-07-03 Biocept, Inc. Microarray hybridization device having bubble-fracturing elements
CN1942590B (zh) 2004-02-18 2012-09-05 周小川 多元化学和生化反应的流体装置和方法
US8101431B2 (en) 2004-02-27 2012-01-24 Board Of Regents, The University Of Texas System Integration of fluids and reagents into self-contained cartridges containing sensor elements and reagent delivery systems
WO2005090945A1 (en) 2004-03-16 2005-09-29 Amnis Corporation Method for imaging and differential analysis of cells
CN104480200B (zh) 2004-03-31 2017-12-29 综合医院公司 测定癌症对表皮生长因子受体靶向性治疗反应性的方法
US7858757B2 (en) 2004-03-31 2010-12-28 Adnagen Ag Monoclonal antibodies with specificity for fetal erythroid cells
CA2994321C (en) 2004-05-03 2023-08-08 Handylab, Inc. A microfluidic device and methods for processing polynucleotide-containing samples
DE102004026612B4 (de) 2004-06-01 2006-07-06 Uhlmann Pac-Systeme Gmbh & Co. Kg. Vorrichtung zur Stapelbildung von Packgut und Übergabe des Packgutstapels in ein Packguttransportsystem
EP2701194B1 (en) 2004-06-07 2018-08-29 Fluidigm Corporation Method and apparatus for imaging a microfluidic device under temperature control
EP1621890A1 (en) 2004-07-26 2006-02-01 bioMerieux B.V. Device and method for separating, mixing and concentrating magnetic particles with a fluid and use thereof in purification methods
US7258990B2 (en) 2004-08-19 2007-08-21 Biocept, Inc. Alleviation of non-specific binding in microarray assays
US7595157B2 (en) 2004-08-19 2009-09-29 Biocept, Inc. Microarrays utilizing hydrogels
US7266777B2 (en) 2004-09-08 2007-09-04 Universal Electronics Inc. Configurable controlling device having an associated editing program
WO2006037033A2 (en) 2004-09-24 2006-04-06 The Regents Of The University Of California A microfluidic device for enabling the controlled growth of cells
JP2006098696A (ja) 2004-09-29 2006-04-13 Fuji Denki Gazo Device Kk 画像形成装置
US7727775B2 (en) 2004-10-25 2010-06-01 Willson Richard C Optical microlabels: shapes and reflectors
US7439062B2 (en) 2004-12-23 2008-10-21 Biocept, Inc. Beads for capturing target cells from bodily fluid
US8158410B2 (en) 2005-01-18 2012-04-17 Biocept, Inc. Recovery of rare cells using a microchannel apparatus with patterned posts
CA2598938A1 (en) 2005-01-26 2006-08-03 Enigma Diagnostics Ltd Method for carrying out a multi-step reaction, breakable container for storing reagents and method for transferring solid reagent using an electrostatically charged wand
US7393665B2 (en) 2005-02-10 2008-07-01 Population Genetics Technologies Ltd Methods and compositions for tagging and identifying polynucleotides
NZ561676A (en) 2005-03-16 2009-06-26 Attogenix Biosystems Pte Ltd Methods and device for transmitting, enclosing and analysing fluid samples
US20070196820A1 (en) 2005-04-05 2007-08-23 Ravi Kapur Devices and methods for enrichment and alteration of cells and other particles
EP1877805B1 (en) 2005-05-06 2020-12-23 Instrumentation Laboratory Company Telescoping closed-tube sampling assembly
EP2453240B1 (en) 2005-05-23 2016-12-28 Harald F. Hess Optical microscopy with phototransformable optical labels
US20090317798A1 (en) 2005-06-02 2009-12-24 Heid Christian A Analysis using microfluidic partitioning devices
DE202006010293U1 (de) 2005-07-22 2006-08-31 Tecan Trading Ag Pipettiergerät mit Computerprogrammprodukt zum Akzeptieren oder Verwerfen von pipettierten Flüssigkeitsproben
US7901950B2 (en) 2005-08-12 2011-03-08 Veridex, Llc Method for assessing disease states by profile analysis of isolated circulating endothelial cells
US20070053800A1 (en) * 2005-09-02 2007-03-08 Applera Corporation Fluid processing device comprising sample transfer feature
WO2007044917A2 (en) 2005-10-11 2007-04-19 Handylab, Inc. Polynucleotide sample preparation device
US8936945B2 (en) 2005-11-17 2015-01-20 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for liquid metering in microchannels
US7695956B2 (en) 2006-01-12 2010-04-13 Biocept, Inc. Device for cell separation and analysis and method of using
DE102006002258B4 (de) 2006-01-17 2008-08-21 Siemens Ag Modul zur Aufbereitung einer biologischen Probe, Biochip-Satz und Verwendung des Moduls
KR101321658B1 (ko) 2006-01-18 2013-10-23 아고스 쎄라퓨틱스, 인코포레이티드 폐쇄 용기에서 샘플을 처리하기 위한 시스템 및 방법, 및관련 소자
EP1986689A4 (en) 2006-01-27 2009-09-02 Cellerant Therapeutics Inc COMPOSITIONS AND METHODS FOR TREATING HEMATOLOGICAL PROLIFERATIVE DISORDERS
WO2007089911A2 (en) 2006-01-30 2007-08-09 The Scripps Research Institute Methods for detection of circulating tumor cells and methods of diagnosis of cancer in a mammalian subject
US20090061450A1 (en) 2006-03-14 2009-03-05 Micronics, Inc. System and method for diagnosis of infectious diseases
US8293524B2 (en) * 2006-03-31 2012-10-23 Fluxion Biosciences Inc. Methods and apparatus for the manipulation of particle suspensions and testing thereof
US8021877B2 (en) 2006-04-10 2011-09-20 Massachusetts Institute Of Technology Particle patterning chip
DE102006020243B3 (de) 2006-04-27 2008-01-17 Infineon Technologies Austria Ag Leistungshalbleitermodul als H-Brückenschaltung und Verfahren zur Herstellung desselben
EP2530168B1 (en) 2006-05-11 2015-09-16 Raindance Technologies, Inc. Microfluidic Devices
MX2008014710A (es) 2006-05-19 2009-02-12 Amgen Inc Anticuerpos para coronavirus del sars.
EP2636755A1 (en) 2006-05-26 2013-09-11 AltheaDx Incorporated Biochemical analysis of partitioned cells
JP5073967B2 (ja) 2006-05-30 2012-11-14 株式会社日立製作所 単一細胞の遺伝子発現定量方法
WO2008111990A1 (en) 2006-06-14 2008-09-18 Cellpoint Diagnostics, Inc. Rare cell analysis using sample splitting and dna tags
US8372584B2 (en) 2006-06-14 2013-02-12 The General Hospital Corporation Rare cell analysis using sample splitting and DNA tags
EP2489728A1 (en) 2006-06-15 2012-08-22 Neostem, Inc Processing procedure for peripheral blood stem cells
DE102006033875A1 (de) 2006-07-21 2008-01-31 Siemens Ag Analysesystem basierend auf porösem Material für hochparallele Einzelzelldetektion
US20080113358A1 (en) 2006-07-28 2008-05-15 Ravi Kapur Selection of cells using biomarkers
JP2008136415A (ja) 2006-12-01 2008-06-19 Nikon Corp 観察装置
US8821799B2 (en) 2007-01-26 2014-09-02 Palo Alto Research Center Incorporated Method and system implementing spatially modulated excitation or emission for particle characterization with enhanced sensitivity
WO2008131048A2 (en) 2007-04-16 2008-10-30 Cellpoint Diagnotics, Inc. Devices and methods for diagnosing, prognosing, or theranosing a condition by enriching rare cells
WO2008130977A2 (en) 2007-04-16 2008-10-30 The General Hospital Corporation D/B/A Massachusetts General Hospital Systems and methods for particle focusing in microchannels
US9186677B2 (en) 2007-07-13 2015-11-17 Handylab, Inc. Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples
US8174698B2 (en) 2007-08-10 2012-05-08 Corporation de l'Ecole Polytechnique de Montréal MEMS tunable silicon fabry-perot cavity and applications thereof
EP2037265A1 (en) 2007-09-17 2009-03-18 Adnagen AG Solid phase cell isolation and/or enrichment method
TW200920841A (en) 2007-09-25 2009-05-16 Cytyc Corp Microfluidic apparatus for manipulating imaging and analyzing cells of a cytological specimen
WO2009043057A2 (en) 2007-09-27 2009-04-02 Massachusetts Institute Of Technology Cell rolling separation
GB0720264D0 (en) 2007-10-17 2007-11-28 Smiths Detection Watford Ltd Sample preparation devices and analyzers
CA2971968C (en) 2007-10-24 2019-08-13 Biomarker Strategies, Llc Improved methods and devices for cellular analysis
US9502227B2 (en) 2007-11-02 2016-11-22 Humanix Co., Ltd. Capturing of cell fluid and analysis of its components under observation of cells and instruments for the cell fluid capturing and the analysis
CA2705213C (en) 2007-11-07 2016-10-04 The University Of British Columbia Microfluidic device and method of using same
US9145540B1 (en) 2007-11-15 2015-09-29 Seng Enterprises Ltd. Device for the study of living cells
US7738320B2 (en) 2007-12-03 2010-06-15 General Electric Co. Method and system for enhanced display of temporal data on portable devices
ES2374863T3 (es) 2007-12-07 2012-02-22 Miltenyi Biotec Gmbh Centrífuga para separar una muestra en por lo menos dos componentes.
WO2009076560A2 (en) 2007-12-12 2009-06-18 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Method and apparatus for magnetic separation of cells
US8266951B2 (en) 2007-12-19 2012-09-18 Los Alamos National Security, Llc Particle analysis in an acoustic cytometer
WO2009100028A1 (en) 2008-02-01 2009-08-13 The Regents Of The University Of California Microfluidic imaging cytometry
WO2009102783A1 (en) 2008-02-11 2009-08-20 Massachusetts Institute Of Technology Particle capture devices and methods of use thereof
US8008032B2 (en) 2008-02-25 2011-08-30 Cellective Dx Corporation Tagged ligands for enrichment of rare analytes from a mixed sample
WO2009130694A2 (en) 2008-04-21 2009-10-29 Cell Kinetics Ltd. Flat cell carriers with cell traps
US8680025B2 (en) 2008-05-09 2014-03-25 Akonni Biosystems, Inc. Microarray system
RU2498998C2 (ru) 2008-05-30 2013-11-20 ИксБиотеч, Инк. АНТИТЕЛА К ИНТЕРЛЕЙКИНУ-1α И СПОСОБЫ ПРИМЕНЕНИЯ
CN102150037B (zh) 2008-07-11 2014-06-04 康奈尔大学 集成电荷传感器的纳米流体通道及基于该纳米流体通道的方法
US8013298B2 (en) 2008-07-14 2011-09-06 National University Of Singapore Electrostatic electron spectrometry apparatus
US8252517B2 (en) 2008-07-18 2012-08-28 Massachusetts Institute Of Technology Stop flow interference lithography system
US20100087325A1 (en) * 2008-10-07 2010-04-08 Illumina, Inc. Biological sample temperature control system and method
US20100112643A1 (en) 2008-11-04 2010-05-06 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary Of The Navy Method for direct capture of ribonucleic acid
US20210252509A1 (en) 2008-11-26 2021-08-19 Ucl Business Plc Microfluidic device
KR20110106922A (ko) 2009-01-13 2011-09-29 플루이다임 코포레이션 단일 세포 핵산 분석
US9329170B2 (en) 2009-01-20 2016-05-03 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Single cell gene expression for diagnosis, prognosis and identification of drug targets
US20100298453A1 (en) 2009-01-26 2010-11-25 Invista North America S.A R.L. Board stock foam having biobased content
WO2010093998A2 (en) 2009-02-14 2010-08-19 Diffinity Genomics, Inc. System and methods for purifying biological materials
DK3002337T3 (en) 2009-03-30 2019-02-18 Illumina Inc ANALYSIS OF EXPRESSION OF GENES IN SINGLE CELLS
DK2414544T3 (da) 2009-04-01 2014-06-16 Dxterity Diagnostics Inc Probe-amplifikations-afhængig kemisk ligering
CN102460154B (zh) 2009-04-13 2015-10-07 华盛顿大学 整体决策液份分级
WO2010135603A2 (en) 2009-05-20 2010-11-25 California Institute Of Technology Method for cancer detection, diagnosis and prognosis
KR20120031218A (ko) 2009-06-05 2012-03-30 인터젠엑스 인크. 만능 샘플 제조 시스템 및 집적 분석 시스템에서의 사용
GB0909923D0 (en) 2009-06-09 2009-07-22 Oxford Gene Tech Ip Ltd Picowell capture devices for analysing single cells or other particles
GB0910330D0 (en) 2009-06-16 2009-07-29 Univ Leiden A biological microfluidics chip and related methods
CN102753977B (zh) 2009-07-27 2016-05-25 梅索磅秤技术有限公司 化验装置、耗材和方法
US9364831B2 (en) 2009-08-08 2016-06-14 The Regents Of The University Of California Pulsed laser triggered high speed microfluidic switch and applications in fluorescent activated cell sorting
WO2011021102A2 (en) 2009-08-20 2011-02-24 Population Genetics Technologies Ltd Compositions and methods for intramolecular nucleic acid rearrangement
US8835358B2 (en) 2009-12-15 2014-09-16 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse labels
US9315857B2 (en) 2009-12-15 2016-04-19 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse label-tags
JP5292267B2 (ja) 2009-12-16 2013-09-18 株式会社日立ハイテクノロジーズ 試料処理装置、試料処理方法及びこれらに使用する反応容器
WO2011085075A2 (en) 2010-01-07 2011-07-14 Gen9, Inc. Assembly of high fidelity polynucleotides
JP2013524169A (ja) 2010-03-25 2013-06-17 クァンタライフ・インコーポレーテッド 液滴によるアッセイ用の検出システム
US20130130376A1 (en) 2010-05-03 2013-05-23 Naira Serobyan Screening methods, compositions identified thereby, tools useful for the identification thereof, and cell populations produced thereby
AU2011282233B2 (en) 2010-07-19 2014-11-27 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Methods and systems for analysis of single cells
EP2743704A3 (en) 2010-07-23 2014-06-25 Beckman Coulter, Inc. System or method of including analytical units
WO2012012800A2 (en) 2010-07-23 2012-01-26 Abbott Point Of Care, Inc. A method and apparatus for detecting the presence of anisotropic crystals and hemozoin producing parasites in liquid blood
WO2012024658A2 (en) 2010-08-20 2012-02-23 IntegenX, Inc. Integrated analysis system
GB201014805D0 (en) * 2010-09-07 2010-10-20 Multi Sense Technologies Ltd Microfluidics based assay device
US9133499B2 (en) 2010-09-14 2015-09-15 The Regents Of The University Of California Method and device for isolating cells from heterogeneous solution using microfluidic trapping vortices
KR101420094B1 (ko) 2010-10-27 2014-07-17 (주)바이오니아 다양한 생체시료분석을 위한 전자동실시간정량증폭장비, 다양한 생체시료분석을 위한 자동정제 및 반응준비 장치, 전자동 핵산정제 및 실시간 정량 유전자증폭 방법, 전자동 핵산정제방법, 실시간정량ｐｃｒ을 이용한 병원균의 전자동 생균수검사방법, 정량면역ｐｃｒ을 이용한 전자동 항원농도획득방법 및 타겟항원에 라벨링된 부착용 타겟핵산의 정제방법
SG190074A1 (en) 2010-11-01 2013-06-28 Bio Rad Laboratories System for forming emulsions
WO2012129187A1 (en) 2011-03-18 2012-09-27 Bio-Rad Laboratories, Inc. Multiplexed digital assays with combinatorial use of signals
US9260753B2 (en) 2011-03-24 2016-02-16 President And Fellows Of Harvard College Single cell nucleic acid detection and analysis
WO2012149042A2 (en) 2011-04-25 2012-11-01 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods and compositions for nucleic acid analysis
US9110026B2 (en) 2011-05-05 2015-08-18 Biopico Systems Inc Microfluidic devices and methods based on massively parallel picoreactors for cell and molecular diagnostics
US9128057B2 (en) * 2011-05-10 2015-09-08 Pathway Genomics Corporation Dual-mode microfluidic genetics testing platforms and methods of dual-mode genetics testing using same
JP5650056B2 (ja) 2011-05-30 2015-01-07 株式会社日立ハイテクノロジーズ 試料処理装置、および試料処理方法
US9174216B2 (en) 2013-03-13 2015-11-03 DeNovo Science, Inc. System for capturing and analyzing cells
US9404864B2 (en) 2013-03-13 2016-08-02 Denovo Sciences, Inc. System for imaging captured cells
ES2797448T3 (es) * 2011-08-01 2020-12-02 Bio Rad Laboratories Sistema de captura de células
CN104114282B (zh) 2011-09-30 2017-07-04 生命技术公司 用于生物分析的系统和方法
EP2773892B1 (en) 2011-11-04 2020-10-07 Handylab, Inc. Polynucleotide sample preparation device
US9381524B2 (en) 2011-11-08 2016-07-05 Becton, Dickinson And Company System and method for automated sample preparation
US9709469B2 (en) 2011-11-11 2017-07-18 The Regents Of The University Of California Valveless microfluidic device
AU2013221701B2 (en) 2012-02-13 2017-02-02 Molecular Systems Corporation Microfluidic cartridge for processing and detecting nucleic acids
SG11201405274WA (en) 2012-02-27 2014-10-30 Cellular Res Inc Compositions and kits for molecular counting
US9429500B2 (en) 2012-02-29 2016-08-30 Fluidigm Corporation Methods, systems and devices for multiple single-cell capturing and processing using microfluidics
US9855557B2 (en) 2012-03-29 2018-01-02 Mitegen, Llc Microplates and methods for protein crystallization and biotechnology
US9073052B2 (en) 2012-03-30 2015-07-07 Perkinelmer Health Sciences, Inc. Lab members and liquid handling systems and methods including same
US8900529B2 (en) 2012-04-27 2014-12-02 General Electric Company Microfluidic chamber device and fabrication
CA2874343C (en) 2012-05-21 2021-11-09 Fluidigm Corporation Single-particle analysis of particle populations
EP2856177B1 (en) * 2012-05-25 2020-11-18 The University of North Carolina At Chapel Hill Microfluidic devices, solid supports for reagents and related methods
IN2014MN02555A (ja) 2012-06-01 2015-07-24 Vycap B V
US10221442B2 (en) 2012-08-14 2019-03-05 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US9701998B2 (en) 2012-12-14 2017-07-11 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9951386B2 (en) 2014-06-26 2018-04-24 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9567631B2 (en) 2012-12-14 2017-02-14 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
KR102090851B1 (ko) 2012-08-14 2020-03-19 10엑스 제노믹스, 인크. 마이크로캡슐 조성물 및 방법
US9422602B2 (en) 2012-08-15 2016-08-23 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods and compositions for determining nucleic acid degradation
US9091045B2 (en) 2012-08-17 2015-07-28 Moen Incorporated Cartridge assembly for faucet
US20140173443A1 (en) 2012-08-27 2014-06-19 Wahoo Fitness Llc Fitness computer and system
US20140161686A1 (en) 2012-12-10 2014-06-12 Advanced Liquid Logic, Inc. System and method of dispensing liquids in a microfluidic device
US9606102B2 (en) 2013-01-26 2017-03-28 Denovo Sciences, Inc. System and method for capturing and analyzing cells
US10401373B1 (en) 2013-02-18 2019-09-03 Theranos Ip Company, Llc Systems and methods for analyte testing and laboratory oversight
JP6093436B2 (ja) * 2013-03-12 2017-03-08 株式会社日立製作所 遺伝子定量・配列解析用２次元セルアレイデバイスおよび装置
WO2014152155A1 (en) 2013-03-14 2014-09-25 The Broad Institute, Inc. Massively multiplexed rna sequencing
US10578633B2 (en) * 2013-03-15 2020-03-03 Fluidigm Corporation Methods and devices for analysis of defined multicellular combinations
US10391490B2 (en) * 2013-05-31 2019-08-27 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for isolating and analyzing cells
US9856535B2 (en) 2013-05-31 2018-01-02 Denovo Sciences, Inc. System for isolating cells
KR20230074639A (ko) 2013-08-28 2023-05-30 벡톤 디킨슨 앤드 컴퍼니 대량의 동시 단일 세포 분석
US10019686B2 (en) 2013-09-20 2018-07-10 Panera, Llc Systems and methods for analyzing restaurant operations
US20150089359A1 (en) 2013-09-25 2015-03-26 At&T Mobility Ii Llc Intelligent Adaptation of Home Screens
US9507609B2 (en) 2013-09-29 2016-11-29 Taplytics Inc. System and method for developing an application
WO2015134984A1 (en) 2014-03-07 2015-09-11 Bio-Rad Laboratories, Inc. Automated blotting using sliding devices
CN110243752B (zh) 2014-03-07 2022-12-02 古河电气工业株式会社 筛选装置和筛选方法
CN103894248B (zh) * 2014-04-09 2015-09-16 国家纳米科学中心 一种单细胞分析用微流控芯片和系统及单细胞分析方法
CA2947426C (en) * 2014-04-29 2020-01-07 Illumina, Inc. Multiplexed single cell gene expression analysis using template switch and tagmentation
US10975371B2 (en) 2014-04-29 2021-04-13 Illumina, Inc. Nucleic acid sequence analysis from single cells
US20150360226A1 (en) 2014-06-12 2015-12-17 Wafergen, Inc. Single cell capture with polymer capture films
US9757707B2 (en) 2014-06-12 2017-09-12 Takara Bio Usa, Inc. Single cell capture with capture chips
CN114214314A (zh) 2014-06-24 2022-03-22 生物辐射实验室股份有限公司 数字式pcr条码化
EP3889325A1 (en) 2014-06-26 2021-10-06 10X Genomics, Inc. Methods of analyzing nucleic acids from individual cells or cell populations
CN104789468B (zh) * 2014-07-22 2017-10-20 奥克莱流体公司 颗粒筛选装置
US10391491B2 (en) * 2014-08-07 2019-08-27 The General Hospital Corporation Platelet-targeted microfluidic isolation of cells
KR102323205B1 (ko) 2014-08-22 2021-11-08 삼성전자주식회사 표적물질 분리장치 및 표적물질 분리방법
CA2997906A1 (en) 2014-09-09 2016-03-17 The Broad Institute, Inc. A droplet-based method and apparatus for composite single-cell nucleic acid analysis
JP6746059B2 (ja) 2015-01-14 2020-08-26 バイオ−ラッド ラボラトリーズ，インコーポレイティド 血液分析の系および方法
US10078778B2 (en) 2015-01-15 2018-09-18 Massachusetts Institute Of Technology Systems, methods, and apparatus for in vitro single-cell identification and recovery
CA2976681A1 (en) 2015-02-27 2016-09-01 Fluidigm Corporation Single-cell nucleic acids for high-throughput studies
US10488321B2 (en) * 2015-03-19 2019-11-26 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Devices and methods for high-throughput single cell and biomolecule analysis and retrieval in a microfluidic chip
RU2712610C2 (ru) * 2015-04-03 2020-01-29 Эбботт Лэборетриз Устройства и способы для анализа образца
US20160314242A1 (en) 2015-04-23 2016-10-27 10X Genomics, Inc. Sample indexing methods and compositions for sequencing applications
EP3303633B1 (en) 2015-05-26 2024-02-21 The Trustees of Columbia University in the City of New York Rna printing and sequencing devices, and systems
US10094847B2 (en) 2015-07-31 2018-10-09 Gen-Probe Incorporated Automated sample processing instruments, systems, processes, and methods
US11203016B2 (en) * 2015-12-01 2021-12-21 Illumina, Inc. Digital microfluidic system for single-cell isolation and characterization of analytes
CN109070083A (zh) 2016-04-22 2018-12-21 贝克顿迪金森公司 用于阵列产生的高密度沉积
CN115754323A (zh) 2016-04-22 2023-03-07 贝克顿·迪金森公司 自动化诊断分析仪和用于自动化诊断分析仪的操作的方法
WO2018013723A1 (en) 2016-07-14 2018-01-18 Fluidigm Corporation Single-cell transcript sequencing
US20180037942A1 (en) 2016-08-03 2018-02-08 Cellular Research, Inc. Enzyme-independent molecular indexing
US11225689B2 (en) 2016-08-17 2022-01-18 The Broad Institute, Inc. Method for determination and identification of cell signatures and cell markers
CA3034924A1 (en) 2016-09-26 2018-03-29 Cellular Research, Inc. Measurement of protein expression using reagents with barcoded oligonucleotide sequences
DK3529357T3 (da) 2016-10-19 2022-04-25 10X Genomics Inc Fremgangsmåder til stregkodning af nukleinsyremolekyler fra individuelle celler
SG11201903158RA (en) 2016-11-08 2019-05-30 Cellular Res Inc Methods for cell label classification
US20190315846A1 (en) 2016-12-12 2019-10-17 The Michael J. Fox Foundation For Parkinson's Research Antibodies to Human Alpha-Synuclein
US10550429B2 (en) 2016-12-22 2020-02-04 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US11305282B2 (en) 2017-03-29 2022-04-19 Cornell University Devices, processes, and systems for determination of nucleic acid sequence, expression, copy number, or methylation changes using combined nuclease, ligase, polymerase, and sequencing reactions
US11072816B2 (en) 2017-05-03 2021-07-27 The Broad Institute, Inc. Single-cell proteomic assay using aptamers
EP3848459A1 (en) 2017-06-30 2021-07-14 Inscripta, Inc. Automated cell processing methods, modules, instruments and systems
US10391492B2 (en) * 2017-08-29 2019-08-27 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for isolating and analyzing cells
US10829815B2 (en) 2017-11-17 2020-11-10 10X Genomics, Inc. Methods and systems for associating physical and genetic properties of biological particles
CN111699253A (zh) 2018-01-31 2020-09-22 生物辐射实验室股份有限公司 用于解卷积分区条码的方法和组合物
WO2019165318A1 (en) 2018-02-22 2019-08-29 10X Genomics, Inc. Ligation mediated analysis of nucleic acids
US11841371B2 (en) 2018-03-13 2023-12-12 The Broad Institute, Inc. Proteomics and spatial patterning using antenna networks
WO2019200004A1 (en) 2018-04-13 2019-10-17 Inscripta, Inc. Automated cell processing instruments comprising reagent cartridges
AU2019292919A1 (en) 2018-06-30 2021-03-11 Inscripta, Inc. Instruments, modules, and methods for improved detection of edited sequences in live cells
US20200209229A1 (en) 2018-12-27 2020-07-02 Bio-Rad Laboratories, Inc. Sequential multiplex western blotting
US10633693B1 (en) 2019-04-16 2020-04-28 Celsee Diagnostics, Inc. System and method for leakage control in a particle capture system

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20090258383A1 (en) * 2006-08-31 2009-10-15 Joseph Kovac Opto-fluidic architecture for particle manipulation and sorting
JP2009195160A (ja) * 2008-02-21 2009-09-03 Hitachi Ltd 核酸増幅用デバイス
JP2015527588A (ja) * 2012-08-24 2015-09-17 イェール ユニバーシティーＹａｌｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ハイスループット多重検出用システム、装置及び方法
US20160199838A1 (en) * 2013-03-13 2016-07-14 Denovo Sciences, Inc. System and method for capturing and analyzing cells
US20160289669A1 (en) * 2015-01-22 2016-10-06 Becton, Dickinson And Company Devices and systems for molecular barcoding of nucleic acid targets in single cells
WO2016151719A1 (ja) * 2015-03-23 2016-09-29 株式会社日立製作所 核酸反応デバイス
WO2016162997A1 (ja) * 2015-04-09 2016-10-13 株式会社日立製作所 遺伝子解析システム
JP2017063716A (ja) * 2015-09-30 2017-04-06 ソニー株式会社 細胞の分析方法、細胞分析用チップ、細胞分析用試薬、細胞分析用キット及び細胞分析用装置

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