JP2019531724A - イヌアデノウイルスベクター - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、37 C.F.R. 1.821〜1.825に従って配列表を含有する。本出願に付随する配列表は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明は、(ベクター)ワクチンの分野に関し、特にそのようなベクターワクチン由来の標的抗原の発現に好適な改良された発現カセットを有する組換えイヌアデノウイルス2型に特に関する。
アデノウイルスは、組換えワクチン用のベクターとして広く調査されている(総説Bru, T., S. Salinas, and E.J. Kremer, An update on canine adenovirus type 2 and its vectors. viruses, 2010. 2 (9): p. 2134-53参照)。詳細には遺伝子療法およびワクチン開発の分野で、ここ20〜30年間にわたって蓄積されたアデノウイルスに関する豊富な情報がある。アデノウイルスの、以下のいくつかの特徴から、遺伝子導入ツールとしてアデノウイルスは魅力的である:(1)アデノウイルスゲノムの構造は十分に特徴づけられている、(2)ウイルスDNAの大部分は外来配列により置換することができる、(3)組換えバリアントが比較的安定している、(4)組換えウイルスが高力価で増殖することができる、(5)ヒト悪性腫瘍はアデノウイルスとは無関係である、および(6)ワクチンとしての弱毒野生型アデノウイルスの使用は安全である。
本発明は、導入遺伝子発現のための新しい制御核酸配列/プロモーター配列、免疫原性組成物、ワクチン、および当技術分野の欠点を克服する関連方法を提供する。
ヘルペスウイルスを含む様々なベクター系での高レベルの導入遺伝子発現を駆動するために広く使用される確立されたプロモーター配列は、HCMV(Boshart et al., 1985; Foecking and Hofstetter 1986)またはマウスサイトメガロウイルス(MCMV;Dorsch-Hasler et al., 1985)の最初期遺伝子のプロモーター配列、または例えばSV40ラージT抗原プロモーターなど、サルウイルス40(SV40)のような腫瘍ウイルスの強力なプロモーター、ならびに他多数(例えば、Kim et al., 1990)である。そのような強力なプロモーターは、様々な細胞培養系で自律的に機能するため、細胞生物学者に好まれた。ウイルス複製に関して、感染細胞は、ウイルス機能によってウイルス複製機構へと形質転換される。
しかし、改良されたベクターワクチンに関して、上記の自律的な強力なプロモーターはいずれも選択肢として見られていない。特にCMV由来プロモーターは、組換えCAdV2ベクターワクチンにおける導入遺伝子発現の有効な再現可能な駆動因子ではなかった。
したがって、EHV−1 β−およびγ−遺伝子のもののような、ウイルス複製に関して高い活性を有するプロモーターを提供する必要がある。内部相同組換えのリスクが起こることなく、したがって遺伝的不安定性なく、1つのベクター分子に2回同一のDNA配列を使用することはできないため、本発明は、EHV−4の公表されたゲノム配列由来の新しい代替えのプロモーター配列を提供する(ウマヘルペスウイルス4株 NS80567、完全ゲノム、Accession AF030027、Version AF030027.1 GI:2605950、1998年5月21日)。EHV−1遺伝子との遺伝子の配列同一性は55〜84%の範囲内である。
本発明は2つの新しいプロモーター:p430およびp455を提供し、それらは細胞培養において、およびp455は、動物(ブタ)においてもrCAdV2複製の背景で機能的であることが示されている。ウイルス複製サイクル中の2つの新しいプロモーターの活性レベルは、in vitroでのプロモーター動態実験から推測されるように、非常に類似しているようである。
本発明によって提供された新しいプロモーター配列は、イヌアデノウイルス(CAdV)ベクター背景において効率的であることが示されている。
上記のように、CMV5プロモーター配列が、E3領域に位置する発現カセットに存在した場合、組換えCAdVのレスキューは達成されなかった。これは、発現カセットのサイズが観察された実験的なゲノムサイズ制限を超えなかったため、配列特異的であるようである。対照的に、p430およびp455などの本発明の新しいEHV−4由来プロモーター配列は、導入遺伝子発現を促進するだけでなく、ウイルスレスキューの重要なステップを妨げず、それ故に、先行技術のプロモーター配列を考えると有利である。
一般に、本発明は、ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターと作動可能に連結された少なくとも1つの異種DNAをコードする発現カセットを含む組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクターを提供する。
本発明は、ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターが、4pgG600(配列番号29)もしくは4pMCP600(配列番号30)またはその相補的なヌクレオチド配列またはその機能的断片もしくは機能的誘導体またはその相補的なヌクレオチド配列を含み、前記プロモーター配列が異種抗原の発現をもたらす、rCAdVベクターにさらに関する。
特定の態様では、機能的断片は、4pgG600(配列番号29)のトランケーション(truncation)またはその相補的なヌクレオチド配列であり、好ましくは配列同一性は、全長にわたって少なくとも72%である。
特定の態様では、機能的断片は、4pMCP600(配列番号30)のトランケーションまたはその相補的なヌクレオチド配列であり、好ましくは配列同一性は、全長にわたって少なくとも78%である(またはより高い)。
さらなる特定の態様では、rCAdVベクターは、4pgG600(配列番号29)を含むウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターを含む。
さらなる特定の態様では、rCAdVベクターは、4pMCP600(配列番号30)を含むウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターを含む。
さらなる特定の態様では、rCAdVベクターは、4pG430(配列番号31)を含むウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターを含む。
さらなる特定の態様では、rCAdVベクターは、gMCP455(配列番号32)を含むウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターを含む。
本発明のさらに別の実施形態では、rCAdVベクターは、目的のエピトープ、生物学的応答調節因子、増殖因子、認識配列、治療用遺伝子、および融合タンパク質からなる群から選択されるポリペプチドをコードする異種DNAを含む。
本発明の特定の態様では、異種DNAは、目的の抗原エピトープをコードする。
本発明のさらに別の実施形態では、目的の抗原エピトープは、イヌもしくはネコ病原体の抗原である。
本発明は、上記の実施形態のいずれかによる組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクター、および薬学的にまたは獣医学的に許容される、許容される担体または希釈剤を含む免疫原性またはワクチン組成物にさらに関する。
別の態様では、上記の実施形態のいずれかによる組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクターを含む免疫原性またはワクチン組成物は、経口、皮内、筋肉内または鼻腔内適用に好適である。
本発明は、上記の実施形態のいずれかによる組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクターを含むワクチンの免疫原性組成物の治療有効量を動物に投与するステップを含む、動物において病原体の感染によって引き起こされる臨床徴候もしくは疾患を低減もしくは予防する方法、または動物において病原体の感染を処置もしくは予防する方法で使用するための方法にさらに関する。
上記の実施形態の方法のいずれかによる特定の態様では、免疫原性組成物は2回用量として投与される。
上記の実施形態の方法のいずれかによる特定の態様では、免疫原性組成物は、経口、皮内、筋肉内または鼻腔内投与される。
上記の実施形態の方法のいずれかによる特定の態様では、免疫原性組成物は、同種および/または異種ウイルスチャレンジに対する防御をもたらす。
本発明は、上記の実施形態のいずれかによる組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクターを含む免疫原性組成物を動物に投与するステップを含む、動物において病原体によって引き起こされる臨床疾患に対する免疫性を前記動物に与える方法にさらに関し、これにより免疫原性組成物またはワクチンは、感染の臨床徴候を引き起こさないが、前記病原体の病原体型に対する免疫性を動物に与える免疫応答を誘導することができる。
上記の方法による本発明の特定の態様では、免疫原性組成物が1回投与され、または代わりに2回用量として投与される。
上記の方法による本発明の特定の態様では、免疫原性組成物は、経口、皮内、筋肉内または鼻腔内投与される。
上記の方法による本発明の特定の態様では、免疫原性組成物は、同種および/または異種ウイルスチャレンジに対する防御をもたらす。
本発明は、上記の実施形態の組換えイヌアデノウイルス2型(rCAdV2)を発現する真核生物の宿主細胞株にさらに関する。
さらに別の特定の態様では、宿主細胞株は、上記の実施形態の組換えイヌアデノウイルス2型(rCAdV2)を発現する原核生物の宿主細胞株である。
特に定義しない限り、本明細書で使用される全ての技術および科学用語は、出願時に本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。用語の意味および範囲は、明らかであるはずであるが、あらゆる潜在的な多義性がある場合には、本明細書で提供した定義は、任意の辞書の定義または外部の定義よりも優先される。さらに、文脈によって特に必要とされない限り、単数形の用語は複数を含み、複数形の用語は単数を含む。本明細書では、特に言及しない限り、「または(or)」の使用は「および/または(and/or)」を意味する。さらに、用語「含む(including)」ならびに「含む(includes)」および「含まれる(included)」など他の形態の使用は限定されない。本明細書で参照した全ての特許および刊行物は、参照により本明細書に組み込まれる。
用語「ベクター」は、当技術分野で公知のように、遺伝材料を宿主細胞に伝達するために使用されるポリヌクレオチド構築物、典型的にはプラスミドまたは細菌人工染色体、または弱毒生ウイルスベクターを指す。ベクターは、例えば、細菌、ウイルス、ファージ、細菌人工染色体、コスミド、またはプラスミドであってよい。本明細書で使用する場合、ベクターは、DNAまたはRNAのいずれかから構成されるまたはDNAまたはRNAのいずれかを含有することができる。いくつかの実施形態では、ベクターはDNAから構成される。いくつかの実施形態では、ベクターは感染性ウイルスである。そのようなウイルスベクターは、細胞培養でも宿主動物でもウイルスベクターの複製に機能を持たない外来遺伝子を有するように操作されたウイルスゲノムを含有する。本開示の特定の態様に従って、ベクターは、遺伝材料の単なる伝達、宿主細胞または生物のトランスフェクションのため、ワクチン、例えばDNAワクチンとしての使用のため、または遺伝子発現目的のためなど、様々な態様のために使用され得る。遺伝子発現は、遺伝子と呼ばれる特定のポリヌクレオチド配列によって導かれるように細胞におけるタンパク質の生合成を記載する用語である。特定の態様では、ベクターは、適切な環境に存在する場合に、ベクターが有する1つまたは複数の遺伝子によってコードされるタンパク質の発現を導くことができるベクターである「発現ベクター」であってよい。
ウイルスベクターは、任意の公知の生物のゲノムからの配列を組み込むことができる。配列は、それらの自然な形態に組み込まれることができ、または任意の方法で改変され、所望の活性を得ることができる。例えば、配列は、挿入、欠損または置換を含むことができる。さらに、配列は、目的の遺伝子の翻訳効率を高めて生きた生物におけるタンパク質発現を改善するように「コドン最適化」されてもよい。例えば、目的の遺伝子は、タンパク質のアミノ酸配列自体を変更することなく、特定のアミノ酸をコードするのに使用されるコドンを変更するために変異(またはde novo合成)されてもよい。稀なコドンが、宿主生物の遺伝子中のより豊富なコドンによって置き換えられてもよい。目的の遺伝子におけるコドンの最適化は、宿主細胞背景での遺伝子の機能性および/または発現を増加させる最良の方法となり得る。
好ましいウイルスベクターは、イヌアデノウイルスのCAdV2ベクターを含む。
用語「ウイルスベクター」および「ウイルス構築物」は交換可能に使用することができる。
用語「構築物」は、本明細書で使用する場合、人工的に生成されたプラスミド、BAC、または組換えウイルスなどの組換え核酸を指す。
用語「プラスミド」は、細菌宿主細胞内の細菌染色体とは独立して複製される細胞質DNAを指す。本発明の特定の態様では、用語「プラスミド」および/または「トランスファープラスミド」および/または「導入断片」は、例えばウイルスベクターへの挿入のための発現カセットの構築に有用な組換えDNA技術のエレメントを指す。別の特定の態様では、用語「プラスミド」は、DNAワクチン接種目的のために有用なプラスミドを特定するために使用され得る。
本明細書で使用される場合、用語「核酸」および「ポリヌクレオチド」は、交換可能であり任意の核酸を指す。
用語「核酸」および「ポリヌクレオチド」は、5つの生物学的に生じる塩基(アデニン、グアニン、チミン、シトシンおよびウラシル)以外の塩基から構成される核酸も特別に含む。
用語「遺伝子」、「目的の遺伝子」は、本明細書で使用する場合、同じ意味を有し、目的の産物をコードする任意の長さのポリヌクレオチド配列を指す。遺伝子は、コード配列の前(5’非コードまたは非翻訳配列)および後(3’非コードまたは非翻訳配列)に制御配列をさらに含んでよい。選択された配列は全長またはトランケート、融合、またはタグ化遺伝子であってよく、cDNA、ゲノムDNA、またはDNA断片であってよい。ポリペプチドまたはRNAをコードするゲノムDNAは、成熟メッセンジャーRNA(mRNA)からスプライシングされ、したがって、同じポリペプチドまたはRNAをコードするcDNAには存在しない、非コード領域(すなわち、イントロン)を含み得ることが通常理解される。それは、天然配列、すなわち自然発生的な形態であってよく、または変異され、または異なる起源由来の配列を含んでもよく、そうでなければ所望のように改変されてもよい。これらの改変は、選択された宿主細胞またはタグ付けにおけるコドン利用を最適化するコドン最適化を含む。さらに、それらは、例えば(潜在性の)スプライスドナー、アクセプター部位および枝分かれ点、ポリアデニル化シグナル、TATAボックス、chi部位、リボソーム進入部位、繰り返し配列、二次構造(例えば、ステムループ)、転写因子または他の制御因子の結合部位、制限酵素部位等のcis作用性部位の除去または付加を含み、限定はされないが、わずかな例を挙げることができる。選択された配列は、分泌、細胞質、核、膜結合または細胞表面ポリペプチドをコードすることができる。
「オープンリーディングフレーム」または「ORF」は、翻訳開始シグナルまたはATGもしくはAUGなどの開始コドン、および終止コドンを含み、ポリペプチド配列に潜在的に翻訳され得る、DNAまたはRNAのいずれかの核酸配列の長さを指す。
用語「転写」は、細胞でのmRNAの生合成を記載する。
発現、力価または生産性増加は、本発明に記載の異種ベクターを使用することによって得ることができる。これは、追加の選択可能マーカーとして、1つまたは複数の蛍光タンパク質(例えばGFP)または細胞表面マーカーを含有する組換え宿主細胞のFACSアシスト選択などの他の手法と組合せることができる。発現増加を得る他の方法、および使用することができる異なる方法の組合せも、例えばクロマチン構造(例えば、LCR、UCOE、EASE、アイソレーター、S/MARs、STARエレメント)の操作のためのcis活性エレメントの使用、(人工)転写因子の使用、内在性または異種および/または外来性遺伝子発現を上方制御するための天然または合成剤による細胞の処置、mRNAまたはタンパク質の安定性(半減期)の改善、mRNA翻訳の開始の改善、エピソーム性プラスミドの使用による遺伝子用量の増加(複製オリジンとしてウイルス配列の使用に基づく、例えばSV40、ポリオーマ、アデノウイルス、EBV、またはBPV)、DNAコンカテマーに基づく増幅促進配列またはin vitro増幅システムの使用に基づく。
「プロモーター活性」は、それぞれのプロモーターの調節下で転写されるmRNAの定量によって間接的に測定される。mRNAは、内因性の標準と比較して、RTqPCRによって定量される。
「転写制御エレメント」は、通常、発現される遺伝子配列の上流のプロモーター、転写開始および終結部位、およびポリアデニル化シグナルを含む。
用語「転写開始部位」は、転写一次産物、すなわちmRNA前駆体に組み込まれる最初の核酸に相当する構築物の核酸を指す。転写開始部位は、プロモーター配列とオーバーラップしてよい。
定義により、宿主細胞に挿入された全てのポリヌクレオチド配列または全ての遺伝子およびそれによりコードされるそれぞれのタンパク質またはRNAは、宿主細胞に対して、「異種、「異種配列」、「異種遺伝子」、「異種コード配列」、「導入遺伝子」または「異種タンパク質」と呼ばれる。これは、導入される配列または導入される遺伝子が、宿主細胞の内在性配列または内在性遺伝子と同一である場合でさえも適用する。抗原など目的の配列または遺伝子に関して本明細書で使用する場合、用語「異種」は、目的の前記配列または遺伝子、特に前記抗原は、その天然種の背景の外で発現されることを意味する。
用語「非天然型」は、この文脈において天然には生じない抗原などの目的の任意の配列または遺伝子、例えば異なる種由来の抗原などの目的のハイブリッド配列もしくは配列もしくは遺伝子、または人工的な変異、挿入、欠損等により天然の産物ではない、抗原などの目的の配列もしくは遺伝子を意味する。
したがって、用語「異種ベクター」は、異種または外来性ポリヌクレオチド配列を含むベクターを意味する。用語「組換えベクター」は、異種または組換えポリヌクレオチド配列を含むベクターを意味する。
用語「ウマ(equid)」または「ウマ(equine)」または「ウマ(equin)」は、ウマ、ロバ、およびシマウマを含み、好ましくはウマである、ウマ科を意味するまたはウマ科に属する。さらに、用語「ウマ(equid)」または「ウマ(equine)」または「ウマ(equin)」は、ウマ科のメンバーのハイブリッドも包含する(例えば、ラバ、ケツテイ等)。
「ヘルペスウイルス」または「ヘルペスウイルスベクター」は、ヘルペスウイルス目のヘルペスウイルス科の種を指す。
用語「ウマヘルペスウイルスベクター」または「ウマヘルペスウイルス」は、ウマに感染するヘルペスウイルス科のメンバーを意味する。これまでのところ、8つの異なる種のウマヘルペスウイルスが同定され、5つはアルファヘルペスウイルス亜科に属し、3つはガンマヘルペスウイルス科に属する。(http://www.ictvonline.org/virustaxonomy.asp Virus Taxonomy: 2015 Release EC 47, London, UK, July 2015; Email ratification 2016 (MSL #30)
用語「EHV−1」は、ヘルペスウイルス科のアルファヘルペスウイルス属のバリセロウイルス亜属のメンバー、ウマヘルペスウイルス1型を意味する。EHV−1の非限定的な参照配列は、例えば野生型EHV−1株ab4(Genbank受入番号AY665713.1)またはRacH(Hubert, P. H., Birkenmaier, S., Rziha, H.-J. and Osterrieder, N. (1996), Alterations in the Equine Herpesvirus Type-1 (EHV-1) Strain RacH During Attenuation. Journal of Veterinary Medicine, Series B, 43: 1-14.)であろう。
用語EHV−4は、ヘルペスウイルス科のアルファヘルペスウイルス属のバリセロウイルス亜属のメンバー、ウマヘルペスウイルス4型を意味する。
用語「CAdV」、「CAV」、「CAV−1」または「CAV−2」は、それぞれ、アデノウイルス科のマストアデノウイルス属のメンバー、イヌアデノウイルス1型または2型を意味する。しかしながら、より新しい分類学(http://www.ictvonline.org/virustaxonomy.asp Virus Taxonomy: 2015 Release EC 47, London, UK, July 2015; Email ratification 2016 (MSL #30)によると、用語イヌアデノウイルス(CAdV)は現在、CAV−2およびCAV−1の両方の種を包含する。
rCAdVベクターは、ウイルス学および分子生物学の分野の当業者に公知の標準的な方法によって作製することができる。しかし、CAdVゲノムの操作およびベクターの作製を促進するために、本発明は、CAdVゲノムをコードする核酸を含有する細菌シャトルベクター、1つの非限定的な例ではpBR322プラスミドも提供する。さらに、細菌人工染色体(「BAC」)も、細菌系でのCAdVの操作を促進することができる。
「免疫原性または免疫学的組成物」は、組成物に対する細胞または抗体媒介性免疫応答の宿主での免疫学的応答を引き出す少なくとも1つの抗原、またはその免疫原性部分を含む物質の組成物を指す。
本明細書で使用する用語「抗原」は、当技術分野で周知であり、免疫原性、すなわち免疫原である物質、ならびに免疫学的不応性、または免疫不応答、すなわち外来物質に対する体の防御機構による反応の欠如を誘導する物質を含む。本明細書で使用する場合、用語「抗原」は、エピトープを含有するまたは含む、全長タンパク質ならびにそのペプチド断片を意味することが意図される。
本明細書で使用する場合、「免疫原性組成物」は、例えば、本明細書に記載のように免疫学的応答を引き出すウイルス表面タンパク質など、ポリペプチドまたはタンパク質を指し得る。用語「免疫原性断片」または「免疫原性部分」は、1つまたは複数のエピトープを含み、したがって、本明細書に記載の免疫学的応答を引き出すタンパク質またはポリペプチドの断片またはトランケートおよび/または置換形態を指す。一般に、そのようなトランケートおよび/または置換形態、または断片は、全長タンパク質からの少なくとも6個の隣接するアミノ酸を含む。そのような断片は、当技術分野で周知のいくつかのエピトープマッピング技術を使用して同定され得る。例えば、Epitope Mapping Protocols in Methods in Molecular Biology, Vol. 66 (Glenn E. Morris, Ed., 1996) Humana Press, Totowa, New Jersey参照。例えば、線状エピトープは、タンパク質分子の部分に相当する多数のペプチドを固体支持体上で同時合成し、ペプチドが依然として支持体に結合しているうちに、ペプチドを抗体と反応させることによって決定され得る。そのような技術は公知であり、当技術分野で記載されている。例えば、米国特許第4,708,871号;Geysen et al. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81:3998-4002;およびGeysen et al. (1986) Molec. Immunol. 23:709-715参照。同様に、構造エピトープは、例えば、X線結晶解析および二次元核磁気共鳴によるなどアミノ酸の空間的な構造を決定することにより容易に同定される。上記のEpitope Mapping Protocolsを参照。合成抗原も、例えばポリエピトープ、隣接エピトープ、および他の組換えまたは合成由来の抗原の定義内に含まれる。例えば、Bergmann et al. (1993) Eur. J. Immunol. 23:2777-2781;Bergmann et al. (1996), J. Immunol. 157:3242-3249;Suhrbier, A. (1997), Immunol. and Cell Biol. 75:402-408;およびGardner et al., (1998) 12th World AIDS Conference, Geneva, Switzerland, June 28-July 3, 1998参照。(その教示および内容は全て本明細書に参照により組み込まれる。)
イヌ以外の動物への投与のために、組換えCAdVは、増殖性複製を伴わない発現という利点を提供する。イヌアデノウイルスの複製はイヌ種に限られ、ヒトを含むイヌ以外のいずれの種においても増殖性感染を引き起こすCAdV2の文献での報告はない。この宿主制限は、他の種へのウイルスの伝播に対する固有の安全バリアを提供し、いくつもの種において獣医学的用途でのCAdV2ベースのワクチンベクターの使用を魅力的な提案にしている。したがって、本発明は、宿主に組換えCAdV2ウイルスまたはベクターを投与または接種してタンパク質を増幅または発現させるための方法を包含する。これにより宿主はイヌではなく、または組換えウイルスもしくはベクターの天然の宿主ではなく、ならびに/または増殖性複製を伴わないおよび/もしくは複製サイクルが限られた形で発現が生じる。
用語「DNAワクチン接種」または「ポリヌクレオチドワクチン接種」は、好適な医薬組成物を使用する遺伝材料の直接接種を意味する。
本明細書で使用される場合、用語「不活性化」、「死菌」または「KV」は交換可能に使用される。
用語「生ワクチン」は、生きた生物または複製可能なウイルスもしくはウイルスベクターのいずれかを含むワクチンを指す。
プライムブーストは、少なくとも1つの共通の抗原および/またはそのバリアントもしくは断片を用いる少なくとも1回のプライム投与および少なくとも1回のブースト投与を含む。プライム投与に使用されるワクチンは、後のブースターワクチンとして使用されるものと実際は異なっていてもよい。プライム投与およびブースト投与は両方とも、本発明の組換えCAdVを含んでもよいことがさらに留意される。プライム投与は、1回または複数回の投与を含んでもよい。同様に、ブースト投与は、1回または複数回の投与を含んでもよい。
1つの実施形態では、キットは、一方が本発明によるプライムワクチン接種のためのプラスミドベースのワクチンを含有し、他方のバイアルが本発明によるブーストワクチン接種のための組換えウイルスベクターベースのワクチンを含有する、2つのバイアルを含んでもよい。
「希釈剤」としては、水、生理食塩水、デキストロース、エタノール、グリセロール等を挙げることができる。等張剤としては、とりわけ、塩化ナトリウム、デキストロース、マンニトール、ソルビトール、およびラクトースを挙げることができる。安定剤としては、とりわけ、アルブミンおよびエチレンジアミン四酢酸のアルカリ塩が挙げられる。
「弱毒化」は、病原体の毒性を低下させることを意味する。本発明では、「弱毒化」は「非病原性」と同義である。本発明では、弱毒化ウイルスは、感染の臨床徴候を引き起こさないが標的動物における免疫応答を誘導することはできるように毒性を低下させたものであるが、弱毒化ウイルス、特に請求項のようにCAdVウイルスベクターを感染させた動物における臨床徴候の発生率または重症度が、弱毒化していないウイルスまたは病原体を感染させ、弱毒化ウイルスを受けていない「対照群」の動物と比較して低下することも意味し得る。この場合、用語「低下する/低下した」は、上記で定義された対照群と比較して少なくとも10%、好ましくは25%、さらにより好ましくは50%、なおより好ましくは60%、さらにより好ましくは70%、なおより好ましくは80%、さらにより好ましくは90%、および最も好ましくは100%の低下を意味する。したがって、例えば請求項のように弱毒化ウイルスベクターなどの、弱毒化した非病原性病原体、特に請求項のようにCAdVウイルスベクターが、改変生ワクチン(MLV)または改変生免疫原性組成物の生成に好適である。
本明細書では、「有効用量」は、限定はされないが、抗原が投与される動物における臨床症状の減少をもたらす免疫応答を引き出す、または引き出すことができる抗原の量を意味する。
本明細書では、用語「防御の増大」は、限定はされないが、ワクチン接種された対象の群における感染因子による感染に付随する1つまたは複数の臨床症状が、ワクチン接種されていない対象の対照群に対して統計的に優位に減少することを意味する。用語「統計的に有意な臨床症状の減少」は、限定はされないが、感染因子によるチャレンジ後に、ワクチン接種された対象の群における少なくとも1つの臨床症状の発生頻度が、ワクチン接種されていない対照群よりも少なくとも10%、好ましくは20%、より好ましくは30%、さらにより好ましくは50%、およびさらにより好ましくは70%低いことを意味する。
「長期にわたる防御」は、少なくとも3週間、より好ましくは少なくとも3ヵ月、なおより好ましくは少なくとも6ヵ月にわたって持続する「改善された有効性」を指す。家畜の場合、長期にわたる防御は、動物が食肉用に販売される平均年齢まで持続するものとされることが最も好ましい。
本明細書で使用する場合、用語「ウイルス血症」は、動物、特に哺乳動物、トリ、または昆虫の血流中でウイルス粒子が複製および/または循環する状態として特に理解される。
用語「ワクチン接種(vaccination)」または「ワクチン接種すること(vaccinating)」またはその変形は、本明細書で使用する場合、限定はされないが、動物に投与されると、動物における免疫応答を直接または間接的に引き出すまたは引き出すことができる本発明の免疫原性組成物の投与を含むプロセスを意味する。
「死亡率」とは、本発明の文脈では、感染によって引き起こされる死亡を指し、感染が、苦痛を予防し、その生涯に人道的な終わりをもたらすために動物を安楽死させるほど重症である状況を含む。
組成物を投与する対象は、限定はされないが、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、家禽(例えば、ニワトリ)、ヤギ、ネコ、イヌ、ハムスター、マウスおよびラット、を含む動物であることが好ましく、最も好ましくは、哺乳動物はブタである。
本発明の製剤は、有効な免疫量の1つまたは複数の免疫原性組成物および生理学的に許容されるビヒクルを含む。ワクチンは、有効な免疫量の1つまたは複数の免疫原性組成物および生理学的に許容されるビヒクルを含む。製剤は投与の形式に適したものであるべきである。
免疫原性組成物は、所望であれば、微量の湿潤剤または乳化剤、またはpH緩衝剤も含有してよい。免疫原性組成物は、液剤、懸濁剤、エマルジョン、錠剤、ピル、カプセル剤、持続放出製剤、または散剤であってよい。経口製剤としては、例えば、医薬品グレードのマンニトール、ラクトース、でんぷん、ステアリン酸マグネシウム、サッカリンナトリウム、セルロース、炭酸マグネシウムなどの標準の担体を挙げることができる。
以下の図は本明細書の一部を形成し、本発明の特定の態様をさらに実証するために含まれる。本発明は、これらの図の1つまたは複数を本明細書で提示されている特定の実施形態の詳細な説明と組合せて参照することによってよりよく理解することができる。
以下の配列は、本発明において本明細書に詳細に記載され、開示される。
CAdVウイルス単離
CAdV2ウイルスは、喉頭気管炎を有するイヌ由来の咽頭スワブから最初に単離し、American Type Culture Collection(ATCC)MDCK細胞株CCL−34の第1継代として得た。ウイルスを取得後8回継代し、第8継代をアリコートし、マスターシードウイルスとして指定した。ストックCAdV−2マスターシードウイルスは、Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc.において参照CAdV−2、MSV Lot #001−dil、F:11−24−98下で作製した。ストックCAdV−2マスターシードは、Toronto株(Genbank受入番号U77082.1)と密接に関連している。CAdV−2は、イヌワクチンとしてBoehringer Ingelheim Vetmedica, Inc.から市販されている。
完全な感染性クローンDNAの提示のために、線状化感染性クローンDNA、図1をトランスフェクトしたMadine Darbyイヌ腎臓(MDCK)細胞からCAdV−2をレスキューした。
e3欠失挿入CAdVクローンの生成
CAdV−2は、動物用のベクターウイルスワクチンとして成功裡に利用されている。CAdV−2のE3ドメインは必須ではないことが公知であり(E3オープンリーディングフレーム(ORF)はいずれも、組織培養でのウイルス複製に必要とされない(Fisher et al. 2002))、異種DNAの挿入のための論理的標的となる。
導入遺伝子がE3ドメインに局在化される有効なCAdV−2ベースのワクチンの例としては、イヌジステンパーウイルス(Fisher et al. 2002)、ネコ汎白血球減少症ウイルス(Yang et al. 2008)、およびネコの狂犬病(Hu et al., 2007)、イヌ(Hu et al., 2006)、マウス(Li et al., 2006)、アライグマ、ブタ(Lui et al., 2008)、スカンク(Henderson et al., 2009)およびヒツジ(Bouet-Cararo et al., 2011)が挙げられる。
図2は、CAdV−2のE3領域の構成の概略図である。4146bp NruI(bp 23932)/SalI(bp 28078)制限エンドヌクレアーゼ断片が、H−Aタンパク質VIII、ORF1、ORF2、およびU Exonとして示されたオープンリーディングフレーム(ORF)とともに図示される。選択制限エンドヌクレアーゼ部位(NruI、DraIII、SspIおよびSalI)の位置がこのDNA断片について示され、ナンバリングは、密接に関連するCAdV−2のToronto株(Genbank受入番号 U77082.1)と比較している。
故に、5’および3’E3隣接DNAがE3 ORF1の最初の183bpおよびORF2の最後の47bpを含有するように、トランスファープラスミドをデザインし直した。これは、rCAdV−2レスキューに十分であることが見出された。
rCAdV−2感染性クローンDNAの生成のための相同組換え
Chartierら(1996)およびKremerら(2000)による論文に記載された方法に基づく、線状化CAdV−2感染性クローンDNAとE3標的化CAdV−2トランスファープラスミド/断片の間の、Rec+ BJ5183大腸菌における相同組換えを、導入遺伝子発現カセットがE3ドメインに局在化されたrCAdV−2の生成に使用した。図3に図示されるように、E3ドメインにユニーク制限部位を含有する感染性クローンは、a)E3領域に対する導入遺伝子発現カセットを標的とする、およびb)E3の選んだ部分を効果的に欠失させるように、導入遺伝子発現カセットの5’および3’両方に約500bpのCAdV−2隣接DNAを含有する導入断片と再結合する。
図3は、E3残りの部分の間に位置する上述のE3欠失およびユニーク制限部位(多重クローニング部位のMCSと命名される)を包含する、NruI/SalI線状化感染性クローンDNA(天然のCAdV−2配列)とE3標的化CAdV−2導入断片の間の相同組換えの概略図である。感染性クローンDNAは、左右逆方向末端反復、それぞれLITRおよびRITRに隣接されている。
ΔE3 rCAdV−2感染性クローンDNAの生成
E3欠失rCAdV−2:ΔE3AおよびΔE3B
オーバーラップ伸長PCRを使用して、選んだE3欠失ならびにBJ5183大腸菌における標的化相同組換え(HR)を促進するための約500塩基の5’および3’隣接配列をコードする、CAdV−2E3標的化導入断片を生成した(概略図、図4および図5参照)。図5AおよびBに見られるように、「A」欠失(ΔE3A)では、E3 ORF1の最初の186ヌクレオチドおよびORF2の最後の301ヌクレオチドを除く全てが欠失されたが、E3「B」欠失(ΔE3B)については、E3 ORF1の186ヌクレオチドおよびORF2の83ヌクレオチドが残っている(5’および3’隣接については、配列番号1および配列番号2参照)。
CMVプロモーターを含むE3欠失/挿入発現カセットの構築
HCMV−IEおよびCMV5プロモーターの生成:
ヒトサイトメガロウイルス前初期プロモーター(hCMV−IE)(配列番号3)の3’末端の増幅を、プライマー対hCMV−IE 5’F(配列番号5)(5’−TTATTAATAGTAATCAATTACGGGG−3’)/hCMV−IE 3’R(配列番号6)(5’−GCCACCGTACACGCCTACCGCCC−3’)およびテンプレートとしてのBAC DNA EHV−gG(10ng)を用いて、以前に記載したようにPCRによって実施した。得られたDNA断片を、その後、pCR(商標)BluntII TOPO(登録商標)ベクター(ThermoFisher Scientific)にクローニングし、制限酵素Kpn−1およびBamH−1による消化によって切り出し、CAdVトランスファープラスミドのさらなる操作および構築のために、pUC18ベースのプラスミドシャトルベクターにさらにクローニングした。ヒトCMV5プロモーター(配列番号4)を、それぞれ5’−3’Spe−1およびBamH−1制限部位を有するGenScript(登録商標)遺伝子合成産物を用いて合成し、CAdVトランスファープラスミドのさらなる操作および構築のために、pUC57大腸菌シャトルベクターにクローニングした。
文献での報告は、CMVieプロモーターと対比してCMV5プロモーターによって駆動される哺乳動物導入遺伝子発現カセットからのより強いタンパク質発現を示している。CMV5プロモーターは、CMVie転写開始部位の下流に、スプライスドナー部位およびアクセプター部位に挟まれたアデノウイルス主要後期エンハンサーとともにヒトアデノウイルス5型(HuAd5)アデノウイルストリパータイトリーダーをコードする約560bpのDNAを含有する点で、CMVieプロモーターとは異なる(Massie et al., 1995, Improved adenovirus vector provides herpes simplex virus ribonucleotide reductase R1 and R2 subunits very efficiently. Nature Biotechnology 13:602-608)。CMV5プロモーターの使用は、293個の細胞でタンパク質発現を実質的に増加させることが示された(Massie et al., 1998, Inducible overexpression of a toxic protein by an adenovirus vector with a tetracycline-regulatable expression cassette. Journal of Virology 72 (3):2289-2296)。
CMV5プロモーター配列がrCAdV−2レスキューを妨げている可能性があるかどうかを直接検討するために、CMV5プロモーター、多重クローニング部位(MCS)およびサルウイルス40(SV40)ポリアデニル化(ポリA)配列を含有するDNA断片を、CAdV−2ゲノムのE3領域に組み込んだ。CMV5をCMVie(およびMCS)から区別するDNAの約560bpを除く、ΔE3BにクローニングしたDNAの成分の全てが、以前にレスキューされたrCAdV−2ウイルスの一部である。レスキューの試みは成功せず、CMV5プロモーターがrCAdV−2のレスキューを妨げることを強く示唆した。この結論を支持するために、相同組換えを使用して、この感染性クローン中のCMV5 MCS SV40ポリA領域を「レスキュー可能な」CMVieベースの発現カセットと置き換える、対となる実験をデザインした。
増強緑色蛍光タンパク質(EGFP、Clontech)発現カセット(2.6kb(配列番号7、CMVie EGFP)を有するrCAdV−2を、ウイルスレスキューの評価を促進し、選んだ細胞株および種における向性をin vivoで評価するために生成した。簡単には、CAdV−2ΔE3B標的化CMVie EGFP導入断片(ORF1(5’)の183位で終わりCAdV−2E3 ORF2(3’)の82位で始まる約500bp CAdV−2DNAに隣接された、CMVie駆動EGFP ORFとこれに続くSV40ポリアデニル化配列)を相同組換えに使用して、rCAdV−2ΔE3B/CMVie EGFPを生成した。成功したHRイベントを、約35kbのDNA種の検出によって評価した。PCRコロニースクリーニングを実施して、導入遺伝子発現カセットを含有するクローンを同定した(フォワードP 配列番号8、リバースP 配列番号9)。陽性クローンをアガロースゲル電気泳動によって可視化し、陽性クローンはEFG導入遺伝子カセットに対応する約0.7kb PCR産物を有した。さらに、適切な導入遺伝子挿入および配列を、ILLUMINA(登録商標)MiSeq Sequencer、NextEr_XTライブラリー調製方法、ならびにNexGeneソフトウェア(Softgenetic、バージョン2.3)およびSEQUENCER(登録商標)ソフトウェア(Genecodes、バージョン5.1)を用いた配列分析によって確認した。
CMVIE EGFP SV40ポリA導入遺伝子発現カセットは、CAdV2のΔE3Bドメインに成功裡にクローニングされた。組換えウイルスは成功裡にレスキューされ、EGFPは感染後の蛍光顕微鏡分析によって検出することができた。
CMV5プロモーターはrCAdV−2レスキューを阻害するという結論を支持するために(上記の「導入遺伝子発現のためのCMV5プロモーターの使用」セクション参照)、相同組換えを使用して、MCS−1感染性クローン中のCMV5 MCS SV40ポリA領域を「レスキュー可能な」CMVieベースの発現カセットと置き換える、対となる実験を行った。簡単には、上記のCAdV−2E3標的化CMVie EGFP導入遺伝子導入断片を相同組換えに使用して、感染性クローンMCS−1−5(MCS−1−5はCMV5プロモーター、小さな多重クローニング部位(MCS)およびSV40ポリアデニル化配列を含有する)からΔE3B rCAdV−2を生成した。MCS−1−5に由来する精製した約2.6Kb EGFP導入断片および線状化rCAV−2感染性クローンDNAを、電気穿孔によりBJ5183大腸菌細胞に同時形質転換し、次いで50mg/mLカルベニシリンを含むLB寒天プレートで選択した。PCRコロニースクリーニングを実施して、導入遺伝子発現カセットを含有するクローンを同定した。成功した相同組換えは、スーパーコイルDNAとして、0.7%アガロースゲルで23.1KbマーカーDNA種とともに流れる、または23.1KbマーカーDNA種より幾分速く流れる約35KbのDNA種をもたらす。陽性クローンをアガロースゲル電気泳動によって可視化した(図4)。感染性クローンDNAのCAV−2 MCS−1−5骨格中のCMVie EGFP SV40ポリA発現カセットの概略図を、図8に図示する。
イヌパルボウイルス(CPV)VP2遺伝子を有するrCAdV−2を生成した。簡単には、上記と同様に、CMVie駆動CPV VP2 ORF(配列番号10)を含有するCAdV−2ΔE3標的化導入断片を相同組換えに使用して、VP2発現カセットを含有するΔE3B rCAdV−2を生成した(図9参照)。成功した導入遺伝子組み込みを含有するクローンをPCRスクリーニングによって検出し、1.7kb PCR 産物をアガロースゲル電気泳動によって可視化した。適切な導入遺伝子挿入および配列を、ILLUMINA(登録商標)MiSeq Sequencer、NextEr_XTライブラリー調製方法、ならびにNexGeneソフトウェア(Softgenetic、バージョン2.3)およびSEQUENCER(登録商標)ソフトウェア(Genecodes、バージョン5.1)を用いた配列分析によって確認した。
したがって、CMVIE CPV VP2(n)SV40ポリA導入遺伝子発現カセットは、CAdV2のΔE3Bドメインに成功裡にクローニングされ、組換えウイルスは成功裡にレスキューされ、VP2配列の存在は確認されたが、VP2タンパク質発現は検出できなかった。
CAdV−2E3標的化CMVie CPV VP2コドン最適化(co)導入遺伝子導入断片(ORF1(5’)の183位で終わり、CAdV−2E3 ORF2(3’)の82位で始まる約500bp CAdV−2DNAに隣接された、CMVie駆動CPV VP2 ORF(co)とこれに続くウシ成長ホルモン(BGH)ポリアデニル化配列))(配列番号23)をオーバーラップ伸長PCRによって生成し、アーカイブおよび増幅のためにTOPOベクターにクローニングした。構築物を相同組換えに使用してΔE3B rCAdV−2を生成した。
成功した導入遺伝子組み込みを含有するクローンをPCRスクリーニングによって検出し、2.3kb PCR産物をアガロースゲル電気泳動によって可視化した。適切な導入遺伝子挿入および配列を、Sequencer、NextEr_XTライブラリー調製方法、ならびにNexGeneソフトウェア(Softgenetic、バージョン2.3)およびSEQUENCER(登録商標)ソフトウェア(Genecodes、バージョン5.1)を用いた配列分析によって確認した。
簡単には、ORF1(5’)の183位で終わり、CAdV−2E3 ORF2(3’)の82位で始まる約500bp CAdV−2DNAに隣接された、CMVie駆動CPVウシ呼吸器合胞体ウイルス(BRSV)融合(F)タンパクORFとこれに続くBGHポリアデニル化配列を含有するCAdV−2E3標的化導入断片を相同組換えに使用して、ΔE3B rCAdV−2を生成した(配列番号27)。BRSV F遺伝子の天然(n)およびコドン最適化(co)バージョンの両方を、CAdV−2ベクターバックグラウンドにクローニングし、導入遺伝子の両方のバージョンを有するウイルスを成功裡にレスキューした。しかし、BRSV F(co)遺伝子のみを下流の適用に使用した。
感染細胞によるBRSV Fの発現を、フローサイトメトリー分析によって確認した(図11参照)。
簡単には、ORF1(5’)の183位で終わり、CAdV−2E3 ORF2(3’)の82位で始まる約500bp CAdV−2DNAに隣接された、CMVie駆動パスツール株狂犬病糖タンパク質(RabGP)ORFとこれに続くBGHポリアデニル化配列を含有するCAdV−2E3標的化導入断片を相同組換えに使用して、ΔE3B rCAdV−2を生成した(配列番号25)(参照図13)。天然のパスツール狂犬病G遺伝子を、アライグマポックスベースの狂犬病ワクチン(rRCNV狂犬病G2ワクチン)、Lot #D015−054−)からPCR増幅した。増幅RabGP DNAの予測サイズは約1.6Kbである。
PmeI消化HRクローンDNAを、LIPOFECTAMINE(登録商標)2000 CDを用いてE1B−MDCK細胞にトランスフェクトした。rCAdV−2ΔE3B/CMVie RabGP感染性クローンを、図14に示されたCAdV−2IFAによって示されるように、トランスフェクトE1B−MDCK細胞から成功裡にレスキューし、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)に直接コンジュゲートされた抗CAdV−2抗体を用いたrCAV−2 RabGP P2ウイルス感染EIB-MDCK細胞のCAdV−2IFAは、抗RabGおよびCAdV−2免疫蛍光(パネルBおよびC、感染後48および72時間)の両方によるrCAdV−2レスキューを確認する。
表2にまとめられているように、トランスフェクトMDCKまたはE1B−MDCK細胞からのrCAdV−2のレスキューを促進しなかった多くのΔE3Bベースの感染性クローンが生成された。これらには、CPV VP2、およびCMV5プロモーターによって駆動される導入遺伝子発現カセットを含有する狂犬病G、ヌクレオチド配列がコドン最適化された狂犬病糖タンパク質Gを含有するクローン(SAD P5/88株との76%同一性、およびクローンs containing the hMGFP(緑色)(Promega)およびMCherry(赤色)(Clontech)蛍光タンパク質レポーター構築物(データ不図示)が含まれる。
EHV4プロモーターを有する発現カセット
新しいウマ由来プロモーターの同定および構築:
ウマヘルペスウイルス4型(EHV4)由来の新規の異種のウマプロモーターを同定および単離した。2つのプロモーター:(1)糖タンパク質G(gG)をコードするORF70の600bp EHV−4 gGプロモーター(4pgG600)(配列番号29)、および(2)主キャプシドタンパク質(MCP)をコードするORF42の600塩基対EHV−4 MCPプロモーター(4pMCP600)(配列番号30)が対象となった。糖タンパク質G遺伝子(orf70)は、複製サイクルの初期および後期に活性である(Colle et al. 1995、Drummer et al. 1998)。主キャプシドタンパク質は、ビリオンの最も豊富な構成成分の1つであり、新しく合成されたウイルスDNAのパッケージングの準備ができるとすぐに細胞核でのキャプシドのアセンブリーに必要とされる。したがって、そのプロモーターは、ウイルス複製サイクルの初期および後期に活性であると予測される。CAdV骨格のサイズ制限を気にして、両方のEHV−4プロモーター配列をそれらの元々の長さのおよそ75%にトランケートした。特に、600bp 4pgG600プロモーターは、430bpにトランケートしてプロモーター断片p430(配列番号31)を、600bp 4pMCP600プロモーターは、455bpにトランケートしてプロモーター断片p455(配列番号32)を生成した。
EHV−4プロモーター断片gG430およびMCP455を、以下のオリゴヌクレオチド対、すなわち、それぞれ
gG430 F:TTTAAAGGTACCTCTATTTGAGGACCCGCCGAGTACC(配列番号33);
gG430 R:AAATTTGGATCCAACTGCAGCTTATCACAGCTTTACAGGTGG(配列番号34)
MCP455 F:TTTAAAGGTACCACTGGTGGTAGCATATACTACCTTTATTTATACGC(配列番号35);
MCP455 R:AAATTTGGATCCGATCCTATGGTAGCGGTAAAACACCG(配列番号36)を用いて勾配PCR増幅した。
ΔE3Bにおける成功した組み込みおよびrCAV−2のレスキューに使用した、以前に調製したCAdV−2トランスファープラスミド(上記に詳述した)を、CMVieプロモーターとEHV−4プロモーターとのBamHI/KpnIベースの交換によってCPV VP2トランスファープラスミドを含有するEHV−4プロモーターのベースとして使用した。
上記の2つのVP2配列を含有する精製した約3.5Kb PmeI EHV−4 P CPV VP2(co)導入断片、および線状化rCAV−2感染性クローンDNAを、相同組換えのために電気穿孔によりBJ5183 大腸菌細胞に同時形質転換した。インタクトなクローンを50μg/mLアンピシリンを含むLB寒天プレートで選択した。適切な組み込みサイズおよび配向を有するクローンをPCRスクリーニングによって同定し、選択し、拡大させた。
図17に見られるように、VP2タンパク質は上清で認識することができ、それ故に、免疫原性に必要なコンフォメーションにあると予測される。重要なことに、上記のように組換えCAdV−2のレスキューは、導入遺伝子がCMV5プロモーター配列によって駆動されるクローンでは達成されなかった。したがって、本発明の新しいEHV−4由来プロモーター配列、例えばp430およびp455は、導入遺伝子の発現を促進するだけでなく、ウイルスレスキューの重要なステップも支持する。
第2のCAdV−2構築物は、本発明の新しいEHV−4由来p455プロモーターを使用して生成された。感染細胞による発現が従来のCMVieプロモーターを使用して観察されなかったため、rCAdV−2 RabG(n)が選択された。
この実験の目的は、rCAdV−2 p455 RabG(n)−感染AI−ST 2015細胞によるEHV−4プロモーター駆動RabGタンパク質発現の測定によって、第2の導入遺伝子、RabG(膜タンパク質)を有するrCAdV−2に関して新しいEHV−4プロモーターの活性を確認することであった。
精製した約3.3Kb PmeI EHV−4 P RabG(n)導入断片および線状化rCAV−2感染性クローンDNAを、相同組換えのために電気穿孔によりBJ5183大腸菌細胞に同時形質転換した。インタクトなクローンを50μg/mLカルベニシリンを含むLB寒天プレートで選択した。PCRコロニースクリーニングを実施して、EHV−4 pG430/RabG(n)(配列番号42)およびEHV−4 p455/RabG(n)(配列番号43)クローンを同定した。クローンをRabG DNAに特異的なプライマーでスクリーニングし、アガロースゲル電気泳動によって可視化した。予測されたDNAは1501bpである。
rCAdV−CMV/CPV VP2を含む医薬組成物(ワクチン)の調製:
イヌパルボウイルス(CPV)は、毒性、宿主、および環境因子によって高い罹患率および死亡率の原因となり得る高度に伝染性のウイルスである。過去30年にわたって、MLVおよび死滅ウイルスワクチンを利用する、イヌのための有効なワクチンプログラムの使用は、死亡率を大幅に低下させた。CPVは、キャプシドを形成する2つの構造タンパク質(VP1およびVP2)を有する非エンベロープ一本鎖DNAウイルスである。VP2は、ウイルス病原性および宿主免疫応答と関係していることが公知であり、したがって、組換えCAdV2系における組み込みおよび発現のための本発明者らの最適な標的である。
この試験では、CAdV−CPV VP2ベクターワクチンがCPVチャレンジに対して防御を提供するかを決定するために、rCAV2−CPV VP2を3週間空けた2回投与レジメンで6〜7週齢の子犬に投与した。現在、MLVワクチンがCPVおよびICHに対する防御のゴールドスタンダードであるため、試験群を、CPV、CDV、およびCAdV2を含有するMLVワクチンコンボの、3週間空けた2回投与レジメンを投与した6〜7週齢の子犬と比較した。この群を陽性対照群とみなした。第3の群は、チャレンジ対照としてPBSの3週間空けた2回投与レジメンを投与した。有効性を評価するために、イヌを2回目のワクチン接種のおよそ3週間後にCPV−2bでチャレンジした。
試験ワクチンを、3週間空けた2回投与レジメンで与えられる1ml皮下用量として、6週2日齢〜7週2日齢の12匹の健康なCAV2およびCPV血清陰性イヌに投与した。12匹を以下の通り2つの試験群に分けた:群1 − rCAV2−CPV VP2@8.0log/ml;群2 − MLV混合(CAV2、CDV、CPV)。
リン酸緩衝食塩水(PBS)を、3週間空けた2回投与レジメンで与えられる1ml皮下用量として、6週2日齢〜7週2日齢の6匹の健康なCAV2およびCPV血清陰性イヌの群に投与した。この群は群3とみなされ、試験のチャレンジ対照としての役割を果たした。群1〜3の全ての動物を、22DPV2に毒性CPV−2bで口と鼻にチャレンジした。チャレンジ後の臨床症例データ(臨床徴候、発熱、リンパ球減少症、白血球減少症および糞便中のCPVの検出)を分析した。
rCAV2−CPV VP2組織培養ストックを、以下に述べる目標用量まで0.01M PBSで希釈した。アジュバントは使用しなかった。MLV陽性対照を製剤化し、SGGK安定剤とともに凍結乾燥した。コンボ中の各抗原は、SOLOJEC(登録商標)製品ラインの最小免疫量より高かった。ワクチンの目標投与量は、以下の通りであった:
チャレンジ当日、凍結CPV−2bチャレンジ材料の3つのバイアルを、36±2℃の水槽で手でバイアルを撹拌して急速解凍した。材料を次いで、細胞培養培地に所望の濃度まで1:10希釈した。チャレンジ接種材料は、調製およびチャレンジ手順の間中常に氷上に残っていた。
ワクチン抗原滴定:CAV2−CPV VP2
簡単には、ワクチンの10倍段階希釈物を作成した。各希釈物を、Madin−Darbyイヌ腎臓(MDCK)細胞を2.0×105細胞/mlで播種した96ウェルプレート中5ウェルの各々に、1ウェル当たり100マイクロリットルで添加した。5回の再現をワクチンごとに実施した。プレートを36±1°Cおよび5±0.5% CO2、4±1日間インキュベートした。インキュベーション期間後、プレートを固定し、ベクターのみを染色し、読み取った。力価を、Reed and Muench方法を用いて50%エンドポイントについて計算した。
簡単には、ワクチン10倍段階希釈物を作成した。各希釈物を、適切な濃度の細胞(CPV − 2×105細胞/mlのMDCK、CDV − 2×105細胞/mlのVERO、CAV2 − 2×105細胞/mlのMDCK)を播種した96ウェルプレート中5ウェルの各々に、1ウェル当たり100マイクロリットルで添加した。5回の再現を抗原分画ごとに実施した。プレートを36±1°Cおよび5±0.5%CO2、3〜6日間インキュベートした。インキュベーション期間後、プレートを固定し、直接FAコンジュゲートで染色し、読み取った。力価を、Reed and Muench方法を用いて50%エンドポイントについて計算した。
各イヌからの最大10mLの全血を、血清について0 DPV1に開始して毎週採取した。特定の時点には、以下が含まれた:0DPV1、7DPV1、14DPV1、21DPV1/0DPV2、7DPV2、および14DPV2。血液を凝固させ、1,000〜1,300×gで遠心分離して血清を分離し、少なくとも2アリコートに分注した。血清は、抗体力価の評価まで−20℃以下で保管した。
血清学的分析は、血清中和(SN)アッセイを用いて実施した。SNアッセイを使用してCAV2、CPV−2b、およびCPV−2cに対する血清抗体力価を測定した。
CPV−2b血清学的検査のために、簡単には、加熱不活性化血清の段階希釈物を等容量のウイルス懸濁液(50〜300 FAID50)と混合した。血清−ウイルス混合物を36±1℃で1時間インキュベートした。イヌ腎臓(DKFD−00)細胞(0.1ml/ウェルで2×105細胞)を、次いで96ウェルマイクロタイタープレートの全てのウェルに添加した。プレートを加湿5+0.5%CO2インキュベーターで6±1日間、36±1℃でインキュベートした。プレートを氷冷アセトンで15±5分間固定し、ウイルスを特異的免疫蛍光によって検出した。免疫蛍光によるウイルスの検出がないことは、SN抗体の存在を示した。SN抗体力価の決定のために、50%中和エンドポイントをReed and Muench方法を用いて計算した。
CAdV2−CPV VP2群は、MLV群と比較して7DPV1にはるかに強力なCAdV2抗体応答を示したが、14DPV1までにはこれらの群のGMT値は類似していた。両群の抗体力価は21DPV1までに漸減し、この時点で動物を追加免疫した。追加免疫後、両群の抗体レベルは急上昇し、次いで徐々に安定した。CAdV2−CPV VP2群はMLV群より高い力価で安定した。陰性対照群は、試験の過程を通じてCAdV2抗体陰性のままであった。
全ての動物を観察し、直腸温を−2、−1および0DPCにベースラインを小数第2位で四捨五入した度数(華氏)について毎日測定した。チャレンジ後、動物を最大14日間、毎日モニタリングし、直腸温および臨床徴候の観察値を測定した。動物ケージは、その日の観察が終了するまで掃除しなかった。
CPVの臨床徴候には、限定はされないが、以下が含まれた:(1)血便−通常、下痢と関連する少なくとも10%の血液を含有する特異的糞便および/または粘液;糞便は典型的には暗赤色色であり、独特の強力な鉄臭を有する、(2)粘液便−少なくとも10%の粘液を含有する特異的糞便は下痢と関連する可能性があり、血液を含有する場合または含有しない場合がある。粘液便は、質感および/または形を有する場合または有さない場合がある、(3)下痢−水っぽい質感のない平たい水たまり、(4)直腸温が、>103.4°Fおよびベースラインの体温より少なくとも華氏1度高ければ、発熱を示した。体温が、99.5°F以下およびベースラインの体温より少なくとも華氏1度低ければ、低体温を示した。
臨床徴候に関して、チャレンジ後の下痢、粘液便、または血便を含むCPV感染に特有のいずれかの臨床徴候のシグナル発生は、動物を臨床徴候陽性として定義した。食欲不振、抑うつ/嗜眠、および嘔吐の存在も、動物をパルボウイルス感染陽性として評価するための補助的基準としての使用で知られている。
この試験では18匹中4匹が、2DPCに下痢または嘔吐を示した。これらの臨床徴候は、3〜4DPCの典型的なCPV発症範囲外であり、チャレンジ中に使用された空腹および/または麻酔法による可能性がある。それらはCPV感染の徴候とはみなされない。
MLV群(群2)では6匹中2匹が、5および7DPCに臨床徴候を示し、イヌ#12は7DPCに粘液便が認められ、イヌ#13は5および7DPCに下痢があった。この群の3匹が、以前に述べたようにCPV発症の範囲外である嘔吐または下痢の徴候を2DPCに示し、それ故に感染の徴候とはみなされないことが留意されるべきである。
陰性対照群(群3)の全てのイヌが、4DPCに始まり11DPCに終わる一連の中程度から重度の臨床徴候(下痢、粘液便、脱水、嘔吐、食欲不振、血便)を示し、4匹はCPVで死亡した(7DPCに3匹、8DPCに1匹)。
rCAdV2−CPV VP2試験群(群1)は、6匹中3匹で1回の発熱;9DPCに1匹、12DPCに2匹を示した。MLV群(群2)の6匹は発熱を示さなかった。陰性対照群(群3)では、6匹中3匹が4〜5DPCにわたって少なくとも1回の発熱を示した(1匹は2回示した)。6匹中2匹は、7DPCに低体温を示した。
体重:体重減少/増加を週ベースで決定するために、個々の動物ごとの体重を、前の週からの体重を引いて評価した。
rCAdV2−CPV VP2試験群(群1)もMLV試験群(群2)も、7または14DPCに体重減少を示した動物はいなかった。陰性対照群(群3)の全ての動物は、7DPCに0.1〜0.8キログラムにわたる体重減少を示した。14DPCに群3で試験に残っている動物は、7DPCから体重増加を経験した。
白血球減少症:白血球減少症に関して、チャレンジ後の白血球減少症のシグナル発生(チャレンジ前のベースラインの≧50%減少)により、イヌを陽性として分類した。この試験では、rCAdV2−CPV VP2試験群(群1)およびMLV群(群2)は、白血球減少症の徴候を示さなかった。陰性対照群(群3)には、少なくとも1回の白血球減少症にかかり、6DPCに発症した6匹中5匹が含まれた。
この試験では、rCAdV2−CPV VP2(群1)群には、8〜14DPCに始まる少なくとも1日のウイルス排出を示した6匹中4匹が含まれた。MLV群(群2)は、検出可能な量の生きたウイルスを排出しなかった。陰性対照群の全ての動物は、3または4DPCに始まり9DPCまで持続する検出可能な量のウイルスを糞便中に排出した。
まとめると、イヌ、6週2日齢〜7週2日齢に、1.0mlの以下のワクチンを0DPV1および21DPV1にワクチン接種した:(群1)rCAdV2−CPV VP2=8.0log/ml、(群2)MLVコンボ− CAdV2/CDV/CPV=4.7/2.6/3.9log/ml、(群3)PBS対照。全てのワクチン接種イヌを、22DPV2に毒性CPV−2bで口と鼻にチャレンジした。
rCAdV2−CPV VP2試験ワクチンは、2回投与レジメンで1回投与当たり8.0logで与えた場合、有効性基準を満たさなかった。イヌ3匹は発熱、糞便へのCPV排出およびリンパ球減少症を示し、イヌ1匹はイヌパルボウイルス確定的な臨床徴候を示した。イヌ4匹はCPVの排出のみを示した。ワクチンは、およそ10DPCまで初期の防御を提供するようであった。これは、陰性対照と比較して感染の臨床徴候の発症遅延である。1つワクチン接種には、原因不明の完全な角膜混濁が報告された。
rCAdV−EHV−4 p430/RabG(n)を含む医薬組成物(ワクチン)の調製:
rCAdV−EHV−4 p430/RabG(n)ワクチンを含む医薬組成物(ワクチン)の調製:
ワクチン製剤:
rCAdV−EHV−4 pp430/RabG(N)組織培養ストックを、目標用量まで0.01M PBSで希釈した。アジュバントは使用しなかった。
試験デザイン:4〜8週齢のワクチン接種子ブタ群および対照群、投与(単回/2回)は筋肉内に2ml/回であった。
ベクターワクチンとしての特性を若齢子ブタで調査するために、rCAdV−EHV−4 P(GG430)RABG(N)C1をワクチン接種−血清学的検査試験で試験した。
詳細には、子ブタにrCAdV−EHV−4 p430/RabG(N)C1を試験0および21日目に6.7logの用量で2回ワクチン接種した(2ショットワクチン接種、2×rCAdV)。非ワクチン接種群は陰性対照としての役目を果たした。
ワクチン接種後のCAdV−2中和抗体の導入を、rCAdV−2 p430 RabGワクチンを1回または2回ワクチン接種された動物由来の血清で試験した。ワクチン接種動物は、CAdV2に対して検出可能なウイルス中和(VN)力価を示したが、非ワクチン接種群由来の血清は、検出可能なCAdV−2中和抗体レベルがなかった(表2)。カンザス州立大学狂犬病研究所による血清で実施した迅速蛍光焦点抑制試験(RFFIT)は、ワクチン接種動物12匹中3匹で検出可能なRFFIT力価を示し、狂犬病中和抗体を測定する対照群では検出可能なRFFIT力価はなかった。ELISAによる全狂犬病抗体試験およびCAdVウイルス排出も試験した。
Claims (36)
- ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターと作動可能に連結された少なくとも1つの異種DNAをコードする発現カセットを含む組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクター。
- ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターが、4pgG600(配列番号29)もしくは4pMCP600(配列番号30)またはその相補的なヌクレオチド配列またはその機能的断片もしくは機能的誘導体またはその相補的なヌクレオチド配列を含み、前記プロモーター配列が異種抗原の発現をもたらす、請求項1のrCAdVベクター。
- プロモーター配列の機能的断片または誘導体が、少なくとも80%、85%の配列同一性、好ましくは90%、91%、92%、93%、94%の配列同一性、より好ましくは95%、96%、97%、98%、99%、99.9%の配列同一性を有する、請求項2のrCAdVベクター。
- 機能的断片が、4pgG600(配列番号29)のトランケーションまたはその相補的なヌクレオチド配列であり、好ましくは配列同一性が全長にわたって少なくとも72%である、請求項2のrCAdVベクター。
- 機能的断片が、4pMCP600(配列番号30)のトランケーションまたその相補的なヌクレオチド配列であり、好ましくは配列同一性が全長にわたって少なくとも78%である(またはより高い)、請求項2のrCAdVベクター。
- プロモーター配列の機能的断片または誘導体が、550ヌクレオチド、好ましくは500、490、480、470、460、455、450、445、440、435、434、433、432、431、430ヌクレオチド、最も好ましくは455または430ヌクレオチドの長さを有する、請求項2のrCAdVベクター。
- ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターが4pgG600(配列番号29)を含む、請求項1のrCAdVベクター。
- ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターが4pMCP600(配列番号30)を含む、請求項1のrCAdVベクター。
- ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターがG430(配列番号31)を含む、請求項1のrCAdVベクター。
- ウマヘルペスウイルス4(EHV4)プロモーターがgMCP455(配列番号32)を含む、請求項1のrCAdVベクター。
- 感染性CAdVとしてパッケージされる、請求項1のrCAdVベクター。
- 異種DNAが、目的のエピトープ、生物学的応答調節因子、増殖因子、認識配列、治療用遺伝子、および融合タンパク質からなる群から選択されるポリペプチドをコードする、請求項1のrCAdVベクター。
- 異種DNAが目的の抗原エピトープをコードする、請求項12のrCAdVベクター。
- 目的の抗原エピトープが、イヌまたはネコ病原体の抗原である、請求項13のrCAdVベクター。
- 目的の抗原エピトープが、食品生産動物病原体に由来する抗原である、請求項13のrCAdVベクター。
- 目的の抗原エピトープが、モルビリウイルス抗原、狂犬病糖タンパク質、ネコ白血病ウイルス(FeLV)エンベロープタンパク質、免疫不全ウイルス抗原、パルボウイルス抗原、ポックスウイルス抗原からなる群から選択される、請求項14のrCAdVベクター。
- 食品生産動物病原体が、ブタ、ウシ、ウマ、家禽、および/またはヒツジ動物に由来する、請求項15のrCAdVベクター。
- 食品生産動物病原体が、ウシウイルス性下痢症ウイルス(BVDV)、パラインフルエンザ3ウイルス(PI−3)、感染性ウシ鼻気管炎ウイルス(IBR)、ウシRSウイルス(BRSV)、ウシヘルペスウイルス(BHV)、ウシロタウイルス(BRV)、ウシエンテロウイルス(BEV)、ウシコロナウイルス(BCV)、ウシ狂犬病(BR)、ウシパルボウイルス(BPV)、アデノウイルス、アストロウイルス、マンヘミア・ヘモリチカ(以前はパスツレラ・ヘモリチカ)、パスツレラ・マルトシダ、ヘモフィルス・ソムナス(ヒストフィルス・オビスおよびヘモフィルス・アグニ)、アクチノマイセス(コリネバクテリウム)、アクチノマイセス・ピオゲネス、クラミジア・シッタシ、カンピロバクター・フィタス・ベネレアリスおよびカンピロバクター・フィタス・フィタス(以前はC・フィタス・インテスチナリス)、レプトスピラ・インテロガンス、レプトスピラ・ハージョ、レプトスピラ・ポモナ、およびレプトスピラ・グリッポチフォーサ、レプトスピラ・カニコーラ、レプトスピラ・グリッポチフォーサ、レプトスピラ・ハージョ(レプトスピラ・ハージョプラジトノおよびレプトスピラ・ハージョボビス)、ブルセラ・アボルタス、ブルセラ・スイスおよびブルセラ・メリテンシス、リステリア・モノサイトゲネス、クラミジア・シッタシ、クロストリジウム・ショウベイ、クロストリジウム・セプチカム、クロストリジウム・ヘモリチクム、クロストリジウム・ノビイ、クロストリジウム・ソルデリ、クロストリジウム・パーフリンゲンス、クロストリジウム・テタニ、モラキセラ・ボビス、クレブシエラ属種、クレブシエラ・ニューモニエ、サルモネラ・ティフィムリウム;サルモネラ・ニューポート、マイコバクテリウム・アビウム・パラツベルクローシス、クリプトスポリジウム・パルバム、クリプトスポリジウム・ホミニス、スタフィロコッカス・アウレウス、ストレプトコッカス・ディスガラクティエ、ストレプトコッカス・ウベリス、ストレプトコッカス・アガラクチア、大腸菌(エスケリキア・コリ)、マイコプラズマ属種、マイコプラズマ・ディスパー、およびウレアプラズマ属種、トリトリコモナス・フィータス、トリコフィトン・ベルコーズム、トリコフィトン・メンタグロフィテス、トリコフィトン・サルキソヴィー、ネオスポラ・カニナム(以前はトキソプラズマ・ゴンディ)、バベシア・ビゲミナおよびバベシア・ボビス、ディクチオカウルス・ヴィヴィパロウス(肺虫症)、ならびにそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項17のrCAdVベクター。
- 食品生産動物病原体が、サルモネラ属種、特にS.ティフィムリウム、S.コレラスイス;アストロウイルス;ロタウイルス;伝染性胃腸炎ウイルス;ブラキスピラ属種、特にB.ヒオディセンテリア、B.ピロシコリ;クロストリジウム属種、特にC.ディフィシル、C.パーフリンゲンスA、BおよびC型、C.ノビイ、C.セプチカム、C.テタニ;ブタ腸管ピコルナウイルス;ブタ腸管カリシウイルス;アクチノバシラス・プルロニューモニエなどの呼吸器病原体;ボルデテラ・ブロンキセプティカ;エリシペロスリクス・ルシオパシエ;ヘモフィルス・パラスイス、特に亜型1、7および14;パスツレラ属種、特にP.マルトシダ;マイコプラズマ属種、特にM.ハイオニューモニエ、M.ヒオリニス;ブタインフルエンザウイルスA型;PRRSウイルス;ブタサーコウイルス;ブタパルボウイルス;仮性狂犬病ウイルス;エペリスロゾーノシス・スイス、マイコバクテリウム属種、特にM.アビウム、M.イントラセルラーレ、M.ボビス;ブタ呼吸器コロナウイルス;ブタコロナウイルス、特にTGEV、PEDV、およびデルタコロナウイルス;アルカノバクテリウム・ピオゲネス;ブタアデノウイルス;豚コレラ;ブタサイトメガロウイルス;アフリカ豚コレラ;または、他の病原体、例えば、大腸菌(エスケリキア・コリ)、ストレプトコッカス属種、特にS.スイス、S.ポルシナス、S.ディスガラクティエ、好ましくは亜種エクイシミリス;ブルセラ・スイス、特に次亜種1、2および3型;レプトスピラ属種、特にL.オーストラリス、L.カニコーラ、L.グリッポチフォーサ、L.ポモナ、L.イクテロヘモラジア、L.インターロガンス、L.タラソビ、L.ハージョ、L.セジュロ;脳心筋炎ウイルス;赤血球凝集脳脊髄炎ウイルス;日本脳炎ウイルス;西ナイルウイルス;レオウイルス;ルブラウイルス;メナングルウイルス;ニパウイルス;水疱性口内炎ウイルス;ブタの水疱性発疹のウイルス:ブタポックスウイルス;ブタヘルペスウイルス;およびスタフィロコッカス・ヒカスを含む他の病原体、ならびにそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項17のrCAdVベクター。
- 請求項1から19に記載の組換えイヌアデノウイルス(rCAdV)ベクター、および薬学的または獣医学的に許容される、許容される担体または希釈剤を含む免疫原性またはワクチン組成物。
- 前記担体が経口、皮内、筋肉内、または鼻腔内適用に好適である、請求項20の免疫原性またはワクチン組成物。
- a.請求項1から19に記載の組換えrCAdVベクターを宿主細胞に導入するステップ、
b.好適な条件下で感染細胞を培養するステップ、
c.感染細胞および/またはベクターおよび/またはウイルス成分を回収するステップ
を含み、
d.ステップ(c)の回収物を精製するステップ
を含んでもよく、
e.前記回収物を薬学的に許容される担体と混合するステップ
を含む、感染と関連するまたは感染によって引き起こされる1つまたは複数の臨床徴候の発生率または重症度を低減するための免疫原性組成物またはワクチンを作製する方法。 - 好ましくは使用するための、請求項20に記載のワクチンの免疫原性組成物の治療有効量を動物に投与するステップを含む、動物において病原体の感染によって引き起こされる臨床徴候もしくは疾患を低減もしくは予防する方法、または動物において病原体の感染を処置もしくは予防する方法で使用するための方法。
- 免疫原性組成物が1回投与される、請求項23の方法。
- 免疫原性組成物が2回用量として投与される、請求項23の方法。
- 免疫原性組成物が、経口、皮内、筋肉内または鼻腔内投与される、請求項23の方法。
- 免疫原性組成物が、同種および/または異種ウイルスチャレンジに対する防御をもたらす、請求項23の方法。
- 動物における病原体によって引き起こされる臨床疾患に対する免疫性を前記動物に与える方法であって、請求項20に記載の免疫原性組成物を動物に投与するステップを含み、これにより、前記免疫原性組成物またはワクチンが感染の臨床徴候を引き起こさないが前記病原体の病原体型に対する免疫性を動物に与える免疫応答を誘導することができる、方法。
- 免疫原性組成物が1回投与される、請求項28の方法。
- 免疫原性組成物が2回用量として投与される、請求項29の方法。
- 免疫原性組成物が、経口、皮内、筋肉内または鼻腔内投与される、請求項28の方法。
- 免疫原性組成物が、同種および/または異種ウイルスチャレンジに対する防御をもたらす、請求項28の方法。
- a.動物にワクチンを投与することができるディスペンサー、および
b.請求項20に記載の免疫原性組成物またはワクチン
を含み、
c.指示リーフレット
を含んでもよい、動物における病原体に関連する疾患に対して前記動物をワクチン接種するための、および/または、動物における病原体に関連するまたは病原体によって引き起こされる1つまたは複数の臨床徴候の発生率または重症度を低減するための、キット。 - 請求項1から19の組換えイヌアデノウイルス2型(rCAdV2)を発現する真核生物の宿主細胞株。
- 前記宿主細胞株が、PK/WRL細胞株、RK13細胞株、MDBK細胞株、ST細胞株、AI−ST細胞株、VERO細胞株、Sf9細胞株、Sf21、Sfプラス細胞株、MDCK細胞株、および/またはそれらの派生物からなる群から選択される哺乳動物細胞株または昆虫細胞株である、請求項34の真核生物の宿主細胞株。
- 請求項1から19の組換えイヌアデノウイルス2型(rCAdV2)を発現する原核生物の宿主細胞株。
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