JP2018531033A - L−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物及びこれを用いてl−イソロイシンを生産する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願の他の目的は、前記新規生合成経路が導入された組み換え微生物を培地で培養する段階、及び前記微生物または培地からL−イソロイシンを回収する段階を含む、L−イソロイシンを生産する方法を提供することにある。
配列番号3のアミノ酸配列を有するCimA(M)m1(具体的に配列番号4の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる);
配列番号5のアミノ酸配列を有するCimA(M)m2(具体的に配列番号6の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる);
配列番号7のアミノ酸配列を有するCimA(M)m3(具体的に配列番号8の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる);
配列番号9のアミノ酸配列を有するCimA(M)m4(具体的に配列番号10の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる);
配列番号11のアミノ酸配列を有するCimA(M)m5(具体的に配列番号12の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる);
配列番号13のアミノ酸配列を有するCimA(M)m6(具体的に配列番号14の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる);及び
配列番号15のアミノ酸配列を有するCimA(M)m7(具体的に配列番号16の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされうる)を含んでもよい。
1)前記タンパク質をコードするポリヌクレオチドのコピー数の増加、
2)前記ポリヌクレオチドの発現が増加するように発現調節配列の変形、
3)前記酵素の活性が増強されるように染色体上の前記ポリヌクレオチド配列の変形、前記遺伝子発現の抑制調節因子の欠失、または
4)これらの組み合わせから選択された方法で行なわれてもよいが、特にこれに限定されない。
本出願で用語、「L−イソロイシン生合成経路に関与する酵素」には、アスパラギン酸キナーゼ(aspartate kinase、lysC遺伝子)、アスパラギン酸−β−セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ(aspartate−β−semialdehyde dehydrogenase、asd遺伝子)、ホモセリンデヒドロゲナーゼ(homoserine dehydrogenase、hom遺伝子)、ホモセリンキナーゼ(homoserine kinase、thrB遺伝子)、トレオニンシンターゼ(threonine synthase、thrC遺伝子)、トレオニンデヒドラターゼ(threonine dehydratase、ilvA遺伝子)、アミノトランスフェラーゼ(aminotransferase、ilvE遺伝子)などが含まれてもよいが、これに制限されるものではない。
1)前記タンパク質をコードするポリヌクレオチドの一部または全体の欠失、
2)前記ポリヌクレオチドの発現が減少するように発現調節配列の変形、
3)前記タンパク質の活性が弱化するように染色体上の前記ポリヌクレオチド配列の変形、または
4)これらの組み合わせから選択された方法で行なわれてもよいが、特にこれに限定されない。
シトラマレートシンターゼ(citramalate synthase)の活性を有するタンパク質を含むコリネバクテリウム属微生物を培地で培養する段階、及び
前記微生物または培地からL−イソロイシンを回収する段階を含む、L−イソロイシン生産方法を提供する。
簡単に説明すると、前記コリネバクテリウム属微生物は、メタノカルドコッカス(Methanocaldococcus)由来のシトラマレートシンターゼをコードする遺伝子が導入されたものであってもよく、具体的には配列番号1、3、5、7、9、11、13及び15で構成された群から選択されるアミノ酸配列を有するシトラマレートシンターゼをコードする遺伝子が導入されたものであってもよい。
前記方法において、培養段階で生産されたL−イソロイシンを回収する方法は、培養方法、例えば、回分式、連続式または流加式培養方法などによって当該分野で公知の適切な方法を用いて培養液から目的とするアミノ酸を収集してもよい。例えば、遠心分離、ろ過、陰イオン交換クロマトグラフィー、結晶化及びHPLCなどが使用されてもよいが、これらに限定されるものではない。
シトラマレートシンターゼ(citramalate synthase)の活性を有するタンパク質を含むコリネバクテリウム属微生物のイソロイシン生産用途を提供する。
前記で説明したように、本出願のL−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物は、シトラマレートシンターゼの活性が導入されてL−トレオニンを前駆体として用いない新しい生合成経路を介してL−イソロイシンを高収率で生産することができる。
実施例1:メタノカルドコッカス由来のcimA遺伝子を含む組み換えベクターの作製
<1−1>メタノカルドコッカス由来のcimA遺伝子断片の準備
シトラマレートシンターゼをコードするcimA遺伝子(NC_000909.1)のオープンリーディングフレーム(ORF)を含む1476bp断片を得るために、ジェノミックチップシステム(Genomic−tip system、Qiagen)を用いて、メタノカルドコッカス・ヤナシイ(Methanocaldococcus jannaschii)DSM 2661からゲノムDNAを抽出した。
プライマーcimA−5−NdeI(配列番号35):
5’−GCATCATATGATGGTAAGGATATTC−3’
プライマーcimA−3−XbaI(配列番号36):
5’−CGATCTAGATTAATTCAACAACATGTT−3’
<1−2>組み換えベクターp117−cj7−CimA(M)の製作
公知のコリネバクテリウム属微生物由来のプロモーターcj7を含むp117−cj7−gfpを鋳型としてPCRを行った(特許文献2)。ここで、「p117」は、大腸菌コリネバクテリウムシャトルベクター(E.coli−Corynebacterium shuttle vector)であるpECCG117(非特許文献6)を示すものである。前記PCR反応は、下記配列番号27及び28のプライマー対を用いて95℃で30秒の変性、56℃で20秒のアニーリング、及び72℃で30秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
プライマーPcj7−5−KpnI(配列番号27):
5’−GATGGTACCACCCCAGAAACATCCCAGC−3’
プライマーPcj7−3 NdeI(配列番号28):
5’−CGATCATATGGAGTGTTTCCTTTCGTTGGG−3’
前記で準備したcj7断片と前記実施例<1−1>で作製したCimA(M)断片を鋳型にして、配列番号27及び36のプライマー対を用いて融合(sewing)PCRを行った。PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で60秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
5’−CCACAGCCGACAGGATGGTGA−3’
プライマー117−R(配列番号30):
5’−CTCAGGGTGTAGCGGTTCGGT−3’
<1−3>2−ケト酪酸の生合成経路に関与するleuBCD遺伝子断片の準備
2−ケト酪酸の生合成経路の遺伝子強化の組み換えベクターを製造するために、コリネバクテリウム属微生物由来のイソプロピルマレートデヒドロゲナーゼ(3−isopropylmalate dehydrogenase)及びイソプロピルマレートデヒドラターゼ(3−isopropylmalate dehydratase)をコードするleuBCD遺伝子断片を下記のように準備した。
プライマーleuB−5−cimA(配列番号31):
5’−TTGTTGAATTAATCTAGAGGTGACACCCCAGTGG−3’
プライマーleuB−3−leuC(配列番号32):
5’−TCGCAGCTGCCACCGATATTTAGCTTTGCAGCGC−3’
イソプロピルマレートデヒドラターゼ(EC4.2.1.33)をコードするleuCD遺伝子のORFを含む2078bp断片を得るために、コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032のgDNAを鋳型にしてPCRを行った。
プライマーleuC−5−leuB(配列番号33):
5’−GCGCTGCAAAGCTAAATATCGGTGGCAGCTGCGA−3’
プライマーleuD−3−XbaI(配列番号34):
5’−TGGCGGCCGCTCTAGAGCTTTCGCTATCAGACTG−3’
前記で収得したleuB断片とleuCD断片を鋳型にして、配列番号31及び34のプライマー対を用いる融合PCRを行った。PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で120秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
<1−4>組み換えベクターp117−cj7−CimA(M)−leuBCDの製作
2−ケト酪酸生合成経路の遺伝子強化の組み換えベクターを製造するために、前記実施例<1−2>で作製した組み換えベクターであるp117−cj7−CimA(M)をXbaIで処理し、前記実施例<1−3>で収得したleuBCD断片を制限酵素XbaIで処理した後、これらの2つの断片をライゲーションした。
cimA遺伝子にランダム変異が導入されたDNAプール(pool)を確保するために、前記実施例<1−1>で収得したCimA(M)断片を鋳型にして、多様化PCRランダム突然変異化キット(diversify PCR random mutagenesis kit、Clonetech、カタログ#630703)を用いてPCRを行った。この時、PCR反応は、製品のユーザーマニュアルの表III内の突然変異化反応4を条件にして行われた。そのために、下記配列番号35及び36のプライマー対を用い、95℃で30秒の変性と68℃で30秒の伸長過程を25回繰り返し行った。
5’−GCATCATATGATGGTAAGGATATTC−3’
プライマーcimA−3−XbaI(配列番号36):
5’−CGATCTAGATTAATTCAACAACATGTT−3’
<1−6>p117−cj7−CimA(M)m突然変異ライブラリーの作製
前記実施例<1−2>で作製した組み換えベクターp117−cj7−CimA(M)を制限酵素NdeIとXbaIで処理した後、同じ制限酵素で処理された前記実施例<1−5>で収得されたCimA(M)m断片とライゲーションした。
メタノカルドコッカス由来のcimA遺伝子をコリネバクテリウム・グルタミカムに導入した場合、L−イソロイシン生産能が付与されるかどうかを確認するために、まず、トレオニンデヒドラターゼ(threonine dehydratase)をコードするilvA遺伝子が除去された菌株を作製し、この菌株にcimA遺伝子を導入してL−イソロイシン生産能が回復されるかどうかを確認した。
ilvA遺伝子の断片を得るために、ジェノミックチップシステム(Qiagen)を用いてコリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032から抽出したゲノムDNAを鋳型にして、下記配列番号37及び38のプライマー対と、配列番号39及び40のプライマー対とを用いてそれぞれPCRを行った。この時、PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で45秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
前記で収得したilvA遺伝子の両断片を鋳型にして、下記配列番号37及び40のプライマー対を用いる融合PCRを行った。この時、PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で60秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
5’−GCATCTAGAGAACACGGACAATGCCAC−3’
プライマーilvA−Del−R(配列番号38):
5’−CAAACAGCGTGATGTCCTGAGTGAGCTGCGCT−3’
プライマーilvA−Del−F(配列番号39):
5’−AGCGCAGCTCACTCAGGACATCACGCTGTTTG−3’
プライマーilvA−3−XbaI(配列番号40):
5’−GCATCTAGAACCTGCGGCACACCTTGGGC−3’
プライマーTopo−F(配列番号41):
5’−GCAGTGAGCGCAACGCAAT−3’
プライマーTopo−R(配列番号42):
5’−CGTTGTAAAACGACGGCCA−3’
<2−2>ilvA遺伝子欠損菌株の製作
親菌株として、コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032に前記実施例<2−1>で製造された組み換えベクターであるpDZ−ilvA(Del)を電気穿孔法で導入した後、カナマイシン25μg/mlが含まれた固体培地に塗抹して、単一コロニーを選別した。
プライマーCFilvA(配列番号43):
5’−GATCTGTGATGAGGTGATG−3’
プライマーCRilvA(配列番号44):
5’−CGTCCTTCCATGACTCTCA−3’
<2−3>L−イソロイシン生合成経路に関与する遺伝子断片の準備
L−イソロイシン生合成経路の遺伝子強化の組み換えベクターを製造するために、コリネバクテリウム属微生物由来のlysC、asd、hom、thrB、thrC及びilvA遺伝子断片を下記のように準備した。
5’−TGAGGTACCCATGCGATTGTTAATGC−3’
プライマーasd−3−SfoI(配列番号46):
5’−CTAGGCGCCAGTGTAGCACTCAAGCGGA−3’
ホモセリンデヒドロゲナーゼ(homoserine dehydrogenase)及びホモセリンキナーゼ(homoserine kinase)をコードするhom−thrB遺伝子のORFを含むDNA断片を得るために、前記実施例<2−1>に記載したように、コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032から抽出したゲノムDNAを鋳型にして、下記配列番号47及び48のプライマー対を用いてPCRを行った。この時、PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で90秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
5’−CTAGGATCCCTCACCATTCTCAATGGT−3’
プライマーthrB−3−BamHI(配列番号48):
5’−CTAGGATCCGCCTTCCTTGTTGGGC−3’
トレオニンシンターゼ(threonine synthase)をコードするthrC遺伝子のORFを含むDNA断片を得るために、前記実施例<2−1>に記載したように、コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032から抽出したゲノムDNAを鋳型にして、下記配列番号49及び50のプライマー対を用いてPCRを行った。この時、PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で60秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
プライマーthrC−5−SpeI(配列番号49):
5’−TGCACTAGTGAGAACATACAGGTTCCA−3’
プライマーthrC−3−ilvA(配列番号50):
5’−GGCATTGTCCGTGTTCTTACTTCACGGAAGTG−3’
トレオニンデヒドラターゼ(threonine dehydratase)をコードするilvA遺伝子のORFを含むDNA断片を得るために、前記実施例<2−1>に記載したように、コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032から抽出したゲノムDNAを鋳型にして、下記配列番号51及び52のプライマー対を用いてPCRを行った。この時、PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で60秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
プライマーilvA−5−thrC(配列番号51):
5’−CACTTCCGTGAAGTAAGAACACGGACAATGCC−3’
プライマーilvA−3−SpeI(配列番号52):
5’−TGCACTAGTACCTGCGGCACACCTTGGGC−3’
前記で獲得したthrC断片とilvA断片を鋳型にして、配列番号49及び52のプライマー対を用い融合PCRを行った。この時、PCR反応は、95℃で30秒の変性、56℃で30秒のアニーリング、及び72℃で120秒の伸長過程を30回繰り返し行った。
L−イソロイシン生合成経路の遺伝子強化の組み換えベクターを製造するために、前記実施例<2−3>で獲得したlysC−asd断片を制限酵素KpnIとSfoIで処理した後、KpnIとEcoRVで処理された線形p117断片とライゲーションした。
コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032菌株の実施例<1−2>、<1−4>及び<2−4>で製造した組み換えベクターであるp117−cj7−CimA(M)、p117−cj7−cimA(M)−leuBCD及びp117−IBGCをそれぞれ電気穿孔法で導入した後、カナマイシン25μg/mlを含む固体培地に塗抹して、単一コロニーを選別した。このことから選別された菌株をそれぞれコリネバクテリウム・グルタミカム「ATCC13032/p117−cj7−CimA(M)」、「ATCC13032/p117−cj7−CimA(M)−leuBCD」及び「ATCC13032/p117−IBGC」と命名した。
<3−1>野生型コリネバクテリウム属微生物を用いた遺伝子組み換え菌株の製造
cimA遺伝子の前駆体として用いられるアセチルCoA(acetyl−CoA)の供給のために、野生型コリネバクテリウム・グルタミカムATCC13032のピルビン酸デヒドロゲナーゼ(pyruvate dehydrogenase)をコードするaceE遺伝子が欠損した酢酸(acetate)要求性菌株を製造し、この菌株を「ATCC13032△aceE」と命名した(非特許文献7)。
CimA(M)m1は配列番号3のアミノ酸配列を有し、これは配列番号4の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよく;
CimA(M)m2は配列番号5のアミノ酸配列を有し、これは配列番号6の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよく;
CimA(M)m3は配列番号7のアミノ酸配列を有し、これは配列番号8の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよく;
CimA(M)m4は配列番号9のアミノ酸配列を有し、これは配列番号10の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよく;
CimA(M)m5は配列番号11のアミノ酸配列を有し、これは配列番号12の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよく;
CimA(M)m6は配列番号13のアミノ酸配列を有し、これは配列番号14の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよく;
CimA(M)m7は配列番号15のアミノ酸配列を有し、これは配列番号16の塩基配列を有するポリヌクレオチドからコードされてもよい。
前記実施例<3−1>で最も高いL−イソロイシン生産能を示すものとして選別されたp117−cj7−CimA(M)m3ベクターをXbaIで処理した後、実施例<1−3>で収得したleuBCD断片を制限酵素XbaIで処理して獲得したDNA断片とライゲーションした。
前記実施例<3−1>及び<3−2>で使用された組み換えベクターp117−cj7−CimA(M)、p117−cj7−CimA(M)−leuBCD、p117−cj7−CimA(M)m3及びp117−cj7−CimA(M)m3−leuBCDをそれぞれL−イソロイシン生産菌株であるコリネバクテリウム・グルタミカムKCCM11248P(特許文献5)に電気穿孔法で導入し、カナマイシン25μg/mlが含まれた固体培地に塗抹して、単一コロニーを選別した。
Claims (12)
- 下記段階を含むL−イソロイシンを生産する方法:
シトラマレートシンターゼ(citramalate synthase)の活性を有するタンパク質を含むコリネバクテリウム属微生物を培地で培養する段階、及び
前記微生物または培地からL−イソロイシンを回収する段階。 - 前記シトラマレートシンターゼが、メタノカルドコッカス属(genus Methanocaldococcus)微生物に由来する、請求項1に記載のL−イソロイシンを生産する方法。
- 前記シトラマレートシンターゼが、配列番号1、3、5、7、9、11、13及び15で構成された群から選択されるアミノ酸配列を有する、請求項1に記載のL−イソロイシンを生産する方法。
- 前記コリネバクテリウム属微生物が、活性が強化されたイソプロピルマレートデヒドロゲナーゼ(3−isopropylmalate dehydrogenase)及びイソプロピルマレートデヒドラターゼ(3−isopropylmalate dehydratase)をさらに含む、請求項1に記載のL−イソロイシンを生産する方法。
- 前記コリネバクテリウム属微生物が、不活性化されたピルビン酸デヒドロゲナーゼ(pyruvate dehydrogenase)をさらに含む、請求項1に記載のL−イソロイシンを生産する方法。
- 前記コリネバクテリウム属微生物の培養段階で酢酸がさらに供給される、請求項1に記載のL−イソロイシンを生産する方法。
- 前記コリネバクテリウム属微生物が、コリネバクテリウム・グルタミカム(Corynebacterium glutamicum)である、請求項1に記載のL−イソロイシンを生産する方法。
- シトラマレートシンターゼの活性を有するタンパク質を含む、L−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物。
- 前記シトラマレートシンターゼが、配列番号1、3、5、7、9、11、13及び15で構成された群から選択されるアミノ酸配列を有する、請求項8に記載のL−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物。
- 前記微生物が、活性が強化されたイソプロピルマレートデヒドロゲナーゼ及びイソプロピルマレートデヒドラターゼタンパク質をさらに含む、請求項8に記載のL−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物。
- 前記微生物が、不活性化されたピルビン酸デヒドロゲナーゼをさらに含む、請求項8に記載のL−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物。
- 前記微生物が、コリネバクテリウム・グルタミカムである、請求項8に記載のL−イソロイシン生産能を有するコリネバクテリウム属微生物。
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