JP2017104118A - 膀胱癌を検出するための尿マーカー - Google Patents

Abstract

【課題】癌マーカー、特に膀胱癌マーカー、に基づいた、癌の早期発見および診断を支援するためのさらなる方法、組成物、キット、および装置を提供する。
【解決手段】尿中のＵＢＴＭファミリーメンバーの蓄積を検出する工程を含む、膀胱癌を検出するための方法。ＵＢＴＭファミリーメンバーとは、尿中に見出される膀胱癌に関連するＢＴＭマーカーを意味する、しかしＴＯＰ２Ａ、ＭＤＫ、またはＢＩＲＣ５は含まれない。上記検出する工程は、ＵＢＴＭのｍＲＮＡの蓄積の検出により行なわれてよく、ＵＢＴＭタンパク質の蓄積の検出、ＵＢＴＭペプチドの蓄積の検出により行なれてよい。
【選択図】なし

Description

優先権主張
本出願は、ニュージーランド仮特許出願第５３４，２８９号、２００４年７月２３日出願、名称「膀胱癌を検出するためのマーカー」、出願人：Pacific Edge Biotechnology Ltd.、ニュージーランド仮特許出願第５３９，２１９号、２００５年４月４日出願、名称「膀胱癌を検出するためのマーカー」、出願人：Pacific Edge Biotechnology Ltd.、および米国仮特許出願第６０／６９２，６１９号、２００５年６月２０日出願、名称「膀胱癌を検出するための尿マーカー」、発明者：Parry John Guilford, Natalie Jane Kerr and Robert Pollock、に対して優先権を主張する。上記出願の各々は、参照により本明細書に完全に組み入れられる。

技術分野
本発明は、癌の検出に関する。具体的には、本発明は、膀胱癌を検出するためのマーカーの使用に関する。より具体的には、本発明は、膀胱癌を検出するための尿マーカーの使用に関する。さらにより具体的には、本発明は、尿中のオリゴヌクレオチド、タンパク質、および／または抗体マーカーの、膀胱癌の検出、分類、および病期診断のための使用に関する。

背景技術
序
癌患者の生存期間は、癌を初期に治療すると非常に増大する。膀胱癌の場合には、早期疾患と診断された患者は、５年生存率が、増悪した疾患と診断された患者がおよそ１５〜３０％であるのに比較して、＞９０％である。したがって、膀胱癌の早期診断に結びつく進歩は、患者の予後の改善をもたらすことができる。尿試料を用いて膀胱癌を検出するための確立された方法は、細胞診である。しかし、細胞診は、浸潤性膀胱癌の検出については感度がわずか約７５％であり、また表在性膀胱癌の検出では感度がわずか約２５％であることが知られている（Lotan and Roehrborn, Urology 61,109-118 (2003)）。

膀胱癌は、大きく浸潤性および表在性の２つのクラスに分類される。浸潤性タイプは下層の組織層に侵入し、一方表在性タイプは、主としてポリープ状の増殖として膀胱腔の中へ進展する傾向がある。

尿中の癌に対する特異的マーカーの識別は、癌の早期診断に役立つ手法を提供することができ、それが早期の治療および改善された予後をもたらす。特異的癌マーカーはまた、疾病増悪をモニターするための手段を提供し、外科的、放射線療法的、および化学療法的な治療の有効性のモニターを可能にする。しかし、多くの主要な癌について、利用可能なマーカーは、感度および特異性が不十分である。

現在、膀胱癌を検出する最も信頼できる方法は、生検病変の組織学を伴う膀胱鏡検査である。しかし、この技術は、時間がかかり、侵襲性であり、またその感度はおよそ９０％しかなく、これは、これらの方法を用いると癌の約１０パーセントが検出されないことを意味する。非侵襲性の方法の中では、剥離した悪性細胞を顕微鏡的に検出する尿細胞診が、現在の好ましい方法である。細胞診は約９５％の特異性を有するが、早期の病変に対しては低い感度（９〜２５％）しかなく、試料の質に極端に依存し、観察者間で高い変動性を持つ。

近年、膀胱からの生検材料中の遺伝学的マーカーを検出する試みが為されてきた。最も一般的に使用される方法はマイクロアレイ分析であり、この方法では、推定上の遺伝学的マーカーの一部に相補的なオリゴヌクレオチドを含むアレイを、患者試料から得られたｍＲＮＡまたはｃＤＮＡ試料に触れさせる。これらの方法を用いて、いくつかの最近の報告は、膀胱癌に対する多くの推定上のマーカーを同定した。しかし、アレイ技術は、比較的非定量的で、高度に変動する。

膀胱癌の存在を示す血液または尿のマーカーの検出は、この疾病の検出を改善する１つの有力な方法である。膀胱癌に対する血液マーカー開発はまだ殆ど進展していないが、いくつかの尿タンパク質マーカーが利用可能である。これらのマーカーの検査は、細胞診よりよい感度を与えるが、これらのマーカーの上昇したレベルは、炎症、尿石症および良性前立腺肥大を含む非悪性疾患の患者中でも一般に観察されるため、特異性が最高ではない傾向がある。例えば、特異的な核マトリックスタンパク質を検出するＮＭＰ２２は、４７〜８７％の感度および５８〜９１％の特異性を有する。ＮＭＰ２２の高い変動性は、膀胱癌の迅速で容易な検出には、それが理想的ではないことを意味する。

他の尿検査には、尿試料の細胞沈殿物からのテロメラーゼ酵素ｈＴＥＲＴなどの、遺伝子転写物のＲＴ−ＰＣＲ増幅が挙げられる。ＲＴ−ＰＣＲ検査は、高感度である可能性があるが、既存のＲＴ−ＰＣＲマーカーの特異性は不明確なままである。

癌の早期発見および診断用のさらなる手法が必要性である。本発明は、癌マーカー、特に膀胱癌マーカー、に基づいた、癌の早期発見および診断を支援するためのさらなる方法、組成物、キット、および装置を提供する。

発明の開示
マイクロアレイ分析および定量的ポリメラーゼ連鎖反応（ｑＰＣＲ）の組合せを用いて、我々は、膀胱癌に選択的な特異的遺伝マーカーを同定することができた。ある実施態様では、我々は、膀胱腫瘍の病期を判別するために用いることができるマーカーを発見し、また他の実施態様では、我々は、腫瘍の型を区別することができるマーカーを同定した。他の実施態様では、我々は予想外に、２マーカー以上の組合せにより、膀胱癌の非常に信頼性の高い敏感な検出が可能になることを見出した。よりさらなる実施態様では、我々は、膀胱癌細胞中で高度に発現され、血球中では発現されないマーカーを同定した。したがって、多くの実施態様において、膀胱癌に対する検査は、先行技術による検査より予想外に良好である。

ある実施態様では、マイクロアレイ分析を、非悪性の膀胱組織中と比較して、膀胱腫瘍組織中で高度に発現される遺伝子を同定するために用いる。これらの遺伝子、およびそれらの遺伝子によってコードされるタンパク質を、本明細書では膀胱腫瘍マーカー（ＢＴＭ）と名付ける。用語ＢＴＭは、マーカーが膀胱腫瘍にのみに特異的であることは要求しないことを理解するべきである。むしろ、ＢＴＭの発現は、悪性腫瘍を含む他の型の腫瘍中で増大する可能性がある。ＢＴＭは、血球中で高度には発現されないマーカーを含むこともまた、理解するべきである。尿から試料を採取することにより、一般に先行技術の生検試料中に存在する他の型の細胞の発現は存在しない。用語ＢＴＭは、膀胱癌の検出に役立つ個々のマーカーの組合せも含む。

他の実施態様では、免疫組織化学および定量的ポリメラーゼ連鎖反応（ｑＰＣＲ）を含む、試料中のマーカーの存在を同定するための方法が、提供される。ｑＰＣＲ法は、マイクロアレイ法において一般的なアーティファクトが少ない。そのようなアーティファクトには、アレイ・ドットに置かれるリガンドオリゴヌクレオチドの数の差、アレイ・スポット上にハイブリダイズされたオリゴヌクレオチドへの色素の不均一な予測できない結合、アレイ・スポットからの非特異的物質の不均一な洗浄、その他の問題が含まれる。

本明細書に開示する遺伝子のあるものは、細胞によって分泌されるか、細胞から剥がされるか、または細胞死の際に細胞から放出されるタンパク質をコードする。これらのｍＲＮＡ転写物およびそれらのタンパク質は、膀胱癌の診断のためのマーカーとしての、または既存の疾病の増悪をモニターするためのマーカーとしての、追加の用途を有する。これらのマーカーは、単独でまたは互いに組合せて用いることができる。さらに、他の遺伝子、ＲＮＡ転写物、およびコードされたタンパク質は、細胞内に残るかまたは細胞に結合し、単独でまたは互いに共同して、尿マーカーとして使用されることができる。

表在性と浸潤性の膀胱癌を治療するための戦略は、異なってもよい。浸潤性膀胱癌は、表在型膀胱癌よりも、外科的切除をより早急に必要とし、また可能な代替治療法がより少ない。対照的に、表在性膀胱癌は、膀胱内化学療法または膀胱内ＢＣＧ免疫療法のいずれかで効率よく治療することができる。

現在のところ、しかし、膀胱鏡検査を行なわないで、容易に、かつ確実に表在性および浸潤性膀胱癌のクラスを識別する方法は存在しない。尿検査のような非侵襲性の方法を用いて、これらのクラスを識別することができれば、臨床医は、高価で、不便で、しばしば患者に受け入れ難い膀胱鏡検査に依存せずに、適切な治療戦略を選択することが可能になるであろう。

我々は思いがけなく、ある尿マーカーが、特に、血液中には高濃度に見出されなかったマーカーが、組合せてまたは単独で用いた時に、極めて信頼性が高く、敏感で特異的な膀胱癌の診断を提供することができることを見出した。

本発明を、その具体的な実施態様および以下の図面を参照して、記述する。

図１は、ｑＰＣＲ分析で用いられる試料の数および起源をあらわす表である。 図２は、本発明の膀胱癌のｑＰＣＲ分析のための、マーカー、およびマーカーのオリゴヌクレオチドプローブの表を示す。 図３は、浸潤性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図３は、浸潤性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図３は、浸潤性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図３は、浸潤性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図３は、浸潤性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図４は、表在性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図４は、表在性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図４は、表在性膀胱癌の試料にマイクロアレイ法を用いて同定したＢＴＭの表を示す。 図５は、特異的ＢＴＭについて定量的ＰＣＲ分析を用いて行なわれた研究で得られた結果の表を示す。 図５は、特異的ＢＴＭについて定量的ＰＣＲ分析を用いて行なわれた研究で得られた結果の表を示す。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａ：ＳＰＡＧ５、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｂ：ＳＰＡＧ５、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｃ：ＴＯＰ２ａ、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｄ：ＴＯＰ２ａ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｅ：ＣＤＣ２、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｆ：ＣＤＣ２、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｇ：ＥＮＧ、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｈ：ＥＮＧ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｉ：ＩＧＦＢＰ５、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｊ：ＮＯＶ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｋ：ＮＲＰ１、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｌ：ＮＲＰ１、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｍ：ＳＥＭＡ３Ｆ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｎ：ＥＧＦＬ６、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｏ：ＥＧＦＬ６、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｐ：ＭＧＰ、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｑ：ＳＥＭ２、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｒ：ＳＥＭ２、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｓ：ＣＨＧＡ、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｔ：ＣＨＧＡ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｕ：ＢＩＲＣ５、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｖ：ＢＩＲＣ５、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｗ：ＵＢＥ２Ｃ、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｘ：ＵＢＥ２Ｃ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ｙ：ＨｏｘＡ１３、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａａ：ＭＤＫ、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａｂ：ＭＤＫ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａｃ：Ｔｈｙ１、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａｄ：Ｔｈｙｌ、表在性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａｅ：ＳＭＣ４Ｌ１、浸潤性。 図６ａ〜６ａｆは、浸潤性および表在性膀胱腫瘍の様々な腫瘍マーカーに関する定量的ＰＣＲ研究から得られた、相対頻度対ｌｏｇ_２倍率変化データを示すヒストグラムである。図６ａｆ：ＳＭＣ４Ｌ１、表在性。 図７は、尿試料を用いて、特異的ＢＴＭについての定量的ＰＣＲ分析を用いて行なわれた研究で得られた結果の表を示す。 図８は、患者および健全な対照の尿中の膀胱癌マーカーの相対的な蓄積を示す箱ひげ図を示す。１２のＢＴＭの各々の対でデータを示し；各対の上の箱が、健康な対照患者からの尿試料を表わし、下の箱が、膀胱癌の患者からの尿試料を表わす。箱は第２５、第５０、および第７５百分位を定める。すべてのデータは、健康な対照の中央値に対するｌｏｇ_２倍率変化である。ドットは外れ値を表わす。 図９は、膀胱癌組織からのＲＮＡと比較した、全血から抽出された全ＲＮＡの定量的ＰＣＲ分析の棒グラフを示す。 図１０は、膀胱癌患者の尿中のマーカー転写物の過剰蓄積の中央値を示す。患者と健全な対照の間の、および患者と非悪性の対照の間の、ｌｏｇ_２差異を別々に示す。 図１１は、健康および非悪性の対照と比較した、癌患者の尿中でのマーカー転写物の過剰な出現を示す箱ひげ図を表示する。箱は、第２５、第５０、および第７５百分位を定める。すべてのデータは、健康な対照の中央値に対する相対値である。点で充たした箱は、健康な被験者からの試料に対応する。暗影で充たした箱は、非悪性の泌尿器疾患を有する患者からの試料に対応し、また切刻模様で充たした箱は膀胱癌の患者からの試料に対応する：ａ．Ｈ０ＸＡ１３；ｂ．ＩＧＦＢＰ５；ｃ．ＭＤＫ；ｄ．ＭＧＰ；ｅ．ＮＲＰｌ；ｆ．ＳＥＭＡ３Ｆ；ｇ．ＳＭＣ４Ｌ１；ｈ．ＴＯＰ２Ａ；ｉ．ＵＢＥ２Ｃ。ドットは、外れ値を表わす。 図１２ａ〜１２ｂは、浸潤性および表在性型の腫瘍について、正常発現の中央値の第９５百分位数より高い発現を有するマーカーの数を示すヒストグラムをそれぞれ表す。結果は、１２のマーカーについてのｑＰＣＲデータに基づき、各腫瘍試料に対して別々に示されている。 図１２ａ〜１２ｂは、浸潤性および表在性型の腫瘍について、正常発現の中央値の第９５百分位数より高い発現を有するマーカーの数を示すヒストグラムをそれぞれ表す。結果は、１２のマーカーについてのｑＰＣＲデータに基づき、各腫瘍試料に対して別々に示されている。 図１３ａ〜１３ｂは、腫瘍組織と非悪性組織を正確に区別する能力に対する複数のマーカーの効果を示す表を示す。表はｑＰＣＲデータから導かれる正規分布から構成した。図１３ａは、浸潤性膀胱癌組織と非悪性組織とを、９５％の特異性で正確に区別する能力に対する複数のマーカーの効果を表す。 図１３ａ〜１３ｂは、腫瘍組織と非悪性組織を正確に区別する能力に対する複数のマーカーの効果を示す表を示す。表はｑＰＣＲデータから導かれる正規分布から構成した。図１３ｂは、表在性膀胱癌組織と非悪性組織とを、９５％の特異性で正確に区別する能力に対する複数のマーカーの効果を表す。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ａ：浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ｂ：表在性ＴＣＣ。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ｂ：表在性ＴＣＣ。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ｂ：表在性ＴＣＣ。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ｂ：表在性ＴＣＣ。 図１４ａ〜１４ｂは、ｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、浸潤性移行上皮癌（ＴＣＣ）に対する、９５％特異性でのマーカーの組合せの感度を示す表を示す。図１４ｂ：表在性ＴＣＣ。 図１５は、膀胱癌（ＴＣＣ）患者から得られた尿試料と非悪性の泌尿器疾患を有する患者から得られた尿試料とを正確に区別する能力に対する複数のマーカーの効果を示す表を示す。表を、尿のｑＰＣＲ分析から得られたデータの正規分布から作成した。 図１６は、尿のｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、ＴＣＣ検出のための尿中のマーカーの組合せの、９５％特異性における感度を示す表である。 図１６は、尿のｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、ＴＣＣ検出のための尿中のマーカーの組合せの、９５％特異性における感度を示す表である。 図１６は、尿のｑＰＣＲデータの正規分布から計算された、ＴＣＣ検出のための尿中のマーカーの組合せの、９５％特異性における感度を示す表である。 図１７は、表在性および浸潤性膀胱癌の患者の尿から抽出されたＲＮＡ中のＢＴＭの比率を示す箱ひげ図を示す。箱は、第２５、第５０および第７５百分位を定める。灰色影を付した箱は、表在性膀胱癌の患者からの試料を表し、また、線影を付した箱は、浸潤性膀胱癌の患者からの試料を表わす：ａ．ＴＯＰ２Ａ／ＨＯＸＡ１３の組合せ；ｂ．ＴＯＰ２Ａ／ＩＧＦＢＰ５の組合せ；およびｃ．ＴＯＰ２Ａ／ＳＥＭＡ３Ｆの組合せ。ドットは外れ値を表わす。 図１８は、種々の病期の膀胱癌の患者の尿中のＢＴＭの比率を示す箱ひげ図を示す。箱は、第２５、第５０、および第７５百分位を定める。点で充たした箱は表在性膀胱癌患者からの試料に対応し、灰暗影の箱は病期１の浸潤性腫瘍患者からの試料に対応し、また線影の箱は病期２〜３の腫瘍患者からの試料に対応する：ａ．ＴＯＰ２Ａ／ＨＯＸＡ１３の組合せ；ｂ．ＴＯＰ２Ａ／ＩＧＦＢＰ５の組合せ；およびｃ．ＴＯＰ２Ａ／ＳＥＭＡ３Ｆの組合せ、である。ドットは外れ値を表わす。 図１９は、表在性および浸潤性膀胱腫瘍から抽出されたＲＮＡ中のＢＴＭの比率を示す箱ひげ図を表す。箱は、第２５、第５０、および第７５百分位を定める。灰暗影の箱は表在性膀胱腫瘍患者からの試料を表し、また線影の箱は浸潤性膀胱腫瘍患者からの試料を表す：ａ．ＴＯＰ２Ａ／ＨＯＸＡ１３の組合せ；ｂ．ＴＯＰ２Ａ／ＩＧＦＢＰ５の組合せ；およびｃ．ＴＯＰ２Ａ／ＳＥＭＡ３Ｆの組合せ、である。ドットは外れ値を表わす。 図２０は、膀胱癌検出に適用するための１マーカーの組合せを示す箱ひげ図を表す。図は、健康および非悪性の対照と比較した癌患者の尿中の４つのマーカーの群の過剰な出現を示す。箱は、第２５、第５０、および第７５百分位を定める。すべてのデータは、健全な対照の中央値に対する相対値である。点で充たしたボックスは健康な被験者からの試料に対応する。灰暗影で充たしたボックスは非悪性泌尿器疾患を有する患者からの試料に対応し、また切刻模様で充たした箱は膀胱癌の患者からの試料に対応する：ａ．Ｈ０ＸＡ１３；ｂ．ＭＧＰ；ｃ．ＳＥＭＡ３Ｆ；およびｄ．ＴＯＰ２Ａ、である。ドットは外れ値を表わす。 図２１は、膀胱癌の組織学的な型を決定するためのマーカーの組合せを示す箱ひげ図を表す。図は、表在性および浸潤性膀胱癌の患者の尿から抽出されたＲＮＡ中のＢＴＭの比率を示す。箱は、第２５、第５０、および第７５百分位を定める。灰暗影の箱は表在性膀胱癌患者からの試料を表し、また線影の箱は浸潤性膀胱癌患者からの試料を表す：ａ．ＴＯＰ２Ａ／ＳＥＭＡ３Ｆの組合せ；ｂ．ＴＯＰ２Ａ／ＨＯＸＡ１３の組合せ、である。ドットは外れ値を表わす。

発明の詳細な説明
定義
本発明の実施態様について詳細に記述する前に、本明細書に用いられる用語のいくつかの定義を与えることは有用であろう。

用語「マーカー」とは、生物学的現象の存在に、定量的にまたは定性的に関連している分子の意味である。「マーカー」の例には、現象の背後に存在する機構に直接関係するか間接的に関係するかによらず、遺伝子、遺伝子断片、ＲＮＡ、ＲＮＡ断片、タンパク質、タンパク質断片、関連する代謝産物、副産物または他の識別する分子が含まれる。

用語「感度」とは、疾病を有する個人中の、検査に陽性反応を示す個人の割合を意味する。したがって、増大した感度とは、より少ない偽陰性の検査結果を意味する。

用語「特異性」とは、疾病を有さない個人中の、検査に陰性反応を示す個人の割合を意味する。したがって、増大した特異性とは、より少ない偽陽性の検査結果を意味する。

用語「ＢＴＭ」即ち「膀胱腫瘍マーカー」、または「ＢＴＭファミリーメンバー」とは、膀胱癌に関連するマーカーを意味する。用語ＢＴＭには、さらに個々のマーカーの組合せが含まれ、その組合せは、膀胱癌を検出する感度および特異性を改善する。本出願のいくつかの項では、用語ＢＴＭは便宜上ＵＢＴＭ（本明細書に定義された）を含んでいてもよい。ＢＴＭの非限定的な例が、本明細書の図３および４に挙げられている。

ＢＴＭを、膀胱癌を有する疑いのある患者の組織試料からＲＮＡを抽出し、そのＲＮＡを、多数のオリゴヌクレオチドがその上に存在するマイクロアレイに加えて試料ＲＮＡをアレイ上のオリゴヌクレオチドにハイブリダイズさせ、次に、各アレイ・スポットに結合した測定対象のＲＮＡのレベルを定量することにより、同定することができる。あるマーカーの存在量が、マイクロアレイ法を用いて正常、非悪性の組織で見出される存在量の少なくとも約１．２倍である閾値より上の場合は、そのマーカーをＢＴＭであると考える。あるいは閾値は、正常値の約２倍、正常値より約３倍、正常値より４倍、または約５倍より上にできる。「正常」によって、我々は正常な集団の第９０百分位数を越えるものを意味する。他の場合には、正常とは、第９５百分位数の（すなわち平均から標準偏差（ＳＤ）の約２倍の）、および他の場合には第９７．５百分位数（すなわちＳＤの約３倍の）、または第９９百分位数よりも大きな存在レベルを意味することができる。

よりさらなる場合において、腫瘍組織中には存在するが、血液中には実質的な程度存在しないＢＴＭを選択することができる。「実質的な程度」とは、腫瘍組織中の量が、血液で見られる量よりも、ｑＰＣＲによって測定すると少なくとも約５サイクルだけ多いことであると我々は定める。

用語「ＵＢＴＭ」即ち「尿の膀胱腫瘍マーカー」または「ＵＢＴＭファミリーメンバー」とは、尿中に見出される膀胱癌に関連するＢＴＭマーカーを意味する、しかしＴＯＰ２Ａ、ＭＤＫ、またはＢＩＲＣ５は含まれない。用語ＵＢＴＭは、さらに２マーカーの組合せ、および３マーカーの組合せを含み、その組合せは、尿試料中で膀胱癌を検出する感度および選択性を改善する。ＵＢＴＭの非限定的な例が、本明細書の図１４ａおよび１４ｂに挙げられている。

他の場合においては、ＵＢＴＭを尿中で、マイクロアレイ法を用いて、またはｑＰＣＲ法により、順方向プライマー、逆方向プライマーおよび評価するマーカーに基づいて選択されるプローブを用いて、同定することができる。尿中の膀胱癌の検出閾値は、膀胱癌を有する正常な被験者の尿中のマーカーレベルより、約１サイクル（２倍）、２サイクル（４倍）、３サイクル（８倍）、４サイクル（１６倍）、５サイクル（３２倍）、またはそれ以上大きくてよい。

用語「ｑＰＣＲ」とは、定量的ポリメラーゼ連鎖反応を意味する。

用語「発現」は、遺伝子または遺伝子の一部からのｍＲＮＡの産生を含み、ＲＮＡまたは遺伝子または遺伝子の部分によってコードされるタンパク質の産生を含み、また発現に関連した検知可能な物質の出現を含む。例えば、抗体などの結合リガンドの、遺伝子または他のオリゴヌクレオチド、タンパク質またはタンパク質断片への結合、および結合するリガンドの視覚化が、用語「発現」の範囲に含まれる。したがって、ウェスタンブロットなどの免疫ブロット上のスポットの増大した濃度が、根底に存在する生物分子の「発現」という用語に含まれる。

用語「発現速度」とは、転写物またはタンパク質の量の時間による変化を意味する。

用語「発現過剰」は、定められた時間当たりの、１個の細胞または細胞型中のマーカーの発現速度が、別の細胞または細胞型より高い場合に用いられる。

用語「蓄積」とは、正常な平均値と比較した、試料中のマーカーの増大した量を意味する。「増大した量」とは、マイクロアレイ法を用いて測定した時に、マーカーの量が、正常範囲の、第９０、第９５、第９７．５、第９９、またはそれより大きな百分位数より、少なくとも約１．２倍、２倍、３倍、４倍、または５倍高い、という意味に用いる。ｑＰＣＲを用いて測定した時、「増大した量」とは、正常範囲の第９０、第９５、第９７．５、または第９９百分位数より、少なくとも約１サイクル（２倍）、２サイクル（４倍）、３サイクル（８倍）、４サイクル（１６倍）、５サイクル（３２倍）、またはそれ以上高いマーカー量の意味である。

蓄積は、細胞中の（細胞当たりベースでの）マーカーの増大した量を含むか、または試料中の特定のマーカーを有する細胞の増大した数を意味することができる。したがって蓄積は、膀胱癌の特徴を有しない条件と比較した、尿中の（体積当たりベースでの）マーカーの増大した全量を意味することができる。蓄積はまた、与えられた細胞型中のＢＴＭの発現速度の増加、および／または正常な発現速度でＢＴＭを発現する細胞の数の増加を反映することができる。さらに、蓄積は、細胞膜の完全性の喪失または細胞死および破壊により存在する、フリーｍＲＮＡを反映することもできる。

発明を実施するための最良の形態
膀胱を含む腫瘍の検出および評価のためのマーカーを提供する。多数の遺伝子およびタンパク質が、膀胱腫瘍に関連していることが発見された。膀胱腫瘍を有する患者からおよび正常な尿路上皮の非悪性試料から採取した試料のマイクロアレイ分析により、多くの膀胱腫瘍において、ある遺伝子の過剰発現または遺伝子産物の尿中の蓄積の特異的パターンが、疾病に関連しているという驚くべき発見がもたらされた。最も驚くべきことに、膀胱癌の患者からの尿試料中には高いレベルで存在するが、健康な個人、および特に、血尿症を示す個人を含む非悪性泌尿器疾患を有する個人では低レベルで存在するマーカーが、単離されたのである。マーカー、例えば遺伝子産物（例えば、ｍＲＮＡなどのオリゴヌクレオチド）ならびにオリゴヌクレオチドから翻訳されたタンパク質およびペプチドの検出は、したがって腫瘍、特に膀胱腫瘍の存在を示唆する。

特定のマーカーまたはマーカーの組のレベルは、存在するマーカーの量と比較した生成された尿の量に依存する可能性があるのは当然である。したがって、減少した尿生産（例えば低下した尿量）によって特徴づけられる条件では、マーカー濃度が増大するであろうが、それは膀胱癌を反映しないであろう。したがって、いくつかの実施態様では、マーカー量を所定の時間あたりの全尿生産量によって補正することができる。あるいは、マーカー濃度を尿試料中の全細胞数によって補正することができ、他の実施態様では、尿中に存在する全タンパク質によって補正することもできる。他方では、増加した尿生産量が腫瘍マーカーを薄め、そのために、膀胱癌の存在を隠蔽する傾向がある。そのような条件は、増加した水分摂取量、減少した食塩摂取量、利尿薬の使用の増大、または抗利尿ホルモンの産生または活性の抑制に関連している可能性がある。

いくつかの実施態様では、公知技術を用いて腎機能を測定することができる。これらには、例としてクレアチニンクリアランスの測定が含まれる。しかし、腎機能の測定に適切な多くの方法があることが知られている。異常な腎機能が見出される条件では、適切な補正を用いて、測定されたマーカーの蓄積を調整することができる。それにより膀胱癌をより正確に診断することができる。

癌マーカーは試料中で、任意の適当な技術を用いて検出することができ、その技術はオリゴヌクレオチドプローブ、ｑＰＣＲ、または癌マーカーに対して作成された抗体を含むことができるが、それらに限られない。

検査する試料は、腫瘍の疑いのある組織の試料に制限されないことは当然であろう。マーカーは、血清中へ分泌されるか、細胞膜から脱落するか、あるいは尿中に失われる細胞に結合している可能性がある。したがって、試料は任意の身体試料を含むことができ、血液、血清、腹膜洗液、脳脊髄液、尿、および糞便試料を含む。

１つの癌マーカーを試料中で検出することは、その被験者中の腫瘍の存在を示すことになろう。しかし、複数の癌マーカーの発現の存在および量を分析することによって、診断の感度が増大し、一方で偽陽性および／または偽陰性の結果の頻度が減少するのは当然であろう。したがって本発明による複数のマーカーを、癌の早期の発見および診断を増大させるために用いることができる。

癌検出の一般的手法
次の手法は、ＢＴＭまたはＵＢＴＭファミリーメンバーを用いて、膀胱癌を含む癌を検出するために使用することができる方法である。しかしそれらに限定されない。

マーカーに対して選択的な核酸プローブを用いるハイブリダイゼーション法
これらの方法は、核酸プローブを支持体へ結合させる工程、および適切な条件下で検査試料に由来するＲＮＡまたはｃＤＮＡとハイブリダイズさせる工程を含む（Sambrook, J., E Fritsch, E. and T Maniatis, Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3^rd. ColdSpring HarborLaboratory Press: Cold Spring Harbor(2001)）。これらの方法を、腫瘍組織または液体試料に由来するＢＴＭまたはＵＢＴＭに適切に適用することができる。ＲＮＡまたはｃＤＮＡ調製物を、検出および定量化を可能にするために、通常は蛍光性または放射性分子でラベルする。いくつかの応用では、信号強度を増強するために、ハイブリダイズさせるＤＮＡに、分岐した蛍光ラベル構造を有するタグを付することができる（Nolte, F.S., Branched DNA signal amplification for direct quantitation of nucleic acid sequences in clinical specimens. Adv. Clin. Chem. 33, 201-35 (1998)）。ハイブリダイズしていないラベルを、０．１×ＳＳＣ、０．５％ＳＤＳなどの薄い塩溶液中での十分な洗浄により除いた後、ゲル像の蛍光検出またはデンシトメトリーによって、ハイブリダイゼーションの量を定量化する。支持体は、ナイロンまたはニトロセルロース膜などの固体であり、あるいは液体懸濁液中でハイブリダイズするミクロスフェアまたはビーズから成ることができる。洗浄および精製が可能なように、ビーズは磁性体であってよく（Haukanes, B-I and Kvam, C, Application of magnetic beads in bioassays. Bio/Technology 11, 60-63 (1993))、または、フローサイトメトリーが可能なように蛍光ラベルしてもよい (例えば: Spiro, A., Lowe, M. and Brown, D., A Bead-Based Method for Multiplexed Identification and Quantitation of DNA Sequences Using Flow Cytometry. Appl. Env. Micro. 66, 4258- 4265 (2000) 参照）。

ハイブリダイゼーション技術のある変形が、蛍光ビーズ支持体を分岐ＤＮＡ信号増幅と組み合わせる、ＱｕａｎｔｉＧｅｎｅ Ｐｌｅｘ（登録商標）分析（Genospectra, Fremont）である。ハイブリダイゼーション技術のさらに別の変形が、Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ（登録商標）ｍＲＮＡ分析（R&D Systems, Minneapolis）である。実施方法はメーカーの指示書に記載された通りである。簡潔に述べれば、分析は、ジゴキシゲニンに結合したオリゴヌクレオチド・ハイブリダイゼーションプローブを用いる。ハイブリダイゼーションを、比色定量分析で、アルカリフォスファターゼに連結された抗ジゴキシゲニン抗体を用いて検出する。

追加の方法は当技術分野において周知であり、本明細書にさらに記載する必要はない。

定量的ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）
定量的ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）を、腫瘍試料に、血清、血漿、および尿の試料に、ＢＴＭ特異的なプライマーおよびプローブを用いて実施することができる。制御された反応において、ＰＣＲ反応で形成された生成物の量（Sambrook, J., E Fritsch, E. and T Maniatis, Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3^rd. Cold Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor (2001)）は、開始時点の鋳型の量と相関関係にある。ＰＣＲ生成物の定量化を、ＰＣＲ反応を、それが対数期にある時に、試薬が律速になる前に止めることにより、行なうことができる。その後、ＰＣＲ生成物をアガロースまたはポリアクリルアミドゲル中で電気泳動し、エチジウムブロマイドまたはそれに匹敵するＤＮＡ染色で染色し、染色強度をデンシトメトリーにより測定する。あるいはＰＣＲ反応の進行を、リアルタイムで生成物蓄積を測定するApplied BiosystemsのＰｒｉｓｍ７０００またはRochのＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒのようなＰＣＲ機器を用いて、測定することができる。リアルタイムＰＣＲは、合成されたＰＣＲ生成物中へ取込まれたＳｙｂｒ ＧｒｅｅｎなどのＤＮＡ陥入性色素の蛍光、または消光剤分子から切断された時にレポーター分子によって放出される蛍光、のどちらかを測定する；レポーター分子および消光剤分子は、オリゴヌクレオチドプローブに組み入れられ、オリゴヌクレオチドプローブは、プライマーオリゴヌクレオチドからＤＮＡ鎖が伸長した後に、標的ＤＮＡ分子にハイブリダイズする。オリゴヌクレオチドプローブは、次のＰＣＲサイクルで、Ｔａｑポリメラーゼの酵素作用により追い出され、分解されて、消光剤分子からレポーター分子を放出する。

いくつかの実施態様では、順方向プライマー、逆方向プライマー、およびプローブのセットが、配列番号１、配列番号１４、および配列番号２７をそれぞれ含む。あるいは、セットは、配列番号２、配列番号１５、および配列番号２８をそれぞれ含む。他の実施態様では、セットは、配列番号３、配列番号１６、および配列番号２９をそれぞれ、配列番号４、配列番号１７、および配列番号３０をそれぞれ、配列番号５、配列番号１８、および配列番号３１をそれぞれ、配列番号６、配列番号１９、および配列番号３２をそれぞれ、配列番号７、配列番号２０、および配列番号３３をそれぞれ、配列番号８、配列番号２１、および配列番号３４をそれぞれ、配列番号９、配列番号２２、および配列番号３５をそれぞれ、配列番号１０、配列番号２３、および配列番号３６をそれぞれ、配列番号１１、配列番号２４、および配列番号３７をそれぞれ、配列番号１２、配列番号２５、および配列番号３８をそれぞれ；ならびに配列番号１３、配列番号２６、および配列番号３９をそれぞれ、含む。

酵素結合免疫分析（ＥＬＩＳＡ）
簡潔に述べれば、サンドイッチＥＬＩＺＡ分析では、ＢＴＭ／ＵＢＴＭに対するポリクローナルまたはモノクローナル抗体を、固体支持体（Crowther, J.R. The ELISA guidebook. Humana Press: New Jersey (2000); Harlow, E. and Lane, D., Using antibodies: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor (1999)）、または懸濁液のビーズに結合する。他の方法は当技術分野において公知であり、本明細書でさらに記述する必要はない。モノクローナル抗体は、ハイブリドーマから導出することができ、またはファージ抗体ライブラリー（Hust M. and Dubel S., Phage display vectors for the in vitro generation of human antibody fragments. Methods MoI Biol. 295:71- 96 (2005)）から選択することができる。非特異的結合部位を、非標的タンパク質調製物および界面活性剤でブロックする。その後、捕獲抗体を、ＢＴＭ／ＵＢＴＭ抗原を含む尿または組織調製物とインキュベーションする。その混合物を洗浄した後、抗体／抗原複合体を、標的とするＢＴＭ／ＵＢＴＭを検出する第２の抗体とインキュベーションする。第２の抗体を、通常は蛍光性分子に、または、酵素反応でまたはレポーターに結合した第３の抗体（Crowther,Id.）で検出することができる他のレポーター分子に、結合させる。あるいは、直接ＥＬＩＳＡでは、ＢＴＭ／ＵＢＴＭを含む調製物を支持体またはビーズに結合させ、標的とする抗原を、抗体−レポーター共役体で直接検出できる（Crowther, 前出）。

モノクローナル抗体およびポリクローナル抗血清を生成する方法は当技術分野において周知であり、本明細書にさらに記述する必要はない。

免疫組織化学
腫瘍マーカーの同定および位置確認を、抗マーカー抗体を用いて、膀胱腫瘍、リンパ節、または遠隔転移について行なうことができる。そのような方法を、例えば結腸直腸、膵臓、卵巣、メラノーマ、肝臓、食道、胃、子宮内膜、および脳、を検出するために用いることができる。

一般に、免疫組織化学を用いて、ＢＴＭを組織中で検出することができる（Harlow, E. and Lane, D., Using antibodies: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor (1999)）。簡潔に述べれば、パラフィン包埋された、または冷凍ＯＣＴ包埋された組織試料を切断して４〜８μmの切片とし、スライドガラスに載せ、固定して透過性化して、次にＢＴＭに対する一次モロクローナル抗体またはポリクローナル抗体とインキュベーションする。一次抗体は、直接抗原検出のために検出分子またはレポーターに結合させることができ、またはその代わりに一次抗体それ自身をレポーターまたは検出分子に結合した二次抗体によって検出することができる。洗浄および任意のレポーター分子の活性化に続いて、ＢＴＭの存在を顕微鏡的に視覚化することができる。

この方法を、腫瘍除去手術前および後に採取した膀胱癌患者からの血清または血漿中のマーカーファミリーメンバーの免疫的検出；結腸直腸、膵臓、卵巣、メラノーマ、肝臓、食道、胃、子宮内膜、および脳を含み、これらに限定されない他の癌患者中のマーカーファミリーメンバーの免疫的検出；ならびに膀胱癌患者からの尿および糞便中のマーカーファミリーメンバーの免疫的検出、にも用いることができる。

ＢＴＭおよびＵＢＴＭを、組織または尿中でイムノブロッティングまたは免疫沈降などの他の標準の免疫的検出技術を用いて検出することができる。（Harlow, E. and Lane, D., Using antibodies: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor (1999)）。イムノブロッティングでは、ＢＴＭ／ＵＢＴＭを含む組織または体液からのタンパク質調製物を、変性条件または非変性条件下でポリアクリルアミドゲル中を電気泳動させる。タンパク質をその後、ナイロンのような膜支持体に移す。ＢＴＭ／ＵＢＴＭを、次に免疫組織化学用に記述したように、モロクローナルまたはポリクローナル抗体と直接または間接的に反応させる。あるいはある調製物では、タンパク質をあらかじめ電気泳動分離しないで、直接膜上にスポットすることができる。信号を、デンシトメトリーによって定量化することができる。

免疫沈降では、ＢＴＭまたはＵＢＴＭを含む可溶性調製物を、ＢＴＭ／ＵＢＴＭに対するモロクローナルまたはポリクローナル抗体とインキュベーションする。その反応物を次に、プロテインＡまたはプロテインＧを共有結合で付着させたアガロースまたはポリアクリルアミドで作られた不活性のビーズとインキュベーションする。プロテインＡまたはＧのビーズは、抗体と特異的に相互作用して、ビーズに結合された抗体−ＢＴＭ／ＵＢＴＭ抗原の固定された複合体を形成する。洗浄に続いて、結合したＢＴＭ／ＵＢＴＭを、イムノブロッティングまたはＥＬＩＳＡによって検出し、定量化することができる。

コンピューターを用いたアレイまたはｑＰＣＲデータの解析
一次データを集め、倍率変化解析を、膀胱腫瘍遺伝子発現のレベルを同じ遺伝子の非腫瘍組織中の発現と比較することにより、行なう。発現が増加していると結論付けるための閾値を提供する（例えば１．５倍増加、２倍増加、および他の実施態様では、３倍増加、４倍増加または５倍増加）。本発明の範囲から外れずに、増加した発現が生じたと結論付けるための他の閾値を選択することができることは当然である。腫瘍遺伝子発現のさらなる解析には、増大した発現を示す遺伝子を、腫瘍の診断を提供するために、既知の膀胱腫瘍の発現プロフィールと照合する工程が含まれる。

ＴＣＣ治療の進行をモニターするためのＢＴＭおよびＵＢＴＭの使用
ＴＣＣの迅速な診断および早期検出に加えて、組織、血清、または尿のいずれかで検出されるＢＴＭおよびＵＢＴＭマーカーを、患者の治療に対する応答をモニターするために用いることができる。これらの応用では、全身的、膀胱内または血管内化学療法、放射線療法、または免疫療法の開始に続いて、時々尿および／または血清試料を採取すればよい。マーカー蓄積の低下は腫瘍サイズの減少を示すことができ、それは有効な治療を示唆する。低下率を、各患者または治療に対する最適の治療用量を予測するために用いることができる。

評価するマーカーは、既知のヒト遺伝子から選択する。評価する遺伝子を図３および４に示す。図３および４に含まれるのは、遺伝子名、ＨＵＧＯ識別名、ＭＷＧオリゴ番号、ＮＣＢＩ ｍＲＮＡ参照配列番号およびタンパク質参照番号である。全長の配列は、http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/で、見つけることができる。

膀胱癌を診断し評価するのに役立つとして同定されたマーカーを、図２および本出願に添付する配列一覧表に表示する。

本発明の諸局面
したがって、ある局面では、本発明には、尿中のＵＢＴＭファミリーメンバーの蓄積を検出する工程を含む、膀胱癌を検出するための方法が含まれる。

他の局面では、ＵＢＴＭファミリーメンバーは、実質的な程度には血液に関連していない。

追加の局面では、ＵＢＴＭは、図３または４に示される群より選択される。

さらにある局面では、検出する工程を、ＢＴＭまたはＵＢＴＭのｍＲＮＡの蓄積を検出することにより行なう。

いくつかの局面では、検出する工程を、マイクロアレイを用いて行なう。

他の局面では、検出する工程を、定量的ポリメラーゼ連鎖反応またはハイブリダイゼーション法を用いて行なう。

さらなる局面では、検出する工程を、ＵＢＴＭタンパク質の蓄積を検出することにより行なう。

よりさらなる局面では、検出する工程を、ＵＢＴＭペプチドの蓄積を検出することにより行なう。

これらの局面のいくつかでは、検出する工程を、ポリクローナルまたはモロクローナルのいずれかであるＵＢＴＭ抗体を用いて、行なう。

追加の局面では、方法には、前記試料中の２つ以上のＵＢＴＭファミリーメンバーの蓄積の検出が含まれる。

これらの追加の局面のあるものでは、方法は、ＴＯＰ２Ａ、ＭＤＫ、またはＢＩＲＣ５を検出する工程を含む。

よりさらなる局面には、ＴＯＰ２Ａ−ＨＯＸＡ１３、ＴＯＰ２Ａ−ＩＧＦＢＰ５、およびＴＯＰ２Ａ−ＳＥＭＡ３Ｆから成る群より選択される１以上のマーカー対を検出する工程、が含まれる。

本発明の他の局面では、膀胱癌を検出する方法は、膀胱癌を有する疑いのある患者からの生体試料中の、図１４ａまたは１４ｂより選択されるＢＴＭファミリーメンバーの２つ以上よりなる組合せの蓄積を検出する工程を含む。

これらの局面のいくつかでは、生体サンプルが、血液、血清、血漿、組織、尿、糞便、脳脊髄液、および腹膜洗液から成る群より選択される。

よりさらなる局面には、ＢＴＭまたはＵＢＴＭに特異的な抗体、およびそれらの産生のための方法（ポリクローナルまたはモノクローナル抗体のどちらか）、が含まれる。

これらの局面のあるものでは、モノクローナル抗体を、図３または４に示される群より選択されるＢＴＭまたはＵＢＴＭに対して指向させることができる。

これらの局面の他のものでは、方法はさらに、別のＢＴＭまたはＵＢＴＭに対して指向された別の抗体を含む。

本発明の追加の局面は、ＢＴＭまたはＵＢＴＭの組合せ（その組合せは図１４ａまたは１４ｂより選択される）の捕獲試薬をその上に有する基質；および前記基質に関連した検出器（その検出器は、前記捕獲試薬に結合した前記ＢＴＭまたはＵＢＴＭの組合せを検出することができる）、を含むＢＴＭを検出するための装置、を含む。

これらの局面のあるものでは、捕獲試薬はオリゴヌクレオチドを含む。

追加の局面では、捕獲試薬は抗体を含む。

いくつかの局面では、ＢＴＭまたはＵＢＴＭが、図３または４に指定された群より選択される。

本発明には、さらに癌検出のためのキットも含まれ、キットは、基質；その上のＢＴＭまたはＵＢＴＭの少なくとも２つよりなる組合せ（その組合せは図１４ａまたは１４ｂより選択される）の捕獲試薬；および使用のための指示書、を含む。

いくつかのキットには、ＢＴＭまたはＵＢＴＭに特異的なオリゴヌクレオチドまたはＢＴＭ特異的な抗体である、捕獲試薬が含まれる。

いくつかのキットでは、ＢＴＭまたはＵＢＴＭは、図３または４に示される群より選択される。

あるキットでは、マーカーが、ＩＧＦＢＰ５、ＭＧＰ、ＳＥＭＡ３ＦおよびＨＯＸＡ１３から成る群より選択される。

追加の局面には、膀胱癌の存在を検出するための方法であって、尿試料中の、ＢＩＲＣ２、ＣＤＣ２、ＨＯＸＡｌ３、ＩＧＦＢＰ５、ＭＤＫ、ＭＧＰ、ＮＯＶ、ＮＲＰｌ、ＳＥＭＡ３Ｆ、ＳＰＡＧ５、ＴＯＰ２Ａから成る群より選択される、１つ以上のマーカーの存在を決定する工程を含む方法、が含まれる。ここで前記マーカーは、血液中には実質的に存在しない。

本発明の他の局面には、前記患者の尿中の、ＨＯＸＡ１３、ＩＧＦＢＰ５、ＭＤＫ、ＭＧＰ、ＮＲＰｌ、ＳＥＭＡ３Ｆ、ＳＭＣ４Ｌ１、ＴＯＰ２Ａ、およびＵＢＥ２Ｃから成る群からより選択される１つ以上のマーカーの蓄積を決定する工程；および前記試料中の前記マーカーの比率を決定する工程（その比率は膀胱癌の存在に関連している）を含む、非悪性膀胱疾患から悪性膀胱疾患を区別するための方法が含まれる。

これらの局面のあるものでは、方法が、尿中の、少なくとも１つの第２のＢＴＭの蓄積を測定する工程を含む。

これらの実施態様のあるものでは、第１のマーカーはＴＯＰ２Ａであり、また第２のマーカーは、ＨＯＸＡ１３、ＩＧＦＢＰ５、およびＳＥＭＡ３Ｆから成る群より選択される。

追加の局面では、本発明には、マーカーの蓄積比率を、表在性膀胱癌、浸潤性病期１膀胱癌、または浸潤性病期２〜３膀胱癌を示すものとして関連させる工程が含まれる。

よりさらなる局面では、本発明には、患者からの第１の試料中の、図３または４から選ばれる１つ以上のマーカーの存在量を、治療期間後の患者からの第２の試料中の図３または４から選ばれる１つ以上のマーカーの存在量と、比較する工程を含む、膀胱癌の治療効能を決定するための方法、が含まれる。

本明細書に記述するように、腫瘍の検出を、１つ以上の腫瘍マーカーの発現を測定することによって行なうことができる。複数のＢＴＭまたはＵＢＴＭのいずれかの増大した発現と診断された膀胱癌の存在との関連性が非常に高いことが、思いがけなく発見された。検出された最小の有意な関連性は、約０．０１８のｐ値を有していた。関連性の多くは、１０^-10より小さいｐ値で有意であった。そのような高い有意性があるため、２以上のＢＴＭまたはＵＢＴＭの増大した発現または蓄積を検出することは、必要でないかもしれない。しかしながら、本発明のＢＴＭの冗長度によって、増大した信頼性で膀胱癌を検出することが可能になる。

本明細書で提供される方法には、さらに高感度の分析が含まれる。ｑＰＣＲは極めて敏感であり、試料中の非常に小さいコピー数（例えば１〜１００）の遺伝子産物を検出するために用いることができる。そのような感度のため、膀胱癌に関連したイベントの極めて早期の発見が可能となる。

方法
腫瘍の収集
膀胱腫瘍試料および非悪性尿路上皮試料を、日本の京都大学病院、および他の共同研究の日本の病院で切除された外科的試験片から収集した。

尿の収集
非悪性の対照および膀胱癌患者からの尿試料を、日本の京都大学病院から得た（図１）。健康な対照試料を、白人および日本人のボランティアから得た。

ＲＮＡ抽出
腫瘍組織をＴｒｉＲｅａｇｅｎｔ：水（３：１）混合液中でホモジナイズし、次にクロロホルムで抽出した。全ＲＮＡを次に、水相から、ＲＮｅａｓｙ（商標）法（Qiagen）を用いて精製した。ＲＮＡをまた、１６の癌細胞系統から抽出し、参照ＲＮＡとして役立てるためにプールした。

ＲＮＡを、尿試料を等容量の溶解緩衝液（５．６４Mグアニジン−ＨＣｌ、０．５％サルコシル、５０mM酢酸ナトリウム（ｐＨ６．５）、および１ｍＭβ−メルカプトエタノール；１．５M Ｈｅｐｅｓ pH８でｐHを７．０に調節）と混合することにより、尿から抽出した。全ＲＮＡを、その後、ＴｒｉｚｏｌおよびＲＮｅａｓｙ（商標）法を用いて抽出した。ＲＮＡ調製物を、ｃＤＮＡ合成に先立って、Ｑｉａｇｅｎ ＱＩＡｑｕｉｃｋ（商標）ＰＣＲ精製キットを用いてさらに精製した。

ＲＮＡを、３人の健康なボランティアの血液から、３．６％デキストラン中の沈降を用いて全血から濃縮した細胞に対してＴｒｉｚｏｌ／ＲＮｅａｓｙ（商標）抽出を行なうことにより、抽出した。

マイクロアレイ・スライド調製物
エポキシ樹脂コーティングされたスライドグラス（MWG Biotech）に、〜３０，０００の５０量体オリゴヌクレオチド（MWG Biotech）を、Gene Machinesのマイクロアレイ作製ロボットを用い、メーカーのプロトコルに従って、プリントした。

ＲＮＡラベリングおよびハイブリダイゼーション
ｃＤＮＡを、５μgの全ＲＮＡから、Ｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ II（商標）逆転写酵素（Invitrogen）を用いて、５−(３−アミノアリル)−２’デオキシウリジン−５’三リン酸を含む反応で、転写した。その後、反応物をＭｉｃｒｏｃｏｎカラムで脱イオン化し、次いでＣｙ３またはＣｙ５と、炭酸水素緩衝液中１時間室温でインキュベーションした。取込まれなかった色素を、Ｑｉａｑｕｉｃｋカラム（Qiagen）を用いて除去し、試料をＳｐｅｅｄＶａｃ中で１５μlに濃縮した。Ｃｙ３およびＣｙ５ラベルされたｃＤＮＡを、次に、Ａｍｂｉｏｎ ＵＬＴＲＡｈｙｂ（商標）緩衝液と混合し、１００℃２分間で変性させ、ハイブリダイゼーション室中４２℃１６時間で、マイクロアレイ・スライドにハイブリダイズさせた。スライドを、その後洗浄し、Ａｘｏｎ ４０００Ａ（商標）スキャナー中で２回、２つの出力設定で走査した。

癌マーカー遺伝子のマイクロアレイ分析
５３の膀胱腫瘍および２０の非悪性（「正常な」）膀胱組織試料からのＲＮＡをＣｙ５でラベルし、Ｃｙ３ラベルされた参照ＲＮＡとのハイブリダイゼーションを、２重または３重に行った。次に規格化の後、２９，７１８の各遺伝子中の発現の変化を、倍率変化および統計的確率により推定した。

規格化手続き
Ｇｅｎｅｐｉｘ（商標）ソフトウェアにより検出された蛍光強度の中央値を、局所的なバックグラウンド強度を差し引くことにより補正した。ゼロより低いバックグラウンド補正強度を有するスポットを除外した。規格化を容易にするために、強度比および全スポット強度を対数変換した。対数化した強度比を、ＬＯＣＦＩＴ（商標）パッケージに含まれている局所回帰を用いて、色素および空間の偏りを補正した。対数化した強度比を、全スポット強度および局所化について同時に回帰推定した。局所回帰の残差が、補正された対数化倍率変化を与えた。品質制御のために、各規格化マイクロアレイの比を、スポット強度および局所化に関してプロットした。続いて、何らかの残存アーティファクトの有無についてプロットを目視検査した。さらに、ピンチップバイアス検出のためにＡＮＯＶＡモデルを適用した。規格化のすべての結果およびパラメーターを、統計解析のためＰｏｓｔｇｒｅｓデータベースに入れた。

統計解析
測定された倍率変化の、アレイ間の比較を改良するために、ｌｏｇ_２（比率）を、１アレイ当たり同一の全標準偏差を持つように拡大・縮小した。この標準化により、平均組織内クラス変動が減少した。結果の目視検査を容易にするために、lｏｇ_２（比率）をさらに、各オリゴヌクレオチドがゼロの中央値を持つように移動させた。雑音耐性を改善するために、倍率変化に基づく順位和検定を次に用いた。この検定は次の２工程から成る：ｉ）アレイ内の倍率変化順位（Ｒｆｃ）の計算、およびii）腫瘍組織の中央値（Ｒｆｃ）からの正常組織の中央値（Ｒｆｃ）の減算。両方の中央値順位の差が、倍率変化順位の評点を定義する。標準化データについて３つの追加の統計的検定を行なった：それは１）Ｓｔｕｄｅｎｔの２標本ｔ−検定、２）Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定、および３）マイクロアレイの統計解析（ＳＡＭ）である。統計的方法（倍率変化順位、ｔ−検定、Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定、およびＳＡＭ）の各々によって決定された、３００個の最も有意に上方調節された遺伝子に、各検査について順位評点が与えられた。ある遺伝子が１つのリストに現われ、他の１つ以上には現われなかった場合、その評点に加重因子５００を加えた。次に、すべての順位評点を加え合わせて、１つの合計順位評点とした。

マーカーの組合せの統計解析
腫瘍と非悪性試料を区別するために、２マーカーまたは３マーカーの組合せを用いることの価値を決定するために、腫瘍および非悪性試料からのｑＰＣＲデータを次の解析に付した。非悪性および腫瘍試料についての正規分布を、標本平均および標準偏差を用いて、生成した。次に、腫瘍発現データから得られた値が、非悪性の分布中で定義された閾値（例えば５０％、７０％、７５％、８０％、９０％、９５％、または９９％以上）を越える確率（すなわち感度）を決定した。マーカーの組合せについては、少なくとも１つのマーカーが閾値を越える確率を決定した。

尿試料ならびに腫瘍試料中の解析するマーカーの組合せの価値を示すために、正規分布解析を、図１のシリーズ２に記載されたＴＣＣ患者および非悪性対照からの尿試料を用いて得られたｑＰＣＲデータについて行なった。ＴＣＣ患者のｑＰＣＲデータから得られた値が、非悪性試料分布中において定義された閾値（例えば５０％、７０％、７５％、８０％、９０％、９５％、または９９％より大きい）を越える確率を決定した。

尿中の膀胱癌マーカーを検出するための方法
いくつかの実施態様では、尿試料についてＢＴＭの分析を望ましく実施することができる。一般に、これらの液体中のオリゴヌクレオチド、タンパク質、およびペプチドを分析するための方法は、当技術分野において公知である。しかし、説明のために述べると、ＢＴＭの尿中レベルを、サンドイッチ型酵素結合免疫吸着分析（ＥＬＩＳＡ）を用いて、定量することができる。血漿または血清分析のために、５μlに小分けした、適切に希釈した試料または連続的に希釈した標準ＢＴＭ、および７５μlのペルオキシダーゼ結合抗ヒトＢＴＭ抗体を、マイクロタイタープレートのウエルに加える。３０℃３０分のインキュベーション期間後、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）中の０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０でウエルを洗浄し、結合していない抗体を除去する。次に、ＢＴＭと抗ＢＴＭ抗体の結合複合体を、Ｈ₂Ｏ₂を含むｏ−フェニレンジアミンと１５分間３０℃でインキュベーションする。その反応を１M Ｈ₂ＳＯ₄を加えることにより止めて、マイクロタイタープレート読取機により、４９２nmの吸光度を測定する。抗ＢＴＭ抗体はモノクローナル抗体またはポリクローナル抗血清でよいことは当然である。

多くのタンパク質は、（１）細胞によって分泌され、（２）細胞膜から剥がされ、（３）細胞が死んで細胞から失われ、または（４）脱ぎ捨て去られた細胞内に含まれている、ものであるから、ＢＴＭもまた尿中で検出されるのは当然である。さらに、試料中のＢＴＭの発現または試料中のＢＴＭの蓄積のいずれかを測定することにより、膀胱癌の診断を決定することができる。先行技術の診断方法には、膀胱鏡観察、細胞診、およびこれらの手続きの間に抽出された細胞の検査が含まれる。そのような方法は、尿中の、または尿路上皮の剥取試料中の、または他の場合には、膀胱壁の生検試料中の、腫瘍細胞の同定に依存していた。これらの方法には、試料採取誤差、観察者間の同定誤差、その他を含むいくつかの型の誤差がある。

定量的リアルタイムＰＣＲ
リアルタイムまたは定量的ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）を、ＰＣＲ鋳型のコピー回数の絶対的または相対的な定量化に用いる。Ｔａｑｍａｎ（商標）プローブおよびプライマーセットを、Ｐｒｉｍｅｒ Ｅｘｐｒｅｓｓ Ｖ ２．０（商標）(Applied Biosystems)を用いて設計した。可能な場合には、その結果得られるアンプリコンに、可能性のあるすべてのスプライシング変異体が含まれ、ＭＷＧ-Ｂｉｏｔｅｃｈ由来のマイクロアレイオリゴヌクレオチドによってカバーされる領域へアンプリコン優位が与えられていた。プライマーおよびプローブの配列を図２に示す。あるいは、標的遺伝子が、所望のアンプリコンをカバーするＡｓｓａｙ−ｏｎ−Ｄｅｍａｎｄ（商標）ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｓｓａｙ（Applied Biosystems）によって表示されていた場合は、これらを用いた。研究組織内で設計された分析では、プライマー濃度を、ＳＹＢＲグリーンラベルプロトコルおよび参照ＲＮＡから作られたｃＤＮＡを用いて滴定した。増幅を、ＡＢＩ Ｐｒｉｓｍ（商標）７０００配列検出システムで、標準のサイクル条件下で行った。単一回増幅の生成物を解離曲線中で観察したときは、最適なプライマー濃度および５’ＦＡＭ〜３’ＴＡＭＲＡリン酸Ｔａｑｍａｎ（商標）プローブ（Proligo）を最終濃度２５０nMで用いて、６２５倍にわたる濃度範囲で標準曲線を生成した。０．９８を超える回帰係数で標準曲線を与える分析を、次の分析で用いた。

分析を、２つの９６ウエルプレート上で、各ＲＮＡ試料を単一のｃＤＮＡにより代理させて行なうことができる。各プレートは、２重の、６２５倍の濃度範囲にわたる参照ｃＤＮＡ標準曲線を含んでいた。分析は、ΔＣＴ（標的遺伝子ＣＴ−平均の参照ｃＤＮＡのＣＴ）の計算から成っていた。ΔＣＴは、負のｌｏｇ_２倍率変化に正比例する。次に、非悪性ｌｏｇ_２倍率変化の中央値に相対的なｌｏｇ_２倍率変化を計算した（ｌｏｇ_２倍率変化−正常ｌｏｇ_２倍率変化の中央値）。倍率変化を次に、頻度クラスへクラスター化して、グラフにするか、箱ひげ図で図示することができる。

膀胱悪性腫瘍のための血清および尿マーカーの選択
推定血清マーカーを、（ｉ）コードされたタンパク質が細胞から分泌されるか、または細胞膜から剥ぎ取られる可能性、（分泌の可能性はＴａｒｇｅｔＰ（商標）(Emanuelsson et al; J. MoI. Biol. 300, 1005-1006 (2000) による分析に基づいていた）および（ii）その合計順位評点、に基づいて、アレイデータから選択することができる。しかしながら、腫瘍試料中の過剰発現の程度の変化は、腫瘍の異質性だけでなく、腫瘍試料への、平滑筋、結合組織、粘膜下細胞（U.S Patent 6,335,170 参照）、間質細胞、および非悪性上皮を含む「正常」組織の混入の程度の変動も反映する。多くの状況で、「正常」の混入は５から７０％までの範囲であり、中央値はおよそ２５％であった。

我々はしたがって、正常な膀胱細胞が多く混入していない尿試料中のＢＴＭの分析により、これらの「偽陽性」結果を減少させることができた。さらに、ｑＰＣＲ法を用いることにより、我々は、先行技術によるマイクロアレイ法の使用に比較して、尿試料中のｍＲＮＡレベルをより正確に決定することができた。その結果我々は、他の膀胱細胞型の大きな混入を回避することができ、それにより臨床試料のマイクロアレイ分析技術における、より扱いにくい問題の１つを回避した。

尿中のマーカーの蓄積を測定し、腫瘍中の発現率に依存しないことにより、我々は予想外に、膀胱癌の検出ならびにその病期および／またはその型の決定に役立つ、多くのＢＴＭを発見した。さらに、患者が膀胱癌の可能性について内科医を受診する最初の徴候の１つが、尿中の血液の存在であるため、我々は血液中で高度には発現されないＢＴＭが診断に大きな価値がありえると判断した。これらのマーカーには、ＩＧＦＢＰ５、ＭＧＰ、ＳＥＭＡ３Ｆ、およびＨＯＸＡ１３が含まれる（図９参照）。

蓄積を測定することは、「過剰発現」を定義することよりも利点がある。上に指摘したように、増大した蓄積は、分子生物学的な意味での、真の過剰発現または増大した発現速度（即ち細胞当たり単位時間当たりのヘテロ核ＲＮＡ（ｈｎＲＮＡ）分子、ｍＲＮＡ分子またはタンパク質の増大した数）を反映している可能性がある。しかし、蓄積はまた、たとえ発現速度が増大しなくても、尿中などの与えられた体積中のマーカーの量の増大を意味することができる。例えば、一つの腫瘍細胞が正常な量のマーカーを生成しても、試料中にそのような細胞の数の増大が観察されることにより、癌の存在が明らになることが可能である。さらに、蓄積は、試料中のフリーの、または可溶のＲＮＡを反映する可能性がある。ある場合には、マーカーを産生した腫瘍細胞が死滅し、細胞の内容が周囲の組織へ放出される可能性がある。細胞の内容が尿に達する場合には、そこでフリーのマーカーＲＮＡを検出することができる。これらの現象は、特に、通常は選択性および特異性を伴って診断するのが困難であった、表在性膀胱癌を診断するのに役立つ可能性がある。尿中にマーカーの蓄積が測定されることが、表在性膀胱癌の最初の徴候の１つでありうる。したがって、本発明の方法および装置を用いると、初期の膀胱癌を検出することができる可能性がある。

我々はまた、蓄積を測定する際に、試料体積の変化を補正するよう注意する必要があることを指摘しておく。例えば、尿では、単位体積当たりのマーカー量は被験者の腎機能に依存する可能性がある。したがって、尿生産が減少した状態では、尿中の細胞（腫瘍細胞を含む）は濃縮され、それによって、人為的に高い蓄積の測定値（単位体積当たりの）が得られる。そのようなアーティファクトは、尿生産（例えば単位時間当たりの尿生産量）、尿クリアランス（例えばクレアチニンまたはＢＵＮを測定する）の独立した測定を行なうことにより減少させることができる。反対に、利尿中などの、尿生産量が増大している状況では、マーカーを含む細胞が薄められて、人為的に低い蓄積の測定値が生成される可能性がある。しかし、試料中のマーカーの真の蓄積または質量と関連しない、マーカー蓄積の変動を生成する可能性がある利尿薬の使用、水分摂取量および他の因子は、制御することができる。これらの状況では、マーカー量を、尿生産速度に対して補正することができる。

このようにして、尿中のＢＴＭを測定することにより、我々は、先行技術の方法と比較して偽陽性結果の発生を減少させることができ、これらの方法が先行技術方法より優れていることを示すことができた。

尿マーカーを、分泌または膜からの剥落の基準を適用しなかった以外は、上記のアレイデータから選択した。したがって、有用な血清マーカーであると予測されなかった細胞内および膜結合型マーカーが、尿マーカーとして含まれる。

実施例
本明細書に記述する実施例は、本発明の実施態様を説明する目的のためであって、本発明の範囲を制限することを意図しない。他の実施態様、方法、および分析の型は、分子診断技術における当業者の範囲内であり、本明細書で詳細に記述する必要はない。本明細書の教示に基づく技術の範囲内の他の実施態様は、本発明の一部であると考える。

実施例１
膀胱の表在性および浸潤性悪性腫瘍のためのマーカーの同定
浸潤性および表在性膀胱癌の遺伝子発現パターンからのマイクロアレイデータの階層的クラスター化が、多数の有意な差異を示した。その結果、これらの癌型を、次の解析において別々に処理した。しかし、両方の癌型において、高い割合の遺伝子が過剰発現される。図３は、浸潤性膀胱悪性腫瘍のマーカーに対するマイクロアレイ研究の結果を示す表である。１９９の浸潤性マーカーのうちの３１が、上述の血清マーカー（図中「Ｓ」で表示する）の基準を満たす。図４は、表在性膀胱悪性腫瘍のマイクロアレイ研究の結果を示す表である。１７０の表在性マーカーのうちの３４が、上記の血清マーカーの基準を満たす。図３および４には、遺伝子のＨＵＧＯ記号（「記号」）、ＭＷＧ Ｂｉｏｔｅｃｈオリゴヌクレオチド番号、ＮＣＢＩｍＲＮＡ参照配列番号、タンパク質参照配列番号、腫瘍遺伝子発現と非悪性遺伝子発現との間の倍率変化平均値、個々の腫瘍試料中の発現と非悪性試料中の発現の中央値との間の倍率変化最大値、元の未調整のＳｔｕｄｅｎｔのｔ-検定結果、２試料Ｗｉｌｃｏｘｏｎ検定結果、および合計の順位評点、が含まれる。

浸潤性膀胱癌マーカー分析における、１９９の遺伝子に対する倍率変化平均値（腫瘍：非悪性組織）は、１．３〜５．３の範囲であり、また倍率変化最大値は、２．１〜６０．９の範囲であった。表在性膀胱癌分析については、１７０のマーカーが、１．１．３〜３．０の範囲の平均過剰発現、および１．９〜１４４の範囲の最大過剰発現であった。示したマーカーの各々については、癌マーカーとしてのそれらの特異性の統計的有意性が極めて高いことが分かった。Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ-検定値は、わずかの例外を除いて、すべて１０^-3未満であった。このことは、これらのマーカーを用いる診断が極めて高度に膀胱癌に関連していることを示す。マイクロアレイ研究によって生成された倍率変化は、ｑＰＣＲなどのより正確な技術を用いて観察された実際の発現変化を過小評価する傾向があることに注意するべきである。しかし、他に記した理由で、マイクロアレイ分析には１つ以上の重大なアーティファクトがある可能性がある。したがって、我々は、膀胱癌の存在および病期をより正確に検出するための、ｑＰＣＲに基づく方法を開発した。

実施例２
ｑＰＣＲ分析
より敏感でより正確な遺伝子発現の定量化が、ｑＰＣＲを用いて、図３および４に示される遺伝子の部分集合について得られた。マイクロアレイ分析（図３および４）によって同定された１８の遺伝子に対して、３０に及ぶ浸潤性膀胱腫瘍、２５の表在性膀胱腫瘍、および正常な尿路上皮の１８の試料、からのメッセンジャーＲＮＡを分析し、結果を図５に示した。浸潤性および表在性の型の膀胱癌に対するデータを、マーカーＳＰＡＧ５、ＴＯＰ２ａ、ＣＤＣ２、ＥＮＧ、ＮＲＰｌ、ＥＧＦＬ６、ＳＥＭ２、ＣＨＧＡ、ＵＢＥ２Ｃ、ＨＯＸＡ１３、ＭＤＫ、ＴＨＹｌ、ＢＩＲＣ５、およびＳＭＣ４Ｌ１について示す。表在性の型単独では、マーカーＳＥＭＡ３Ｆ、ＩＧＦＢＰ５およびＮＯＶのみが、正常な尿路上皮と比較して過剰発現され、浸潤性の型単独ではＭＧＰのみが過剰発現され；これらのマーカーは、過剰発現されなかった腫瘍試料中では、正常な尿路上皮と同様の発現を維持した。図５には、遺伝子名、遺伝子別名、遺伝子記号、腫瘍（Ｔ）と非悪性（Ｎ）組織間の倍率変化中央値、個々の腫瘍試料の発現と非悪性組織発現中央値の間の倍率変化最大値、および非悪性試料中の発現レベルの第９５百分位数より大きな発現レベルを有する腫瘍試料の％、が含まれる。

図５中のマーカーの、倍率変化（非悪性組織発現の中央値と比較した腫瘍組織発現）中央値は、ＣＨＧＡ以外は、浸潤性膀胱腫瘍については２〜１２８倍、また表在性膀胱腫瘍については２〜３９倍の範囲であった。浸潤性腫瘍に対する倍率変化最大値は、２４〜２５２６倍、また表在性の腫瘍に対しては６〜６１９倍の範囲であった。ＣＨＧＡの発現パターンは、一部の腫瘍中で非常に高い発現をしていた（図６ｓ〜６ｔ）ために目立ったが、それ以外では検出できない発現であった。発現は、１５／２５の表在性腫瘍で、１５／２９の浸潤性腫瘍で、および９／１０の正常な試料で検出できなかった。正常な試料中の発現が低いと、腫瘍中の過剰発現レベルの、正常と比較した比率としての正確な定量化が不可能であるが、ＢＴＭ ｍＲＮＡの蓄積を測定し定量できる場合は、膀胱癌診断の基礎として用いることができる。浸潤性腫瘍については、遺伝子ＳＰＡＧ５、ＴＯＰ２Ａ、およびＣＤＣ２の発現レベルは、腫瘍中で症例の＞９０％について、「正常」範囲の第９５百分位数より大きかった。ＢＩＲＣ５を例外として、調べた図５の残りの遺伝子は、試料の＞４５％で、浸潤性≧腫瘍中で正常の第９５百分位数より大きな発現をしていた。表在性腫瘍では、遺伝子ＳＰＡＧ５、ＴＯＰ２Ａ、ＣＤＣ２、ＥＮＧ、およびＮＲＰｌの発現レベルが、腫瘍中で症例の≧８０％について、非悪性の範囲の第９５百分位数より大きかった。ＣＨＧＡ、ＵＢＥ２Ｃ、およびＢＩＲＣ５を例外として、表在性腫瘍で調べた図５の残りの遺伝子は、試料の＞４０％で、正常の第９５百分位数より大きな発現をしていた。

図６ａ〜６ａｆは、正常組織（明るいバー）および表在性または浸潤性腫瘍組織（暗いバー）の両方について、一連の１８の遺伝子の各々の発現の観察頻度（垂直軸）と、その遺伝子に対する発現のｌｏｇ_２倍率変化（水平軸）を比較するヒストグラムを表す。我々は驚くべきことに、これらの１８の遺伝子の各々について、頻度分布の本質的な区別が、正常と腫瘍組織の間に存在することを発見した。例えば、図６ｃは、浸潤性腫瘍におけるＴＯＰ２ａの発現についての結果を表す。２つの腫瘍試料のみが、正常範囲中に発現レベルを有することが観察された。

患者および対照の尿中の、１８のＢＴＭ：ＳＰＡＧ５、ＴＯＰ２Ａ、ＣＤＣ２、ＥＮＧ、ＩＧＦＢＰ５、ＮＯＶ、ＮＲＰ１、ＳＥＭＡ３Ｆ、ＥＧＦＬ６、ＭＧＰ、ＳＥＭ２、ＣＨＧＡ、ＵＢＥ２Ｃ、ＨＯＸＡ１３、ＭＤＫ、ＴＨＹ１、ＢＩＲＣ５、およびＳＭＣ４Ｌ１、の蓄積（図１：試料シリズ１）が、等しい体積の尿から抽出された全ＲＮＡのｑＰＣＲを用いて、測定された。ＥＧＦＬ６を例外として、ＢＴＭのうちの１７が、患者の尿中で、対照尿試料と比較して大きな蓄積を示した（図７）。１７のＢＴＭに対する倍率差の中央値は、２倍〜２６５倍の範囲であった。単一の患者試料と対照の中央値レベルとの間の最大差異は、２６倍〜＞１０，０００倍の範囲であった。

図８は、箱ひげ図として描かれ、対照試料の発現中央値に対して標準化された、１３のＢＴＭについてのＢＴＭ転写物蓄積の差を示す。図８は、ＭＤＫ、ＳＥＭＡ３Ｆ、およびＴＯＰ２Ａが、癌患者と対照からの尿中に重複箇所を持たないことを示す。さらに、ＩＧＦＢＰ５、ＨＯＸＡ１３、ＭＧＰ、ＮＲＰ１、ＳＭＣ４Ｌ１、ＳＰＡＧ４、およびＵＢＥ２Ｃの転写物の高レベルの蓄積は、ほとんど常に膀胱癌に関連している。図８に描かれたＢＴＭの残り：ＢＩＲＣ５、ＮＯＶ、およびＣＤＣ２については、膀胱癌の患者の尿中のそれらの発現が、正常な対照試料と比較して、少なくとも約３倍増大する。

膀胱癌の存在の検査を引き起こす主な臨床症状は、血尿症（すなわち尿の中の巨視的微視的なレベルの血液の存在）である。血液を通常は、視覚的に、または尿「計量棒」を用いるヘモグロビンの化学的検出によって検出する。巨視的および微視的血尿症の症例のおよそ１５％および４％のみが、それぞれ、膀胱癌に関連しているにすぎない。その結果として、膀胱癌検査が高い特異性を持つためには、全血中のマーカー発現のレベルが低いか、ある場合には検出できないことが重要である。したがって、高い特異性を有するマーカーの識別を促進するために、図８の１３のマーカーのうちの１２の発現を、血液ＲＮＡ中でｑＰＣＲを用いて測定した。ｑＰＣＲを、血液および膀胱腫瘍組織から抽出された５μgの全ＲＮＡに対して、図２に記述したプライマーおよびプローブを用いて実施した。図９に、各マーカーに対するバックグラウンドを越えるサイクル数を示す。マーカーＭＧＰ、ＩＧＦＢＰ５、ＳＥＭＡ３Ｆ、およびＨｏｘＡ１３については、血液中で転写物を検出することができなかったが、マーカーＳＭＣ４Ｌ１およびＵＢＥ２ｃが特に血液中で発現された。我々は、ＰＣＲサイクル数を示すデータは、本質的にｌｏｇ_２プロットであって、サイクル数が１だけ増加することは信号が２倍になることを示すことを指摘しておく。したがって、腫瘍組織と血液中のマーカーの存在の差を評価する際に、２サイクルの差は、４倍の発現の差を示す。同様に、５サイクルの差（例えばＴＯＰ２Ａについて）は、２^５の、即ち３２倍の発現の差を表す。ＴＯＰ２ＡおよびＭＤＫなどの他のマーカーは、検知できる血液発現をしているが、血液発現と膀胱腫瘍発現の間の大きな差によって、相当良いマーカーに留まっている。

全血と膀胱腫瘍中のマーカー発現の間の差異をさらに調査し、かつ膀胱癌尿マーカーの選択を改良するために、９つのマーカーを選択し、さらなる２０人の患者、１３人の正常な対照および２６人の非悪性の対照からの尿ＲＮＡを用いてさらに詳しい分析を行った（図１：試料シリーズ２）。非悪性の対照には、細胞診によって潜血または白血球のいずれかがそれらの尿中で検出された２０の試料が含まれていた。すべての９つのマーカーが、対照と癌患者試料の間で差異を示し、癌患者試料の健康な試料および非悪性の試料と比較したｌｏｇ_２過剰出現の中央値は、それぞれ５．４〜１０．４および４．０〜１０．１の範囲であった（図１０）。このデータを図示する箱ひげ図を図１１に示す。

血液ｑＰＣＲデータによって予測されるように、マーカーＵＢＥ２ＣおよびＳＭＣ４Ｌ１は非悪性の対照の尿中で、健康な対照の尿試料と比較して蓄積の著しい増大を示した。ＮＲＰ１も、非悪性試料からの尿試料中で、健康な対照尿試料と比較して有意に上昇し、癌患者の試料と非悪性患者の試料間で相当な重複を示し、ＴＯＰ２ＡおよびＭＤＫも増加を示したが、ＴＣＣ細胞中のそれらの非常に高い発現のために、非悪性患者の尿試料中と癌患者試料中のＲＮＡの蓄積間で、大きな差異を維持していた。対照的に、ＨＯＸＡ１３、ＩＧＦＢＰ５、ＳＥＭＡ３Ｆ、およびＭＧＰは、健康な対照試料に比較して、非悪性尿試料中では小さな増加を示したのみであった。

全体として、６つのマーカー（ＳＥＭＡ３Ｆ、ＨＯＸＡ１３、ＭＤＫ、ＩＧＦＢＰ５、ＭＧＰ、およびＴＯＰ２Ａ）が、癌患者試料と非悪性の対照との間の最小の重複を示した。残りの３つのマーカー（ＮＲＰ１、ＵＢＥ２Ｃ、ＳＭＣ４Ｌ１）は、非悪性対照の部分集合中で有意な上昇を示し、癌患者試料と重複した。非悪性対照の尿中のＲＮＡマーカーの健康な対照と比較して増大した蓄積は、非悪性疾病を有する患者の尿中に存在する造血または内皮起源の細胞中でのこれらのマーカーの発現と合致する。したがって、尿試料を用いて膀胱癌を診断するための個々のマーカーの使用は、血液中でのマーカー発現を考慮しない先行技術方法と比較して、増大した感度および特異性を示す。この結果は、先行技術に基づいては、完全に予想外であった。

データは、高い感度および特異性を示す尿マーカーを膀胱癌に用いる有効性を、腫瘍遺伝子発現データのマイクロアレイ分析のみを用いては、正確に予言することはできないという驚くべき発見を示している。造血起源および／または内皮起源の細胞中における推定マーカーの発現を考慮に入れることが必要である。これを：（i）血液ＲＮＡのｑＰＣＲ分析、（ii）発現データベース分析（例えば血液および血管／内皮細胞ＲＮＡのＥＳＴライブラリー）、および／または（iii）未分画の尿から抽出されたＲＮＡのｑＰＣＲ分析、によって達成することができる。

感度および特異性
本明細書で分析し、開示した２つのシリーズの試料に基づいて、膀胱癌の検出のための感度は、９５％を超える。非悪性疾病を有する患者からの試料を含んでいたシリーズ２での特異性もまた、９５％を超える。

実施例３
膀胱癌の検出における複数マーカーの使用
図１２ａ〜１２ｂは、個々の腫瘍試料において、正常な試料と比較して有意に増大した発現（「過剰発現」）を示す遺伝子の数のヒストグラムを表す。ヒストグラムは、図５に示した最初の１２のマーカーから得られたｑＰＣＲデータに基づいていた。ＰＣＲ分析での３０の浸潤性腫瘍のうちの２７（９０％）が、少なくとも４つの遺伝子を、第９５百分位数を超える過剰発現させた（図１２ａ）。分析での２５の表在性腫瘍のうち２３（９２％）が、少なくとも４つの遺伝子を、第９５百分位数を越える過剰発現させた（図１２ｂ）。これらの発見は、正常組織に比べて複数の遺伝子が過剰発現される状況下では、癌検出の信頼性が非常に高くなることができ、それにより癌の診断がより確かになることを示す。しかし、ある場合には、単一のマーカー遺伝子発現の上昇によって十分に癌の診断ができる。

マーカーの組合せを用いる、腫瘍と非腫瘍試料の良好な判別の信頼性が、さらに図１３に表した統計解析によって図示される。この解析は、腫瘍試料および非悪性試料からのｑＰＣＲ遺伝子発現データの正規分布を比較した。ｑＰＣＲデータは図５に要約した。その解析は、腫瘍試料と非悪性試料とを区別するために用いるマーカー数を増加させることの、検査の感度（９５％の固定された特異性での）に対する効果を示す。１８のマーカーのほとんどは、この分析中で単独で用いた時は、９０、９５または９９％以上の感度を持たないが、２マーカーまたは３マーカーの組合せにより、多数の２または３マーカーの組合せにおいて、高感度に到達することが可能となった（図１４ａおよび１４ｂ）。

図１４ａおよび１４ｂは、浸潤性および表在性の移行上皮癌（ＴＣＣ）を検出するための特異的なマーカーおよびマーカーの組合せの、特異性を９５％に固定した場合の、感度を示す。＞９０％の感度を有する組合せだけを示した。図１４ａに示した１５のマーカーのうち、ＴＯＰ２Ａ、ＳＰＡＧ５、およびＣＤＣ２については、単独で、約９５％の感度で浸潤性膀胱癌を検出することができる。示された他のマーカーは、単独で用いたときは、より劣った感度を示す。

しかし、上記マーカーの２つを組合せると、浸潤性膀胱癌の検出感度が劇的に改善される（図１３ａおよび図１４ａ）。９５％以上の感度を、２マーカーの１０５の組合せのうちの１３を用いて見出すことができる。実際、２マーカーを用いることにより、マーカーの１０５の組合せのうちの４２で９０％の最小感度となる。

表在性膀胱癌については（図１３ｂおよび図１４ｂ）、９０％を超える感度は、どのマーカーでも単独では見出されなかった。しかしこの閾値には、１３６の２マーカーの組合せのうち１１が到達した。＞９５％の感度には、３マーカーの組合せの２２が到達した。

マーカーの組合せの使用はまた、尿試料を用いる膀胱癌の検出感度を劇的に改善することができる。図１５および１６は、尿のｑＰＣＲデータを用いた、個々のマーカーおよびマーカーの組合せの検出感度を示す。

図１６に見られるように、ＩＧＦＢＰ５だけが＞９５％の感度を有していたが、２マーカーの組合せの８つ、および３マーカーの組合せの３７がこの閾値に到達した。

実施例４
表在性および浸潤性膀胱癌の患者における異なる転写物蓄積
図５から、ＳＥＭＡ３Ｆ、ＨＯＸＡ１３、ＴＯＰ２Ａ、およびＳＰＡＧ５を含むいくつかのＢＴＭが、浸潤性膀胱癌と表在性膀胱癌との間で異なる発現を示すことがわかる。この観察を拡張するために、浸潤性および表在性膀胱癌の患者からの尿中のこれらの転写物の蓄積を比較した。

図１に記載された患者由来の等しい体積の尿からＲＮＡを抽出し、ＢＴＭの蓄積をｑＰＣＲによって測定した。次に特異的なＢＴＭの組合せの蓄積を、比率として表した。ＢＴＭの組合せは、浸潤性膀胱腫瘍中で表在性膀胱腫瘍より高い過剰発現を有する１つのＢＴＭ、および表在性腫瘍中で浸潤性腫瘍より高い過剰発現を有する１つのＢＴＭより成っていた。

図１７は、２０人の表在性および１４人の浸潤性ＴＣＣ患者からの尿試料について分析した３組のマーカー組合せを示す。示した３組の組合せは：（ｉ）ＴＯＰ２ＡおよびＨＯＸＡ１３、（ii）ＴＯＰ２ＡおよびＩＧＦＢＰ５、および（iii）ＴＯＰ２ＡおよびＳＥＭＡ３Ｆ、である。これらのマーカーの組合せが、表在性と浸潤性ＴＣＣ患者の尿試料を区別することができることが分かる。表在性と浸潤性の型のＴＣＣ間の発現の差を示す図５中の他のマーカーも、尿試料分析に基づいてＴＣＣの型を決定することができる。

さらに、図１８は、ＴＯＰ２Ａを含む２マーカーの組合せの使用により、浸潤性膀胱癌を病期１〜２と病期３の腫瘍に区別することができることを示す。

これらの観察は、尿中のいくつかのＢＴＭ転写物蓄積の測定により、膀胱癌の浸潤性および表在性の型の区別が可能になることを示す。その上に、膀胱癌患者からの尿試料の、ｑＰＣＲによって測定されたＢＴＭの比率は、腫瘍ＲＮＡについて行なわれた同じ分析よりも、浸潤性と表在性の型の間のより確実な区別を可能にする。これを図１９に図示する。それは、およそ２３の表在性および２８の浸潤性膀胱腫瘍ＲＮＡ調製物からのｑＰＣＲデータを用いて：（ｉ）ＴＯＰ２ＡおよびＨＯＸＡ１３、（ii）ＴＯＰ２ＡおよびＩＧＦＢＰ５、ならびに（iii）ＴＯＰ２ＡおよびＳＥＭＡ３Ｆ、についての箱ひげ図を示す；これらのＢＴＭの比率によって、なお表在性および浸潤性の型の膀胱癌間の区別が可能であるが、表在性および浸潤性の比率に、大きなオーバーラップがある。この発見は、腫瘍ＲＮＡ調製物への、筋肉および繊維芽細胞などの、悪性細胞とは同じＢＴＭ比率でない細胞型の混入を反映している可能性がある。あるいは、それは尿へ捨て去られる悪性細胞中における、腫瘍の本体に残る細胞よりも強いＢＴＭ発現の差異を反映している可能性もある。その観察の理由にかかわらず、尿中のＢＴＭの蓄積を検出する工程は、従来の組織試料のマイクロアレイ分析よりも本質的な長所を有すると、我々は結論する。

実施例５
膀胱腫瘍マーカーに対する抗体
追加の局面で、本発明には、ＢＴＭに対する抗体の作製が含まれる。本明細書に記載した方法を利用して、新規なＢＴＭを、マイクロアレイおよび／またはｑＰＣＲ方法を用いて同定することができる。一旦推定マーカーを同定した場合は、それを、免疫反応を誘起するのに十分な量だけ生成することができる。ある場合には、全長のＢＴＭを用いることができ、また他の場合では、ＢＴＭのペプチド断片が免疫原として十分である可能性もある。免疫原を適当な宿主（例えばマウス、ウサギなど）に注入することができ、またもし望ましい場合は、フロインド完全アジュバント、フロイント不完全アジュバントなどのアジュバントを、免疫応答を増加させるために注入することができる。抗体を作成する工程は、免疫学の技術分野においては日常業務であり、本明細書にさらに記述する必要はないのは当然である。その結果、同定されたＢＴＭまたはＵＢＴＭに対する抗体を、本明細書に記述した方法を用いて生成することができる。

よりさらなる実施態様では、抗体を、本明細書で同定された腫瘍マーカーのタンパク質またはタンパク質コアに対して、あるいはＢＴＭに特有のオリゴヌクレオチド配列に対して作成することができる。あるタンパク質では、糖鎖形成が行われうるが、糖鎖形成のパターンの変異によっては、ある状況では、通常の糖鎖形成パターンを欠くＢＴＭの型の誤った検出が行われる場合がある。したがって、本発明のある局面では、ＢＴＭ免疫原は、糖鎖除去されたＢＴＭ、または糖鎖除去されたＢＴＭ断片を含むことができる。糖鎖除去を、公知技術の１以上のグリコシダーゼを用いて実施することができる。あるいはＢＴＭ ｃＤＮＡを、E. coliその他を含む原核細胞系統などの糖鎖形成を欠く細胞系統中で発現させることができる。

ＢＴＭをコードするオリゴヌクレオチドをその中に持つベクターを作成することができる。そのようなベクターの多くは、公知技術の標準ベクターに基づくことができる。ベクターを様々な細胞系統にトランスフェクションし、ＢＴＭを生産する細胞系統を生成し、それらを用いて、ＢＴＭ検出用の特異的な抗体または他の試薬を開発し、あるいはＢＴＭまたはＵＢＴＭに対する発展した分析を標準化するために、所望量のＢＴＭを生産することができる。

実施例６
キット
本発明の発見に基づいて、いくつかの型の検査キットを構想し、生産することができる。第１に、検出分子（または「捕獲試薬」）を前もって搭載した検出装置を有するキットを作成することができる。ＢＴＭ ｍＲＮＡ検出のための実施態様では、そのような装置は、基質（例えばガラス、シリコン、石英、金属など）、を含むことができ、その上に、検出するべきｍＲＮＡとハイブリダイズする捕獲試薬としてのオリゴヌクレオチドが、結合している。いくつかの実施態様では、ｍＲＮＡ（ｃｙ３、ｃｙ５、放射性ラベル、または他のラベルでラベルされた）を、基質上のオリゴヌクレオチドにハイブリダイズさせることによって、直接ｍＲＮＡを検出することができる。他の実施態様では、最初に所望のｍＲＮＡに相補的なＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を作成することにより、ｍＲＮＡの検出を遂行することができる。その後、ラベルされたｃＤＮＡを基質上のオリゴヌクレオチドにハイブリダイズさせて、検出することができる。

採用する検出方法にかかわらず、検査するＢＴＭの発現を、発現の標準尺度と比較することが望ましい。例えば、ＲＮＡ発現を、全細胞内ＤＮＡに対して、構成的に発現されるＲＮＡ（例えばリボゾームＲＮＡ）の発現に対して、または他の比較的一定のマーカーに対して、標準化することができる。尿などの体液中でＢＴＭを測定する実施態様では、標準は、本明細書に示すように、悪性疾患のない被験者から得られた等しい体積の尿でよい。

抗体もキット中で、捕獲試薬として用いることができる。いくつかの実施態様では、基質（例えばマルチウエルプレート）は、それに付着させた特異的なＢＴＭまたはＵＢＴＭ捕獲試薬を有することができる。いくつかの実施態様では、キットにはブロッキング試薬を含めることができる。ブロッキング試薬を用いて、非特異的な結合を減少させることができる。例えば、サケ精子ＤＮＡなどの、ＢＴＭオリゴヌクレオチドを含まない任意の便利な供給源からの過剰のＤＮＡを用いて、非特異的なオリゴヌクレオチド結合を減少させることができる。非特異的な抗体結合を、血清アルブミンなどの過剰のブロッキングタンパク質を用いて減少させることができる。オリゴヌクレオチドおよびタンパク質を検出するための多数の方法が当技術分野において知られており、ＢＴＭが関連している分子を特異的に検出することができる任意の戦略を用いることができ、本発明の範囲内で考慮することができるのは当然である。

抗体検出に依存する実施態様では、ＢＴＭタンパク質またはペプチドを、細胞当たりを基礎にして、または全細胞、組織、または液体タンパク質、液体の体積、組織の質量（重量）を基礎にして、表現することができる。さらに血清中のＢＴＭを、アルブミンのような比較的豊富な量の血清蛋白質に基づいて表現することができる。

基質に加えて、検査キットは、捕獲試薬（プローブなど）、洗浄溶液（例えば、ＳＳＣ、他の塩類、緩衝液、洗剤その他）、ならびに検出部分（例えば、ｃｙ３、ｃｙ５、放射性ラベルその他）を含むことができる。キットはまた、使用のための指示書および包装を含むことができる。

実施例７
膀胱癌検出のために用いられるＢＴＭの複数の組合せＩ
一連の実施態様の中で、ＢＴＭである、ＨＯＸＡ１３、ＭＧＰ、ＳＥＭＡ３Ｆ、およびＴＯＰ２Ａを検査するための試薬を単独でまたは組合せて、膀胱癌を検出するための、未分画の尿または尿細胞沈殿物の検査用キットに組み入れることができる。癌患者および対照中のこれらのＢＴＭの蓄積の範囲を、図２０に示す。尿試料を、疾病増悪の、または治療応答のモニタリングを必要とする、膀胱癌であると診断された患者、巨視的または微視的血尿症を含む泌尿器症状を有する個人、あるいは無症候の個人から集めた。未分画の尿中のＢＴＭを測定するキットで検査される患者または個人から、約２mlの尿を検査のために採取すればよい。尿沈殿物の検査のためには＞２０mlの尿を集めればよい。

適当なキットには：（ｉ）使用および結果の解釈のための指示書、（ii）未分画の尿または尿沈殿物からのＲＮＡの安定化および精製用の試薬、（iii）ｄＮＴＰおよび逆転写酵素を含むｃＤＮＡ合成用試薬、および（iv）ＢＴＭ ｃＤＮＡの定量用試薬、が含まれる。ある形式では、これらの試薬が定量的ＰＣＲのために用いられ、また特異的なエクソン全域におよぶオリゴヌクレオチドプライマー、検出用のプローブでラベルされた第３のオリゴヌクレオチド、Ｔａｑポリメラーゼ、および他の緩衝液、塩類、およびＰＣＲに必要なｄＮＴＰを含むことになろう。キットはまた転写物の検出のための他の方法、例えば、ＢＴＭ ＲＮＡのラベルされたプローブとの直接のハイブリダイゼーション、または分岐ＤＮＡ技術；（ｖ）精度管理の尺度として役立つ、β−アクチンなどの、高度に転写される遺伝子からの転写物の検出のためのオリゴヌクレオチドおよびプローブ；および（vi）内部較正基準、ならびに健康なおよび非悪性の対照中でのＢＴＭ転写物蓄積の上限の参照として働く、ＢＴＭ標的配列の定量化試料；を用いることができる。上限を、対照範囲の第９５または第９９百分位数として定義することができるが、他の範囲を適用することもできる。特に、表在性膀胱癌の診断のためには、便利な閾値は、約５０％より上であり、他の場合には約６０％、７０％、または８０％より上である。

このようにして、本発明の方法を用いて、先行技術の方法と比較して増加した感度および特異性で、膀胱癌、ならびに病期および型を検出することができる。

いくつかの実施態様では、腎機能を、従来の方法（例えばクレアチニン測定）を用いて測定することができる。これらの実施態様のうちのいくつかでは、腎機能の大きさ（例えば尿試料中の尿量、細胞量、細胞数、または全細胞タンパク質）によって、マーカー蓄積を補正することができる。

ｑＰＣＲを含む検査については、前もって定めた上限を超過した検査試料は、もし検査試料中のＢＴＭの蓄積が上限より１ＰＣＲサイクルを越えて高い場合は、陽性であるとして採点することになろう。他の検出方法については、正常の上限（例えば第９０、第９５、または第９７．５百分位数）よりも２倍を越えて高い結果を陽性であるとして採点することになろう。

実施例８
膀胱癌の検出に用いられるＢＴＭの複数の組合せII
別の一連の実施態様では、マーカーの組合せ：ＴＯＰ２Ａ／ＳＥＭＡ３ＦおよびＴＯＰ２Ａ／ＨＯＸＡ１３のどちらかまたは両方の、尿中での蓄積を用いることにより、任意の型の尿検査または血液検査を用いて膀胱癌と診断された患者に存在する膀胱癌の組織型を、確実に予測することができる。したがって、膀胱鏡検査および組織学的検査は、膀胱癌の型を診断するためには必要ではない可能性がある。

これらの比率の検査のために用いられるキットは、実施例７に記述した構成成分の（ｉ）〜（iv）を含む。標準ｑＰＣＲの実施によるＢＴＭ蓄積の定量化に続いて、ＴＯＰ２Ａ／ＳＥＭＡ３ＦおよびＴＯＰ２Ａ／ＨＯＸＡ１３の比率を計算した。表在性および浸潤性膀胱癌の患者の尿中のこれらの比率の範囲を、図２１に示す。ｑＰＣＲ検査を用いて、ＴＯＰ２ＡとＳＥＭＡ３Ｆとの差異が５サイクルより小さく、ＳＥＭＡ３Ｆが最も豊富な転写物である場合には、浸潤性膀胱癌が予測され、また５サイクルを越える差異は、表在性膀胱癌を予測することができる。ＴＯＰ２ＡとＨＯＸＡ１３については、差異が８サイクル未満で、ＨＯＸＡ１３が最も豊富な転写物である場合に、浸潤性膀胱癌を予測することができ、また８サイクルを越える差異は表在性膀胱癌を予測することができる。

実施例９
ＢＴＭを用いる膀胱癌の増悪の評価
膀胱腫瘍の増悪を評価するために、膀胱癌を有する患者から時間とともに、膀胱壁の生検によって組織試料を得るか、または尿試料を集める。ＢＴＭ、ＵＢＴＭ、またはそれらの組合せの蓄積の評価を、異なる時に採取した試料について行う。ＢＴＭまたはＵＢＴＭの、個々のまたは組合せの増大した蓄積は、膀胱癌の増悪を示唆する。

実施例１０
ＢＴＭを用いる膀胱癌の治療の評価
膀胱腫瘍に対する治療の効能を評価するために、治療を開始する前に組織および／または尿の試料を得る。１つ以上のＢＴＭまたはＵＢＴＭのベースラインレベルを決定し、また様々なＢＴＭおよびＵＢＴＭの互いに対する比率も決定する。治療を開始し、治療は、その疾病の型および病期に適切な、手術、放射線治療、または化学療法を含む任意の公知技術の治療を含むことができる。治療過程の間に、組織および／または尿の試料を集め、ＢＴＭおよび／またはＵＢＴＭの存在および量について解析する。様々なＢＴＭおよびＵＢＴＭの比率を決定し、結果を：（１）治療前の患者のベースラインレベル、または（２）膀胱癌を有しない個人の集団から得られた正常値、と比較する。

参照による組み入れ
本出願で引用されているすべての出版物および特許は、参照により完全に本明細書に組み入れられる。本出願はヌクレオチドおよび／またはタンパク質配列を含む。コンピューター判読可能な様式の配列リスト、および配列リストを含むディスケットは、本出願に含まれており、参照により完全に本明細書に組み入れられる。

ＢＴＭおよびＵＢＴＭのファミリーメンバーを検出する方法には、マイクロアレイおよび／またはリアルタイムＰＣＲ法を用いる核酸、タンパク質、およびペプチドの検出が含まれる。本発明の組成物および方法は、疾病の診断に、治療の効能評価に、およびＢＴＭファミリーメンバーまたはＵＢＴＭファミリーメンバーの発現の測定に適する試薬および検査キットの生産のために、役立つ。

Claims (36)

1. 尿中のＵＢＴＭファミリーメンバーの蓄積を検出する工程を含む、膀胱癌を検出するための方法。
2. 前記ＵＢＴＭファミリーメンバーが、実質的な程度には血液に関連していない、請求項１記載の方法。
3. ＵＢＴＭが、図３または図４に示される群より選択される、請求項１〜２のいずれか１項記載の方法。
4. 前記検出する工程を、ＢＴＭまたはＵＢＴＭのｍＲＮＡの蓄積の検出により行なう、請求項１〜３のいずれか１項記載の方法。
5. 前記検出する工程を、マイクロアレイを用いて行なう、請求項１〜４のいずれか１項記載の方法。
6. 前記検出する工程を、定量的ポリメラーゼ連鎖反応またはハイブリダイゼーション法を用いて行なう、請求項１〜４のいずれか１項記載の方法。
7. 前記検出する工程を、ＵＢＴＭタンパク質の蓄積の検出により行なう、請求項１〜４のいずれか１項記載の方法。
8. 前記検出する工程を、ＵＢＴＭペプチドの蓄積の検出により行なう、請求項７記載の方法。
9. 前記検出する工程を、ＵＢＴＭ抗体を用いて行なう、請求項７〜８のいずれか１項記載の方法。
10. 前記抗体がポリクローナルである、請求項９記載の方法。
11. 前記抗体がモロクローナルである、請求項９記載の方法。
12. 方法が、前記試料中の２以上のＵＢＴＭファミリーメンバーの蓄積の検出を含む、請求項１〜１１のいずれか１項記載の方法。
13. ＴＯＰ２Ａ、ＭＤＫ、またはＢＩＲＣ５を検出する工程をさらに含む、請求項１〜１２のいずれか１項記載の方法。
14. ＴＯＰ２Ａ−ＨＯＸＡ１３、ＴＯＰ２Ａ−ＩＧＦＢＰ５、およびＴＯＰ２Ａ−ＳＥＭＡ３Ｆから成る群より選択される１以上のマーカー対を検出する工程をさらに含む、請求項１〜１２のいずれか１項記載の方法。
15. 膀胱癌を検出するための方法であって：
    膀胱癌を有する疑いのある患者からの生体試料中の、図１４ａまたは１４ｂから選択される２以上のＢＴＭファミリーメンバーの組合せの蓄積を検出する工程、
    を含む方法。
16. 生体試料が組織または尿から得られる、請求項１５記載の方法。
17. ＢＴＭまたはＵＢＴＭに特異的な抗体。
18. 前記抗体がポリクローナルである、請求項１７記載の抗体。
19. 前記抗体がモロクローナルである、請求項１７記載の抗体。
20. ＢＴＭまたはＵＢＴＭが、図３または図４に示される群より選択される、請求項１７〜１９のいずれか１項記載の抗体。
21. 請求項１７記載の抗体および別のＢＴＭまたはＵＢＴＭに向けられたもう一つの抗体、を含む抗体の混合物。
22. 図１４ａまたは１４ｂより選択されるＢＴＭまたはＵＢＴＭの組合せの捕獲試薬をその上に有する基質；および
    前記基質に関連する検出器、
    を含み、前記検出器は、前記捕獲試薬に結合した前記ＢＴＭまたはＵＢＴＭの組合せを検出することができる、ＢＴＭを検出するための装置。
23. 前記捕獲試薬の少なくとも１つがオリゴヌクレオチドを含む、請求項２２記載の装置。
24. 前記捕獲試薬の少なくとも１つが抗体を含む、請求項２２記載の装置。
25. 前記ＢＴＭまたはＵＢＴＭが、図３または４に指定された群より選択される、請求項２２記載の装置。
26. 基質；
    その基質上の、図１４ａまたは１４ｂから選択されるＢＴＭまたはＵＢＴＭの少なくとも２つよりなる組合せの捕獲試薬；および
    使用のための指示書、
    を含む、癌を検出するためのキット。
27. 前記捕獲試薬の少なくとも１つがＢＴＭまたはＵＢＴＭに特異的なオリゴヌクレオチドである、請求項２６記載のキット。
28. 前記捕獲試薬の少なくとも１つがＢＴＭに特異的な抗体である、請求項２６記載のキット。
29. 前記ＢＴＭまたはＵＢＴＭが、図３または図４に示される群より選択される、請求項２６記載のキット。
30. 膀胱癌の存在を検出するための方法であって：
    ＢＩＲＣ２、ＣＤＣ２、ＨＯＸＡ１３、ＩＧＦＢＰ５、ＭＤＫ、ＭＧＰ、ＮＯＶ、ＮＲＰｌ、ＳＥＭＡ３Ｆ、ＳＰＡＧ５、ＴＯＰ２Ａ、から成る群より選択される１つ以上のマーカーの、尿試料中の存在を測定する工程を含み、前記マーカーは血液中に実質的に存在しない、方法。
31. 前記マーカーが、ＩＧＦＢＰ５、ＭＧＰ、ＳＥＭＡ３Ｆ、およびＨＯＸＡ１３から成る群より選択される、請求項３０記載の方法。
32. 悪性膀胱疾患を非悪性膀胱疾患から区別するための方法であって：
    ＨＯＸＡ１３、ＩＧＦＢＰ５、ＭＤＫ、ＭＧＰ、ＮＲＰｌ、ＳＥＭＡ３Ｆ、ＳＭＣ４Ｌ１、ＴＯＰ２Ａ、およびＵＢＥ２Ｃから成る群より選択される１つ以上のマーカーの、前記患者の尿中における蓄積を測定する工程；および
    前記試料中の前記マーカーの比率を決定する工程であって、その比率は膀胱癌の存在に関連している
    を含む方法。
33. 少なくとも第２のＢＴＭの尿中における蓄積を測定する工程をさらに含む、請求項３０記載の方法、
34. 前記第１のマーカーがＴＯＰ２Ａであり、前記第２のマーカーが、ＨＯＸＡ１３、ＩＧＦＢＰ５、およびＳＥＭＡ３Ｆから成る群より選択される、請求項３３記載の方法。
35. 前記マーカーの蓄積の比率を、表在性膀胱癌、浸潤性病期１膀胱癌、または浸潤性病期２〜３膀胱癌を示すものとして相関させる工程をさらに含む、請求項３３記載の方法。
36. 膀胱癌の治療効果を決定するための方法であって：
    患者からの第１の試料中の、図３または４から選ばれる１つ以上のマーカーの存在量を、治療期間後の患者からの第２の試料中の、図３または４から選ばれる前記１つ以上のマーカーの存在量と比較する工程を含む、方法。

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