JP2016500267A - アスペルギルス・フミガタス(Aspergillusfumigatus)由来のグルコアミラーゼを発現するトリコデルマ・レーシ(Trichodermareesei)宿主細胞、及びその使用方法 - Google Patents
アスペルギルス・フミガタス(Aspergillusfumigatus)由来のグルコアミラーゼを発現するトリコデルマ・レーシ(Trichodermareesei)宿主細胞、及びその使用方法 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本出願は、2012年12月11日に出願された国際特許出願第PCT/CN2012/086349号による優先権の利益を主張するものであり、その全体が本明細書において参照により援用されている。
アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)(AfGATR)由来のグルコアミラーゼを発現するトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞、又はその変異体、及びその使用方法。
この発明を実施するための形態に従い、以下の略語及び定義を適用する。単数形「a」「an」及び「the」は、内容が明らかに他の事を指示していない限り、複数の指示対象を含む。したがって、例えば「酵素」という場合には、複数のこうした酵素が含まれ、「添加量」という場合には、当業者には周知の1つ以上の添加量及びその等価物などが含まれる。
以下の略語/頭字語は、特に指示がない限り、以下の意味を有する。
用語「アミラーゼ」又は「デンプン分解酵素」は、特に、デンプンの分解を触媒できる酵素を指す。αアミラーゼは、デンプン中のα−D−(1→4)O−グルコシド結合を開裂させる加水分解酵素である。概して、αアミラーゼ(EC 3.2.1.1;α−D−(1→4)−グルカングルカノヒドロラーゼ)は、デンプン分子内部のα−D−(1→4)O−グルコシド結合をランダムに切断して、(1〜4)−α−結合型D−グルコース単位を3つ以上含有する多糖類を生成するエンド作用型酵素として記述されている。対照的に、βアミラーゼ(EC 3.2.1.2;α−D−(1→4)−グルカンマルト加水分解酵素)などのエキソ作用型のデンプン分解酵素、及びマルトース生成αアミラーゼ(EC 3.2.1.133)のような幾つかの製品固有のアミラーゼは、基質の非還元末端から多糖類分子を開裂させる。βアミラーゼ、αグルコシダーゼ(EC 3.2.1.20;α−D−グルコシドグルコヒドロラーゼ)、グルコアミラーゼ(EC 3.2.1.3;α−D−(1→4)−グルカングルコヒドロラーゼ)、並びにマルトテトラオシダーゼ(EC 3.2.1.60)及びマルトヘキサオシダーゼ(EC 3.2.1.98)のような製品固有のアミラーゼは、特定の長さのマルトオリゴ糖、又は特定のマルトオリゴ糖の濃縮シロップを生成し得る。
グルコアミラーゼ活性を有するA.フミガタス(A. fumigatus)種由来のポリペプチドである、AfGA1又はその変異体を単離及び/又は精製したものが提供されている。グルコアミラーゼは、触媒ドメイン、それに続くリンカー領域、及びそれらのドメインが連結されるデンプン結合ドメインを含めた、3つの別個の構造ドメインからなる。AfGA1ポリペプチドは、配列番号12に示す成熟AfGA1ポリペプチドであり得る。ポリペプチドには、N末端及び/又はC末端にて追加のアミノ酸配列を融合させることもできる。追加のN末端配列は、例えば、配列番号11で示される配列を有し得るシグナルペプチドであってよい。いずれかの末端に融合されているその他のアミノ酸配列としては、タンパク質の標識又は精製に有用な融合パートナーポリペプチドが挙げられる。
アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)A1163(配列番号2)(AfGA2)由来のグリコシル加水分解酵素に対して99%の配列同一性
ネオサートーヤ・フィシェリ(Neosartorya fisheri)NRRL 181(配列番号3)由来のグリコシル加水分解酵素に対して92%の配列同一性
タラロマイセス・スチピテイタス(Talaromyces stipitatus)ATCC 10500(配列番号4)由来の推定グルコアミラーゼに対して82%の配列同一性
ペニシリウム・マルネッフェイ(Penicillium marneffei)ATCC 18224(配列番号5)由来の推定グルコアミラーゼに対して81%の配列同一性
アスペルギルス・ニデュランス(Aspergillus nidulans)FGSC A4(配列番号6)由来の仮定(hypothetical)グルコアミラーゼに対して81%の配列同一性
配列番号1のAfGA1の前駆体形態をクエリー配列として用いたBLASTアラインメントにより、配列同一性が決定された。Altschul et al.(1990)J.Mol.Biol.215:403〜410を参照のこと。配列同一性はまた、任意選択的に酵素の成熟形態を基準とし得る。
変異体AfGAポリペプチドは、グルコアミラーゼ活性を保持し、野生型AfGAポリペプチドよりも高い又は低い比活性を有し得る。AfGA変異体の特徴としては、ほかにも、例えば、安定性、pH範囲、温度プロファイル、酸化安定性、及び熱安定性が挙げられる。例えば、変異体は、24〜60時間のpH安定性が、pH 3〜約pH 8、例えば、pH 3.0〜7.8、例えば、pH 3.0〜7.5、pH 3.5〜7.0、pH 4.0〜6.7、又はpH 5.0.であり得る。AfGA変異体は、野生型AfGAの性能特徴を保ちつつ野生型AfGAよりも高レベルで発現させることができる。AfGA変異体はまた、親グルコアミラーゼと比べて異なる酸化安定性を有し得る。例えば、酸化安定性の低下は、デンプン液化用組成物において好都合なものであり得る。変異体AfGAは、野生型グルコアミラーゼと比較して温度プロファイルが異なり得る。そのようなAfGA変異体は、焼成、又は高温が必要とされるその他のプロセスで使用するのに好都合である。発現及び酵素活性レベルは、以降に開示されるものを含む、当業者に既知の標準アッセイ法を使用して評価することができる。
AfGA又はその変異体は、例えば、宿主細胞からAfGA又はその変異体を分泌させることにより、宿主細胞から単離され得る。AfGA又はその変異体を含む培養細胞物質は、宿主細胞からのAfGA又はその変異体の分泌の後に、得ることができる。AfGA又はその変異体は、使用に先立って任意選択的に精製される。AfGA遺伝子は、当該技術分野において周知の方法に従ってクローニングかつ発現され得る。好適な宿主細胞としては、細菌、植物、又は酵母菌細胞、例えば、糸状性真菌細胞が挙げられる。特に有用な宿主細胞としては、トリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)が挙げられる。トリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞は、天然に発現されるAfGAアスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)より高いレベル又は少なくとも同等のレベルにてAfGATRを発現する。
AfGA又はその変異体をコードする核酸を含むDNA構築体を構築して、宿主細胞で発現させることができる。AfGA1をコードする代表的な核酸としては配列番号8が挙げられる。AfGA2をコードする代表的な核酸としては配列番号14が挙げられる。遺伝子暗号において周知の縮重により、同一のアミノ酸配列をコードする変異体ポリペプチドを常用の手法により設計及び作成することができる。特定の宿主細胞のコドンの使用を最適化することも、当業界では周知である。AfGA又はその変異体をコードする核酸を、ベクターに組み込むことができる。以下に記載のものなどの周知の形質転換法を使用し、ベクターを宿主細胞に移入させることができる。
DNA構築体又は発現ベクターのいずれかを含むトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞は、AfGATR又はその変異体の組み換え生産において、宿主細胞として好都合に使用される。細胞は、宿主染色体にDNA構築体(1つ以上のコピー)を都合よく組み込むことにより、酵素をコードするDNA構築体で形質転換することができる。DNA配列がより安定的に細胞に維持される傾向があることから、この組み込みは一般的に有利なものと考えられる。DNA構築体の宿主染色体への組み込みは、例えば、同種又は異種組み換え法によるものなどの従来法により実施することができる。あるいは、細胞は、異なる種類の宿主細胞に関連して上記される通りに発現ベクターにより形質転換させることができる。
AfGATR又はその変異体の生産方法は、酵素の生成を促す条件下で上述したようにトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞を培養することと、細胞及び/又は培養培地から酵素を回収することと、を含み得る。トリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞は、天然に発現されるAfGAアスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)より高いレベル又は少なくとも同等のレベルにてAfGATRを発現する。
宿主細胞におけるAfGATR又はその変異体の発現を評価するために、アッセイを行うことで、発現タンパク質、対応するmRNA、又はグルコアミラーゼ活性を測定することができる。例えば、好適なアッセイとしては、適切に標識されたハイブリダイゼーションプローブを使用するノザンブロット、逆転写ポリメラーゼ連鎖反応、及びインサイツハイブリダイゼーションが挙げられる。また、好適なアッセイとしては、例えば、培養培地のグルコースなどの還元糖を直接測定するアッセイによって試料中のAfGATR活性を測定することなどが挙げられる。例えば、グルコース濃度は、グルコース試薬キット番号15−UV(Sigma Chemical Co.)又は、Technicon Autoanalyzerなどの装置を使用して測定することもできる。グルコアミラーゼ活性はまた、下に記載するPAHBAHアッセイ又はABTSアッセイなどの任意の公知の方法で測定され得る。
発酵、分離、及び濃縮法は当該技術分野において周知であり、濃縮AfGATR又はグルコアミラーゼ変異体ポリペプチド含有溶液を調製するために都合のよい手法を使用することができる。
AfGATR及びその変異体は、多様な工業用途に有用である。例えば、AfGATR及びその変異体は、デンプン変換プロセスにおいて有用であり、具体的には、液化を受けたデンプンの糖化プロセスにおいて有用である。所望の最終製品は、酵素によるデンプン基質の変換により生産され得る任意の生成物であってよい。例えば、所望の製品は、HFCSの調製などの他のプロセスで使用できる、又はアスコルビン酸中間体類(例えば、グルコン酸;2−ケト−L−グロン酸;5−ケト−グルコン酸;及び2,5−ジケトグルコン酸など);1,3−プロパンジオール;芳香族アミノ酸類(例えば、チロシン、フェニルアラニン、及びトリプトファンなど);有機酸類(例えば、乳酸、ピルビン酸、コハク酸、イソクエン酸、及びオキサロ酢酸など);アミノ酸類(例えば、セリン及びグリシンなど);抗生物質類;抗菌剤類;酵素類;ビタミン類;ホルモン類などの、多数の他の有用な製品に変換できる、グルコースに富むシロップであってよい。
一般的な当業者は、本開示のプロセスで使用するデンプン基質の調製に使用し得る、利用可能な方法をよく理解している。例えば、有用なデンプン基質は、塊茎類、根類、茎類、豆類、穀草類又は未精製の穀物から得ることができる。より具体的には、粒状デンプンは、トウモロコシ、トウモロコシ穂軸、小麦、大麦、ライ麦、ライコムギ、ミロ、サゴ、アワ、キャッサバ、タピオカ、ソルガム、米、さや豆、豆、バナナ、又はジャガイモから得ることができる。トウモロコシは約60〜68%のデンプンを含有し、大麦は約55〜65%のデンプンを含有し、キビは約75〜80%のデンプンを含有し、小麦は約60〜65%のデンプンを含有し、精白米は70〜72%のデンプンを含有する。具体的に想定されているデンプン基質は、トウモロコシデンプン及び小麦デンプンである。穀類由来のデンプンは摩砕されていても、未精製でもよく、穀粒、糠、及び/又は穂軸といったトウモロコシ固形分を含む。デンプンは、高精製した生デンプン、又はデンプン精製プロセスで得られる原材料であってよい。また、様々なデンプンが市販されている。例えば、トウモロコシデンプンは、Cerestar、Sigma、及びKatayama Chemical Industry Co.(Japan)から、小麦デンプンはSigmaから、サツマイモデンプンはWako PureChemical Industry Co.(Japan)から、そしてジャガイモデンプンはNakaari Chemical Pharmaceutical Co.(Japan)から入手可能である。
本明細書において用いられている用語「液化」又は「液化する」とは、デンプンを、より粘性が低くかつ短鎖のデキストリンに転換するプロセスを意味する。一般的に、このプロセスは、αアミラーゼを加えるのと同時の、又はそれに続くデンプンの糊化を包含するものの、場合により追加の液化誘導酵素を加えてもよい。幾つかの実施形態では、上述したように調製したデンプン基質を、水と共にスラリー化する。デンプンスラリーは、乾燥固形分の重量%として約10〜55%、約20〜45%、約30〜45%、約30〜40%、又は約30〜35%のデンプンを含み得る。αアミラーゼ(EC 3.2.1.1)は、例えば、計量型ポンプでスラリーに添加され得る。この用途で典型的に使用されるαアミラーゼは、熱的に安定な細菌αアミラーゼであり、例えば、ゲオバチルス・ステアロサーモフィルス(GeoBacillus stearothermophilus)のαアミラーゼである。αアミラーゼは、通常、例えば、デンプン乾燥物質1kg当たり約1500ユニットで供給する。αアミラーゼの安定性及び活性を最適化するため、スラリーのpHは、典型的には約pH 5.5〜6.5に調整し、及び典型的には、約1mMのカルシウム(約40ppm遊離カルシウムイオン)を加える。ゲオバチルス・ステアロサーモフィルス(Geobacillus stearothermophilus)変異体、又はその他のαアミラーゼは、異なる条件を要求し得る。液化後にスラリー中に残存する細菌αアミラーゼは、続く反応工程においてpHを低下させることを含む多様な方法を介し、あるいは酵素がカルシウムに依存する場合に、スラリーからカルシウムを除去することにより、失活させてもよい。
液化デンプンは、任意選択に別の酵素(類)の存在下にて、AfGATR及びその変異体を使用することにより、より低DP、特にDP1の糖類に富むシロップに糖化することができる。糖化産物の正確な組成は、使用される酵素の組み合わせ、並びに加工される粒状デンプンの種類に依存する。好都合にも、提供されるAfGATR及びその変異体を使用して得られるシロップは、糖化デンプン中の総オリゴ糖類の約65%超、例えば、70%、80%、85%、90%、95%、又は96%の重量割合でDP1を含み得る。
AfGATR又はその変異体を用いた処理により生産された可溶性デンプン加水分解物は、高フルクトースのトウモロコシシロップ(HFCS)などの、高フルクトースデンプン系シロップ(HFSS)に変換できる。この変換は、グルコースイソメラーゼ、特に固体支持体上に固定化されたグルコースイソメラーゼを使用して行うことができる。pHは、約6.0〜約8.0、例えば、pH 7.5に上昇させ、Ca2+はイオン交換により除去する。好適なイソメラーゼとしては、Sweetzyme(登録商標)、IT(Novozymes A/S)、G−zyme(登録商標)IMGI、及びG−zyme(登録商標)G993、Ketomax(登録商標)、G−zyme(登録商標)G993、G−zyme(登録商標)G993液体、及びGenSweet(登録商標)IGIが挙げられる。異性体化後、混合物は、典型的には約40〜45%フルクトース、例えば、42%フルクトースを含有する。
可溶性デンプン加水分解物、具体的にはグルコースに富むシロップは、典型的には約32℃(例えば30℃〜35℃)の温度で、発酵生物と上記デンプン加水分解物を接触させることによって、発酵させることができる。EOF生産物としては、クエン酸、乳酸、コハク酸、グルタミン酸一ナトリウム、グルコン酸、グルコン酸ナトリウム、グルコン酸カルシウム、グルコン酸カリウム、イタコン酸及び他のカルボン酸類、グルコδ−ラクトン、エリソルビン酸ナトリウム、リジン及び他のアミノ酸類、ω 3脂肪酸、ブタノール、イソプレン、1,3−プロパンジオール、並びに他の生体材料などの代謝産物が挙げられる。
AfGATR又はその変異体は、αアミラーゼ(EC 3.2.1.1)と併用され得る。幾つかの実施形態において、αアミラーゼは、有効量にて添加された場合に3.0〜7.0、好ましくは3.5〜6.5のpH範囲で活性を有する、酸安定性αアミラーゼである。αアミラーゼは、真菌αアミラーゼ又は細菌性αアミラーゼであり得る。更に、αアミラーゼは、野生型αアミラーゼ又はその変異体であり得る。
本発明は、また、AfGATR又はその変異体を含む「食品組成物」(食品製品、動物飼料、及び/又は、食品/飼料添加物などが挙げられるが、これらに限定されない)、及びAfGATR又はその変異体を、1種類以上の食品原料と混合することを含む、そのような食品組成物の調製方法、又はその使用にも関する。
また、AfGATRを使用した、布地を処理する(例えば、織物の糊抜きなど)組成物及び方法も、想到される。布地の処理方法は当該技術分野において周知である(例えば、米国特許第6,077,316号を参照されたい)。例えば、布地の感触及び外観は、その布地をAfGATRの溶液と接触させる工程を含む方法により改善することができる。布地は、圧力下で溶液により処理され得る。
本組成物及び方法の一態様は、AfGATR又はその変異体を成分として含む洗浄用組成物である。アミラーゼポリペプチドは、手洗い、洗濯物洗浄、食器洗浄、及び他の硬質表面の洗浄のための洗剤組成物の成分として使用することができる。
好ましくは、本AfGATR又はその変異体は、洗剤中のアミラーゼに対して従来から使用されている濃度にて、又はそれに近い濃度にて、洗剤に混入される。例えば、グルコアミラーゼポリペプチドは、洗浄/食器洗い液1L当たりアミラーゼ0.00001〜1mg(高純度酵素タンパク質として計算)に相当する量で加えることができる。次に例示する通り、配合例を本明細書において提供する。
HDL洗濯洗剤組成物例には、アニオン性洗浄界面活性剤(線状又は分岐状又はランダム鎖、置換又は非置換アルキル硫酸塩、アルキルスルホン酸塩、アルキルアルコキシ化硫酸塩、アルキルリン酸塩、アルキルホスホン酸塩、アルキルカルボン酸塩、及び/又はこれらの混合物からなる群から選択される)、及び場合により非イオン性界面活性剤(線状又は分岐状又はランダム鎖、置換又は非置換アルキルアルコキシ化アルコール、例えば、C8〜C18アルキルエトキシ化アルコール及び/又はC6〜C12アルキルフェノールアルコキシレートからなる群から選択される)を含有する、洗浄界面活性剤(10〜40% wt/wt)が含まれ、非イオン性洗浄界面活性剤に対するアニオン性洗浄界面活性剤(6.0〜9の親水性指数(HIc)を有する)の重量比は1:1超である。好適な洗浄界面活性剤には、カチオン性洗浄界面活性剤(アルキルピリジニウム化合物、アルキル第四級アンモニウム化合物、アルキル第四級ホスホニウム化合物、アルキル第三級スルホニウム化合物、及び/又はこれらの混合物からなる群から選択される)、双極性及び/又は両性洗浄界面活性剤(アルカノールアミンスルホベタインからなる群から選択される)、両性界面活性剤、半極性非イオン性界面活性剤、並びにこれらの混合物も含まれる。
例示的なHDD洗濯用洗剤組成物は、アニオン性洗浄用界面活性剤(例えば、直鎖状又は分岐鎖状又は不規則鎖状の、置換又は非置換のアルキル硫酸塩、アルキルスルホン酸塩、アルキルアルコキシル化硫酸塩、アルキルリン酸塩、アルキルホスホン酸塩、アルキルカルボン酸塩、及び/又はそれらの混合物)、非イオン性洗浄用界面活性剤(例えば、直鎖状又は分岐鎖状又は不規則鎖状の、置換又は非置換のC8〜C18アルキルエトキシレート、及び/又はC6〜C12アルキルフェノールアルコキシレート)、カチオン性洗浄用界面活性剤(例えば、アルキルピリジニウム化合物、アルキル四級アンモニウム化合物、アルキル四級ホスホニウム化合物、アルキル三級スルホニウム化合物、及びそれらの混合物)、双性イオン性及び/又は両性洗浄用界面活性剤(例えば、アルカノールアミンスルホベタイン)、両性(ampholytic)界面活性剤、半極性非イオン性界面活性剤、及びそれらの混合物などの洗浄界面活性剤;リン酸塩非含有ビルダー(例えば、0wt%〜10wt%未満の範囲のゼオライトビルダー、例としては、ゼオライトA、ゼオライトX、ゼオライトP及びゼオライトMAPなど)、リン酸塩ビルダー(例えば、0wt%〜10wt%未満の範囲のトリポリリン酸ナトリウム)、クエン酸、クエン酸塩、及びニトリロ三酢酸、ケイ酸塩(例えば、0wt%〜10wt%未満の範囲のケイ酸ナトリウム若しくはケイ酸カリウム若しくはメタケイ酸ナトリウム、又は層状ケイ酸塩(SKS−6));炭酸塩(例えば、0wt%〜80wt%未満の範囲の炭酸ナトリウム及び/又は重炭酸ナトリウム)などのビルダー;光漂白剤(例えば、スルホン化亜鉛フタロシアニン、スルホン化アルミニウムフタロシアニン、キサンテン染料、及びそれらの混合物)、疎水性若しくは親水性の漂白活性剤(例えば、ドデカノイルオキシベンゼンスルホン酸塩、デカノイルオキシベンゼンスルホン酸塩、デカノイルオキシ安息香酸若しくはその塩、3,5,5−トリメチルヘキサノイルオキシベンゼンスルホン酸塩(3,5,5-trimethy hexanoyl oxybenzene sulfonate)、テトラアセチルエチレンジアミン(TAED)、ノナノイルオキシベンゼンスルホン酸塩(NOBS)、ニトリル第4級アンモニウム化合物(nitrile quat)、及びそれらの混合物)、過酸化水素源(例えば、例として、過ホウ酸、過炭酸、過硫酸、過リン酸、又は過ケイ酸の1水和物ナトリウム塩又は4水和物ナトリウム塩などの、無機過水和物塩)、予備形成済の親水性及び/若しくは疎水性の過酸(例えば、過カルボン酸及び塩、過炭酸及び塩、過イミド酸及び塩、ペルオキシ1硫酸及び塩、並びにそれらの混合物)などの漂白剤、並びに/又は漂白触媒(例えば、イミン漂白促進剤(例としては、イミニウムカチオン及びポリイオン)、イミニウム双性イオン、変性アミン、変性アミンオキシド、N−スルホニルイミン、N−ホスホニルイミン、N−アシルイミン、チアジアゾールジオキシド、全フッ素化イミン、環状糖ケトン、及びそれらの混合物など、並びに金属含有漂白触媒(例えば、亜鉛又はアルミニウムなどの補助的な金属カチオンと、エチレンジアミン四酢酸、エチレンジアミンテトラ(メチレンホスホン酸)及びその水溶性の塩などの金属イオン封鎖剤とを伴う、銅、鉄、チタン、ルテニウム、タングステン、モリブデン、又はマンガンのカチオン)を含む。
例示的なADW洗剤組成物は、0〜10重量%の量で存在する非イオン性界面活性剤(エトキシル化非イオン性界面活性剤、アルコールアルコキシル化界面活性剤、エポキシキャップされたポリ(オキシアルキル化)アルコール、又はアミンオキシド界面活性剤など);5〜60%の範囲のビルダー[リン酸塩ビルダー(例えば、一リン酸塩、二リン酸塩、トリポリリン酸塩、他のオリゴマー性ポリリン酸塩(oligomeric-poylphosphate)、トリポリリン酸ナトリウム(STPP))、及びリン酸塩非含有ビルダー(例えば、メチルグリシン二酢酸(MGDA)並びにそれらの塩及び誘導体、グルタミン酸−N,N−二酢酸(GLDA)並びにそれらの塩及び誘導体、イミノジコハク酸(IDS)並びにそれらの塩及び誘導体、カルボキシメチルイヌリン並びにそれらの塩及び誘導体、ニトリロ三酢酸(NTA)、ジエチレントリアミンペンタ酢酸(DTPA)、B−アラニン二酢酸(B−ADA)、及びそれらの塩などのアミノ酸系化合物、0.5%〜50重量%の範囲のポリカルボン酸のホモポリマー及びコポリマー並びにそれらの部分中和した又は完全中和した塩、単量体ポリカルボン酸及びヒドロキシカルボン酸、及びそれらの塩など)];寸法安定性を付与するための、約0.1重量%〜約50重量%の範囲のスルホン化/カルボキシル化ポリマー;約0.1重量%〜約10重量%の範囲の乾燥補助剤[例えば、ポリエステル、特にアニオン性ポリエステルであって、任意選択で3〜6個の官能基(典型的には、重縮合を促す酸、アルコール又はエステル官能基)を有する更なるモノマーを伴うもの、ポリカーボネート−、ポリウレタン−、及び/又はポリ尿素−ポリオルガノシロキサン化合物又はそれらの前駆化合物(特に反応性環状カーボネート及び尿素タイプのもの)];約1重量%〜約20重量%の範囲のケイ酸塩(例えば、二ケイ酸ナトリウム、メタケイ酸ナトリウム及び結晶質フィロケイ酸塩などのケイ酸ナトリウム又はケイ酸カリウム);無機漂白剤(例えば、過ホウ酸塩、過炭酸塩、過リン酸塩、過硫酸塩、及び過ケイ酸塩などの過水和物塩)及び有機漂白剤(例えば、過酸化ジアシル及び過酸化テトラアシル、例えば、ジペルオキシドデカン二酸(diperoxydodecanedioc acid)、ジペルオキシテトラデカン二酸(diperoxytetradecanedioc acid)、及びジペルオキシヘキサデカン二酸(diperoxyhexadecanedioc acid)のような有機過酸);漂白活性剤(即ち、約0.1重量%〜約10重量%の範囲の有機過酸前駆物質);漂白触媒(例えば、マンガン−トリアザシクロノナン及び関連する錯体、Co、Cu、Mn、及びFeビスピリジルアミン及び関連する錯体、並びにペンタミンアセタートコバルト(III)及び関連する錯体);約0.1重量%〜5重量%の範囲の金属処理剤(例えば、ベンゾトリアゾール(benzatriazole)、金属塩及び錯体、並びに/又はケイ酸塩);自動食器洗浄用洗剤組成物1グラム当たり活性酵素約0.01〜5.0mgの範囲の酵素(例えば、プロテアーゼ、アミラーゼ、リパーゼ、セルラーゼ、コリンオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ/オキシダーゼ、ペクタートリアーゼ、マンナナーゼ、クチナーゼ、ラッカーゼ、ホスホリパーゼ、リゾホスホリパーゼ、アシルトランスフェラーゼ、ペルヒドロラーゼ、アリールエステラーゼ、及びそれらの混合物など);並びに酵素安定剤成分(例えば、オリゴ糖、多糖類、及び無機二価金属塩など)を含む。
本発明のアミラーゼを加えることができる追加の洗剤配合物例を、以降の付番した段落に記載する。
見本及び微小見本によるアッセイなど、数多くのグルコアミラーゼ洗浄アッセイが当該技術分野において既知である。添付の実施例は、このようなアッセイをほんの僅かに記載する。
AfGATR又はその変異体は、醸造物などの発酵飲料を提供するプロセスにおいて使用される醸造組成物の成分であってもよい。非発酵性炭水化物は、最終的なビール中に溶解している固体の大部分を占めると考えられる。この残留物は、デンプンのα−1,6−結合を加水分解する麦芽アミラーゼが作用しないために残留する。非発酵性炭水化物は、約340グラム(12オンス)のビール当たり約50カロリーをもたらす。通常、AfGATR又はその変異体を、グルコアミラーゼ、並びに任意選択でプルラナーゼ、及び/又はイソアミラーゼと組み合わせることで、デンプンのデキストリン及び発酵性の糖への変換が補助され、最終的なビール中の残存非発酵性炭水化物が減少する。
AfGATR及びその変異体は、液化及び/又は糖化方法において使用された場合、ヨウ素陽性デンプン(IPS)を減少させ得る。IPSの供給源の1つは、加水分解を逃れたアミロースに由来し、及び/又はデンプンポリマーの老化に由来する。デンプン分子には、別の分子に結合し、結晶化度を増加させる傾向があるため、時間経過とともに、デンプンの老化はデンプンペースト、又はジェルに自然に生じる。低濃度の溶液は、デンプン分子が積極的により大きな物体へと会合するため、濁度が増加する。沈殿が自然発生した場合、沈殿したデンプンは、その元来の冷水不溶性の状態を取り戻しているように思われる。高濃度のペーストは、冷却によりジェルに変化し、時間経過とともに、デンプン分子の会合が増加することにより着実に堅固さを増す。これは、近接するデンプン分子上のヒドロキシ基間に水素結合が形成される傾向が強くあることから生じる。J.A.Radley,ed.,STARCH AND ITS DERIVATIVES 194〜201(Chapman and Hall,London(1968))を参照のこと。
アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)Af293のゲノムDNAは、Fungal Genetics Stock Center,Kansas City,MO(FGSC A1100)から購入された。アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)のゲノムを配列決定した。NCBIデーターベースで、AfGA1遺伝子(NCBI参照配列NC_007195において開示されているゲノム内)の核酸配列、及びAfGA1遺伝子でコードされた予測済みグルカン1,4−α−グルコシダーゼ(NCBI受託番号:XP_749206)のアミノ酸配列を取得した。AfGA1は、BLAST検索から決定された他の真菌グルコアミラーゼに対して相同であった。図1を参照されたい。3個のイントロンを含むAfGA1遺伝子のヌクレオチド配列が、配列番号8に示される。
遺伝子銃法(Te’o et al.,J.Microbiol.Methods 51:393〜99,2002)を使用して、プラスミドpJG222(Trex3gM−AfGA1)を、4つの遺伝子を欠失させたトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)株(国際公開第05/001036号に記載)に形質転換させた。形質転換されたコロニー(約50)は約1週間で出現した。アセトアミドプレートを5日間生育させた後、タンパク質発現のための30mlのグルコース/セファロース規定培地を含む250mlの振盪フラスコに、コロニーを接種した。タンパク質、AfGA1TRを、細胞外培地に分泌させ、酵素の発現を確認するために、濾過した培養培地を使用して、DP7に対するSDS−PAGE及びグルコアミラーゼ活性のアッセイを行った。
マルトース、イソマルトース、マルトヘプタオース(DP7)、マルトデキストリン(DE4〜DE10)、ジャガイモアミロペクチン、及び可溶性デンプンを含む様々な基質に由来するグルコアミラーゼ、AfGA1TR、AnGA又は野生型AfGAを介したグルコースの放出に基づいて、グルコアミラーゼ活性をアッセイした。カップリング済みグルコースオキシダーゼ/ペルオキシダーゼ(GOX/HR)法を用い、グルコースの放出速度を測定した(Anal.Biochem.105(1980),389〜397)。グルコースと反応するカップリング済みGOX/HRP酵素から生成された過酸化物を介した、2,2’−アジノ−ビス3−エチルベンゾチアゾリン−6−スルホン酸(ABTS)の酸化の速度として、グルコースを定量した。
比活性(単位/mg)=スロープ(酵素)/スロープ(std)×100 (1)、
式中、1単位=1μmolグルコース/minである。
実施例3に記載されているABTSアッセイのプロトコールを用いて、pH(3.0〜10.0)がAfGA1TR活性に及ぼす影響をモニターした。バッファ使用溶液(Buffer working solutions)は、グリシン/酢酸ナトリウム/HEPES(250nM)の混合物からなるもの(pHの変動:3.0〜10.0)であった。可溶性デンプン(1%水溶液、w/w)を250mMバッファ溶液と9:1の比で混合して、基質溶液を調製した。酵素使用溶液を水に一定の用量で溶かして調製した(線形範囲内のシグナルは、用量反応曲線に準ずることを示す)。実施例3においてグルコアミラーゼ活性アッセイに関して記述したように、同じプロトコールに従って、全てのインキュベーションを50oCにて10分間行った。各pHにおける酵素活性を、最適なpHにおける酵素活性と比較した相対活量としてレポートした。AfGA1TRのpHプロファイルを表2及び図3に示す。AfGA1TRは、約5.0にて最適なpHを有し、かつpH 3.5〜7.5にて70%超の最大活性を保持することが見出された。
実施例3に記載されているABTSアッセイのプロトコールを用いて、温度(40℃〜84℃)がAfGA1TR活性に及ぼす影響をモニターした。3.6mLの可溶性デンプン(1%水溶液、w/w)及び0.4mLの0.5M緩衝液(pH 5.0の酢酸ナトリウム)を混合して15mLのコニカルチューブに入れ、基質溶液を調製した。酵素使用溶液を水に一定の用量で溶かして調製した(線形範囲内のシグナルは、用量反応曲線に準ずることを示す)。実施例3のグルコアミラーゼ活性アッセイに関して記述されているのと同じプロトコールに従って、40℃〜84℃の温度にてそれぞれ10分間インキュベーションを行った。各温度における酵素活性を、至適温度における酵素活性と比較した相対活量としてレポートした。AfGA1TRの温度プロファイルを表3及び図4に示す。AfGA1TRは、68℃の至適温度を有し、56℃〜74℃の間で70%超の最大活性を保持することが見出された。
多糖類の真菌グルコアミラーゼ触媒作用の産物をアッセイするため、グルコアミラーゼ、AnGA(0.118mg/gdsのデンプン)及びAfGA1TR(0.118mg/gds又は0.059mg/gds)を60℃、pH 4.2〜4.5にて34% DSのLIQUOZYME(登録商標)Supra液化デンプン(CPI,Stockton,CA)で2日間インキュベートした。プルラナーゼ(PU)、及びアスペルギルス・カワチイ(Aspergillus kawachii)、GC626(登録商標)(AkAA)由来の酸安定性αアミラーゼ(それぞれ0.256ASPU/gds、及び0.35SSU/gds)を、精製AfGA1TRと共に投与した。試料をそれぞれ異なる時間間隔で採取し、HPLCで糖組成物の解析を行った。
AfGA1TRで処理された液化デンプンのDP2レベルを、同じDP1レベル(96%)を基準に、GAで処理された液化デンプンのDP2レベルと比較した。比較により、同等なDP1レベルにておよそ0.2%だけ、DP2レベルが統計的に有意に低減したことが判った。この理由としては、グルコアミラーゼ用量の低減が考えられる。イオンクロマトグラフィによりイソマルトース/マルトース比を計算して、(トリプルブレンドとしての)AnGA及びAfGA1TRによる転換反応を測定した。
可変用量の付属αアミラーゼを用いて多糖類の真菌グルコアミラーゼ触媒作用の製品をアッセイするため、AfGA1TR(0.059mg/gds)及びプルラナーゼ(PU、OPTIMAX(登録商標)L−1000)(0.256ASPU/gds)を様々な濃度の酸安定性αアミラーゼ、アスペルギルス・カワチイ(Aspergillus kawachii)由来のGC626(登録商標)(AkAA)でインキュベートした。60℃でpH 4.5にてAkAAを(0〜0.3SSU/ds、増分;0.1SSU、34% DSのLIQUOZYME(登録商標)Supra液化デンプン(CPI,Stockton,CA))2日間加えた。プルラナーゼ(PU)及びGC626(登録商標)(AkAA)をそれぞれ0.256ASPU/gds及び0.35SSU/gdsにて、精製AfGA1TRと共に投与した。試料をそれぞれ異なる時間間隔で採取し、HPLCで糖組成物の解析を行った。
乾燥固形分35%のデンプンを蒸留水に溶かした粒状コーンのデンプンスラリーを調製し、NaOHを用い、pHをpH 5.0になるように調整した。10AAU/gdsのαアミラーゼ(SPEZYME(登録商標)XTRA)及びAfGA1TRの精製タンパク質を0.047mg/gdsにて0.15ASPU/gdsのプルラナーゼ(OPTIMAX(登録商標)L−1000)と共にデンプンスラリーに添加した。次いで、デンプンスラリーを60℃に維持した水浴中に保持し、絶えず撹拌した。アリコートをそれぞれ別の時間間隔で回収して遠心分離させた。清澄な上清を屈折率(RI)に用いて可溶化率を計算し、HPLCで糖組成物の解析を行った。
0.066KG/MTdsのLIQUOZYME(登録商標)Supra(NZ)をα殺菌済みデンプン液化物に添加し直してAfGA1TRを用いた場合の、pH(5.5)のみの影響、並びにpH 4.5において残存αアミラーゼ活性がDP1及びDP3の両方に及ぼす影響を解析した。0.066mg/gdsのAfGA1TRを、0.25ASPU/gdsのOPTIMAX(登録商標)L−1000(プルラナーゼ)及び0.1SS U/gdsのAkAAと混ぜ合わせた。表8及び図5は、AfGA1TR及びOPTIMAX(登録商標)4060VHP(AnGA/プルラナーゼブレンド)により糖化されたオリゴ糖のプロファイルを開示したものである。
デンプン液化物を水で希釈し、乾燥固形分34%になるように調製して、2種類のグルコアミラーゼ、即ち、1)AfGA1TR(0.067mg/gdsのデンプン)、及び2)(アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)において発現された)野生型AfGAの精製タンパク質GLUCOTEAM DB(Nagase Co.& Ltd.,Japan製)0.065mg/gdsを用い、pH 4.4かつ60℃にて糖化を行った。加えて、プルラナーゼ(PU)、及び酸安定性αアミラーゼであるGC626(登録商標)(AkAA)をそれぞれ、各グルコアミラーゼと共に0.14ASPU/gds及び0.9SSU/gdsにて投与した。試料をそれぞれ異なる時間間隔で採取し、HPLCで糖組成物の解析を行った。
典型的な実施例において、乾燥固形分35%のデンプンを蒸留水に溶かした粒状コーンのデンプンスラリーを調製し、水酸化ナトリウムを用い、pHをpH 5.0になるように調整した。10AAU/gdsのSPEZYME(登録商標)XTRA、及びAfGA1TR又は野生型アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)GA(AfGA)の精製タンパク質GLUCOTEAM DB(Nagase Co.& Ltd.,Japan製)を、0.15ASPU/gdsのOPTIMAX(登録商標)L−1000と共にデンプンスラリーに添加した。次いで、デンプンスラリーを60℃に維持した水浴中に保持し、絶えず撹拌した。アリコートをそれぞれ別の時間間隔で回収して遠心分離させた。清澄な上清を屈折率(RI)に用いて可溶化率を計算し、HPLCで糖組成物の解析を行った。表10は、αアミラーゼ及びPUの存在下にて粒状デンプンを用いた場合に、両方のアスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)のグルコアミラーゼが68時間でDP1を95.5%超に到達させ得、かつ粒状デンプンの可溶化率が86%超であったことを示している。
AfGA2遺伝子(NCBI参照配列DS499595の145382〜147441)用の核酸配列をアスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)A1163から採取し、AfGA2遺伝子でコードされた仮定タンパク質のアミノ酸配列をNCBIデーターベース(NCBI受託番号:EDP53734)で検索した。アスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)A1163由来のAfGA2遺伝子のヌクレオチド配列を最適化して、Generayにより合成した(Generay Biotech Co.,Ltd,Shanghai,China)。
AfGA2TRは、グリコシル加水分解酵素15ファミリー(GH15.CAZy番号)に属する。1% w/wの可溶性デンプン(Sigma S9765)を基質として用い、AfGA2TRのグルコアミラーゼ活性を測定した。50mM酢酸ナトリウムバッファ(pH 5.0)で50℃にて10分間アッセイを行った。実施例3に開示されているグルコースオキシダーゼ/ペルオキシダーゼ(GOX/HRP)テクニックを用いて、グルコースの放出速度を測定した。過剰なカップリング済みGOX/HRP酵素を介して、グルコースを2,2’−アジノ−ビス3−エチルベンゾチアゾリン−6−スルホン酸(ABTS)の酸化速度として定量した。グルコース標準曲線に基づいて酵素活性を計算した。このアッセイにおいて、1グルコアミラーゼ単位は、アッセイの条件下にて1分につき1μmolのグルコースを生成するのに必要とされる酵素の量として定義される。上記の方法を用いて、精製AfGA2TRの可溶性デンプンに対する比活性を214単位/mgとして値付けした。
実施例3に記載されているABTSアッセイのプロトコールに従って、pH(3.0〜10.0)がAfGA2TR活性に及ぼす影響をモニターした。バッファ使用溶液は、グリシン/酢酸ナトリウム/HEPES(250nM)の混合物からなるもの(pHの変動:3.0〜10.0)であった。可溶性デンプン(1%水溶液、w/w)を250mMバッファ溶液と9:1の比で混合して、基質溶液を調製した。酵素使用溶液を水に一定の用量で溶かして調製した(線形範囲内のシグナルは、用量反応曲線に準ずることを示す)。実施例3においてグルコアミラーゼ活性アッセイに関して記述したように、同じプロトコールを用い、全てのインキュベーションを50℃にて10分間行った。各pHにおける酵素活性を、最適なpHにおける酵素活性に対する相対活量としてレポートした。AfGA2TRのpHプロファイルは、図10に示してある。AfGA2TRは、約5.3にて最適なpHを有し、3.3〜7.3で70%超という最大活性を保持することが見出された。
実施例3に記載されているABTSアッセイのプロトコールに従って、温度(40℃〜84℃)がAfGA2TR活性に及ぼす影響をモニターした。9mLの可溶性デンプン(1%水溶液、w/w)及び1mLの0.5M緩衝液(pH 5.0の酢酸ナトリウム)を混合して15mLのコニカルチューブに入れ、基質溶液を調製した。酵素使用溶液を水に一定の用量で溶かして調製した(線形範囲内のシグナルは、用量反応曲線に準ずることを示す)。インキュベーションを温度40℃〜84℃にてそれぞれ10分間行った。インキュベーション後に、実施例3にグルコアミラーゼ活性アッセイに関して記述されているのと同じプロトコールに従って、活性を値付けした。活性を至適温度での酵素活性に対する相対活量としてレポートした。AfGA2TRの温度プロファイルは、図11に示してある。AfGA2TRは、69℃の至適温度を有し、61℃〜74℃の間で70%超の最大活性を保持することが見出された。
50mM酢酸ナトリウムバッファ(pH 5.0)中のAfGA2TRの熱安定性を値付けした。酵素を基質への添加に先立って所望される温度にてPCRマシンで2時間インキュベートした。実施例3に記載されているようにして、試料の残存活性を測定した。氷上に保持された試料の活性を100%の活性として定義した。図12に示すように、2時間のインキュベーション期間中にAfGA2TRは63℃未満の温度にて50%を超える活性を保持した。
デンプン液化物を水で希釈して、乾燥固形分34%になるように調製し、2種類のグルコアミラーゼ;1)AfGA1TR(0.06mg/gds)のデンプン、及び2)pH 4.4かつ60℃にてAfGA2TR(0.06mg/gds)の精製タンパク質を使用して糖化を行った。加えて、グルコースの生成を増強するため、プルラナーゼ(OPTIMAX(登録商標)L−1000)及び酸安定性αアミラーゼ、GC626(登録商標)(AsAA)0.14ASPU/gds及び0.9SSU/gdsをそれぞれ、各グルコアミラーゼと共に投与した。試料をそれぞれ異なる時間間隔で採取し、HPLCで糖組成物の解析を行った。
Claims (74)
- 配列番号12又は13に対して少なくとも80%の配列同一性を有するAfGATR又はその変異体を発現する組み換えトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞であって、前記トリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞が、同一の条件下で前記AfGATR又はその変異体と同じアミノ酸配列を有するAfGA又はその変異体を発現するアスペルギルス・フミガタス(Aspergillus fumigatus)宿主細胞と同等のレベルにて、前記AfGATR又はその変異体を発現する、組み換えトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞。
- 配列番号12又は13に対して少なくとも80%の配列同一性を有するAfGATR又はその変異体を発現する組み換えトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞であって、前記AfGATR又はその変異体が、AfGATR又はその変異体と同じアミノ酸配列を有するAfGA又はその変異体よりも熱安定性に優れ、かつ前記AfGA又はその変異体がA.フミガタス(A. fumigatus)宿主細胞において発現される、組み換えトリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞。
- (a)配列番号12又は13に対して少なくとも80%の配列同一性を有する組み換えAfGATR又はその変異体を発現するT.レーシ(T. reesei)宿主細胞を提供する工程と、
(b)前記組み換えAfGATR又はその変異体の生成を可能にする条件下で前記宿主細胞を培養する工程と、
を含む、組み換えAfGATR又はその変異体を生成するための方法であって、前記AfGATR又はその変異体が、AfGATR又はその変異体と同じアミノ酸配列を有するAfGA又はその変異体よりも熱安定性に優れ、かつ前記AfGA又はその変異体がA.フミガタス(A. fumigatus)宿主細胞において発現される、組み換えAfGATR又はその変異体の生成方法。 - 請求項1若しくは請求項2に記載の宿主細胞、又は請求項3に記載の方法により生成される組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が74℃でpH 5.0にて10分間にわたって少なくとも70%の活性を有する、請求項4に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体がAfGA1TR又はその変異体である、請求項5に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGA1TR又はその変異体が、55℃〜74℃の温度範囲でpH 5.0にて10分間にわたって少なくとも70%の活性を有する、請求項6に記載の組み換えAfGA1TR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体の至適温度が約68℃である、請求項7に記載の組み換えAfGA1TR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体がAfGA2TR又はその変異体である、請求項5に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGA2TR又はその変異体が、61℃〜74℃の温度範囲でpH 5.0にて10分間にわたって少なくとも70%の活性を有する、請求項9に記載の組み換えAfGA2TR又はその変異体。
- 前記AfGA2TR又はその変異体の至適温度が約69℃である、請求項10に記載の組み換えAfGA2TR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が、配列番号12に対して少なくとも90%、95%、又は99%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項4〜8のいずれか一項に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が配列番号12を含む、請求項12に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が、配列番号12に対して少なくとも80%、90%、95%、若しくは99%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列からなる、請求項4〜8のいずれか一項に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGA1TR又はその変異体が配列番号12からなる、請求項14に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が、配列番号13に対して少なくとも90%、95%、又は99%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項4〜5及び9〜11のいずれか一項に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が配列番号13を含む、請求項16に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGATR又はその変異体が、配列番号13に対して少なくとも80%、90%、95%、又は99%のアミノ酸配列同一性を有するアミノ酸配列からなる、請求項4〜5及び9〜11のいずれか一項に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- 前記AfGA1TR又はその変異体が配列番号13からなる、請求項18に記載の組み換えAfGATR又はその変異体。
- デンプンを含む組成物を糖化して、グルコースを含む組成物を生成する方法であって、前記方法が、
(i)請求項4〜19のいずれか一項に記載の単離されたAfGATR又はその変異体をデンプン組成物と接触させる工程と、
(ii)前記デンプン組成物を糖化して前記グルコース組成物を生成する工程と、を含み、前記AfGA1TR又はその変異体が、デンプンを含む組成物からグルコースを含む組成物への糖化を触媒する、方法。 - グルコースを含む前記組成物が、同一の条件下で24時間の糖化後にAnGAにより生成されたDP1を含む第2の組成物と比較してDP1が富化される、請求項20に記載の方法。
- グルコースを含む前記組成物が、同一の条件下で野生型AfGAにより生成されたDP1を含む第2の組成物と比較してDP1が富化される、請求項20に記載の方法。
- 前記AfGATR又はその変異体がAfGATR2であり、グルコースを含む前記組成物が、同一の条件下でAfGA1TRにより生成されたDP1を含む第2の組成物と比較してDP1が富化され得る、請求項20に記載の方法。
- 前記AfGA1TR又はその変異体が、同一の条件下でAnGAの約40%〜50%の用量にて糖化の24時間後に同じDP1生産量を生ずる、請求項20に記載の方法。
- デンプンを含む前記組成物が、液化デンプン、糊化デンプン、又は粒状デンプンを含む、請求項20〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 約30℃〜約65℃の温度範囲で糖化が行われる、請求項20〜25のいずれか一項に記載の方法。
- 前記温度範囲が47℃〜60℃である、請求項26に記載の方法。
- pH 2.0〜pH 6.0のpH範囲で糖化が行われる、請求項20〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記pH範囲がpH 3.5〜pH 5.5である、請求項28に記載の方法。
- 前記pH範囲がpH 4.0〜pH 5.0である、請求項29に記載の方法。
- 前記方法がデンプン組成物をαアミラーゼに接触させる工程を更に含む、請求項20〜30いずれか一項に記載の方法。
- 前記αアミラーゼがAkAAである、請求項31に記載の方法。
- 前記方法がデンプン組成物をプルラナーゼに接触させる工程を更に含む、請求項20〜32のいずれか一項に記載の方法。
- 前記グルコース組成物を発酵させて発酵最終(EOF)産物を生成することを更に含む、請求項20〜33のいずれか一項に記載の方法。
- 前記発酵が同時糖化発酵(SSF)反応である、請求項34に記載の方法。
- 前記発酵が、pH 2〜8、25℃〜70℃の温度範囲で24〜70時間実施される、請求項34又は35に記載の方法。
- 前記EOF産物がエタノールを含む、請求項34〜36のいずれか一項に記載の方法。
- 前記EOF産物が8%〜18%(v/v)のエタノールを含む、請求項34〜37のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法が、マッシュ及び/又は糖化液を、プルラナーゼ、αアミラーゼ及び前記AfGATR又はその変異体と接触させることを更に含む、請求項34〜38のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法が、
(a)マッシュを調製する工程と、
(b)前記マッシュを濾過して糖化液を得る工程と、
(c)前記糖化液を発酵させて発酵飲料を得る工程と、
を更に含み、前記プルラナーゼ、前記αアミラーゼ及び前記AfGATR又はその変異体が
(i)工程(a)の前記マッシュ及び/又は
(ii)工程(b)の前記糖化液及び/又は
(iii)工程(c)の前記糖化液
に添加される、請求項39に記載の方法。 - 前記EOF産物が代謝産物を含む、請求項34〜40のいずれか一項に記載の方法。
- 前記代謝産物が、クエン酸、乳酸、コハク酸、グルタミン酸一ナトリウム、グルコン酸、グルコン酸ナトリウム、グルコン酸カルシウム、グルコン酸カリウム、グルコδ−ラクトン、エリトルビン酸ナトリウム、ω 3脂肪酸、ブタノール、アミノ酸、リジン、イタコン酸、1,3−プロパンジオール、又はイソプレンである、請求項41に記載の方法。
- 付加的なグルコアミラーゼ、ヘキソキナーゼ、キシラナーゼ、グルコースイソメラーゼ、キシロースイソメラーゼ、ホスファターゼ、フィターゼ、プロテアーゼ、プルラナーゼ、βアミラーゼ、付加的なαアミラーゼ、プロテアーゼ、セルラーゼ、ヘミセルラーゼ、リパーゼ、クチナーゼ、トレハラーゼ、イソアミラーゼ、酸化還元酵素、エステラーゼ、トランスフェラーゼ、ペクチナーゼ、αグルコシダーゼ、βグルコシダーゼ、リアーゼ、加水分解酵素、又はこれらの組み合わせを前記デンプン組成物に添加することを更に含む、請求項20〜42のいずれか一項に記載の方法。
- 前記AfGATR又はその変異体を0,1〜2グルコアミラーゼ単位(GAU)/gdsの用量にて添加する工程を含む、請求項20〜43のいずれか一項に記載の方法。
- 前記AfGATR又はその変異体が約49.5μgタンパク質/g固形分の用量にて添加される、請求項44に記載の方法。
- 前記単離されたAfGATR又はその変異体が、前記トリコデルマ・レーシ(Trichoderma reesei)宿主細胞により分泌される、請求項20〜45のいずれか一項に記載の方法。
- 前記宿主細胞がαアミラーゼを更に発現し、かつ分泌する、請求項46に記載の方法。
- 前記宿主細胞がプルラナーゼを更に発現し、かつ分泌する、請求項47に記載の方法。
- デンプンを含む前記組成物を前記宿主細胞と接触させる、請求項46〜48のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項20〜49のいずれか一項に記載の方法により生成されたグルコースを含む、組成物。
- 請求項34〜49のいずれか一項に記載の方法により生成される、液化デンプン。
- 請求項20〜49のいずれか一項に記載の方法により生産される、発酵飲料。
- 請求項4〜19のいずれか一項に記載の単離されたAfGATR又はその変異体を含有してなる、デンプンを含む組成物の糖化に用いるための組成物。
- 前記組成物が培養細胞物質である、請求項53に記載の組成物。
- 前記組成物がαアミラーゼを更に含む、請求項53又は54に記載の組成物。
- 前記AfGATR又はその変異体が精製される、請求項53〜55のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記AfGATR又はその変異体が、前記宿主細胞によって分泌される、請求項53〜56のいずれか一項に記載の組成物。
- グルコースを含む組成物の生成における、請求項4〜19のいずれか一項に記載の、前記AfGATR又はその変異体の使用。
- 前記液化デンプンの生成における、請求項4〜19のいずれか一項に記載の、前記AfGATR又はその変異体の使用。
- 前記発酵飲料の生成における、請求項4〜19のいずれか一項に記載の、前記AfGATR又はその変異体の使用。
- 発酵飲料又は発酵最終産物が、
i)フルモルトビール、「ビール純粋令」に従って醸造されたビール、エール、IPA、ラガー、ビター、発泡酒(第二のビール)、第三のビール、ドライビール、ニアビール、ライトビール、低アルコールビール、低カロリービール、ポーター、ボックビール、スタウト、麦芽酒、ノンアルコールビール、及びノンアルコール麦芽酒からなる群から選択されるビールと、
ii)果物風味の麦芽飲料、酒風味の麦芽飲料、及びコーヒー風味の麦芽飲料からなる群から選択されるシリアル飲料又は麦芽飲料と、
からなる群から選択される、請求項34〜42のいずれか一項に記載の方法、請求項52に記載の発酵飲料、又は請求項60に記載の使用。 - (i)1種以上の食品原料と、
(ii)請求項4〜19に記載の単離されたAfGATR又はその変異体と、
を混合する工程を含み、前記食品原料中に存在するデンプン成分の前記加水分解を前記プルラナーゼ及び前記単離されたAfGATR又はその変異体が触媒してグルコースを生成する、食品組成物の生産方法。 - 前記食品組成物が、食品製品、焼成用組成物、食品添加物、動物性食品製品、飼料製品、飼料添加物、油、肉、及びラードからなる群から選択される、請求項62に記載の方法。
- 前記1種以上の食品原料が焼成原料又は添加剤を含む、請求項62又は63に記載の方法。
- 前記1種以上の食品原料が、穀粉、老化防止アミラーゼ、ホスホリパーゼ、リン脂質、マルトース生成αアミラーゼ、又はマルトース生成αアミラーゼ活性を有するその変異体、相同体、若しくは突然変異体、ベーカリー用キシラナーゼ(EC 3.2.1.8)、及びリパーゼからなる群から選択される、請求項62〜64のいずれか一項に記載の方法。
- 前記1種以上の食品原料が、
(i)バチルス・ステアロサーモフィラス(Bacillus stearothermophilus)由来のマルトース生成αアミラーゼ、
(ii)バチルス(Bacillus)、アスペルギルス(Aspergillus)、サーモミセス(Thermomyces)、又はトリコデルマ(Trichoderma)由来のパン用キシラナーゼ、
(iii)フザリウム・ヘテロスポラム(Fusarium heterosporum)由来のグリコリパーゼ、
からなる群から選択される、請求項65に記載の方法。 - 前記食品組成物が、練り粉又は練り粉製品、好ましくは加工された練り粉製品を含む、請求項62〜66のいずれか一項に記載の方法。
- 前記食品組成物を焼成して焼成食品を生産する工程を含む、請求項62〜67のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法が
(i)デンプン基質を提供する工程と、
(ii)前記デンプン基質に前記プルラナーゼ及び前記AfGATR又はその変異体を加える工程と、
(iii)焼成食品の生産工程(b)の間に又はその後に前記デンプン基質に熱を加える工程と、
を更に含む、請求項62〜66のいずれか一項に記載の方法。 - 請求項4〜19のいずれか一項に記載のAfGATR又はその変異体を含む、食品組成物の生成に使用する組成物。
- 食品組成物の調製における、請求項4〜19のいずれか一項に記載のAfGATR又はその変異体の使用。
- 前記食品組成物が、練り粉又は練り粉製品、好ましくは加工された練り粉製品を含む、請求項71に記載の使用。
- 前記食品組成物がベーカリー組成物である、請求項71又は72に記載の使用。
- 前記練り粉製品の劣化、好ましくは有害な老化を遅延又は軽減するための、練り粉製品における請求項4〜19のいずれか一項に記載のAfGATR又はその変異体の使用。
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