JP2016171789A - 植物種子の飽和脂肪酸含量の低減 - Google Patents

植物種子の飽和脂肪酸含量の低減 Download PDF

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Abstract

【課題】油量種子中の飽和脂肪酸を減少させ、不飽和脂肪酸を増加させるために新規なデルタ-9デサチュラーゼ酵素、及び前記デサチュラーゼをコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列を含む核酸の提供。
【解決手段】特定のアミノ酸配列で示されるHelicoverpa zea由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ（HzD9DS）のアミノ酸配列と少なくとも80％同一であるアミノ酸配列を含むデルタ-9デサチュラーゼ酵素をコードする単離された核酸分子。上記HzD9DSの配列に対して少なくとも80％同一のアミノ酸配列を含む単離されたデルタ-9デサチュラーゼ酵素。前記核酸分子により植物細胞を形質転換し、植物細胞小器官外デサチュラーゼを発現させることにより、植物細胞における１６：０−ＡＣＰのレベルを減少させる方法。
【選択図】なし

Description

優先権の主張
この出願は、2006年4月20日にPCT国際公開番号WO 2006/042049 A2として英語で公開さ
れ、アメリカ合衆国を指定する、2005年10月7日に出願されたPCT国際特許出願番号PCT/US
05/36052の国内段階の移行である同時係属中の米国特許出願11/576,750の一部継続出願で
ある。PCT国際特許出願番号PCT/US05/36052は、2004年10月8日に出願された米国仮特許出
願番号60/617,532の継続出願である。この出願はまた、2010年6月24日に出願された米国
仮特許出願番号61/358,314の継続出願である。
技術分野
いくつかの実施形態は、一般的に特定のデルタ-9デサチュラーゼ酵素、これらの酵素を
コードする核酸、植物細胞内で該核酸を発現する方法に関連している。いくつかの実施形
態では、植物材料（plant material）（例えば、種子）中の飽和脂肪酸の％組成を減少さ
せるために特定のデルタ-9デサチュラーゼ酵素の活性を利用して、ω-7脂肪酸の％組成を
増加させることに関連している。また、特定の実施形態での方法によって製造された植物
および植物材料が本明細書に開示されている。
背景
植物由来の油が、徐々に食物脂肪摂取量の主要な供給源として、動物由来の油脂類を代
替してきている。しかし、ほとんどの先進国では飽和脂肪の摂取量が総カロリー消費量の
約15％から20％で推移している。健康的なライフスタイルを促進するための努力において
、米国農務省（USDA）は最近、飽和脂肪が、毎日のカロリー摂取量の10％未満を構成する
ことを推奨している。消費者の意識を促進するために、米国農務省が発行した現在の表示
ガイドラインは現在、総飽和脂肪酸レベルは、「低飽和脂肪酸（low-sat）」のラベルを
受けるためには、14グラム分量当たり1.0グラム未満であることを要求し、「無飽和脂肪
酸（no-sat）」のラベルを受けるためには、14グラム分量当たり0.5グラム未満であるこ
とを要求する。これは、植物油の飽和脂肪酸含量は、「低飽和脂肪酸」または「無飽和脂
肪酸」のラベルを受けるためには、それぞれ7％未満および3.5％未満である必要があるこ
とを意味する。これらのガイドラインの発行以来、「低飽和脂肪酸」油および「無飽和脂
肪酸」油に対する消費者の需要の急増があった。現在までに、この需要はキャノーラ油で
主に満たされ、ヒマワリおよびベニバナ油ではるかに低い程度で満たされている。
不飽和脂肪（一価不飽和と多価不飽和）は（適度に消費される場合は特に）は有益であ
るが、飽和およびトランス脂肪は有益ではない。飽和脂肪とトランス脂肪は、血液中の望
ましくないLDLコレステロール値を上げる。食事性コレステロールもLDLコレステロールを
上昇させ、LDLを上げなくても、心臓病に貢献するかもしれない。したがって、それは健
康的な食事の一部として、飽和脂肪、トランス脂肪、コレステロールの低い食品を選択す
ることを推奨する。
油の特性は、植物または動物起源かどうかに拘わらず、油分子中の炭素と水素原子の数
だけでなく、脂肪酸鎖に含まれる二重結合の数と位置によって主に決定される。植物由来
のほとんどの油はパルミチン酸（16:0）、ステアリン酸（18:0）、オレイン酸（18:1）、
リノール酸（18:2）及びリノレン酸（18:3）の脂肪酸の量を変えることで構成されている
。その炭素鎖が水素原子で飽和し、従って二重結合を有していないため、従来は、パルミ
チン酸及びステアリン酸は、「飽和」として指定され、それらには可能な水素原子の最大
数を含む。しかし、オレイン酸、リノール酸、およびリノレン酸は、それぞれ、1、2、お
よび3つの二重結合を有する18炭素脂肪酸鎖である。リノール酸とリノレン酸は多価不飽
和脂肪酸であると考えられているのに対し、オレイン酸は、典型的には、一価不飽和脂肪
酸とみなされる。脂肪酸含有量3.5％未満を有するものとしての「無飽和脂肪酸」油製品
のU.S.D.A.の定義は、組み合わせ飽和脂肪酸重量含量（脂肪酸の総量に比べて）として計
算される。
キャノーラ油はすべて植物油の飽和脂肪酸の最も低いレベルを有する。「キャノーラ」
は、種の総脂肪酸含量に基づいて、エルカ酸（C22：1）を最大2重量％の含有量で有して
いる菜種（アブラナ）を指し（好ましくは0.5重量％、最も好ましくは、本質的に0重量％
）、を有し、かつ、粉砕した後、脱脂（オイルフリー）の食事中30 mmol/g未満を含む空
気乾燥ミールを生成する。菜種のこれらのタイプは、種のより伝統的な品種に比較してそ
れらの食用であることによって区別される。
油糧種子において、脂肪酸合成は色素体で主に発生することが仮定される。脂肪酸合成
の主な生成物はパルミチン酸塩（16:0）であり、効率的にステアリン酸塩（18:0）に伸長
しているように見える。まだ色素体にあるうちに、飽和脂肪酸は、1つ以上の炭素-炭素二
重結合を導入するアシル-ACPデルタ-9デサチュラーゼ、として知られている酵素によって
不飽和化することができる。具体的には、ステアリン酸塩は、オレイン酸塩（18:1）を生
ずる色素体（plastidial）デルタ-9デサチュラーゼ酵素により急速に不飽和化することが
できる。実際には、パルミチン酸塩も色素体デルタ-9デサチュラーゼによってパルミトイ
ル酸塩（palmitoleate）（16:1）に不飽和化されてもよいが、この脂肪酸は、ほとんどの
植物油でわずかに微量（0−0.2％）に出現するにすぎない。したがって、色素体における
脂肪酸合成の主要な生成物は、パルミチン酸塩、ステアリン酸塩、及びオレイン酸塩であ
る。飽和脂肪酸がはるかに低い割合で存在しているので、ほとんどの油で、オレイン酸塩
は、合成される主要な脂肪酸である。
新たに合成された脂肪酸は、色素体から細胞質に輸出されている。細胞質内の植物脂肪
酸のその後の不飽和化は、ホスファチジルコリン（PC）にエステル化されるオレオイルま
たはリノレオイル（lineoleoyl）基質に作用するミクロソームデサチュラーゼによりリノ
ール酸塩（18:2）及びリノレン酸塩（18:3）に不飽和化することができる、オレイン酸塩
に限定されるようである。また、植物に応じて、オレイン酸塩は伸長（20:1、22:1、およ
び/または24:1）によって、または官能基の付加によりさらに改変（modified）すること
ができる。これらの脂肪酸は、飽和脂肪酸、パルミチン酸塩、およびステアリン酸塩と一
緒に、その後細網内（endoreticular）膜中でトリグリセリドに組み立てられる。
植物アシル-ACPデルタ-9デサチュラーゼ酵素は可溶性である。それは、色素体ストロマ
に位置しており、基質として、主に、ACP、ステアリル-ACPにエステル化される新しく合
成された脂肪酸を使用している。これは、小胞体網状膜（ER、またはミクロソーム）に局
在し、基質としてCo-Aにエステル化された脂肪酸を使用し、パルミチン酸およびステアリ
ン酸の両方の飽和脂肪酸を不飽和化する他のデルタ-9デサチュラーゼ酵素とは対照的であ
る。米国特許5,723,595および米国特許6,706,950は植物デサチュラーゼに関連している。
酵母デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子は、サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyce
s cerevisiae）から単離され、クローン化され、そして配列決定されている。Stukey et
al. （1989）J. BIOL. CHEM. 264:16537-44; Stukey et al.（1990）J. BIOL. CHEM. 265
:20144-9。この酵母遺伝子は、タバコ葉組織に導入されており（Polashcok et al.（1991
）FASEB J. 5：A1157; Polashok et al.（1992）Plant Physiol.100:894-901）、明らか
にこの組織で発現された。さらに、この酵母遺伝子は、トマトで発現された。Wang et al
.（1996）、J. Agric. Food Chem. 44:3399-402、およびWang et al.（2001）Phytochemi
stry 58:227-32を参照のこと。特定の不飽和脂肪酸が一部上昇し、特定の飽和脂肪酸が一
部減少したことは、この酵母デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子を用いてタバコとトマトの両
方で報告されたが、タバコ、トマトは明らかに油料作物ではない。この酵母遺伝子はまた
、セイヨウアブラナに導入された。米国特許5,777,201。
アスペルギルスニデュランス(Aspergillus nidulans)由来の異なる真菌アシルCoAデル
タ-9デサチュラーゼがキャノーラに導入され、それによって種子油で飽和脂肪酸レベルの
減少を達成した。米国特許出願公開2008/0260933 A1。A.ニジュランスアシルCoAデルタ-9
デサチュラーゼは、種子油中のより豊富なパルミチン酸脂肪酸（36−49％）よりも大きい
ステアリン酸の枯渇（61−90％）を生じた。
米国特許5,723,595 米国特許6,706,950 米国特許出願公開2008/0260933 A1
Stukey et al. （1989）J. BIOL. CHEM. 264:16537-44 Stukey et al.（1990）J. BIOL. CHEM. 265:20144-9 Polashcok et al.（1991）FASEB J. 5：A1157 Polashok et al.（1992）Plant Physiol.100:894-901 Wang et al.（1996）、J. Agric. Food Chem. 44:3399-402 Wang et al.（2001）Phytochemistry 58:227-32
新規な真菌デルタ-9デサチュラーゼ酵素、そのようなデサチュラーゼをコードする少な
くとも1つのヌクレオチド配列を含む核酸、植物、植物材料（例えば、種子）、植物の部
分、および上記のいずれかを含む植物コモディティ製品類が本明細書に開示される。いく
つかの実施形態の側面は、イネいもち病菌（Magnaporthe grisea）、レプトスファエリア
ノドルム（Leptosphaeria nodorum）、およびオオタバコガトウモロコシ（Helicoverpa
zea）から単離された真菌のデルタ-9デサチュラーゼ酵素によって例示される。いくつか
の例は、パルミチン酸又はステアリン酸の基質選好（substrate preference）を有する天
然のおよび合成デルタ-9デサチュラーゼを含む。
いくつかの実施形態では、配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50
、配列番号：51、配列番号：52、配列番号：72、および配列番号：73からなる群から選択
される配列に対して少なくとも80％同一であるアミノ酸配列を含むデルタ-9デサチュラー
ゼ酵素をコードする単離された核酸分子を含む。特定の例において、核酸分子は、配列番
号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番号：8、配列番号：9、配列番号：10、配列番
号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列番号：17、配列番号：44、配列番号：45、配
列番号：番号：48、および配列番号：49からなる群から選択される配列に対して少なくと
も60％同一である配列を含む。これらおよびさらなる実施形態は、配列番号：12、配列番
号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、配列番号：52、配列番号：72、お
よび配列番号：73から成る群から選択される配列と少なくとも80％同一であるアミノ酸配
列を含む単離されたデルタ-9デサチュラーゼポリペプチドを含んでいてもよい。
また、植物細胞における上記の核酸および/またはポリペプチドの少なくとも1つを発現
させる方法が開示される。特定の実施形態では、飽和脂肪酸の割合（％）組成が、植物、
植物材料（例えば、種子）および/または植物細胞を含む植物部分、および/または前述の
いずれかから産生された植物コモディティ製品において減少されているように、デルタ-9
デサチュラーゼ酵素の活性を活用する。特定の実施形態では、ω-7脂肪酸は、植物、植物
材料、植物の部分、および/または植物コモディティ製品において同時に増加させること
ができる。
いくつかの実施形態では、植物、植物材料、植物の部分、および/または植物コモディ
ティ製品中の飽和脂肪酸の量を減少させるための方法を含み、その方法は、細胞内の飽和
脂肪酸の量が減少するように本発明のデルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードする
核酸分子を用いて植物細胞を形質転換することを含む。いくつかの実施形態は、同じ種の
野生型植物と比較して、植物内の飽和脂肪酸の減少量を含み、トランスジェニック植物を
作製するための方法を含む。このような方法は、本発明のポリペプチドデルタ-9デサチュ
ラーゼコードする核酸分子を用いて植物材料（または植物細胞）を形質転換し、その形質
転換された植物材料（または植物細胞）を培養して植物体を得ることを含んでいても良い
。特定の例では、シロイヌナズナ属の植物細胞及び/又は植物材料を、本発明のポリペプ
チドデルタ-9デサチュラーゼをコードする核酸分子で形質転換することができる。
上記及び他の特徴は、添付の図面を参照して進めるいくつかの実施形態の以下の詳細な
説明から一層明らかとなるであろう。
様々な真菌デサチュラーゼタンパク質配列の概略系統解析を含む。描かれたデサチュラーゼの完全なタンパク質配列は、ClustalXを使用してアラインメントし、MEGAを使って表示した。 真菌のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列のアラインメントを含む。大文字のフォントはこのアライメントで保存されたヌクレオチドを表している。影付きフォントは、このアライメントの同一ヌクレオチドを表している。 真菌のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列のアラインメントを含む。大文字のフォントはこのアライメントで保存されたヌクレオチドを表している。影付きフォントは、このアライメントの同一ヌクレオチドを表している。 真菌のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列のアラインメントを含む。大文字のフォントはこのアライメントで保存されたヌクレオチドを表している。影付きフォントは、このアライメントの同一ヌクレオチドを表している。 真菌のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列のアラインメントを含む。大文字のフォントはこのアライメントで保存されたヌクレオチドを表している。影付きフォントは、このアライメントの同一ヌクレオチドを表している。 真菌のアライメントデルタ-9デサチュラーゼのポリペプチドを含む。 真菌のアライメントデルタ-9デサチュラーゼのポリペプチドを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 いくつかの実施形態において有用であり得る真菌デルタ-9デサチュラーゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。図4は、具体的には、LnD9DS-2をコードし（pDAB110110図4a）およびHzD9DSをコードし（図4b; pDAB110112）、さらにPvPhas 5'UTRおよびPvPhas 3'UTRを含むヌクレオチド配列を含む典型的なプラスミドのプラスミドマップを含む。 特定の典型的な真菌デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列で形質転換された植物からの典型的なT2のシロイヌナズナ種子の総飽和脂肪酸含量（％FAME）を示すデータを含む。 特定の典型的な真菌デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列で形質転換された植物からの典型的なT2のシロイヌナズナ種子のパルミチン酸（C16：0）の含有率（％FAME）を示すデータを含む。 特定の典型的な真菌デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列で形質転換された植物からの典型的なT2のシロイヌナズナ種子のステアリン酸（C18：0）の含有率（％FAME）を示すデータを含む。 特定の典型的な真菌デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子配列で形質転換された植物からの典型的なT2のシロイヌナズナ種子のパルミトレイン酸（C16：1）の含有率（％FAME）を示すデータを含む。 pDAB7319（AnD9DS v3およびLnD9DS-2 V2）またはpDAB7324（AnD9DS v3およびHzD9DS V2）で形質転換されたキャノーラ植物から種子を開発する上でHzD9DSとLnD9DS-2のmRNA転写物の蓄積（AnD9DS転写物に対する）を図表示を含む。各遺伝子の定量RT-PCRのΔΔCTはアクチン転写レベルと比較して決定し、HzD9DSとLnD9DS-2の転写物の量は、各試料におけるAnD9DS転写物のレベルに対して標準化した。
配列表
37 C.F.R. §1.822に定義されているように、添付の配列表に記載されている核酸配列
は、ヌクレオチド塩基のための標準文字の略語を使用して示されている。各核酸配列の片
方の鎖だけが示されているが、相補鎖が表示された鎖に対する参照によって含まれること
が理解される。添付の配列表では：
配列番号：1は、イネいもち病菌（Magnaporthe grisea）アシルCoAデルタ-9デサチュラ
ーゼ遺伝子（MgD9DSとして、呼ばれることがある）の断片をPCR増幅するために使用され
るフォワードプライマーを示す。
配列番号：2は、M.グリセア（M． grisea）アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子（
MgD9DSとして呼ばれることがある）の断片をPCR増幅するために使用されるリバースプラ
イマーを示す。
配列番号：3は、PCRにより増幅したM.グリセアアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ遺伝
子（MgD9DSとして呼ばれることがある）の典型的な断片を示す。
配列番号：4は、典型的なイントロン無しのMgD9DSクローンを示す。
配列番号：5は、LnD9DS-1として呼ばれることがある第1 のレプトスファエリア ノドル
ム（Leptosphaeria nodorum）アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼをコードする典型的な核
酸配列を示す。
配列番号：6および7は、いくつかの実施形態において有用であり得るプライマー配列を
示す。
配列番号：8は、LnD9DS-2として呼ばれることがある第2の典型的なL. nodorumアシルCo
Aデルタ-9デサチュラーゼをコードする典型的な核酸配列を示す。
配列番号：9は、M.グリセアに由来する典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子
（MgD9DS V1と表記）からのコーディング領域を示す。
配列番号：10は、オオタバコガトウモロコシ（Helicoverpa zea）由来の典型的な天然
のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子（HzD9DS V1と表記）からのコーディング領域を示す。
配列番号：11は、L. nodorum由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ（LnD9DS-2
V1）から遺伝子からのコード領域を示す。
配列番号：12は、M.グリセア由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ（MgD9DS）
のアミノ酸配列を示す。
配列番号：13は、H.ゼア由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ（HzD9DS）のア
ミノ酸配列を示す。
配列番号：14は、L. nodorum由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ（LnD9DS-2
）のアミノ酸配列を示す。
配列番号：15は、M.グリセア由来の典型的なキャノーラに最適化されたデルタ-9デサチ
ュラーゼ遺伝子（MgD9DS V2）の配列を示す。
配列番号：16は、H・ゼア由来の典型的なキャノーラに最適化されたデルタ-9デサチュ
ラーゼ遺伝子（HzD9DS V2）の配列を示す。
配列番号：17は、L. nodorum由来の典型的なキャノーラに最適化されたデルタ-9デサチ
ュラーゼ遺伝子（LnD9DS-2 V2）の配列を示す。
配列番号：18-39は、いくつかの実施形態において有用であり得るプライマーおよびプ
ローブの配列を示す。
配列番号：40-43は、いくつかの実施形態での発現を増加させるために使用され得る典
型的な代替Kozak配列を示す。
配列番号：44は、L. nodorum由来のさらなる例示的なキャノーラに最適化されたデルタ
-9デサチュラーゼ遺伝子（LnD9DS-2 V3）の配列を示す。
配列番号：45は、H.ゼアからさらなる例示的なキャノーラに最適化されたデルタ-9デサ
チュラーゼ遺伝子（HzD9DS V3）の配列を示す。
配列番号：46は、Mycタグのアミノ酸配列を示す。
配列番号：47は、HAタグのアミノ酸配列を示す。
配列番号：48は、AnD9DS v2として呼ばれることがあるアスペルギルス・デルタ-9デサ
チュラーゼをコードする典型的な核酸配列を示す。
配列番号：49は、AnD9DS v3として呼ばれることがあるA.ニデュランスデルタ-9デサチ
ュラーゼをコードする第二の典型的な核酸配列を示す。
配列番号：50は、配列番号：48-49（AnD9DS）によって例示されるような核酸によって
コードされるアミノ酸配列を示す。
配列番号：51は、別の例示的なAnD9DSデサチュラーゼのアミノ酸配列を示す。
配列番号：52は、Saccharomyces cerevisiae由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラ
ーゼ（ScOLE1）のアミノ酸配列を示す。
配列番号：53-66は、いくつかの実施形態において有用であり得るプラスミドを示す。
配列番号：67-71は、いくつかの実施形態において有用であり得るいくつかの核酸調節
制御エレメントを含む。
配列番号：72は、典型的なAnD9DSデサチュラーゼのN末端68残基（1−68）を示す。
配列番号：73は、典型的なAnD9DSデサチュラーゼのC末端175残基（281−455）を示す。
配列番号：74は、プラスミドpDAB110110のマップを示す。
配列番号：75は、プラスミドpDAB110112のマップを示す。
配列番号：76は、MgD9DSとして呼ばれることがある典型的なM・グリセアアシルCoAデル
タ-9デサチュラーゼをコードする典型的な核酸配列を示す。
配列番号：77は、配列番号：14のL. nodorum由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラ
ーゼ内に含まれるアミノ酸配列を示す。
配列番号：78は、配列番号：13のH.ゼア由来の典型的な天然のデルタ-9デサチュラーゼ
内に含まれるアミノ酸配列を示す。
I. いくつかの実施形態の概要
本発明者らは以前に、アスペルギルスニデュランス由来の真菌アシルCoAデルタ-9デサ
チュラーゼをキャノーラに導入したことにより、種子油で飽和脂肪酸レベルの減少を達成
した。米国特許出願公開US2008/0260933 A1。A.ニデュランスデルタ-9デサチュラーゼは
、種子油中で、より豊富なパルミチン酸脂肪酸（36−49％）よりもステアリン酸の枯渇（
61−90％）の方が大きかった。したがって、パルミチン酸が飽和する上で優先的に作用す
るデルタ-9デサチュラーゼの同時導入は、A. nidulansのデルタ-9デサチュラーゼのステ
アリン酸塩-優先的（stearate-preferring）活性を補完することで総飽和のさらなる削減
を実現する。本発明のいくつかの実施形態では、様々な基質特異性を有する真菌デルタ-9
デサチュラーゼポリペプチドが開示されている。特定の実施形態では、パルミチン酸塩優
先的（palmiate-preferring）デルタ-9デサチュラーゼ（例えば本明細書で開示される天
然のの真菌酵素、またはその機能的等価物；およびパルミチン酸基質に対して優先性を有
するように設計された合成ポリペプチド）を含む。
本明細書中、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番号：8、配列番号：9、
配列番号：10、配列番号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列番号：17、配列番号：
44、番号：45、配列番号：48、および配列番号：49からなる群から選択される配列に対し
て少なくとも60％同一であるヌクレオチド配列を含むデルタ-9デサチュラーゼポリペプチ
ドをコードする核酸分子が開示される。いくつかの態様において、核酸分子は、デルタ-9
デサチュラーゼポリペプチドコード配列に作動可能に連結された遺伝子調節エレメントを
含むことがある。特定の実施形態では、遺伝子調節エレメントは、ゼオリンプロモーター
、ファゼオリン5 '非翻訳領域、ファゼオリン3'非翻訳領域、アグロバクテリアツメファ
シエンス（Agrobacterim tumefaciens）ORF1 3 '非翻訳領域、キャッサバ葉脈モザイクウ
イルス（Cassava vein Mosaic Virus）プロモーター、タバコ（Nicotiana tabacum）RB7
マトリックス結合地域、T鎖境界配列、LfKCS3プロモーター、およびFAE 1プロモーターで
あり得る。
配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：52、配列番号
：72、および配列番号：73から成る群から選択される配列と少なくとも80％同一であるア
ミノ酸配列を含むデルタ-9デサチュラーゼポリペプチド、ならびにデルタ-9デサチュラー
ゼのポリペプチドをコードする核酸分子もまた開示される。
いくつかの実施形態では、核酸分子およびデルタ-9デサチュラーゼポリペプチドの本発
明の実施形態は、植物材料、細胞、組織、または植物全体の飽和脂肪酸の量を減少させる
ための方法を含む。このような方法は、植物材料、細胞、組織、または植物全体の飽和脂
肪酸の量が減少するように、前述の核酸分子の少なくとも1つを有する植物材料、細胞、
組織、または植物全体を形質転換することを含んでもよい。特定の実施形態では、植物材
料、細胞、組織、または植物全体におけるパルミチン酸および/またはステアリン脂肪酸
を優先的に減少させるための方法を含む。
本明細書に開示される方法は、例えば、植物または植物に由来する植物材料（例えば、
シロイヌナズナ属の植物、またはキャノーラ）に対して実施してもよい。特定の実施形態
では、同じ種の野生型植物に比べて、植物における飽和脂肪酸の減少量を含むトランスジ
ェニック植物を作製または再生するための方法が記載され、この方法は、少なくとも1つ
の前述の核酸分子で植物細胞または材料を形質転換する工程、およびその形質転換された
植物材料を培養して植物体を得る工程を含む。前述のいずれかの方法によって得られた植
物、植物材料、植物細胞、および種子も開示される。
II．略語
x:yΔz x個の炭素およびカルボキシル末端から数えてZ位置においてy個の二重結
合を含む脂肪酸
ACP アシルキャリアタンパク質
CoA 補酵素A
FA 脂肪酸
FAM フルオレセイン
FAS 脂肪酸合成酵素
FAME 脂肪酸メチルエステル
KASII b-ケトアシル-ACPシンターゼII
MUFA 一価不飽和脂肪酸
WT 野生型
III. 用語
脂肪酸：本明細書で使用する場合、用語「脂肪酸」は、長い鎖長および短い鎖長の両方
の脂肪酸が知られているが、種々の鎖長、例えば、約C12−C22、の長鎖脂肪族酸（アルカ
ン酸）を指す。脂肪酸の構造は、表記、x:yΔzで表される：ここで「x」は、特定の脂肪
酸中の炭素（C）原子の総数であり、「y」はその酸のカルボキシル末端から数えて「Z」
の位置にある炭素鎖中の二重結合の数である。
代謝経路：用語「代謝経路」は、代謝産物の形成、または別の代謝経路の開始のいずれ
かを達成するための、酵素によって触媒されて、細胞内で発生する一連の化学反応を指す
。代謝経路は、複数または多数の工程を含むことがあり、特定の反応基質に対して異なる
代謝経路と競合する可能性がある。同様に、1つの代謝経路の生成物はまだ別の代謝経路
の基質となることがある。
代謝工学：本発明の目的のために、「代謝工学」は、細胞内で作動可能な総代謝経路の
全体的な体系の中で所望の正確な化学構造を有する生成物への初期の物質のステップ・バ
イ・ステップの変更が達成されるように、細胞内の1つまたは複数の代謝経路を改変する
ための戦略の合理的な設計を指す。
デサチュラーゼ：本明細書で用いる用語「デサチュラーゼ」は、目的の脂肪酸または前
駆体を生成するために、1つ以上の脂肪酸を不飽和する（すなわち、二重結合を導入する
）ことができるポリペプチドを指す。植物可溶性脂肪酸デサチュラーゼ酵素が、飽和アシ
ル-ACP基質に位置特異的に二重結合を導入するかもしれない。アシル-CoAデサチュラーゼ
は、飽和脂肪酸アシル-CoA基質に位置特異的に二重結合を導入する。反応は不飽和化アー
キテクチャの中核をなす4ヘリックスバンドルによって協調された二電子減少二鉄中心（t
wo-electron reduced diiron center）による酸素分子の活性化を伴う。いくつかの実施
形態で特に興味深いのは、アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼである。
デルタ-9−18:01-ACPデサチュラーゼは、膜の流動性を維持するためにすべての植物に
よって必要とされる。この酵素は、主にステアロイル-ACPを不飽和化するが、それはまた
、パルミトイル-ACPに対して少しの程度に（to a minor extent）アクティブになってい
る。
バリアントデサチュラーゼ：本明細書で用いる用語「バリアントデサチュラーゼ」は、
異常な（unusual）脂肪酸を生成する際の役割と一致する特定の活性プロファイルを示す
デサチュラーゼを包含している。バリアントデサチュラーゼは、生物から単離され得るか
、指向化進化プログラムを介して操作され得るか、または1つ以上の特徴付けされたデサ
チュラーゼからの保存されたアミノ酸を組み込んだ合成デサチュラーゼとして操作され得
る。
子孫植物：本発明の目的のために、「子孫植物」は、植物の育種方法によって得ること
ができる任意の植物や、そこから得られた植物材料をいう。植物育種方法は、当技術分野
において周知であり、自然交配、人工繁殖、DNAの分子マーカー分析を伴う選抜育種、遺
伝子組換え、および商業繁殖を含んでいる。
植物材料：本明細書で用いる用語「植物材料」は、植物から得られる任意の細胞または
組織を指す。
核酸分子：RNAのセンスおよびアンチセンス鎖の両方、cDNA、ゲノムDNA、および上記の
ものの合成形態や混合ポリマーを含むことができるヌクレオチドのポリマー形態。ヌクレ
オチドは、リボヌクレオチド、デオキシヌクレオチド、またはヌクレオチドのいずれかの
タイプの改変された形態を指す。本明細書で使用される「核酸分子」は、「核酸」および
「ポリヌクレオチド」と同義である。この用語は、DNAの一本鎖および二本鎖形態を含む
。核酸分子は、天然に存在するヌクレオチド、ならびに天然および/または非天然のヌク
レオチド結合によって一緒に連結された改変されたヌクレオチドのいずれかまたは両方を
含むことができる。
核酸分子は、当業者によって容易に理解されるように、化学的もしくは生化学的に改変
することができ、または非天然または誘導体化されたヌクレオチド塩基を含むことができ
る。このような改変としては、例えば、ラベル、メチル化、天然に存在するヌクレオチド
の1以上のヌクレオチドのアナログでの置換、ヌクレオチド間改変、例えば、非帯電結合
（例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、ホスホルアミデート、カルバメー
トなど）、荷電結合（例えば、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエートなど）、ペン
ダント部分（例えば、ペプチド）、インターカレーター（例えば、アクリジン、ソラレン
など）、キレート剤、アルキル化剤、および改変された結合（例えば、αアノマー核酸な
ど）が含まれる。用語「核酸分子」はまた、一本鎖、二本鎖、部分的に二重鎖、三重鎖、
ヘアピン、円形および南京錠型コンフォメーションをなどの任意の位相幾何学的コンフォ
メーションを含む。
作動可能に連結された：第1の核酸配列が第2の核酸配列と機能的な関係にあるとき、第
1の核酸配列は第2の核酸配列と作動可能に連結されている。例えば、プロモーターがコー
ド配列の転写または発現に影響を及ぼすならば、プロモーターはコード配列に作動可能に
連結されている。組換えにより産生された場合、作動可能に連結された核酸配列は一般的
に連続しており、2つのタンパク質コード領域を結合する必要がある場合、同じリーディ
ングフレーム内にある。しかし、核酸は、作動可能に連結されるためには連続している必
要はない。
調節エレメント：本明細書で用いる用語「調節エレメント」は、遺伝子調節活性を有す
る核酸分子を指す。すなわち、作動可能に連結された転写可能な核酸分子の転写または翻
訳に影響を与える能力を有するものである。例えば、プロモーター、リーダー、イントロ
ン、および転写終結領域などの調節エレメントは、生きた細胞内の遺伝子の全体的発現に
おいて不可欠な役割を果たす遺伝子調節活性を有する非コーディング核酸分子である。植
物内で機能する単離された調節エレメントは、それ故、分子工学の技術により植物の表現
型を改変するために有用である。「調節エレメント」によって、特定の遺伝子がいつそし
てどのようなレベルで発現したか否かを決定する一連のヌクレオチドを意図している。調
節DNA配列は、特に調節タンパク質または他のタンパク質と相互作用する。
本明細書で使用する用語「遺伝子調節活性」は、作動可能に連結された核酸分子の転写
または翻訳に影響を及ぼすことができる核酸分子を指す。遺伝子調節活性を有する単離さ
れた核酸分子は、作動可能に連結された核酸分子の、時間的または空間的な発現を提供し
たり、発現レベルおよび発現率を調節したりすることができる。遺伝子調節活性を有する
単離された核酸分子は、プロモーター、イントロン、リーダー、または3 '転写終結領域
を含んでもよい。
プロモーター：本明細書で用いられる用語「プロモーター」は、RNAポリメラーゼIIま
たは作動可能に連結された遺伝子の転写を開始する転写因子（転写を制御するトランス作
用タンパク質因子）などの他のタンパク質との結合および認識に関与している核酸分子を
指す。プロモーターは、自身が作動可能に連結された遺伝子の転写に影響を及ぼすシスエ
レメントまたはエンハンサードメインなどのサブエレメントを含む場合がある。「植物プ
ロモーター」は、植物細胞中で機能している天然または非天然プロモーターである。植物
プロモーターは、作動可能に連結された遺伝子または遺伝子の発現を調節するための5 '
調節エレメントとして使用することができる。植物プロモーターは、その時間的、空間的
、または発生発現パターンによって定義され得る。本明細書に記載の核酸分子は、プロモ
ーターを含む核酸配列を含んでもよい。
配列同一性：2つの核酸またはポリペプチド配列の文脈で本明細書において使用される
用語「配列同一性」または「同一性」は、指定された比較ウインドウに対して最大の一致
のために整列させた場合、同じである2つの配列における残基を指すことができる。
配列同一性の割合がタンパク質に関連して使用される場合、同一でない残基位置は、多
くの場合、アミノ酸残基が、類似の化学特性（例えば、電荷、疎水性、または立体効果）
を有する他のアミノ酸残基に置換され、したがって、分子の機能的特性を変更しない、保
存的アミノ酸置換によって異なることが認識されている。
したがって、配列が保存的置換によって異なる場合、％配列同一性は、非同一の残基の
部位での置換の保存的性質を修正するために上向きに調整することができる。このような
保存的置換によって異なる配列は「配列類似性（sequence similarity）」または「類似
性（similarity）」を有すると言われている。この調整を行うための技術は、当業者に周
知である。典型的には、このような技術は、保存的置換を完全なミスマッチではなく、部
分的ミスマッチとしてスコア付けすることを含み、それによってパーセント配列同一性を
増加させる。たとえば、同一のアミノ酸は、0と1の間のスコアが与えられ、非保存的置換
が0のスコアを与えた場合には、保存的置換は、0と1の間のスコアが付与される。保存的
置換のスコアリングは、例えば、プログラムのPC/GENE（Intelligenetics、カリフォルニ
ア州マウンテンビュー）に実装されているように計算することができる。
本明細書で用いられる用語「配列同一性の割合」は、比較ウインドウを介して2つの最
適に整列された配列を比較することによって決定された値を意味することができる。但し
、比較ウインドウにおける配列の一部は、2つの配列の最適なアラインメントについて参
照配列（付加または欠失を含まないもの）と比較して、付加または欠失（すなわち、ギャ
ップ）を含むことができる。パーセンテージは、マッチした位置の数を得るために両方の
配列中に同一のヌクレオチドまたはアミノ酸残基が発生した位置の数を決定し、比較ウイ
ンドウ内の位置の総数でマッチした位置の数を分割し、結果を100で乗算して配列同一性
のパーセンテージを得ることによって算出される。
アミノ酸配列の類似の位置：核酸およびアミノ酸配列は、以下の段落に記載される方法
によって整列（align）させることができる。整列させた場合、1つの配列中の位置は、そ
の位置がコンセンサス配列内で同一である場合に、整列させた配列の位置と「類似の位置
」である。
比較のために配列を整列させるための方法は、当技術分野で周知である。様々なプログ
ラムや整列アルゴリズムが以下の文献に記載されている。Smith and Waterman, Adv. APP
L.Math. 2:482, 1981; Needleman and Wunsch, J. Mol. BIOL. 48:443,1970; Pearson an
d Lipman, Proc. NATL. ACAD. Sci. USA 85:2444, 1988;Higgns and Sharp, Gene 73:237
-44, 1988;Higgins and Sharp, CABIOS 5:151-3, 1989;Corpet et al., Nucleic Acids R
esearch 16:10881-10890, 1988;huang, et al., Computer Applications in the Bioscie
nces 8:155-65,1992; Pearson et al., Methods in Molucular Biology 24:307-31, 1994
; Tatiana et al., FEMS Microbiol. Lett., 174:247-50, 1990. Altschulet al., J. Mo
l. BIOL. 215:403-10, 1990（配列アライメント手法および相同性の計算の詳細な検討）
。
国立バイオテクノロジー情報センター（NCBI）の基本的なローカル配列検索ツール(Bas
ic Local Alignment Search Tool)（BLAST）は、配列解析プログラムとの接続で使用する
ために、インターネット（blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi）で提供されている。例え
ば、BLASTPおよびBLASTN。このプログラムを用いて配列同一性を決定する方法の説明は、
blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi？CMD=Web＆PAGE_TYPE = BlastDocsでNCBIを介してイ
ンターネット上で利用可能である。
アミノ酸配列の比較には、BLASTプログラム（bl2seq）の「Blast 2配列」機能がデフォ
ルトのパラメータを使用して採用されている。特定のパラメータは、例えば、マッチのた
めのミスマッチや報酬のためにペナルティを提供するために、当業者の裁量の範囲内で調
整することができる。
形質転換された：本明細書で使用する用語「形質転換された」とは、構築物（construc
t）のような外来核酸分子を導入された細胞、組織、器官、または生物を指す。導入され
た核酸分子は、レシピエントの細胞、組織、器官、または生物に、導入されたポリヌクレ
オチド分子がその後の子孫に継承されるように、ゲノムDNAに組み込まれてもよい。「ト
ランスジェニック」または「形質転換された」細胞または生物はまた、その細胞または生
物の子孫、および例えば、異種交配における親としてそのようなトランスジェニック植物
を用いた繁殖プログラムから生成され、外来核酸分子の存在に起因する変化した表現型を
示す子孫もまた含む。
IV. 宿主細胞、組織、または生物において飽和脂肪酸を減少させることへの代謝工学的
アプローチ
A. 概要
本発明の一実施形態は、植物の種子の中の特定のアシル-CoA優先性（例えば、パルミチ
ン酸又はステアリン酸）を有するデルタ-9デサチュラーゼを導入することを含む。デルタ
-9デサチュラーゼの特定のアシル-CoA優先性は、ある特定の飽和脂肪酸プール（例えば、
一価不飽和の生成物への変換のためのパルミチン酸）のターゲティングを可能にする。ア
シルCoAデルタ-9デサチュラーゼは、それらが正常に感知できる程度にまで植物系で生産
されていないことから、植物の飽和脂肪酸含量を低下させるために選択した。
B. ポリペプチド
本発明のいくつかの実施形態に係るポリペプチドは、配列番号：12、配列番号：13、配
列番号：14、配列番号：50、配列番号：52、配列番号：72、および配列番号：73からなる
群から選択される配列と整列したときに増加する割合の同一性を示すアミノ酸配列を含む
。これらおよび他の実施形態内の特定のアミノ酸配列は、例えば、上記配列と少なくとも
約70％、約75％、約80％、81％、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90
％、91％、92％、93％、94％、95％、96％、97％、98％、99％、または100％同一性を有
する配列を含んでもよい。多くの実施形態では、上記の配列と整列された場合、上記の配
列同一性を有するアミノ酸配列は、酵素δ-9−18 :0-ACPデサチュラーゼ活性を有するペ
プチドまたはそのようなペプチドの一部をコードする。
C. 核酸
いくつかの実施形態は、上記のポリペプチドをコードする核酸分子を含む。例えば、い
くつかの実施形態では、核酸配列は、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番
号：8、配列番号：9、配列番号：10、配列番号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列
番号：17、配列番号：44、配列番号：45、配列番号： 48、および配列番号：49からなる
群から選択される配列と整列するときのパーセント同一性の増加を示す。これらおよび他
の実施形態における特定の核酸配列は、例えば、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：
5、配列番号：8、配列番号：9、配列番号：10、配列11、配列番号：15、配列番号：16、
配列番号：17、配列番号：44、配列番号：45、配列番号：48、および配列番号：49から成
る群から選択される配列と、少なくとも約60％、約65％、約70％、約75％、約80％、81％
、82％、83％、84％、85％、86％、87％、88％、89％、90％、91％、92％、93％、94％、
95％、96％、97％、98％、99％、または100％の同一性を有する配列を含むことができる
。これは、核酸分子は、例えば、コドンの縮重に応じて許容される塩基置換を導入するこ
とによって、実質的にコードされるポリペプチドのアミノ酸配列を変えずに変更できるこ
とは、当業者によって理解される。
いくつかの実施形態において、本発明の核酸分子は、遺伝子調節エレメント（例えば、
プロモーター）を含む。プロモーターは、ベクター構築物が挿入される細胞の種類に基づ
いて選択することができる。細菌、酵母、植物で機能するプロモーターは、当技術分野で
周知である。プロモーターはまた、それぞれの制御の特徴に基づいて選択することができ
る。そのような特徴の例としては、転写活性の増強、誘導性、組織特異性、および発達段
階特異性を含む。植物では、誘導可能であり、ウイルスまたは合成起源の、時間的に恒常
的に活性調節や空間的規制であるプロモーターが記載されている。例えば、Poszkowski e
t al.（1989）EMBO J. 3:2719; Odell et al.（1985）Nature 313:810; およびChau et a
l.（1989）Science 244:174-81を参照。
有用な誘導性プロモーターとしては、例えば、プロモーターは、薬害軽減剤（置換ベン
ゼンスルホンアミド系除草剤）の適用によって誘導されるサリチル酸又はポリアクリル酸
によって誘導されるプロモーター、熱ショックプロモーター、ホウレンソウ硝酸レダクタ
ーゼ転写可能な核酸分子配列に由来する硝酸塩誘導性プロモーター、ホルモン誘導性プロ
モーター、およびRuBPカルボキシラーゼとLHCPファミリーの小サブユニットに関連付けら
れた光誘導性プロモーターが含まれる。
組織特異的、発生学的に調節されているプロモーターの例としては、b-コングリシニン
7Saプロモーターおよび種子特異的プロモーターを含む。種子色素体における優先性発現
に有用な植物機能プロモーターとしては、油糧種子における脂肪酸生合成に関与するタン
パク質に由来するもの、および植物貯蔵タンパク質に由来するものを含む。このようなプ
ロモーターの例としては、ファゼオリン、ナピン、ゼイン、大豆トリプシンインヒビター
、ACP、ステアロイル-ACPデサチュラーゼ、およびオレオなど転写可能な核酸分子配列か
らの5 '調節領域を含む。別の例示的な組織特異的プロモーターは、種子組織に特異的な
レクチンプロモーターである。
その他の有用なプロモーターには、Agrobacterium tumefaciensの腫瘍誘発プラスミド
に運ばれるノパリンシンターゼ、マンノピンシンターゼ、及びオクトピンシンターゼプロ
モーター；カリフラワーモザイクウイルス（CaMV）の19Sおよび35Sプロモーター；強化Ca
MV 35Sプロモーター；ゴマノハグサモザイクウィルス（Figwort Mosaic Virus）35Sプロ
モーター；リブロース-1,5 - ビスリン酸カルボキシラーゼ（ssRUBISCO）の小サブユニッ
ト由来の光誘導性プロモーター；タバコ由来のEIF-4Aプロモーター（Mandel et al.（199
5）Plant Mol. Biol. 29:995-1004）;トウモロコシスクロース合成酵素;トウモロコシア
ルコールデヒドロゲナーゼI;トウモロコシライト収穫複合体（compolex）;トウモロコシ
熱ショックタンパク質;シロイヌナズナ由来のキチナーゼプロモーター; LTP（脂質転送蛋
白）プロモーター;ペチュニアカルコンイソメラーゼ；豆グリシンリッチタンパク質1;ポ
テトパタチン;ユビキチンプロモーター；およびアクチンプロモーターが含まれる。有用
なプロモーターは、好ましくは、種子選択的、組織選択的、または誘導可能である。
種子特異的調節は、例えば、EP 0 255 378に記載されている。
異種遺伝子の高い発現を得るために、例えば、それがより効率的に発現宿主細胞（例え
ば、植物細胞、例えば、キャノーラ、米、タバコ、トウモロコシ、ワタ、ダイズ）内で発
現されるように、遺伝子（複数可）を再設計することが好ましい場合がある。したがって
、植物発現用のデルタ-9デサチュラーゼをコードする遺伝子の設計における任意の付加的
なステップ（すなわち、1つ以上の遺伝子調節エレメントの提供に加えて）は、最適な発
現のための異種遺伝子のタンパク質コード領域の再構築である。特定の実施形態では、天
然に存在する異種遺伝子配列で形質転換したキャノーラ植物細胞またはシロイヌナズナ植
物細胞よりも遺伝子組換えキャノーラ植物細胞またはシロイヌナズナ植物細胞で発現レベ
ルを大きくする（すなわち、より多くのタンパク質を産生する）ために最適化されて再設
計された遺伝子が含まれる。
遺伝子コードの冗長性/縮退（すなわち、いくつかのアミノ酸が複数のコドンによって
指定される）によって与えられる可塑性のために、様々な生物や生物のクラス内のゲノム
の進化は、同義のコドン異なる使用法をもたらしている。この「コドンバイアス」がタン
パク質コード領域の平均塩基組成に反映される。例えば、比較的低いG+Cの含有量を有す
るゲノムを有する生物は、同義コドンの3番目の位置にAまたはTを有するより多くのコド
ンを利用しているのに対し、より高いG+Cの含有量を有するものは、第3の位置にGまたはC
を有するより多くのコドンを利用している。さらに、mRNA内の「マイナー」コドンの存在
が、特にマイナーコドンに対応する荷電したtRNAの相対的な存在量が低い場合は、そのmR
NAの絶対的な翻訳率を下げる可能性があると考えられる。この推論の延長は、個々のマイ
ナーコドンによる翻訳率の減少が、複数のマイナーコドンに対して、少なくとも相加的で
あるだろうということである。したがって、特定の発現宿主においてマイナーコドンの高
い相対含量を有するmRNAは、相応に低い翻訳率を有するであろう。この率は、それに対応
した低レベルのコード化タンパク質に反映され得る。
キャノーラやシロイヌナズナ（または米、タバコ、トウモロコシ、綿、または大豆など
他の植物）での発現のためにデルタ-9デサチュラーゼをコードする最適化された遺伝子を
操作するにおいて、将来の宿主植物のコドンバイアスが決定されている場合、それは助け
になる。複数の一般的に利用可能なDNA配列データベースが存在し、当業者は植物ゲノム
のコドンの分布または様々な植物遺伝子のタンパク質コード領域に関する情報を見つける
ことができる。
コドンバイアスは、発現宿主（例えば、キャノーラやシロイヌナズナなどの植物）が、
そのタンパク質のアミノ酸をコードするために使用するコドンの統計的な分布である。コ
ドンバイアスは、単一のコドンが全てのアミノ酸のコドンに対して相対的に使用される頻
度として計算することができる。あるいは、コドンバイアスは、単一コドンがそのアミノ
酸（同義コドン）についての他のすべてのコドンに対して、特定のアミノ酸をコードする
ために使用される頻度として算出することができる。
デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の植物発現のための最適化コード領域を設計する際には
、植物によって好まれるプライマリ（「第一の選択」）コドンが決定されるべきであり、
複数の選択肢が存在する場合は、第二、第三、第四などの優先コドンの選択肢も決定され
るべきである。次いで、デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子をコードする新たなDNA配列が設
計され得、この新しいDNA配列は、アミノ酸配列内の各位置のアミノ酸を指定する宿主に
好ましい（第一の好ましい、第二優先、第三優先、または第四優先など）コドンの発現を
置換することによって天然のDNA配列（デサチュラーゼをコードする）とは異なる。次い
で、その新しい配列は、その変更によって作製された可能性のある制限酵素部位について
分析される。同定された推定の制限部位は、制限部位を除去するための次に優先されるコ
ドンでこれらのコドンを置換することによりさらに改変されている。異種配列の転写また
は翻訳に影響を及ぼす可能性のある配列内の他の部位は、エクソン：イントロン接合（5
'または3'）、ポリA付加シグナル、および/またはRNAポリメラーゼ終結シグナルである。
配列をさらに分析し、TAやCGダブレットの頻度を減らすように変更することができる。こ
れらのダブレットに加えて、同じである約6個以上のGまたはCヌクレオチドを有する配列
ブロックはまた、配列の転写または翻訳に悪影響を及ぼす可能性がある。したがって、こ
れらのブロックは、第一または第二の選択肢等のコドンを次に優先される選択のコドンと
置換することにより有利に改変される。
上記の方法は、当業者が、遺伝子が最適に植物中で発現されるように、特定の植物に異
質な遺伝子（群）を変更することを可能にする。この方法は、更に、PCT出願WO 97/13402
に示されている。したがって、いくつかの実施形態の不飽和化酵素/遺伝子と機能的に同
等の最適化された合成遺伝子は、植物を含む宿主を形質転換するために用いることができ
る。合成遺伝子の生産に関するその他のガイダンスについては、例えば、米国特許538083
1に記載されている。
一旦、植物に最適化されたDNA配列が紙上でまたはin silicoで設計されたら、実際のDN
A分子が設計された配列に正確に順番に対応して実験室で合成することができる。そのよ
うな合成DNA分子は、クローニングされ、そうでなければ、天然または天然の供給源から
得られたかのように正確に操作されることができる。
D. 植物材料の遺伝子形質転換のための方法
いくつかの実施形態は、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番号：8、配列
番号：9、配列番号：10、配列番号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列番号：17、
配列番号：44、配列番号：45、配列番号：48、および配列番号：49からなる群から選択さ
れる配列に対して少なくとも60％同一である核酸配列を含む1つまたは複数の核酸分子を
含む形質転換細胞を製造する方法に関する。このような核酸分子はまた、例えば、プロモ
ーターなどの非コーディング調節エレメントを含むことができる。他の配列もまた、非コ
ーディング調節エレメントおよび転写可能な核酸分子の配列と共に細胞に導入することが
できる。これらの他の配列は、3'転写ターミネーター、3'ポリアデニル化シグナル、他の
非翻訳配列、トランジット、または標的配列、選択マーカー、エンハンサー、およびオペ
レーターを含むことができる。
形質転換の方法は一般的には、適当な宿主細胞を選択する工程、組換えベクターで宿主
細胞を形質転換する工程、および形質転換された宿主細胞を得る工程を含む。細胞へDNA
の導入のための技術は、当業者に周知である。これらの方法は、一般的に5つのカテゴリ
に分類することができる：（1）化学的方法（Graham and Van der Eb (1973) Virology 5
4(2):536-9; Zatloukal et al. (1992) Ann. N.Y. Acad. Sci. 660:136-53)；（2）物理
的方法、例えば、マイクロインジェクション(Capechi (1980) Cell 22(2):479-88)、エレ
クトロポレーション(Wong and Neumann (1982) Biochim. Biophys. Res. Commun. 107(2)
:584-7; Fromm et al. (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82(17):5824-8; U.S. Paten
t 5,384,253)、および粒子加速(Johnston and Tang (1994) Methods Cell Biol. 43(A):3
53-65; Fynan et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90(24):11478-82；（3）ウイ
ルスベクター(Clapp (1993) Clin. Perinatol. 20(1):155-68; Lu et al. (1993) J. Exp
. Med. 178(6):2089-96; Eglitis and Anderson (1988) Biotechniques 6(7):608-14)；
（4）受容体媒介のメカニズム(Curiel et al. (1992) Hum. Gen. Ther. 3(2):147-54; Wa
gner et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89(13):6099-103)；（5）、アグロバ
クテリウムのような細菌の媒介メカニズム。あるいは、核酸は、直接植物の生殖器官を注
入することにより、花粉の中に導入することができる。Zhou et al. (1983) Methods in
Enzymology 101:433; Hess (1987) Intern. Rev. Cytol. 107:367; Luo et al. (1988) P
lant Mol. Biol. Reporter 6:165; Pena et al. (1987) Nature 325:274。その他の形質
転換方法としては、例えば、米国特許5508184に示されるプロトプラスト形質転換が含ま
れる。核酸分子はまた、未熟胚に注入してもよい。Neuhaus et al. (1987) Theor. Appl.
Genet. 75:30。
植物細胞の形質転換のための最も一般的に使用される方法は、次のとおりである：アグ
ロバクテリウム媒介DNA転移プロセス（Fraley et al. (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. U
SA 80:4803）（米国特許5824877、米国特許5591616、米国特許5981840、及び米国特許638
4301に示される）およびバイオリスティックまたは微粒子銃媒介プロセス（すなわち、遺
伝子銃）（例えば、米国特許5550318、米国特許5538880、米国特許6160208、米国特許639
9861、および米国特許6403865）。典型的には、核の形質転換が望ましいが、葉緑体また
はアミロプラストなどの色素体を特異的に形質転換することが望ましい場合には、植物の
色素体は、例えば、シロイヌナズナ、タバコ、ジャガイモ、そしてアブラナの種などの特
定の植物種において所望の核酸分子のマイクロプロジェクタ媒介送達を利用して形質転換
することができる。
アグロバクテリウム媒介形質転換は、アグロバクテリウム属に属する遺伝子操作された
土壌細菌の使用によって達成される。いくつかのアグロバクテリウム属は、遺伝子操作し
て多くの植物種へのDNAの任意の部分を運ぶようにすることができる「T-DNA」と呼ばれる
特定のDNAの転移を仲介する。T-DNAを媒介発病（pathogensis）のプロセスをマーキング
する主要なイベントは、次のとおりである。病原性遺伝子の誘導、およびT-DNAのプロセ
ッシングと転移。このプロセスは、多くのレビューの対象となっている。例えば、Ream (
1989) Ann. Rev. Phytopathol. 27:583-618; Howard and Citovsky (1990) Bioassays 12
:103-8; Kado (1991) Crit. Rev. Plant Sci. 10:1-32; Zambryski (1992) Annual Rev.
Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 43:465-90; Gelvin (1993) in Transgenic Plants, K
ung and Wu eds., Academic Press, San Diego, CA, pp. 49-87; Binns and Howitz (199
4) In Bacterical Pathogenesis of Plants and Animals, Dang, ed., Berlin: Springer
Verlag., pp. 119-38; Hooykaas and Beijersbergen (1994) Ann. Rev. Phytopathol. 3
2:157-79; Lessl and Lanka (1994) Cell 77:321-4; および Zupan and Zambryski (1995
) Annual Rev. Phytopathol. 27:583-618を参照。
形質転換の手法にかかわらず、形質転換された植物細胞について選択するかまたはスコ
ア化するために、細胞内に導入されたDNAは、再生可能な植物組織内で機能して、植物組
織に、もし抵抗性を与えなければ毒性化合物であるものに対する抵抗性を与える化合物を
産生する遺伝子が含まれる場合がある。選択マーカー、スクリーニングマーカー、または
スコアマーカーとして使用するための目的の遺伝子は、β-グルクロニダーゼ（GUS）、緑
色蛍光タンパク質（GFP）、ルシフェラーゼ、および抗生物質または除草剤耐性遺伝子を
含むがこれらに限定されない。抗生物質耐性遺伝子の例としては、ペニシリン、カナマイ
シン（およびネオマイシン、G418、ブレオマイシン）、メトトレキサート（およびトリメ
トプリム）、クロラムフェニコール、およびテトラサイクリンに対する耐性を付与する遺
伝子を含む。例えば、グリホセート耐性を除草剤耐性遺伝子により付与することができる
。Della-Cioppa et al.（1987）Bio/Technology 5:579-84。他の選択デバイス、例えば、
限定はしないが、ホスフィノトリシン、ビアラホス、正の選択メカニズム（Joersbroら（
1998）Mol.Breed.4:111-7）に対する耐性、などもまた実装することができ、本発明の実
施形態の範囲内にあると考えられる。
選択またはスクリーニングによって同定され、再生をサポートする適切な培地で培養さ
れた、形質転換された細胞は、その後、植物にまで成熟させ得る。
本明細書中に開示された方法は、任意の形質転換可能な植物の細胞や組織で使用され得
る。形質転換可能な細胞及び組織は、本明細書で使用する場合、更に増殖して植物を生じ
させることが可能である細胞または組織を含むが、これらに限定されない。当業者は、多
数の植物細胞または組織が外来DNAを挿入した後と適切な培養条件で、植物細胞または組
織が分化した植物体を形成することができるような形質転換可能であることを認識してい
る。これらの目的のための適切な組織としては、未熟胚、タツナミソウ属（scutellar）
組織、懸濁培養細胞、未熟花序、茎頂分裂組織、リンパ節の外植片、カルス組織、胚軸組
織、子葉、根や葉を含めることができるが、これらに限定されない。
形質転換植物プロトプラストまたは外植片からの植物の再生、発育、栽培は、当該技術
分野で公知である。Weissbach and Weissbach (1988) Methods for Plant Molecular Bio
logy, (Eds.) Academic Press, Inc., San Diego, CA; Horsch et al. (1985) Science 2
27:1229-31。この再生と成長のプロセスは、形質転換された細胞を選択する工程、それら
の細胞を胚発生から根ざした（rooted）幼植物の段階を通じての通常の段階を経て培養す
る工程を典型的に含む。トランスジェニック胚および種子も同様に再生成される。この方
法では、形質転換体は、首尾良く形質転換細胞を選択し、植物のシュート（shoot）の再
生を誘導する選択培地の存在下で一般的に培養される。Fraley et al. (1993) Proc. Nat
l. Acad. Sci. USA 80:4803。これらのシュートは、通常、２〜４ヶ月以内に得られる。
得られたトランスジェニック根ざしたシュートは、その後土壌などの適切な植物成長培地
に植えられる。選択剤への暴露を生き残る細胞、またはスクリーニングアッセイで陽性獲
得された細胞は、植物の再生を支持する培地で培養することができる。シュートは次に選
択剤と細菌の増殖を防ぐために抗生物質を含有する適切な根誘導培地に移すことができる
。シュートの多くは根を発達させる。そして、これらは根の継続的な発達を可能にする土
壌または他の培地に移植される。方法は、上記のように、一般的に使用される特定の植物
株によって異なり、そのため方法論の子細は、当業者の裁量の範囲内にある。
再生されたトランスジェニック植物は、ホモ接合性トランスジェニック植物を提供する
ために、自家受粉され得る。あるいは、再生されたトランスジェニック植物から得られた
花粉は、非トランスジェニック植物、好ましくは、農学的に重要な種の近交系と交配する
ことができる。逆に、非トランスジェニック植物からの花粉を、再生するトランスジェニ
ック植物を受粉するために用いることができる。
トランスジェニック植物は、その子孫に変換された核酸配列を一緒に渡すことができる
。トランスジェニック植物は、形質転換された核酸配列に対して、好ましくはホモ接合体
であり、その子孫の際のすべてに、有性生殖の結果としてその配列を伝達する。子孫は、
トランスジェニック植物によって生成された種子から成長させることができる。これらの
付加的な植物は、その後、植物の真の繁殖ラインを生成するために、自家受粉してもよい
。
これらの植物からの子孫が、とりわけ、遺伝子発現のために評価されることができる。
遺伝子発現は、ウェスタンブロッティング、ノーザンブロッティング、免疫沈降、及びEL
ISA（酵素結合免疫吸着アッセイ）などのいくつかの一般的な方法によって検出すること
ができる。形質転換植物はまた、導入したDNAの存在、および発現レベル、および/または
本発明の核酸分子およびアミノ酸分子によって付与された脂肪酸プロフィールのために分
析することができる。当業者は、形質転換植物の分析のために利用できる多くの方法を認
識している。例えば、植物の分析のための方法としては、サザンブロットまたはノーザン
ブロット、PCRベースのアプローチ、生化学分析、表現型のスクリーニング方法、フィー
ルド評価、及び免疫アッセイが含まれるが、これらに限定されない。
特に双子葉植物を形質転換するための方法は、当業者に周知である。これらの方法を用
いた形質転換および植物体再生が、以下を含む多数の作物：シロイヌナズナ属のメンバー
、綿花（チョウ目害虫抵抗性ワタ）、ダイズ（Glycine max）、落花生（ラッカセイ（Ara
chis hypogaea））、アブラナ属のメンバーについて記載されているが、これらに限定さ
れない。主にアグロバクテリウムツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）の使
用による双子葉植物の形質転換の方法およびトランスジェニック植物を得るための方法が
、綿（米国特許第5004863、米国特許5159135、米国特許5518908）、大豆（米国特許55698
34、米国特許5416011; McCabe et al. (1988) Biotechnology 6:923; Christou et al. (
1988) Plant Physiol. 87:671-4）。アブラナ（米国特許5463174）、ピーナッツ（Cheng
et al. (1996) Plant Cell Rep. 15:653-7; McKently et al. (1995) Plant Cell Rep. 1
4:699-703）、パパイヤ、およびエンドウ（Grant et al. (1995) Plant Cell Rep. 15:25
4-8）ついて公表されている。
単子葉植物を形質転換するための方法もまた、当該分野で周知である。これらの方法を
用いた形質転換および植物体再生は、以下を含む多数の作物について記載されているが、
これらに限定されない：大麦（オオムギvulgarae）;トウモロコシ（Zea mays）；オート
麦（エンバク）；カモガヤ（オーチャード）；イネ（Oryzaインディカとジャポニカ品種
を含むイネ）；ソルガム（モロコシ）；サトウキビ（サトウキビ種）；トールフェスク（
オニウシノケグサ）;芝草の種（例えば、Agrostis根生目（Agrostis stolonifera）、ケ
ンタッキーブルーグラス（Poa pratensis）、Stenotaphrum secundatum）、小麦（コムギ
）;およびアルファルファ（アルファルファ）。多数の形質転換の方法論が、任意の数の
関心の対象作物ために、安定したトランスジェニック植物の生産のために使用され、変更
され得ることが、当業者には明らかである。
任意の植物が本明細書中に開示された方法で使用するために選択され得る。本発明に係
る改変のための好ましい植物としては、例えば、限定されないが、油糧種子植物、シロイ
ヌナズナ、ルリヂサ（Borago SPP）、キャノーラ（アブラナ属菌）、ヒマシ（トウゴマ）
、カカオ豆（テオブロマカカオ）、トウモロコシ（Zea mays）、ワタ（ワタ属）、ハマナ
属、クフェア属、亜麻（アマ属属）、LesquerellaおよびLimnanthes属、Linola、キンレ
ンカ（ノウゼンハレン属）、マツヨイグサ属、オリーブ（Oleaの属）、パーム（アブラヤ
シ属属）、落花生（ラッカセイ属）、菜種、紅花（ベニバナ属）、ダイズ（Glycineおよ
び総社属）、ヒマワリ（ヒマワリ属）、タバコ（ニコチアナ属）、ハグマ属、コムギ（Tr
iticum属）、オオムギ（オオムギ属）、イネ（Oryza属）、燕麦（カラスムギ属）、ソル
ガム（モロコシ属）、およびライムギ（ライムギ属）やイネ科の他のメンバーが含まれる
。
多数の形質転換の方法論が、関心の対象作物は、任意の数から安定したトランスジェニ
ック植物の生産のために使用され、変更され得ることは、当業者には明らかである。
E. トランスジェニック種子
いくつかの実施形態では、トランスジェニック種子は、配列番号：12、配列番号：13、
配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、配列番号：52、配列番号：72、および配列
番号：73からなる群から選択される配列と少なくとも80％同一であるアミノ酸配列を含む
ポリペプチドデルタ-9デサチュラーゼを含んでもよい。これらおよび他の態様において、
トランスジェニック種子は、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番号：8、配
列番号：9、配列番号：10、配列番号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列番号：17
、配列番号：44、配列番号：45、配列番号：48、および配列番号：49からなる群から選択
される配列に対して少なくとも60％同一である核酸配列を含んでもよい。特定の実施態様
において、トランスジェニック種子は、飽和脂肪酸（例えば、パルミチン脂肪酸及び/又
はステアリン脂肪酸）レベルの低下を示すことができる。種子は、肥沃なトランスジェニ
ック植物から収穫することができ、上述したように少なくとも1つの核酸配列、および場
合によって少なくとも1つの付加的な対象の遺伝子または核酸構築物を含むハイブリッド
植物系統を含む形質転換植物の子孫世代を成長させるために使用することができる。
以下の実施例は、ある特定の特徴および/または実施形態を説明するために提供されて
いる。これらの実施例が、記載された特定の機能または形態に本発明を限定するものと解
釈されるべきではない。
実施例I：ole1欠損酵母におけるアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼのクローニングおよ
び機能解析
イネいもち病菌アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼのクローニング
イネいもち病菌アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子（MgD9DS）は、「仮想タンパ
ク質」として当初注釈付きの公開されているNCBI/Broad研究所(Institute)の配列であっ
て、S.セレビシエアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ（すなわち、OLE1）にヌクレオチド
レベルで55.4％の同一性を有する配列に基づいてプライマーを用いてゲノムDNAから単離
された。フォワードおよびリバースプライマー（長さはそれぞれ41塩基対）が、設計され
た。フォワードプライマーMgD9F（配列番号：1）は、5'末端にEcoRI部位が含まれていた
。リバースプライマーMg9DR（配列番号：2）は、3つのリーディングフレームおよび末端X
hoI部位の各々に終止コドンを含んでいた。
MgD9DS遺伝子は、製造業者のプロトコルに従ってタカラEZ Taq（登録商標）PCRキット
（タカラバイオ株式会社滋賀県大津市、日本）を用いてPCR増幅した。増幅条件は、94℃
で1分の後、94℃で30秒間、60℃で60秒間、および72℃で90秒間の伸長の30サイクルであ
った。最後の伸長ステップを72℃で10分間行った。予想された1425塩基対のPCR産物をア
ガロースゲルから切り出し、メーカーの推奨に従ってモンタージュ（Montage）スピンカ
ラム（ミリポア、バーリントン、マサチューセッツ州）を用いて精製した。精製断片をpC
R（登録商標）2.1 TOPO（登録商標）クローニングベクター（Invitrogen、Carlsbad、CA
）の中にクローン化した。TOPO反応は、サプライヤーの条件でケミカルコンピトップ10大
腸菌細胞に形質転換した。推定クローンを含む細菌コロニーを単離した。ミニプラスミド
プレップを、マシュレ-ナーゲル（Macherey-Nagel）Nucleospin DNA単離キット（マシュ
レ-ナーゲル、ノイマンネアンダー-シュトラーセ、デューレン、ドイツ）で行い（prefor
med）、DNAをEcoRIおよびXhoI制限酵素で消化した。予想される1425 bpのMgD9DS遺伝子断
片を含む陽性クローンを同定した。ヌクレオチド配列は、配列決定反応を介して得られた
。PCR増幅断片の配列を配列番号：3として記載した。
配列解析はMgD9DS遺伝子の5 '末端に位置する小さな（90 bp）のイントロンを明らかに
した。イントロンはスプライスオーバーラップ伸長PCRを用いて除去した。得られたPCRア
ンプリコンをゲル精製し、pCR（登録商標）2.1 TOPO（登録商標）クローニングベクター
にクローニングし、トップ10大腸菌細胞に形質転換した。いくつかのクローンを、単一の
形質転換体のコロニーからの精製DNAの制限酵素分解物の分析によって同定した。これら
のクローンをイントロンMgD9DSクローンの存在を確認するために配列決定した。得られた
配列は、配列番号：4として記載されている。
イントロン有りおよび無しのMgD9DS遺伝子を、各々酵母発現ベクターへのEcoRI/XhoI断
片としてサブクローニングした。この酵母発現ベクターは、S.cerevisiaeデルタ-9デサチ
ュラーゼプロモーターおよびデルタ-9デサチュラーゼ3'UTR /ターミネーターに隣接した
アスペルギルスニデュランス（Aspergillus nidulans）・デルタ-9デサチュラーゼ（AnD9
DS）遺伝子を含んでいる。アスペルギルス・ニデュランスデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子
を、MgD9DS遺伝子含有フラグメントまたはイントロン無しMgD9DS遺伝子含有フラグメント
のいずれかと交換したEcoRI/XhoIフラグメント上に切り出した。 MgD9DS遺伝子（１つは
イントロンを有するもの、および１つはイントロンのないもの）を含む二つのクローンは
、S.セレビシエの形質転換のために進められた（advanced）。
Tween（登録商標）80を含む酵母ペプトンデキストロース（YPD）培地上で維持されてい
るデルタ-9デサチュラーゼ欠損S.cerevisiae株（OFY093）を、アルカリカチオン酵母形質
転換キット（Qbiogene、モントリオール、カナダ）を用いて形質転換した。補完菌株をTw
een（登録商標）80（一価不飽和脂肪酸補充剤）またはウラシル（SC-URA及び寒天を含む
ドロップアウトベース）を含まない培地での増殖により同定した。補完株を選択培地上で
3回単一コロニー精製した。補完株を、さらにデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子のPCR増幅お
よびPCR産物の配列決定により確認した。また、MgD9DSクローンを含む株をYPD +Tween（
登録商標）80培地で少なくとも3回継代し、次いでTween（登録商標）80マイナスのDOBA S
C-URA培地へパッチングすることにより、脂肪酸およびウラシル依存に戻した。
イントロン含有MgD9DSコーディング配列の発現は失敗し、これはイントロンが酵母機構
によってスプライシングされなかったことを示す。イントロン無しMgD9DSコーディング配
列を含有する酵母株の基質特異性を、さらにFAME分析によって特徴付けた。
レプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria nodorum）アシルCoAデルタ-9デサチュ
ラーゼのクローニング
二つレプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria nodorum） EST配列（それぞれ1246
および429塩基対）を、S.セレビシエアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ（OLE1）と配列同
一性の高いレベル（それぞれ54.0％および54.2％）を共有するものとしてBLASTN検索を使
用して、L. nodorumのESTのコレクションから同定した。アラインメントすると、これら
の配列は互いに64.6％同一であった。これは、2つの別個のレプトスファエリア ノドルム
（Leptosphaeria nodorum）アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼの存在を示唆する。LnD9DS
-1遺伝子（配列番号：5）を、1246 bpの遺伝子プローブを用いてL. nodorum cDNAライブ
ラリーをスクリーニングすることによって単離した。この遺伝子の配列が得られ、コード
配列を単離した。LnD9DS-2遺伝子の配列全体を、429 bpのEST配列を使用して公開されて
いるブロード研究所のレプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria nodorum）のゲノム
配列をまずBLAST検索することによって単離した。この検索では、Supercontig Ln 1.4を
、429塩基対の断片に対して100％の相同性（homology）を有する遺伝子を含むものとして
同定し、その遺伝子を「仮想タンパク質」をコードするものとして注釈した。次に、LnD9
DS-2遺伝子を、Ln1.4 supercontig配列に基づいてPCRプライマーを用いてレプトスファエ
リア ノドルム（Leptosphaeria nodorum） cDNAライブラリーからクローニングした。使
用したプライマー配列はLnd9FAD2F（配列番号：6および）Lnd9FAD2R（配列番号：7）であ
った。フォワードプライマーは、5 'BamHI部位に設計されており、リバースプライマーは
、3つのリーディングフレームと端末のNcoI部位に停止コドンを含んでいた。
レプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria nodorum） cDNAライブラリーのアリコ
ートをPCR反応のための鋳型DNA 400 ngを提供するために、1/10に希釈した。 PCR増幅は
、タカラEZのTaq（商標）PCRキットを用いて、94℃で1分間の後、94℃で30秒間、60℃で6
0秒間、および72℃で 90秒間の伸長の30サイクルの推奨される増幅条件で行った。最後の
伸長ステップを72℃で10分間行った。予想された1370塩基対の産物をアガロースゲルから
切り出し、メーカーの推奨に従ってモンタージュスピンカラムを用いて精製した。精製断
片をpCR（登録商標）2.1 TOPO（登録商標）クローニングベクターにクローニングした。
ライゲーション反応は、製造業者の推奨プロトコルに従って化学的にコンピテントである
トップ10大腸菌細胞に形質転換した。推定クローンを含むコロニーを単離した。プラスミ
ドミニプレップをマシュレ-ナーゲルNucleospinカラムで行い（preformed）、DNAをBamHI
及びNcoI制限酵素で消化した。推定LnD9DS-2クローンを同定し、配列決定した。
配列決定の際、LnD9DS-2（配列番号：8）のクローンを「仮想タンパク質」配列と比較
することによって確認した。LnD9DS-2の配列における保存的な変化が確認された。コドン
TGC（システイン）は、塩基位置271におけるチミジンへのアデニンの置換によってAGC（
セリン）に変更され、そのコドンは公開されている配列のアミノ酸89に翻訳された。これ
は保存的な変更であり、システインは複数の糸状菌の間で高度に保存されたアミノ酸であ
ることが判明しなかったので、補正は試行されなかった。
それぞれ配列番号：5および8のLnD9DS-1およびLnD9DS-2遺伝子を、酵母発現ベクターに
クローニングした。LnD9DS-1またはLnD9DS-2コード配列のいずれかを含むクローンを制限
酵素分析およびDNA配列決定によって確認した。
Tween（登録商標）80を含まないYPD培地上に維持されたデルタ-9デサチュラーゼ欠損S.
cerevisiae株（OFY093）を、Qbiogeneからのアルカリカチオン酵母形質転換キットを用い
て形質転換した。補完株はTween（登録商標）80（一価不飽和脂肪酸補充剤）またはウラ
シル（DOBA SC-URA）を含んでいなかった培地での増殖により同定された。補完株を選択
培地上で3回単一コロニー精製した。補完株はさらにデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子のPCR
増幅およびPCR産物の塩基配列決定により確認した。また、LnD9DS-2クローンを含む菌株
を、YPD +Tween（登録商標）80培地上の各菌株を少なくとも3回継代し、その後、Tween（
登録商標）80を含まないDOBA SC-URA培地へパッチングすることによって、脂肪酸および
ウラシル依存に戻した。LnD9DS-1またはLnD9DS-2コード配列のいずれかを含有する酵母株
の基質特異性は、さらにFAME分析によって特徴付けられた。
HzD9DS遺伝子でのデルタ-9デサチュラーゼ欠損S.cerevisiaeのクローニングとその形質
転換
オオタバコガトウモロコシアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ（HzD9DS）（Rosenfield
et al. (2001) Insect Biochem. Mol. Biol. 31(10):949-64においてHzPGDS2として識別
されている）をコードする植物に最適化された合成遺伝子をDASPICO89（後述）からBamHI
/XhoI断片上に切り出し、モンタージュスピンカラムを用いてゲル精製した。この断片を
、前述した酵母発現ベクターの対応する制限酵素部位にライゲーションし、大腸菌株DH5a
へ標準的な分子生物学技術とサプライヤーのプロトコル（インビトロジェン、Carlsbad、
CA）を用いて形質転換した。
制限分析及びDNA配列決定に続いて、HzD9DS遺伝子を含むクローンを、デルタ-9デサチ
ュラーゼ欠損S.cerevisiae株OFY093への形質転換のために選択した。Tween（登録商標）8
0を含むYPD培地上で維持されたOFY093株を、Qbiogeneからのアルカリカチオン酵母形質転
換キットを用いて形質転換した。補完株はトゥイーンを（登録商標）80（脂肪酸補充剤）
およびウラシル（DOBA SC-URA）が含まれていなかった培地での増殖により同定した。推
定補完株を選択培地上で3回単一コロニー精製した。補完菌株を以下によってさらに確認
した：i）Qbiogene酵母プラスミド精製キットを用いたプラスミドDNAの抽出に続いて、Hz
D9DS遺伝子特異的プライマーを用いたPCR増幅；ii）HzD9DS遺伝子特異的PCR産物の配列決
定、およびiii）の復帰： YPD +のTween（登録商標）80培地での少なくとも3回の継代の
後、Tween（登録商標）80培地マイナスのDOBA SC-URAへのパッチングによる脂肪酸および
URA-3依存性への戻し。1つの確認された補完HzD9DS酵母株の基質特異性が、さらにFAMEの
分析によって特徴付けられた。
OLE1欠損酵母株で発現されたLnD9DS-1、LnD9DS-2、MgD9DS、およびHzD9DSの分析
上記のように、3つの例示的なアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ（D9DS）遺伝子は、植
物病原性真菌、イネいもち病菌（MgD9DS）、およびレプトスファエリア ノドルム（Lepto
sphaeria nodorum）（LnD9DS-1とLnD9DS-2）からクローニングされた。これらの遺伝子お
よびそのコードされたタンパク質は、これまでに特徴付けされていない。アシルCoAデル
タ-9デサチュラーゼは、コエンザイムAの飽和14-、16-、および18-炭素脂肪酸アシルチオ
エステルの炭素原子9と10の間のシス二重結合の形成を触媒し、その結果、それぞれミリ
ストレイン酸（14:1）、パルミトレイン酸（16:1）、またはオレイン酸（18:1）を産生す
る。生物特異的な生物学に関連した影響は、同じ生物学的コンテキスト内で異なる真菌ア
シルCoAデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子を発現することによって解消される。それ故に、
真菌アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の発現が、パルミトイル-ステアロイルCoA
デサチュラーゼ（OLE1）欠損OFY093酵母菌株内の内在ole1遺伝子プロモーターを用いて駆
動された。したがって、このシステムにおける脂肪酸基質特異性に観察された相違は、特
定の真菌デルタ-9補完S.セレビシエ株で発現デサチュラーゼに起因するものである。
補完OYF093系統で発現されたMgD9DS、LnD9DS-1、およびLnD9DS-2のCoAデサチュラーゼ
の基質特異性を特徴付けし、WO/1999/050430に記載されるAnD9DS（sdeA）で補完されたOF
Y093と比較した。AnD9DS遺伝子（その発現がOLE1遺伝子プロモーターによって駆動される
）を含む酵母発現構築物を、S.セレビシエOFY093株に形質転換し、上記のプロトコルを用
いて発現させた。
補完S.セレビシエ株は、24時間30℃で脂肪酸の補充のない最少培地で増殖させた。定量
的FAMEの分析をた洗浄し凍結乾燥した細胞ペレット上で行った。この分析の結果を表1に
示す。 LnD9DS-2は、C14：1とC16：1の形成を促進するのに対し、LnD9DS-1およびMgD9DS
は、酵母脂肪酸組成分析におけるC16：1/18：1の脂肪酸の比率によって示されるように、
C18：1に対する優先性を有する。
新規なデサチュラーゼを、さらに同じ組換え発現環境に移した天然のS.セレビシエステ
アロイル-CoAデルタ-9デサチュラーゼ（OLE1）と比較した。 WO/2000/011012に記載され
たS. cerevisiaeからヌクレオチド配列を含有する酵母発現ベクターを構築した。天然のS
.セレビシエステアロイル-CoAデルタ-9デサチュラーゼを含む酵母発現構築物を、上記の
プロトコルを用いて、S.セレビシエOFY093株に形質転換し、発現させた。昆虫種からの別
の非真菌アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼである、オオタバコガゼア（HzD9DS）も、こ
れらの実験で評価した。
MgD9DS、LnD9DS-2、およびHzD9DS遺伝子の１つを含む補完S.セレビシエ株は、ドロップ
アウトブロスSC-URAで増殖させた。コントロール菌株、pDAB467EV-1（前述の酵母の形質
転換方法論によってOFY093に形質転換したpDAB467B/N）を、DOB SC-URA +Tween（登録商
標）80で増殖させ、親デルタ-9デサチュラーゼ欠損S.cerevisiae株である、OFY093を、 D
OB SCAA +Tween（登録商標）80で増殖させた。培養物に1.5％寒天を含む同じ培地の新鮮
な画線（streak）プレートからの細胞のループを播種した。菌株を24時間30℃で増殖させ
た。培養物を10分間6,000 rpmで遠心した。ペレットを、水で洗浄し、10分間6,000 rpmで
再び遠心分離し、その後FAMEの分析を行うまで、-20℃で凍結した。発現培養物の3つのセ
ットを分析した。
凍結乾燥酵母ペレットを10％（w/v）のNaOHを含むメタノールで鹸化した。非けん化性
の脂質汚染物質（ステロール）をヘキサンで除去した。メタノール画分を、H2SO4の添加
により酸性化し、プロトン化された脂肪酸をヘキサンで抽出した。単離したヘキサン画分
を乾燥し、脂肪酸を30分間80℃で0.5 N MeOHClでメチル化した。生じたFAMEを、内部標準
としてウンデカン酸メチルエステルを含むヘキサンで抽出した。FAME抽出物を、SGE（オ
ースティン、テキサス州）からのキャピラリーカラムBPX 70（15m x 0.25 x 0.25mm）を
搭載したHP6890ガスクロマトグラフFlameイオン化検出器（サンタクララ、カリフォルニ
ア州）を用いて分析した。FAMEを、キャリアガスとしてヘリウムを使用して温度勾配で分
離した。各FAME種は、保持時間によって識別され、較正標準として、Matreya, LLC（プレ
ザントギャップ、ペンシルバニア州）からのFAME菜種油基準ミックスを注入することによ
り定量した。
表2は、様々な例示的なアシルCo-Aデルタ-9デサチュラーゼを発現するole1欠損OFY093
酵母細胞の脂肪酸組成（％FAMEとして）を示す。全ての株は良く育ち、外因的MUFAs（一
価不飽和脂肪酸）についての要件なしに導入デサチュラーゼによって完全補完された。
これらのデータは、補完酵母株の脂肪酸組成が導入した遺伝子に応じて変化することを
示す。LnD9DS-2はHzD9DSおよび ole1と同様C16：1を比較的多量生成するのに対して、AnD
9DSおよびMgD9DSはC18：1の比較的高い量を生成する。
鎖長に基づく変換の差分レベルは、C14、C16、またはC18の各脂肪酸の鎖長についての
総脂肪酸に対するMUFAの割合を計算することによってさらに示すことができる。これらの
データは、LnD9DS-2およびHzD9DS についてのC16：1への、ならびにAnD9DSおよびMgD9DS
についてのC18：1への比較的高い変換率を示す。
表3．下の4つの行が追加されたタージトール、不飽和脂肪酸、またはTween（登録商標）
を補完したコントロールサンプルを表している。JMP統計ソフトウェアスイート（SASイン
スティチュート社、ケアリー、ノースカロライナ州）で行わテューキー・クレーマーテス
ト（Tukey-Kramer Test）を介して決定されたように、異なる文字を含むサンプルは、大
きく異なっている。
真菌のアシル-CoAデサチュラーゼの系統発生
複数の真菌アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼのアミノ酸配列の系統解析は、LnD9DS-2
が18:0-優先性デルタ-9デサチュラーゼと異なっていることを示唆している。従って、本
発明者らは、18：0-優先性デルタ-9デサチュラーゼまたはLnD9DS-2と密接に関連付けられ
た他の真菌デルタ-9デサチュラーゼの特徴付けにより、種々の18:0または16:0活性を有す
るデサチュラーゼを同定し得るという仮説を立てた。本発明者らの仮説は、より密接にLn
D9DS-2に関連付けられている真菌デルタ-9デサチュラーゼは、16：0活性を増加している
だろうと予測している。
公的なDNA配列データベース（ブロード研究所、NCBIなど）の検索では、イネいもち病
菌またはレプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria nodorum）でデルタ-9デサチュラ
ーゼとして特に注釈を付けられたいかなる遺伝子配列も同定しなかった。本開示の範囲内
で同定されたブロード研究所配列のアミノ酸配列のピーファム（Pfam）分析は、これらの
タンパク質が、他の真菌アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼでも見出されるシトクロムB5
およびデサチュラーゼモチーフを含むことを示す。しかし、それらのタンパク質は、これ
までにアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼとして同定されていない。本発明者らは、酵母
における相補性、反転の研究（reversal studies）、DNA配列分析により、これらのタン
パク質のこの機能を実証した。
いくつかの真菌デサチュラーゼ遺伝子配列の関係は、MEGAソフトウェアパッケージを介
して近隣結合法を用いて系統的に解析した。Tamura et al. (2007) Mol. Biol. and Evol
ution 24:1596-9。図1は、真菌デサチュラーゼ配列のこの系統解析を示す。これらの配列
は、AnD9DS（sdeA）アミノ酸配列を用いたNCBIの配列データベースのBLASTN検索によって
回収した。LnD9DS-1およびMgD9DSは、LnD9DS-2に比べて、互いにより高いレベルの配列同
一性を共有している。さらに、LnD9DS-1、LnD9DS-2、MgD9DSのClustalWのアライメントは
、LnD9DS-1およびMgD9DSからのLnD9DS-2の分岐（divergence）を示す。図2。LnD9DS-1お
よびMgD9DSの塩基配列は、より高い数の共通の塩基対を共有する。
表4および図3はさらに、新たに同定されたタンパク質である、LnD9DS-1、LnD9DS-2、お
よびMgD9DS、ならびにAnD9DSおよび酵母デサチュラーゼ、ScOLE1の系統関係を示す。LnD9
DS-1、MgD9DS、およびAnD9DS（sdeA）のアミノ酸配列は、LnD9DS-2に比べてお互いに大き
な割合の同一性を共有している。アミノ酸同一性の保存は、本発明者らが18:0アシルCoA
に対する基質特異性は、LnD9DS-1、MgD9DS、およびAnD9DS（sdeA）間で共有され保存され
た配列に依存していることを予測することを可能にする。比較では、LnD9DS-2のアシル-C
oA基質特異性は、その分岐した（divergent）アミノ酸配列の結果として、16:0に対して
優先性である。
実施例2：イネいもち病菌、オオタバコガトウモロコシ、およびレプトスファエリア ノ
ドルム（Leptosphaeria nodorum）からの最適化されたデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の
設計および合成
キャノーラにおける真菌デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の高い発現を得るためには、そ
れらがより効率的に異種遺伝子を含むトランスジェニックキャノーラ細胞で発現されるよ
うに、これらの遺伝子を設計した。配列番号：9、配列番号：10および配列番号：11とし
てそれぞれ本明細書に開示される、天然のいもち（Magnaporthe grisea）、オオタバコガ
トウモロコシ、およびレプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria nodorum）デルタ-9
デサチュラーゼコード領域のDNA配列の広範な分析により、最適な植物発現、ならびにそ
のような最適な植物発現用の非最適コドン組成に対して有害であると考えられるいくつか
の配列モチーフの存在が明らかになった。デルタ-9デサチュラーゼのタンパク質をコード
する最適化された遺伝子を設計するために、本発明者らは、配列の変更が翻訳を妨げず、
またはmRNAの不安定性を生じない、性質がより「植物のような」（具体的には、より「キ
ャノーラ様の」）DNA配列をin silicoで作成した。
デルタ-9デサチュラーゼをコードする植物に最適化された遺伝子を設計するために、DN
A配列を、特定の宿主植物（すなわち、キャノーラ）についてタンパク質コード配列から
コンパイルされたコドンバイアステーブル（codon bias table）から確立された冗長な遺
伝子コードを利用して、タンパク質デサチュラーゼのアミノ酸配列をコードするように設
計した。キャノーラのための好ましいコドンの使用状況を表5に示す。セイヨウアブラナ
のコーディング領域に見られるように、表5の列CとGは、各アミノ酸の同義コドンの分布
（そのアミノ酸の全てのコドンの使用に対する％で）を示す。これは、いくつかのアミノ
酸のためのいくつかの同義コドンが植物遺伝子（例えば、キャノーラでCGG）で稀にしか
検出されなかったことは明らかである。それはいずれかの植物型の遺伝子に関連するアミ
ノ酸をコードする時間の約10％以下で表される場合、コドンはめったに使用されないと考
えられた（表5の列DとHの 「DNU」で示す）。アミノ酸の残りのコドン選択の分布のバラ
ンスを取るために、各コドンの加重平均表現は次の式を用いて算出した：
C1の加重平均％= 1 /（％C1 +％C2 + ％C3 +等）×％C1×100、
ここで、C1は、問題のコドンであり、％C2、％C3、等は、表5の残りの同義コドンのセ
イヨウアブラナについての％値の平均値を表している（関連コドンの平均％値が列Cおよ
びGから取得される）。
[0001]各コドンの加重平均％値は、表5の列DとHに与えられている。
それぞれ配列番号：12、配列番号：13、および配列番号：14のイネいもち病菌（Mangna
porthe grisea）、オオタバコガトウモロコシ(Helicoverpa zea)、及びレプトスファエリ
ア ノドルム（Leptosphaeria nodorum）デルタ-9デサチュラーゼのアミノ酸配列を本質的
にコードする新しいDNA配列が、キャノーラ遺伝子において見いだされた頻繁に使用され
るコドンの第一及び第二の選択肢のコドン分布を用いて、キャノーラにおける最適発現た
めに設計された。新たなDNA配列は、タンパク質アミノ酸配列内各位置での適切なアミノ
酸を指定するための、植物優先性（すなわち、第1優先、第2優先、第3優先、または第四
優先）のコドンの置換によってデルタ-9デサチュラーゼのタンパク質をコードする天然の
DNA配列とは異なる。
植物に最適化されたDNA配列の設計を、表5の列D およびHから構築したキャノーラコド
ンバイアステーブルを使用して、配列番号：12、配列番号：13、および配列番号：14のタ
ンパク質配列の逆翻訳によって開始した。次いで、初期配列をコドン変化を補償する（全
体の加重平均コドン表現を維持しながら）ことによって改変して、制限酵素認識部位を除
去し、安定性の高い鎖内の二次構造を削除し、そして植物におけるクローニング操作また
は操作遺伝子の発現に有害かもしれない他の配列を除去した。次いで、DNA配列を、その
改変によって作成されたかもしれない制限酵素認識部位のために再分析した。次いで、識
別された部位を、第一、第二、第三、または第四選択肢の好ましいコドンに、関連するコ
ドンを置換することによってさらに改変した。その改変された配列をさらに分析し、さら
に、TAとCGダブレットの頻度を低減するように、そしてTGとCTダブレットの頻度を増加す
るように改変した。これらのダブレットに加えて、約6を超える連続する[G+ C]または[A
+ T]の残基を有する配列を、他の好ましいコドンと第一または第二の選択肢等のコドンを
置換することによって改変した。めったに使われないコドンは、遺伝子設計においてかな
りの程度に含めなかったし、コドン組成それ自体（例えば、制限酵素認識部位の追加また
は削除）とは異なる設計基準に対応するためにのみ必要に応じて使用した。このプロセス
によって設計された代表的な合成キャノーラ最適化デサチュラーゼDNA配列を、配列番号
：15、配列番号：16、および配列番号：17に記載した。
配列番号：15-17で表される得られたDNA配列は、高度のコドン多様性および望ましい塩
基組成を有する。さらに、これらの配列は、戦略的に配置された制限酵素認識部位を含み
、および遺伝子の転写、または産物のmRNAの翻訳を妨害する可能性がある配列を含まない
。表6-8は、天然の遺伝子、および植物に最適化されたバージョンに見出されるデルタ-9
デサチュラーゼタンパク質のコード領域のコドン組成の比較を提示し、表5の列D及びHか
ら計算された植物のために最適化された配列についての推奨コドン組成に対して両方を比
較する。


配列番号：15、配列番号：16、および配列番号：17を含むDNA断片の合成は、商業的な
供給業者（PicoScript、ヒューストン、TX、およびブルーヘロンバイオテクノロジー、Bo
thell、ワシントン州）によって行われた。これらのキャノーラに最適化された配列は、
バージョン2（v2）として分類された。次いで、下記の実施例に記載のように、合成DNA断
片を発現ベクターにクローニングし、アグロバクテリウムおよびキャノーラに形質転換し
た。
実施例3：プラスミドの構築
以下のプラスミドは、標準的な分子生物学的技術を用いて構築した。植物の転写単位（
目的の遺伝子に連結されたプロモーターから構成され、3'UTRによって終了する）または
「PTU」を含むポリヌクレオチド断片を構築し、バイナリーベクターのT-ストランド領域
内で、付加的な植物の転写ユニットと組み合わせた。
pDAB7318の説明：pDAB7318（図6、配列番号：58）を、標準的な分子生物学的技術を用
いて構築した。このプラスミドは2つのデサチュラーゼPTUの配列を含んでいる。第1のデ
サチュラーゼPTUは、インゲンマメのゼオリンプロモーター（PvPhasプロモーターv2（配
列番号67）Genbank：J01263）、インゲンマメの5 '非翻訳領域（PvPhasの5'UTR（配列番
号：68）; Genbank登録：J01263）、AnD9DS v3の遺伝子（配列番号：49）、インゲンマメ
3 '非翻訳領域（PvPhasの3'UTR V1（配列番号：69）; Genbank登録：J01263）、およびイ
ンゲンマメのマトリックス結合領域（PvPhas 3' MAR V2（配列番号：70）、Genbank登録
：J01263）の（配列）を含む。第2のデサチュラーゼPTUは、PvPhasプロモーターV2、PvPh
as 5' UTR、LnD9DS-2 V2（配列番号：17）、およびアグロバクテリウムツメファシエンス
ORF23 3'非翻訳領域（AtuORF23 3'UTR（配列番号：71）; Huang et al. (1990) J. Bacte
riol. 172:1814-22)を含む。
デサチュラーゼPTUs内のエレメントは、追加の短い介在配列によって接続されている。
2つのデサチュラーゼPTU配列は、アグロバクテリウム形質転換プラスミドへのこれらPTU
の発現カセットの転移を容易にするために使用されるInvitrogen社のGateway（登録商標
）組換え部位に隣接している。さらに、そのプラスミドは、複製起点、およびカナマイシ
ン選択マーカーを含んでいる。
pDAB7319の説明：pDAB7319（図7、配列番号：60）を、pDAB7318とpDAB7309との間のGat
eway（登録商標）組換えを介して構築した（図5; 配列番号：53）。このプラスミドは、
前述の「pDAB7318の説明」に記載した2つのデサチュラーゼPTUの配列を含む。これらPTUs
は、植物形質転換バイナリーベクターpDAB7309のT-鎖DNAボーダー領域内の頭部から尾部
の向き（Head-to-tail orientation）を向いていた。このバイナリーベクターは、キャッ
サバ葉脈モザイクウイルスプロモーター（CsVMVプロモーターv2；Verdaguer et al. (199
6) Plant Mol. Biol. 31:1129-39）、ホスアセチルトランスフェラーゼ（PAT V5；Wohlle
ben et al. (1988) Gene 70:25-37)、およびアグロバクテリウムツメファシエンスORF1 3
'非翻訳領域（3'UTR V4 AtuORF1；Huang et al. (1990), 前出）で構成されるホスアセチ
ルトランスフェラーゼPTUを、タバコRB7マトリックス結合領域（RB7 MARv2; Genbank：U6
7919）、オーバードライブ（Toro et al. (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 85(22
):8558-62）、およびT-ストランド境界配列（ T-DNAのボーダーおよびT-DNAボーダーB; G
ardner et al. (1986) Science231:725-7, および PCT International Patent Publicati
on No. WO2001/025459A1）のような他の調節エレメントに加えて含んでいる。上記のPTUs
を含むプラスミドを単離し、制限酵素消化およびDNA配列決定によって確認した。
pDAB7320の説明：pDAB7320（図8、配列番号：55）を、標準的な分子生物学的技術を用
いて構築した。このプラスミドは、1つのデサチュラーゼPTUの配列を含む。デサチュラー
ゼPTUは、PvPhasプロモーターV2、PvPhas 5' UTR、LnD9DS-2 V2（配列番号：17）、およ
びAtuORF23 3' UTRを含む。デサチュラーゼPTUs内のエレメントは、追加の短い介在配列
によって接続されている。デサチュラーゼPTUの配列も、アグロバクテリウム形質転換プ
ラスミドへの転移を容易にするためにインビトロジェン社のGateway（登録商標）組換え
部位に隣接している。さらに、そのプラスミドは複製起点およびカナマイシン選択マーカ
ーを含んでいる。
pDAB7321の説明：pDAB7321（図9、配列番号：61）をpDAB7320とpDAB7309との間のGatew
ay（登録商標）組換えを介して構築した。このプラスミドは、前述の「pDAB7319の説明」
に記載したデサチュラーゼPTUの配列を含む。このPTUは、植物形質転換バイナリーベクタ
ーpDAB7309のT-鎖DNAボーダー領域内で頭部から尾部への向き（head-to-tail orientatio
n）を向いていた。このバイナリーベクターは、ホスアセチルトランスフェラーゼPTU：Cs
VMVプロモーターV2；PAT V5；およびAtuORF1 3'UTR v4、さらに、オーバードライブおよ
びT-ストランド境界配列（T-DNAのボーダーAおよびT-DNAボーダーB）のような他の調節エ
レメントを含む。上記のPTUを含むプラスミドを単離し、制限酵素消化およびDNA配列決定
によって確認した。
pDAB7323の説明：pDAB7323（図10、配列番号：56）を、標準的な分子生物学的技術を用
いて構築した。このプラスミドは2つのデサチュラーゼPTUの配列を含んでいる。第1のデ
サチュラーゼPTUは、PvPhasプロモーターV2、PvPhas 5'UTR、AnD9DS V3（配列番号：47）
、PvPhas 3' UTR、およびPvPhas 3 'MAR V2を含む。第2のデサチュラーゼPTUは、PvPhas
プロモーターV2、PvPhas 5'UTR、HzD9DS V2（配列番号：16）、およびAtuORF23 3' UTRを
含む。デサチュラーゼPTUs内のエレメントは、追加の短い介在配列によって接続されてい
る。2つのデサチュラーゼPTUの配列は、プラスミドアグロバクテリウム形質転換への転移
を促進するために、Invitrogen社のGateway（登録商標）組換え部位が隣接している。さ
らに、プラスミドは複製起点およびカナマイシン選択マーカーを含んでいる。
pDAB7324の説明：pDAB7324（図11、配列番号：62）を、pDAB7323とpDAB7309との間のGa
teway（登録商標）組換えを介して構築した。このプラスミドは、前述の「pDAB7323の説
明」に記載した2つのデサチュラーゼPTU配列を含む。これらPTUsは、植物形質転換バイナ
リーベクターpDAB7309のT-鎖DNAボーダー領域内で頭部から尾部の向きを向いていた。こ
のバイナリーベクターは、ホスアセチルトランスフェラーゼPTU： CsVMVプロモーターv2
；PAT V5；およびAtuORF1 3'UTR v4、さらに、オーバードライブおよびT-スタンドボーダ
ー配列（T-DNAボーダーAおよびT-DNAボーダーB）のような他の調節エレメントを含んでい
る。上記のPTUsを含むプラスミドを単離し、制限酵素消化およびDNA配列決定によって確
認した。
pDAB7325の説明：pDAB7325（図12、配列番号：57）を、標準的な分子生物学的技術を用
いて構築した。このプラスミドは、1つのデサチュラーゼPTUの配列を含む。このデサチュ
ラーゼPTUは、PvPhasプロモーターV2、PvPhas 5 'UTR、HzD9DS V2（配列番号：16）、お
よびAtuORF23 3' UTRを含む。デサチュラーゼPTU内のエレメントは、追加の短い介在配列
によって接続され、デサチュラーゼPTUの配列は、アグロバクテリウム形質転換プラスミ
ドへの転移を容易にするために、Invitrogen社のGateway（登録商標）組換え部位に隣接
している。さらに、プラスミドは複製起点およびカナマイシン選択マーカーを含んでいる
。
pDAB7326の説明：pDAB7326（図13、配列番号：63）を、pDAB7325とpDAB7309との間のGa
teway（登録商標）組換えを介して構築した。このプラスミドは、前項「pDAB7325の説明
」に定めるデサチュラーゼPTUの配列を含む。PTUは、植物形質転換のバイナリーベクター
pDAB7309のT-鎖DNAボーダー領域内で頭部から尾部への向き（head-to-tail orientation
）を向いていた。このバイナリーベクターにはホスアセチルトランスフェラーゼPTU; CsV
MVプロモーターv2; PAT V5、およびAtuORF1 3'UTR v4、さらに、オーバードライブおよび
T-スタンドボーダー配列（T-DNAのボーダーAおよびT-DNAボーダーB)のような他の調節エ
レメントが含まれている。上記のPTUを含むプラスミドを単離し、制限酵素消化およびDNA
配列決定によって確認した。
pDAB7327の説明：pDAB7327（図14、配列番号：58）を、標準的な分子生物学的技術を用
いて構築した。このプラスミドは、1つのデサチュラーゼPTUの配列を含む。デサチュラー
ゼPTUはPvPhasプロモーターV2、PvPhas 5' UTR、AnD9DS v3の遺伝子（配列番号：49）、
およびAtuORF23 3' UTRを含む。デサチュラーゼPTU内のエレメントは、追加の短い介在配
列によって接続されている。デサチュラーゼPTUの配列は、アグロバクテリウム形質転換
プラスミドへの転移を容易にするために、インビトロジェン社のGateway（登録商標）組
換え部位に隣接している。さらに、プラスミドは複製起点およびカナマイシン選択マーカ
ーを含んでいる。
pDAB7328の説明：pDAB7328（図15、配列番号：64）をpDAB7327とpDAB7309との間のGate
way（登録商標）組換えを介して構築した。このプラスミドは、前項「pDAB7327の説明」
に定めるデサチュラーゼPTUの配列を含む。このPTUは植物形質転換のバイナリーベクター
pDAB7309のT-鎖DNAボーダー領域内で頭部から尾部への向き（head-to-tail orientation
）を向いていた。このバイナリーベクターには、ホスアセチルトランスフェラーゼPTU：C
sVMVプロモーターv2； PAT v5、およびAtuORF1 3'UTR v4、さらに、オーバードライブお
よびT-スタンドボーダー配列（T-DNAのボーダーAおよびT-DNAボーダーB)のような他の調
節エレメントが含まれている。上記のPTUを含むプラスミドを単離し、制限酵素消化およ
びDNA配列決定によって確認した。
pDAB7329の説明：pDAB7329（図16、配列番号：59）を、標準的な分子生物学的技術を用
いて構築した。このプラスミドは、PvPhasプロモーターv2、PvPhas 5 ' UTR、MgD9DS v2
（配列番号：15）、およびAtuORF23 3' UTRを含む1つのデサチュラーゼPTUの配列を含む
。このデサチュラーゼPTU内のエレメントは、追加の短い介在配列によって接続されてい
る。デサチュラーゼPTUの配列は、アグロバクテリウム形質転換プラスミドへの転移を容
易にするために、InvitrogenのGateway（登録商標）組換え部位に隣接している。さらに
、プラスミドは複製起点およびカナマイシン選択マーカーを含んでいる。
pDAB7330の説明：pDAB7330（図17、配列番号：65）をpDAB7329とpDAB7309との間のGate
way（登録商標）組換えを介して構築した。このプラスミドは、前項「pDAB7325の説明」
に定めるデサチュラーゼPTUの配列を含む。このPTUは、植物形質転換のバイナリーベクタ
ーpDAB7309のT-鎖DNAボーダー領域内で頭部から尾部への向き（head-to-tail orientatio
n）を向いていた。このバイナリーベクターには、ホスアセチルトランスフェラーゼPTU：
CsVMVプロモーターv2、PAT v5;およびAtuORF1 3'UTR v4、さらに、オーバードライブおよ
びT-スタンドボーダー配列（T-DNAのボーダーAおよびT-DNAボーダーB)のような他の調節
エレメントが含まれている。 上記のPTUを含むプラスミドを単離し、制限酵素消化および
DNA配列決定によって確認した。
pDAB7331の説明：上記に加えて、デサチュラーゼPTUを含んでいなかったコントロール
プラスミドを構築した（配列番号：66）。図18。この構築物は、pDAB7309に記載されてい
る他の調節エレメントに加えて、唯一ホスアセチルトランスフェラーゼPTUを含んでいた
。
実施例4：アグロバクテリウム形質転換
エレクトロコンピテントな（electro-competent）アグロバクテリウム細胞（表9）を、
ヴァイゲルおよびグレーズブルック（2002）（Weigel and Glazebrook (2002) “How to
Transform Arabidopsis,” Ch. 5, in Arabidopsis, Cold Spring Harbor Laboratory Pr
ess, Cold Spring Harbor, NY.）からのプロトコルを用いて調製した。コンピテントなア
グロバクテリウム細胞50μLを氷上で解凍し、バイナリベクタープラスミドDNAの300−400
ngを使用して形質転換した。細胞ミックスは、あらかじめ冷却したエレクトロポレーシ
ョンキュベット（0.2 cm）およびバイオ・ラッドジーンパルサー（登録商標）エレクトロ
（ヘラクレス、CA）を、次の条件：電圧：2.5kVで、パルスの長さ： 5ミリ秒、静電容量
出力25μF、抵抗200Ωの下で用いて、DNAの存在下でエレクトロポレーションした。エレ
クトロポレーション後、YEP液体培地（broth）（酵母エキス（10 g/L）、ペプトン（10 g
/L）、およびNaCl（5g/L）の1mLを各キュベットに添加し、細胞YEP懸濁液を15 mLの培養
管に移した。細胞を、28℃で4時間穏やかに攪拌しながらインキュベートした後、培養を
表9に応じて適切に選択してYEP +寒天上に播種した。プレートを28℃で2-4日間インキュ
ベートし、コロニーを選択し、抗生物質選択を含んだ新鮮なYEP +寒天プレート上に画線
し、1〜3日間28℃でインキュベートした。コロニーを、Ketolactoseテストを使用してア
グロバクテリウムとして検証し、Ketolactose陽性コロニーを、さらに単コロニー分離の
二つの経路を用いて単離した。単コロニー分離が完了した後に、最終的なパッチプレート
はコロニーでできていた。
アグロバクテリウムのコロニー検証：制限消化分析を、ベクター特異的制限酵素消化酵
素を使用して無傷のプラスミドの存在を確認するために使用した。マシュレ-ナーゲルNuc
leoBond（登録商標）プラスミドDNAキットを造業者の推奨プロトコルに従って使用して、
選択された形質転換アグロバクテリウムのコロニーからプラスミドDNAを精製した。アグ
ロバクテリウム形質転換に使用されたバイナリーベクターからのプラスミドDNAをコント
ロールとして含めた。4つの別々の消化反応を、0.75−1μg のDNAを使用して実行した。
反応は1〜2時間で進行させた後、アガロースゲル電気泳動およびエチジウムブロマイド染
色により分析した。全ての酵素の消化産物がコントロールプラスミドと同一であり、予想
されたバンドのサイズと一致していたコロニーを選択した。
A.ツメファシエンス菌株LBA404（インビトロジェンカールスバッド、カリフォルニア州
）を、シロイヌナズナの形質転換に用い、A.ツメファシエンス菌株Z707S（ヘップバーン
ら（1985）J.大将Microbiol。131:2961-9）をキャノーラの形質転換に使用した。
実施例5：シロイヌナズナのアグロバクテリウム媒介形質転換
シロイヌナズナ形質転換：シロイヌナズナを、CloughおよびBent（1998）Plant J. 16:
735-743の方法に基づいてフローラルディップ法を用いて形質転換した。選択されたアグ
ロバクテリウムのコロニーを用いて、選択のための適切な抗生物質を含む一つ以上の30mL
のYEP培地の予備培養（pre-culture）を播種した。培養を、220rpmで一定に撹拌しながら
28℃で一晩インキュベートした。それぞれの予備培養を、選択のための抗生物質を含むYE
P培地の2つの 500mLの培養液を播種するために使用し、培養を一定に撹拌しながら28℃で
一晩インキュベートした。次に、細胞を播種した。約8700gで室温で10分間遠心し、得ら
れた上清を捨てた。細胞ペレットを、1/2 x MurashigeおよびSkoogの塩/Gamborg B5ビタ
ミン、10％（w/v）スクロース、0.044μMのベンジルアミノプリン（DMSO中の1 mg/mLのス
トックを10μL/リットル）および300リットル/μLのSilwet（登録商標）L-77を含む500ml
浸透培地中に穏やかに再懸濁した。約1ヶ月齢の植物を、最新の花序を水中に沈めるよう
に注意して、15秒間培地に浸漬した。その後、植物をそれらの両側に敷設し、（透明また
は不透明で）24時間覆い、その後、水で洗浄し、直立に配置した。植物を16時間の明/8時
間の暗の光周期で、22℃で増殖させた。約4週間浸漬した後、種子を植物から採取した。
シロイヌナズナの成長条件：収穫したばかりの種子を、乾燥剤の存在下で室温で7日間
乾燥させた。乾燥させた後、種子を0.1％アガロース（Sigma Chemical Co., セントルイ
ス、MO）溶液に懸濁した。懸濁した種子を、休眠要件を完了し、同期種子発芽（層別化）
を確実にするために、2日間4℃で保存した。サンシャインミックスLP5（Sun Gro Horticu
lture Inc., Bellevue, WA）を細かいバーミキュライトで覆い、ウェットまでHoaglanの
ソリューションで半ば灌漑した（sub-irrigated）。土壌ミックスを24時間排水した。成
層した種子をバーミキュライトに播種し、湿度ドーム（KORD製品、Bramalea、カナダ、オ
ンタリオ州）で7日間覆った。種子が発芽し、植物は、一定温度（22℃）および湿度（40-
50％）下、120-150μmol/m2secの光強度で、長日条件下（16時間明/8時間暗）、Conviron
コントローラ（モデルCMP4030およびCMP3244、Controlled Environments Limited、ウィ
ニペグ、マニトバ州、カナダ）内で生育させた。植物は、最初はHoaglanの溶液を用いて
、その後脱イオン水で水やりされ、土壌を湿った状態（しかしウェットではなく）に維持
された。種子の収穫に近づいている（収穫前1〜2週間）植物は、乾燥させた。
T1の形質転換植物の選択：T1種子を10.5"×21"発芽トレイ（T.O. Plastics Inc., クリ
アウォーター、ミネソタ）に上記の通りに播種し、記載された条件の下で成長させた。ド
ームは播種5-6日後に取り除いた。播種5日後に、そして再度播種10日後に、苗に、DeVilb
iss圧縮空気スプレーチップを使用して10ミリリットル/トレイ（703 L/ha）の噴霧量で除
草剤グルホシネート（リバティー）の0.20％溶液を噴霧し、適用あたり280グラム/ヘクタ
ールのグルホシネートの有効率を送達した。グルホシネート除草剤溶液10mlを、各トレイ
に噴霧するために20mLのシンチレーションバイアルに分注した。スプレーは、水平と垂直
の適用パターンを使用して送達した。各スプレーの後、除草剤名、適用レート、および適
用日を記載したスプレーラベルを、各選択トレイに追加した。2回目のスプレーの4〜7日
後に、除草剤耐性植物を同定し、サンシャイン・ミックスLP5を用いて調製したポットに
移植した。移植された植物を、上記の成長条件で温室内に置いた。移植後6〜8週間で、各
植物から種子を採取し、一意の識別番号をつけ別々に保存した。
実施例7：キャノーラのアグロバクテリウム媒介形質転換
アグロバクテリウムの準備：pDAB7319、pDAB7321、pDAB7324、pDAB7326、pDAB7328、pD
AB7330またはpDAB7331のいずれかを含有するアグロバクテリウム株を用いて、ストレプト
マイシン（100 mg/mL）およびスペクチノマイシン（50 mg/mL）を含有するYEP（バクトペ
プトン（20.0 g/L）プレートおよび酵母抽出物（10.0 g/L）プレートに画線し、28℃で2
日間インキュベートした。2日間の画線プレートのループを、滅菌500mLのバッフルフラス
コ（s）中、ストレプトマイシン（100 mg/ml）およびスペクチノマイシン（50 mg/ml）を
含む150mLの改変YEP液に播種し、28℃、200rpmで振盪した。培養物を、キャノーラ胚軸の
形質転換を行う前に、M-培地（LS塩; 3％グルコース、改変B5ビタミン、1μMのカイネチ
ン、1μMの2,4-D、pH5.8）に再懸濁し、適切な密度（50クレット単位）に希釈した。
キャノーラの形質転換：
種子の発芽：キャノーラの種子（品種Nexera 710）を、10％クロロックスで10分間の表
面滅菌し、滅菌蒸留水で鋼ストレーナーで3回リンスした。種子は、発芽するために、Phy
tatrays（Phytatrayあたり25種子）に含まれた1/2 MSキャノーラ培地（1/2MS、2％ショ糖
、0.8％寒天）植えられた。トレイを、25℃に設定された成長管理体制、16時間明/8時間
暗の光周期で環境成長チャンバー（パーシバルサイエンティフィック社は、ペリー、アイ
オワ州）内に置き、5日間発芽させた。
前処理：5日目、〜3mmの下胚軸片を無菌的に摘出し、根とシュートの切片を廃棄した（
胚軸の乾燥を、切除処理中に滅菌ミリQ水10mLにそれらを置くことによって阻止した）。2
2−23°Cおよび16時間明/8時間暗の光周期に設定成長管理体制での環境成長チャンバー内
における3日間の前処理のために、胚軸切片を、カルス誘導培地MSK1D1（MS； 1 mg/Lのカ
イネチン、1 mg/Lの2,4-D、3％ショ糖、0.7％Phytagar）上の滅菌濾紙上に水平に置いた
。
アグロバクテリウムとの共培養：アグロバクテリウム処理の前日に、適切な抗生物質を
含むYEP培地のフラスコを播種した。胚軸切片を、ろ紙から、乾燥から胚軸切片を防ぐた
めに、液体M培地10mLを含む空の100×25mmペトリ皿に移した。スパチュラを、切片をすく
って移動するためにこの段階で使用した。液体のM培地をピペットで除去し、アグロバク
テリウム懸濁液40mLをシャーレ（アグロバクテリウム溶液40mLを含む500の切片）に添加
した。切片を、胚軸がアグロバクテリウム溶液に浸漬したままになるように、ペトリ皿を
周期的に回旋しながら30分間処理した。処理期間の終わりには、アグロバクテリウム溶液
（アグロバクテリウム溶液が完全にアグロバクテリウムの増殖を防ぐために除去された）
を廃棄ビーカーにピペットで入れ、オートクレーブ滅菌し、廃棄した。処理された胚軸は
切片が乾燥しないように注意し、慎重に、濾紙でMSK1D1を含む元のプレートにピンセット
で移して戻した。胚軸切片を、コントロール切片とともに、減光強度下（アルミ箔でプレ
ートを覆うことにより）で環境成長チャンバーに戻し、処理された胚は3日間アグロバク
テリウムと共存培養した。
選択培地上でカルス誘導：共培養の3日後、胚軸切片をカルス誘導培地MSK1D1H1（MS; 1
mg/Lのカイネチン、1 mg/Lの2,4-D、0.5 g/L MES、5 mg/LのAgNO3、300 mg/LのTimentin
、200mg/Lのカルベニシリン、1mg/LのHerbiace、3％ショ糖、0.7％Phytagar）上にピンセ
ットを使用して個別に移した。胚軸切片を、培地上に固定したが、培地に埋め込まなかっ
た。
選択とシュート再生：カルス誘導培地で7日後、callusing胚軸切片を、MSB3Z1H1（MS;
3 mg/LのBAP、1 mg/Lのゼアチン、0.5g/LのMESを、5 mg/LでAgNO3、300 mg/LでTimentin
、200mg/Lのカルベニシリン、1mg/LのHerbiace、3％ショ糖、0.7％Phytagar）で選択して
、シュート再生培地1に移した。14日後、シュートを有する胚軸を、MSB3Z1H3（MS; 3 mg/
LのBAP、1 mg/Lのゼアチン、0.5g/L MES、5 mg/LのAgNO3、300 mg/LのTimentin、200mg/L
のカルベニシリン、3 mg/LのHerbiace（登録商標）; 3％ショ糖、0.7％Phytagar）での増
加した選択により、再生培地2に移した。
シュートの伸長：14日後、シュートを有する切片をシュート伸長培地MSMESH5（MS; 300
mg/LのTimentin、5 mg/LのHerbiace（登録商標）; 2％ショ糖、0.7％TC寒天）に移した
。すでに伸長したシュートを単離し、MSMESH5に移した。14日後、最初のラウンドで伸長
していなかった残りのシュートを、MSMESH5上に配置し、同じ組成の新鮮な選択培地に移
した。この段階で、すべての残りの胚軸切片を廃棄した。
2週間後MSB3Z1H3培地で伸長させたシュートを単離し、MSMESH5培地に移した。MSMESH5
上の最初のラウンドで伸長していなかった残りのシュートを単離し、同じ組成の新鮮な選
択培地に移した。この段階で、残りのすべての胚軸切片を廃棄した。
ルート誘導：14日後に、ルート誘導のためシュートは培地MSMEST（MS；0.7％TC寒天、0
.5 g/LのMES、300 mg/LのTimentin;、2％スクロース）に移した。MSMEST媒体上での最初
の移動で根付かなかったシュートは、根付いた植物が得られるまでMSMEST媒体上の第二ま
たは第三サイクルのために移した。MSMEST媒体上での最初の移動で、伸長／根付かなかっ
たシュートは、根付いた植物が得られるまでMSMEST媒体上の第二または第三サイクルのた
めに移した。MSMESH5またはMSMEST上で根付き、PCR陽性であった植物を、土壌への移植の
ために移した。硬化後、T0キャノーラ植物をさらに、導入遺伝子PTUのカセットを含んで
いたイベントについて分析した。その後、植物を温室に移し、成熟まで成長させ、そして
種子を追加的な分析のために採取した。
実施例8：T1シロイヌナズナ葉組織およびT0キャノーラ葉組織のDNA分析
T0キャノーラ植物およびT1シロイヌナズナ植物を、PTUの発現カセットを含んでいた植
物を同定するために分析した。Invader（登録商標）アッセイを、推定的に形質転換した
植物のサンプルを最初にスクリーニングするために行い、pat PTUの単一のコピーが含ま
れていたイベントを識別した。単一コピーのイベントとして同定されたイベントを保存し
、さらにPCRによるデサチュラーゼPTU（s）の存在について分析した。デサチュラーゼの
発現カセットPTU（s）についてPCR陽性であったイベントを、さらにサザンブロット分析
により分析した。サザンブロット分析を、植物を形質転換するために使用されるバイナリ
ーベクターからの遺伝子発現カセットPTUsを植物が含むことを確認するために完了した。
PTUsすべてを含む単一コピーのイベントを、さらに進めるために選択した。
DNAの単離：全ゲノムDNA（gDNA）をQIAGEN社のDNeasy（登録商標）96プラントキット（
Qiagen、バレンシア、CA）を用いて凍結乾燥した葉組織から抽出した。次いで、このgDNA
を、PCRおよびコピー数についてInvader（登録商標）アッセイに使用するために、10ng/L
（キャノーラ）または0.7 ng/mL（シロイヌナズナ）まで希釈した。
Invader（登録商標）分析：選択マーカーpatのコピー数解析を、Invader（登録商標）
アッセイ（Third Wave Technologies、マディソン、WI）を使用して完了した。ゲノムDNA
を、製造業者の推奨プロトコルに従って、10分間95℃で変性し、氷上で冷却し、オリゴヌ
クレオチドプローブ、蛍光共鳴エネルギー移動（FRET）が可能な色素分子、および切断（
cleavase）酵素を含有する試薬のマスターミックスと混合した。反応には、内部リファレ
ンス遺伝子に対するプローブが含まれていた。1-deoxyxylulose-5-リン酸メラーゼ（DXR1
）遺伝子をシロイヌナズナInvader（登録商標）アッセイ反応に対する内部参照遺伝子と
して使用し、高移動度群蛋白質遺伝子（HMGa）を、キャノーラInvader（登録商標）アッ
セイ反応の内部参照遺伝子として用いた。また、プレートは、1コピー、2コピー、4コピ
ーの基準だけでなく、野生型のコントロールサンプルおよびサンプルが格納されていない
ブランクのウェルを含んでいた。全体の反応は、1.5時間、63℃でのサーモサイクラーで
のインキュベーション前にミネラルオイルを重層した。得られた反応物を蛍光プレートリ
ーダー（Synergy（商標）2、バイオテック・インスツルメンツ、Winooski、バーモント州
）で読み取った。読みを、FAM（λ485−528 nm）およびRED（λ560−620 nm）の両方のチ
ャネルについて収集した。これらから、各チャネルごとに折り返しゼロ（つまり背景）は
、テンプレートなしの生の信号によってサンプルの生の信号を割り算することによって、
それぞれのサンプルについて測定した。このデータから、標準曲線を構築し、最高の適合
を線形回帰分析によって決定した。その後、この適合から同定されたパラメータを使用し
て、見かけ上のpatのコピー数を、各試料について決定した。
PCR解析：PCR解析を、各植物の転写単位を増幅するプライマーを用いて完了した。これ
らのプライマーは、プロモーター（ファゼオリン）および3 'UTR（ファゼオリンまたはOR
F23）に位置していた。これらの同じプライマーセットを、キャノーラとシロイヌナズナ
の両方のPCR分析のために使用した。pDAB7319イベントおよびpDAB7324イベントのPCR分析
のために、プライマーMAS414（配列番号：18）およびMAS415（配列番号：19）を最初のPT
Uを増幅するために使用した。このPTUはゼオリンプロモーター、アスペルギルス・ニデュ
ランスからのアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子（AnD9DS v3；配列番号：49）の機
能的等価物、およびファゼオリン3'UTRターミネーターで構成されていた。構築物pDAB731
9中での第2 PTUのPCR増幅のために、プライマーMAS415およびMAS413（配列番号：20）を
使用した。このPTUは、ゼオリンプロモーター、レプトスファエリア ノドルム（Leptosph
aeria nodorum）（LnD9DS-2 v2；配列番号：17）からのアシルCoAデルタ-9デサチュラー
ゼ遺伝子の機能的等価物、およびORF23 3'UTRで構成されている。MAS415およびMAS413プ
ライマーペアもpDAB7324（ゼオリンプロモーター、オオタバコガゼアアシルCoAデルタ-9
デサチュラーゼ遺伝子V2（HzD9DS v2；配列番号：16）、およびORF23 3'UTR）で形質転換
することによって生成された第2のPTUイベントを増幅するために使用した。また、MAS415
およびMAS413プライマー対を、構築物pDAB7321およびpDAB7326中でPTUsを増幅するために
使用した。
PCR反応を、20 ngのゲノムDNA、5ユニットのEx Taq（タカラ）、1x反応バッファ、0.2
μMの各dNTP、および0.8μMの各プライマーを使用して25μLの容量で行った。増幅反応を
、DNA Engine Tetrad（登録商標）2サーマルサイクラー（BioRad社、ヘラクレス、カリフ
ォルニア州）で行った。以下のサイクリング条件を、プライマーMAS413およびMAS415のた
めに使用した：94℃で3分間；その後、94℃で30秒、63°Cで30秒、および72℃で3分間を3
5サイクル；ならびに72℃で10分間の最終的な伸長。プライマーMAS414およびMAS415に使
われたサイクリング条件は、アニーリング温度が63℃から60℃に低減したことが唯一の違
いで、それ以外同じであった。反応生成物を、1％アガロースゲルで泳動し、エチジウム
ブロマイドで染色し、Gel-Doc（商標）上で可視化した。
サザンブロット分析：サザンブロット分析を使用して、キャノーライベントの統合パタ
ーンを確立した。これらの実験から、キャノーラゲノム内デサチュラーゼ導入遺伝子の統
合および整合性を実証したデータが生成された。選択したイベントが、植物形質転換のた
めに使用されるバイナリーベクターからのデサチュラーゼ導入遺伝子の単一コピーを含む
、全長の、単純な統合イベントとして特徴付けられた。
詳細サザンブロット分析を、デサチュラーゼ遺伝子に特異的なプローブおよびプラスミ
ド内に位置する部位で切断する記述的制限酵素を用いて行った。これらの消化物は、プラ
スミドに対して内部的なハイブリダイズフラグメント、またはキャノーラのゲノムDNA（
ボーダー断片）のプラスミドとの接合部にまたがるフラグメントを生成した。制限酵素お
よびプローブの組み合わせについてサザンハイブリダイゼーションから示された分子の大
きさは、イベントごとに固有であった。これらの分析はまた、T鎖DNAの再編成なしにキャ
ノーラゲノムDNAにプラスミド断片が挿入されたことを示した。
サザンブロット分析のために、100mgの凍結乾燥されたキャノーラ葉の組織を、Plant M
ini Kit（Qiagen）を用いて抽出した。サンプルあたり5マイクログラム（5μg）のgDNAを
、SpeIおよびPacI制限エンドヌクレアーゼ（New England Biolabs, Ipswich, MA）で同時
に消化して、目的のPTU、および/または選択マーカー（PAT）のいずれかを含む断片を得
、コピー数を決定した。消化したDNAを0.8％アガロースゲル上で分離した。
簡単に言えば、DNA断片の電気泳動分離および可視化に続いて、ゲルを約20分間0.25N H
Clで脱プリン化した後、約30分間変性溶液に曝した後、中和溶液に少なくとも30分間曝し
た。サザントランスファーを、10×SSCとともにウィッキングシステムを使用して、ナイ
ロン膜（ミリポア、バーリントン、マサチューセッツ州）の上で一晩行った。トランスフ
ァー後、膜を2×SSC溶液で洗浄し、DNAをUV架橋により膜に結合させた。このプロセスに
より、ハイブリダイゼーションのための準備ができたサザンブロット膜が生成された。
プローブを生成し、PCR断片をプラスミドDNAから増幅し、QIAquick（登録商標）ゲル抽
出キット（Qiagen）を用いてゲル抽出により精製した。LnD9DSプローブを作製するために
使用したプライマーは、arw008（配列番号：21）およびarw009（配列番号：22）であった
。HzD9プローブを作製するために使用したプライマーはarw010（配列番号：23）およびar
w011（配列番号：24）：であった。すべての3つの反応のためのPCR条件は、63℃のアニー
リング温度および1分間の伸長時間での35サイクルで構成されていた。PCR断片を、Prime-
It（登録商標）RmTランダムプライマーラベリングキット（Stratagene、ラホーヤ、カリ
フォルニア州）を用いて、32Pで標識した。
ハイブリダイゼーション工程を、約65℃で一晩ハイブリダイゼーションオーブン内で行
った。ナイロンメンブレンブロットをすすぎ、ブロットを蛍光画像画面上に一晩露出し、
Storm（商標）860スキャナ（Molecular Dynamics、カリフォルニア州サニーベール）でス
キャンした。
実施例9：アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼを含有するトランスジェニックシロイヌナ
ズナの種子の脂肪酸組成
シロイヌナズナ植物を、LnD9DS-2 v2（pDAB7321；配列番号：61）、HzD9DS v2（pDAB73
26；配列番号：63）またはMgD9DS v2（pDAB7330；配列番号：65）用の遺伝子を含むアグ
ロバクテリウムベクターで形質転換した。植物もAnD9DS遺伝子（pDAB7328;配列番号：64
）を含むベクターで形質転換した。選択マーカーpat遺伝子（pDAB7331、配列番号：66）
のみを含む空のベクターを、陰性コントロールとして用いた。形質転換もまた、ステアロ
イル-優先性デサチュラーゼ（AnD9DS）を、LnD9DS-2（pDAB7319;配列番号：60）またはHz
D9DS（pDAB7324；SEQ ID NO：62）のいずれかのパルミトイル優先性デサチュラーゼと組
み合わせて、2つのデサチュラーゼを組み合わせて用いて行った。すべての場合において
、デサチュラーゼ遺伝子は、種子特異的PvPhasプロモーター（米国特許5504200）によっ
て駆動された。バルクT2種子は、Invader（登録商標）アッセイの分析によってpat遺伝子
、およびPCR分析によってデサチュラーゼPTUを含むことが確認された除草剤耐性のT1植物
から収穫した。
種子サンプルを、スチールボールとボールミルを用いて代用としてヘプタン含有トリヘ
プタデカノイン（triheptadecanoin）（Nu-Chek prep、エリシアン、ミネソタ州）中でホ
モジナイズした。均質化に先立って、MeOH中新たに調製した0.25MのMeONa（シグマ）の溶
液を試料に添加した。反応を、軽度の熱（40℃）の下で、一定に振盪しながら実施した。
反応を、メチル化サロゲートの回収により検証した。FAMEの抽出を3回繰り返した後、す
べてのヘプタン層を、分析前にプールした。抽出の完全性を、4回目の抽出/誘導体化にお
いてFAMEの存在を確認することにより検証した。その結果得られるFAMEを、SGEからのキ
ャピラリーカラムBPXスイッチ70（15m ×0.25 mm×0.25mm）を用いてGC-FIDによって分析
した。各FAMEを保持時間によって識別し、較正標準として、Matreya、LLC（Pleasant Gap
、ペンシルバニア州）からの菜種油基準ミックスを注入することにより定量した。
トランスジェニックイベントからのT2種子のFAME分析は、デサチュラーゼのそれぞれの
発現が、イベントの各セットの平均飽和脂肪酸含有量から決定される、種子の総飽和脂肪
酸含量を減らすことに重大な影響を有することを示した。表10および図19。この表および
次の表では、JMP（登録商標）統計ソフトウェアパッケージ（SASインスティチュート社、
ケアリー、ノースカロライナ州）で行わたテューキー・クレーマー（Tukey-Kramer）のHS
D検定を用いて決定されたように、同じ文字で接続されていない値は、大きく異なってい
る。LnD9DS-2またはHzD9DSとAnD9DSとの組み合わせが、最も低い平均総飽和脂肪酸含量を
生じた。
すべてのデサチュラーゼは、シロイヌナズナ種子中の全飽和脂肪酸含量を低下させてい
るが、酵母の実験から予測されるように、それらは、パルミチン酸及びステアリン酸脂肪
酸の含有量に異なる効果を有していた。表11および図20は、イベントの各セットの平均パ
ルミチン酸含有量を示す。表12および図21は、イベントの各セットについての、T2種子の
平均ステアリン酸含量を示す。

AnD9DSおよびMgD9DSは、LnD9DS-2およびHzD9DSよりもステアリン酸含量に大きな影響を
及ぼした。逆に、LnD9DS-2およびHzD9DSは、AnD9DSおよびMgD9DSよりもパルミチン酸含量
に大きな影響を及ぼした。デサチュラーゼの組み合わせは脂肪酸の両方に大きな影響を与
える。これらの結果はまた、パルミチン酸のデルタ-9不飽和化の主要な生成物であるパル
ミトレイン酸の種子中含有量を増加させることに対するデサチュラーゼの効果において観
察された。表13および図22。
位置とコピー数の影響により、分析されたイベント全体で飽和脂肪酸含量に対するデサ
チュラーゼの効果にばらつきが予想された。最小限の総飽和脂肪酸含量（5最下位のイベ
ントの平均）を有するイベントの完全な脂肪酸プロフィールの比較は、野生型およびコン
トロール形質転換植物からの種子のプロファイルと一緒に表14に示されている。

飽和パルミチン酸およびステアリン脂肪酸の含有量を低減し、一価不飽和脂肪酸の含有
量（パルミトレイン酸とオレイン酸）を増加させることに加えて、デサチュラーゼの存在
はまた、種子中のアラキジン酸（C20：0）の量を低下させた。これはおそらく、この脂肪
酸がステアリン酸とパルミチン酸の伸長に由来するためである。C20：1D9のようにエイコ
セン酸における付随上昇（C20：1）がないので、導入デサチュラーゼによるC20：0の直接
的な不飽和化もなかったようであった。
実施例10：デルタ-9デサチュラーゼ抗体調製
抗体などの診断ツールは、植物においてトランスジェニックデルタ-9デサチュラーゼの
タンパク質の発現を特徴付けるために望ましい。アシルCoAデルタ-9デサチュラーゼは、
膜結合タンパク質であるため、大腸菌で過剰発現ルーチンは困難である。しかし、抗体は
、タンパク質の膜貫通ドメインのいずれも含んでいない各デルタ-9デサチュラーゼタンパ
ク質のC末端断片の過剰発現によって首尾良く生成された。
ポリメラーゼ連鎖反応：PCRプライマーは各デサチュラーゼの等価C末端断片を増幅する
ように設計された。3 'プライマーは、C末端6×Hisタグを有するタンパク質の断片をコー
ドするように設計された。NdeI及びBamHI制限部位は、クローニングを容易にするために
、それぞれ5 'および3'プライマーに組み込まれた。プライマー配列は以下の表15に記載
される通りである。予想される増幅産物は、LnD9DS-2についての659 bp、MgD9DSについて
の683 bp、およびHzD9DSについての335 bpであった。PCR反応を、サプライヤーの条件を
使用してタカラEx Taq（商標）PCRキット（Clontech社、マウンテンビュー、カリフォル
ニア州）を用いて行った。全PCR反応容量は50μlであった。各反応は、200ngのプラスミ
ドDNAおよび各プライマー50pmolを含んでいた。DNAは、94℃で1分間、続いて94℃で30秒
間、60℃で1分間、72℃で30秒間の30サイクルで変性させた。最終伸長を10分間72℃で行
った。各PCR産物を、滅菌0.75％アガロースゲル上で2つのウェルにまたがって行い、DNA
をモンタージュスピンカラムを用いてゲル精製し、15μLのTE緩衝液に溶出した。
TOPOクローニング：精製したC末端断片を、TOPO（登録商標）pCR（登録商標）2.1ベク
ター（インビトロジェン、カールスバッド、カリフォルニア州）にTAクローニングし、製
造業者のプロトコル（Invitrogen社）に従って、トップ10大腸菌細胞に形質転換した。形
質転換は選択され、プラスミドDNAをNucleoSpin（登録商標）カラム（マシュレ-ナーゲル
社＆株式会社、デューレン、ドイツ）を用いて精製した。3マイクロリットル（3μL）のD
NAを、37℃で90分間、20μLの全容積でNdeIおよびBamHIで消化し、0.8％アガロースゲル
にかけた。それぞれのケースでは、遺伝子特異的断片（プラス3.9キロバイトTOPO（登録
商標）ベクターのバンド）が見えた。3個の陽性クローンがそれぞれクローニングされた
遺伝子のために選ばれ、増幅されたPCR断片にエラーが無かったことを確認するために配
列決定した。MgD9DSクローンのそれぞれには、塩基対45でサイレント点突然変異が含まれ
ており、公表されている配列とPCRのテンプレートとの間の一塩基多型、またはサイレン
トPCRのエラーのいずれかを示している。変異はサイレントであったので、補正の必要は
なく、1つのクローンをサブクローニングのために選択した。
デルタ-9デサチュラーゼC末端断片発現プラスミドの作製：PCR増幅デルタ-9デサチュラ
ーゼ断片をNdeIおよびBamHI制限酵素で消化し、pET30b（+）発現ベクター内の対応する制
限部位にライゲーションした。クローニングステップは、全長タンパク質の精製を容易に
するために、C末端6×Hisタグを構成する15個のC-末端アミノ酸の添加をもたらした。こ
れらの付加的なアミノ酸は、タンパク質の発現に影響を与えないことが予想された。陽性
クローンを得られたことを、制限酵素消化およびシークエンシング反応を介して確認した
。
大腸菌でのデルタ-9デサチュラーゼC末端ペプチド断片の発現：デルタ-9 デサチュラー
ゼ/pET30b（+）発現プラスミドを、メーカーの推奨するプロトコル（ノバゲン、マディソ
ン、WI）に従って、BL21（DE3）大腸菌細胞に形質転換した。細胞を、カナマイシン（50
μg/ mLの）とグルコース（1.25 M）を含むLAプレート上にプレートした。プレートを37
℃で一晩インキュベートした。細胞の完全なループをプレートから掻き取り、イソプロピ
ルPD-チオガラクトシド（0.75 mM）インデューサーとともに250mLのLB及びカナマイシン
（50μg/ mL）を含む500mlフラスコに播種した。三つの誘導条件を試験した。培養を、次
のように異なる温度で誘導し、異なる時期に収穫した：28℃で一晩（〜18時間）、16℃で
一晩、または37℃で4時間。細胞は250 mLのボトル中での15分間6000 rpmでの遠心分離に
よって回収した後、-20℃で凍結した。
デルタ-9デサチュラーゼC末端ペプチド断片のタンパク質精製：250mLの培養液からの細
胞ペレットを10％グリセロールおよび0.5 mLのプロテアーゼインヒビターカクテル（シグ
マ、セントルイス、MO）を含む50mLの冷リン酸緩衝化生理食塩水（PBS）中で手持ち式ホ
モジナイザーを使用して解凍し、再懸濁した。細胞をBranson Model 450 Sonifier（ダン
ブリー、コネチカット州）を用いて約10分間氷上で破壊した。封入体を、15分間、10,000
×gでの遠心分離によってペレット化し、ブラッドフォードタンパク質アッセイによって
測定されたを、上清のタンパク質濃度がベースラインに達するまで、0.5％トリトンX-100
を含むPBSで2〜3回抽出した。回収された封入体は、約1時間室温で撹拌しながら6 M尿素
及び5mMのDTTを含むPBS溶液に可溶化した。可溶化されたタンパク質を、15分間、30,000
xgでの遠心分離により不溶性の物質から分離し、保持された上清を5mLのNi-アフィニティ
ーカラム（GE Healthcare、HiTrapキレート、Piscataway、NJ）にかけた。金属樹脂に結
合したC末端のデルタ-9デサチュラーゼペプチドのヒスチジンタグ、および各断片を、Akt
a（登録商標）エクスプローラ100（GEヘルスケア、Piscataway、NJ）を用いて、50−200
mMイミダゾール勾配で溶出した。画分（各3 mL）を採取し、溶出ピークをSDS-PAGEで分析
した。C末端デルタ-9デサチュラーゼペプチドを含有する画分をプールし、5mL未満の容量
にAmicon（登録商標）ウルトラ10,000 MWCOフィルター装置（ミリポア、ビレリカ、MA）
を用いて濃縮した。その後、タンパク質試料を、Hi Load（商標）XK16/60 Superdex（商
標）200サイズ排除カラム（GE Healthcare、Piscataway、NJ）に注入し、20 mMトリス-HC
l、150mMのNAC1、及び1mMのDTT中の6 M尿素で平衡化した。純粋なC末端デルタ-9デサチュ
ラーゼペプチドを含むピーク画分（4 mLずつ）を保存し（SDS-PAGE分析及び他の生化学的
特性の評価により検証した後）、抗体産生のために使用した。LnD9DS-2ペプチドについて
27kDa、HzD9DSペプチドについて15 kDa、MgD9DSペプチドについて28 kDaの予想サイズを
有するペプチドが産生された。誘導条件は、SDS-PAGEゲルのクマシーブルー染色による可
視化のための十分なタンパク質を産生した。
ポリクローナル抗体作製：契約サービス（Strategic BioSolutions、ニューアーク、デ
ラウェア州）により、3つのC末端デルタ-9デサチュラーゼペプチドの各々に対するウサギ
の抗体を産生した。彼らの標準的な手順に従って、3つのタンパク質断片のそれぞれにつ
いて力価の高い（ELISAを使用して検証）抗血清を得た。各精製C末端デルタ-9デサチュラ
ーゼペプチドを、20mMトリス-HCl、150mMのNAC1、1mMのDTTバッファで、および2-3 Mの最
終濃度の尿素で希釈し、タンパク質を溶液中に維持した。約10mgのタンパク質を、ポリク
ローナル抗体の生成のためにStrategic BioSolutionsに送った。二羽の兎を各免疫原のた
めに選択し、標準的なプロトコル（70日予防接種）を用いた。TiterMax（登録商標）ゴー
ルドと呼ばれる新たなアジュバントを、エマルションの調製のために購入した。予防接種
時に、プロトコルの終わりにELISA滴定も抗体産生の成功を確保するために行った。抗血
清は、2つの別々の時点：1つを標準的な2月のプロシージャから、及び他の１つを放血か
ら、採取した。
ウサギ血清から総IgGを単離するためには、約20〜30 mLの高力価の抗血清を5 mLのアル
カリトレラントプロテインAカラム（GEヘルスケア、たHiTrap（商標）MabSelect SuRe（
商標）、カタログ番号11-0034-94）に適用した。PBS緩衝液での標準洗浄後、結合したIgG
を、0.1Mクエン酸ナトリウム、0.3M NAC1、pH3.3に短い時間暴露することにより樹脂から
溶出し、2Mトリス-HCl、pH9の緩衝液の1/10量を各画分へ追加することで直ちに中和した
。アフィニティーカラムを、IgGのクロスコンタミネーションを避けるために、標準のク
リーニング・イン・プレイス（CIP）の手順に従って、0.5N NaOHで処理することによって
消毒した。各サンプルから最終的に回収したIgGを、50容量の4℃のPBSで一晩透析し、そ
してタンパク質濃度を、BSA標準（ピアース、＃23208をprod）を使用して、Bradfordアッ
セイによって決定した。1mLずつ個別のチューブに移し、-80℃で保存した。
これらの抗体は、トランスジェニック植物材料でのデサチュラーゼタンパク質の発現を
測定するために使用された診断ツールである。抗体は、低飽和脂肪酸油の表現型の変化お
よびデルタ-9デサチュラーゼのタンパク質の発現レベルの間の相関関係を開発するために
使用された。
実施例11：T2シロイヌナズナ種子におけるアシルCoAデルタ-9デサチュラーゼタンパク
質のレベル
デルタ-9デサチュラーゼのポリペプチドを、ウェスタンブロット法により成熟トランス
ジェニック種子サンプルで検出した。種子を分析のために、Kleco（商標）Bead Beater（
Garcia Machine、ヴァイセーリア、カリフォルニア州）においてステンレススチール製ビ
ーズを用いて乾燥した種子を分解することによって調製した。抽出緩衝液（50mMトリス、
10mMのEDTA、2％SDS）を添加し、サンプルチューブを30分間静かに振盪した。サンプルを
3000 RCFで15分間遠心分離した。その後、上清を回収し、分析のために使用した。種子抽
出物中の総可溶性タンパク質の量を、Lowryアッセイ（BioRad、Hercules、カリフォルニ
ア州）によって決定した。サンプルを、1.55 mg/mLの総可溶性タンパク質に正規化し、レ
ーン当たり20μgの全可溶性タンパク質の標準ロードのために、40mMのDTTを含むLDSサン
プルバッファー（Invitrogen、Carlsbad、CA）を中で調製した。サンプルを、4-12％Bis-
Trisゲル（Invitrogen社）で電気泳動し、ニトロセルロース膜に移した。ブロットをブロ
ッキングバッファーでブロックし、４つの異なるデルタ-9デサチュラーゼポリペプチド（
AnD9DS、LnD9DS-2、HzD9DS、およびMgD9DS）（実施例10参照）に対する抗体でプローブし
た。
すべての場合において、ポリクローナル抗体を、上記のように個別のデサチュラーゼの
Hisタグ精製C末端ペプチド断片に対してウサギにおいて開発した。精製されたC末端断片
を、ウェスタンブロットの定量化のための基準抗原として用いた。抗ウサギ蛍光標識二次
抗体（ヤギ抗ウサギAF 633; Invitrogen）を検出のめに使用した。ブロットを、Typhoon
（商標）Trio Plus蛍光イメージャー（GEヘルスケア）で可視化した。標準曲線は二次曲
線フィッティングを使用して生成し、線形回帰が発現を定量するために使用した。
特定の抗血清でプローブしたときに、シロイヌナズナのイベントからの成熟したT2種子
からの抽出物のSDS-PAGEウェスタンブロットは、適切なサイズのバンドを示した。これら
のバンドを、特定の基準抗原に対して定量した。適切な抗血清を用いたシロイヌナズナの
T2種子抽出物の定量的ウェスタンブロッティングにより、平均で63 ng LnD9DS-2/総蛋白m
g（tp）（最大228 ng/mg tp）が、成熟した種子で検出され、HzD9DSについては34 ng/mg
tp（最大100 ng/mgのtp）が検出されたことが示された。MgD9DSについては、平均58 ng/m
g tp（最大1179 ng/mg tp）が、T2種子で検出された。AnD9DSイベントについては、平均6
25 ng/mg tp（最大1.5μg/mg tp）が、成熟T2種子で検出された。したがって、AnD9DSに
対して、10−18倍少ないパルミトイル優先性デサチュラーゼであるLnD9DS-2およびHzD9DS
が、トランスジェニック種子中で発現した。したがって、これらのデサチュラーゼの発現
をより高いレベルにすることにより、飽和脂肪酸、特にパルミチン酸のさらなる低減が駆
動される。
実施例12：キャノーラにおけるデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の発現
一連のトランスジェニックキャノーライベントを、pDAB7321（配列番号：61）およびpD
AB7326（配列番号：63）（種子特異PvPhasプロモーターによって駆動されるそれぞれLnD9
DS-2とHzD9DSの遺伝子を含む）を用いて実施した形質転換から得た。LnD9DS-2遺伝子を含
む39個のpDAB7321イベントを、ゲノムDNAのPCR解析により同定し、温室内で生育させて、
T1種子を生産した。同様に、80個のpDAB7326イベントがHzD9DS遺伝子を有することが確認
され、T1種子を生産した。キャノーラもpDAB7319（配列番号：60）またはpDAB7324（配列
番号：62）で形質転換し、これらはLnD9DS-2またはHzD9DS遺伝子と結合したAnD9DS遺伝子
（全てPvPhasプロモーターによって駆動される）を含んでいる。44および76個のイベント
をそれぞれ回収し、PCR分析によって両方のデサチュラーゼ遺伝子を含んでいることを確
認し、温室内で生育させ、T1種子を生産した。
pDAB7321（LnD9DS-2 v2）またはpDAB7326（HzD9DS v2）で形質転換されたイベントから
のT1種子サンプルのFAMEの分析では、形質転換されていないキャノーラ植物又は空のベク
ターコントロールで形質転換された植物に対して、飽和脂肪酸濃度の有意な減少を示さな
かった。T1種子のウェスタンブロットは、検出可能なレベルのデルタ-9デサチュラーゼタ
ンパク質を示さなかった。また、LnD9DS-2またはHzD9DSについての検出可能なタンパク質
は、AnD9DSタンパク質が容易に検出される可能性があるのに対し、pDAB7319（AnD9DS v3
およびLnD9DS-2 v2）またはpDAB7324（AnD9DS v3およびHzD9DS v2）で形質転換された植
物からのT1種子では検出されなかった。これらのイベントでは、飽和脂肪酸の減少がコン
トロール植物に対して観察されたが、これはAnD9DSの発現に起因するものであった。
デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の相対的なmRNAレベルを評価するために、全RNAをダブ
ルデサチュラーゼ構築物（pDAB7319とpDAB7324）で形質転換したイベントからの発達中の
キャノーラ種から抽出し、定量的リアルタイムPCRで解析した。種子を、いくつかのキャ
ノーラ植物から、受粉の20、25、29、32、39、または41日後にドライアイス上で収穫し、
-80℃で保存した。全RNAを、製造業者の推奨プロトコルに従って、Plant RNeasy（登録商
標）RNA抽出キット（Qiagen）を用いて、50mgのプールされた冷凍の種子から調製した。
抽出したRNAを、製造業者の推奨プロトコルに従って定量RT-PCR用のSuperScript（登録商
標）IIIファーストストランド合成スーパーミックス（Invitrogen）を用いてcDNA合成の
ための鋳型として使用した。
RT-PCRアッセイを、ロシュアッセイデザインセンター（ロシュ・ダイアグノスティック
ス、インディアナ州インディアナポリス）を使用して、標的とするデサチュラーゼに対し
て設計した。アッセイに使用したプライマーは、表16に記載されている。標的アッセイは
、FAM標識UPLプローブ（Roche Diagnostics）を用いた。これらのアッセイは、統合型DNA
技術によって合成されたテキサスレッド標識キャノーラアクチン参照アッセイで二重の反
応で実行された。
RT-PCR反応は、ライトサイクラー（登録商標）480IIリアルタイムPCRサーマルサイクラ
ー（ロシュ）上で実行された。標的UPLアッセイのためのデータを、533 nmの発光フィル
ターおよび483 nmの励起信号を使用して収集した。アクチン参照アッセイのためのデータ
を、610 nmのフィルターおよび558 nmの励起信号を使用して収集した。サイクルタイム値
および標的-基準比率が、LC480IIソフトウェアの「Advanced相対定量」分析のワークフロ
ーを使用して自動的に計算された。各サンプル内のデサチュラーゼ転写レベルの相対的な
蓄積は標準ΔΔCt法（Roche）を用いて算出した。
pDAB7319（AnD9DS v3およびLnD9DS-2 v2）およびpDAB7324（AnD9DS v3およびHzD9DS v2
）からの各キャノーラ種子サンプルについて、HzD9DSまたはLnD9DS-2の導入遺伝子の転写
産物の蓄積は、同じイベントでAnD9DSの転写よりも有意に低かった。転写産物の蓄積にお
ける観察された差は、3倍以下と20倍以下の間で変化した。図23。したがって、HzD9DSお
よびLnD9DS-2の不十分な発現は、これらの遺伝子に起因するポリペプチドの検出の欠如お
よび表現型の非存在を説明する可能性がある。
実施例13：代替プロモーターによるデルタ-9デサチュラーゼPTUsの発現
LnD9DS-2、HzD9DS、およびMgD9DSタンパク質をコードする遺伝子（群）を発現するため
に付加的な転写調節領域を使用することにより、キャノーラ内でこれらのデルタ-9デサチ
ュラーゼの含有量をさらに増大させ得る。発達の初期に、より長い期間にわたって発現す
る転写調節領域の同定と利用により、種子開発の初期段階で異種遺伝子の堅牢な種子特異
的転写を促進することにより、キャノーラ種子内で異種デルタ-9デサチュラーゼのレベル
を向上させることができる。このような転写調節領域の例としては、LfKCS3プロモーター
（米国特許7253337）およびFAE 1プロモーター（米国特許6784342）が含まれるが、これ
らに限定されない。これらのプロモーターは、プラスミドpDAB7319；pDAB7321; pDAB7324
; pDAB7326; pDAB7328;およびpDAB7330に以前に記載されているような遺伝子との作動可
能な連結を通じて、例えば、LnD9DS-2、HzD9DS、およびMgD9DS発現カセットの発現を駆動
するために、単独で、または組み合わせて使用されている。プラスミド内の転写調節領域
を交換する方法は、当該技術分野において周知である。このように、PvPhasプロモーター
を含むポリヌクレオチドフラグメントは、pDAB7319、pDAB7321、pDAB7324、pDAB7326、pD
AB7328、またはpDAB7330（またはpDAB7319、pDAB7321、pDAB7324、pDAB7326、pDAB7328、
またはpDAB7330を構築するために使用される先述のプラスミド）から削除され、LfKCS3ま
たはFAE 1プロモーター領域のいずれかと置き換えられる。新しく構築されたプラスミド
は、前の実施例で説明された手順にしたがって、安定した植物をキャノーラ変換するため
に使用される。トランスジェニックキャノーラ植物が単離され、分子的に特徴付けされる
。結果として得られるデルタ-9デサチュラーゼの蓄積が決定され、デルタ-9デサチュラー
ゼを堅牢に（robustly）発現するキャノーラ植物が同定される。
デルタ-9デサチュラーゼの発現増加のための転写調節領域のさらなる改変には、表17に
記載された配列のいずれかにより、既存のKozak配列を置換することが含まれる。デルタ-
9デサチュラーゼの開始部位の上流の代替Kozak配列の操作は、標準的な分子生物学技術を
使用して完了する。合成ポリヌクレオチドの断片を合成し、当該技術分野において周知の
技術を用いて上流のデルタ-9デサチュラーゼのコード配列のクローンを作製する。開始コ
ドンの状況は、導入遺伝子の発現レベルに強い影響を有する。表17にリストされているも
のにKozak配列を変更すると、異種のデルタ-9デサチュラーゼの発現レベルを増加させる
。
実施例14：オオタバコガトウモロコシとレプトスファエリア ノドルム（Leptosphaeria
nodorum）からデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の設計および合成
植物における異種遺伝子の発現の高いレベルを得るためには、実施例2に記載されたコ
ドン最適化戦略が変更され、そしてHzD9DSおよびLnD9DS-2用の異種遺伝子タンパク質をコ
ードする領域は、新しい設計のプロトコルを使用して再操作された。
コドンの選択は、将来の宿主植物のコドンバイアスを計算していたテーブルを使用して
行われ、それはこの場合にはキャノーラであった。デルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の植物
発現をコードする領域を設計する際に、植物によって優先される主要な（「第1の選択」
）コドンを決定し、約95％の時間で使用した。「第二の選択」コドンは、約5％の頻度で
、控えめに使用された。したがって、新たなDNA配列は各デルタ-9デサチュラーゼのアミ
ノ酸配列をコードするように設計され、ここで、新しいDNA配列は適切なアミノ酸をアミ
ノ酸配列内の各位置で指定する植物による第1優先と第2優先のコドンの置換によって天然
のデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子とは異なっていた。その後、新しい配列は、その改変に
よって作成された可能性のある制限酵素部位を分析された。識別された制限酵素部位は、
第1または第2の選択肢の優先性コドンによってコドンを置換することにより除去した。目
的の遺伝子の転写または翻訳に影響を及ぼす可能性がある配列内の他の部位では、具体的
に非常に安定したステムループ構造がまた削除された。
キャノーラの遺伝コードからの好ましいコドン選択肢（第1及び第2の選択肢）の選択は
、キャノーラについてのタンパク質コード配列からコンパイルされたコドンバイアス表か
ら決定した。表18および19には、「天然の遺伝子％」というラベルの列は、セイヨウアブ
ラナ（キャノーラ）のコード領域で見つかった、各アミノ酸の同義コドンの分布（そのア
ミノ酸の全てのコドンの使用に対する％）を提示する。M・病菌、H.ゼア、およびL. nodo
rumデルタ-9デサチュラーゼのアミノ酸配列を本質的にコードする新しいDNA配列は、キャ
ノーラ遺伝子で見いだされた第1および第2の選択肢コドンの好ましいコドンの分布を用い
て、キャノーラにおける最適な発現のために設計された。植物に最適化されたDNA配列の
設計は、構築されたキャノーラコドンバイアス表を使用して、配列番号：12（M.病菌）、
配列番号：13（H・ゼア）、および配列番号：14（L. nodorum）のタンパク質配列の逆翻
訳をすることによって開始された。「Plnt Opt 遺伝子％」というラベルの列が、好まし
いコドンおよびそれらがデルタ-9デサチュラーゼ遺伝子の設計に組み込まれた頻度を示す
。SEQ ID NO：44および配列番号：45は、それぞれ、新しいキャノーラ最適化されたLnD9D
S-2およびHzD9DSデサチュラーゼのヌクレオチド配列を示す。これらの新しいキャノーラ
最適化された配列は、LnD9DS-2 v3およびHzD9DS v3として標示した。

配列番号：44および配列番号：45を含むDNA断片の合成は、PicoScriptとブルーヘロン
・バイオテクノロジーによって行われた。次いで、合成DNAを発現ベクターにクローニン
グし、上述した実施例で説明したように、実質的キャノーラに形質転換した。
実施例15：植物におけるアシルCoAデサチュラーゼポリペプチドの蓄積を増加させるた
めのN-およびC-末端の改変
小胞体（ER）における膜結合蛋白質の蓄積と安定性は、それらのN末端とC末端のアミノ
酸配列モチーフおよび改変の影響を受けることがある。Ravid および Hochstrasser (200
8) Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 9:679-90。特に、N-およびC-末端のモチーフおよび改変
は、菌類および植物ならびに動物の脂質デサチュラーゼの蓄積および安定性を調節するこ
とが示されている。McCartney et al. (2004) Plant J. 37:156-73; Mziaut et al. (200
0) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97:8883-8。
FAD2またはFAD3のN末端へのMycまたはhemagglutin（HA）エピトープタグのいずれかの
追加は、有意に酵母内でのこれらの酵素の定常状態レベルを向上させる。O’Quin et al.
(2009) Appl Microbiol Biotechnol 83:117-25。従って、本発明のデルタ-9デサチュラ
ーゼのN末端へのこれら、または類似のエピトープの添加を、植物におけるポリペプチド
の発現を増加させるために利用する。Mycタグ（配列番号：46）またはHAタグ（配列番号
：47）をコードするポリヌクレオチドリンカーは、デルタ-9デサチュラーゼ（例えば、Hz
D9DS、MgD9DS、AnD9DS、LnD9DS-1、LnD9DS-2）コーディング配列の5 '末端内に連続した
オープンリーディングフレームとしてクローニングされる。得られるコード配列を、実施
例3に記載のクローニング戦略を用いて植物発現プラスミド内にクローニングする。新し
く構築されたプラスミドを、シロイヌナズナおよび/またはキャノーラ植物細胞、材料、
または組織に安定に形質転換するために使用する。トランスジェニック植物を、形質転換
植物細胞、材料、または組織から再生する。トランスジェニック植物を単離し、分子的に
特徴づける。トランスジェニック植物の種子における得られるデルタ-9デサチュラーゼの
蓄積が決定され、ポリペプチドデルタ-9デサチュラーゼを堅牢に発現する植物を特定する
。
シロイヌナズナおよびキャノーラにおけるAnD9DSの発現からの証拠（実施例11および12
）は、HzD9DSとLnD9DS-2と比較して、この特定の不飽和化酵素の発現の有意に高いレベル
を示す。したがって、AnD9DSのコアデサチュラーゼドメイン（膜貫通セグメントおよび保
存された触媒のヒスチジン残基を含む）の外側に位置するN-及びC末端のすべてまたは一
部は、低い発現のデサチュラーゼにおける等価な残基を交換し、その発現を増加させるた
めに使用することができる。従って、AnD9DSのN末端残基1−68およびC-末端残基281−455
（それぞれ、配列番号：72および配列番号：73）の全部又は一部は、LnD9DS-2（配列番号
：14）の68個のN-末端残基（1−68）および168個のC末端残基（281−449）、および/また
はHzD9DS（配列番号：13）の76個のN末端残基（1-76）及び60個の C-末端残基（293−353
）の全部または一部を置き換えるために使用される。得られるコード配列は、実施例3に
記載のクローニング戦略を用いて植物発現プラスミド内にクローニングする。新しく構築
されたプラスミドを、シロイヌナズナおよび/またはキャノーラ植物細胞、材料、または
組織を安定に形質転換するために使用する。トランスジェニック植物を、形質転換植物細
胞、材料、または組織から再生する。トランスジェニック植物を単離し、分子的に特徴づ
ける。トランスジェニック植物の種子において得られるデルタ-9デサチュラーゼの蓄積が
決定され、改変HzD9DSまたは改変LnD9DS-2ポリペプチドを堅牢に発現する植物を特定する
。
実施例16：植物内でのアシルCoAデサチュラーゼのmRNAの発現を増強するための改変
mRNAの発現が安定化し、mRNAの蓄積を増加させる遺伝子エレメントを組み込むことによ
って向上させることができることは当該技術分野で公知である。HzD9DsまたはLnD9DS-2コ
ーディング配列の近接への、5 'および3'非翻訳領域（例えば、タバコオスモチン5 'およ
び3' UTR配列（Liuら（2003）Nat. Biotechnol. 21:1222-8）、およびタバコモザイクウ
イルスのΩ配列（Gallie et al. (1987) Nucleic Acids Res. 15:8693-711）、またはイ
ントロン（Koziel et al. (1996) Plant Mol. Biol. 32:393-405））の組み込みは、上記
の遺伝子エレメントを欠いている同じコード配列の発現と比較した場合の導入遺伝子の発
現レベルを増加させるために使用されている。デサチュラーゼPTU内にこれらの遺伝子エ
レメントを1以上加えることは、当技術分野で周知の方法に従って行われる。5 '非翻訳領
域、3'非翻訳領域、および/またはイントロンを含むポリヌクレオチド断片が、植物発現
プラスミド（例えば、pDAB7319、pDAB7321、pDAB7324、pDAB7326、pDAB7328、pDAB7330、
またはpDAB7319、pDAB7321、pDAB7324、pDAB7326、pDAB7328、もしくはpDAB7330を構築す
るために使用された前出のプラスミド）に標準的なクローニング方法を介して追加される
。新しく構築されたプラスミドを、シロイヌナズナおよび/またはキャノーラ植物細胞、
材料、または組織を安定に形質転換するために使用する。トランスジェニック植物を、形
質転換植物細胞、材料、または組織から再生する。トランスジェニック植物を単離し、分
子的に特徴づける。トランスジェニック植物の種子において得られるデルタ-9デサチュラ
ーゼの蓄積が決定され、HzD9DSまたはLnD9DS-2ポリペプチドを堅牢に発現する植物を特定
する。
さらに、OLE1のような酵母デサチュラーゼ遺伝子は高度に制御されていることが、当該
技術分野で公知である。膜貫通領域をコードし、シトクロムb5ドメインの一部である配列
の欠失は、OLE1の転写物の安定性を低減する。Vemula et al. (2003) J. Biol. Chem. 27
8(46):45269-79。OLE1内でのこれらの配列の存在はmRNAの安定化配列として作用する。し
たがって、LnD9DS-2またはHzD9DSコード配列への膜貫通領域およびシトクロムb5ドメイン
をコードするOLE1配列の取り込みを、コード配列のmRNA転写物の安定性を高めるために利
用されることにより、より高いレベルの発現をもたらし、その後のLnD9DS-2またはHzD9DS
ポリペプチドの増加をもたらす。OLE1の膜貫通領域およびシトクロムb5ドメイン配列を含
むキメラLnD9DS-2またはHzD9DSコード配列を、当技術分野で公知の方法を使用して構築す
る。このように生成されたコード配列を、植物発現プラスミドに組み込み（例えば、上記
の実施例で説明したように）、アグロバクテリウム菌による植物の形質転換を経由してト
ランスジェニック植物を生成するために使用する。トランスジェニック植物は、単離され
、特徴付けられる。得られるデルタ-9デサチュラーゼの蓄積が決定され、デルタ-9デサチ
ュラーゼを堅牢に発現する植物が特定される。
実施例17
代替的な3 '非翻訳領域ターミネーターの使用
植物内のデルタ-9デサチュラーゼの安定な発現のために
利用可能な3 'UTR-ターミネーターの数が限られていることにより、通常、アグロバク
テリウムのORF 23の3'UTR-ターミネーター（AtuORF23 3'UTR）が、転写を終結するために
使用される。最近、他の3'UTR-ターミネーターがシロイヌナズナで転写リードスルーを終
結することにおいてより効果的であることが示された。したがって、インゲンマメファゼ
オリン3'UTR-teminator（配列番号：69）を、上流遺伝子の転写リードスルーを減らし、
それによって転写干渉を低減するために、インゲンマメのゼオリンプロモーターと組み合
わせて使用する。
インゲンマメファゼオリン3'UTR-ターミネーター（PvPhas 3'UTR v1）が、LnD9DS-2 v2
の発現カセット内、および以前にプラスミドpDAB7321およびpDAB7326において記載された
HzD9DS v2の発現カセット内に組み込まれた。当業者に周知である方法に従って、PvPhas
3'UTR v1を含むポリヌクレオチドフラグメントを、LnD9DS-2 v2の遺伝子の下流に配置し
、バイナリープラスミドpDAB110110（図4a；配列番号：74）を作成する。 PvPhas 3'UTR
v1を含むポリヌクレオチドフラグメントはまた、HzD9DS v2の遺伝子の下流に配置し、バ
イナリープラスミドpDAB110112（図4b;配列番号：75）を作成する。
得られたバイナリープラスミドを、制限酵素消化および配列決定によって確認した。新
しく構築されたプラスミドは、シロイヌナズナおよび/またはキャノーラ植物細胞、材料
、または組織を安定に形質転換するために、それぞれ使用される。トランスジェニック植
物を、形質転換植物細胞、材料、または組織から再生する。トランスジェニック植物を単
離し、分子的に特徴づける。トランスジェニック植物の種子において得られるデルタ-9デ
サチュラーゼの蓄積が決定され、HzD9DSまたはLnD9DS-2ポリペプチドを堅牢に発現する植
物を特定する。
本発明は以下を提供する。
［１］配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、配列番号：52、配列番号：72、および配列番号：73から成る群から選択される配列と少なくとも80％同一であるアミノ酸配列を含むデルタ-9デサチュラーゼ酵素をコードする単離された核酸分子。
［２］上記核酸分子が、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番号：8、配列番号：9、配列番号：10、配列番号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列番号：17、配列番号：44、及び配列番号：45から成る群から選択される配列に対して少なくとも60％同一であるヌクレオチド配列を含む、上記［1］に記載の核酸分子。
［３］さらに遺伝子調節エレメントを含む、上記［1］に記載の核酸分子。
［４］上記遺伝子調節エレメントは、サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）デルタ-9デサチュラーゼプロモーター、デルタ-9デサチュラーゼ3'UTR /ターミネーター、OLE1遺伝子プロモーター、ファゼオリンプロモーター、インゲンマメ（Phaseolus vulgaris）ファゼオリン5 '非翻訳領域、インゲンマメファゼオリン3'非翻訳領域、インゲンマメファゼオリンマトリックス結合領域、アグロバクテリウムツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）ORF23 3 '非翻訳領域、キャッサバ葉脈モザイクウイルスプロモーター、アグロバクテリウムツメファシエンスORF1 3'非翻訳領域、タバコ（Nicotiana tabacum）RB7マトリックス結合領域、オーバードライブ、Tスタンドボーダー配列、LfKCS3プロモーター、FAE 1プロモーター、配列番号：40、配列番号：41、配列番号：42、配列番号：43、Mycタグ、およびヘマグルチン（hemagglutin）タグから成る群から選択される、上記［3］に記載の核酸分子。
［５］配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、配列番号：52、配列番号：72、および配列番号：73から成る群から選択される配列に対して少なくとも80％同一のアミノ酸配列を含む単離されたデルタ-9デサチュラーゼ酵素。
［６］配列番号：72および/または配列番号：73を含むキメラデルタ-9デサチュラーゼポリペプチドであって、配列番号：77および配列番号：78から成る群から選択されるアミノ酸配列をさらに含むことを特徴とする、ポリペプチド。
［７］細胞内の飽和脂肪酸の量を減少させるための方法であって、
細胞内の飽和脂肪酸の量が減少するように、上記［1］に記載の核酸分子で細胞を形質転換する工程を含む、方法。
［８］上記細胞は酵母細胞である、上記［7］に記載の方法。
［９］上記細胞は植物細胞である、上記［7］に記載の方法。
［１０］上記［1］に記載の複数の核酸分子で植物細胞を形質転換する工程を含む、上記［9］に記載の方法。
［１１］上記植物細胞を形質転換することによって、上記植物細胞に、上記植物細胞内で16：0-ACPのレベルを減少させるための手段が導入される、上記［9］に記載の方法。
［１２］上記植物細胞において16：0-ACPのレベルを減少させるための手段が、植物細胞小器官外（extraplastidial）デサチュラーゼである、上記［11］に記載の方法。
［１３］上記植物細胞小器官外デサチュラーゼが、LnD9DSデサチュラーゼ、AnD9DSデサチュラーゼ、HzD9DSデサチュラーゼ、およびMgD9DSデサチュラーゼからなる群から選ばれるデサチュラーゼである、上記［12］に記載の方法。
［１４］上記植物細胞が、シロイヌナズナ、ボラゴ（Borago）、キャノーラ、ヒマ、テオブロマ、トウモロコシ、ワタ、ハマナ、クフェア、アマ、レスケレーラ（Lesquerella）、リムナンテス（Limnanthes）、リノラ（Linola）、キンレンカ、マツヨイグサ、オレア、アブラヤシ、落花生、菜種、ベニバナ、大豆（Glycine）、ソヤ（Soja）、ヒマワリ、ニコチアナ、ベルノニア、コムギ、オオムギ、イネ、エンバク、ソルガム、ライムギ、及びイネ科の他のメンバーからなる群から選ばれる属から選択された植物から得られる、上記［9］に記載の方法。
［１５］上記［1］に記載の核酸配列を含む油種子植物。
［１６］配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、および配列番号：52から成る群から選択される植物細胞小器官外デサチュラーゼを発現する植物種子。
［１７］トランスジェニックセイヨウアブラナ（Brassica napus）系統の種子であって、同質遺伝子系統バージョンのトランスジェニックセイヨウアブラナ系統に対して減少した16：0レベルを有する種子。
［１８］野生型植物に比べて減少量の飽和脂肪酸をその植物において含むトランスジェニック植物を作製するための方法であって：
上記［1］に記載の核酸分子で植物材料を形質転換する工程;および
形質転換された植物素材を培養して、植物を得る工程
を含む、方法。
［１９］上記植物が、シロイヌナズナ、ボラゴ（Borago）、キャノーラ、ヒマ、テオブロマ、トウモロコシ、ワタ、ハマナ、クフェア、アマ、レスケレーラ（Lesquerella）、リムナンテス（Limnanthes）、リノラ（Linola）、キンレンカ、マツヨイグサ、オレア、アブラヤシ、落花生、菜種、ベニバナ、大豆（Glycine）、ソヤ（Soja）、ヒマワリ、ニコチアナ、ベルノニア、コムギ、オオムギ、イネ、エンバク、ソルガム、ライムギ、及びイネ科の他のメンバーからなる群から選ばれる属から選択される、上記［18］に記載の方法。
［２０］上記［18］に記載の方法により得られる植物。
［２１］上記［20］に記載の植物から得られる植物材料。
［２２］上記植物材料が種子である、上記［21］に記載の植物材料。

新規な真菌デルタ-9デサチュラーゼ酵素、そのようなデサチュラーゼをコードする少なくとも1つのヌクレオチド配列を含む核酸、植物、植物材料（例えば、種子）、植物の部分、および上記のいずれかを含む植物コモディティ製品類が本明細書に開示される。いくつかの実施形態の側面は、イネいもち病菌（Magnaporthe grisea）、レプトスファエリアノドルム（Leptosphaeria nodorum）、およびオオタバコガトウモロコシ（Helicoverpa zea）から単離された真菌のデルタ-9デサチュラーゼ酵素によって例示される。いくつかの例は、パルミチン酸又はステアリン酸の基質選好（substrate preference）を有する天然のおよび合成デルタ-9デサチュラーゼを含む。

Claims (22)

  1. 配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、配列番号
    ：52、配列番号：72、および配列番号：73から成る群から選択される配列と少なくとも80
    ％同一であるアミノ酸配列を含むデルタ-9デサチュラーゼ酵素をコードする単離された核
    酸分子。
  2. 前記核酸分子が、配列番号：3、配列番号：4、配列番号：5、配列番号：8、配列番号：
    9、配列番号：10、配列番号：11、配列番号：15、配列番号：16、配列番号：17、配列番
    号：44、及び配列番号：45から成る群から選択される配列に対して少なくとも60％同一で
    あるヌクレオチド配列を含む、請求項1に記載の核酸分子。
  3. さらに遺伝子調節エレメントを含む、請求項1に記載の核酸分子。
  4. 前記遺伝子調節エレメントは、サッカロマイセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevi
    siae）デルタ-9デサチュラーゼプロモーター、デルタ-9デサチュラーゼ3'UTR /ターミネ
    ーター、OLE1遺伝子プロモーター、ファゼオリンプロモーター、インゲンマメ（Phaseolu
    s vulgaris）ファゼオリン5 '非翻訳領域、インゲンマメファゼオリン3'非翻訳領域、イ
    ンゲンマメファゼオリンマトリックス結合領域、アグロバクテリウムツメファシエンス（
    Agrobacterium tumefaciens）ORF23 3 '非翻訳領域、キャッサバ葉脈モザイクウイルスプ
    ロモーター、アグロバクテリウムツメファシエンスORF1 3'非翻訳領域、タバコ（Nicotia
    na tabacum）RB7マトリックス結合領域、オーバードライブ、Tスタンドボーダー配列、Lf
    KCS3プロモーター、FAE 1プロモーター、配列番号：40、配列番号：41、配列番号：42、
    配列番号：43、Mycタグ、およびヘマグルチン（hemagglutin）タグから成る群から選択さ
    れる、請求項3に記載の核酸分子。
  5. 配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、配列番号
    ：52、配列番号：72、および配列番号：73から成る群から選択される配列に対して少なく
    とも80％同一のアミノ酸配列を含む単離されたデルタ-9デサチュラーゼ酵素。
  6. 配列番号：72および/または配列番号：73を含むキメラデルタ-9デサチュラーゼポリペ
    プチドであって、配列番号：77および配列番号：78から成る群から選択されるアミノ酸配
    列をさらに含むことを特徴とする、ポリペプチド。
  7. 細胞内の飽和脂肪酸の量を減少させるための方法であって、
    細胞内の飽和脂肪酸の量が減少するように、請求項1に記載の核酸分子で細胞を形質転
    換する工程を含む、方法。
  8. 前記細胞は酵母細胞である、請求項7に記載の方法。
  9. 前記細胞は植物細胞である、請求項7に記載の方法。
  10. 請求項1に記載の複数の核酸分子で植物細胞を形質転換する工程を含む、請求項9に記載
    の方法。
  11. 前記植物細胞を形質転換することによって、前記植物細胞に、前記植物細胞内で16：0-
    ACPのレベルを減少させるための手段が導入される、請求項9に記載の方法。
  12. 前記植物細胞において16：0-ACPのレベルを減少させるための手段が、植物細胞小器官
    外（extraplastidial）デサチュラーゼである、請求項11に記載の方法。
  13. 前記植物細胞小器官外デサチュラーゼが、LnD9DSデサチュラーゼ、AnD9DSデサチュラー
    ゼ、HzD9DSデサチュラーゼ、およびMgD9DSデサチュラーゼからなる群から選ばれるデサチ
    ュラーゼである、請求項12に記載の方法。
  14. 前記植物細胞が、シロイヌナズナ、ボラゴ（Borago）、キャノーラ、ヒマ、テオブロマ
    、トウモロコシ、ワタ、ハマナ、クフェア、アマ、レスケレーラ（Lesquerella）、リム
    ナンテス（Limnanthes）、リノラ（Linola）、キンレンカ、マツヨイグサ、オレア、アブ
    ラヤシ、落花生、菜種、ベニバナ、大豆（Glycine）、ソヤ（Soja）、ヒマワリ、ニコチ
    アナ、ベルノニア、コムギ、オオムギ、イネ、エンバク、ソルガム、ライムギ、及びイネ
    科の他のメンバーからなる群から選ばれる属から選択された植物から得られる、請求項9
    に記載の方法。
  15. 請求項1に記載の核酸配列を含む油種子植物。
  16. 配列番号：12、配列番号：13、配列番号：14、配列番号：50、配列番号：51、および配
    列番号：52から成る群から選択される植物細胞小器官外デサチュラーゼを発現する植物種
    子。
  17. トランスジェニックセイヨウアブラナ（Brassica napus）系統の種子であって、同質遺
    伝子系統バージョンのトランスジェニックセイヨウアブラナ系統に対して減少した16：0
    レベルを有する種子。
  18. 野生型植物に比べて減少量の飽和脂肪酸をその植物において含むトランスジェニック植
    物を作製するための方法であって：
    請求項1に記載の核酸分子で植物材料を形質転換する工程;および
    形質転換された植物素材を培養して、植物を得る工程
    を含む、方法。
  19. 前記植物が、シロイヌナズナ、ボラゴ（Borago）、キャノーラ、ヒマ、テオブロマ、ト
    ウモロコシ、ワタ、ハマナ、クフェア、アマ、レスケレーラ（Lesquerella）、リムナン
    テス（Limnanthes）、リノラ（Linola）、キンレンカ、マツヨイグサ、オレア、アブラヤ
    シ、落花生、菜種、ベニバナ、大豆（Glycine）、ソヤ（Soja）、ヒマワリ、ニコチアナ
    、ベルノニア、コムギ、オオムギ、イネ、エンバク、ソルガム、ライムギ、及びイネ科の
    他のメンバーからなる群から選ばれる属から選択される、請求項18に記載の方法。
  20. 請求項18に記載の方法により得られる植物。
  21. 請求項20に記載の植物から得られる植物材料。
  22. 前記植物材料が種子である、請求項21に記載の植物材料。

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